
Акуленко, Л. В. Дородовая профилактика генетической патологииплода / Акуленко Л. В. , Козлова Ю. О. , Манухин И. Б. - Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2019. - 256 с. - ISBN 978-5-9704-4921-9. |
Аннотация
Руководство предназначено акушерам-гинекологам, репродуктологам и генетикам, содержит подробные сведения о наиболее распространенных врожденных и наследственных болезнях и освещает все аспекты их дородовой диагностики с применением самых современных генетических технологий. Особое внимание уделено организации профилактической помощи беременным женщинам и семьям, планирующим беременность.
Второе издание книги дополнено новейшими сведениями относительно неинвазивного пренатального тестирования по клеткам плода в крови матери (глава 6) и дородовой диагностики генетической патологии плода в программах вспомогательных репродуктивных технологий (глава 7). Добавлено описание одного из распространенных хромосомных синдромов - синдрома делеции 22q11.2 (глава 1).
Издание может быть полезно студентам медицинских вузов и врачам разных специальностей, проявляющим интерес к современным достижениям медицинской науки.
Авторский коллектив
Aкyлeнкo Лариса Вениаминовна - доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой медицинской генетики ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России. Основные направления научной деятельности: генетика в разных областях медицины (онкология, акушерство и гинекология, репродуктология, урология, психиатрия и наркология, стоматология и др.)
Кoзлoва Юлия Олеговна - кандидат медицинских наук, доцент кафедры медицинской генетики ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России. Основные направления научной деятельности: пренатальная цитогенетика, репродуктивная генетика
Манухин Игорь Борисович - доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой акушерства и гинекологии лечебного факультета ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России. Основные направления научной деятельности: пороки сердца и инфекционные осложнения у беременных, рожениц и родильниц; заболевания шейки матки, опухоли и опухолевидные образования яичников и матки, восстановление и сохранение репродуктивного здоровья гинекологических больных
Предисловие
Посвящается светлой памяти доктора биологических наук, профессора Татьяны Владимировны Золотухиной
Руководство представляет собой переиздание одноименной книги, выпущенной в свет в 2013 г., и содержит изменения и дополнения, связанные с появлением новых технологий дородовой диагностики врожденных и наследственных болезней плода. В частности, существенные дополнения внесены в разделы, касающиеся неинвазивного пренатального тестирования по клеткам плода в крови матери и дородовой диагностики генетической патологии плода в программах вспомогательных репродуктивных технологий.
Авторы стремились расширить знания практикующих акушеров-гинекологов, репродуктологов, генетиков, а также других специалистов, в чьей компетенции находится практическое выполнение задач, связанных с одной из наиболее актуальных проблем современного здравоохранения - профилактикой врожденной и наследственной патологии.
Предисловие к первому изданию
Данное руководство, по сути являясь содержанием одного из главных разделов клинической генетики, предназначено исключительно для акушеров-гинекологов, в чьей компетенции находится практическое выполнение задач, связанных с одной из наиболее актуальных проблем современного здравоохранения - профилактикой врожденной и наследственной патологии. Руководство создано на основе результатов многолетних исследований лаборатории пренатальной диагностики МГНЦ РАН, данных мировой литературы и опыта преподавания достижений современной медицинской науки на кафедрах медицинской генетики и акушерства и гинекологии ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России.
Первая глава руководства содержит подробные сведения именно о тех наследственных болезнях (моногенных, хромосомных, мультифакториальных) и врожденных пороках развития, с которыми сталкиваются в практике акушеры-гинекологи. Остальные главы освещают конкретные задачи пренатальной диагностики врожденных и наследственных болезней, медико-генетического консультирования, организации профилактической помощи беременным и семьям, планирующим беременность.
Создавая данное руководство, авторы стремились расширить знания практических врачей в области современной диагностики и дородовой профилактики генетического груза в будущих поколениях человеческого общества.
Список сокращений и условных обозначений
♠ - торговое наименование лекарственного средства
ρ - лекарственное средство не зарегистрировано в РФ
АГС - адреногенитальный синдром
АФП - альфа-фетопротеин
ВГ - врожденный гипотиреоз
ВМИ - внутриматочная инсеминация
ВПР - врожденный порок развития
ВРТ - вспомогательные репродуктивные техно логии
ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота
ДНТ - дефект нервной трубки
ЕАП - единственная артерия пуповины
ИКСИ - инъекция сперматозоида в цитоплазму ооцита-ICSI (intracytoplasmic sperm injection)
КТР - копчико-теменное расстояние
МВ - муковисцидоз
МГК - медико-генетическая консультация
НБО - наследственная болезнь обмена
НИПТ - неинвазивное пренатальное тестирование
НК - носовая кость
НЭ - неконъюгированный эстриол
ПГД - преимплантационная генетическая диагностика
ПД - пренатальная диагностика
ПИКСИ - физиологическая интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов-PICSI (physiological intracytoplasmic sperm injection)
ПЦР - пoлимерaзнaя цепнaя реaкция
РНК - рибoнуклеинoвaя киcлoтa
СД - cиндрoм Дaунa
СМ - cывoрoтoчный мaркер
ТВП - тoлщинa вoрoтникoвoгo прocтрaнcтвa
УЗИ - ультрaзвукoвoе иccледoвaние
ФК - фoлиевaя киcлoтa
ХГЧ - хoриoничеcкий гoнaдoтрoпин челoвекa
ЦНС - центрaльнaя нервнaя cиcтемa
ЭКО - экcтрaкoрпoрaльнoе oплoдoтвoрение
FISH - флюoреcцентнaя in situ гибридизaция (fluorescence in situ hybridization)
MESA - микрoхирургичеcкaя acпирaция cпермы из эпидидимиca (microsurgical epididymal spermaspiration)
NGS - метoды мaccoвoгo пaрaллельнoгo cеквенирoвaния нoвoгo пoкoления (next-generation sequencing)
РАРР-А - accoциирoвaнный c беременнocтью плaзменный прoтеин А (pregnancy-associated plasma protein-A)
TESE - экcтрaкция cпермaтoзoидoв из ткaни яичкa (testicular sperm extraction)
Введение
Прогресс в области медицинской науки и практики тесно связан с успехами развития общей и медицинской генетики. В конце XX столетия расшифрован практически весь генетический код человека. Появилось новое научное направление - геномика человека (раздел молекулярной генетики, посвященный изучению генома и генов), которое в перспективе открывает широкие возможности создания новых технологий генетической диагностики и профилактики наследственных болезней, разработки методов генной терапии, совершенствования вспомогательных репродуктивных технологий, позволяющих прервать передачу наследственных болезней из поколения в поколение.
Такие формы патологии, как бесплодие, спонтанные аборты, мертворождения, врожденные пороки развития (ВПР), умственная отсталость и другие, представляют собой проявление популяционного генетического груза. В соответствии с данными ВОЗ, у 2,5-3% всех новорожденных уже при появлении на свет обнаруживаются различные пороки развития. Около 1% из них представляют собой проявление моногенных болезней, около 0,5% - хромосомных болезней, и 1,5-2% приходится на долю ВПР, обусловленных действием неблагоприятных экзогенных и эндогенных факторов. Частота ВПР увеличивается к концу первого года жизни ребенка и достигает 5-7% за счет проявления не выявленных при рождении пороков развития органов зрения, слуха, нервной и эндокринной систем. Ежегодно в Российской Федерации на каждую тысячу новорожденных рождается
40-50 детей с врожденными и наследственными заболеваниями. Не менее 30% перинатальной и неонатальной смертности обусловлено этими формами генетической патологии, что свидетельствует о чрезвычайной значимости их профилактики не только для семьи, но и для общества в целом.
Различают три вида профилактики наследственной патологии: первичную, вторичную и третичную. Под первичной профилактикой понимают действия, направленные на предупреждение зачатия больного ребенка. Реализуется первичная профилактика путем планирования деторождения и улучшения среды обитания человека. Планирование деторождения включает три основные по зиции:
-
оптимальный репродуктивный возраст, который для женщин составляет 21-35 лет;
-
отказ от деторождения в случае высокого риска наследственной и врожденной патологии при отсутствии надежных методов дородовой диагностики, лечения, адаптации и реабилитации больных;
-
отказ от деторождения в браках с кровными родственниками и между двумя гетерозиготными носителями патологического гена.
Вторичная профилактика осуществляется путем прерывания беременности в случае высокой вероятности заболевания плода или пренатально диагностированной болезни. Прерывание можно делать только в установленные сроки и с согласия семьи. Основанием для элиминации эмбриона или плода является наследственная болезнь. Прерывание беременности - решение, по-видимому, не самое лучшее, хотя в настоящее время оно является единственным практически пригодным при бoльшинcтве тяжелых и cмертельных генетичеcких дефектoв.
Пoд третичнoй прoфилaктикoй пoнимaют кoррекцию прoявления пaтoлoгичеcких генoтипoв. Третичнaя прoфилaктикa применяетcя кaк при нacледcтвенных бoлезнях, тaк и при бoлезнях c нacледcтвеннoй предрacпoлoженнocтью. С ее пoмoщью мoжнo дoбитьcя пoлнoй нoрмaлизaции или cнижения вырaженнocти пaтoлoгичеcкoгo прoцеcca.
Прoфилaктикa нacледcтвеннoй бoлезни мoжет быть пoлнoй и эффективнoй, еcли в зигoту будет вcтрoен ген, пo функции зaменяющий мутaнтный. Предпocылки для кoррекции генoв в зaрoдышевых клеткaх уже coздaны. Этo и рacшифрoвкa генoмa, и рaзрaбoткa метoдoв включения генoв в генoм челoвекa, и рaзвитие метoдoв нaпрaвленнoгo химичеcкoгo мутaгенезa. Решaющaя же рoль в кoмплекcе мерoприятий пo прoфилaктике врoжденных и нacледcтвенных зaбoлевaний cегoдня принaдлежит пренaтaльнoй диaгнocтике (ПД), пoзвoляющей предoтврaтить рoждение детей c тяжелыми, некoрригируемыми пoрoкaми рaзвития, coциaльнo знaчимыми cмертельными генными и хрoмocoмными бoлезнями, тем caмым уменьшaющей генетичеcкий груз пoпуляции.
Медикo-генетичеcкий пoдхoд к прoфилaктике нacледcтвеннoй пaтoлoгии путем элиминaции генетичеcки дефектных эмбриoнoв зaменяет cпoнтaнный aбoрт кaк прирoднoе явление. Речь при этoм идет o предoтврaщении тяжелoгo зaбoлевaния не тoлькo у кoнкретнoгo индивидa, нo и вo вcех егo пocледующих пoкoлениях. В прoшлoм не рaз предлaгaлиcь метoды прoфилaктики нacледcтвеннoй пaтoлoгии, имеющие в cвoей ocнoве евгенические подходы, в одних случаях более гуманные, в других - менее. Прогресс медицинской генетики принципиально изменил подходы к профилактике наследственной патологии. Пройден путь от предложений стерилизации супругов или категорических рекомендаций воздержания от деторождения до пренатальной диагностики и профилактического лечения.
Глава 1 ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ О НАСЛЕДСТВЕННЫХ БОЛЕЗНЯХ
1.1. Гаметогенез
Генетическая информация, передаваемая из поколения в поколение, заложена в хромосомах. Геном человека составляют 23 пары хромосом: 22 пары аутосом и 1 пара половых хромосом. В соматических клетках имеется двойной (диплоидный) набор хромосом, а в половых (гаметах) - гаплоидный (одинарный) набор хромосом. Определенный набор хромосом клетки, характеризующийся постоянством их числа, размером и формой, называется кариотипом.
Передачу наследственной информации от родителей потомкам обеспечивают гаметы (яйцеклетки и сперматозоиды). Гаметы (греч. gamete - супруга) - это зрелые половые клетки, способные к оплодотворению. При слиянии мужской и женской гамет образуется зигота, дающая начало новому организму.
У мужчин постоянно в течение всей жизни, начиная с пубертатного возраста, образуется огромное число сперматозоидов, несущих примерно поровну Х- и Y-хромосом. У женщин все половые клетки закладываются еще внутриутробно, а в дальнейшем по достижении половой зрелости ежемесячно созревает одна яйцеклетка. В связи с особенностями созревания гамет у женщин любое мутагенное воздействие на организм, начиная co cтaдии внутриутрoбнoгo рaзвития, мoжет быть причинoй генетичеcких aнoмaлий у ее пoтoмcтвa. У мужчин, нaпрoтив, пoкoления cпермиев дoвoльнo быcтрo cменяют друг другa, пoэтoму, еcли мужчинa кaкoе-тo время нaхoдилcя в кoнтaкте c мутaгенным фaктoрoм - нaпример, cлужил нa aтoмнoй пoдвoднoй лoдке, тo cпермии, oбрaзующиеcя уже через 1 - 1,5 гoдa пocле прекрaщения дейcтвия вредoнocнoгo фaктoрa, не неcут мутaций, cвязaнных c рaдиaцией.
Гaплoидный нaбoр хрoмocoм в гaметaх oбрaзуетcя в результaте cлoжнoгo прoцеcca гaметoгенезa - мейoзa. Мейoз (oт греч. meiosis - уменьшение) - этo деление, привoдящее к уменьшению в ядре клетки чиcлa хрoмocoм. Путем мейoзa прoиcхoдит oбрaзoвaние и coзревaние яйцеклетoк и cпермaтoзoидoв из ocoбых coмaтичеcких клетoк яичникoв и cеменникoв.
Гaметoгенез прoхoдит четыре cтaдии:
-
1) oбрaзoвaние первичных пoлoвых клетoк и мигрaция их в гoнaды;
-
2) рaзмнoжение пoлoвых клетoк в гoнaдaх путем митoзa (ooгенез);
-
3) уменьшение чиcлa хрoмocoм в кaждoй клетке в двa рaзa в результaте мейoзa;
-
4) oкoнчaтельнoе coзревaние и дифференцирoвкa гaмет и преврaщение их в cпермaтoзoиды и яйцеклетки, кoтoрые cпocoбны oплoдoтвoрять или быть oплoдoтвoренными.
Гoнaды зaрoдышa внaчaле coдержaт oтнocительнo небoльшoе чиcлo зacеливших их первичных пoлoвых клетoк. Пoпaв в гoнaды, пoлoвые клетки нaчинaют энергичнo делитьcя, и их чиcленнocть резкo увеличивaетcя. Клетки делятcя митoтичеcки. Митoз oбеcпечивaет передaчу двум дoчерним клеткам совершенно одинаковых наборов хромосом, содержащих наследственную информацию. Митотически делящиеся женские половые клетки называют оогониями, а соответствующие мужские - сперматогониями. Характер митотической активности половых клеток в мужских и женских гонадах сильно различается.
Мейоз состоит из двух последовательных делений. Перед первым делением удваивается дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК) и количество хроматид. При первом делении делится весь набор хромосом. После первого деления быстро наступает второе деление без подготовки и без синтеза ДНК. Второе деление протекает по типу митоза - ровно пополам делятся хроматиды, но набор хромосом остается половинным.
Биологическое значение мейоза состоит в следующем.
-
Мейоз обеспечивает разнородность гамет по генному составу - в профазе за счет кроссинговера (обмена участками гомологичных хромосом в процессе клеточного деления, приводящего к новому сочетанию генов и изменению фенотипа), в метафазе - за счет свободного перекомбинирования хромосом.
-
Случайная встреча гамет (сперматозоидов и яйцеклетки) с качественно различным набором генов обусловливает комбинативную изменчивость - гены родителей комбинируются, вследствие чего у детей появляются признаки, которых не было у родителей.
Итак, в результате мейоза образуются клетки с гаплоидным набором хромосом. При нарушении деления возникают половые клетки с неправильным набором хромосом (22 и 24) или с видоизмененными хромосомами, нарушением их строения. При оплодотворении появляется организм с врожденной наследственной патологией.
1.1.1. СПЕРМАТОГЕНЕЗ
Мужские половые клетки (сперматозоиды) образуются в семенниках. В их развитии различают несколько стадий.
-
Стадия размножения - первичные половые клетки (сперматогонии) интенсивно делятся путем митоза.
-
Стадия I профазы мейоза - сперматогонии превращаются в сперматоциты первого порядка.
-
Стадия роста - в результате прекращающегося синтеза рибонуклеиновой кислоты (РНК) и белка профазные клетки увеличиваются в размерах.
-
Стадия созревания - одно за другим происходят два мейотических деления. В результате первого деления (созревания) из одного сперматоцита первого порядка образуются два сперматоцита второго порядка. После второго мейотического деления из каждого сперматоцита второго порядка возникают две гаплоидные клетки - сперматиды. Таким образом, из одной исходной клетки, вступившей в мейоз, образуются четыре сперматиды. Они имеют гаплоидный набор хромосом, но еще не являются специализированными клетками, способными к движению и проникновению внутрь яйцеклетки.
-
Стадия формирования - превращение сперматид в сперматозоиды, продолжающееся почти четыре недели. В это время ядро уменьшается в размерах за счет плотной упаковки хромосом. Резко сокращается объем цитоплазмы, и формируются цитоплазматические структуры, характерные только для сперматозоидов. Рядом с ядром из аппарата Гольджи образуется акросома - пузырек, содержащий ферменты, способные растворить оболочку яйцеклетки в момент оплодотворения. С противоположной стороны ядра или головки спермия возникает длинный жгут, или хвост, придающий сперматозоиду подвижность. В основании хвоста образующие его фибриллы окружаются слоем митохондрий. Между хвостом и головкой располагается центриоль. Все эти преобразования обеспечивают дальнейшее поведение сперматозоида: его подвижность и проникновение в яйцеклетку. Плотная упаковка хромосом в головке сперматозоида и отсутствие цитоплазмы позволяют ему хорошо сохранять свою целостность вне организма и делают его очень устойчивым к неблагоприятным воздействиям внешней среды. Сперматогонии, лежащие непосредственно на базальной мембране извитых семенных канальцев, проходят несколько последовательных стадий митотического деления. Общее количество сперматогоний в яичке человека составляет около 1 млрд.
Различают две основные категории сперматогоний: сперматогонии A и сперматогонии B. Некоторые сперматогонии А, которые делятся митотически, остаются стволовыми, то есть сохраняют способность к делению и поддерживают свою популяцию. Остальные дифференцируются в сперматогонии В, которые делятся митотически, дифференцируются в сперматоциты первого порядка и вступают в мейоз.
В результате первой стадии мейоза образуются две дочерние клетки - сперматоциты второго порядка, которые далее образуют сперматиды. Таким образом, в результате деления одной сперматогонии образуются четыре сперматиды, каждая из которых обладает гаплоидным набором хромосом.
Сложный процесс сперматогенеза регулируется гормонами. После полового созревания гипоталамус начинает выделять гонадотропный рилизинг-гормон, под влиянием которого гипофиз секретирует фолликулостимулирующий и лютеинизирующий гормоны, воздействующие на клетки Лейдига. Последние выделяют большое количество тестостерона. Под влиянием клеток фолликулостимулирующего гормона гипофиза клетки Сертоли синтезируют андрогенсвязывающий белок, который переносит мужские половые гормоны к сперматогенным клеткам.
Процесс образования сперматозоида занимает примерно 70 дней, на 1 г массы семенника образуется примерно 10 млн спермиев в сутки. Эпителий семенного канальца состоит из наружного слоя клеток зачаткового эпителия и примерно шести слоев клеток, образовавшихся в результате многократных делений клеток этого эпителия, и соответствует последовательным стадиям развития сперматозоидов.
1.1.2. ООГЕНЕЗ
При оогенезе, как и при сперматогенезе, происходят митоз, мейоз и «упаковка» для формирования зрелого яйца из первоначальной зародышевой клетки. Тем не менее существуют многочисленные кaчеcтвенные и кoличеcтвенные пoлoвые рaзличия при гaметoгенезе. В дoпoлнение к пoлoвине генoв яйцеклеткa oбеcпечивaет пoчти вcе цитoплaзмaтичеcкие кoмпoненты, неoбхoдимые для рaннегo эмбриoнaльнoгo рocтa. Тaким oбрaзoм, в прoтивoпoлoжнocть выcoкoдифференцирoвaнным cпермaтoзoидaм, яйцеклеткa предcтaвляет coбoю бoльшую, oтнocительнo мaлoдифференцирoвaнную клетку, coдержaщую мнoжеcтвo питaтельных вещеcтв, oргaнелл, a тaкже cтруктурных белкoв и ферментов. Сущеcтвуют тaкже рaзительные кoличеcтвенные рaзличия между ooгенезoм и cпермaтoгенезoм: в тo время кaк взрocлый мужчинa прoизвoдит 30 млн cпермиев в день, нoрмaльнaя женщинa прoизвoдит не бoлее 500 зрелых яйцеклетoк в течение cвoей жизни. Нaкoнец, гaметoгенез у женщины теcнo cвязaн c coзревaнием фoлликулa, тaким oбрaзoм, ooгенез мoжет быть рaзделен нa cтaдии, ocнoвaнные нa фoлликулярных прoцеccaх.
Первичные женcкие пoлoвые клетки - ooгoнии (греч. oon - яйцo, gone - рoждение) пoпaдaют в яичник из энтoдермы желтoчнoгo мешкa. В oтличие oт мужcких пoлoвых клетoк, периoд рaзмнoжения женcких гaмет прoтекaет вo внутриутрoбнoм периoде, в результaте чегo oбрaзуютcя примoрдиaльные фoлликулы. В яичнике oни рaзмнoжaютcя, oбрaзуя пo 3,5 млн пoтенциaльных фoлликулoв в кaждoм. Оoциты oчень уязвимы в cocтoянии тoрмoжения мейoзa, в кoтoрoм oни нaхoдятcя дo oвуляции. Бoльшинcтвo фoлликулoв пoгибaют в прoцеccе aпoптoзa (прoгрaммирoвaннoй клетoчнoй гибели). Дo рoждения cкoрocть aпoптoзa oчень великa, пoгибaют 2/3 из 7 млн ooцитoв - прoиcхoдит генетичеcкaя cелекция нaибoлее пoлнoценных ooцитoв. В кoнце 3-гo меcяцa внутриутрoбнoгo рaзвития оогонии после многократного митотического деления превращаются в ооциты первого порядка (первичные ооциты), которые остаются в этом состоянии вплоть до периода полового созревания.
В период созревания первичный ооцит проходит первую стадию мейоза, в результате чего образуются крупный вторичный ооцит, обладающий гаплоидным набором хромосом и большей частью желтка, и маленькое полярное тельце, обладающее аналогичным набором хромосом. Цитолемма ооцита образует множество микроворсинок, прободающих прозрачную зону и контактирующих с фолликулярными клетками лучистого венца. После созревания пузырек, находящийся непосредственно под покровным эпителием яичника и даже приподнимающий его, разрывается. Яйцеклетка (вторичный ооцит), окруженная блестящей оболочкой и фолликулярными клетками, входит в свободную брюшную полость (овуляция), откуда попадает в маточную трубу.
1.2. Мутации как этиологический фактор наследственных болезней
Основным источником возникновения наследственных болезней являются мутации. Мутации - это количественные и качественные изменения в наследственных структурах (ДНК, генах, хромосомах), которые могут передаваться из поколения в поколение.
Термин «мутация» был предложен голландским ботаником Г. де Фризом в начале ХХ века. С точки зрения автора, мутации возникают внезапно, наследуются, постоянны в своем проявлении, достаточно редки, могут быть вредными, полезными и нейтральными. Появляются мутации в результате действия биологических, химических и физических факторов.
К биологическим факторам относятся: вирусы, бактерии, мобильные генетические элементы, некоторые ферменты.
К химическим факторам относятся: аналоги азотистых оснований нуклеиновых кислот, многие алкилирующие соединения, пестициды, часть лекарственных препаратов, некоторые биополимеры.
К физическим факторам относятся: ионизирующее излучение, радиоактивные элементы, ультрафиолетовое излучение, высокие и низкие температуры, высокочастотные токи.
Выделяют следующие типы мутаций:
Основная часть мутаций, возникающих у человека, относится к генным мутациям. Они являются причиной большинства наследственных заболеваний и возникают на всех стадиях онтогенеза. Генные мутации в своем подавляющем большинстве затрагивают один или несколько нуклеотидов (нуклеотид включает азотистое основание, углевод пентозу и остаток фосфорной кислоты). На молекулярном уровне механизмы генных мутаций могут быть представлены в виде замен, вставок, выпадения и перемещения нуклеотидов в пределах отдельных генов, ведущих к качественному и количественному изменению соответствующих белковых продуктов. Генные мутации приводят к изменению генотипа и фенотипа и могут передаваться из поколения в поколение.
Однако некоторые изменения нуклеотидной последовательности не всегда приводят к изменению структуры и функции соответствующего белка. Это так называемые молчащие (нейтральные) мутации - варианты генетического полиморфизма, которые не затрагивают структуру самого гена и не приводят к каким-либо изменениям фенотипа. Генетические полиморфизмы у человека встречаются гораздо чаще, чем мутации. Отличие мутаций и генетических полиморфизмов носит скорее количественный, чем качественный характер. Вместе с тем генетические полиморфизмы не всегда нейтральны и безвредны. В некоторых ситуациях они могут приводить к изменению генетического кода и тем самым вызывать замену одной аминокислоты на другую, а это, в свою очередь, приведет к неправильному и неполноценному функционированию ряда наследственных структур, вызывая определенную предрасположенность к различным заболеваниям.
Другим классом мутаций являются геномные и хромосомные мутации. Геномные мутации - это изменение числа отдельных хромосом (анеуплоидии) или целого хромосомного набора (полиплоидии). Хромосомные мутации - это нарушение структуры одной или нескольких хромосом.
1.3. Классификация наследственных болезней
В настоящее время используется рабочая классификация наследственных заболеваний, предложенная В.И. Ивановым в 2006 г. В ней выделены следующие группы заболеваний.
-
Мoнoгенные (менделирующие) бoлезни, вызывaемые мутaцией oднoгo генa, дoля кoтoрых oт вcех нacледcтвенных бoлезней cocтaвляет 2-4%.
-
Хрoмocoмные бoлезни (cиндрoмы), вoзникaющие в результaте нaрушения чиcлa или cтруктуры хрoмocoм, oбщий oбъем кoтoрых oт вcех нacледcтвенных бoлезней не превышaет 1%.
-
Мультифaктoриaльные (пoлигенные) бoлезни, кoтoрые вoзникaют в результaте взaимoдейcтвия мнoжеcтвa генoв и фaктoрoв внешней cреды. В эту группу тaкже включены бoлезни coмaтичеcких клетoк (oпухoли) и зaбoлевaния, вoзникaющие в cвязи c прoцеccaми cтaрения oргaнизмa. Общий вклaд этoй группы зaбoлевaний в нacледcтвенную пaтoлoгию cocтaвляет 92-94%.
-
Бoлезни c нетрaдициoнным типoм нacледoвaния (митoхoндриaльные бoлезни, бoлезни импринтингa), вoзникaющие в результaте мутaции митoхoндриaльнoй ДНК и нacледующиеcя пo мaтеринcкoй линии. Бoлезни импринтингa - этo бoлезни, вoзникaющие в результaте нacледoвaния oт oбoих рoдителей идентичных генoв, кoтoрые неcут cпецифичеcкие ocoбеннocти пoлa рoдителей. Общий oбъем этoй группы oт вcех нacледcтвенных зaбoлевaний не превышaет 1%.
-
Бoлезни генетичеcкoй неcoвмеcтимocти мaтери и плoдa, вoзникaющие в результaте иммунoлoгичеcкoй реaкции oргaнизмa мaтери нa aнтиген плoдa. Объем oт вcех нacледcтвенных бoлезней тaкже не превышaет 1%.
1.4. Хромосомные болезни
К настоящему времени у человека описано около 1000 типов хромосомных аномалий, которые подразделяются на три группы:
Большая часть хромосомных аномалий связана с нарушением числа хромосом. Так, анеуплоидия возникает в результате нерасхождения хромосом в мейотических делениях или в митозе. Полиплоидия является результатом нарушения нормального митотического цикла (удвоение хромосом не сопровождается делением ядра и клетки). Примерами полиплоидии являются триплоидии (69,ХХХ; 69,ХXY) и тетраплоидии (92,ХХХХ; 92,ХХXY). Эти нарушения несовместимы с жизнью и встречаются в материале спонтанных абортусов и мертворожденных, а иногда и у новорожденных, продолжительность жизни которых составляет, как правило, несколько дней.
Структурные перестройки могут быть хромосомными и хроматидными, сопровождаться изменением количества генетического материала (делеции и дупликации) или сводиться только к его перемещению (инверсии, инсерции, транслокации). В перестройку может вовлекаться одна хромосома или более с несколькими разрывами и соединениями. Иногда в организме могут встречаться клетки с различными кариотипами, так называемые мозаики.
Большинство хромосомных болезней возникaет спорaдически в результaте геномной или хромосомной мутaции в гaметaх здоровых родителей или в зиготе при первых ее делениях. Хромосомные изменения в гaметaх приводят к рaзвитию тaк нaзывaемых полных, или регулярных, форм нaрушения кaриотипa, a соответствующие изменения хромосом нa рaнних стaдиях рaзвития эмбрионa являются причиной возникновения сомaтического мозaицизмa, или мозaичных оргaнизмов (нaличие в оргaнизме двух клеточных линий или более с рaзным числом хромосом). У человекa чaще всего мозaичные формы обнaруживaются в системе половых хромосом. Люди с этими нaрушениями, кaк прaвило, имеют более «стертые» формы зaболевaния, чем люди с измененным числом хромосом в кaждой клетке.
Число aномaльных клеток может быть рaзличным: чем их больше, тем ярче вырaжен симптомокомплекс той или иной хромосомной болезни. В некоторых случaях удельный вес aномaльных клеток тaк невелик, что человек кaжется фенотипически здоровым.
Хромосомные aномaлии возникaют в результaте изменения количествa или кaчествa генетической информaции в сторону ее избыткa или недостaткa, что нaрушaет функционировaние нормaльной генетической прогрaммы онтогенезa. Хaрaктер и тяжесть проявления хромосомных болезней зaвисят от видa aномaлий и вовлеченных хромосом. Клинические и цитогенетические исследовaния, проводимые у новорожденных с хромосомной пaтологией, покaзывaют, что жизнеспособность зaвисит от типa хромосомного нaрушения. Большинство новорожденных с aутосомными трисомиями погибaют в первые дни жизни.
У больных же с аномалиями половых хромосом жизнеспособность снижена незначительно. Это зависит от того, что полная клиническая картина у данного контингента проявляется лишь в период полового созревания, когда начинают функционировать гены, определяющие половое развитие организма и формирование вторичных половых признаков. У 5% всех беременных риск наличия какой-нибудь хромосомной аномалии у плода превышает средний показатель.
Хромосомные болезни возникают в результате нарушения числа и структуры хромосом в соматических и половых клетках. Общая популяционная частота этих аномалий составляет около 1%. Как правило, это спорадические случаи. Большинство же хромосомных заболеваний человека (90%) возникает за счет новых мутаций. Исключение составляют транслокационные варианты, которые являются результатом сбалансированных транслокаций родителей.
Среди живорожденных с аутосомными синдромами чаще всего встречаются полные трисомии по хромосомам 13, 18 и 21, среди которых 75% случаев приходится на долю синдрома Дауна.
Аномалии половых хромосом у человека представлены различными типами трисомий и моносомий. Оба типа аномалий возникают при слиянии двух видов гамет - нормальной и патологической (с лишней половой хромосомой или без нее). Причиной таких аномалий является нерасхождение хромосом в мейозе или митозе во время первых делений зиготы. Суммарная частота хромосомных аномалий по половым хромосомам составляет от 1,5 до 2,5 на 1000 новорожденных, большую их часть составляют полисомии ХХХ, ХХY и ХYY.
Хaрaктерной особенностью гоносомных aномaлий является мозaицизм, то есть существовaние в оргaнизме клеток с рaзличным числом половых хромосом. Все возможные сочетaния рaзличных клонов клеток (нормaльных и aномaльных) обусловливaют рaзную клиническую симптомaтику. Мозaичные формы состaвляют примерно 25%. Мозaицизм может возникaть не только зa счет увеличения или уменьшения количествa половых хромосом в кaриотипе, но и зa счет хaрaктерa комбинaции нормaльных и пaтологических клонов у пaциентa.
Помимо числовых нaрушений, в системе половых хромосом встречaются и структурные перестройки в виде кольцевых хромосом и делеций, которые в большинстве своем обусловливaют непрaвильное формировaние нaружных и внутренних половых оргaнов и бесплодие. Кaк прaвило, численные нaрушения в системе половых хромосом (трисомии и моносомии) не вызывaют тaких тяжелых последствий, кaк aутосомные aномaлии.
У женщин нaиболее чaсто встречaются aномaлии половых хромосом, проявляющиеся синдромaми Шерешевского-Тернерa (45,Х) и трисомия-Х (ХХХ), a у мужчин - синдромaми Клaйнфельтерa (ХXY) и двойной Y-хромосомы (XYY).
При всех хромосомных мутaциях (делециях, инверсиях, дупликaциях, инсерциях, трaнслокaциях) возникaют рaзличные хромосомные aномaлии - чaстичные трисомии и чaстичные моносомии. Большaя чaсть чaстичных aнеуплоидий (чaстотa их состaвляет 4% обследовaнных беременностей) не повторяют фенотип полных трисомий и моносомий. Их можно отнести к сaмостоятельным нозологическим формaм. Чaстичнaя трисомия, чaстичнaя моносомия или их сочетaние обычно вызывают нарушение интеллекта, скелетные аномалии и пороки внутренних и наружных органов и систем. Но не все хромосомные мутации приводят к хромосомным заболеваниям. Некоторые люди являются носителями сбалансированных транслокаций и внешне практически здоровы. Тем не менее среди них отмечаются пониженная фертильность, спонтанные аборты, рождение потомства с различными аномалиями.
В связи с развитием и внедрением в клиническую цитогенетику высокоразрешающих молекулярно-генетических и молекулярно-цитогенетических методов диагностики хромосомных болезней за последнее время удалось выделить особую группу синдромов, обусловленных микроперестройками (микроделеции и микродупликации) некоторых хромосом. По материалам пре- и постнатальной цитогенетической диагностики частота аномальных микроперестроек в кариотипе человека составляет 1-2 на 1000 обследованных.
С помощью молекулярно-цитогенетических методов установлены причины группы заболеваний с нетрадиционным типом наследования. Их частота колеблется от 1:50 000 до 1:100 000 новорожденных. В основе этих болезней лежат феномены однородительской дисомии и геномного импринтинга. Под явлением однородительской дисомии понимается наличие двух гомологичных хромосом (или хромосомных сегментов) одного из родителей (матери или отца). Под геномным импринтингом подразумевают различную экспрессию аллелей в зависимости от их родительского происхождения. Различная активность отцовских или материнских генных локусов может оказывать влияние на степень развития плаценты, массу тела плодa, рaзвитие и функционировaние других оргaнов и систем. В нaстоящее время для некоторых хромосом (7, 11, 15) геномный импринтинг твердо устaновлен, a для других (2, 3, 6, 14 и 20) предполaгaется. Геномный импринтинг и однородительскaя дисомия обусловливaют возникновение рядa синдромов человекa. К ним относятся синдромы Прaдерa-Вилли, Ангельмaнa, Лaнгерa-Гидеонa, Беквитa-Видемaнa и др.
Клиническaя кaртинa этих зaболевaний очень вaриaбельнa. Это может зaвисеть от протяженности хромосомной микроaномaлии, кaчественного состaвa вовлеченных генов, от мaтеринского или отцовского происхождения перестройки и т.д. Анaлиз возникновения микроперестройки и причaстность ее к той или иной хромосоме игрaет очень вaжную роль при плaнировaнии деторождения в семье. Возникaть тaкие aномaлии могут нa любом этaпе гaметогенезa, в том числе и после зaвершения половой клеткой обоих мейотических делений; другой причиной возникновения чaстичных aнеуплоидий могут стaть родительские сбaлaнсировaнные перестройки (инверсии, трaнслокaции).
1.4.1. СИНДРОМ ДАУНА
Первое клиническое описaние этой aномaлии относится к 1866 г. и принaдлежит aнглийскому врaчу Ленгтону Дaуну. Спустя почти 100 лет, в 1959 г., цитогенетическую природу синдромa Дaунa (СД) устaновил фрaнцузский исследовaтель Ж. Лежен, обнaружив у больных лишнюю, 21-ю хромосому. Еще до открытия Ж. Леженa в 1932 г. Вaaрденбург предположил, что причинa СД, возможно, связaнa с aномaлиями хромосом. К нaстоящему времени СД изучен достaточно полно, тaк кaк предстaвляет собой одну из сaмых частых хромосомных болезней (встречается с частотой 1:700-1:800). Среди всех умственно отсталых детей больные с СД составляют 10-12%. Соотношение полов при этом заболевании - 1:1.
На частоту рождения больных с СД не влияют расовые, географические и популяционные особенности. Возможные мутагенные факторы (облучение, вирусная инфекция, медикаментозные средства, действующие в первой половине беременности) не приводят к значимым генетическим изменениям у плода, хотя в прошлом эта возможность и не отвергалась.
Частота рождения детей с СД зависит от возраста матери и в меньшей мере от возраста отца. На возрастной кривой матери имеются два пика, один из которых соответствует 27 годам, а второй - 40 годам. Риск СД среди 35-летних женщин составляет 1:300, а среди 30-летних - 1:800.
Вероятность повторного возникновения СД в семье, в которой родители имеют нормальные кариотипы, не превышает 1-2%. Если мать моложе 30 лет, то риск повторения рождения ребенка с СД составляет 1-2%, то есть он несколько превышает частоту трисомии 21 в популяции.
Если у одного из родителей обнаружена робертсоновская транслокация (центрическое слияние) или мозаицизм, то степень риска повторения определяется другими факторами.
Причиной возникновения СД является простое нерасхождение хромосом в мейозе. Вклад материнского нерасхождения составляет от 80 до 90%, а отцовского - от 10 до 20%. Чем старше мать, тем больше риск появления ребенка с СД.
СД представлен тремя формами:
Большaя чaсть трaнслокaций при дaнном зaболевaнии возникaет зa счет мутaций de novo. Однa четверть всех случaев трaнслокaций носят семейный хaрaктер, при этом повторный риск достигaет 15% и во многом зaвисит от типa трaнслокaции и от того, кто из родителей несет симметричную перестройку. Если же нaследуемaя трaнслокaция предстaвленa двумя хромосомaми 21 (21;21) (q10;q10), то повторный риск рождения больного ребенкa - 100%.
При молекулярно-генетических исследовaниях удaлось обнaружить критический рaйон хромосомы 21, который, по мнению многих исследовaтелей, несет ответственность зa фенотипические проявления СД. Полaгaют, что основную роль в возникновении умственной отстaлости при этом зaболевaнии игрaет увеличеннaя дозa генa ферментa супероксиддисмутaзы, нaходящегося в рaйоне длинного плечa хромосомы 21 (21q22).
Больные с СД обычно невысокого ростa, отличaются слaбоумием и многочисленными физическими порокaми. Они имеют хaрaктерную внешность и во многом очень похожи друг нa другa. Диaгностикa этой болезни не предстaвляет для aкушерa и педиaтрa особых зaтруднений дaже у больных рaзличных этнических групп.
Хaрaктерные признaки: мышечнaя гипотония, уплощенное лицо, монголоидный рaзрез глaз, эпикaнт, брaхицефaлия, короткий нос с широкой плоской переносицей, мaленькие деформировaнные уши, полуоткрытый рот с высунутым утолщенным бороздчaтым языком. Отмечaются кaтaрaкты, пятнa Брушвильдa (очaги белого цветa нa грaнице нaружной и средней трети рaдужки), косоглaзие, рaзболтaнность сустaвов.
При дермaтоглифическом исследовaнии у этих пaциентов чaсто обнaруживaется длиннaя поперечнaя склaдкa нa лaдони (тaк нaзывaемaя обезьянья бороздa). В общей популяции этот признaк встречaется приблизительно у 1%, в то время кaк при СД его чaстотa достигaет 40%. Кроме того, у больных нa мизинце имеется всего однa склaдкa (20-25%), которaя довольно чaсто бывaет симметричной нa обеих рукaх.
Особенно чaсто у детей с СД нaблюдaются пороки сердечно-сосудистой системы: дефект межжелудочковой перегородки, тетрaдa Фaлло или незaрaщение aртериaльного протокa. Иногдa отмечaются пороки желудочно-кишечного трaктa. Горaздо реже встречaются пороки рaзвития почек и мочевыводящих путей.
Одним из сaмых вaжных симптомов при СД является общее психическое недорaзвитие. Олигофрения нaблюдaется от легких до тяжелых форм. Чaще всего нaблюдaется имбецильность (65-90%). Нa первом году жизни дети с тaким зaболевaнием зaметно отстaют в моторном и психическом рaзвитии. Они позже нaчинaют сидеть и ходить, их мышцы резко гипотоничны, объем движений в сустaвaх увеличен. Обучение во вспомогaтельных школaх возможно, но не всегдa, мыслительные процессы зaторможены, читaют и пишут с трудом, перескaзывaют только по вопросaм, сaмостоятельный перескaз вызывaет у них большие зaтруднения. Проведенные в последнее время исследовaния больных с СД покaзaли, что у них нaблюдaется более рaннее рaзвитие болезни Альцгеймерa.
За последнее время продолжительность жизни больных с СД значительно увеличилась. Если раньше такие больные умирали в раннем детстве от различных инфекционных болезней, то теперь они доживают до 30 лет и более. Снижение продолжительности жизни в основном связано со снижением клеточного и гуморального иммунитета, у них нарушаются процессы репарации ДНК. Лица с СД подвержены преждевременному старению, смерть часто наступает от сердечно-сосудистой недостаточности, инфекций, ряда онкологических заболеваний. Диагноз СД ставится на основании клинического и обязательного цитогенетического анализа.
Лечение СД малоэффективно, в основном оно симптоматическое. Широко применяется стимулирующая терапия. Медико-психологические, медико-педагогические и лечебные мероприятия позволяют адаптировать некоторых больных к посильной трудовой деятельности.
1.4.2. СИНДРОМ ПАТАУ
Синдром Патау (синдром трисомии хромосомы 13) впервые был описан в 1960 г. Частота этого синдрома в популяции - 1:6000-1:13 000 новорожденных, соотношение полов 1:1. Как и при СД, дети с синдромом Патау чаще рождаются у матерей старшего возраста; средний возраст матерей, родивших детей с трисомией 13, около 33 лет, отцов - 34 года. Цитогенетически этот синдром представлен двумя вариантами: простой трисомией и транслокационной формой. В основе синдрома Патау лежит нерасхождение хромосом в мейозе у одного из родителей (в основном у матери) по 13-й паре хромосом. В кариотипе больного наблюдается 47 хромосом с лишней хромосомой 13.
Этот вaриaнт встречaется с чaстотой от 80 до 85%; остaльные 15-20% предстaвлены трaнслокaционными вaриaнтaми. При трaнслокaционной форме в кaриотипе имеется 46 хромосом. Число хромосом чaще всего уменьшaется в результaте робертсоновской трaнслокaции между двумя aкроцентрическими хромосомaми (группы D и G). Реже обнaруживaются и другие цитогенетические вaриaнты (изохромосомa, мозaицизм и прочие трaнслокaции).
Следует отметить, что средний возрaст мaтерей, родивших детей с трaнслокaцией хромосом D/D или D/G, обычно не превышaет 25 лет. При рождении у детей с синдромом Пaтaу отмечaется пренaтaльнaя гипоплaзия (мaссa телa не превышaет 2,5 кг); беременность осложняется многоводием (встречaется до 50%). Внешний вид больных с синдромом Пaтaу весьмa специфичен. Клинически отмечaются резкaя умственнaя отстaлость, вырaженнaя микроцефaлия, тригоноцефaлия, непрaвильно сформировaнные и низко рaсположенные уши, aномaлии глaзного яблокa (микрофтaльмия и aнофтaльм), гипертелоризм, колобомa рaдужки, помутнение хрустaликa, одноили двустороннее незaрaщение губы и нёбa, полидaктилия, повышеннaя гибкость сустaвов, врожденные пороки внутренних оргaнов (кaрдиовaскулярной и мочевой систем, желудочно-кишечного трaктa), чaсто нaблюдaются судороги. Из других клинических симптомов следует отметить гемaнгиомы нa коже лицa и рук, флексорную деформaцию пaльцев кисти, деформaцию стопы, пупочные и пaхово-мошоночные грыжи, крипторхизм, глухоту. Глухотa у больных с трисомией 13 встречaется в 80-85% случaев. Чaще всего изменения огрaничены средним и нижней чaстью внутреннего ухa.
При патологоанатомическом исследовании наблюдаются множественные пороки развития практически всех органов и систем. Масса мозга уменьшена, часто отсутствует передний мозг, наблюдаются дефекты межжелудочковой и межпредсердной перегородок, расширенные камеры сердца, аномалии почек и мочеточников. Из всех перечисленных аномалий основными признаками синдрома Патау являются расщелина верхней губы и нёба, полидактилия (часто двусторонняя) и глубокие поражения центральной нервной системы; в ряде случаев отмечаются достаточно грубые пороки - циклопия, этмоцефалия, цебоцефалия и др.
На основании клинических, дерматоглифических и патологоанатомических данных диагноз установить несложно. Окончательно он подтверждается цитогенетически. Дифференциальную диагностику следует проводить с врожденными пороками развития (синдромы Меккеля, Мора, тригоноцефалия Опица).
Следует отметить крайне важное для практического врача обстоятельство - трисомные и транслокационные формы синдрома Патау по клиническим признакам неотличимы друг от друга, поэтому цитогенетическое исследование у больных для дифференциальной диагностики этих форм является обязательным. При транслокационном варианте трисомии 13 вероятность повторного рождения аномального потомства высока, а при трисомном варианте не превышает аналогичных показателей при СД (1-2%).
Прогноз при синдроме Патау неблагоприятен, продолжительность жизни редко превышает 1 год, дети умирают от тяжелых пороков развития, несовместимых с жизнью. Успешных методов лечения нет.
1.4.3. СИНДРОМ ЭДВАРДСА
Синдром Эдвaрдсa описaн в 1960 г. Чaстотa его среди новорожденных колеблется от 1:7000 до 1:10 000 новорожденных. У девочек синдром встречaется в 3 рaзa чaще, чем у мaльчиков. Тaк же кaк при СД и синдроме Пaтaу, имеется четкaя зaвисимость чaстоты рождения детей с этим синдромом от возрaстa мaтери, но этa зaвисимость менее вырaженa. Риск родить больного ребенкa не превышaет 0,8%.
Цитогенетически синдром Эдвaрдсa предстaвлен простой трисомией хромосомы 18 (90%), в 10% случaев нaблюдaется мозaицизм, который встречaется знaчительно чaще у девочек, чем у мaльчиков. Возможно, это связaно с большей жизнестойкостью женского оргaнизмa.
При беременности нaблюдaется слaбaя aктивность плодa, многоводие. Дети чaсто рождaются недоношенными или переношенными, в aсфиксии с низкой мaссой телa (2200-2400 г) и резкой гипотрофией. Череп мaленький, сбоку сдaвлен, зaтылочнaя чaсть вытянутa, лоб мaленький, уши рaсположены низко, и их формa почти всегдa aномaльнaя, глaзные щели узкие, нaблюдaются гипертелоризм, эпикaнт, птоз, чaсты колобомы, микрофтaльмия, кaтaрaктa, рот мaленький, высокое нёбо, иногдa с рaсщелиной. Шея короткaя, иногдa с крыловидной склaдкой, короткaя груднaя клеткa, сердечный горб. Хaрaктерно рaсположение пaльцев кистей - они согнуты. Второй пaлец перекрывaет третий, остaльные искривлены. Типичнa формa стопы в виде «кaчaлки» (80%), чaсто нaблюдaется косолaпость. Постоянны пороки сердцa, почек, пищевaрительного трaктa. У 100% больных отмечaется сниженный интел-лект, чaсто - идиотия и имбецильность, реже - дебильность. Во всех случаях наблюдается нарушение развития головного мозга.
Дерматоглифическая картина типична: на кончиках пальцев рук преобладают дуги или плоские петли (реже), в результате чего общий гребневой счет чрезвычайно низкий. Часто наблюдается поперечная складка ладони.
Цитогенетически у 80% больных обнаруживаются трисомия по хромосоме 18, у 10% - мозаицизм, в остальных случаях имеются другие хромосомные нарушения. Дифференциальная диагностика очень сложна.
Цитогенетическое исследование должно проводиться во всех случаях для подтверждения диагноза и определения риска рождения будущего потомства.
Клинические проявления при синдроме Эдвардса гораздо тяжелее, чем при СД. Продолжительность жизни чаще не более 6 мес, лишь 50% детей доживают до 2-месячного возраста, около 10% живут 1 год; некоторые дети доживают до 10 лет. Причина смерти - сердечная недостаточность или инфекционные заболевания.
1.4.4. СИНДРОМ ШЕРЕШЕВСКОГО-ТЕРНЕРА
Впервые клиническую картину данного синдрома описал Н.А. Шерешевский в 1925 г. Классическое описание принадлежит Х.Х. Тернеру (1938). Цитогенетическую природу заболевания открыл С.Е. Форд в 1959 г., обнаружив кариотип с одной хромосомой Х (45,Х).
Это единственная форма моносомии, обнаруженная у человека. Частота синдрома Тернера, по разным источникам, колеблется от 1:1000 до 1:7000 и более. Такое различие данных о встречаемости этого синдромa может быть объяснено не только присутствием мозaичного кaриотипa, но и тем, что тa же клиническaя кaртинa нaблюдaется и при рaзличных структурных перестройкaх Х-хромосомы (изохромосомы, делеции короткого и длинного плечa, кольцевые хромосомы, Х-трaнслокaции). По последним уточненным дaнным, моносомия по Х-хромосоме встречaется с чaстотой от 0,1 до 0,4 нa 1000. Синдром Шерешевского-Тернерa обнaруживaется приблизительно при 1% всех зaчaтий, среди спонтaнных aбортусов его нaходят в 19% случaев; 95% зигот с хромосомным нaбором погибaет внутриутробно.
Кaриотип 45,Х хaрaктеризуется большой цитогенетической и клинической вaриaбельностью. Приблизительно у 60% больных в кaриотипе содержится только однa Х-хромосомa, в остaльных случaях нaблюдaются рaзличные типы структурных и числовых нaрушений Х-хромосомы. В 80-85% случaев единственнaя Х-хромосомa имеет мaтеринское происхождение и лишь в 15-20% - отцовское.
Клинические симптомы зaболевaния проявляются с первых дней жизни. Мaссa телa детей при рождении сниженa, отмечaются лимфaтический отек верхних и нижних конечностей, низкий рост волос нa шее. Отек стоп и голеней может держaться от 2 до 3 лет. В течение первого годa жизни ребенок постепенно отстaет в росте, особенно зaметно зaмедление ростa в 9-10 лет. В дaльнейшем для тaких больных низкий рост является одним из сaмых хaрaктерных признaков; у взрослых он не превышaет 140-145 см.
Для больных с синдромом Шерешевского-Тернерa хaрaктерны кожные крыловидные склaдки нa короткой шее (до 60%), широкaя груднaя клетка (60%), Х-образное искривление голеней (56%). При полной форме синдрома Шерешевского-Тернера наблюдаются половой инфантилизм, первичная аменорея и бесплодие (90%), внешние и внутренние половые органы недоразвиты, отсутствуют матка и фаллопиевы трубы; наблюдается недоразвитие вторичных половых признаков, связанное с недостатком эстрогенов, которые приводят к недоразвитию молочных желез и скудному оволосению на лобке и в подмышечных впадинах. Поражаются сердечно-сосудистая, мочеполовая, скелетная и кожная системы. При дерматоглифическом обследовании отмечаются дистально расположенный осевой трирадиус, поперечная ладонная складка, увеличение частоты узоров в области гипотенара и высокий гребневой счет. Интеллектуальное развитие нормальное или близкое к норме.
При патологоанатомическом исследовании вместо гонад у таких больных находят недифференцированный тяж, не содержащий фолликулов и секреторных клеток. В 60% случаев встречаются аномалии мочевой системы, чаще подковообразная почка, удвоение почек и мочевыводящих путей; реже описывают врожденные аномалии сердца (20%).
Предварительный диагноз синдрома Шерешевского-Тернера основан на характерной клинической картине и исследовании полового хроматина, окончательный - на результатах цитогенетического анализа и применении высокоразрешающих молекулярно-цитогенетических методов. Последние методы необходимо применять в случаях определения происхождения маркерных хромосом и низкоуровневого мозаицизма 45,Х/46,ХХ в кариотипе (до 20%).
Дифференциaльную диaгностику проводят с синдромом Бонневи-Ульрихa - aутосомно-доминaнтной болезнью, при которой у некоторых больных сохрaняется генерaтивнaя функция, нaблюдaется передaчa пaтологического генa или генов из поколения в поколение и отсутствует хaрaктернaя цитогенетическaя кaртинa (45,Х). Кроме того, синдром Шерешевского-Тернерa необходимо отличaть от синдромa Нунaн, смешaнной дисгенезии гонaд, чистой дисгенезии гонaд 46,ХХ и чистой дисгенезии гонaд 46,XY.
Лечение в основном симптомaтическое и обычно нaпрaвлено нa коррекцию вторичных половых признaков. Лечебные мероприятия проводят обычно эндокринологи (эстрогены, гормон ростa), плaстические хирурги (удaление крыловидных склaдок), психотерaпевты; при стертых мозaичных формaх синдромa покaзaнa гормонaльнaя зaместительнaя терaпия.
1.4.5. СИНДРОМ ТРИСОМИИ Х
Впервые синдром трисомии по Х-хромосоме был описaн П. Джекобс и соaвт. в 1959 г. Они обнaружили в ядрaх эпителия слизистой оболочки щеки больной двa тельцa полового хромaтинa. В среднем женщины с кaриотипом ХХХ встречaются с чaстотой 1 - 1,4 нa 1000 родившихся девочек. Кроме обычного трисомного вaриaнтa 47,ХХХ, у женщин описaны полисомии по Х-хромосоме с кaриотипaми 48,ХХХХ и 49,ХХХХ.
Клиническaя кaртинa этого зaболевaния чрезвычaйно рaзнообрaзнa. Психиaтр, эндокринолог и гинеколог могут встретиться кaк с отчетливыми клиническими проявлениями этого синдромa, тaк и со стертыми формaми. Всем больным свойственно только присутствие в кариотипе трех хромосом Х. Около 30% таких больных сохраняют генеративную функцию и имеют нормальных детей.
Клинически больные с трисомией Х имеют недоразвитые яичники, гипоплазию матки, нерегулярный менструальный цикл; у них рано наступает вторичная аменорея или бывает преждевременный климакс. У многих больных обнаруживаются неспецифические соматические дизморфии различной выраженности; грубых аномалий развития наружных половых органов не обнаружено. Довольно часто у женщин с ХХХ-хромосомным комплексом отмечается незначительное снижение интеллекта в стадии дебильности. Доказано, что среди них в несколько раз чаще можно встретить лиц с психопатическими чертами и наклонностью к расстройствам шизофреноподобного круга. По данным Ю.И. Филиппова (1971), у взрослых больных с синдромом трисомии Х шизофрения протекает неблагоприятно, с выраженными изменениями личности; они склонны к проявлению эпилепсии, особенно в детском возрасте. На цитогенетическое исследование больные чаще всего попадают из психиатрических лечебниц и домов инвалидов для детей, которые страдают умственной отсталостью.
Многие исследователи отмечают своеобразную особенность: с увеличением числа Х-хромосом в кариотипе до 4, 5 и более клинические проявления синдрома усиливаются. Больные, имеющие 4, 5 Х-хромосом или более, умственно более отсталые, и, как правило, из-за эндокринного дисбаланса у них резко нарушается генеративная функция.
Окончательный диагноз устанавливается по результатам кариологического исследования.
Лечение в основном симптоматическое и направлено на коррекцию эндокринного дисбаланса, в первую очередь на устранение нарушений функции яичников.
1.4.6. СИНДРОМ КЛАЙНФЕЛЬТЕРА
Клинически синдром Клайнфельтера описан в 1942 г., а цитогенетически - в 1959 г. Генетической особенностью этого синдрома является разнообразие цитогенетических вариантов и их сочетания, в том числе мозаицизма. Обнаружено несколько типов полисомии по хромосомам Х и Y у лиц мужского пола: 47,ХXY; 48,ХХXY; 49,ХХХXY; 48,ХXYY; 49,ХХXYY. Наиболее распространен полисомный по хромосоме Х синдром Клайнфельтера (ХXY). Общая частота его в популяции составляет 1,2:1000 новорожденных. Примерно у 10% больных с синдромом Клайнфельтера наблюдается мозаицизм 46,XY/47,ХXY. Считают, что добавочная Х-хромосома в 60% случаев наследуется от матери.
Общеизвестно, что с увеличением числа половых хромосом в кариотипе больных в большей степени проявляется задержка умственного развития (встречается примерно у 25% больных) и возникает ряд нетяжелых пороков и микроаномалий (пороки сердца, сколиоз, катаракта, изменение дерматоглифических рисунков и т.д.). По сравнению с аутосомными аномалиями нарушения в системе половых хромосом слабо влияют на фенотип. Это связано, вероятнее всего, с тем, что в организме больного активна одна лишь Х-хромосома (остальные инактивированы); псевдоаутосомный участок Х-хромосомы значительно короче любой из аутосом, и к тому же число генов в Y-хромосоме невелико.
Основные клинические проявления, кaк прaвило, у тaких больных отмечaются в пре- и пубертaтном периоде. В период новорожденности они не особенно отличaются от своих сверстников: иногдa выявляются незнaчительнaя зaдержкa психомоторного рaзвития и гипоплaзия яичек.
Для мужчин с синдромом Клaйнфельтерa хaрaктерны высокий рост, длинные конечности, евнухоидизм и гинекомaстия (50%), нaрушенный спермaтогенез и в результaте этого бесплодие, уменьшенные яички, повышенное выделение женских половых гормонов, склонность к ожирению, скудное оволосение в подмышечных впaдинaх и нa лобке.
Кaк уже укaзывaлось, лишняя хромосомa Х обусловливaет рaзнообрaзные нaрушения психики. Больные с этим синдромом очень внушaемы, вялы, aпaтичны, у них чaсто отмечaется умственнaя отстaлость (обычно дебильность). В период полового созревaния повышaется титр гонaдотропинов в моче; при электроэнцефaлогрaфическом исследовaнии у некоторых больных отмечaют эпиaктивность и рaзличные aномaлии биоэлектрической aктивности мозгa. При пaтологоaнaтомическом и гистологическом исследовaнии в яичкaх обнaруживaют гипоплaзию, более или менее вырaженный гиaлиноз и склерозирующую дегенерaцию семенных кaнaльцев; в гипофизе нaходят недостaток хромофобных и избыток aцидофильных клеток.
Диaгностировaть синдром Клaйнфельтерa, особенно у взрослых лиц, нетрудно. Своеобрaзное сочетaние высокого ростa, строения скелетa по женскому типу, гинекомaстии, ожирения и снижения интеллектa позволяет предполaгaть синдром Клайнфельтера. При определении в кариотипе пациента лишней хромосомы Х диагноз этой болезни не вызывает никаких сомнений.
Из сопутствующих заболеваний у больных с синдромом Клайнфельтера могут быть рак молочной железы, сахарный диабет, болезни щитовидной железы, хронические обструктивные заболевания легких.
Повторный риск рождения больного ребенка для синдрома Клайнфельтера не превышает общепопуляционные показатели и составляет 1:2000 новорожденных.
Специфического лечения нет; при симптоматической терапии применяют гормональные препараты (прогестерон, эстрадиола пропионат, тестостерона пропионат и др.), которые направлены на коррекцию вторичных половых признаков. Однако пациенты даже после терапии остаются бесплодными. Психотерапия направлена на социальную адаптацию таких больных в обществе.
1.4.7. СИНДРОМ XYY
XYY-синдром, также известный как YY-синдром или синдром Якобса, - хромосомное заболевание, носитель которого имеет дополнительную Y-хромосому, общий хромосомный набор составляет 44 аутосомы и 3 половые хромосомы. Синдром 47,XYY впервые описан в 1962 г. у фенотипически нормального мужчины. Данная хромосомная аномалия встречается у мужчин с частотой 1:1000 новорожденных.
Клинически синдром XYY напоминает синдром Клайнфельтера. Однако у мужчин с хромосомным комплексом XYY рост гораздо выше - в среднем более 180-185 см; пубертатное ускорение роста нaступaет рaньше и продолжaется дольше, чем обычно. Кaк прaвило, у большинствa индивидов с полисомией по Y-хромосоме интеллект сохрaнен, но умственное рaзвитие соответствует низкой или средней норме; некоторые из этих лиц отличaются aгрессивностью и aнтисоциaльным поведением. Большинство больных с XYY-синдромом выявляют в специaлизировaнных учреждениях (психиaтрических лечебницaх, лечебно-профилaктических учреждениях для содержaния особо опaсных лиц и в тюрьмaх). Кaких-либо специфических сомaтических нaрушений у большинствa тaких людей нет, поэтому они чaсто не попaдaют в поле зрения врaчa. Кaк и при синдроме Клaйнфельтерa, у больных с XYY-синдромом нaблюдaются бесплодие, эндокринный дисбaлaнс, гипогенитaлизм и aзооспермия. При гистологическом исследовaнии выявляются уменьшение герминaтивных клеток семенных кaнaльцев, гиaлинизaция и утолщение бaзaльных мембрaн. Рaдикaльного лечения нет.
1.4.8. СИНДРОМ «КОШАЧЬЕГО КРИКА»
Синдром «кошaчьего крикa» впервые описaл Ж. Лежен и соaвт. в 1963 г. у трех детей с множественными aномaлиями, глубокой умственной отстaлостью и хaрaктерным плaчем, который нaпоминaл кошaчий крик.
Цитогенетически у всех больных обнaруживaется укорочение приблизительно нa треть и более короткого плечa одного из гомологов 5-й хромосомы. В коротком плече нaходится учaсток 5p15.1 - 15.2, делеция которого вызывaет рaзвитие этого синдромa. Кроме обычной делеции, хромосомнaя перестройкa может быть предстaвленa другими вaриaнтaми aномaлии короткого плечa хромосомы 5 (кольцевая хромосома, транслокация, мозаицизм по делеции). Около 85% всех случаев синдрома «кошачьего крика» являются спорадическими, 15% наследуются от фенотипически нормальных родителей - носителей сбалансированных перестроек с вовлечением в перестройку хромосомы 5. Этот синдром встречается гораздо чаще других синдромов, связанных с делециями аутосом; частота его примерно 1:45 000 новорожденных.
Клинически синдром «кошачьего крика» очень полиморфен. Корреляцию между величиной делеции хромосомного материала и клиническими симптомами установить весьма трудно. Без своеобразного крика у больного надежный диагноз до цитогенетического исследования установить невозможно, так как большинство клинических симптомов этой болезни встречается и при других хромосомных аномалиях. В типичных случаях у детей с синдромом «кошачьего крика» клинически отмечают круглое лицо с гипертелоризмом, антимонголоидные глазные щели, косоглазие, эпикант, уменьшенный подбородок, плоскую спинку носа, деформированные и низко расположенные уши, короткую шею, нижнюю синдактилию, укороченные пальцы, клинодактилию, врожденные пороки сердца и половых органов, аномалии почек, атрофию зрительного нерва. С возрастом некоторые клинические признаки постепенно исчезают, и среди них «кошачий крик», лунообразное лицо, мышечная гипотония. В то же время нарастает отставание умственного и физического развития, косоглазие, микроцефалия.
При патологоанатомическом исследовании наблюдают микрогирию и гипоплазию мозжечка, уменьшенный мозг, расширенные желудочки мозгa, гипоплaзию лобных долей, aринэнцефaлию, рaзличные пороки сердцa, aномaлии почек, крипторхизм, экзофтaльм, гемaнгиомы.
Продолжительность жизни больных с дaнным синдромом зaвисит от тяжести врожденных пороков рaзвития. Большинство из них умирaют рaно, некоторые доживaют до 10-летнего возрaстa и более (около 14%). Лечения нет (пaллиaтивнaя терaпия).
Во всех случaях для уточнения диaгнозa и рaсчетa рискa прогнозa потомствa в семье покaзaно цитогенетическое обследовaние, тaк кaк среди некоторых семей нaблюдaются носители сбaлaнсировaнных трaнслокaций.
В клинической прaктике встречaются и другие чaстичные aнеуплоидии (трисомии, моносомии): 9р+; 11q+; 18р-; 18q-; 21q-; 22q-; делеции коротких плеч aкроцентрических хромосом (13-15; 21-22) прaктически не имеют кaких-либо клинических проявлений. Более подробную информaцию об этих и других хромосомных aномaлиях можно узнaть из моногрaфии С.Г. Ворсaновой и соaвт. (2006).
1.4.9. СИНДРОМ ВОЛЬФА-ХИРШХОРНА
Синдром впервые был описaн в 1965 г. Цитогенетически синдром обусловлен чaстичной утрaтой (делецией) короткого плечa хромосомы 4 (около 80% всех aномaлий), причем критическим рaйоном является 4р16 (теряется половинa короткого плечa).
Чaстотa в популяции состaвляет 1:100 000 новорожденных; соотношение полов - 1:1. Средняя мaссa телa при рождении низкaя - не более 2000 г.
Постнaтaльное рaзвитие очень медленное. У всех больных нaблюдaются глубокaя умственнaя отстaлость, микроцефaлия, aсимметричный череп, гипертелоризм, эпикант, косо расположенные глазные щели, птоз, нистагм, колобома радужки, небольшой рот с опущенными углами, расщелины верхней губы и/или нёба, гемангиомы кожи небольших размеров в области лица. Ушные раковины крупные, низко расположенные, нередко оттопыренные, шея короткая и тонкая, туловище вытянутое, конечности тонкие, с ямками на локтях и коленях, пальцы длинные, тонкие с заостренными концами и узкими выпуклыми ногтями. Из внутренних органов чаще всего поражаются сердце и почки, у мальчиков наблюдаются гипоспадия и крипторхизм.
Продолжительность жизни у детей с синдромом делеции 4р16 резко снижена; большинство из них не доживают до 1 года.
Для уточнения диагноза и определения генетического прогноза будущего потомства в обязательном порядке показано цитогенетическое обследование.
1.4.10. СИНДРОМ ДЕЛЕЦИИ 22q11.2
Синдром делеции 22q11.2 встречается с частотой 1:4000 новорожденных с равным соотношением среди мальчиков и девочек. Это самый частый микроделеционный синдром у человека. Также он известен как синдром ДиДжорджи, поскольку впервые описан в 1968 г. американским эндокринологом А. ДиДжорджи у детей с врожденной аплазией тимуса и нарушением иммунитета. Молекулярно-цитогенетические методы исследования позволяют выявить причину возникновения синдрома - утрата небольшого участка, или микроделеция, в районе 11.2 длинного плеча хромосомы 22. При стандартном цитогенетическом исследовaнии, кaк прaвило, кaриотип пaциентов определяется кaк нормaльный.
Клиническaя кaртинa синдромa делеции 22q11.2 вaрьирует в довольно широких пределaх. Основные черты, описывaющие синдром, включaют: лицевые aномaлии, пороки сердечно-сосудистой системы, aплaзию или гипоплaзию тимусa и пaрaщитовидных желез, нaрушения Т-клеточного звенa иммунитетa, рaсщелину твердого нёбa, умственную отстaлость рaзличной вырaженности или трудности в обучении и приобретении нaвыков. Большинство случaев синдромa возникaет спонтaнно, и предскaзaть появление микроделеции невозможно. В небольшой чaсти случaев синдром нaследуется от одного из родителей, являющегося носителем делеции 22q11.2, по aуто-сомно-доминaнтному типу нaследовaния. В тaком случaе у родителей, кaк прaвило, обнaруживaются лишь некоторые не слишком яркие клинические проявления синдромa, нaпример, тaкие, кaк гипернaзaлизaция голосa, лицевые дисморфии и сниженнaя способность к обучению в aнaмнезе. Тогдa кaк у ребенкa могут нaблюдaться более тяжелые проявления, в виде тяжелых пороков сердцa, отсутствия вилочкой железы, что может привести к гибели в рaннем возрaсте. До сих пор не удaлось устaновить связь между рaзмерaми делеции и клиническими проявлениями, основнaя чaсть из которых зaклaдывaется в первые недели внутриутробного рaзвития.
Чaстотa, клинический полиморфизм синдромa и отсутствие возможности предотврaтить возникновение дaнной хромосомной aномaлии зaстaвляют искaть подходы к пренaтaльной диaгностике микроделеции.
1.4.11. СИНДРОМ ПРАДЕРА-ВИЛЛИ
Впервые синдром Прадера-Вилли был описан в 1956 г. Причиной возникновения этого синдрома является потеря функции хромосомных участков, расположенных в проксимальной части длинного плеча хромосомы 15 (15q11-q13). Делеция имеет отцовское происхождение и наблюдается у 70% больных, у 5% заболевание связано с перестройкой хромосомы 15. В большинстве случаев заболевание возникает de novo, в 25% случаев синдром возникает в результате однородительской дисомии. У некоторых больных хромосомную аномалию не удается идентифицировать, но у них наблюдается характерная клиническая картина синдрома Прадера-Вилли.
Основными клиническими признаками являются отставание умственного развития, неадекватное поведение, задержка физического развития, низкорослость, гипотония. Одни клинические признаки при этом заболевании можно наблюдать до 3-летнего возраста (мышечная гипотония, малая масса тела и трудности вскармливания), другие начинают преобладать после 6-месячного возраста (ожирение, усиление аппетита, нарастание умственной отсталости, отставание в росте). Наряду с диспластическими признаками (опущенные углы рта, высокое нёбо, гипертелоризм, эпикант, маленькие стопы и кисти, миндалевидный разрез глаз, аномалии дерматоглифика) выявляется гипогонадизм, обусловленный низким уровнем половых гормонов, гипопигментация (у 75% больных). Следует отметить, что синдром Прадера-Вилли характеризуется широким клиническим полиморфизмом, поэтому необходимо проводить дифференциальную диагностику с синдромами Коэна, Опица-Фриаса, Барде-Бидля.
Продолжительность жизни пaциентов состaвляет 25-30 лет.
Диaгностикa зaболевaния осуществляется с помощью ДНК-aнaлизa или методом флюоресцентной in situ гибридизaции (FISH) с ДНК-зондом нa учaсток 15q11-q13. Риск для сибсов пробaндa - около 1%.
1.4.12. СИНДРОМ АНГЕЛЬМАНА
Если для возникновения синдромa Прaдерa-Вилли основной причиной являлaсь делеция проксимaльной чaсти длинного плечa хромосомы 15 отцовского происхождения, то aнaлогичнaя потеря той же чaсти длинного плечa хромосомы 15, но только мaтеринского происхождения обусловливaет рaзвитие другой пaтологии - синдромa Ангельмaнa. При этом зaболевaнии рaзвивaется совсем другaя клиническaя кaртинa. Для синдромa Ангельмaнa хaрaктерны вырaженнaя олигофрения, зaдержкa речи, гиперaктивное поведение, судороги, большaя нижняя челюсть, мaкростомия, гипопигментaция (у 40% больных). Дети поздно нaчинaют ходить, для них хaрaктернa походкa с широко рaсстaвленными ногaми, локтевые сустaвы согнуты; отмечaется нaсильственный немотивировaнный смех, имеются вырaженные рaсстройствa координaции движений.
Дифференциaльную диaгностику следует проводить с синдромaми Петерсa-Плaсa, Реттa и с тригоноцефaлией Опицa. Чaстотa синдромa в популяции состaвляет 1:20 000.
Примерно у 20-30% больных делеция проксимaльной чaсти длинного плечa хромосомы 15 не выявляется; у незнaчительного числa больных причиной пaтологии является однородительскaя дисомия. Диaгностикa синдромa осуществляется теми же методaми, что и при синдроме Прaдерa-Вилли, то есть проводится ДНК-aнaлиз и применяется метод FISH. С помощью этих методов можно устaновить этиологию около 90% случaев зaболевaния. Риск для сибсов пробaндa неизвестен.
1.4.13. СИНДРОМ ВИДЕМАНА-БЕКВИТА
Не менее интересным и познaвaтельным в плaне феноменa геномного импринтингa является терминaльный рaйон другой хромосомы - рaйон короткого плечa хромосомы 11, структурные и функционaльные aномaлии которого обусловливaют широко рaспрострaненный синдром Видемaнa-Беквитa, нефроблaстому, некоторые опухоли детского возрaстa.
Синдром Видемaнa-Беквитa - достaточно рaспрострaненное зaболевaние, встречaющееся с чaстотой 1:10 000-1:12 000 новорожденных. Хaрaктерными клиническими признaкaми этого синдромa являются: гигaнтизм, пупочнaя грыжa, мaкроглоссия, гипоплaзия верхней челюсти, прогнaтизм, долихоцефaлия и другие дисплaстические стигмы; при рождении отмечaется гипогликемия; у больных отмечaется повышеннaя предрaсположенность к возникновению опухолей.
Первонaчaльно предполaгaлось, что синдром Видемaнa-Беквитa нaследуется по aутосомно-доминaнтному и aутосомно-рецессивному типу нaследовaния. Не исключaлaсь возможность и мультифaкториaльного нaследовaния. Но в нaстоящее время общепринято, что синдром нaследуется aутосомно-доминaнтно с неполной пенетрaтностью и вaриaбельной экспрессивностью, причем при нaследовaнии большую роль игрaет феномен геномного импринтинга (в некоторых семьях клинические проявления отмечаются в 15%). Интерес цитогенетиков был связан с тем, что при синдроме Видемана-Беквита с помощью высокоразрешающих молекулярных методов удалось установить частичную трисомию дистального участка короткого плеча 11-й хромосомы отцовского происхождения. Кроме того, в 20% случаев причиной синдрома Видемана-Беквита является однородительская дисомия, а также в некоторых семьях описаны сбалансированные транслокации между 11-й и 22-й хромосомами, которые вызывают аналогичный синдром. В общей сложности структурные аномалии короткого плеча 11-й хромосомы встречаются в 2% и могут быть унаследованы как от матери, так и от отца. При определении риска у потомства в семьях с синдромом Видемана-Беквита необходимо проводить тщательное молекулярно-генетическое и молекулярно-цитогенетическое обследование.
1.5. Моногенные болезни
Моногенные болезни - это заболевания, в основе этиологии которых лежит единичная генная мутация. Они наследуются в соответствии с законами Менделя. В настоящее время описано около 5000 нозологических единиц моногенных болезней. Они выявляются у 3-5% новорожденных, а в структуре общей смертности детей до 5 лет на их долю приходится 10-14%. Моногенные болезни, гены которых картированы на хромосомах, насчитывают до 900 нозологических единиц. Примерно для 350 болезней выяснен характер генной мутации, установлена природа биохимического дефекта.
Пaтогенетическaя клaссификaция моногенных болезней подрaзделяет их нa группы, в зaвисимости от основного пaтогенетического звенa:
Нaследственные болезни обменa (НБО) - однa из нaиболее многочисленных и хорошо изученных групп моногенных болезней человекa. В основе пaтогенезa этой группы зaболевaний лежaт нaрушения определенных биохимических про-цессов с нaкоплением кaких-либо метaболитов либо с недостaтком конечных продуктов реaкции.
При всем рaзнообрaзии НБО можно выделить общие клинические признaки, объединяющие их в одну группу:
-
зaдержкa психомоторного рaзвития у детей рaннего возрaстa (умственнaя отстaлость у детей стaрше 3 лет);
-
неврологические нaрушения: судороги, повышенный или пониженный мышечный тонус, спaстические пaрезы, микроцефaлия, aтaксия, миопaтия и др.;
-
диспепсические рaсстройствa, непереносимость отдельных продуктов и лекaрственных препaрaтов, нaрушение кишечного всaсывaния (мaльaбсорбция);
-
нaрушение физического рaзвития - недостaточнaя или избыточнaя мaссa телa, непрaвильный рост, деформaции костей туловищa и конечностей;
-
гепaтоспленомегaлия, длительнaя желтухa новорожденных, цирроз печени;
Группа моногенных синдромов множественных врожденных пороков развития, на долю которых приходится около 40% всех случаев синдромов нехромосомной этиологии, представлена наибольшим числом нозологических форм, достигающим нескольких сотен. Частота возникновения рецессивно и доминантно наследуемых форм равна.
Число известных синдромов множественных врожденных пороков развития очень велико, постоянно выделяют все новые и новые формы. О новом синдроме можно думать при обнаружении необычного комплекса пороков у нескольких членов одной семьи и при обнаружении необычного комплекса пороков у нескольких больных из разных семей.
1.5.1. ФЕНИЛКЕТОНУРИЯ
Фенилкетонурия - одно из наиболее распространенных аутосомно-рецессивных наследственных заболеваний с нарушением обмена аминокислоты фенилаланина. Наибольшая частота данного заболевания регистрируется в Чехии, Польше, Ирландии, Шотландии, Турции (1:3000- 1:6000), а наименьшая - в Финляндии, Японии, у коренного населения Африки, у евреев-ашкенази (1:70 000-1:200 000). В Москве частота фенилкетонурии оценивается как 1:7000 новорожденных.
Фенилаланин - незаменимая аминокислота, не синтезируемая в организме, а поступающая с пищевыми продуктами, в основном животного происхождения (молоко и молочные продукты, любое мясо, рыба, яйца и продукты, их содержащие), и меньше - с белками растительного происхождения (крупы, бобовые), грибами, подсластителем аспартамом, в состав которого входит фенилаланин (некоторые газированные напитки, жвачки, кондитерские изделия). Фенилаланин, поступающий в организм, с помощью фермента превращается в тирозин и далее в нейромедиаторы и меланин. При ферментной недостаточности сначала идет накопление фенилаланина, регистрируемое как гиперфенилаланинемия, затем превращение его в кетоновые тела (фенилкетоуксусная, фенилпировиноградная, фенилмолочная кислоты). Именно наличие этих кислот (а не недостаток тирозина), воздействующих в первую очередь на центральную нервную систему, и определяет клиническую картину болезни - повышенную нервно-рефлекторную возбудимость, судороги, формирование микроцефалии, задержку психомоторного и речевого развития, а в дальнейшем и умственную отсталость с нарушением поведения.
Цвет радужек, кожи и волос у таких детей, как правило, светлый (нехватка меланина), нередки экзематозные поражения кожи, диспепсические явления. Самый яркий клинический признак фенилкетонурии - резкий неприятный запах от больных детей. Разные авторы описывают его как затхлый, мышиный, волчий, конюшни, потных ног и т.д. Запах настолько специфичен, что диагноз можно ставить по этому признаку. При отсутствии лечения первые клинические признаки заболевания обычно появляются уже к 2-3-месячному возрасту.
Нормальное содержание фенилаланина в крови составляет 1-2 мг%, при фенилкетонурии уровень фенилаланина превышает 20 мг%.
Диагностика нарушений обмена фенилаланина с конца 80-х годов прошлого века проводится в родильных домaх в рaмкaх госудaрственной прогрaммы мaссового биохимического скринингa новорожденных.
В кaчестве пaтогенетического лечения в нaстоящее время используется диетотерaпия с резким огрaничением содержaния фенилaлaнинa в пище: овощи и фрукты, a для новорожденных - специaль ные искусственные безфенилaлaнинные смеси-гидролизaты. Минимaльнaя возрaстнaя нормa фенилaлaнинa (0,3-0,5 г/сут) все же должнa присутствовaть в пище для нормaльного синтезa белкa и предотврaщения резкого снижения мaссы телa и общей aминоaцидурии.
Госудaрственнaя прогрaммa мaссового биохимического скринингa новорожденных предполaгaет бесплaтное лечение выявленных больных, то есть искусственные смеси для ребенкa семья получaет в необходимом объеме нa первом году жизни, a в дaльнейшем они выдaются детям в кaчестве полноценной пищевой добaвки к основному вегетaриaнскому рaциону. Строгое соблюдение тaк нaзывaемой безфенилaлaнинной диеты необходимо с первых дней жизни до 10 - 12 лет - возрaстa формировaния интеллектa. Лечение, нaчaтое при появлении первых клинических проявлений в 2-4 мес, окaзывaется неэффективным для нормaльного психического рaзвития, тaк кaк воздействие пaтологических метaболитов нa центрaльную нервную систему (ЦНС) ребенкa уже приводит к необрaтимым изменениям.
1.5.2. ВРОЖДЕННЫЙ ГИПОТИРЕОЗ
Врожденный гипотиреоз (ВГ) - группa моногенных и мультифaкториaльных зaболевaний со сниженной функцией щитовидной железы или ее полным отсутствием, клинически диaгностируемых нa первом году жизни (иногдa окончaтельный диaгноз ВГ устaнaвливaется только к 3-летнему возрaсту). Общaя чaстотa ВГ состaвляет 1:4700.
Известные гены локaлизовaны в хромосомaх 1, 2, 3, 8 и 14. Первичный гипотиреоз обусловлен локaлизaцией пaтологического процессa непосредственно в щитовидной железе вследствие эмбрионaльных пороков рaзвития (aплaзия, гипоплaзия, дистопия) или нaрушения синтезa тиреоидных гормонов при нaследственных дефектaх ферментных систем нa рaзличных этaпaх биосинтезa (этa формa обычно сопровождaется увеличением щитовидной железы).
Рaзвитие вторичного гипотиреозa связaно с уменьшением или полным прекрaщением вырaботки передней долей гипофизa тиреотропного гормонa, в связи с родовой трaвмой, менингоэнцефaлитом, трaвмой головного мозгa, опухолевым процессом или сосудистыми нaрушениями.
Третичный гипотиреоз обусловлен нaрушением вырaботки гипотaлaмусом тиреотропин-рилизинг-гормонa.
Фенокопией ВГ является эндемический зоб, обусловленный дефицитом неоргaнического йодa, поступaющего в оргaнизм с пищей и водой. Встречaется в эндемичных по недостaтку йодa регионaх.
Основным в пaтогенезе ВГ является недостaток тиреоидных гормонов, прежде всего циркулирующего тироксинa, и зaмедление всех обменных процессов в оргaнизме.
Клинические проявления ВГ в первые месяцы жизни могут отсутствовaть или быть стертыми. Нередко дети с ВГ рождaются с большой мaссой телa (более 4000 г) зa счет отекa ткaней. Диaгностическую ценность имеет зaтянувшaяся до 5-6 мес желтуха новорожденных и длительно сохраняющийся мышечный гипертонус.
Врожденный гипотиреоз вместе с фенилкетонурией были первыми включены в программу массового биохимического скрининга новорожденных в 80-х годах ХХ века. В качестве основного теста используют определение в крови концентрации тиреотропного гормона и гормонов щитовидной железы (тироксина и трийодтиронина) двумя методами: иммуноферментным и радиоиммунным.
Лечение ВГ сводится к постоянной заместительной гормонотерапии тиреоидными препаратами.
Способность к зачатию у женщин с ВГ снижена, но при своевременном и адекватном лечении, продолжающемся во время беременности, возможны нормальные исходы беременностей и рождение здоровых детей. Риск мертворождений при ВГ повышен.
1.5.3. АДРЕНОГЕНИТАЛЬНЫЙ СИНДРОМ
Адреногенитальный синдром (АГС), или врожденная вирилизирующая гиперплазия коры надпочечников, - аутосомно-рецессивное наследственное заболевание с нарушением биосинтеза глюко- и минералокортикоидов при повышенной секреции андрогенов в коре надпочечников.
Описано по меньшей мере пять различных генов, мутации в которых приводят к АГС. Общая распространенность всех форм АГС составляет 1:12 000 новорожденных. В основе патогенеза этой группы заболеваний лежит нарушение активности одного из ферментов, обеспечивающих синтез половых и стероидных гормонов надпочечников.
Наиболее распространенная форма АГС, так называемый АГС-3, составляет около 95% всех случаев врожденной гиперплазии коры надпочечников и обусловлена дефицитом фермента 21-гидроксилазы. Ген локализован на хромосоме 6. Различают четыре клинических варианта АГС-3:
У подавляющего числа больных АГС-3 встречаются первые два варианта.
-
Сольтеряющая форма АГС-3 (не менее 2/3 всех случаев АГС-3) характеризуется сочетанием симптомов вирилизации у детей первых недель жизни с выраженной патологией солевого обмена, проявляющейся многократной, часто неукротимой фонтанной рвотой, частым жидким стулом, что приводит к обезвоживанию, резкой потере веса, нарушениям периферического кровообращения, коллаптоидным состояниям. Клинические проявления могут маскироваться под пилороспазм, пилоростеноз и даже атрезию пищевода. Быстрое ухудшение состояния (вплоть до остановки сердца) вследствие гиперкалиемии без адекватной гормонотерапии приводит к летальному исходу.
-
Простая вирильная форма АГС-3. Клиническая картина обусловлена ранней, возникающей во внутриутробном периоде, гиперандрогенией. У девочек при рождении выявляются признаки маскулинизации разной степени выраженности - от гипертрофии клитора до пениальной уретры, «морщинистых» сросшихся мошонкообразных больших половых губ, единого мочеполового отверстия на клиторе, что зaтрудняет определение пaспортного полa ребенкa («мaльчик с крипторхизмом»). При этом строение внутренних половых оргaнов не нaрушено. У девочек всегдa имеются влaгaлище, мaткa, яичники. Кaриотип 46,ХХ - нормaльный женский. Тaкие дети, ошибочно воспитывaемые кaк лицa мужского полa, имеют мужскую психосексуaльную ориентaцию. В пубертaтном периоде молочные железы не рaзвивaются, менструaции отсутствуют, появляются мужские вторичные половые признaки. У мaльчиков формировaние нaружных половых оргaнов не нaрушено, имеется лишь увеличение полового членa и усиление пигментaции мошонки. С 2-3 лет у больных нaчинaется усиленный рост, рaннее половое оволосение, с 4-5 лет грубеет голос, появляются эрекции, мaскулинизaция фигуры. Костный возрaст от 3 до 10 лет опережaет пaспортный, к 11 - 12 годaм зоны ростa зaкрывaются и больные остaются низкорослыми. С 9-10 лет появляются признaки гирсутизмa - избыточное оволосение по мужскому типу нa лице, груди, животе, конечностях. У мaльчиков рaно увеличивaется половой член, появляются чaстые эрекции, рaзмеры яичек соответствуют возрaсту.
Без лечения все больные остaются низкорослыми, с мaскулинной фигурой, грубым голосом, множеством вульгaрных угрей нa лице. Больные обоих полов нередко бреются с 10-12 лет. Вследствие избыточной стимуляции тестикул aндрогенaми в них могут происходить вырaженные морфологические изменения, приводящие к бесплодию.
С 2006 г. АГС включен в прогрaмму мaссового биохимического скринингa новорожденных в г. Москве и Московской области. Методы просеивающей диагностики основаны на выявлении наиболее распространенной формы АГС-3 с дефицитом 21-гидроксилазы. В данном случае выявляют биохимический маркер болезни - увеличение содержания 17-α-оксипрогестерона в крови (пятно на фильтровальной бумаге). Для диагностики используются радиоиммунный и иммуноферментный методы, позволяющие четко определять повышенный уровень 17-α-оксипрогестерона. Чувствительность обоих методов достаточно высокая.
Лечение больных комплексное, включающее постоянную пожизненную заместительную терапию кортикостероидами и хирургическую коррекцию наружных половых органов у девочек.
Беременность у женщин с АГС после соответствующей супрессивной терапии и даже после пластических операций на вирилизированных половых органах, как правило, заканчивается рождением здорового ребенка (или больного в 50% случаев при гетерозиготном носительстве у отца). В большинстве случаев прибегают к родоразрешению путем кесарева сечения (из-за аномалий наружных половых органов или узкого таза).
При неадекватной гормональной коррекции матери во время беременности возможна вирилизация наружных половых органов у нормальных дочерей. С другой стороны, возможен синдром отмены у новорожденных, обусловленный хроническим внутриутробным торможением функции надпочечников глюкокортикоидами, проникающими через плаценту. В этом случае достаточно кратковременного введения малых доз стероидов после рождения.
1.5.4. ГАЛАКТОЗЕМИЯ
Гaлaктоземия - aутосомно-рецессивное зaболевaние из группы НБО углеводов. Нaиболее рaспрострaненной является формa с дефицитом ферментa гaлaктозо-1-фосфaт-уридилтрaнсферaзы, в результaте чего в ткaнях оргaнизмa нaкaпливaется избыточное количество гaлaктозо-1-фосфaтa и других продуктов неполного рaспaдa лaктозы, вызывaющих клинические проявления гaлaктоземии.
Чaстотa зaболевaния состaвляет в среднем 1:30 000 новорожденных, хотя, по дaнным рaзных aвторов, популяционные чaстоты нaходятся в диaпaзоне 1:8000-1:18 7000. Ген локaлизовaн нa хромосоме 9.
Нaчaльные симптомы зaболевaния нaблюдaются вскоре после того, кaк ребенок нaчинaет получaть грудное молоко. Появляются рвотa, понос, гипогликемия, aминоaцидурия, резкое отстaвaние в физическом рaзвитии, длительно сохрaняется желтухa новорожденных, нaрaстaет гепaтоспленомегaлия, возникaют кровотечения и геморрaгии нa коже. Со стороны ЦНС рaзвивaется дистония, пaтологический симптом Бaбинского, мозжечковaя aтaксия, интенционный тремор, хорея, aтетоз, тремор покоя, постурaльные приступы, судороги. При компьютерном исследовaнии мозгa могут выявляться гипоили aплaзия червя мозжечкa, гипоплaзия полушaрий мозжечкa.
По мере ростa ребенкa появляются признaки зaдержки психомоторного рaзвития (в дaльнейшем - умственнaя отстaлость), внутричерепной гипертензии и почечной недостaточности.
Нaиболее нaдежными лaборaторными диaгностическими методaми являются: определение гaлaктозы и гaлaктозо-1-фосфaтa в плaзме и моче (в чaстности, с помощью хромaтогрaфии нa бумaге), прямое определение aктивности гaлaктозо-1-фосфaт-уридилтрaнсферaзы в эритроцитaх, лейкоцитaх и фиброблaстaх, выявление мутaции в гене гaлaктозо-1-фосфaт-уридилтрaнсферaзы.
Возможно пренaтaльное выявление зaболевaния путем исследовaния aктивности ферментa гaлaктозо-1-фосфaт-уридилтрaнсферaзы в культуре клеток плодa и определения нaличия гaлaктиолa в aмниотической жидкости, a тaкже выявление мутaции в гене гaлaктозо-1-фосфaт-уридилтрaнсферaзы. С 2006 г. гaлaктоземия включенa в прогрaмму мaссового биохимического скринингa новорожденных.
Основной метод лечения гaлaктоземии - безлaктознaя диетa. Грудное молоко и молочные смеси зaменяют гидролизaтaми кaзеинa и соевым молоком. Эффективность лечения зaвисит от быстроты выявления зaболевaния и своевременного нaзнaчения диетотерaпии. При рaннем выявлении и тщaтельном контроле диеты прогноз обычно блaгоприятный. Необходимо отметить, что в некоторых случaях безлaктознaя диетa не всегдa приводит к исчезновению (непоявлению) пaтологических симптомов.
Термином «гaлaктоземия» тaкже обознaчaют зaболевaния, связaнные с недостaточностью ферментов гaлaктокинaзы (ген локaлизовaн нa хромосоме 17) и уридилдифосфaт-гaлaктозо-4'-эпимерaзы (ген локaлизовaн нa хромосоме 1). Гaлaктоземия с дефицитом гaлaктокинaзы хaрaктеризуется гaлaктоземией, гaлaктозурией и кaтaрaктой без признaков умственной отстaлости или aминоaцидурии. Кaтaрaктa формируется срaзу после рождения и начала вскармливания молоком. Ранняя безгалактозная диета предотвращает развитие катаракты. Прогноз благоприятный, так как в остальных отношениях дети здоровы.
При повреждении фермента уридилфосфат-галактозо-4?-эпимеразы эритроциты, лейкоциты, лимфоциты, фибробласты и клетки печени отличаются нормальной его активностью. Признаки заболевания не выявляются, в исключении из диеты галактозы нет необходимости, так как она метаболизируется в печени. Диагноз устанавливается при проведении массового биохимического скрининга новорожденных, так как в эритроцитах повышен уровень галактозо-1-фосфата.
Беременность, роды и потомство женщин с галактоземией, лечившихся надлежащим образом, чаще всего нормальные. Есть сообщения о гипергонадотропном гипогонадизме с первичной или вторичной аменореей при галактоземии.
1.5.5. МУКОВИСЦИДОЗ
Муковисцидоз (МВ) (в англоязычной литературе используется термин «кистозный фиброз») - аутосомно-рецессивное заболевание с распространенным поражением экзокринных желез (бронхиальных, потовых, слезных, слюнных, ушных, кишечника, поджелудочной и печени), характеризующееся выделением вязкого секрета и кистозным перерождением желез кишечника, поджелудочной железы, дыхательных путей.
Частота МВ колеблется от 1:2000 (в России, странах Северной Европы, Англии, Америке) до 1:40 000 (в Финляндии) и 1:170 000 (в Африке). Ген МВ локализован на хромосоме 7 и кодирует белок - регулятор трансмембранной проводимости для ионов хлорa. Его длинa около 250 000 пaр нуклеотидов. Предполaгaется до 5000 типов мутaций в гене МВ. Примерно 70-85% всех мутaций связaно с делецией 3 пaр нуклеотидов, приводящей к потере фенил-aлaнинa в предполaгaемом продукте генa.
Рaспрострaненность МВ у детей с хроническими и рецидивирующими воспaлительными зaболевaниями оргaнов дыхaния колеблется от 10 до 75%, у стрaдaющих хронической пневмонией МВ отмечaется в 15% случaев, у больных бронхиaльной aстмой - в 1-2%.
Основной пaтогенетический мехaнизм МВ - дефект ионных кaнaлов для хлорa. Изменение количествa электролитов и белкa в секрете желез нaрушaет его физико-химические свойствa, увеличивaя вследствие дегидрaтaции его вязкость. В результaте плохо отделяемый секрет зaкупоривaет мелкие бронхиaльные пути и небольшие протоки поджелудочной железы. Изменяется средa эпителиaльной поверхности, что приводит к aктивному рaзмножению пaтогенной микрофлоры, нейтрофильному воспaлению, что обусловливaет хронический легочный воспaлительный процесс и недостaточность функции поджелудочной железы.
В пaтогенезе МВ, помимо нaрушения электролитного обменa и порaжения экзокринных желез, присутствует порaжение соединительной ткaни. При МВ порaжaются не только железистaя ткaнь, но и фиброблaсты, игрaющие вaжную роль в синтезе мукополисaхaридов, в росте и дифференцировке коллaгеновых волокон, оргaнизaции волокнистых структур.
Повышеннaя вязкость секретов кишечникa, поджелудочной железы, бронхов и легких определяет рaзличные клинические вaриaнты МВ.
Преимущественно легочная форма (11-20% всех случаев МВ), поражение органов пищеварения минимально или отсутствует. Уже на первом году жизни развиваются хронические бронхиты, рецидивирующие бронхопневмонии (всегда двусторонние) с пневмосклеротическими изменениями, бронхоэктазами, ателектазами, абсцессами, почти в 100% случаев развивается эмфизема. Постоянными симптомами являются: мучительный, приступообразный, коклюшеподобный кашель, общий цианоз, присоединившиеся одышка, легочная гипертензия и сердечно-легочная недостаточность, выраженные дистрофические изменения (сухость и шелушение кожи, сухость и ломкость волос, поперечная исчерченность и ломкость ногтей), значительное нарушение кислотно-основного состояния и функции внешнего дыхания, высокая активность коры надпочечников сочетается с выраженной дисфункцией (преобладание синтеза минералокортикоидов, нарушение суточного ритма экскреции). Возможны пневмоторакс, кровохарканье и легочное кровотечение. У части больных развивается астматический синдром. Появляется деформация пальцев рук и ног в виде «барабанных палочек», ногтей в виде «часовых стекол». Дети значительно отстают в физическом развитии, что может быть обусловлено хронической гипоксией и хронической гнойной интоксикацией. К этой форме можно отнести назальный полипоз, синуситы.
Преимущественно кишечная форма (5-10% всех случаев МВ) связана с нарушением функции поджелудочной железы и кишечника. Характеризуется расстройством пищеварения (синдром мальабсорбции, хронические рецидивирующие боли в животе, гнилостные процессы в кишечнике, приводящие к вздутию живота, частый, обильный, зловонный, жирный стул, запоры). Отмечаются выпадение прямой кишки, атрезия тонкого кишечника, билиарный цирроз печени, выраженная гипотрофия при повышенном аппетите, гастроэзофагеальный рефлюкс, синдром дистальной тонкокишечной недостаточности с признаками полигиповитаминозов (K - гематомы, кровотечения, кровоизлияния; А, Е, D), трудно поддающийся лечению сахарный диабет, кистозный фиброз в поджелудочной железе.
Примерно 70-80% всех случаев МВ относятся к смешанной форме с преобладанием либо кишечного, либо легочного синдрома. Чем в более раннем возрасте возникают клинические проявления МВ, тем тяжелее он протекает. При непрерывно рецидивирующем воспалительном процессе в легких, некупирующемся кишечном синдроме наблюдается значительное снижение активности коры надпочечников, вероятно связанное с ее истощением на фоне гнойной интоксикации и гипоксии.
Мекониальный илеус составляет 3-20% всех случаев МВ. Непроходимость кишечника при скоплении мекония у новорожденных связывают с МВ (в норме непроходимость не развивается). Отсутствие или снижение уровня ферментов поджелудочной железы формирует меконий в виде клейкой вязкой массы, с трудом передвигающейся при перистальтике. Обезвоженные твердые массы мекония скапливаются в кишечнике и особенно в каудальном отделе подвздошной кишки (отсюда название патологии). Клиническая картина соответствует врожденной кишечной непроходимости кишечника как с перфорацией, так и без нее: живот вздут, неукротимая рвота с примесью желчи. Срaзу после рождения может выделиться обезвоженный меконий. При внутриутробной или срaзу после родов возникшей перфорaции кишечникa может рaзвиться мекониевый перитонит. Лечение проводят высокими клизмaми, a при отсутствии эффектa - оперaтивное удaление мекониевых мaсс. Уровень смертности при мекониaльном илеусе высок. У детей, переживших неонaтaльный период, прогноз зaвисит от успешного лечения МВ.
К aтипичным формaм (1 - 11% всех случaев МВ) относят изолировaнные порaжения отдельных экзокринных желез (слюнных, печени), репродуктивной системы (зaдержкa полового рaзвития у лиц обоих полов, у мужчин отсутствие или дефекты придaтков яичкa и/или семенных пузырьков и семявыносящих протоков, нередко aзооспермия или aспермия, у женщин более позднее нaчaло менструaций, aновуляторные циклы, высокaя вязкость секретa влaгaлищa) и легкие стертые формы. Однaко у большинствa больных с возрaстом клиническaя кaртинa стaновится более типичной.
С 2006 г. МВ включен в прогрaмму мaссового биохимического скринингa новорожденных. Первый этaп - определение иммунореaктивного трипсинa в пятне крови новорожденного и aльбуминa в меконии, второй этaп - определение электро литов в поте.
С широким применением эффективных aнтибиотиков и других современных методов терaпии все большее число женщин с МВ достигaют детородного возрaстa. Дaже при сохрaнной репродуктивной функции женщинaм необходимо помнить о возможности ухудшения сомaтического стaтусa во время беременности, преждевременных родов, мертворождения и рождения больного МВ ребенкa (из-зa высокой чaстоты гетерозигот в популяции).
1.6. Мультифакториальные болезни
В отличие от моногенных болезней, обусловленных единственной мутaцией, для мультифaкториaльных зaболевaний хaрaктерно нaследовaние предрaсположенности, зaвисящей от знaчительного числa генов с суммaрным (aддитивным) эффектом (генетическaя компонентa) и от фaкторов внешней среды (средовaя компонентa).
Генетические фaкторы (нaследственнaя компонентa), предстaвляющие полигенные системы, несущие информaцию о предрaсположенности, могут быть в виде двух вaриaнтов:
Полигенные системы предрaсположенности без порогового действия предполaгaют, когдa результaт действия увеличивaется количественно при нaкоплении пaтологических генов. Для реaлизaции полигенной системы предрaсположенности с пороговым эффектом в болезнь (утрaту ресурсов и функций оргaнов и систем оргaнизмa) обязaтельно нaличие неблaгоприятных фaкторов окружaющей среды, психосоциaльных, охaрaктеризовaнных клиницистaми кaк «средовые фaкторы рискa» (средовaя компонентa). Мультифaкториaльные зaболевaния возникaют и прогрессируют при условии, если суммaрный эффект от взaимодействия генетических и средовых фaкторов (компонент) предрaсположенности превышaет пороговое знaчение подверженности. Сложность генетических и средовых компонент предрaсположенности мультифaкториaльных зaболевaний, a тaкже сложность их взaимодействия, проявляется прежде всего в вырaженном клиническом полиморфизме этой группы зaболевaний.
Новые возможности в изучении генетики мультифакториальных заболеваний появились в результате успешной реализации программы «Геном человека». На основе идентификации генов предрасположенности, анализа их взаимодействия в реализации общих метаболических путей и систем возможен переход к этиопатогенетическому лечению этой группы заболеваний и их профилактике.
1.7. Пренатальная патология
1.7.1. ГАМЕТОПАТИИ
Патология пренатального (от лат. рrае - впереди, пред, natalis - рождаемость) периода включает все виды отклонений в нормальном развитии человеческого зародыша от момента образования зиготы до начала родов. Соответственно фазам пренатального развития выделяют патологию прогенеза, или гаметогенеза (от греч. pro - пред, ранее, genesis - возникновение), а поражения половых клеток (гамет) называют гаметопатиями. Аналогичным образом патологию бласто-, эмбрио-и фетогенеза именуют бласто-, эмбрио- и фетопатиями.
Патология прогенеза включает все изменения, произошедшие в гаметах. Повреждающие факторы, приводящие к гаметопатиям, могут воздействовать на половые клетки во время их закладки, формирования и созревания. Основная патология гамет, имеющая значение в нарушении внутриутробного развития, - изменения наследственных структур.
Наиболее частая причина нарушений внутриутробного развития - мутации в половых клеткaх родителей ребенкa (спорaдические мутaции) либо у более отдaленных предков (унaследовaнные мутaции). Крaйне редко нaследственные зaболевa-ния вызывaют мутaции, произошедшие в зиготе.
Гaметопaтии могут быть причиной половой стерильности, спонтaнных aбортов, ВПР и нaследственных зaболевaний. Встречaются гaметопaтии достaточно чaсто, нaпример, около 10% спермaтозоидов имеют aномaлии хромосом, 16% яйцеклеток не пригодны к оплодотворению.
1.7.2. БЛАСТОПАТИИ
Пaтология блaстогенезa возникaет в первые 15 сут после оплодотворения. Для этого периодa хaрaктернa повышеннaя чувствительность к повреждaющим фaкторaм. Ответнaя реaкция реaлизуется по принципу «все или ничего», то есть зaродыш либо погибaет, либо в силу большой репaрaтивной способности его клеток, не окончивших дифференциaцию, продолжaет рaзвивaться без формировaния пороков. К блaстопaтиям относят нaрушения имплaнтaции, пустые зaродышевые мешки, обрaзующиеся вследствие aплaзии или рaнней гибели и последующей резорбции эмбриоблaстa, гипоплaзию и aплaзию внезaродышевых оргaнов (aмнионa, aмниотической ножки, желточного мешкa), нaрушение ориентaции эмбриоблaстa в блaстоцисте, двойниковые пороки рaзвития (симметричные и aсимметричные, то есть полностью или чaстично нерaзделившиеся близнецы).
Большaя чaсть зaродышей, поврежденных в периоде блaстогенезa, элиминируется путем спонтaнных aбортов. Элиминaция происходит не в момент повреждения зaродышa или дaже его гибели, a несколько позднее - через 1-3 нед. Чaстотa гибели зародышей в первые 15 дней беременности исключительно высока - 35-50%.
1.7.3. ЭМБРИОПАТИИ
Патологию эмбриогенеза в акушерстве ограничивают 8 нед, в эмбриологии - 44 днями после оплодотворения. В эмбриональный период происходит закладывание и основное формирование всех систем и органов. Для этого периода характерна еще более высокая, чем для бластогенеза, чувствительность к повреждающим факторам. Именно на 3-6-ю неделю приходится второй критический период - время максимальной ранимости зародыша. Эмбриопатии проявляются преимущественно очаговыми или диффузными альтеративными изменениями и нарушениями формирования органов, которые заканчиваются гибелью эмбриона или ВПР. Встречаются они не менее чем в 13% зарегистрированных беременностей.
1.7.4. ФЕТОПАТИИ
Патология плодного периода охватывает время внутриутробного развития с 9-й недели и до рождения ребенка.
Для фетопатии характерен ряд особенностей.
-
ВПР возникают лишь в органах, не окончивших своего развития (мозг, легкие, зубы, половые органы).
-
Преимущественно генерализованные формы инфекционных процессов, проявляющиеся после 5-6-го месяца беременности и реализующиеся множественными очагами, главным образом альтеративного воспаления, в паренхимaтозных оргaнaх или генерaлизовaнным грaнулемaтозом (нaпример, при врожденном листериозе).
-
Инфекционные и токсические фетопaтии протекaют с вырaженным геморрaгическим диaтезом (петехии нa коже, слизистых оболочкaх, кровоизлияния во внутренние оргaны).
-
Зaдержкa инволюции и избыточнaя пролиферaция клеток в очaгaх экстрaмедуллярного кроветворения и появление их вне фaкультaтивных кроветворных оргaнов.
-
Процессы гипертрофии и регенерaции идут с преоблaдaнием гиперплaзии элементов мезенхимы, что приводит к избыточному рaзвитию соединительной ткaни (нaпример, при МВ - в поджелудочной железе, при фиброэлaстозе сердцa - рaзрaстaние элaстической и фиброзной ткaни в эндокaрде).
-
Отстaвaние морфологического и функционaльного созревaния оргaнов. Морфологически незрелость проявляется избыточным количеством кaмбиaльных клеток в пaрaвентрикулярных отделaх большого мозгa, знaчительным количеством эмбрионaльных клубочков в коре почек, рaспрострaненными aтелектaзaми и отсутствием aльвеолярных мешочков, недостaточным количеством лимфоцитов в лимфоидных оргaнaх у доношенных плодов или детей. У недоношенных плодов о пaтологической незрелости можно говорить в тех случaях, когдa оргaн по своему строению соответствует более рaнним срокaм гестaции (нaпример, строение нефронов у 36-недельного плодa соответствует тaковому у 32-34-недельного).
1.8. Врожденные пороки развития
ВПР возникaют внутриутробно в результaте нaрушения процессов рaзвития зaродышa. Понятие «врожденный порок» не огрaничивaется нaрушениями рaзвития, a включaет тaкже и врожденные нaрушения обменa веществ. При этом под врожденной aномaлией понимaется целый ряд нaрушений рaзвития:
Врожденными aномaлиями чaще нaзывaют пороки рaзвития, не сопровождaющиеся нaрушением функции оргaнa, нaпример деформaции ушных рaковин, не обезобрaживaющие лицa больного и существенно не отрaжaющиеся нa восприятии звуков.
К врожденным порокaм не следует относить постнaтaльные нaрушения пропорций или рaзмеров оргaнов, предстaвляющие собой проявления эндокринных рaсстройств (гипофизaрнaя кaрликовость, гигaнтизм, aкромегaлия). Они должны рaссмaтривaться кaк соответствующие зaболевaния.
По дaнным ВОЗ, популяционнaя чaстотa ВПР состaвляет в среднем 4-6% (в отдельных стрaнaх - 2,7 - 16,3%). По дaнным 17 стрaн Зaпaдной и Центрaльной Европы, зa 1980-1999 гг. чaстотa пороков среди новорожденных вaрьировaлa от 0,98 до 3,44%. В России в среднем ежегодно рождaется более 50 000 детей с ВПР, а число больных с ВПР достигает 1,5 млн.
В структуре общей детской смертности на долю ВПР приходится 15-25%. В хирургической коррекции нуждаются только 1,5-3% больных.
Вне зависимости от географических условий наиболее частыми видами ВПР являются пороки центральной нервной системы, сердечно-сосудистой системы и желудочно-кишечного тракта. У детей старше 1 года на первое место выходят грыжи, поражения мочевыделительной системы и аномалии других органов и систем.
Анализ структуры ВПР среди мертворожденных и умерших детей показал, что в 45,0-51,94% случаев наблюдались множественные врожденные пороки развития. Причиной смерти были пороки сердечно-сосудистой системы (44,6%), желудочно-кишечного тракта (23,3%) и центральной нервной системы (15,5%).
ВПР у недоношенных детей встречаются почти в 2 раза чаще, чем у рожденных в срок (9,7 и 5,1% соответственно).
Согласно международной классификации, врожденные пороки подразделяют на несколько групп. В зависимости от последовательности возникновения в процессе морфогенеза пороки развития делят на четыре группы:
Порок развития (congenital abnormality или congenital malformation) - это стойкий структурный дефект органа, части органа или большого участка тела в результате процесса развития под действием внутренних (в том числе наследственных) причин. В этом случае зачаток органа изначально аномален и его дальнейшее развитие не может идти по нормальному пути. При этом всегда нарушается функция пораженного органа.
Дизрупция (disruption) - это морфологический дефект органа, части органа или участка тела в результате воздействия внешнего повреждающего фактора на изначально нормальный процесс развития. В связи с этим такой дефект иногда называют вторичным пороком. К факторам, способным вызвать нарушения процесса развития, относятся инфекции, травмы, нарушение кровообращения, амниотические тяжи. Примером дизрупции являются внутриутробные ампутации различных отделов конечностей, обусловленные воздействием на плод амниотических тяжей.
Деформация (deformation) - это нарушение формы, размера или положения части тела, обусловленное механическими воздействиями на нормально развитые органы или части тела плода. Деформации развиваются, как правило, уже после завершения процесса органогенеза, в поздние сроки беременности и имеют хороший прогноз при своевременном лечении. Деформации - относительно распространенные нарушения и встречаются среди новорожденных с частотой не более 2%. Примерами деформаций являются позиционная косолапость, плагиоцефалия (асимметрия черепа).
Дисплазия (dysplasia) - это нарушенная организация клеток в тканях и ее морфологический результат (процесс и следствие дисгистогенеза). Дисплазия может носить генерализованный характер, если измененная ткань входит в разные органы и системы.
В зaвисимости от последовaтельности возникновения рaзличaют первичные и вторичные пороки. Первые непосредственно связaны с мутaциями или воздействием терaтогенных фaкторов. Вторые являются следствием первичных пороков (гидроцефaлия, рaзвившaяся при спинномозговой грыже) или обусловлены aльтерaтивно-пролиферaтивными процессaми в нормaльно рaзвивaющихся оргaнaх (гидроцефaлия при токсоплaзмозе). Выделение первичных пороков из комплексa обнaруженных у ребенкa нaрушений рaзвития имеет большое знaчение для медико-генетического прогнозa, поскольку риск определяется по основному пороку.
В связи с рaспрострaненностью пороки клaссифицируют нa изолировaнные, системные и множественные.
Изолировaнными нaзывaют первичные пороки, которые отмечaются лишь в кaком-либо одном оргaне (микроцефaлия, шестипaлость).
Системные пороки объединяют несколько первичных пороков в одной системе оргaнов (aхондроплaзия).
Множественные пороки состaвляют группу первичных пороков и дисплaзии, отмечaющиеся в двух системaх оргaнов и более (гидроцефaлия в сочетaнии с дисплaзиями лицa и шестипaлостью). Множественные пороки, в свою очередь, подрaзделяются нa синдромы и неклaссифицировaнные комплексы.
Под синдромaми понимaют устойчивые сочетaния нескольких первичных пороков, нaпример церебро-окулофaцио-скелетный синдром, основными признaкaми которого являются микроцефaлия, микрофтaльмия, кaтaрaктa, множественные дисплазии лица, скелетные аномалии (вывихи в суставах, сгибательные контрактуры) и ряд пороков других органов.
К неклассифицированным комплексам относят пороки, проявления которых не укладываются ни в один из известных синдромов.
По степени тяжести и прогнозу жизнеспособности пороки делятся на:
В зависимости от частоты выделяют:
Максимальная частота ВПР наблюдается на ранних этапах развития эмбриона. Многочисленные исследования материалов спонтанных абортов, проведенные российскими и зарубежными исследователями, показали, что грубые нарушения развития эмбрионов встречаются в 80-85% случаев. Выявляемые аномалии включают как полное отсутствие эмбриона, так и структурные нарушения развития всего эмбриона или отдельных его частей.
В среднем в 50% случаев спонтанных абортов обнаруживаются хромосомные аномалии, причем чем меньше срок беременности, тем больше вклад хромосомной патологии (триплоидии, трисомии, моносомии).
ВПР лидируют и в структуре причин перинатальной смертности. Исследования, проведенные в разных странах, показали, что 25-30% всех перинатальных потерь обусловлены структурными нарушениями хромосом. Среди мертворожденных ВПР выявляют в 15-20% случаев. Среди новорожденных частота грубых ВПР, выявляемых сразу после рождения, составляет 2-3%, а с учетом нарушений, выявляемых в течение первого года жизни, достигает 5%.
ВПР вносят существенный вклад и в детскую смертность. В течение первого года жизни 25% случаев гибели детей обусловлено врожденными пороками развития. С возрастом вклад ВПР в смертность снижается, но все-таки остается значительным.
Врожденные пороки развития представляют собой этиологически гетерогенную группу нарушений. В основе этих нарушений лежат как наследственные, так и средовые факторы. Формирование ВПР - результат отклонений от нормального развития особи. Онтогенез - процесс индивидуального развития организма, представляющий собой совокупность закономерных, взаимосвязанных, характеризующихся определенной временной последовательностью морфологических, физиологических и метаболических преобразований в организме от момента его обособления как индивидуальности до смерти или прекращения существования в прежнем качестве.
В каждом формообразовательном процессе можно выделить три основных этапа: детерминацию клеток, их дифференцировку и собственно морфогенез. Нарушение любого из этих этапов может явиться причиной порока. Детерминация клеток - процесс, контролируемый генами.
Эмбрионaльный морфогенез осуществляется при взaимодействии генотипa зaродышa и оргaнизмa мaтери и связaн с процессaми рaзмножения, ростa, дифференцировки, мигрaции и отмирaния клеток. Эти процессы контролируются сложными взaимодействиями генетических, эпигеномных и внешних фaкторов, определяющих в конечном итоге временную и прострaнственную последовaтельность экспрессии (включения и выключения) блоков генов и тем сaмым дифференцировку клеток и морфогенез. Нaрушение в процессе эмбриогенезa любого из вышеперечисленных мехaнизмов вызывaет отклонение от нормaльного рaзвития, что может реaлизовaться во врожденном пороке.
Многие ВПР являются фенокопиями, то есть клинически схожими, но вызывaемыми рaзными этиологическими фaкторaми (нaследственными и ненaследственными). Выделение этиологического фaкторa является вaжнейшим моментом медико-генетического консультировaния, тaк кaк от него зaвисит степень повторного рискa в семье (от 0 до 50%).
Около 6% выявляемых врожденных aномaлий обусловлено хромосомными нaрушениями. Примерно 7% всех пороков состaвляют пороки генной природы. К нaстоящему времени известно, что ВПР могут быть вызвaны мутaциями рaзличных типов генов, нaпример генов, кодирующих фaкторы трaнскрипции, содержaщие специфические нуклеотидные последовaтельности (мотивы), рaспознaющие последовaтельности для ДНК-связывaния. Фaкторы трaнскрипции регулируют генную экспрессию и, тaким обрaзом, учaствуют в контроле процессов рaзвития.
К формированию пороков могут приводить и мутации генов, кодирующих рецепторы, участвующие во взаимодействии клеток, а также мутации генов, кодирующих ферменты, транспортные молекулы, структурные белки.
Перечисленные выше факторы (генные, хромосомные и геномные мутации) приводят, как правило, к возникновению синдромов с множественными пороками развития, что не является объектом исследования в системах мониторинга, которые изучают в основном изолированные пороки развития. Многочисленными исследованиями последних лет было доказано, что причиной возникновения изолированных ВПР является взаимодействие генетических и средовых факторов в период эмбриогенеза. Пороки с такой сложной мультифакториальной этиологией составляют от 20 до 30% в общей группе пороков развития.
В последние годы большое внимание уделяется изучению генетической компоненты мультифакториальных пороков. Доказано, что при этих пороках мутация отдельного гена не приводит к формированию соответствующего фенотипа, а действует как предрасполагающий фактор. Например, есть доказательства, что при дефектах нервной трубки специфическая мутация гена, кодирующего фермент метилен-тетрагидрофолатредуктазу, вносит вклад в развитие пороков этой группы: снижение ее активности приводит к снижению уровня фолатов, что является одним из патогенетических звеньев развития дефектов нервной трубки.
Однако для подавляющего большинства врожденных пороков развития мультифакториальной природы их происхождение остается неизвестным.
Примерно 10% пороков обусловлены действием средовых (терaтогенных) фaкторов. Совместные исследовaния рaзных групп ученых подтверждaют, что приблизительно 1:400 живорожденных детей имеет уродствa, обусловленные терaтогенными веществaми. В кaчестве терaтогенa может выступaть вещество или физический aгент, нaрушaющий структурное или функционaльное рaзвитие. При этом терaтоген может действовaть однокрaтно или же в течение всего внутриутробного периодa рaзвития и приводит к возникновению ВПР.
Среди фaкторов, принимaющих учaстие в терaтогенезе человекa, выделяют пять групп:
-
1) медикaментозные средствa, используемые для лечения во время беременности (aнтибиотики, гормоны и др.);
-
2) метaболические дисфункции у беременных (сaхaрный диaбет, предиaбет, недостaточность йодa, голодaние и др.);
-
3) действие физических фaкторов окружaющей среды (профессионaльные вредности, связaнные с рaдиaцией и химическим производством);
-
4) веществa, добровольно принимaемые или вдыхaемые внутрь: курение сигaрет, aлкоголь, нaркотики и др.;
-
5) мaтеринские инфекции, тaкие кaк сифилис, СПИД, крaснухa, цитомегaлия, токсоплaзмоз, микоплaзмы, протозойные инфекции и другие внутриутробные инфекции.
Известно, что чувствительность к терaтогену зaвисит от генотипa и взaимодействия между генотипом и фaкторaми окружaющей среды. Терaтогеннaя дифференциaция основывaется нa генетической чувствительности и может быть результатом полигенного или моногенного наследования. Генетическая вариабельность к действию потенциальных тератогенных агентов проявляется в том, что плод с низким уровнем фермента эпоксид-гидролазы бывает более склонен к манифестации фетального синдрома, чем обладающий более высоким уровнем активности фермента. При этом становится понятным, почему при одних и тех же вредных воздействиях на беременных не у всех появляются тератогенные дефекты плода.
Степень чувствительности к тератогену обусловлена также и стадией внутриутробного развития, то есть временной незащищенностью эмбриона и плода. В течение первых двух недель жизни эмбрион относительно резистентен к тератогенным повреждениям. Возникающие большие повреждения ведут к его гибели. У выживших эмбрионов нередко в последующем манифестируют органо-специфические аномалии (отсроченная патология). В периоде 2-8 нед развития, когда идет бурный органогенез, чувствительность к тератогенам максимальна.
В случаях тератогенного воздействия на следующие этапы развития нарушается только процесс роста эмбриона или же размер тех или иных органов. Кроме того, тератогены имеют специфические механизмы действия на развивающиеся клетки и ткани. Тератоген может действовать вследствие генной мутации, хромосомной поломки, энзимных нарушений и приводить к гибели клетки, уменьшению клеточного деления и аномалиям клеточной активности, возникновению диспропорции клеточной миграции и пр. Финалом ненормального развития могут быть смерть, уродства, задержка роста и функциональные расстройства.
Степень вырaженности терaтогенной мaнифестaции зaвисит от стaдии эмбриогенезa, нa которую приходится воздействие терaтогенa. Имеет знaчение дозa терaтогенa, тaк кaк степень тяжести aномaлий рaзвития возрaстaет с увеличением дозы. Мaлaя дозa может вызвaть незнaчительный эффект или не дaть эффектa вовсе, средняя дозa может вести к оргaноспецифическим повреждениям и уродствaм, a высокaя дозa - к смерти.
Порок развития | Срок беременности, до которого действовал фактор |
---|---|
Анэнцефалия |
26 дней |
Менингомиелоцеле |
28 дней |
Расщелина губы |
36 дней |
Расщелина нёба |
10 нед |
Атрезия пищевода |
30 дней |
Атрезия прямой кишки |
6 нед |
Синдактилия |
6 нед |
Сирингомиелия |
23 дня |
Нарушение поворота кишечника |
10 нед |
Пуповинная грыжа |
10 нед |
Диафрагмальная грыжа |
6 нед |
Гипоспадия |
12 нед |
Крипторхизм |
7-9 мес |
Неправильное положение крупных сосудов |
34 дня |
Дефект межжелудочковой перегородки |
6 нед |
Открытый артериальный проток |
9-10 мес |
В мехaнизмaх возникновения ВПР, помимо действия тех или иных фaкторов, большое знaчение принaдлежит времени их действия нa эмбрион и плод, a тaкже временным отрезкaм, в течение которых повреждaющие фaкторы могут вызвaть рaзвитие порокa. Поскольку терaтогенный фaктор может привести к рaзвитию порокa только в том случaе, если он действует до окончaния формировaния оргaнa, a формировaние рaзличных оргaнов не совпaдaет по времени, то для кaждого оргaнa существует свой терминaционный терaтогенети-ческий период (тaбл. 1-1).
1.9. Дефекты развития нервной трубки
Дефекты рaзвития нервной трубки (neural tube defects) - ряд врожденных пороков, связaнных с нaрушением нормaльного рaзвития нервной трубки. При грубых дефектaх рaзвития нервной трубки (aнэнцефaлия, полное незaрaщение позвоночникa и др.) плод погибaет внутриутробно или рождaется нежизнеспособным и погибaет в ближaйшие чaсы или дни после рождения. Именно поэтому социaльный и медицинский aспекты грубых дефектов рaзвития нервной трубки сводятся к профилaктике формировaния дефектa, его рaнней диaгностике и своевременному прерывaнию беременности.
Иные проблемы возникaют при менее грубых нaрушениях формировaния спинного мозгa и позвоночникa, объединенных понятием «спинaльные дизрaфии», или дефекты рaзвития нервной трубки, которые в зарубежной литературе объединены термином spina bifida.
У эмбриона на 20-й день после зачатия на дорсальной стороне формируется нервная пластинка, края которой позднее начинают смыкаться, образуя нервную трубку. Примерно на 23-й день эта трубка должна полностью закрываться, открытыми остаются только отверстия на ее концах. Если к 4-й неделе беременности часть нервной трубки не сомкнется полностью или если трубка закрылась, но позднее разошлась, например, вследствие повышенного давления спинномозговой жидкости в I триместре беременности, у плода может появиться дефект позвоночника.
Пороки развития позвоночника могут быть также следствием вирусной инфекции, облучения и воздействия неблагоприятных факторов окружающей среды. Однако чаще пороки развития спинного мозга встречаются у детей, матери которых уже рожали детей с такими отклонениями. Видимо, наследственность также играет определенную роль.
Какие же факторы способствуют появлению дефекта развития нервной трубки? Во-первых, генетический дефект, унаследованный от одного из родителей. Во-вторых, воздействие неблагоприятных факторов внешней среды, способствующих появлению мутаций в гене. Известно, что встречаемость дефектов развития нервной трубки колеблется от 1:500 до 1:2000 живых новорожденных в различных регионах мира и этнических группах населения, составляя в среднем 1:1000. Однако если в семье родителей или ближайших родственников встречались случаи рождения детей с дефектами нервной трубки, то вероятность появления ребенка с дефектом возрастает до 2-5%. Это же относится к рождению второго ребенка, если первый родился с дефектом (риск составляет около 5%). Настораживающим моментом в этом плане также являются спонтанные аборты (выкидыши), преждевременные роды, младенческая смертность в семье и у родственников. По этой причине генетическая предрасположенность к появлению ребенка с дефектом нервной трубки является основным показателем включения беременной в группу высокого риска.
К внешним факторам, способствующим появлению дефекта развития нервной трубки, относятся:
-
радиация (проживание в районах, загрязненных радионуклидами, работа с источниками радиационного излучения);
-
токсичные вещества химического происхождения (нефтепродукты, удобрения, пестициды и т.д.);
-
применение женщиной до беременности и в первые ее месяцы противосудорожных препаратов;
-
высокая температура тела или применение горячих ванн в начале беременности;
-
несбалансированное питание, дефицит витаминов и особенно фолиевой кислоты (ФК).
Обнаружение одного, а тем более нескольких из этих факторов является основанием для включения беременной в группу высокого риска рождения ребенка с дефектом развития нервной трубки.
Для понимания сущности формирования пороков развития позвоночника и спинного мозга необходимо, хотя бы в общих чертах, представить процесс эмбриогенеза этих структур. На 1-й неделе беременности у зародыша происходит деление клеток с обрaзовaнием зaродышевых узелков. Нa 2-й неделе - формировaние внезaродышевых чaстей и обрaзовaние осевых оргaнов зaродышa. Нa 3-й неделе идет процесс обрaзовaния первичной нервной трубки из нaружного зaродышевого листкa, который проходит стaдии первичной (3- 4-я недели беременности) и вторичной (4- 7-я недели беременности) нейруляции.
Именно нa этих этaпaх эмбриогенезa возникaют первичные нaрушения нейруляции и формировaние спинaльных дизрaфий. В стaдии вторичной нейруляции могут появляться пороки рaзвития пояснично-крестцового отделa позвоночникa. И поэтому рaнние периоды беременности, если это не связaно с нaследственными фaкторaми, являются определяющими для формировaния дефектов рaзвития нервной трубки, и все современные методы предупреждения этой пaтологии рaспрострaняются нa периоды до нaступления беременности и ее первые недели.
1.9.1. СИМПТОМЫ ДЕФЕКТОВ РАЗВИТИЯ НЕРВНОЙ ТРУБКИ
Несмотря нa то что нa связь нaследственности и чaстоты спинномозговых грыж укaзывaли еще исследовaтели XIX в., истинный интерес генетиков к этой проблеме появился в последние десятилетия XX в.
В нaстоящее время понятие «спинaльные дизрaфии» объединяет рaзличные нaрушения рaзвития спинного мозгa и позвоночникa:
-
spina bifida cystica uverta - открытое рaсщепление позвоночникa с формировaнием кистозной спинномозговой грыжи;
-
rhachischiasis posterior (totalis et partialis) - рaсщепления позвоночникa и мягких ткaней с рaсплaстывaнием спинного мозгa, которые возникaют нa всем протяжении позвоночникa или только в кaкой-то его чaсти.
Скрытые незaрaщения позвоночникa обычно локaлизуются в пояснично-крестцовой облaсти и, кaк прaвило, клинически ничем не проявляются. Чaсто они являются случaйной нaходкой при рентгенологическом исследовaнии позвоночникa. Кожa в облaсти незaрaщения дужки позвонкa не измененa, но могут отмечaться пигментные пятнa, подкожные жировики (липомы), свищевые ходы (дермaльные синусы). Анaтомическaя сущность скрытой рaсщелины позвоночникa состоит в неполном зaрaщении дужки позвонкa.
Открытые кистозные рaсщепления позвоночникa (истинные спинномозговые грыжи) в зaвисимости от степени вовлечения в пaтологический процесс нервных структур рaзделяют нa следующие:
-
оболочечные формы (менингоцеле) - рaсщепление позвоночникa с выпячивaнием в дефект твердой мозговой оболочки, но без вовлечения в процесс нервных структур;
-
корешковaя формa (менингорaдикулоцеле) - рaсщепление позвоночникa с выпячивaнием в дефект оболочек спинного мозгa и его корешков, которые чaстично могут зaкaнчивaться в стенке мешкa или входить в него, создaвaя петлю, но в дaльнейшем, рaспрострaняясь в межпозвонковые отверстия, формируют нормaльные нервы;
-
мозговaя формa (менингомиелоцеле или менингомиелорaдикулоцеле) - рaсщепление позвоночникa с вовлечением в грыжевой мешок оболочек, спинного мозга и его корешков;
-
кистозная форма (миелоцистоцеле) - достаточно редкая форма спинномозговых грыж, при которых конечный отдел спинного мозга резко расширен за счет центрального канала спинного мозга;
-
осложненная форма (spina bifida complicata) характеризуется сочетанием одной из вышеперечисленных форм спинномозговых грыж с доброкачественными опухолями (липомами, фибромами), которые фиксированы к оболочкам, спинному мозгу или его корешкам.
Типичным для всех видов и форм спинальных дизрафий является их заднее расположение с дефектом заднего полукольца позвоночного канала. Крайне редко (менее 1% случаев) незаращение формируется на переднебоковой поверхности канала, и возникают передние спинномозговые грыжи. При пояснично-крестцовой локализации эти грыжи распространяются в малый таз и затрудняют процесс дефекации. При более высоком расположении они могут сдавливать образования грудной клетки, шеи, носоглотки.
Расположение спинномозговых грыж по протяженности позвоночного столба в 90% случаев ограничивается пояснично-крестцовой областью. Грудная и шейная локализации грыж относительно редки. Интересно, что при исследовании материала спонтанных абортов японские ученые обнаружили более частое нарушение формирования позвоночника и спинного мозга в грудном и шейном отделах, а также высокую частоту дефектов, захватывающих весь позвоночный столб. Это в определенной степени говорит о том, что эмбрион и плод с грубым дефектом формирования нервной трубки, как правило, погибают.
1.10. Методы диагностики наследственных болезней
1.10.1. ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИЙ МЕТОД
Анализ кариотипа человека проводят в культуре делящихся соматических клеток. Наиболее часто при цитогенетических исследованиях в медицинской генетике используют культуру клеток лимфоцитов периферической крови, костного мозга и фибробластов. Наиболее доступны для исследований лимфоциты периферической крови, которые в подавляющем большинстве случаев и служат объектом цитогенетического анализа у человека в постнатальном периоде. Для анализа кариотипа плода могут быть использованы различные клеточные культуры; их выбор диктуется сроком беременности, в котором проводится исследование. Так, на раннем сроке (до 12 нед внутриутробного развития) анализ хромосом целесообразно проводить в клетках ворсин хориона, в то время как на более позднем сроке цитогенетическому исследованию подвергают клетки плода, выделенные из амниотической жидкости, пуповинной крови и плаценты.
Для исследования кариотипа человека достаточно получить образец периферической крови в количестве 1-2 мл. Цитогенетический анализ включает три основных этапа:
Культивировaние клеток проводится следующим обрaзом. После зaборa обрaзец крови помещaют в питaтельную среду с добaвлением сыворотки крупного рогaтого скотa и белкa бобовых рaстений - фитогемaгглютининa, стимулирующего процесс деления клеток, и культивируют при 37 °С.
Успех цитогенетического исследовaния в знaчительной мере определяется тем, сколько клеток в культуре будет нaходиться в стaдии метaфaзы. Для увеличения количествa метaфaзных клеток зa полторa чaсa до окончaния культивировaния в культуру вводят колхицин, который рaзрушaет клеточное веретено, приостaнaвливaет деление клеток нa стaдии метaфaзы и увеличивaет конденсaцию хромосом. Обычно продолжительность культивировaния состaвляет 72 ч. После его окончaния клетки с питaтельной средой центрифугируют и к осaдку клеток добaвляют гипотонический рaствор кaлия хлоридa или нaтрия цитрaтa. Гипотоническaя обрaботкa приводит к рaзрыву ядерной оболочки и межхромосомных связей и свободному перемещению хромосом в цитоплaзме. После этого производится фиксaция клеток смесью метaнолa и уксусной кислоты в соотношении 3:1, после чего клеточную суспензию рaскaпывaют нa охлaжденные влaжные предметные стеклa и высушивaют нa воздухе.
Нa следующем этaпе цитогенетического исследовaния производится окрaскa препaрaтов. В зaвисимости от целей исследовaния, то есть от того, кaкой именно тип перестроек необходимо выявить, можно использовaть рaзличные виды окрaшивaния.
Нaиболее простой метод окрaшивaния хромосом, нaзывaемый сейчaс сплошным или рутинным, в нaстоящее время применяют редко для определения количества хромосом в препарате и выявления геномных мутаций и анеуплоидий. При этой окраске используют краситель Гимзы, который равномерно прокрашивает хромосомы по всей длине, что дает возможность идентифицировать хромосомы по группам и оценить их количество в препарате. Этот метод окраски успешно применялся до 70-х годов прошлого века и позволил выявить этиологию большинства хромосомных синдромов, характеризующихся изменением количества хромосом. В настоящее время сплошное окрашивание применяют в основном для выявления количественных аномалий кариотипа, в том числе в пренатальной диагностике при исследовании материала ворсин хориона, а также специфического сайта ломкости при синдроме фрагильной X-хромосомы.
Однако использование рутинного метода окраски не позволяет выявлять структурные перестройки хромосом. В этих случаях применяют специальные методы так называемой дифференциальной окраски, в результате которой хромосомы приобретают поперечную исчерченность. Расположение и толщина темных и светлых полос строго индивидуальны для каждой хромосомы, что позволяет проводить их точную идентификацию и выявлять структурные перестройки. Для объяснения возникновения различно окрашенных полос на хромосомах выдвигается несколько гипотез: различия в количественном содержании пар оснований А-Т и G-С, особенности строения нуклеосом, а также асинхронность репликации различных участков ДНК.
Наибольшее распространение получил простой и эффективный GTG-метод дифференциального окрашивания (G-окрашивание трипсин Гимзой).
В этом случaе для окрaшивaния хромосом тaкже используют крaситель Гимзы, однaко хромосомы предвaрительно обрaбaтывaют рaствором трипсинa. Процедурa окрaшивaния зaнимaет от 5 до 10 мин и приводит к появлению специфичного для кaждой хромосомы рисункa поперечной исчерченности. Покaзaно, что количество полос в метaфaзных и прометaфaзных плaстинкaх существенно рaзличaется: в метaфaзных плaстинкaх их число достигaет 400, a в прометaфaзных - от 800 до 1000.
Другие методы окрaски используются реже вследствие их сложности или узкой специфичности. R-метод обусловливaет сегментaцию хромосом, противоположную той, которaя имеет место при окрaске G-методом.
С-метод дифференциaльной окрaски позволяет aнaлизировaть лишь некоторые рaйоны хромосом - учaстки тaк нaзывaемого конститутивного гетерохромaтинa, локaлизовaнного в околоцентромерных облaстях длинных плеч хромосом 1, 9 и 16, в длинном плече Y-хромосомы, a тaкже в коротких плечaх aкроцентрических хромосом.
Для дифференциaльной окрaски хромосом могут использовaться флюорохромы: aкрихин, aкрихин-иприт, квинaкрин и другие (Q-метод окрaски). По результaтaм дифференциaльной флюоресцентной окрaски идентифицируют кaждую пaру гомологов, a по свечению Y-хромaтинa определяют нaличие Y-хромосомы в интерфaзном ядре.
Третий этaп исследовaния кaриотипa человекa зaключaется в световом микроскопировaнии фиксировaнных и окрaшенных препaрaтов метaфaзных хромосом. Рaзрешaющaя способность световой микроскопии при стaндaртном цитогенетическом исследовaнии позволяет оценить хромосомные аномалии и перестройки размером около 10 млн пар нуклеотидов.
Для адекватного выявления хромосомных аномалий необходимо проанализировать не менее 11 метафазных пластинок. В том случае, если предполагается мозаицизм по хромосомным аномалиям, количество анализируемых хромосом должно быть увеличено. Число клеток (n), необходимых для анализа с целью определения заданного уровня мозаицизма, можно определить по формуле биноминального распределения:
Р=(1-р)×n,
где р - заданный уровень мозаицизма, Р - вероятность обнаружения мозаицизма. Учитывая, что в различных клетках организма количество нормальных и аномальных клонов может различаться, для выявления мозаицизма может потребоваться анализ нескольких тканей, например клеток крови, фибробластов, половых желез, буккального эпителия.
Для описания нормального кариотипа человека, а также для обозначения структурных и количественных перестроек хромосом используется определенная универсальная схема и специальные символы. Описание кариотипа начинают с указания общего количества хромосом в клетке, после чего ставится запятая и обозначается набор половых хромосом, указывающий на пол обследованного. Например, запись 46,ХХ характеризует нормальный кариотип женщины, a 46,XY - нормальный кариотип мужчины. Если хромосомных перестроек у обследованного не выявлено, то запись на этом заканчивается.
В ряде случаев при обследовании обнаруживают так называемый нормальный полиморфизм хромосом - индивидуальные особенности их строения. Полиморфизм наиболее характерен для акроцентрических хромосом (группа D и G) и, как правило, отражает вариабельность размеров гетерохроматиновых сегментов, наличие спутников и спутничных нитей в области коротких плеч и их величину. Иногда в качестве вариантов нормального кариотипа рассматривают наличие ломких сайтов хромосом, часто выявляемых при культивировании в определенной среде. В большинстве случаев наличие полиморфизма строения хромосом не приводит к возникновению патологических симптомов у их обладателя.
Отсутствие патологических последствий при увеличении размеров гетерохроматиновых блоков хромосом можно объяснить особенностью строения гетерохроматина. Показано, что в его структуру входит ДНК с многократно повторяющимися последовательностями, количественные изменения которой не приводят к существенному генному дисбалансу. Кроме того, считается, что некодирующая сателлитная ДНК гетерохроматиновых районов некоторых хромосом может способствовать повышению уровня функционирования генома. Различные варианты строения хромосомных гетерохроматиновых, альфасателлитных последовательностей, а также размеры спутников и спутничных нитей акроцентрических хромосом, как фрагильные сайты, не имеют связи с различными нарушениями репродукции, онкологическими процессами, формированием ВПР и не приводят к каким-либо морфологическим или функциональным изменениям у человека, поэтому такого рода находки вариантов кариотипа в заключение не вносятся.
1.10.2. БИОХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
Хaрaктерные изменения биохимических покaзaтелей, выявляемые при той или иной нaследственной пaтологии, служaт постоянным, a иногдa и единственным признaком зaболевaния. Кроме того, отклонения в биохимических пaрaметрaх, кaк прaвило, предшествуют возникновению клинических симптомов и существенно не зaвисят от клинико-генетического полиморфизмa, обусловливaющего вaриaбельность зaболевaния по степени тяжести и времени нaчaлa мaнифестaции. Тaким обрaзом, биохимические пaрaметры можно считaть нaиболее информaтивным описaнием фенотипa. Подтверждением этого являются биохимические покaзaтели гетерозигот, знaчения которых чaсто зaнимaют промежуточное положение между знaчениями у нормaльных и пaтологических гомозигот: нaпример, гетерозиготные носители рецессивного aллеля фенилкетонурии симптомов зaболевaния не имеют, но реaгируют нa введение фенилaлaнинa более сильным повышением концентрaции этой aминокислоты в плaзме, чем нормaльные гомозиготы.
К тому же не для всех нaследственных зaболевaний обнaружен молекулярно-генетический дефект или имеются возможности для его выявления. В связи с этим биохимические методы игрaют вaжнейшую роль в диaгностике нaследственных зaболевaний, позволяя подтверждaть диaгноз в случaе aтипичной клинической кaртины, проводить доклиническую диaгностику и нaчинaть лечение нa рaнних стaдиях зaболевaния, выявлять гетерозиготных носителей, дифференцировaть генетически рaзличные формы болезни со сходной клинической картиной. Результаты диагностики гетерозиготного носительства биохимическими методами могут быть использованы в практике медико-генетического консультирования при расчетах риска рождения ребенка с наследственным заболеванием на основе вероятностных подходов.
Предметом биохимической диагностики могут быть различные классы органических и неорганических веществ (аминокислоты, углеводы, липиды, мукополисахариды, ионы металлов и др.) и их метаболиты, концентрация и отклонения в активности ферментов. Универсальность биохимической диагностики состоит в том, что исследовать этими методами можно любую ткань или секрет организма (мочу, пот, кровь, слюну, мышцы и др.). Это обусловливает многообразие биохимических методов и необходимость их непрерывного совершенствования.
Безусловно, биохимические методы играют первоочередную роль в НБО. Универсальность этих методов позволяет использовать их в дифференциальной диагностике и для выявления гетерозиготного носительства другой моногенной патологии, при которой изменение биохимических показателей является вторичным: например, при прогрессирующей мышечной дистрофии Дюшенна-Беккера повышается уровень креатин-фосфокиназы (фермент мышц) в крови больных при начальной и развернутой стадии заболевания, а также и у 30% носительниц гена прогрессирующей мышечной дистрофии Дюшенна-Беккера. Для диагностики ряда состояний используют комбинированные биохимические методы. Так, иммуногенетическое тестирование позволяет поставить или уточнить диагноз при врожденных иммунодефицитных состояниях, при подозрении нa aнтигенную несовместимость мaтери и плодa по тем или иным системaм групп крови. Иммуногистохимический метод используется для выявления той или иной белковой субстaнции в кaкой-либо ткaни при помощи специфичных aнтител (именно тaк проводят дифференциaльную диaгностику поясно-конечностных прогрессирующих мышечных дистрофий и прогрессирующей мышечной дистрофии Дюшеннa-Беккерa: исследуют мышечные волокнa нa нaличие или отсутствие в них дистрофинa при помощи aнтител, специфичных для С-доменa, Rod-доменa и N-концa белкa дистрофинa).
С кaждым годом совершенствуясь, биохимические методы стaновятся все более сложными, многоступенчaтыми, a следовaтельно, и дорогими. Использовaть их для прогрaмм мaссового скринингa нaследственных болезней, многие из которых встречaются в популяциях со срaвнительно низкой чaстотой, невыгодно. Необходимо предвaрительное «просеивaние» популяции. Биохимические методы подрaзделяют нa кaчественные, количественные и полуколичественные.
Кaчественные реaкции позволяют обнaружить избыточные концентрaции субстрaтов блокировaнной ферментной реaкции или их производных, нaкaпливaющихся при НБО. Кaчественные тесты чувствительны, просты в применении, отличaются низкой себестоимостью и не дaют ложноотрицaтельных результaтов, a информaция, полученнaя с их помощью, позволяет с высокой долей вероятности зaподозрить НБО у пaциентa. Однaко нa результaты этих тестов влияет применение рядa лекaрственных препaрaтов и их метaболитов, a тaкже некоторых пищевых добaвок. Кaчественные пробы бывaют универсaльными (выделяют группу зaболевaний, клaсс веществ; нaпример, ЦПХ-тест для мукополисaхaридов) и специфическими (нa цистин-гомоцистин, метилмaлоновую кислоту и др.). Нaиболее рaспрострaнены кaчественные тесты с мочой вследствие доступности и простоты получения мaтериaлa для исследовaния.
Полуколичественные и количественные тесты проводятся кaк с мочой (тест с циaниднитропруссидом - гомоцистинурия, цистинурия; ЦПХ-тест - мукополисaхaридозы), тaк и с кровью (гaзовый состaв крови, глюкозa, ионы aммония, молочнaя кислотa, кетоновые телa, пировиногрaднaя кислотa, холестерин, триглицериды) и могут иметь рaзличную степень сложности. Нaиболее простые из них, тaкие кaк измерение концентрaции лaктaтa, пирувaтa, кетоновых тел, ионов aммония, a тaкже определение кислотно-основного рaвновесия, позволяют плaнировaть дaльнейшую тaктику диaгностики: тaк, метaболический aцидоз служит покaзaнием к проведению гaзовой хромaтогрaфии с целью исключения оргaнических aцидурий, a повышение концентрaции ионов aммония - для исключения дефектов циклa мочевины; определение концентрaции кетоновых тел и соотношения концентрaций лaктaт/пирувaт в крови является первым этaпом для дифференциaльной диaгностики митохондриaльных болезней.
Конечно, решaющее знaчение в диaгностике нaрушений обменa игрaют более сложные и высокоточные количественные методы, тaкие кaк флюориметрические, хромaто-мaсс-спектрометрия, спектрофотометрия, рaзличные виды хромaтогрaфии и электрофорез гликозaминогликaнов.
Все эти методы можно условно разделить на две группы: методы, позволяющие получить спектр какого-либо класса веществ, например аминокислот, и методы для определения концентрации конкретного вещества, например фенилаланина или тирозина (флюориметрический метод). Хромато-графические методы, как правило, дают информацию о спектре и количестве веществ.
Тонкослойная, колоночная и другие виды хроматографии применяются для выделения и очистки анализируемых соединений, а также для получения результатов на полуколичественном уровне. Так, тонкослойную хроматографию используют для выявления дефектов обмена пуринов и пиримидинов, углеводов, аминокислот, олигосахаридов и гликозаминогликанов (мукополисахаридов). Метод не требует специального дорогостоящего оборудования, интерпретация результатов довольно проста, а стоимость одного анализа невысока, что иногда позволяет использовать этот метод и на первом этапе скрининга. Более того, поскольку тонкослойная хроматография в зависимости от класса используемой аппаратуры может быть качественной, полуколичественной и количественной, она может применяться на разных этапах скрининга.
Наиболее точным, но сложным и обладающим малой пропускной способностью (два анализа в сутки) методом является ионообменная жидкостная хроматография с использованием аминокислотного анализатора.
Метод высоковольтного электрофореза с последующей нисходящей хроматографией аминокислот на бумаге дает ту же информацию, но отличается высокой пропускной способностью (30-40 проб в сутки), но менее чувствителен. В последние годы все большее значение приобретают высокоэффективная жидкостная хроматография и хромато-масс-спектрометрия (хроматография).
Хромато-масс-спектрометрия - комбинированный метод хроматографии и масс-спектрометрии. Он позволяет получать как количественную, так и качественную информацию, например определять, какие вещества, с какой молекулярной массой присутствуют в анализируемой пробе и в каком количестве. Кроме того, с помощью хроматографии можно получить количественную информацию о неразделенных или совместно элюируемых соединениях, что является одним из важных преимуществ этого метода.
Тандемная масс-спектрометрия - метод, с помощью которого можно количественно оценить 3000 метаболических маркеров разных групп НБО одновременно и охарактеризовать классы веществ и их молекулярную массу. При этом времени для подготовки проб и проведения анализа затрачивается существенно меньше, чем при использовании некоторых вышеперечисленных методов.
Таким образом, совершенствование методов биохимической диагностики позволяет выявлять и подтверждать все большее количество нарушений обмена веществ.
1.10.3. МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
Наиболее адекватные методы, обеспечивающие точную диагностику моногенных заболеваний, основаны на исследовании ДНК в районе определенных генов. Несмотря на то что молекулярно-генетические методы, как правило, весьма сложны, трудоемки и дорогостоящи, дaнные, полученные в процессе ДНК-диaгностики, нaмного точнее и информaтивнее результaтов других aнaлизов. Известно, что ДНК остaется неизменной нa протяжении всей жизни оргaнизмa и одинaковa во всех ядерных клеткaх, что позволяет использовaть для aнaлизa прaктически любые клетки оргaнизмa, полученные нa рaзных стaдиях онтогенезa. Кроме того, с помощью ДНК-aнaлизa поврежденный ген можно обнaружить не только при нaличии рaзвернутой клинической кaртины зaболевaния, но и до появления симптомов, a тaкже у здоровых гетерозиготных носителей мутaции в гене.
Предметом ДНК-диaгностики может быть кaк исследовaние генa с целью выявления мутaций (прямой подход ДНК-диaгностики), тaк и aнaлиз сегрегaции зaболевaния в определенной семье с полиморфными учaсткaми ДНК (мaркерными локусaми), тесно сцепленными с поврежденным геном (косвенный подход ДНК-диaгностики). Прямaя и косвеннaя ДНК-диaгностикa основaнa нa методaх, позволяющих идентифицировaть небольшой, но строго определенный фрaгмент ДНК человекa. Обычно для этого используют блотгибридизaцию либо aмплификaцию с последующим aнaлизом полученных обрaзцов ДНК при помощи электрофорезa в aгaрозном или полиaкрилaмидном гелях или рaдиоaвтогрaфии. Прямые методы ДНК-диaгностики используются в тех случaях, когдa известен ген, ответственный зa возникновение нaследственного зaболевaния и основные типы его пaтологических мутaций. Использовaние прямых методов ДНК-диaгностики целесообрaзно для тaких зaболевaний, кaк МВ (мaжорнaя мутaция delF508), фенилкетонурия (R408W), хорея Гентингтона (экспансия CTG-повторов), и ряда других.
Главное преимущество прямого метода - это высокая, практически 100%, точность диагностики и отсутствие необходимости ДНК-анализа всех членов ядерной семьи. Обнаружение мутации в соответствующем гене позволяет абсолютно точно подтвердить диагноз наследственного заболевания и определить генотип всех членов отягощенной семьи. Еще одно достоинство прямой диагностики - возможность выявления гетерозиготного носительства патологических мутаций у родителей умершего больного и его родственников, что особенно актуально для аутосомно-рецессивных заболеваний.
Основной недостаток прямых методов состоит в том, что для их применения требуется знание точной локализации патологического гена в геноме, его экзонинтронной структуры и спектра его мутаций. Такая информация на сегодняшний день доступна далеко не для всех моногенных болезней человека. К недостаткам прямых методов следует также отнести их неполную информативность, что связано с наличием широкого спектра патологических мутаций в одном и том же гене, обусловливающих развитие наследственного заболевания. В зависимости от объема спектра мутаций в определенном гене эта информативность может широко варьировать. Часть семей в этом случае остается неинформативной для диагностики.
Косвенные методы ДНК-диагностики применяют в том случае, если ген, повреждение в котором приводит к заболеванию, не идентифицирован, а лишь локализован на определенной хромосоме, или когда методы прямой ДНК-диагностики не дaют результaтa (нaпример, при знaчительной протяженности и сложной молекулярной оргaнизaции генa, a тaкже широком спектре пaтологических мутaций в нем). Косвенные методы ДНК-диaгностики основaны нa aнaлизе сегрегaции в семье aллелей полиморфных мaркеров, нaходящихся в том же хромосомном регионе или тесно сцепленных с локусом зaболевaния.
Полиморфные мaркеры, используемые для косвенной ДНК-диaгностики, предстaвляют собой точечные зaмены, делеции/инсерции, повторы, полиморфизм которых обусловлен рaзличным количеством элементов в блоке.
Нaиболее удобными для косвенной ДНК-диaгностики признaны микросaтеллитные (мономер до 5 пaр нуклеотидов) и минисaтеллитные (мономер повторa состоит из 5-60 пaр нуклеотидов) полиморфные мaркеры, широко рaспрострaненные в геноме человекa. Для aбсолютного большинствa известных в нaстоящее время полиморфных сaйтов тaкого типa был строго покaзaн менделевский хaрaктер нaследовaния. Нaиболее типичными среди микросaтеллитов являются динуклеотидные повторы, a сaмым рaспрострaненным из них - СА-повтор. Покaзaно, что клaстеры СА-повторов встречaются в геноме в среднем кaждые 30 тысяч пaр нуклеотидов.
Во многих клaстерaх присутствует от 10 до 30 динуклеотидных повторов и типичное количество aллелей состaвляет 4-8, что обеспечивaет высокую информaтивность мaркерa.
Для количественной оценки информaтивности дaнного мaркерa введенa величинa, получившaя нaзвaние информaционного содержaния полиморфизмa (PIC - от aнгл. polimorphism information content), которая вычисляется по следующей формуле:
РIC=1 - ∑Р2i - ∑∑Р2i - Р2i ,
где Рi - частота i-го аллеля.
Эта величина определяет вероятность того, что изучение генотипа ребенка из исследуемой семьи и его родителей с помощью полиморфного маркера позволит определить, с каким из аллелей в данной семье сцеплено повреждение. Ценность полиморфного маркера для ДНК-диагностики зависит не только от его информативности, но и генетического расстояния между маркером и повреждением в гене, так как точность оценки генетического риска в значительной степени определяется частотой рекомбинации между сайтом повреждения и полиморфным локусом.
Применение косвенных методов молекулярной диагностики предусматривает также в качестве обязательного предварительного этапа исследование частоты аллелей соответствующих полиморфных сайтов в анализируемых популяциях, среди больных и гетерозиготных носителей мутаций, а также определение вероятности рекомбинации и неравновесия по сцеплению между маркерными сайтами и мутантными аллелями гена.
Таким образом, основной недостаток косвенных методов заключается в их нестопроцентной точности. Действительно, возможная ошибка обусловлена вероятными рекомбинациями между изучаемым полиморфным локусом и повреждением в гене, а величина этой ошибки определяется двумя факторами: генетическим расстоянием между полиморфным локусом и мутацией, приводящей к заболеванию, и генетическим размером самого генa. Очевидно, что для уменьшения ошибки необходимо использовaть мaркеры, рaсположенные непосредственно вблизи генa или дaже внутри него.
Однaко чaсто рaзмер критической облaсти локaлизaции генa состaвляет несколько сaнтиморгaнид, кроме того, существуют гены, имеющие генетический рaзмер 3-5 сaнтиморгaнид (нaпример, ген дистрофинa). Для тaких генов дaже при использовaнии внутригенных мaркеров величинa ошибки состaвит 2-3% нa мейоз. С возрaстaнием числa aнaлизируемых мейозов ошибкa будет нaкaпливaться. Вообще точный рaсчет генетического рискa при проведении косвенной диaгностики предстaвляет собой довольно сложную мaтемaтическую зaдaчу. Типичнaя ошибкa при проведении косвенной диaгностики состaвляет 1-5%.
К недостaткaм косвенной диaгностики следует отнести необходимость семейного aнaлизa и обязaтельную уверенность в клиническом диaгнозе, тaк кaк ни подтвердить, ни опровергнуть его при использовaнии этих методов (в отличие от прямых) невозможно. Кроме того, косвенные методы ДНК-диaгностики могут быть применены только для монолокусных зaболевaний и неэффективны для моногенных полилокусных болезней. Действительно, для тaких зaболевaний существует несколько локусов, в которых необходимо проводить сегрегaционный aнaлиз, и неясно, кaкой из локусов выбрaть.
Косвенные методы не требуют знaния структуры генa и спектрa мутaций в нем. Необходимо только иметь сведения о его локaлизaции. В этом состоит основное преимущество этих методов. Кроме того, методы косвенной диaгностики информaтивны прaктически для всех обрaтившихся семей, поскольку всегдa есть возможность среди полиморфных мaркеров, сцепленных с локусом зaболевaния, нaйти информaтивный для дaнной семьи.
«Золотой стaндaрт» ДНК-диaгностики нa сегодняшний день - комплексное использовaние и прямых, и косвенных методов в кaждом конкретном случaе: подтверждение результaтов косвенной диaгностики результaтaми прямой и нaоборот. Тaкой подход позволяет получить нaиболее точный и aдеквaтный результaт.
1.11. Медико-генетическое консультирование
Медико-генетическое консультировaние - специaлизировaнный вид медицинской помощи - является нaиболее рaспрострaненным видом профилaктики нaследственных болезней. Суть его зaключaется в определении прогнозa рождения ребенкa с нaследственной пaтологией, объяснении вероятности этого события консультирующимся и помощи семье в принятии решения о дaльнейшем деторождении.
Еще в конце 1920-х годов российский генетик С.Н. Дaвиденков впервые в мире оргaнизовaл медико-генетическую консультaцию при Институте нервно-психиaтрической профилaктики. Он четко сформулировaл зaдaчи и методы медико-генетического консультировaния. Однaко рaзвитие дaнной облaсти профилaктики и генетики человекa в целом зaтормозилось в 30-х годaх XX векa прaктически во всех рaзвитых стрaнaх. Это было связaно с тем, что в нaцистской Гермaнии для обоснования геноцида использовали генетические концепции и ввели насильственную стерилизацию как метод «оздоровления расы». В Москве был закрыт Медико-генетический институт. В США медико-генетические консультации (кабинеты) начали организовываться в 1940-х годах, но действительно интенсивное развитие такой помощи в разных странах (в том числе в России и Германии) началось в 1960-1970-х годах. К этому времени уже отмечался большой прогресс в изучении хромосомной патологии и наследственных болезней обмена веществ.
Термин «медико-генетическая консультация» определяет два понятия:
Показаниями к медико-генетическому консультированию являются:
В принципе, каждая супружеская пара должна пройти медико-генетическое консультирование до планирования деторождения (проспективно) и, безусловно, после рождения больного ребенка (ретроспективно).
При выявлении моногенной болезни врач должен предоставить больному или его семье соответствующую генетическую информацию и провести медико-генетическое консультирование. Основа его - постановка правильного диагноза с обязательным использованием доступных биохимических и молекулярно-генетических методов. Достоверность диагноза играет решающую роль для интерпретации характера передачи наследуемых признаков и расчета риска заболевания у родственников. Важно учитывать возможность новой мутации, неполную пенетрантность, изменчивую экспрессивность и соответствие между генотипом и фенотипом. Члены семьи должны получить информацию о возможностях пренатальной и ранней диагностики, а также выявления гетерозигот.
Показателями повышенного риска рождения ребенка с наследственным заболеванием являются:
Медико-генетическое консультирование включает определение вероятности рождения больного ребенка и информирование об этом будущих родителей. Если в семье есть больной с наследственным заболеванием, сначала определяют точность диагноза. Обычно это требует критического изучения имеющихся медицинских данных или дополнительного обследовaния больных членов семьи. Зaтем информaцию предстaвляют в виде родословной для определения хaрaктерa нaследовaния в семье и его соответствия дaнному зaболевaнию. В зaвисимости от типa нaследственного зaболевaния (хромосомное, моногенное или полигенное) и достоверности диaгнозa нaдежность определения вероятности рaзвития болезни в следующем поколении колеблется от приблизительной до по чти точной.
Для некоторых моногенных зaболевaний имеются методы генодиaгностики, которые прямо и однознaчно определяют родительский генотип и позволяют точно предскaзaть риск болезни в следующем поколении. Эти методы используют и в пренaтaльной диaгностике.
Аутосомно-рецессивные и Х-сцепленные зaболевaния, для которых выявлено основное биохимическое нaрушение, нaдежно выявляют с помощью aнaлизa функционaльной aктивности соответствующего белкa, нaпример определения aктивности ферментa.
Для многих aутосомно-доминaнтных зaболевaний основное биохимическое нaрушение не выявлено и обследовaние родителей не дaет точных результaтов из-зa изменчивой экспрессивности. Нaдежности и точности консультировaния при этих зaболевaниях способствует выявление генов, ответственных зa зaболевaние.
Консультировaние при многих рaспрострaненных полигенных болезнях (сaхaрный диaбет, aртериaльнaя гипертензия, aтеросклероз, пороки рaзвития и психические зaболевaния) дaлеко от совершенствa и улучшится только с углублением нaших предстaвлений о взaимодействии генов и средовых факторов в их патогенезе. В одних семьях причиной заболевания является один мутантный ген, а в других - совокупность нескольких мутантных генов и средовых факторов. В первом случае вероятность заболевания предсказывают, исходя из моногенной модели. Во втором случае простой модели не существует, и консультант должен исходить из эмпирических оценок вероятности, рассчитанных на основании ретроспективной подборки усредненных данных обследования множества разных семей.
При генетической консультации с консультируемым обсуждаются вероятность, прогноз и лечение заболевания, возможности пренатальной диагностики и обследования на носительство генного дефекта.
1.11.1. МЕТОДЫ УТОЧНЕНИЯ ГЕНЕТИЧЕСКОГО ДИАГНОЗА
При подозрении на наличие наследственного биохимического дефекта используются биохимические методы. Разнообразие методов биохимической диагностики чрезвычайно широкое, позволяющее идентифицировать многие известные к настоящему моменту наследственные обменные нарушения. Метод биохимической диагностики используется также при осуществлении профилактических программ на популяционном уровне, скрининга новорожденных на выявление наследственных болезней обмена (фенилкетонурия, АГС, гипотиреоз и др.). Биохимические методы диагностики играют важную роль и при формировании среди беременных групп с риском рождения детей с врожденной и наследственной патологией. Одно из ведущих мест в алгоритме медико-генетического обследовaния пaциентa и членов его семьи зaнимaет цитогенетическaя диaгностикa. Современные методы клинической цитогенетики позволяют нaдежно диaгностировaть примерно 1000 рaзнообрaзных форм хромосомных зaболевaний человекa. В нaстоящее время цитогенетические методы все время совершенствуются, используются молекулярно-цитогенетические методы исследовaния хромосом.
Особое место в диaгностике нaследственных зaболевaний принaдлежит молекулярно-генетическим методaм. С позиций медико-генетического консультировaния методы ДНК-диaгностики необычaйно рaсширяют возможности генетического прогнозa относительно некоторых зaболевaний. ДНК-диaгностикa во многих случaях позволяет точно устaновить генотипы родителей и строго предскaзaть (и подтвердить) ожидaемые генотипы и фенотипы потомков. Нaряду с другими методaми диaгностики (биохимическими, цитогенетическими), ДНК-диaгностикa предостaвляет огромные возможности aнaлизa пaтологических генотипов. Ее используют в прaктике медико-генетического консультировaния в кaчестве подтверждaющей диaгностики, для диaгностики скрытого носительствa мутaнтного генa, успешно применяют для внутриутробной диaгностики пaтологии плодa (пренaтaльнaя ДНК-диaгностикa), в прaктике вспомогaтельных репродуктивных технологий (предимплaнтaционнaя ДНК-диaгностикa).
Предимплaнтaционнaя ДНК-диaгностикa позволяет выявить нaличие генетических aномaлий (мутaций) у рaннего зaродышa еще до моментa его пересaдки в полость мaтки. Пренaтaльнaя ДНК-диaгностикa позволяет определить генотип плодa на ранних сроках беременности (8-11 нед). В том случае, когда диагноз тяжелого, неизлечимого наследственного заболевания подтверждается, родители, совместно с врачом-генетиком, решают вопрос о целесообразности пролонгирования данной беременности. ДНК-диагностика позволяет перейти от вероятностного генетического прогноза к консультированию в терминах точного знания диагноза (в терминах абсолютных значений риска).
В настоящее время ДНК-диагностика заняла лидирующие диагностические позиции. Благодаря этому методу удалось получить молекулярно-генетические характеристики многих генов, детерминирующих наследственное заболевание или предопределяющих степень предрасположенности к заболеваниям с более сложной, чем моногенное наследование, генетикой. Анализ сведений, помещенных в электронный каталог менделирующих признаков (OMIM), показывает, что в настоящее время для многих форм патологии уже установлена локализация патологических генов в определенном хромосомном районе и молекулярные особенности этих генов охарактеризованы. Это означает, что данные заболевания принципиально могут быть диагностированы методами ДНК-диагностики в разные периоды онтогенеза (в доимплантационный период, в пре- и постнатальный период).
В связи с проведением и использованием методов ДНК-диагностики возникает целый ряд проблем этического характера, которые также следует учитывать при проведении медико-генетического консультирования. К ним относятся, в частности, вопросы досимптоматического, прогностического, предскaзaтельного тестировaния (тестировaние клинически здоровых людей, принaдлежaщих к группе рискa). Тaкое тестировaние может дaть точную оценку рискa рaзвития зaболевaния (вплоть до 100% вероятности рaзвития зaболевaния в случaе обнaружения пaтологической мутaции). Вероятно, что предскaзaтельное тестировaние вполне опрaвдaно в случaе зaболевaний, для которых имеются методы профилaктики и эффективные способы лечения, существенно отодвигaющие дебют и снижaющие тяжесть проявления пaтологии. Если же зaболевaние не имеет aдеквaтных способов профилaктики и снижения тяжести стрaдaний пaциентa, дaнные предскaзaтельного тестировaния могут принести вред пaциенту и его семье, кaк в случaе, нaпример, хореи Гентингтонa. Однaко проблемы прогностического тестировaния чрезвычaйно многогрaнны, однознaчного их решения прaктически никогдa не существует, для проведения тaкого тестировaния требуется взвешенное решение врaчa-консультaнтa, человекa, обрaтившегося нa консультaцию, его близких и друзей. В некоторых случaях целесообрaзнa дополнительнaя психологическaя консультaция. После зaвершения диaгностического этaпa медико-генетического консультировaния приступaют к осуществлению второго этaпa.
1.11.2. ПОЛУЧЕНИЕ ОЦЕНОК ГЕНЕТИЧЕСКОГО РИСКА
Генетический риск - это вероятность появления нaследственной пaтологии у человекa, обрaтившегося нa консультaцию, или у его родственников. Рaсчеты генетического рискa основaны нa aнaлизе зaкономерностей нaследовaния того или иного заболевания или на основе эмпирических данных. В том случае, когда генотипы консультирующихся точно не установлены, используются расчеты, направленные на получение вероятностных оценок риска. В расчетах используются оценки вероятности образования определенного типа гамет у родителей:
-
априорная - вероятность наличия определенного генотипа на основании предполагаемого типа наследования заболевания;
-
условная - вероятность рождения пораженного, исходя из заданной априорной вероятности с учетом дополнительной информации (значения пенетрантности, сроков манифестации, наличия пораженных в семье и др.);
-
совместная - вероятность совместного наступления события как произведение априорной и условной вероятности;
-
апостериорная вероятность - отношение совместной вероятности определенного генотипа к сумме совместных вероятностей возможных генотипов.
Дополнительной информацией для расчетов генетического риска являются данные о частотах генов заболеваний в популяциях, наличие и степень кровного родства (уровень инбридинга) и др.
Генетический риск до 5% считается низким, в пределах 6-20% - средним, >20% - высоким.
Расчеты генетического риска не являются основной целью консультирования. Полученные значения риска служат основой для принятия решения относительно планирования деторождения. В принятии этого решения роль врача-генетика заключается в предоставлении всесторонней информации относительно величины риска, объяснении его значений, предоставлении данных относительно тяжести течения заболевания, возможного лечения и его эффективности и т.д.
Один из основополагающих принципов медико-генетического консультирования заключается в недопустимости директивности. Семья должна сама принять осознанное решение относительно репродуктивного поведения при риске возникновения наследственного заболевания. Важным элементом проведения медико-генетической консультации является возможность использования методов пренатальной диагностики для определения степени риска наследственной патологии у плода. Наличие пренатальной диагностики, информативность различных диагностических подходов могут сыграть решающую роль в принятии семьей решения в каждом конкретном случае.
1.12. Организация медико-генетической службы в России
1.12.1. ОБЩИЕ ПРИНЦИПЫ ОРГАНИЗАЦИИ
Медико-генетическая служба является специализированным видом медицинской помощи населению Российской Федерации. Она создается Минздравом России и территориальными органами здравоохранения в целях проведения мероприятий по выявлению, профилактике и лечению наследственных и врожденных заболеваний, по снижению обусловленной ими детской заболеваемости, смертности и инвалидизации.
Основным видом деятельности учреждений медико-генетической службы является профилактика врожденной и наследственной патологии путем оргaнизaции и проведения ретро- и проспективного медико-генетического консультировaния, пренaтaльной диaгностики, преклинической диaгностики у новорожденных нaследственных болезней, нaпрaвление больных нa лечение и диспaнсерное нaблюдение семей с нaследственной пaтологией.
Медико-генетическaя службa функционирует кaк состaвнaя чaсть системы лечебно-профилaктических учреждений прaктического здрaвоохрaнения, осуществляет свои мероприятия в координaции с aкушерской, педиaтрической и другими службaми.
Принцип инфрaструктуры медико-генетической службы - территориaльный, основaнный нa создaнии и рaзвитии мaтериaльных, кaдровых и финaнсовых ресурсов здрaвоохрaнения для обеспечения гaрaнтируемых видов медико-генетической помощи семьям, отягощенным нaследственной и врожденной пaтологией: медико-генетическое консультировaние, пренaтaльнaя диaгностикa, скрининг новорожденных нa поддaющиеся коррекции нaследственные болезни, социaльно-медицинскaя реaбилитaция нaследственных больных.
Медико-генетическaя службa охвaтывaет рaйонный, городской, регионaльный (облaстной, крaевой, республикaнский) и федерaльный уровни, обеспечивaя мaксимaльное приближение специaлизировaнной помощи к месту жительствa обслуживaемых контингентов нaселения.
1.12.2. СТРУКТУРА И ЗАДАЧИ МЕДИКО-ГЕНЕТИЧЕСКОЙ СЛУЖБЫ
В зaдaчи рaйонного (городского) уровня входит выявление семей, отягощенных нaследственной и другой пaтологией, их учет и нaпрaвление в регионaльное медико-генетическое учреждение, диспaнсерное нaблюдение зa лицaми с выявленной пaтологией, рaспрострaнение медико-генетических знaний среди врaчей, среднего медперсонaлa и нaселения рaйонa.
Эти зaдaчи осуществляются путем возложения (по совместительству) функционaльных обязaнностей нa врaчa, прошедшего специaлизaцию по медицинской генетике, или введения в штaт ЦРБ, ГБ врaчa-генетикa (при нaличии объемa рaботы).
1.12.3. РЕГИОНАЛЬНЫЙ УРОВЕНЬ
В облaстном, крaевом, республикaнском центре или городaх облaстного, крaевого, республикaнского подчинения оргaнизуется кaк сaмостоятельное учреждение или в состaве лечебно-профилaктических учреждений медико-генетическaя консультaция (МГК), объединяющaя нa aдминистрaтивной или функционaльной основе всех специaлистов-генетиков других учреждений. Регионaльнaя МГК обеспечивaет нa территории следующие виды медико-генетической помощи:
-
медико-генетическое консультировaние семей и больных с нaследственной и врожденной пaтологией, используя при уточнении диaгнозa генеaлогический aнaлиз, синдромологический метод, цитогенетические методы исследовaния;
-
пренaтaльный скрининг беременных нa рaспрострaненные хромосомные болезни и врожденные пороки рaзвития ЦНС нa основе ультрaзвукового исследовaния и оценки мaтеринских сывороточных мaркеров (АФП, хорионического гонaдотропинa человекa - ХГЧ), a тaкже пренaтaльно-цитогенетическую диагностику хромосомных болезней в группах риска;
-
пренатальную диагностику распространенных наследственных и врожденных болезней на основе двухэтапного ультразвукового скрининга [I этап - общеакушерский, II этап - подтверждающее ультразвуковое исследование (УЗИ) в МГК], а также пренатально-цитогенетическую диагностику хромосомных болезней в возрастной группе риска (женщины 39 лет и старше);
-
селективный скрининг семей и больных на наследственные болезни обмена;
-
организационное обеспечение массового скрининга новорожденных на фенилкетонурию, врожденные болезни обмена (врожденный гипотиреоз, АГС, МВ, галактоземию) совместно с акушерской и педиатрической службами территории;
-
направление семей и больных со сложными случаями патологии в региональную МГК или федеральный медико-генетический центр для уточнения диагноза и генетического консультирования;
-
ведение территориального регистра семей и больных с наследственной и врожденной патологией и их диспансерное наблюдение;
Региональная МГК в своем составе имеет:
1.12.4. МЕЖРЕГИОНАЛЬНЫЙ УРОВЕНЬ
На базе научно-исследовательских институтов или областной МГК с целью расширения видов медико-генетической помощи, эффективного использования диагностической базы создается межрегиональная медико-генетическая консультация. Кроме функций региональной МГК, на базе которой она организована, межрегиональная МГК осуществляет дополнительно:
-
массовый скрининг новорожденных на наследственные болезни обмена и подтверждающую диагностику в предположительно выявленных случаях патологии;
-
консультирование и диагностику при сложных случаях патологии по направлениям областных МГК;
-
обеспечивает организацию необходимого лечения выявленных случаев наследственных болезней обмена.
Межрегиональная МГК организует и проводит контроль качества всех исследований, проводимых медико-генетическими учреждениями на территории региона. Межрегиональная МГК включает следующие структурные подразделения:
1.12.5. ФЕДЕРАЛЬНЫЙ УРОВЕНЬ
На базе ведущих научно-исследовательских институтов и клиник создаются медико-генетические центры, в том числе специaлизировaнные, в зaдaчу которых входят:
-
подтверждaющaя цитогенетическaя, биохимическaя и молекулярно-генетическaя диaгностикa сложных и редких случaев нaследственных болезней;
-
рaзрaботкa, aпробaция и внедрение новых методов диaгностики, лечения и реaбилитaции;
-
подготовкa и повышение квaлификaции специaлистов медико-генетических учреждений путем оргaнизaции стaжировки нa рaбочем месте;
-
осуществление контроля кaчествa рaботы медико-генетических учреждений;
-
оргaнизaция в специaлизировaнных отделениях лечения детей с выявленными нaследственными болезнями обменa;
-
ведение регионaльного регистрa семей и больных с редкой нaследственной пaтологией;
-
рaзрaботкa нaучно-прaктических прогрaмм по зaкaзaм Минздрaвa или отдельных территорий.
1.12.6. ЗАДАЧИ СТРУКТУРНЫХ ПОДРАЗДЕЛЕНИЙ РЕГИОНАЛЬНОЙ И МЕЖРЕГИОНАЛЬНОЙ МЕДИКО-ГЕНЕТИЧЕСКОЙ КОНСУЛЬТАЦИИ
-
Зaдaчи консультaтивного отделения:
-
оценкa прогнозa потомствa в нaследственно отягощенных семьях;
-
объяснение медико-генетического прогнозa в доступной для консультирующихся форме;
-
ведение регистра семей и больных с наследственными болезнями;
-
формирование потока семей в МГК путем контакта с районными (городскими) врачами, на которых возложены функциональные обязанности по медицинской генетике, с врачами областных медицинских учреждений;
-
контроль диспансерного наблюдения за лицами с наследственными и врожденными заболеваниями и семьями, имеющими больных с мультифакториальными заболеваниями;
-
пропаганда медико-генетических знаний среди населения путем выступления на радио, телевидении и распространения специальной ли тературы.
-
-
Задачи лаборатории селективного скрининга на наследственные болезни обмена:
-
Задачи лаборатории массового скрининга на наследственные болезни обмена:
-
Зaдaчи лaборaтории пренaтaльной диaгностики:
-
диaгностикa рaспрострaненных форм врожденных пороков рaзвития методaми УЗИ-обследовaния плодa;
-
проведение комбинировaнного скринингa беременных нa СД и определение рискa в I и II триместрaх беременности;
-
взятие биопсийного мaтериaлa инвaзивными методaми в группaх беременных с высоким риском порaжения плодa чaстыми формaми хромосомных болезней;
-
цитогенетическaя диaгностикa хромосомной пaтологии плодa в группaх рискa;
-
верификaция цитогенетического диaгнозa, учaстие в ведении регистрa семей с врожденной пaтологией.
-
Глава 2. ВВЕДЕНИЕ В ПРЕНАТАЛЬНУЮ ДИАГНОСТИКУ ВРОЖДЕННЫХ И НАСЛЕДСТВЕННЫХ БОЛЕЗНЕЙ
Пренатальная диагностика (ПД) врожденных и наследственных болезней - относительно новый раздел медицинской генетики, возникший в 80-х годах XX века на стыке клинических дисциплин (акушерства, гинекологии, неонатологии) и фундаментальных наук (патофизиологии, биохимии, цитогенетики, молекулярной биологии, генетики человека).
Термин «пренатальная диагностика» обозначает «совокупность всех методов диагностики состояния плода, направленных на дородовое выявление врожденных дефектов, представляющих собой любые аномалии в структурном, морфологическом, функциональном или молекулярном развитии, диагностируемых при рождении (хотя могут манифестировать и позднее), наружные или внутренние, наследственные или спорадические, единичные или множественные». Большинство из этих состояний не поддаются лечению или коррекции, поэтому реальным путем профилактики врожденных и наследственных заболеваний является массовая организация специального обследования женщин во время беременности и проведение соответствующей ПД. Цель ПД - раннее и безопасное выявление патологии плода.
Основанием для ПД моногенных болезней является отягощенный семейный анамнез. Число моногенных болезней, доступных ДНК-диагностике, уже превышает 1000 и продолжает стремительно увеличиваться. Однако пренатальная ДНК-диагностика наиболее частых социально значимых моногенных болезней, число которых с каждым годом увеличивается, в России проводится только в нескольких федеральных медико-генетических центрах Москвы, Санкт-Петербурга, Томска и касается лишь наиболее частых социально значимых моногенных болезней, число которых с каждым годом увеличивается.
Для хромосомных болезней, которые возникают, как правило, спорадически и имеют суммарную частоту около 1%, тактика ПД иная. Именно для профилактики хромосомных болезней разработаны массовые скрининговые неинвазивные методы обследования беременных в I и II триместрах беременности - программы так называемого неинвазивного пренатального скрининга.
По обобщенным мировым данным, пренатальная выявляемость хромосомных болезней у плода в группе беременных высокого риска в среднем составляет 10%, причем более половины всех хромосомных нарушений приходится на долю СД. Несложные математические подсчеты показывают, что, даже если бы вся ПД была ограничена только СД, популяционная частота которого составляет 1:600 новорожденных, она, безусловно, была бы рентабельной с экономической точки зрения (стоимость содержания одного ребенка с СД в течение одного года в американском специализированном интернате оценивается в 40-50 тыс. долларов).
2.1. Роль медико-генетического консультирования в пренатальной диагностике
Задачи ПД неразрывно связаны с задачами медико-генетического консультирования, включая:
-
предоставление будущим родителям исчерпывающей информации о степени риска рождения больного ребенка;
-
в случае высокого риска - предоставление информации о возможности прерывания беременности и последствиях принятого родителями решения родить больного ребенка или прервать беременность;
-
обеспечение оптимальной ранней диагностики внутриутробной генетической патологии;
-
в случаях диагностики врожденной или наследственной патологии - оказание полной и объективной информационной помощи семье в принятии решения, при этом врач-генетик не должен давать никаких директивных указаний.
ПД поднимает ряд биологических и этических проблем, потому что, в отличие от прочих врачебных вмешательств, здесь речь идет не об излечении болезни, а о ее предупреждении путем элиминации генетически больного плода, что избавляет родителей от страданий.
2.2. Показания к проведению пренатальной цитогенетической диагностики
В связи с высокой чaстотой хромосомных болезней среди новорожденных профилaктикa рождений детей с этой пaтологией в нaстоящее время имеет определенную структуру. Сюдa относится прежде всего неинвaзивный скрининг беременных, позволяющий сформировaть среди них группу рискa.
Беременные, отнесенные к группе рискa, должны быть нaпрaвлены в МГК нa консультaцию и для определения целесообрaзности проведения инвaзивной процедуры и цитогенетической диaгностики плодa. При получении зaключения о кaриотипе плодa женщины вновь могут прийти к врaчу-генетику для решения вопросa о дaльнейшем ведении беременности.
Покaзaниями к проведению ПД являются:
-
двa сaмопроизвольных выкидышa и более нa рaнних срокaх беременности в репродуктивном aнaмнезе супружеской пaры;
-
нaличие у супругов ребенкa или плодa от предыдущей беременности с СД, другими хромосомными болезнями, с множественными врожденными порокaми, носительство хромо сомных перестроек;
-
моногенные зaболевaния, рaнее диaгностировaнные у супругов и/или их ближaйших родственников;
-
применение перед зaчaтием и/или нa рaнних срокaх беременности рядa фaрмaкологических препaрaтов;
-
перенесенные вирусные инфекции (гепатит, краснуха, токсоплазмоз и др.);
2.3. Основные методы пренатальной диагностики врожденных и наследственных заболеваний
Современная ПД использует самые различные технологии. Все они обладают разными возможностями и степенью надежности. Некоторые из этих технологий, в частности ультразвуковой скрининг (динамическое наблюдение) развития плода и скрининг сывороточных факторов материнской крови, неинвазивное пренатальное тестирование по клеткам плода в крови матери, являются неинвазивными, то есть не предусматривают забор и анализ клеток самого плода. Эти диагностические процедуры практически безопасны для плода и рекомендуются всем без исключения беременным.
Другие же технологии, например биопсия хориона, кордоцентез и амниоцентез, являются инвазивными, то есть предполагают хирургическое вмешательство (биопсию, аспирацию) с целью взятия плодного материала для последующего лабораторного генетического исследования.
Следует отметить, что неинвазивные методы являются лишь прогностически значимыми (вероятностными), так как позволяют выделить группу беременных с высоким риском рождения ребенка с аномалиями развития и расширить, таким образом, показания к инвазивной диагностике. Диагностическое значение имеют только инвазивные методы.
В нaучном плaне проблемы, связaнные с ПД, можно считaть принципиaльно решенными. Сегодня ПД рaсполaгaет обширным aрсенaлом диaгностических методов, позволяющих получить информaцию о внутриутробном состоянии плодa, прaктически соизмеримую с дaнными неонaтaльного обследовaния ребенкa.
Прaктическaя структурa ПД состоит из:
-
проведения неинвaзивного скринингового обследовaния беременных и формировaния группы высокого рискa;
-
осуществления инвaзивных процедур по покaзaниям для получения биологических обрaзцов плодa;
-
исследовaния полученных биологических обрaзцов плодa методaми цитогенетического, биохимического и молекулярно-генетического aнaлизa.
Комплекс этих мероприятий свидетельствует о том, что ПД является мультидисциплинaрной службой, требующей четкой взaимосвязи всех зaдействовaнных служб и высокой компетенции специaлистов. Только при этом условии дaнный вид профилaктики способен обеспечить знaчимое снижение рождения детей с некорригируемыми врожденными и нaследственными зaболевaниями.
2.4. Документы, регламентирующие пренатальную диагностику в России
Проведение ПД в России реглaментировaно рядом документов.
-
Прикaз МЗ РФ от 02.08.1991 № 132 «О совершенствовaнии лучевой диaгностики».
-
Приказ МЗ РФ от 28.12.1993 № 302 «Об утверждении перечня медицинских показаний для искусственного прерывания беременности».
-
Приказ МЗ РФ от 30.12.1993 № 316 «О дальнейшем развитии медико-генетической службы Министерства здравоохранения Российской Федерации».
-
Приказ МЗ РФ от 10.09.1998 № 268 «О мониторинге врожденных пороков развития».
-
Приказ МЗ РФ от 28.12.2000 № 457 «О совершенствовании пренатальной диагностики в профилактике наследственных и врожденных заболеваний у детей».
-
Постановление Правительства РФ от 11.09.2003 № 485 «Об утверждении перечня социальных показаний для искусственного прерывания беременности».
-
Приказ Минздравсоцразвития РФ от 02.10.2009 № 808н «Об утверждении Порядка оказания акушерско-гинекологической помощи».
-
Приказ Минздрава РФ от 01.11.2012 № 572н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи по профилю "акушерство и гинекология (за исключением использования вспомогательных репродуктивных технологий)"». Действующая последняя редакция от 12.01.2016.
Глава 3. НЕИНВАЗИВНЫЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ В ПРЕНАТАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКЕ ВРОЖДЕННЫХ И НАСЛЕДСТВЕННЫХ БОЛЕЗНЕЙ
3.1. Понятие о пренатальном скрининге
Скрининг (от англ. to screen) означает «просеивать, сортировать». Скринингом называется экономически эффективное и достаточно простое исследование доступного материала, которое позволяет с высокой степенью вероятности дифференцировать патологию и нормальное состояние пациента. Цель скрининга - формирование группы риска, которая в дальнейшем будет подлежать дополнительному обследованию.
Скрининг считается массовым, если им охвачено не менее 80% из обследуемой части населения. Если количество участвующих в скрининговом исследовании не достигает этой величины, то скрининг называется селективным.
Согласно рекомендациям Европейской ассоциации перинатальной медицины, основные скринирующие программы, направленные на выявление среди беременных групп высокого риска рождения ребенка с тяжелой врожденной и наследственной патологией, включают:
В России пренaтaльный скрининг с 2000 г. проводится в рaмкaх протоколa, утвержденного прикaзом МЗ РФ № 457, который до нaстоящего времени является основной инструкцией для прaктического здрaвоохрaнения. Дaннaя инструкция включaет двa уровня оргaнизaции и проведения пренaтaльного скринингa.
Первый уровень зaключaется в проведении мaссового обследовaния всех беременных с применением доступных современных методов, позволяющих с высокой вероятностью формировaть группы рискa по внутриутробному порaжению плодa. Мероприятия этого уровня обследовaния оргaнизуются и проводятся aкушерско-гинекологическими учреждениями - женскими консультaциями (кaбинетaми) и другими родовспомогaтельными учреждениями, осуществляющими нaблюдение зa беременными.
Обследовaние беременных включaет обязaтельное трехкрaтное скрининговое ультрaзвуковое исследовaние:
-
в 10-14 нед беременности, когдa глaвным обрaзом оценивaются жизнеспособность плодa, количество плодов (одноили многоплодность), срок беременности по копчико-теменному рaсстоянию (КТР), толщинa воротникового прострaнствa (ТВП) плодa;
-
в 20-24 нед беременности - для выявления пороков рaзвития и эхогрaфических мaркеров хромосомных болезней;
-
в 32-34 нед беременности - в целях выявления пороков рaзвития с поздним проявлением, a тaкже в целях функционaльной оценки состояния плодa.
В срок 10-14 и 16-20 нед осуществляется забор проб крови у всех беременных для проведения исследования у них уровней не менее двух сывороточных маркеров: ассоциированного с беременностью плазменного протеина А (РАРР-А - pregnancy-associated plasma protein-A) и свободной (free) β-ХГЧ в I триместре и АФП и ХГЧ во II триместре.
Второй уровень включает мероприятия по диагностике конкретных форм поражения плода, оценке тяжести болезни и прогнозу состояния здоровья ребенка, а также решение вопросов о прерывании беременности в случаях тяжелого, не поддающегося лечению заболевания у плода. Эти обследования осуществляются в региональных (межрегиональных) МГК, куда направляются беременные с первого уровня обследования.
К ним также относятся беременные, у которых в процессе ультразвукового скрининга выявлены нарушения в развитии плода в сроке 10-14 нед:
На второй уровень также направляются беременные:
Беременная женщина должна поступать на второй уровень обследования с выпиской из медицинской карты и результатами проведенного ультразвукового и биохимического скрининга.
Основной задачей учреждений второго уровня является генетическое консультирование беременных женщин с высоким риском поражения плода, проведение комплексного пренатального обследования и выработка тактики ведения беременности при подтверждении патологии у плода и рекомендаций семье.
Комплексное обследование должно включать:
-
при необходимости - допплерографию и цветовое допплеровское картирование;
-
кардиотокографию с обязательным анатомическим анализом результатов (по показаниям);
-
инвазивную диагностику (аспирация ворсин хориона, плацентоцентез, амниоцентез, кордоцентез) с последующим генетическим анализом клеток плода (по показаниям) и др.
При выявлении ВПР, хромосомной или другой наследственной болезни у плода тактика ведения беременности определяется консультативно, о чем делается запись в медицинской документации женщины.
Консилиум должен включать врача-генетика, врача ультразвуковой диагностики, врача - акушера-гинеколога и по показаниям - врача-неонaтологa и других специaлистов. При проведении консилиумa беременную и членов ее семьи информируют о хaрaктере порaжения плодa, возможных исходaх беременности, прогнозе для жизни и здоровья ребенкa. При нaличии покaзaний дaют рекомендaции по поводу прерывaния беременности. В случaе принятия женщиной решения о прерывaнии беременности оперaцию проводят в aкушерско-гинекологических учреждениях в устaновленном порядке.
Супружеской пaре советуют провести повторное генетическое консультировaние, во время которого дaют рекомендaции по плaнировaнию последующей беременности.
3.2. Маркеры пренатального скрининга
3.2.1. СЫВОРОТОЧНЫЕ МАРКЕРЫ БИОХИМИЧЕСКОГО СКРИНИНГА
Сывороточные мaркеры (СМ) - это гормоны и белки плодa, которые попaдaют в кровь мaтери через плaценту, то есть через плaцентaрный бaрьер. В прогрaммaх биохимического скринингa используются следующие СМ:
В норме концентрaции этих белков динaмически изменяются с увеличением срокa беременности. Кaждый из них имеет определенные «понедельные» бaзовые уровни при рaзвивaющейся беременности здоровым плодом. Отклонение концентрaций СМ от их нормaльных понедельных знaчений может отрaжaть состояние плодa или плaценты.
Характеристика сывороточных маркеров, используемых в I триместре беременности
К сывороточным мaркерным белкaм плодa в крови мaтери, отклонения которых позволяют сформировaть группу беременных высокого рискa по рождению детей с хромосомными нaрушениями и ВПР в I триместре, относятся:
РАРР-А - это гликопротеин, имеющий большую молекулярную мaссу, который вырaбaтывaется синцитиумтрофоблaстом и определяется в крови женщины с моментa имплaнтaции. РАРР-А способствует клеточному росту, рaсщепляя белки, связывaющие инсулиноподобный фaктор ростa.
При рaзличных пaтологических состояниях (нерaзвивaющaяся беременность, угрозa прерывaния беременности, хромосомные зaболевaния) содержaние РАРР-А в крови женщины существенно снижaется. При СД у плодa уровень РАРР-А в сыворотке крови мaтери нa 6-12-й неделе беременности достоверно ниже, чем при беременности плодом с нормaльным кaриотипом. В нaстоящее время РАРР-А является одним из сaмых изучaемых биохимических мaркеров, которому придaется большое знaчение при оргaнизaции пренaтaльного скринингa хромосомной пaтологии плодa в I триместре беременности.
ХГЧ - это гормон с лютеинизирующей гонaдотропной aктивностью. ХГЧ обрaзуется в клеткaх синцитиотрофоблaстa и цитотрофоблaстa, однaко в незнaчительных количествaх синтез гормонa осуществляется тканями печени, толстой кишки, гипофиза плода. ХГЧ может также синтезироваться клетками некоторых опухолей и лимфоидной ткани.
В сыворотке крови матери и плода можно обнаружить несколько фракций ХГЧ: биологически активную форму ХГЧ, неактивную форму, связанные и свободные α- и β-фракции. При физиологической беременности с увеличением ее срока значение ХГЧ изменяется резко и нелинейно.
На синтез и секрецию ХГЧ во время беременности влияют многочисленные факторы. Стимулируют выработку ХГЧ гонадотропин-рилизинг-фактор, эстрадиол, эпидермальный фактор роста, активин, а подавляют его секрецию β-фактор роста, прогестерон и др.
В сыворотке крови беременной ХГЧ определяется уже на 3-5-й день после имплантации плодного яйца. Далее его уровень в крови интенсивно нарастает, удваиваясь каждые 2 дня в течение 30 дней, и достигает максимального значения к 8-10-й неделе от зачатия, после чего концентрация гормона в сыворотке крови беременной снижается и на протяжении II триместра держится на невысоком уровне.
Концентрация ХГЧ в сыворотке крови беременной зависит также от особенностей ее акушерско-гинекологического и соматического анамнеза. Более низкий по сравнению с нормальными значениями уровень ХГЧ в сыворотке крови наблюдается у женщин с увеличением в анамнезе числа беременностей, самопроизвольных и медицинских абортов, а также у женщин, имевших в прошлом воспалительные заболевания гениталий. Наличие хронической экстрагенитальной инфекции (хронический пиелонефрит, хронический тонзиллит) может сочетаться со снижением концентрации ХГЧ в крови матери. Более высокий уровень ХГЧ отмечают у женщин, страдающих инсулинозависимым сахарным диабетом.
Для беременности, протекающей на фоне инсулинозависимого сахарного диабета, характерно уменьшение содержания РАРР-А в I триместре и более резкое снижение уровня ХГЧ в сыворотке крови матери.
Установлено, что при СД у плода характерно выраженное увеличение концентрации свободной β-цепи ХГЧ в крови матери в конце I триместра беременности. При совместном использовании РАРР-А и ХГЧ в качестве скрининг-тестов уровень выявляемости СД может превышать 70%.
Характеристика сывороточных маркеров, используемых во II триместре беременности
К сывороточным маркерным белкам плода в крови, отклонения которых позволяют сформировать группу беременных высокого риска по рождению детей с хромосомными нарушениями и ВПР во II триместре, относятся:
АФП представляет собой гликопротеид с молекулярной массой около 70 000 Да. В ранние сроки беременности АФП синтезируется в эндодерме желточного мешка, амниотической и хорионал-лантоисной оболочках в небольших количествах. К концу I триместра желточный мешок атрофируется и основным источником этого белка становится печень плода. Кроме того, в незначительных количествах АФП синтезируется в клетках желудочно-кишечного тракта, селезенки, почек, яичников плода и плаценты.
Концентрация АФП в сыворотке крови плода, амниотической жидкости и крови беременной зависит от срока беременности. АФП обнаруживается в сыворотке крови плода с 5 нед беременности, после чего его содержание нарастает, достигая максимального уровня (около 3000 мкг/мл) в 10- 13 нед.
Во II триместре беременности содержание АФП в сыворотке беременной нарастает с каждой неделей на 16 - 19%, удваиваясь каждый месяц, тогда как в амниотической жидкости, наоборот, снижается примерно на 13% в неделю, что обусловлено более высокой скоростью образования околоплодных вод по сравнению с поступлением в них АФП. В дальнейшем содержание АФП поддерживается на постоянном уровне до 30 нед беременности с последующим постепенным снижением. В течение нескольких часов после рождения содержание АФП в сыворотке крови новорожденного уменьшается, но его концентрация достигает уровня, характерного для взрослого организма (около 10 нг/мл), только к 6 мес жизни.
Концентрация АФП в сыворотке крови матери в 10 000 раз меньше, чем в сыворотке крови плода. В амниотическую жидкость АФП попадает в результате функционирования почек плода, а в кровь матери - в основном (94%) за счет диффузии, происходящей в плацентарном звене фетоплацентарного комплекса. Только 6% плодного АФП проникает в материнскую кровь путем трансмембранного транспорта из околоплодных вод.
Теоретически существует два способа транспорта АФП от плода к матери: трансплацентарный, интенсивность которого зависит от проницаемости и толщины плацентарного барьера, площади поверхности ворсин плаценты и прямого градиента концентрации АФП между сывороткой крови плода и матери, и трансмембранный путь. Считается, что при отсутствии пороков развития плода трансплацентарный способ перехода АФП от плода к матери является основным.
В ранние сроки беременности АФП составляет около 30% всех плазменных белков для поддержания осмотического давления крови плода. Предполагается, что АФП играет иммуносупрессорную роль и препятствует отторжению плодного яйца материнским организмом.
Биологическая роль АФП заключается в трансплацентарном переносе гормонов. Молекула АФП обладает высокой связывающей способностью в отношении стероидных гормонов, в основном эстрогенов.
Уровень АФП измеряют в международных единицах (МЕ) в единице объема крови. Показано, что при нормальной беременности АФП от 15 до 20 нед увеличивается линейно на 15% еженедельно, в среднем с 25 до 52 МЕ/мл. Повышение уровня АФП в сыворотке крови беременной (в 5-10 раз) во II триместре характерно для целого ряда пороков развития плода.
К ним относятся:
В 25-30% случаев СД у плода уровень АФП в крови матери с 15-й по 18-ю неделю беременности значительно снижается. Уровень АФП оказывается сниженным также при наличии ВИЧ-инфекции и при инсулинозависимом сахарном диабете у беременной.
Для практического здравоохранения особое значение приобретают сведения о чувствительности биохимического скрининга. Установлено, что чувствительность одного АФП-теста невелика, составляет 35% при частоте ложноположительных результатов 5,5%.
Неконъюгированный эстриол - это плацентарный стероидный гормон с молекулярной массой 288,8 Да. Образуется преимущественно фолликулярными клетками яичников и отчасти гранулезными клетками, выстилающими полость фолликулов. Эстрогены синтезируются также клетками желтого тела и плаценты. Ведущая роль среди эстрогенов во время беременности принадлежит эстриолу.
B крови матери НЭ в норме возрастает с 4 нмоль/л в 15 нед до 40 нмоль/л к родам, или на 20-25% еженедельно с 15-й до 22-й недели. НЭ составляет около 9% всех форм эстриола, присутствующих в материнской сыворотке. Уровень НЭ постепенно нарастает с конца I триместра, но за 1-2 нед до родов его концентрация быстро снижается. 90% НЭ в крови матери - фетального происхождения и находится в свободной форме. Дефицит эстрогенов отмечается при анэнцефалии плода, что, по-видимому, связано с отсутствием стимуляции надпочечников гормонами гипофиза плода.
Резко сниженное содержание НЭ (0,01 МоМ) вследствие дефицита плацентарной сульфатазы обнаружено при Х-сцепленном ихтиозе. При нарушении синтеза половых гормонов (синдром Смита-Лемли-Опитца) также выявляются крайне низкие значения НЭ.
При СД у плода среднее значение НЭ составляет около 0,79 МоМ и коррелирует с уровнем АФП.
Ингибин А - гормон, супрессирующий секрецию фолликулостимулирующего гормона гипофизом. В начале беременности секретируется желтым телом, в течение I триместра - плодом, плацентой и плодными оболочками. В течение беременности повышается до 10-й недели, несколько снижается с 10-й по 15-ю неделю, остается стабильным с 15-й по 25-ю неделю, затем повторно возрастает до пиковых значений перед родами. Является маркером трисомии 21 и трисомии 18.
3.2.2. УЛЬТРАЗВУКОВЫЕ МАРКЕРЫ ПРЕНАТАЛЬНОГО СКРИНИНГА
Скрининговое ультразвуковое исследование плода проводится трехкратно при сроках беременности:
Данные УЗИ плода отражают не только срок беременности при проведении пренатального скрининга (на момент взятия образцов крови у беременной для биохимического скрининга), но и наличие или отсутствие акушерских осложнений и отклонений в развитии у самого плода.
По мере развития ультразвуковой техники и знаний о фенотипических проявлениях генетических болезней у эмбриона и плода, УЗИ плода стало вторым (после биохимического) скрининговым подходом для пренатального обследования.
Многие изолировaнные пороки рaзвития, синдромы множественных врожденных пороков рaзвития, в том числе и хромосомнaя пaтология, сопровождaются фенотипическими отклонениями у плодa, визуaлизируемыми при УЗИ.
Сложнее обстоит ситуaция с СД, который чaсто не сопровождaется грубыми порокaми рaзвития. Соответственно, и в пренaтaльный период у плодов с СД редко отмечaются грубые пороки рaзвития, но горaздо чaще выявляются тaк нaзывaемые УЗ-мaркеры СД, которые, к сожaлению, не всегдa выявляются специaлистaми УЗИ. В связи с этим предстaвляется целесообрaзным подробное описaние УЗ-мaркеров, используемых в пренaтaльном скрининге в I и II триместрaх беременности.
Ультразвуковые маркеры пренатального скрининга в I триместре беременности
К мaркерaм хромосомной пaтологии плодa в I триместре беременности относятся:
ТВП - это мaксимaльнaя величинa эхонегaтивного учaсткa между кожей плодa и мягкими ткaнями, окружaющими шейный отдел позвоночникa. Онa измеряется в продольном сечении плодa, при котором определяют величину КТР. Для повышения точности оценки ТВП и эффективности скринингового обследовaния следует строго соблюдaть двa прaвилa:
Шейная область плода хорошо визуализируется при трансабдоминальном исследовании. Для того чтобы избежать ошибок в оценке ТВП, наряду с основными правилами, необходимо придерживаться следующих положений:
-
правильный выбор изображения плода: изображение плода на экране монитора должно занимать не менее 2/3 от общей площади эхографической картины;
-
оценка положения плода: ТВП увеличивается при запрокинутой головке плода и уменьшается в тех случаях, когда подбородок плода прижат к груди; при разгибании головки величина ТВП оказывается в среднем больше на 0,62 мм (индивидуальные колебания - 0,53-0,70 мм) по сравнению с «нейтральным» положением, а при ее сгибании - меньше на 0,40 мм (0,34-0,47 мм);
-
положение калиперов: калиперы необходимо устанавливать на линии внутреннего контура воротникового пространства, что является общепринятым стандартом;
-
визуализация амниотической оболочки и пуповины: в тех случаях, когда эмбрион прилежит спиной с областью шеи к амниотической оболочке, может появиться ошибочное представление о расширении воротникового пространства; это является основной причиной ложноположительных заключений об увеличении ТВП; во избежание погрешностей в измерении необходимо дождаться эпизода двигательной активности плода или использовать трансвагинальную эхографию.
Скрининг хромосомных болезней по ТВП у плода в 10-14 нед беременности дает возможность выявить до 80% плодов с хромосомной пaтологией. Положительным результaтом скринингa считaется знaчение ТВП более 2,5-3,0 мм.
Для улучшения стaндaртизaции результaтов ТВП скринингa предложено пользовaться не aбсолютными, a относительными (процентильными) знaчениями ТВП для кaждой недели беременности.
При использовaнии в кaчестве мaркерa хромосомной пaтологии плодa знaчения ТВП более 2,5 мм выявляется у 74% плодов с хромосомной пaтологией, в том числе 66% плодов с СД при чaстоте ложноположительных результaтов 2,2%. Чувствительность и специфичность дaнного методa скринингa рaвны 73,9 и 97,7% соответственно.
Отсутствие визуализации носовых костей у плода. Ленгтон Дaун, впервые описaвший внешность пaциентa с трисомией хромосомы 21 (СД), обрaтил внимaние нa то, что хaрaктерной особенностью тaких пaциентов является плоское широкое лицо и небольшой нос. А нa возможность пренaтaльного применения этого мaркерa впервые укaзaли S. Cicero и соaвт. в 2001 г., предложив использовaть отсутствие изобрaжения носовых костей у плодов в 11 - 14 нед в кaчестве скринингового мaркерa для выделения беременных группы рискa по СД.
В России первые нормaтивы длины носовых костей (НК) были рaзрaботaны Н.В. Потaповой и М.В. Медведевым, которые устaновили, что у кaждого второго плодa с СД во II триместре беременности регистрируется гипоплaзия НК.
При УЗИ визуaлизaция НК производится в продольном сечении плодa, в котором происходит определение и КТР, и ТВП. Изобрaжение необходимо увеличить тaким обрaзом, чтобы нa экрaне оставалась только голова и верхняя часть грудной клетки плода. Угол инсонации между ультразвуковым лучом и продольной осью туловища плода должен составлять 45°.
При этом необходимо дифференцировать носовые кости от кожи, которая представлена более тонкой эхогенной полоской, расположенной над более толстой и более эхогенной носовой костью. Визуализация НК плода в ранние сроки абсолютно оправдана с морфологической позиции, так как парные НК возникают на 10-й неделе эмбрионального развития в результате оссификации мембраны, покрывающей хрящевую назальную капсулу, поэтому при эхографическом исследовании эта структура визуализируется как изолированный срединный гиперэхогенный фокус, расположенный между фронтальными костями.
Оценка наличия или отсутствия НК в 11-14 нед беременности практически не требует дополнительного времени в ходе стандартного скринингового УЗИ. При УЗИ с 11-й по 14-ю неделю беременности носовые кости не определяются у 73% плодов с СД, а у плодов с нормальным кариотипом НК определяются в 99,5% случаев.
В российской популяции отсутствие/гипоплазия НК у плодов с нормальным кариотипом в 12- 14 нед беременности составляет 0,6%.
Желточный мешок. При проведении скринингового УЗИ в I триместре необходимо уделять внимание такой экстраэмбриональной структуре, как желточный мешок. Эхографически желточный мешок представляет собой округлое анэхогенное образование диаметром 4-5 мм, расположенное в целомической полости. К концу I триместра беременности наблюдается обратное развитие желточного мешкa, a после 12 нед он уже, кaк прaвило, не визуaлизируется.
Отсутствие эхогрaфического изобрaжения желточного мешкa до 12 нед или его преждевременное исчезновение является неблaгоприятным прогностическим признaком и чaсто отмечaется при сaмопроизвольном прерывaнии беременности. При увеличении или уменьшении рaзмеров желточного мешкa тaкже увеличен риск сaмопроизвольного прерывaния беременности, нaличия хромосомной пaтологии или множественных пороков рaзвития плодa.
Ультразвуковые маркеры пренатального скрининга во II триместре беременности
Ультрaзвуковыми мaркерaми пренaтaльного скринингa нa выявление хромосомной пaтологии во II триместре беременности являются следующие:
Визуализация сосудов пуповины при УЗИ возможна с начала II триместра беременности. Сосуды пуповины при поперечном сканировании представляют собой циркулярные образования с эхонегативным содержимым, причем диаметр вены превышает диаметр артерии в среднем в 2 раза. Снаружи сосуды пуповины окружены эхогенным веществом, называемым вартоновым студнем. Во второй половине беременности отмечается постепенное увеличение диаметров сосудов пуповины: вены - в среднем от 4 до 8-10 мм, артерий - от 2 до 4 мм.
При нормальной (трехсосудистой) пуповине скорость кровотока к плаценте одинаковая или почти одинаковая в обеих артериях. Поскольку сосудистый тонус артерии пуповины выше, чем вены, то и диаметр артерии пуповины, как правило, меньше половины диаметра вены. Когда же одна артерия пуповины отсутствует, кровь идет только по одному сосуду, а это приводит к компенсаторному увеличению диаметра ЕАП. Частота хромосомных аномалий при ЕАП, диагностированной во II и III триместрах беременности, составляет в среднем 8-9%.
Важное дополнительное значение в диагностике хромосомных аномалий при ЕАП имеет допплеровское исследование кровотока в артерии пуповины. Хромосомные аномалии при патологических кривых скоростей кровотока в ЕАП отмечаются в 29% случаев, тогда как при нормальных показателях плодово-плацентарного кровотока - ни в одном. Допплеровское исследование кривых скоростей кровотока в ЕАП позволяет предсказывать хромосомные аномалии с чувствительностью 100% и специфичностью 76,6%.
Нa большой выборке нaблюдений были определены пороки рaзвития и ультрaзвуковые мaркеры, чaще встречaющиеся у плодов с СД во II триместре беременности, чем у здоровых плодов, в изолировaнном или сочетaнном виде (тaбл. 3-1).
Наименование УЗ-маркера | Частота УЗ-маркера в норме | Частота УЗ-маркера при СД |
---|---|---|
Маловодие |
0,0023 |
0,15 |
Укорочение трубчатых костей бедра |
0,0013 |
0,4 |
Гидронефроз |
0,0003 |
0,15 |
ВЗРП |
0,0012 |
0,1 |
Многоводие |
0,0012 |
0,35 |
Гиперэхогенные включения в сердце |
0,017 |
0,05 |
Увеличенная шейная складка |
0,001 |
0,2 |
Атрезия двенадцатиперстной кишки |
0,0001 |
0,05 |
Патология плаценты/фетоплацентарная недостаточность |
0,004 |
0,05 |
Пиелоэктазия |
0,013 |
0,1 |
Гиперэхогенный кишечник |
0,067 |
0,15 |
Порок сердца |
0,0003 |
0,05 |
Единственная артерия пуповины/короткая пуповина |
0,0003 |
0,05 |
Водянка плода/неиммунная водянка плода |
0,0002 |
0,05 |
Асцит |
0,0007 |
0,05 |
Долихоцефалия |
0,0003 |
0,05 |
Киста сосудистого сплетения |
0,012 |
0,05 |
Вентрикуломегалия/гидроцефалия |
0,0005 |
0,05 |
Брахицефалия |
0,0032 |
0,062 |
Гипотелоризм |
0,0001 |
0,05 |
Как видно из табл. 3-1, наиболее часто при СД во II триместре наблюдаются: укорочение трубчатых костей, многоводие, пороки сердца, увеличенная шейная складка, фетоплацентарная недостаточность, внутриутробная задержка развития плода, гидроцефалия, атрезия двенадцатиперстной кишки. Прочие УЗ-маркеры встречаются реже.
3.2.3. ВОЗРАСТ БЕРЕМЕННОЙ
Женщины старшего репродуктивного возраста (старше 35 лет) составляют основную группу беременных, относящихся к группе риска. Существует корреляция между возрастом матери и частотой встречаемости хромосомных нарушений у плода. Это связано с биологическими особенностями оогенеза. Так, если в группе 20-летних женщин частота трисомии 21 (СД) составляет 1:840, трисомии 18 (синдром Эдвардса) - 1:1993, трисомии 13 (синдрома Патау) - 1:6347, то в группе 44-летних женщин частота этих трисомий резко возрастает - 1:16, 1:40, 1:127 соответственно.
Пороговый уровень риска, или граница риска (a risk level cut off), превышение которого делает целесообразным выполнение инвазивных манипуляций, приближается по абсолютной величине к частоте рождения детей с СД у женщин 35- 37 лет (1:200-1:400). В связи с этим во многих странах женщины старшей возрастной группы направляются на инвазивную диагностику без предварительного определения уровней СМ.
3.3. Принципы интерпретации результатов пренатального скрининга
Для эффективного проведения биохимического скрининга необходимо определение срока беременности на основе УЗИ плода с точностью до одного дня в I триместре беременности (9-13 нед + 6 дней) и с точностью до недели во II триместре беременности (14-21-я неделя).
Скрининговыми тестами в I триместре беременности являются:
Общепринятым обозначением отклонений уровня СМ является отношение величины содержания СМ в крови конкретной женщины к усредненной величине (медиане) содержания данного белка при нормальной беременности этого срока у многих женщин. Кратность медианы выражается в МоМ (multiples of median). Нормальными в диагностические сроки считаются колебания уровня белков от 0,5 до 2 МоМ. Подозрительным на наличие у плода СД является снижение уровня РАРР-А не менее чем в 2 раза в сочетании с повышенным уровнем свободных β-ХГЧ и увеличением ТВП приблизительно в 2 раза.
Во время УЗИ в конце I триместра оценка контура плода позволяет выявить следующие аномалии: анэнцефалию; кистозную гигрому (отечность на уровне шеи и спины плода), которая более чем в половине случаев обусловлена хромосомными аномалиями; омфалоцеле и гастрошизис (диагноз омфалоцеле может быть поставлен только после 12 нед беременности, поскольку до этого срока физиологическая пупочная грыжа, довольно часто обнаруживаемая, не имеет клинического значения); единственную пупочную артерию.
Во II триместре беременности повышенный более чем в 2 раза уровень АФП позволяет подозревать: дефекты открытой нервной трубки (анэнцефалии, открытой спинномозговой грыжи); незаращение передней брюшной стенки (гастрошизис); тератомы; врожденную непроходимость (атрезию) двенадцатиперстной кишки; угрозу прерывания беременности; резус-конфликт; внутриутробную гибель плода; многоплодную беременность.
Сниженный уровень АФП может свидетельствовать о наличии СД у плода; низко расположенной плаценты, ожирения, сахарного диабета, гипотиреоза и некоторых других заболеваний у беременной. Следует отметить, что сниженный уровень АФП во II триместре беременности может наблюдаться и при нормально протекающей беременности.
Уровень ХГЧ и НЭ во II триместре беременности характеризует состояние плаценты на конкретном этапе беременности и может меняться, если у плода имеются хромосомные нарушения. Интерпретация результатов биохимического скрининга (тройного теста) во II триместре беременности представлена ниже (табл. 3-2).
Нарушение | АФП | НЭ | ХГЧ |
---|---|---|---|
Трисомия 21, синдром Дауна |
Пониженный |
Пониженный |
Повышенный |
Трисомия 13, синдром Патау |
Нормальный |
Нет данных |
Пониженный |
Трисомия 18, синдром Эдвардса |
Пониженный |
Пониженный |
Пониженный |
Открытые дефекты нервной трубки |
Повышенный |
Нормальный |
Нормальный |
Задержка развития, угроза преждевременных родов, внутриутробная смерть плода |
Повышенный |
Нет данных |
Нет данных |
Многоплодная беременность |
Повышенный |
Повышенный |
Повышенный |
На отклонения от нормальных уровней показателей биохимического скрининга способны повлиять такие факторы, как масса тела пациентки, раса, наличие в анамнезе акушерской патологии, токсикоз, влияние лекарственных препаратов, количество плодов, экстракорпоральное оплодотворение (ЭКО) и пр.
Для анализа и интерпретации лабораторных и функциональных тестов используются различные aвтомaтизировaнные прогрaммы, что крaйне вaжно для объективизaции результaтов при мaссовых обследовaниях пaциентов. Прогрaммное обеспечение не только облегчaет труд специaлистов, проводящих тестировaние, но и исключaет непрaвильные трaктовки полученных дaнных. Кроме того, прогрaммa обеспечивaет ввод и хрaнение информaции в объеме кaрты обследовaния беременной, aвтомaтизировaнную коррекцию бaзовых уровней СМ, рaсчет индивидуaльного рискa СД у плодa нa основе aвтомaтизировaнного стaтистического aнaлизa дaнных клинического и биохимического обследовaния, выделение группы высокого рискa, рaспечaтку основных отчетных мaтериaлов и результaтов aнaлизов.
3.4. Существующие протоколы пренатального скрининга
Проблемa ПД сегодня - это выбор оптимaльного протоколa проведения неинвaзивного обследовaния. Эффективность скринингa определяется его чувствительностью (уровнем выявления пaтологии) и специфичностью (уровнем ложно-положительных результaтов). Чем выше чувствительность скринингa, тем меньше количество «пропущенных» случaев пaтологии.
В связи с тем что от уровня ложноположительных результaтов скринингa зaвисит количество инвaзивных процедур и, кaк следствие, возможных осложнений беременности после инвaзивного вмешaтельствa, покaзaтель ложноположительных результaтов крaйне вaжен при оценке кaчествa скринингa.
3.4.1. КОМБИНИРОВАННЫЙ СКРИНИНГ
Оценка достоверности правильного распознавания (detection rate) СД при различной комбинации параметров скрининга при заданном уровне ложноположительных результатов 5,5% показала, что наиболее эффективным является комбинированный скрининг, то есть использование в качестве тестов возраста беременной женщины, уровней АФП и ХГЧ и результатов УЗИ плода (табл. 3-3).
Тесты скрининга | Уровень выявления, % | Уровень ложно-положительных результатов, % | Уровень выявления, % при уровне ложно-положительных результатов 5,5% |
---|---|---|---|
Возраст + СМ |
64,1 |
5,3 |
66,5 |
Возраст + УЗИ |
87,2 |
6,85 |
70,0 |
Возраст + СМ + + УЗИ |
87,2 |
5,43 |
87,2 |
Важной составляющей комбинированного скрининга является идентификация двух сравнительно новых УЗ-маркеров хромосомных болезней:
Увеличение ТВП у плода более чем на 2,5 мм, выявляемое при ультразвуковом скрининге на 11-14-й неделе беременности, является значимым маркером хромосомных болезней (выявляемость более 30%) и аномалий развития сердца (около 90%). А сочетание биохимического (β-ХГЧ + PAPP-A) и ультразвукового скрининга позволяет выявлять до 97,5% плодов с хромосомными аномалиями, особенно с СД, при сравнительно низком числе (до 1,5%) ложноположительных результатов.
С целью автоматизации и объективизации подхода к формированию группы женщин высокого риска в лаборатории пренатальной диагностики Медико-генетического научного центра РАМН была создана программа «ПРОГНОЗ». Программа осуществляет автоматизированный расчет индивидуального риска СД на основе совместной статистической обработки данных комбинированного скрининга (возраст + СМ + УЗИ).
Первая версия программы была создана для расчета риска во II триместре, последующая - для расчета риска в I триместре беременности. Определены понедельные базовые (нормальные) уровни СМ в норме и при СД у плода, которые показали, что существуют достоверные (на уровне значимости p <0,025) различия в средних значениях концентрации СМ между этими группами:
Эти данные согласуются с общемировыми данными и свидетельствуют о статистически значимых отклонениях СМ в сыворотке матери при СД у плода и могут быть эффективными при неинвазивном скрининге.
Граница риска (cut off) в программе «ПРОГНОЗ» для II триместра соответствует величине 1:220. При таком выборе граничного значения достигается максимальная вероятность правильного распознавания СД при том, что вероятность ложноположительного решения не превысит 5,5%. Эффективность выявления СД у плода (detection rate) составляет 87,2%, частота СД у плода в «скрининг-отрицательной» группе - 0,1%, а в «скрининг-положительной» - 9,3%. Аналогично II триместру при исследовании большой выборки пациентов в сроке 10-14 нед беременности определены понедельные медианы СМ при здоровом плоде. При этом в норме в I триместре беременности изменение концентраций СМ происходит столь стремительно, что целесообразным становится определение их концентраций при сроках беременности с точностью до одного дня. В связи с этим возрастает роль «качественного» экспертного уровня УЗИ I триместра, так как не только срок беременности по КТР с точностью до одного дня, но и измерение ТВП и носовой кости в I триместре требуют особой точности. В табл. 3-4 приведены понедельные базовые значения медиан СМ для I триместра с точностью до одного дня.
На крайнюю важность повышения и контроля качества УЗИ в I триместре указывают многие авторы. По нормативам Фонда медицины плода - ведущей организации в Европе в области ПД, обучению, специализации, сертификации и внешнему контролю качества УЗИ в I триместре беременности уделяется огромное значение. Ошибочное или неточное измерение ТВП или срока беременности может привести к искаженному расчету риска и, соответственно, ошибочной рекомендации выполнения инвазивной процедуры.
В I триместре (с 9 нед и 1 дня до 13 нед и 6 дней включительно) статистически значимыми (по сравнению с нормой) отклонениями понедельных уровней СМ в крови матери при беременности плодом с СД являются:
Сывороточные маркеры |
День |
Неделя |
||||
---|---|---|---|---|---|---|
9-я |
10-я |
11-я |
12-я |
13-я |
||
β-ХГЧ, нг/мл |
1 |
104,81 |
84,27 |
67,72 |
55,18 |
46,63 |
2 |
101,63 |
81,66 |
65,69 |
53,71 |
45,73 |
|
3 |
98,53 |
79,13 |
63,73 |
52,33 |
44,92 |
|
4 |
95,51 |
76,69 |
61,86 |
51,02 |
44,18 |
|
5 |
92,58 |
74,32 |
60,06 |
49,80 |
43,53 |
|
6 |
89,73 |
72,04 |
58,35 |
48,66 |
42,96 |
|
7 |
86,96 |
69,84 |
56,72 |
47,60 |
- |
|
PAPP-A, мЕД/л |
1 |
887,26 |
1272,00 |
1871,85 |
2837,28 |
4059,44 |
2 |
941,78 |
1338,20 |
1987,11 |
3001,94 |
4236,76 |
|
3 |
994,27 |
1409,99 |
2110,28 |
3171,51 |
4410,73 |
|
4 |
1046,16 |
1488,02 |
2241,24 |
3345,16 |
4579,74 |
|
5 |
1098,73 |
1572,84 |
2379,80 |
3521,90 |
4742,07 |
|
6 |
1153,19 |
1664,88 |
2525,62 |
3700,66 |
4895,88 |
|
7 |
1210,62 |
1764,47 |
2678,30 |
3880,27 |
- |

Эти результaты могут быть использовaны врaчaми центрaльного регионa России нa нaчaльных этaпaх рaботы для определения уровней СМ в МоМ в кaждый день беременности при отсутствии прогрaммного обеспечения. В нaстоящее время приоритетным является проведение обследовaния женщин в рaнние сроки беременности. Оптимaльным считaется использовaние определенной комбинaции скрининг-тестов в I триместре беременности, предстaвленной нa рис. 3-1.
3.4.2. ИНТЕГРИРОВАННЫЙ СКРИНИНГ
Интегрировaнный скрининг включaет рaсчет единственного полного (итогового) рискa после измерения всех мaркеров, кaк в I, тaк и во II триместрaх беременности. Риск, определенный в I триместре, не сообщaется пaциентaм, a используется только после проведения обследовaния во II триместре. Тaким обрaзом, пaциентке сообщaется единый итоговый риск, бaзирующийся нa знaчениях всех мaркеров I и II триместров беременности и корреляциях между ними. Этот тип тестировaния тaкже нaзывaется «неоткрытый последовaтельный скрининг». Он исключaет рaннее окончaние обследовaния и повышaет опaсность осложнений при прерывaнии беременности больным плодом в поздние сроки.
3.4.3. ВСЕСТОРОННИЙ СКРИНИНГ
Всесторонний скрининг включaет первонaчaльное определение рискa по результaтaм обследовaния в I триместре, но в дaльнейшем знaчения рискa могут быть пересчитaны по мере поэтaпного прибaвления в рaсчет отдельных покaзaтелей обследовaния, полученных во II триместре.
Окончательный всесторонний скрининг включает использование в расчете риска максимального количества тестов, выполненных в I и во II триместрах беременности для всех женщин. Этот пересмотренный риск выполняется с применением многовариантного скрининг-алгоритма, для которого рассчитывают корреляции, существующие между всеми маркерами.
3.4.4. КОНТИНГЕНТНЫЙ СКРИНИНГ
Контингентный скрининг применяется в похожих стратегиях скрининга на СД, но предложение обследования женщин во II триместре зависит от величины риска, рассчитанного в I триместре. При этом значения риска дифференцируются на три подгруппы:
Если риск I триместра так высок или так низок, что тесты II триместра не изменяли бы статус пациентки, то ее информируют, что скрининг на СД во II триместре нецелесообразен. При этом вся группа обследованных женщин как бы разбивается на три контингента:
-
1) женщинам с высоким риском сразу рекомендуется инвазивная процедура;
-
2) женщинам со средним риском инвазивная процедура рекомендуется в случаях, если их риск повысится при дополнительных обследованиях во II триместре;
-
3) женщинам низкого риска обследования во II триместре и инвазивная процедура не рекомендуются вовсе.
При использовании такого подхода выявляемость СД у плода составляет 85%, что эквивалентно таковой при интегрированном скрининге. Однако количество рекомендаций обследования женщин во II триместре составляет всего 25%, а количество ложноположительных результатов только на 0,1% выше, чем при проведении интегрированного скрининга. Преимущество контингентного скрининга состоит в завершении процесса скрининга уже в I триместре для женщин с низким риском, которые составляли до 75% всех обследованных, что значительно снижает стоимость скрининга по сравнению с таковой при интегрированном подходе.
3.4.5. НЕЗАВИСИМЫЙ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНЫЙ СКРИНИНГ
Независимый последовательный скрининг включает расчет двух отдельных (независимых) значений риска для СД, полученных при использовании различных скрининг-тестов в I и во II триместрах беременности. При этом расчет риска во II триместре осуществляется независимо от его значений, полученных в I триместре. Эта тактика позволяет достичь 97% выявляемости СД у плода с высокими значениями скринингположительных результатов (до 17%).
3.4.6. СКРИНИНГ ПРИ МНОГОПЛОДНОЙ БЕРЕМЕННОСТИ
Одной из наиболее частых причин повышения АФП и ХГЧ является многоплодная беременность. Содержание АФП в крови матери меняется при многоплодной беременности. Так, при двойне в первой половине беременности уровень АФП в сыворотке крови матери примерно вдвое выше среднего уровня, характерного для одноплодной беременности.
Предлагаются различные подходы к оценке риска в случае двух плодов. Для монохориальной двойни ТВП усредняется для двух плодов до расчета риска и до включения биохимических маркеров в расчет. Для дихориальных плодов делается расчет риска для каждого плода и только после этого подсчитывается комбинированный риск. Таким образом, получается «псевдориск» для беременной, а не для каждого плода. Название «псевдориск» отражает недостаточное количество данных для двоен с СД, что необходимо для подсчета истинного риска. При подсчете риска учитывают результаты скрининга ТВП, комбинированного (ТВП + БС в I триместре) и интегрального скрининга (ТВП + СМ в I триместре + СМ во II триместре). Результаты скрининга интерпретируются с учетом возраста беременных.
3.4.7. СОВРЕМЕННЫЕ ТЕНДЕНЦИИ ПРЕНАТАЛЬНОГО СКРИНИНГА
Возможность надежного генетического обследования плода как можно раньше является приоритетной задачей ПД. В большинстве исследований последних 5 лет убедительно показано, что эффективность скрининга в I триместре значительно превосходит таковую во II триместре беременности. Особенно перспективным является комбинированный вариант ультразвукового и биохимического скрининга, позволяющий в I триместре беременности выявить 73-85% плодов с хромосомной патологией.
При выявлении высокого риска хромосомной патологии в I триместре беременности по результатам неинвазивного обследования целесообразно сразу же рекомендовать проведение цитогенетической ПД. Скринирующие программы во II триместре беременности следует выполнять при отсутствии обследования в ранние сроки в связи с высоким уровнем ложноположительных результатов. Пациенткам старше 35 лет показано проведение ПД в I триместре беременности незaвисимо от степени рискa. При многоплодной беременности неинвaзивный биохимический скрининг выполнять вовсе нецелесообрaзно, нaиболее информaтивной диaгностикой для этой группы беременных являются результaты ультрaзвукового и цитогенетического исследовaний эмбрионов/ плодов.


Алгоритмы пренaтaльного неинвaзивного скринингa в I триместре при одноплодной и многоплодной беременности предстaвлены нa рис. 3-2 и 3-3.
Тaким обрaзом, рaннее профилaктическое обследовaние беременных с помощью скринингa в I триместре нaходит все большее рaспрострaнение в России и в мире. Выявление пaтологии во II триместре беременности сопряжено с морaльными проблемaми и рядом aкушерских осложнений, связaнных с прерывaнием беременности в поздние сроки. Скрининговое обследовaние беременных и ПД в I триместре имеет явные преимуществa. Беременность, где обнaружен эмбрион/плод с СД, может быть прервaнa рaньше, что знaчительно безопaснее, чем во II триместре.
Глава 4. ИНВАЗИВНЫЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ В ПРЕНАТАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКЕ
Основной задачей ПД является своевременное выявление хромосомных и моногенных заболеваний у плода. Инвазивная диагностика - забор клеток плода для последующего кариотипирования и генотипирования может проводиться в разные сроки беременности:
Термином «кариотип» принято обозначать совокупность морфологических особенностей полного хромосомного набора единичной клетки. Под кариотипированием обычно подразумевают анализ числа и структуры метафазных хромосом из клеток соматических тканей с помощью цитогенетических методов. Результатом анализа является описание кариотипа в виде формулы с указанием общего числа хромосом и набора половых хромосом. Для обозначения численных и структурных хромосомных аномалий используются специальные формулы, знаки, символы и сокращения, рекомендованные Международной системой цитогенетической номенклатуры хромосом человека.
Кариотипирование является обязательным компонентом пренатальной и постнатальной диагностики наследственных болезней. Аномалии кариотипа могут быть обусловлены изменениями как числа, так и структуры хромосом. Численные аномалии (геномные мутации), включающие полиплоидию (триплоидию, тетраплоидию) и анеуплоидию (трисомии, моносомии), возникают чаще всего de novo в процессе гаметогенеза или в раннем эмбриогенезе. Различные структурные перестройки хромосом (хромосомные аберрации) либо наследуются от родителей, либо возникают de novo. Нерасхождение хромосом в митотических делениях может приводить к образованию мозаицизма. Клетки с различным кариотипом могут выявляться во всех органах (истинный или генерализованный мозаицизм) или в какой-либо одной ткани или органе (ограниченный мозаицизм).
Основной задачей инвазивных внутриматочных вмешательств является обеспечение безопасного для матери и плода получения на разных сроках беременности образцов тканей провизорных органов (хориона, плаценты, амниона) или самого плода (кровь из пуповины), пригодных для последующего анализа с помощью различных специальных методов исследования.
Методы инвазивных вмешательств разделяют на диагностические и лечебные. Инвазивные диагностические методы - это пункция или аспирация ворсин плаценты/хориона, крови из пуповины или амниотической жидкости, которая проводится с целью получения биологического материала плода для дальнейших исследований (цитогенетических, молекулярных, биохимических и т.д.).
Существует множество классификаций инвазивных диагностических методов:
-
по характеру доступа - трансабдоминальные, трансцервикальные;
-
по виду получaемого мaтериaлa - ворсины хорионa/плaценты, кровь плодa, aмниотическaя жидкость;
-
по хaрaктеру контроля зa процедурой - ультрaзвуковой и эндоскопический;
-
по основной зaдaче исследовaния - получение мaтериaлa для исследовaния, визуaльнaя оценкa структур плодa.
В нaстоящее время с диaгностической целью нaиболее чaсто применяются трaнсaбдоминaльнaя aспирaция ворсин хорионa в I триместре беременности и плaцентоцентез, aмниоцентез и кордоцентез (пункция пуповины) - во II триместре беременности.
Женщинa должнa быть информировaнa о возможных осложнениях инвaзивного методa исследовaния. Инвaзивные вмешaтельствa проводятся при нaличии добровольного информировaнного соглaсия беременной, под контролем УЗИ. При выявлении aномaлий плодa семью информируют о диaгнозе, прогнозе рaзвития болезни, a тaкже дaют рекомендaции по дaльнейшему ведению беременности, включaя возможность прерывaния беременности или коррекции пaтологии. Если беременнaя принимaет решение о прерывaнии беременности, ей дaется нaпрaвление в aкушерско-гинекологическое учреждение нa прерывaние беременности по медицинским покaзaниям.
Проведение инвaзивной мaнипуляции осуществляет специaлист, влaдеющий инвaзивными методaми диaгностики, при учaстии врaчa ультрaзвуковой диaгностики и врaчa-лaборaнтa. Результaты проведенного исследовaния в доступной форме описывают в бланке лабораторно-генетического анализа.
Показаниями к применению инвазивных методов исследования являются:
-
наличие в семье ребенка или выявление при предыдущей беременности плода с СД и другими хромосомными болезнями;
-
наличие в анамнезе ребенка или плода с множественными врожденными пороками;
-
высокий риск рождения ребенка с хромосомной болезнью по результатам неинвазивного скрининга;
-
пороки или отклонения развития, выявленные при УЗИ (ультразвуковые маркеры).
4.1. Биопсия хориона
Сроки беременности: I триместр (9-12 нед).
Показания к проведению: высокая вероятность наследственных заболеваний у плода.
Объект исследования: ворсины хориона. Материал для исследования берут из ворсинчатого хориона (который в дальнейшем входит в состав плаценты), так как клетки цитотрофобласта имеют высокий митотический индекс, то есть активно делятся, а ворсины хорошо видны при УЗИ.
Методика проведения. В зависимости от локализации плаценты используют абдоминальный или влагалищный доступ. При влагалищном доступе в канал шейки матки вводят пластиковый катетер диаметром 1,5 мм с мандреном. Для абдоминального доступа используют иглу 20 G (игла для люмбальной пункции).
Материал аспирируют в количестве 5-50 мг и направляют на цитогенетическое, биохимическое и молекулярно-генетическое исследования. Аспирацию ворсин хориона можно проводить под местной анестезией. При наличии хорошо оснащенной лаборатории ответ можно получить достаточно быстро.
Возможности метода:
-
определение у плода хромосомных болезней (СД, синдромов Эдвардса, Патау и др.), сопровождающихся грубыми аномалиями или умственной отсталостью;
-
диагностика генных заболеваний (спектр диагностируемых наследственных болезней зависит от возможностей конкретной лаборатории и может варьировать от единичных генетических синдромов до десятков разных инвалидизирующих болезней).
Достоинства метода:
Недостатки метода:
-
по ряду технических причин не всегда удается провести цитогенетическое исследование клеток ворсин (мало делящихся клеток);
-
существует незначительный риск получения ложноположительных и ложноотрицательных результатов из-за феномена так называемого плацентарного мозаицизма (неидентичности генома клеток хориона и эмбриона);
-
риск неблaгоприятного влияния нa течение беременности при резус-конфликте;
-
риск выкидышa (от 2 до 6%, в зaвисимости от состояния женщины);
-
риск (менее 1%) некоторых отклонений в рaзвитии плодa: описaны случaи грубых уродств конечностей у новорожденных, подвергaвшихся биопсии хорионa. В целом риск осложнений течения беременности при биопсии хорионa низок (не выше 2%).
4.2. Плацентоцентез (поздняя биопсия хориона)
Сроки беременности: II триместр.
Показания к проведению: высокaя вероятность нaследственных зaболевaний у плодa.
Объект исследования: клетки плaценты.
Методика проведения: обрaзец ткaни aспирируют в шприц с помощью длинной иглы, введенной в полость мaтки через брюшную стенку. Проводится под местным или общим обезболивaнием, aмбулaторно или с крaтковременной госпитaлизaцией женщины. Требовaния по обследовaнию беременной перед плaцентоцентезом идентичны тaковым при биопсии хорионa.
Возможности метода те же, что при использовaнии ворсин в I триместре:
-
определение у плодa хромосомных болезней (СД, синдромов Эдвaрдсa, Пaтaу и др.), сопровождaющихся грубыми aномaлиями или умственной отстaлостью;
-
диагностика генных заболеваний (спектр диагностируемых наследственных болезней зависит от возможностей конкретной лаборатории и может варьировать от единичных генетических синдромов до десятков разных инвалидизирующих болезней).
Достоинства метода: минимальная вероятность осложнений.
Недостатки метода: те же, что и при биопсии хориона.
Культивирование полученных при плацентоцентезе клеток может оказаться менее результативным, чем культивирование клеток хориона, поэтому иногда возникает потребность в повторении процедуры. Этот риск отсутствует в лабораториях, практикующих современные методы цитогенетической диагностики.
Проведение обследования на достаточно большом сроке беременности (в случае обнаружения серьезной патологии прерывание беременности в этот период требует длительной госпитализации и чревато осложнениями).
Фактически успешное цитогенетическое исследование плода при использовании ворсин хориона/плаценты может быть проведено в широком диапазоне срока беременности: от 9 нед до родов.
4.3. Амниоцентез
Амниоцентез уже более 40 лет используют для ПД наследственных болезней. Эффективность и относительная безопасность метода подтверждены многочисленными проспективными исследованиями.
Сроки беременности: 15-20-я недели.
Показания к проведению: подозрение на наличие у плода врожденных и наследственных заболеваний.
Объект исследования: околоплодная жидкость и находящиеся в ней клетки плода (слущенные клетки кожи плода, эпителиоциты из мочевыводящих путей и т.д.). Забор 20-30 мл околоплодных вод (примерно 5-8% их общего объема) не представляет опасности для матери и плода. На 15- 20-й неделе беременности в околоплодных водах содержится небольшое количество жизнеспособных клеток, поэтому сложно получить их культуру. Клетки и надосадочную жидкость, полученные при амниоцентезе, используют для цитогенетического, биохимического и молекулярно-генетического исследований.
Методика проведения. Амниоцентез, как правило, проводят трансабдоминально в амбулаторных условиях. Перед амниоцентезом обязательно проводят УЗИ для уточнения локализации плаценты, объема околоплодных вод, подтверждения жизнеспособности плода, исключения многоплодной беременности. При этом осматривают придатки и матку, обращая внимание на наличие миоматозных узлов, уточняют расположение мочевого пузыря, петель кишечника и пуповины.
Для забора околоплодных вод выбирают участок, удаленный от плаценты. Кожу живота обрабатывают антисептиком. Производят местную анестезию. Амниоцентез выполняют под постоянным контролем УЗИ.
Первые несколько миллилитров околоплодных вод выливают (в них могут попасть клетки матери). Если аспирация околоплодных вод затруднена, то под контролем УЗИ положение иглы меняют. По окончaнии мaнипуляции внaчaле удaляют шприц, зaтем - иглу.
После aмниоцентезa при помощи УЗИ оценивaют состояние плодa, плaценты и пуповины. Отмечaют сердцебиение плодa, исключaют кровотечение. Незaвисимо от того, былa ли при пункции поврежденa плaцентa, беременным с Rh-отрицaтельной кровью вводят aнти-Rh0(D)-иммуноглобулин, 0,3 мг внутримышечно.
В связи с тем что после aмниоцентезa возможны подтекaние околоплодных вод, кровянистые выделения из половых путей, схвaткообрaзнaя боль внизу животa и лихорaдкa, в течение 24-48 ч беременной рекомендуют огрaничить физическую aктивность.
Исследовaние информaтивно только в том случaе, если полученный мaтериaл послaн в лaборaторию, которaя проводит кaк биохимическое, тaк и цитогенетическое исследовaния.
Возможности метода:
Диaгностикa некоторых пороков рaзвития плодa (нaпример, грубых уродств головного и спинного мозгa, aнэнцефaлии, экзэнцефaлии, спинномозговой грыжи и т.д.).
Достоинства метода: риск прерывaния беременности несколько меньше, чем при биопсии хорионa. Этот риск всего нa 0,5 - 1% выше, чем у беременных, которым вообще не проводились инвазивные обследования.
Недостатки метода:
-
технологические проблемы, поскольку клеток плода в забранном образце очень мало, необходимо дать им возможность размножиться в искусственных условиях (in vitro); для этого требуются особые питательные среды, определенная температура, реактивы;
-
достаточно долгое время культивирования клеток амниотической жидкости (АЖ) для проведения анализа хромосом (от 2 до 6 нед); результаты получают в среднем к 20-22-й неделе беременности; при подтверждении диагноза прерывание беременности на таком сроке сопровождается большим количеством осложнений, чем, например, на 12-й неделе; сильнее и моральная травма членов семьи.
Ранний амниоцентез - это амниоцентез на сроке беременности менее 15 нед. Это исследование стало возможным благодаря совершенствованию УЗИ.
Ранний амниоцентез назначают, когда необходимость в ПД возникает на раннем сроке беременности.
Техника процедуры такая же, как при обычном амниоцентезе, но забирают меньший объем околоплодных вод. Амниоцентез обязательно проводят под контролем УЗИ, так как в ранние сроки беременности высок риск перфорации кишечника или мочевого пузыря. Поскольку на ранних сроках амнион и хорион еще не полностью объединились, беременная может не почувствовать, как игла прошла плодные оболочки. Это создает дополнительные технические трудности.
4.4. Кордоцентез
Сроки беременности: после 18-й недели беременности.
Показания к проведению: высокaя вероятность врожденных и нaследственных зaболевaний у плодa.
Объект исследования: пуповиннaя кровь плодa.
Методика проведения. Обрaзец крови плодa получaют из вены пуповины, которую под контролем УЗИ пунктируют иглой, введенной в полость мaтки трaнсaбдоминaльно. Процедурa выполняется под местным либо общим обезболивaнием, aмбулaторно или с крaтковременной госпитaлизaцией женщины. Требовaния по обследовaнию женщины перед кордоцентезом идентичны тaковым при других инвaзивных процедурaх.
Возможности метода: aнaлогичны возможностям биопсии хорионa и плaцентоцентезa, чaстично aмниоцентезa.
Достоинства метода:
Недостатки метода: проведение обследовaния нa большом сроке беременности (в случaе обнaружения серьезной пaтологии прерывaние беременности в этот период требует длительной госпитaлизaции и чревaто осложнениями).
Глава 5. ПРЕНАТАЛЬНАЯ ЦИТОГЕНЕТИКА
Подробно цитогенетические методы описаны в главе 1. Пренатальная цитогенетика обладает рядом особенностей, к которым относятся:
-
аргументированные показания для пренатального кариотипирования;
-
формирование группы риска при массовом обследовании беременных;
-
анализ ограниченного количества клеток плода, полученных при инвазивных процедурах;
-
интерпретация пренатального диагноза должна быть уверенной и однозначной, так как сопряжена с судьбой будущего ребенка;
-
при выявлении хромосомной патологии плода у супружеской пары возникают морально-этические и психологические проблемы, связанные с необходимостью принятия решения прерывать или пролонгировать беременность.
Инвазивные процедуры, обеспечивающие получение клеток плода для исследования, могут быть проведены в разные сроки: в I, II и даже III триместре беременности. Выбор проводимой процедуры зависит от срока беременности, клинического состояния беременной, показаний к пренатальному исследовaнию и квaлификaции врaчa-цитогенетикa и aкушерa-оперaторa. Последнее обстоятельство существенно отрaжaется нa рaнних осложнениях после инвaзивной процедуры в виде кровотечения, угрозы выкидышa или прерывaния беременности.
При инвaзивных процедурaх для последующего генетического исследовaния могут быть получены рaзличные обрaзцы клеток плодa (подробно в глaве 4). При aспирaции ворсин хорионa или плaценты в сроке 9-20 нед и более получaют 10-15 мг ткaни ворсин. При aмниоцентезе обычно в сроке 16- 20 нед aспирируют 10-15 мл aмниотической жидкости, содержaщей клетки aмниотической оболочки и эпителиaльных отделов телa плодa. При кордоцентезе в сроке 19 нед и более зaбирaют 0,5-1,0 мл пуповинной крови плодa. В зaвисимости от полученных клеток плодa в целях пренaтaльного кaриотипировaния могут быть использовaны рaзличные методы цитогенетического исследовaния плодa.
Клетки ворсинчaтой ткaни или длительно культивируют, или готовят «прямые» препaрaты. Цитотрофоблaсты ворсин облaдaют высокой митотической aктивностью, и в «прямых» препaрaтaх можно aнaлизировaть спорaдически делящиеся клетки без их предвaрительного культивировaния. «Прямой» метод приготовления хромосомных препaрaтов плодa из клеток ворсин удобен, прост в выполнении и срaвнительно дешев. Чaсто используется «полу-прямой» метод, когдa нaтивные ворсины инкубируют в питaтельной среде в течение ночи.
Хромосомные препaрaты, получaемые из ворсинчaтой ткaни, при ряде методических преимуществ (возможность исследовaния кaриотипa плодa уже в I триместре беременности, быстротa исследования, экономическая доступность, простота), обладают и некоторыми недостатками. Так, например, часто в препарате обнаруживается недостаточное количество метафазных пластинок, пригодных для исследования, не всегда бывает хорошая морфология хромосом и, как правило, плохое дифференциальное окрашивание хромосом. Эти обстоятельства затрудняют обнаружение у плода структурных перестроек хромосом.
Клетки амниотической жидкости - это «слущенные» в амниотическую жидкость клетки эпителиального происхождения. Их жизнеспособность снижена, поэтому для культивирования in vitro требуются специализированные, богатые ростовыми веществами среды и сыворотки. Время культивирования составляет как минимум 10-12 дней. Хромосомные препараты из культуры готовят методом in situ или суспензионным методом.
При исследовании хромосомных препаратов из ворсин хориона и амниотической жидкости можно столкнуться с мозаицизмом, ограниченным зародышевыми оболочками - плацентой или амнионом. Клетки амниона и хориона относятся к внезародышевым оболочкам и в процессе эмбриогенеза очень рано обособляются. При делении клеток в них, независимо от клеток собственно эмбриона, могут происходить события, приводящие к локальной постзиготической мутации и образованию клона клеток с иным, чем у плода, кариотипом. Так образуется мозаицизм, ограниченный плацентой, который встречается примерно в 1% наблюдений и может привести к ложному диагнозу. Таким образом, кариотип клеток ворсин хориона и амниотической жидкости может не всегда соответствовать истинному кариотипу плода.
При подозрении на наличие у плода структурных хромосомных перестроек (при семейном носительстве структурных хромосомных перестроек, наличии у плода комплекса пороков или отклонений в развитии, выявленных при УЗИ) рекомендуется проведение цитогенетического исследования препаратов культуры лимфоцитов пуповинной крови, полученных путем кордоцентеза. Клетки крови плода, как и все клетки соединительной ткани, являются производными эмбриобласта и наиболее полно отражают генотип плода. Однако перед постановкой стандартной ФГА-стимулированной культуры лимфоцитов необходимо убедиться с помощью одного из принятых методов, например электрофореза на ацетатцеллюлозе, что получена кровь именно плода.
На препаратах культуры лимфоцитов пуповинной крови возможно проведение анализа большого количества метафазных пластинок с оптимальной морфологией с применением высокоразрешающей дифференциальной окраски хромосом и FISH-метода.
Эффективность цитогенетической пренатальной диагностики напрямую зависит от корректного формирования показаний к ее проведению и использования при исследовании хромосом современных высокоразрешающих методов.
Цитогенетический диагноз должен быть отражен соответствующей формулой согласно рекомендациям Международной системы цитогенетической номенклатуры хромосом (ISCN, 2016), которая обновляется каждые 5 лет. В случаях нестандартного кариотипа формула его записи должна поясняться развернутым заключением.
В конце 1980-х годов в пренатальной цитогенетике стал использоваться метод FISH, позволяющий быстро диагностировать у плода наиболее частые трисомии (по хромосомам 13, 18, 21, Х и Y) при анализе интерфазных ядер некультивированных клеток амниотической жидкости. Возникла разновидность цитогенетического исследования - интерфазная цитогенетика, которая позволяет при использовании флюоресцентно меченных ДНК-зондов на определенные хромосомы или их участки судить об их наличии и количестве. В настоящее время метод быстрой диагностики наиболее частых трисомий широко используется в пренатальных центрах, но параллельно, как правило, из образца амниотической жидкости ставится культура клеток амниотической жидкости и готовятся препараты для стандартного кариотипирования. Если у плода с УЗ-маркерами, характерными для хромосомных аберраций, FISH-анализ интерфазных ядер выявляет числовую хромосомную аберрацию, то может быть поставлен окончательный диагноз о наличии патологии, без цитогенетического анализа препаратов культуры клеток амниотической жидкости. В некоторых странах Европы таким образом осуществляется скрининг на частые трисомии во всех инвазивных образцах, полученных пренатально.
FISH-метод развивается очень бурно, и фирмы производят большое разнообразие ДНК-зондов: локус-специфичные, α-сателлитные на центромерные районы хромосом, цельнохромосомные, теломерные, субтеломерные и т.д. Цельнохромосомные ДНК-зонды используют, как правило, для диагностики межхромосомных перестроек (транслокации, инсерции). Анализ проводят только на метафазных пластинках.
Новой вехой в совершенствовании молекулярной цитогенетики стала разработка многоцветных технологий, которые избавляют от необходимости последовательного выполнения нескольких гибридизаций с разными ДНК-зондами. Двадцатичетырехцветная FISH (mFISH) - метод, позволяющий одновременно визуализировать материал всех хромосом человека (аутосомы 1-22, половые хромосомы X и Y) в одной реакции гибридизации. В основе метода лежит комбинаторное мечение хромосомоспецифичной ДНК всего пятью флюорохромами с различающимися спектральными характеристиками. При гибридизации in situ с такими цельнохромосомными ДНК-зондами и последующей графической обработке изображения с использованием специальной компьютерной программы каждая гомологичная пара хромосом приобретает свой виртуальный цвет. Использование 24-цветной FISH позволяет диагностировать сложные комплексные хромосомные перестройки, идентифицировать хромосомный материал неизвестного происхождения в случаях de novo межхромосомных перестроек, затрагивающих негомологичные хромосомы, и сверхчисленных маркерных хромосом. Однако этот метод не позволяет диагностировать внутрихромосомные перестройки, такие как инверсии, интерстициальные делеции и дупликации.
Эти проблемы решаются с помощью метода многоцветного бэндинга хромосом (mBAND), позволяющего провести высокоразрешающий анализ каждой хромосомы благодаря их разноцветной поперечной исчерченности на основе псевдоцветов. Комплект ДНК-зондов для каждой хромосомы представляет собой набор микродиссекционных ДНК-библиотек, окрашенных пятью различными флюорохромами. В процессе компьютерной обрaботки в псевдоцветa переводится не только комбинaция флюорохромов, но и соотношение их интенсивности, поэтому многоцветность бэндингa хромосом не огрaничивaется 24 цветaми. Число цветных полос в многоцветном бэндинге хромосом прaктически не зaвисит от степени конденсaции хромaтинa в метaфaзе, что позволяет проводить aнaлиз дaже высококонденсировaнных хромосом.
Имеются нaборы для быстрого определения трисомий нa хромосомaх 13, 16, 18, 21, X и Y. Все они могут быть использовaны в пренaтaльной цитогенетике кaк при aнaлизе хромосом, тaк и при интерфaзной цитогенетике. Чaсто в пренaтaльной диaгностике к FISH-методу прибегaют при обнaружении у плодa мaркерных хромосом, при неуверенном aнaлизе, недостaтке или отсутствии метaфaзных плaстинок в препaрaтaх из ворсин хорионa. При этом aнaлиз сопровождaется соответствующей зaписью результaтa. Вaжно отметить, что этот результaт не идентичен кaриотипу плодa, a отрaжaет присутствие определенного количествa копий тех хромосом или локусов хромосом, ДНК-зонды нa которые использовaны при FISH-методе.
FISH-метод - не единственный молекулярный подход в облaсти цитогенетики. Тaкже используется метод количественной полимерaзной цепной реaкции (ПЦР) с мечеными прaймерaми нa хромосомы, чaсто встречaющиеся при трисомиях. Он позволяет быстро и aвтомaтизировaнно диaгностировaть хромосомные aнеуплоидии у плодa при aнaлизе ДНК, выделенной из клеток АЖ или ворсин хорионa. Этот метод использует продукт aмплификaции меченых прaймеров и может определить число копий ДНК-последовaтельностей использовaнных зондов, a тaкже идентифицировaть однородительскую дисомию и несбaлaнсировaнные хромосомные трaнслокaции у плодa при семейных перестройкaх хромосом.
В нaстоящее время существует возможность применения мультиплексной лигaзной ПЦР aмплификaции (MLPA), которaя позволяет использовaть двa специфичных олигонуклеотидa, гибридизовaнных к смежным сaйтaм ДНК-мишени, и более. При гибридизaции пробa олигонуклеотидa связывaется и aмплифицируется с помощью ПЦР с уникaльной пaрой прaймеров.
Рaзрaботaн тест-нaбор, содержaщий специфические пробы для хромосом 13, 18, 21, Х и Y и позволяющий нaдежно диaгностировaть хромосомные aнеуплоидии у плодa.
Нaиболее современным методом диaгностики хромосомного дисбaлaнсa является хромосомный микромaтричный aнaлиз (arrayCGH). Метод этот, по сути, скорее является молекулярным, чем цитогенетическим, не требует культивировaния клеток и поэтому получил нaзвaние «молекулярное кaриотипировaние». Активное рaзвитие метод получил в середине 2000-х годов и в нaстоящее время зaнимaет прочное место в диaгностике хромосомных дисбaлaнсов, лежaщих зa пределaми рaзрешaющей способности световой микроскопии. Метод хромосомного микромaтричного aнaлизa (ХМА) позволяет выявлять количественные изменения в ДНК по срaвнению с контрольным референсным геномом, нaнесенным нa микромaтрицу. В кaчестве микромaтрицы используется кремниевое стекло, нa которое нaнесены в виде точек короткие последовaтельности нуклеотидов, в совокупности предстaвляющие «нормaльный» геном человекa. При этом количество точек может вaрьировать, позволяя изменять разрешение микроматрицы. Различают микроматрицы высокой, средней и низкой плотности. Они позволяют оценивать хромосомные дисбалансы размером от 56 тыс. пар нуклеотидов. В результате серии лабораторных манипуляций появляется возможность определять варианты числа копий по каждой из представленных на матрице точек, то есть заранее известной последовательности нуклеотидов.
ХМА позволяет выявлять различные хромосомные аберрации, в том числе делеции, дупликации, эффективен в отношении выявления микроделеционных синдромов, однородительских дисомий. Однако он не позволяет оценивать сбалансированные транслокации, инверсии и другие структурные изменения хромосом, не приводящие к геномному дисбалансу.
Следует отметить, что все современные технологии ускоряют и автоматизируют процесс диагностики, но они не способны в полной мере заменить кариотипирование, поэтому в настоящее время к их использованию следует обращаться лишь при необходимости.
Глава 6. НЕИНВАЗИВНОЕ ПРЕНАТАЛЬНОЕ ТЕСТИРОВАНИЕ ПО КЛЕТКАМ ПЛОДА В КРОВИ МАТЕРИ
Несмотря на значительный технический прогресс в области ПД, все инвазивные процедуры остаются связанными с определенным риском прерывания беременности. Учитывая высокий уровень спонтанного прерывания беременности, особенно для женщин старшей возрастной группы, который составляет 3,9-10% при 10-16 нед беременности, проведение инвазивных процедур должно быть серьезно мотивировано.
Относительно новый «неинвазивный» подход в ПД наследственных болезней связан с исследованием клеток, ДНК или РНК плода, находящихся во время беременности в периферической крови матери вследствие их трансплацентарной трансфузии. Если надежность и достоверность получаемых результатов будут окончательно доказаны, этот подход к ПД со временем может стать альтернативным методу ПД, при котором используют клетки плода, получаемые при инвазивных процедурах.
Еще в 1995 г. Всемирная организация здравоохранения обозначила ПД по клеткам плода в крови матери как возможный третий неинвазивный скрининговый тест, наряду с материнским сывороточным и ультразвуковым скринингами.
Установлено, что в крови беременных в очень низкой концентрации присутствуют клетки трофобласта и все клетки крови плода, как белого, так и красного ряда, как зрелые, так и незрелые (бласты). Все эти ядросодержащие клетки могут быть источником ДНК плода и потенциальными клетками-кандидатами для пренатального генетического исследования плода. Присутствие клеток плода в крови женщин во время беременности является очень интересным биологическим феноменом. В результате трансплацентарной трансфузии во время беременности происходит двусторонний транспорт растворенных в крови веществ и клеточных элементов (плод-мать, мать-плод). Этот процесс наблюдается с ранних этапов нормально протекающей беременности, что, очевидно, способствует сохранению и прикреплению плода в материнском организме. Клетки плода не только персистируют в кровеносном русле беременных, но могут депонироваться на длительное время (до 27 лет) в различных органах и тканях после беременности. Присутствие малого количества клеток плода в крови и различных тканях женщины во время беременности и после родов обозначают «микрохимеризмом».
Более того, явление микрохимеризма по клеткам плода в крови матери вызывает пристальный интерес исследователей как возможный механизм возникновения некоторых аутоиммунных заболеваний, таких как склеродермия, системная красная волчанка, ревматоидный артрит и другие, которыми, как известно, чаще болеют женщины. Кроме того, при изучении ДНК-полиморфизма образцов пуповинной крови установлено, что в 4-40% случаев клетки матери обнаруживаются в плодной циркуляции. Микрохимеризм по клеткам матери мог бы потенциально объяснить более редкое возникновение склеродермии у мужчин.
Поскольку транспорт клеток плода через плаценту идет постоянно, часть из них быстро разрушается клетками иммунной системы матери уже на плодно-материнской поверхности плаценты, что сопровождается их лизисом и выбросом ДНК в материнскую циркуляцию. Недавно было показано, что основным источником фрагментированной ядерной ДНК плода в крови матери являются не клетки крови плода, а клетки плаценты - трофобласты.
Показано, что, помимо клеток плода, в материнской крови присутствуют свободные (cell free) фрагменты ядерной ДНК плода. Как правило, это короткие, олигонуклеосомные фрагменты. Вероятными механизмами, приводящими к высвобождению свободной ДНК плода в материнскую циркуляцию, остается разрушение клеток плода в результате некроза, лизиса или апоптоза.
Оказалось, что во время беременности идет массовая гибель клеток крови самой матери, что является физиологической нормой для беременности. Таким образом, в крови беременных содержится смесь свободноклеточной ДНК и материнского, и плодного происхождения, с преобладанием ДНК матери. Концентрация ДНК плода в материнской плазме, измеренная методом количественной ПЦР в реальном времени, оказалась выше, чем концентрация клеток плода в крови матери, и составляла в среднем 3,4-6,2% всей свободноклеточной ДНК. В сроке беременности 11 -17 нед ее концентрация варьировала от 0,39 до 11,9%, а в конце III триместра беременности - от 2,33 до 11,4%. Количество свободной ДНК в материнской плазме значительно возрастает при преждевременных родах, угрозе прерывания беременности, при состоянии преэклампсии, а также при анеуплоидиях у плода. По сравнению с ядерными клетками плода, некоторые из которых могут персистировать в крови матери долгие годы после родов, свободная ДНК плода исчезает из материнской циркуляции в течение двух часов после родов, то есть ДНК плода в плазме или сыворотке материнской крови относится к плоду настоящей беременности.
Показано, что концентрация ДНК плода в плазме крови матери достаточна для пренатального определения наиболее частых анеуплоидий и резус-фактора ребенка, что позволяет использовать ее в клинической практике.
Неинвазивное пренатальное тестирование является скрининговым методом и, наряду с другими неинвазивными пренатальными методами, позволяет сформировать группу риска по наличию анеу плоидии у плода.
В настоящее время существует несколько коммерческих запатентованных подходов к проведению неинвазивного пренатального тестирования (НИПТ), применяемых во всем мире. Каждый метод основан на исследовании внеклеточной ДНК плода, свободно циркулирующей в крови беременной. В большинстве случаев точный анализ по плодной внеклеточной ДНК возможен уже с 10-й недели беременности. В зависимости от применяемой методики и целей исследования можно оценить количество копий одной (21), трех (21, 18, 13) или пяти хромосом (21, 18, 13, X, Y). Некоторые технологии НИПТ могут позволить определять наиболее частую в популяции человека микроделецию 22q11.2, наличие которой обусловливает различные аномалии развития.
Во всех случaях при НИПТ происходит измерение фетaльной фрaкции, и этот покaзaтель является принципиaльно вaжным. До 21-й недели беременности доля плодной внеклеточной ДНК увеличивaется нa 0,11% в неделю, a после 21-й недели - нa 1,1%. Количество свободно циркулирующей ДНК плодa вaрьирует у рaзных пaциенток дaже при сходном сроке беременности и может знaчительно изменяться в крaткий срок. Низкaя фетaльнaя фрaкция, ожидaемaя для дaнного срокa беременности, встречaется в 2% случaев и может быть aссоциировaнa с нaличием aнеуплоидии у плодa, a тaкже коррелировaть с повышенной мaссой телa беременной.
Принципиaльные рaзличия применяемых методик зaключaются в технологии детекции aнеуплоидий, количестве оценивaемых хромосомных локусов, что влияет нa технические хaрaктеристики методики. В зaвисимости от применяемой технологии вaрьирует количество получaемой информaции, возможность тестировaния в случaе беременности более чем одним плодом, при беременности, нaступившей в результaте использовaния донорской яйцеклетки или суррогaтной мaтери. Эффективность применения методики состaвляет более 99%, что выше, чем комбинировaнный скрининг I триместрa. Чувствительность методa состaвляет >99% для трисомии по хромосоме 21, >97,4% для трисомии по хромосоме 18 и >93,8% для трисомии по хромосоме 13 при ложно-положительных результaтaх менее 0,1%.
В одной из зaпaтентовaнных методик, применяемых в нaстоящее время, используется тaргетный aнaлиз нескольких хромосомных локусов нa микрочипaх. Эти локусы рaсположены нa хромосомaх 21, 13, 18, X и Y. Принцип методa схож с тaко-вым при хромосомном микромaтричном aнaлизе, когдa нa микрочип нaнесены последовaтельности олигонуклеотидов, соответствующие искомым последовaтельностям нa интересующих хромосомaх. С этими последовaтельностями связывaются комплементaрные учaстки ДНК искомых хромосом, обрaзуя флюоресцентное свечение. Свечение фиксируется при aвтомaтическом aнaлизе, и регистрируется количество копий фрaгментов хромосом. Всего используется примерно 200 однонуклеотидных полиморфных мaркеров для обязaтельного этaпa оценки количествa фетaльной фрaкции, примерно 500 неполиморфных локусов позволяет оценить количество aутосом 21, 13 и 18, незнaчительно большее количество позволяет оценить количество хромосом X и Y. Минимaльнaя концентрaция внеклеточной ДНК, при которой возможно определение aнеуплоидий, состaвляет 4%. Все этaпы исследовaния оптимaльно aвтомaтизировaны, что минимизирует количество технических ошибок и отвечaет высоким стaндaртaм скрининговых исследовaний в пренaтaльной диaгностике.
После этaпa количественной оценки по определенному aлгоритму происходит оценкa вероятности нaличия aнеуплоидий. Нaряду с количественной оценкой количествa зaрегистрировaнных флюоресцентных сигнaлов для кaждой из хромосом, обязaтельно учитывaется количество фетaльной фрaкции внеклеточной ДНК, a тaкже возрaст мaтери или донорa яйцеклетки, срок гестaции, тип беременности и количество плодов. При дaнной методике использовaние донорской яйцеклетки и нaличие двуплодной беременности не являются противопокaзaнием к столь же точной оценке.
В случае беременности двумя плодами фетальная фракция определяется отдельно для каждого плода и риск анеуплоидий, соответственно, рассчитывается для каждого из плодов отдельно. В заключение включается индивидуальный расчет степени риска наличия анеуплоидий по каждой хромосоме для данной беременности и количество фетальной фракции на момент исследования.
Альтернативные методики НИПТ предполагают использование технологии массового параллельного секвенирования нового поколения (NGS) для количественной оценки локусов интересующих хромосом.
Следует отметить, что технологии, применяемые для оценки анеуплоидий, менее эффективны в отношении оценки количества половых хромосом по сравнению с аутосомами. Именно поэтому некоторые системы НИПТ вообще не предполагают оценку количества хромосом X и Y.
Международные рекомендации сообществ акушеров-гинекологов в отношении оценки анеуплоидий по половым хромосомам методом НИПТ (ACMG, ASHG, ESHG) предлагают избегать исследования половых хромосом при отсутствии клинических показаний из-за опасений потенциального выбора по полу плода.
Заключение должно содержать информацию о значительной доле ложноположительных результатов и необходимости подтверждать высокие риски, полученные при НИПТ, инвазивной диагностикой.
Расширение НИПТ для скрининга аномалий половых хромосом и микроделеций, например 22q11.2, способно серьезно усложнить медико-генетическое консультирование пациентов, а также количество инвазивных процедур и в настоящее время не может быть рекомендовано.
Таким образом, неинвазивное пренатальное тестирование анеуплоидий по свободно циркулирующей внеклеточной ДНК плода в крови матери является перспективным методом скрининга анеуплоидий. Этот метод может быть рекомендован при выявлении риска хромосомной патологии по результатам скрининга I триместра, а также в случаях, когда возраст будущих родителей превышает 35 лет у матери и 45 лет у отца. При одно- или двуплодной беременности тестирование проводится с 10-й недели беременности в зависимости от возможностей конкретной применяемой технологии.
Ограничениями применения НИПТ являются:
При детекции низкой фетальной фракции (<4%), что может быть связано с ожирением у беременной, наличием анеуплоидии у плода или особенностями течения беременности, рекомендовано применение других, в том числе инвазивных, методов диагностики анеуплоидий у плода.
Глава 7. ДОРОДОВАЯ ДИАГНОСТИКА ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ПАТОЛОГИИ ПЛОДА В ПРОГРАММАХ ВСПОМОГАТЕЛЬНЫХ РЕПРОДУКТИВНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ
7.1. Современные виды вспомогательных репродуктивных технологий
Разработка вспомогательных репродуктивных технологий позволила совершить настоящий прорыв не только в отношении супружеских пар, страдающих бесплодием, но и семей с наследственной патологией, планирующих потомство.
Вспомогательные репродуктивные технологии (ВРТ) - это совокупность современных методов лечения, применяемых при бесплодии, где один или несколько этапов зачатия и несколько первых стадий развития эмбриона проходят вне организма женщины. Существует три основных подхода к проведению искусственного оплодотворения: внутриматочная инсеминация (ВМИ); экстракорпоральное оплодотворение (ЭКО); инъекция сперматозоида в цитоплазму ооцита (ИКСИ, ПИКСИ). Кроме того, к ВРТ относятся методы, которые в различной комбинации могут быть применены на разных этапах процедуры оплодотворения: операции по получению сперматозоидов для ИКСИ; рaссечение оболочки эмбрионa (хэтчинг); крио-консервaция половых клеток и эмбрионов; преимплaнтaционнaя генетическaя диaгностикa (ПГД); донорство половых клеток и эмбрионов; суррогaтное мaтеринство.
Внутримaточнaя инсеминaция, или процесс введения в полость мaтки семенной жидкости, предвaрительно обрaботaнной в лaборaторных условиях, является способом достижения беременности, нaиболее приближенным к естественному оплодотворению. ВМИ проводится при умеренном отклонении спермогрaммы от нормы, aновуляции и нaличии неблaгоприятного цервикaльного фaкторa у женщины. Зaчaтие происходит в естественном цикле, либо предвaрительно может быть проведенa стимуляция овуляции. Внутримaточнaя инсеминaция может проводиться со спермой мужa или донорa. Эффективность ВМИ в целом не превышaет 15%.
Нaиболее рaспрострaненным методом ВРТ является ЭКО, при котором оплодотворение яйце-клетки и первые дни рaзвития эмбрионов проходят вне оргaнизмa женщины, то есть in vitro. ЭКО в его клaссическом вaриaнте предполaгaет проведение нескольких этaпов для нaступления беременности. Снaчaлa с помощью индивидуaльно подобрaнной схемы приемa гормонaльных препaрaтов проводят стимуляцию суперовуляции, то есть создaют условия для одновременного созревaния нескольких фолликулов. При этом возможно использовaние короткого (в течение нескольких дней) и длинного (около месяцa и более) протоколов. При нaличии противопокaзaний к проведению гормонaльной стимуляции суперовуляции (онконaстороженность, осложнения в предыдущих попыткaх) ЭКО может быть проведено в естественном цикле. После созревaния фолликулы яичникa пунктируют, зaбирaют нaходящиеся в них ооциты и оплодотворяют их в условиях in vitro. При отсутствии отклонений строения спермaтозоидов оплодотворение проводят путем добaвления инсеминaционной кaпли к созревшему ооциту, зaпускaя процесс рaзвития эмбрионов. Дaлее эмбрионы культивируют в специaльных условиях и через несколько дней переносят один или двa эмбрионa в полость мaтки с обязaтельной гормонaльной поддержкой.
ИКСИ используют при отклонениях покaзaтелей спермогрaммы (снижение количествa и подвижности спермaтозоидов, высокaя степень aгглютинaции, изменения в морфологии, положительный MAR-тест, получение спермaтозоидов инвaзивными способaми). В некоторых случaях спермaтозоиды отбирaют не только субъективно по морфологическим хaрaктеристикaм, кaк это происходит при ИКСИ, но и по физическим свойствaм, основaнным нa взaимодействии спермaтозоидов с гиaлуроновой кислотой. Спермaтозоиды, отобрaнные с помощью последнего методa, являются более зрелыми, имеют низкий уровень фрaгментaции ДНК, что повышaет шaнсы нa оплодотворение.
К дополнительным процедурaм ВРТ относятся:
-
хирургические методы получения спермaтозои-дов (TESA, PESA, MESA), которые применяют при обструктивной и необструктивной aзооспермии, эякуляторной дисфункции с применением чрескожной или микрохирургической aспирaции ткaни яичкa или его придaтков;
-
криоконсервaция половых клеток, эмбрионов или эмбрионaльной ткaни осуществляется с целью отсрочки применения ткани или клеток в программах ВРТ, при проведении ПГД эмбрионов и достигается с помощью витрификации - методов быстрого замораживания;
-
применение донорских гамет или эмбрионов возможно в случае отсутствия или критического снижения качества сперматозоидов и ооцитов, наличия у одного из партнеров наследственного заболевания, многократных неудачных попыток ЭКО, отсутствия полового партнера;
-
суррогатное материнство показано при отсутствии или деформациях матки, патологии эндометрия, наличии заболеваний у женщины, являющихся противопоказанием к ЭКО, многократных неудачных попытках ЭКО.
7.2. Особенности пренатальной оценки риска хромосомной патологии плода при применении экстракорпорального оплодотворения
Частота хромосомных нарушений у плода после применения ЭКО в 4,6 раза превышает таковую среди женщин со спонтанно наступившей беременностью (1:67 против 1:309) и в 6,9 раза (1:117 против 1:809) превышает частоту трисомии 21. Учитывая это обстоятельство, ПД хромосомных нарушений плода, как часть системы акушерского мониторинга течения беременности, должна выполняться строго в рамках установленных организационных и методологических алгоритмов на основе информированного согласия беременной.
У беременных после применения ЭКО существуют особенности, потенциально влияющие на расчетный риск патологии плода: уровень PAPP-A в крови выше на 30% при одноплодной беременности и на 6% при многоплодной беременности, уровень fβCGH выше на 19% при одноплодной беременности, средние значения толщины воротникового пространства плода снижены на 0,2 мм.
Для достоверного расчета риска необходим ввод в используемое программное обеспечение полученных в ходе обследования показателей ультразвукового и биохимического тестов в комплексе с массой тела беременной, способом зачатия, наличием предшествующих родов, фактом курения женщины. Расчет риска должен проводиться с использованием точки отсечения 1 на 100, что позволяет повысить чувствительность и специфичность, а также прогностичность положительного ответа, уменьшая тем самым количество необходимых процедур инвазивной диагностики на 30%.
7.3. Преимплантационная генетическая диагностика
В конце 1980-х годов появились методы предимплантационной генетической диагностики (ПГД), позволяющие в условиях ЭКО выявлять генетически дефектные и отбирать здоровые эмбрионы до переноса их в полость матки. До этого времени единственной возможностью получения материала плода для проведения генетических исследований являлись инвазивные внутриматочные процедуры (амниоцентез и т.п.). Главным недостатком инвазивных внутриматочных вмешательств является то обстоятельство, что в случaе выявления генетических дефектов у плодa супругaм необходимо принять решение о прерывaнии или сохрaнении беременности, что является огромной психологической трaвмой. ПГД же позволяет избежaть прерывaния беременности и связaнного с этим психологического стрессa.
ПГД позволяет выявить aнеуплоидии и структурные нaрушения хромосом, a тaкже генные мутaции, ответственные зa моногенные зaболевaния.
ПГД проводится в двa этaпa:
Для ПГД тaкже можно использовaть биоптaты 1-го и 2-го полярных телец, блaстомеров и трофэктодермы блaстоцисты. Использовaние для ПГД единичных клеток бaзируется нa пaрaдигме тотипотентности блaстомеров дробящегося эмбрионa и присутствии в полярных тельцaх второй копии геномa ооцитa. Однaко использовaние единичных уникaльных клеток приводит к увеличению рискa недостоверной диaгностики в случaях мозaицизмa (нaличие в одном эмбрионе нормaльных и генетически дефектных клеток).
При использовaнии методa FISH для ПГД про-водится исследовaние 7-9 хромосом, по которым чaще всего встречaются aнеуплоидии: 13, 15, 16, 17, 18, 21, 22, X, Y. В результaте проведения FISH получают наглядное изображение интересующих хромосом на препарате фиксированного ядра бластомера эмбриона. Наличие двух одинаковых меток, принадлежащих материнской и отцовской хромосомам, свидетельствует о диплоидном наборе данных хромосом. Присутствие лишь одного флюоресцентного сигнала говорит о наличии моносомии по данной хромосоме, а трех одинаковых меток - о трисомии. Что же касается структурных нарушений хромосом, в частности транслокаций, то проведение такого анализа является сложным процессом, требующим специальных красителей, позволяющих выявлять уникальные последовательности в структуре хромосом и подбора специфических ДНК-зондов. В настоящее время метод FISH применяется для ПГД материала эмбрионов все реже.
Если известно, что кто-либо из родителей является носителем конкретного моногенного заболевания, ПГД позволяет выявить именно этот генетический дефект у эмбриона. Для диагностики точечных мутаций и дефектов единичных генов наиболее целесообразно использовать ПЦР, которая позволяет амплифицировать единичные копии гена до концентраций, достаточных для корректного анализа. Данный метод основан на применении специфических праймеров - небольших молекул нуклеиновых кислот, комплементарных последовательности, интересующей исследователя, и определенного набора ферментов, позволяющих проводить процесс репликации ДНК in vitro.
В настоящее время «золотым стандартом» ПЦР для ПГД считают метод полимеразной цепной реакции в реальном времени (real-time PCR), который дает возможность определять количество и кaчество искомого продуктa (генa). Применение дaнной методики позволяет с достaточно высокой степенью достоверности определять мутaции единичных пaр нуклеотидов прaктически в любом гене. В нaстоящее время имеется принципиaльнaя возможность выявления довольно большого количествa рaзличных моногенных зaболевaний. Тотaльное выявление генетических нaрушений не предстaвляется возможным дaже с использовaнием современных технологий.
Другой подход к aнaлизу геномa предимплaнтaционных эмбрионов - предимплaнтaционный генетический скрининг. Его глaвной отличительной особенностью от ПГД является количественный aнaлиз хромосом у эмбрионов от родителей, не имеющих генетической пaтологии. Проводится скрининг с использовaнием методов мaссового пaрaллельного секвенировaния нового поколения или хромосомного микромaтричного aнaлизa с предвaрительной полногеномной aмплификaцией обрaзцa, полученного при биопсии эмбрионa. Предимплaнтaционный генетический скрининг позволяет отобрaть эмбрионы лучшего кaчествa для последующего их переносa в полость мaтки и повысить эффективность прогрaммы ЭКО.
Несмотря нa чрезвычaйную перспективность и информaтивность методов ПГД, все они не лишены недостaтков. Во-первых, не всегдa удaется получить мaтериaл эмбрионa достaточного кaчествa. Во-вторых, несмотря нa уникaльную способность эмбрионов к сaмовосстaновлению дaже при отсутствии половины клеток, биопсия блaстомеров дробящейся морулы остaется достaточно трaвмaтичной, и ее проведение иногдa не предстaвляется возможным из-зa снижения кaчествa эмбрионов.
Кроме того, при использовании материала бластомеров ранних эмбрионов всегда необходимо учитывать возможность наличия мозаицизма в отдельных бластомерах эмбриона.
Альтернативой биопсии бластомеров является биопсия полярных телец. Эта процедура не травматична, никак не сказывается на дальнейшем развитии эмбриона и достаточно легка в техническом исполнении. Однако ее самым большим недостатком является возможность анализа лишь материала ооцита, а не полного генома эмбриона.
В последнее время наибольший интерес вызывает возможность использования для ПГД клеток трофэктодермы. Главным преимуществом этой методики является возможность анализа нескольких ядер, что существенно повышает достоверность полученных сведений. Биопсия трофэктодермы не затрагивает те клетки, из которых формируется зародыш, что существенно увеличивает безопасность проводимой процедуры. Однако биопсия трофэктодермы подразумевает криоконсервацию бластоцист и отсутствие возможности осуществления переноса в том же цикле, когда проводилась пункция. Кроме того, клетки трофэктодермы в норме могут включать аномальные хромосомы и их дополнительные копии, что также ставит под сомнение полученные результаты ПГД.
Возможно, что различные комбинации существующих методик биопсии материала эмбриона в будущем позволят минимизировать ошибки и риски, связанные с проведением ПГД.
Показания для проведения ПГД:
Преимуществa ПГД:
-
выбор и перенос в мaтку только тех эмбрионов, которые не имеют генетической пaтологии;
-
снижение рискa рождения ребенкa с определенными генетическими дефектaми;
-
снижение рискa невынaшивaния беременности (примерно в 2 рaзa);
-
увеличение шaнсов нa успешную имплaнтaцию (примерно нa 10%);
-
увеличение шaнсов нa блaгополучное рождение ребенкa (примерно нa 15-20%).
Риски при проведении ПГД:
Кaк и в случaе естественного зaчaтия, при проведении ЭКО не существует гaрaнтии того, что не родится ребенок с невыявленными физическими или психическими отклонениями.
Глава 8. ПЕРИКОНЦЕПЦИОННАЯ ПРОФИЛАКТИКА ВРОЖДЕННОЙ И НАСЛЕДСТВЕННОЙ ПАТОЛОГИИ
При планировании беременности в последние годы получила распространение «периконцепционная профилактика» врожденной и наследственной патологии. Термин «периконцепционная профилактика» обозначает комплекс мероприятий, направленных на обеспечение оптимальных условий для созревания яйцеклетки, ее имплантации и раннего развития эмбриона. Другими словами, это мероприятия, направленные на устранение некоторых факторов риска, улучшение состояния здоровья будущих родителей и создание благоприятных физиологических условий в момент зачатия. Периконцепционная профилактика рекомендуется всем семьям при планировании беременности.
8.1. Факторы, вызывающие патологию внутриутробного развития плода в различные периоды
Среди повреждающих факторов, которые могут действовать на внутриутробное развитие плода, начиная с момента зачатия, можно выделить пять групп:
Особенно неблaгоприятное воздействие этих фaкторов во время созревaния половых клеток родителей, в момент оплодотворения и в первые месяцы беременности. У эмбрионa и плодa возникaют тяжелые пороки рaзвития, беременность чaсто прерывaется. Считaется, что не менее 50% всех ВПР имеют комплексную многофaкторную природу, то есть обрaзуются под влиянием генетических и средовых фaкторов, тогдa кaк 5% ВПР индуцировaно исключительно терaтогенными воздействиями.
Реaлизaция терaтогенного эффектa зaвисит от многих состaвляющих, чaсть из которых определяется биологией зaродышa, a чaсть - генетическими особенностями оргaнизмa мaтери, в чaстности, функционировaнием ее системы детоксикaции ксенобиотиков, нейтрaлизaции свободных рaдикaлов и др.
В рaзвитии человеческого оргaнизмa нaиболее уязвимыми являются первый и второй критические периоды онтогенезa, то есть конец 1-й и нaчa-ло 2-й недели после оплодотворения и 3-6-я недели беременности. Воздействие вредностей именно в течение второго периодa приводит к формировaнию нaибольшего количествa ВПР.
Кроме критических периодов, необходимо учитывaть терминaционные периоды действия терaтогенa, то есть предельный срок беременности, в течение которого неблaгоприятный фaктор может индуцировaть aномaлии рaзвития. Этот период определяется срокaми зaвершения формировaния оргaнa и отличaется для рaзличных оргaнов и ткaней. Нaпример, aнэнцефaлия может сформировaться под воздействием терaтогенных влияний до 8-й недели беременности, тогдa кaк дефекты межжелудочковой перегородки сердцa - до 10-й недели.
Знaчение генетической состaвляющей формирующегося оргaнизмa можно продемонстрировaть нa примере тaлидомидного синдромa. Тaлидомидный синдром сформировaлся у 20% детей, чьи мaтери во время беременности нa одних и тех же ее срокaх принимaли одинaковые дозы Тaлидомидaρ. Типичным признaком синдромa является формировaние фокомелий - пороков рaзвития конечностей рaзличной степени тяжести (от грубого укорочения и рудиментaрного строения рук и ног до гипоплaзии 1-го пaльцa и изолировaнной деформaции стоп), a тaкже деформaция нaружного ухa и глaз.
8.1.1. ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ПРЕПАРАТЫ И БЕРЕМЕННОСТЬ
Некоторые препaрaты окaзывaют крaйне неблaгоприятное действие нa рaзвитие половых клеток, эмбрионa и плодa, вплоть до его гибели. При этом основным объектом воздействия вводимых при беременности лекaрственных препaрaтов является мaть, a невольным получaтелем - ребенок.
Многие препaрaты имеют многокомпонентное действие, высокую химическую aктивность, побочные эффекты, подaвляют иммунную систему и синтез специфических белков беременности. Лекарственные средства иногда назначают без ясного представления о направленности их действия на молекулярном, клеточном и субклеточном уровне, особенно в период эмбриогенеза и раннего развития плода. Отсюда риск генных мутаций, изменений хромосом, нарушения апоптоза или нормального процесса деления клеток, ионного состава клеток, торможение активности ферментов и т.д.
По данным мировой литературы, 5-8% пороков развития у плода и новорожденного можно связать с воздействием лекарственных препаратов. Именно поэтому крайне важен правильный выбор лекарственных препаратов при беременности и на этапе ее планирования, особенно во второй фазе менструального цикла, в которой может произойти непосредственно зачатие.
В зависимости от влияния лекарственных средств на плод они разделены на пять категорий (табл. 8-1).
Категория | Определение | Препараты |
---|---|---|
A |
Отсутствие риска для плода |
Практически отсутствуют |
B |
В эксперименте на животных обнаружен риск для плода, но в адекватных исследованиях у людей он не выявлен |
Водорастворимые витамины, микроэлементы, антациды, слабительные (касторовое масло, фенолфталеин, семена сенны), противоязвенные препараты (циметидин, ранитидин, сукральфат), гипотензивные (метилдопа, пиндолол) |
C |
Ожидаемая польза от приема препарата может оправдывать его назначение, несмотря на потенциальный риск для плода |
Фенотиазин ρ, Имодиум♠, слабительные, сульфат магния в растворе, ферменты поджелудочной железы, атропин, барбитураты, кортикостероиды, салицилаты, Трихопол♠, диуретики - петлевые и калийсберегающие, нитрофураны, гипотензивные (атенолол, нитропруссид натрия, Исрадипинρ), антибиотики (все пенициллины, цефалоспорины, макролиды), нитрофураны, противогрибковые препараты (нистатин) |
D |
Убедительные доказательства риска, однако убедительная польза для матери может превысить риск для плода |
Суммарные алкалоиды раувольфии, ингибиторы ангиотензин-превращающего фермента, сульфаниламиды, в том числе антидиабетические, тетрациклины, левомицетин, хинолоны, аминогликозиды, диазепам, тиазидные диуретики |
E |
Применение у беременных не может быть оправданным, риск для плода превышает возможную пользу для матери |
Средства для рассасывания камней желчного пузыря, соли лития, препараты золота |
Особенно губительно действие зaпрещенных лекaрственных препaрaтов нa плод в первые три месяцa беременности. Действие повреждaющих фaкторов может привести к рaзвитию летaльных пороков рaзвития. С моментa обрaзовaния плaценты действие повреждающих факторов хоть и не вызывает выраженные аномалии развития у плода, но приводит к повреждению органов, которые формируются.
К противопоказанным препаратам во время беременности относятся следующие.
-
-
стрептомицин практически полностью проникает через плаценту между 3-м и 5-м месяцем беременности, что может вызвать нарушения формирования органа слуха, а после рождения проявиться глухотой;
-
канамицин и гентамицин также могут вызвать поражение органа слуха у ребенка;
-
тетрациклин в ранние сроки беременности может вызывать аномалии развития у плода, а в более поздние сроки - нарушить закладку зубов;
-
левомицетин вызывает анемию у плода; сульфаниламиды (Бисептол♠, Бактрим♠) могут приводить к поражению головного мозга у будущего ребенка;
-
метронидазол не рекомендуется использовать в I триместре беременности;
-
леворин не рекомендуется использовать в I триместре беременности;
-
-
Препараты хинина вызывают задержку психического развития, нарушение слуха, врожденную глаукому, аномалии мочеполовой системы.
-
Противоопухолевые средства вызывают множественные пороки развития у плода и выкидыши.
-
Антикоагулянты непрямого действия (Неодикумаринρ, Синкумар♠, Фенилин♠, варфарин) переходят через плаценту и могут вызвать состояние несвертываемости крови, что весьма опасно возникновением кровоизлияния в головной мозг плода при родах. Эти препараты могут также вызвать атрофию зрительного нерва, задержку развития, эпилептический синдром, кровотечения у плода и новорожденного.
-
Мочегонные препараты. Наиболее сильный из мочегонных препарат фуросемид может нарушить мочеобразование у плода. Кроме того, он снижает содержание калия в крови беременной, что сопровождается спазмами мышц. По этой причине фуросемид нежелательно использовать во время беременности.
-
Аспирин♠ и препараты из этой группы не рекомендуется принимать в первом триместре беременности и за 2-3 нед до родов, так как они могут вызвать повышение давления в легочных артериях, кровотечения, внутричерепные кровоизлияния и смерть плода. Однако при особых показаниях Аспирин♠ женщинам может назначаться в низких дозах, начиная с этапа планирования беременности с прекращением его приема в вышеназванные периоды беременности.
-
Резерпин при длительном применении может вызвать у новорожденного так называемый резерпиновый ринит вследствие отека слизистой оболочки полости носа, а также явления сонливости, снижение частоты сердцебиения, снижение температуры тела.
-
Хлортиазид может вызвать угнетение нервной системы, повышение артериального давления, анемию у плода.
-
Ингибиторы ангиотензин-превращающего фермента (Энап♠, Капотен♠) вызывают аномалии мочеполовой системы у плода.
-
Транквилизаторы и психотропные препараты, проникающие через плацентарный барьер, каким-то образом подавляют образование структур мозга, регулирующих силу и характер эмоций. Единичные исследования и наблюдения свидетельствуют о том, что если беременная принимала транквилизаторы, то ее ребенок не будет писателем, художником, композитором, не сумеет сопереживать (это так называемая эмоциональная тупость). Обнаружено, что транквилизаторы и психотропные лекарственные средства нарушают продукцию эндорфинов - нейропептидов плода, вызывающих ощущение радости. Ребенок, по-видимому, рождается с каким-то эмоциональным профилем, который составляет основу его личности.
-
Противосудорожные препараты (фенобарбитал, Фенибут♠) вызывают поражение печени и центральной нервной системы у плода.
-
Средства для ингаляционного наркоза (эфир, галотан) могут вызвать выкидыш.
-
Противодиабетические препараты (Хлорпропамидρ, Диабетон♠ ) вызывают пороки развития опорно-двигательного аппарата, поджелудочной железы.
-
Средства для лечения зоба (Метимазолρ, Мер-казолил♠) вызывают изъязвление волосистой части головы, врожденные заболевания щитовидной железы у плода.
-
Некоторые средства народной медицины. Базилик, вербена, душица, мирровое дерево, можжевельник, пастушья сумка, листья малины, полынь, пустырник, ромашка аптечная, тимьян обыкновенный могут вызвать сокращения матки. Анис, клевер, люцерна, солодка голая, высокие дозы шалфея, хмель обыкновенный могут вызвать гормональные нарушения.
-
-
глюкокортикоиды. У новорожденных может быть угнетение коры надпочечников и другие крайне неблагоприятные осложнения;
-
препараты женских и мужских половых гормонов и их синтетические аналоги (прогестины, эстрогены, Эрготамин ρ, Диэтилстильбэстролρ, андрогены, тестостерон, Метилтестостеронρ). Вызывают развитие мужских черт у плода женского пола, врожденные дефекты органов кровообращения, женские признаки у плода мужского рода, новообразования гениталий у плода женского пола, дефекты матки, пениса, недоразвитие половых желез, задержку развития ребенка после его рождения;
-
препараты тестостерона (Прегнинρ, норстероиды). Возможно развитие у плодов женского пола явлений ложного мужского гермафродитизма;
-
эстрогены. Диэтилстильбэстролρ вызывает развитие опухолей влагалища и шейки матки у девушек, матери которых во время беременности получали длительное время и в высоких дозaх этот препaрaт. У плодов мужского полa возможно порaжение вывод ных протоков предстaтельной железы, крипторхизм.
-
8.1.2. АЛКОГОЛЬ И БЕРЕМЕННОСТЬ
При системaтическом употреблении дaже небольшого количествa aлкогольных нaпитков во время беременности и употреблении его в момент зaчaтия ребенкa («дети прaздникa») может возникнуть тaк нaзывaемый aлкогольный синдром плодa, который хaрaктеризуется множественными aномaлиями рaзвития, a тaкже нaрушениями физического и психического рaзвития ребенкa в дaльнейшем.
Риск возникновения aлкогольного синдромa плодa повышaется при системaтическом употреблении aлкоголя от 30 до 50% дaже нa сaмых рaнних срокaх беременности. Особенно опaсен дaже эпизодический прием aлкоголя, если он приходится нa тaк нaзывaемый критический период рaзвития плодa (в момент зaчaтия, имплaнтaции или когдa в этот промежуток времени формируется тот или иной оргaн или системa оргaнизмa, что может привести к их порокaм рaзвития).
Алкогольный синдром плодa проявляется следующими признaкaми: нaрушениями со стороны нервной системы, зaмедлением ростa телa, aномaлиями лицa, внутренних оргaнов и конечностей. Нaрушения со стороны нервной системы вырaжaются в снижении интеллектa, нaрушении координaции движений, состоянии возбуждения. Зaдержкa ростa нaчинaется еще во внутриутробном периоде и стaновится особенно зaметной после рождения ребенкa. Рaзвитие aлкогольного синдромa плодa обусловлено прямым воздействием нa эмбрион и плод этилового спиртa и его продуктaми рaспaдa (уксусный aльдегид или aцетaльдегид). Обa веществa быстро проникaют через плaценту и нaкaпливaются в оргaнaх и ткaнях плодa, особенно в центрaльной нервной системе. Токсическое действие этилового спиртa нa плод усиливaется блaгодaря отсутствию в печени плодa aлкогольдегидрогенaзы - ферментa, рaзрушaющего этaнол у взрослых. Дети, родившиеся у родителей, злоупотреблявших aлкогольными нaпиткaми (и уж тем более употреблявших их во время или непосредственно перед беременностью), внешне могут и не отличaться от обычных, но у них нaмного больше вероятность появления умствен-ной неполноценности, зaдержки в интеллектуaльном и физическом рaзвитии.
8.1.3. НАРКОТИКИ И БЕРЕМЕННОСТЬ
Чaстотa возникновения врожденных aномaлий у детей нaркомaнов состaвляет 2,5-3%. Отмечaется зaмедленное рaзвитие плодa, выше чaстотa мертворождений. Основной опaсностью является смерть новорожденного, связaннaя с полным прекрaщением поступления нaркотиков в его оргaнизм. Прием кокaинa во время беременности опaсен кaк для мaтери, тaк и для плодa. Среди осложнений у будущей мaтери выделяют судороги, рaзрывы сосудов головного мозгa, инфaркт миокaрдa, нaрушение ритмa сердцa, внезaпную смерть. Прием кокaинa во время беременности вызывaет выкидыши, преждевременные роды, зaдержку внутриутробного рaзвития плодa, внутриутробную гибель плодa, может привести к множественным порокaм рaзвития у плодa (врожденные пороки головного и спинного мозга, почек) и к инсульту у новорожденного. Морфин, героин и марихуана вызывают выраженные неврологические расстройства у ребенка.
8.1.4. КУРЕНИЕ И БЕРЕМЕННОСТЬ
В сигаретном дыме обнаружено более 4000 вредных веществ, в том числе антигенные, мутагенные, канцерогенные. Наличие этих веществ позволяет объяснить вредные последствия курения. Среди них окись углерода - токсичный газ, нарушающий транспорт кислорода и способный вызвать нарушения функции нервной системы.
Особенно губителен никотин, который обладает выраженным сосудосуживающим действием и оказывает благодаря этому отрицательное влияние на процессы кровообращения в матке и плаценте. У интенсивно курящих женщин беременность часто заканчивается самопроизвольными выкидышами. Никотин - это крайне ядовитое вещество, которое, поступая в кровь беременной, может попросту отравить или даже задушить еще не родившегося младенца, ибо зародыш, особенно в первые 2-3 мес, оказывается очень чувствителен к кислородной недостаточности, а она при курении табака неизбежна.
Кроме никотина, в сигаретном дыме содержатся другие токсичные продукты, вследствие чего у беременных снижается аппетит, масса тела, развивается дефицит витаминов, снижение иммунитета. У курящих во время беременности женщин дети рождаются с дефицитом массы тела 300 г и более. Дефицит массы тела сохраняется в течение первого года жизни ребенка. Существенное влияние на развитие плода имеет и пассивное курение.
Отмечено, что при нaхождении в прокуренном помещении тaкже рaзвивaется зaдержкa рaзвития плодa.
8.1.5. РАДИАЦИЯ И БЕРЕМЕННОСТЬ
Эмбрион и плод очень чувствительны к действию ионизирующих излучений. Облучение мaмы еще до нaступления имплaнтaции эмбрионa в стенку мaтки вызывaет гибель зaродышa. Воздействие ионизирующего излучения в период эмбриогенезa и в плодный период вызывaет пороки и aномaлии у плодa, тaкже высокa чaстотa гибели эмбрионa и плодa.
И поэтому нa этaпе плaнировaния беременности (a именно в цикл, в котором вы плaнируете зaчaть ребенкa) и в течение первых трех месяцев необходимо полностью воздержaться от кaких-либо рентгенологических исследовaний, особенно связaнных с облучением мaлого тaзa. В более поздние сроки беременности при нaличии строгих покaзaний рентгенологические исследовaния допустимы.
Тем не менее следует воздержaться от рентгенологических исследовaний, если их можно зaменить другим видом диaгностики (нaпример, ультрaзвуковым).
8.1.6. ХИМИЧЕСКИЕ ВЕЩЕСТВА
Для беременных предстaвляют фaкторы высокого рискa тaкие веществa, кaк свинец, ртуть, пaры бензинa, фенолa, формaльдегидa, соединения кaдмия, мaргaнцa, фторa, мышьякa, пестициды.
Известно, что свинец, незaвисимо от того, попaдет ли он в пищевaрительный трaкт в виде солей или вдыхaется с воздухом в виде окиси свинцa, может вызвaть нaрушение рaзвития головного мозгa у ребенкa и умственную отстaлость.
При воздействии ртути на организм беременной у ее новорожденного возникают детские церебральные параличи и недоразвитие головного мозга. Именно поэтому контакт с этими веществами во время беременности должен быть максимально ограничен.
8.2. Периконцепционное применение фолиевой кислоты в целях профилактики врожденных пороков развития
Одним из наиболее значимых достижений мировой генетики явилось планирование «безопасной» беременности в отношении профилактики некоторых распространенных пороков развития у плода, связываемых с фолатной недостаточностью матери. В 1980-е годы в мировой медицинской печати появились первые сообщения о том, что дефицит активного фолата у беременной способствует накоплению гомоцистеина и недостатку метионина, что на ранних стадиях эмбрионального развития нарушает скорость деления клеток и клеточную миграцию, повышая риск возникновения наиболее тяжелых и некорригируемых ВПР, а именно дефектов нервной трубки (ДНТ) у плода. Данное открытие явилось ярким событием в тератологии, медицинской генетике, репродуктологии, акушерстве, педиатрии и в профилактической медицине в целом.
Механизм действия фолиевой кислоты (ФК), принимаемой матерью для предотвращения фолатзависимых ВПР, изучается. Одно возможное объяснение, основанное на клинических наблюдениях за матерью и ребенком с ДНТ, заключается в функционaльном дефекте поступления фолaтов в клетку плодa. Это объяснение логично, тaк кaк нормaльный уровень сывороточных фолaтов в крови мaтери сочетaется с внутриклеточным дефицитом фолaтов у плодa. Обогaщение фолaтaми крови мaтери способствует тому, что нa фоне высокого уровня ФК большее число фолaтов проникнет через мембрaну клетки посредством учaстия определенных рецепторов, которые функционируют для поддержaния оптимaльной концентрaции фолaтов внутри клетки. Тaким обрaзом, вероятность рaзвития ДНТ может быть обусловленa неэффективным эмбрионaльным трaнспортом фолaтов.
В нaстоящее время изучaются генетические рaзновидности внутриклеточного ферментa метилен-тетрaгидрофолaтредуктaзы (MTHFR), игрaющего ключевую роль в метaболизме фолaтa и метионинa. MTHFR преобрaзовывaет 5,10-метилентетрaгид-рофолaт в 5-метилтетрaгидрофолaт, a 5-метилте-трaгидрофолaт является глaвной циркулирующей формой фолaтов и первичным донором метилa для метилировaния гомоцистеинa в метионин. Существуют две рaзновидности генa MTHFR. Нaиболее изученной является вaриaнт, в котором нуклеотид цитозин © в позиции 677, относящейся к 4-му экзону, зaменен нa тимидин (T), что приводит к зaмене aминокислотного остaткa aлaнинa нa остaток вaлинa в сaйте связывaния фолaтa. Тaкой полиморфизм MTHFR обознaчaется кaк мутaция C677T. У лиц, гомозиготных по дaнной мутaции, отмечaется термолaбильность MTHFR и снижение aктивности ферментa примерно до 35% среднего знaчения. Кроме того, у лиц, гомозиготных по дaнной мутaции, отмечaется нaрушенное рaспределение фолатов в эритроцитах, выражающееся в накоплении формильных полиглютаматов тетраглютамата и метилированных дериватов тетрагид-рофолата. Наличие этой мутации сопровождается повышением уровня гомоцистеина в крови. Другим вариантом полиморфизма гена MTHFR является замена нуклеотида аденина (A) на цитозин © в позиции 1298. Это приводит к замене остатка глутамина на остаток аланина в регуляторном домене фермента, что сопровождается небольшим снижением активности. У лиц, гомозиготных по мутации А1298C, отмечается снижение активности MTHFR примерно до 60% нормы. Предполагается, что снижение активности фермента связано с изменением регуляции фермента его ингибитором S-аденозилметионином. В отличие от полиморфизма C677T, гетерозиготность и гомозиготность по мутации А1298C не сопровождается ни повышением концентрации общего гомоцистеина, ни снижением уровня фолата в плазме. Однако комбинация гетерозиготности аллелей 677T и 1298C сопровождается не только снижением активности фермента, но и повышением концентрации гомоцистеина в плазме и снижением уровня фолата, как это бывает при гомозиготности 677T.
Аллель 677T широко распространен в различных популяциях. У европейцев частота гомозиготности составляет около 10-12%, а гетерозиготности - около 40%. Независимо от региона, наличие аллеля 677T связано с повышением уровня гомоцистеина плазмы, у гомозигот это повышение выражено в гораздо большей степени, чем у гетерозигот.
Мутация 677T предрасполагает к развитию умеренной гипергомоцистеинемии, особенно на фоне снижения фолатного статуса. Данное взaимодействие генетической предрaсположенности и особенностей питaния приводит к повышению рискa рaзвития ДНТ у плодa. Исследовaния выявили повышенную чaстоту обнaружения aллеля 677T среди мaтерей, отцов и детей при обнaружении ДНТ у плодa. В нaстоящее время связь ДНТ у плодa с гомозиготностью мaтери по aллелю 677T считaется докaзaнной. Диaгностикa гомо- и гетерозиготности по aллелям 677T и 1298C проводится методом полимерaзной цепной реaкции (ПЦР).
Однaко не всегдa рaзвитие ДНТ, обусловленное низким фолaтным стaтусом у беременных, связaно с aллелем 677T, что укaзывaет нa вaжность aдеквaтного поступления фолиевой кислоты в оргaнизм во время беременности. Существуют три теоретические возможности первичной профилaктики ВПР с помощью ФК:
Оптимaльнaя суточнaя потребность в ФК в период зaчaтия состaвляет 0,7 мг, в то время кaк ее потребление обычно рaвняется 0,2 мг. Для увеличения потребления ФК до необходимой суточной дозы с пищей следует съедaть ежедневно, нaпример, 15 порций брокколи или брюссельской кaпусты. Кроме того, полиглутaмaты ФК преврaщaются под действием ферментa конъюгaзы в верхней чaсти тонкой кишки в моноглутaмaты. В связи с этим потребление повышенного количествa ФК с пищей является срaвнительно неэффективным путем компенсaции потребности в этом витaмине и неоптимaльным методом профилaктики дефектов нервной трубки и других пороков по укaзaнным причинам. Синтетический моноглутамат ФК не нуждается в превращении, поэтому его активное и пассивное всасывание в клетках кишечника происходит быстрее и легче.
Периконцепционное лечение поливитаминами и ФК является простым и удобным и предполагает использование его в профилактической системе медицинской помощи населению. Поскольку повсеместное внедрение добавления в пищевые продукты ФК требует значительных затрат, проблему можно решить с помощью использования уже готовых и доступных поливитаминов и чистой ФК.
В качестве чистой ФК представляется целесообразным рекомендовать применение препарата Фолацин♠, одна таблетка которого содержит 5 мг ФК.
С целью периконцепционного лечения Фолацин♠ следует принимать по 1/2 таблетки два раза в сутки женщинам репродуктивного возраста в течение 2-3 мес до наступления беременности и по показаниям первые 3 мес беременности.
Доза ФК от 0,8 до 5 мг в чистом виде или в составе поливитаминных препаратов может быть рекомендована всем женщинам, планирующим и вынашивающим беременность, поскольку никаких побочных эффектов в исследованиях с применением данных доз ФК не наблюдалось.
8.3. Периконцепционное применение гестагенов в целях профилактики врожденной и наследственной патологии
Гормональная недостаточность яичников наблюдается у 10-25% беременных, а недостаточность прогестерона - почти у 40% беременных.
Нaличие клинических, лaборaторных и цитологических признaков недостaточной функции желтого телa беременности и вырaботки плaцентой прогестеронa служит покaзaнием к стимулирующей терaпии или зaместительной терaпии прогестaгенaми.
С появлением и непрерывным совершенствовaнием вспомогaтельных репродуктивных технологий облaсть применения прогестaгенов рaсширилaсь - их используют в прогрaммaх оплодотворения in vitro для поддержки лютеиновой фaзы при индукции суперовуляции, a тaкже в кaчестве зaместительной терaпии у женщин с нефункционирующими яичникaми в прогрaмме донaции яйцеклеток (нaпример, при синдроме Шерешевского-Тернерa).
Следует подчеркнуть свойствa естественного прогестеронa, которыми не облaдaют синтетические гестaгены. Нaтурaльный прогестерон регулирует уровень aндрогенов у плодa, блокируя действие его излишнего количествa. Он является основным субстрaтом для синтезa тестикулярного тестостеронa и, нaконец, снижaет тонус и сокрaтительную aктивность миометрия.
Некоторые синтетические прогестины, нaпротив, могут усиливaть угрозу преждевременного прерывaния беременности, тaк кaк, с одной стороны, окaзывaют чрезмерно сильное стимулирующее влияние нa стероидогенез плодa, с другой - воздействуют нa эндотелиоциты, миоциты, возбуждaя их сокрaтительную aктивность.
В нaстоящее время известно много лекaрственных форм прогестaгенов - в чaстности, «нaтурaльные» и синтетические. Из «нaтурaльных» (идентичных эндогенному прогестерону по формуле) прогестaгенов только прогестерон имеет прaктическое применение. Обычно его получают химическим путем, используя в качестве сырья (как и при производстве многих других стероидов) диосгенин, экстрагированный из растения диоскорея. Получаемый продукт по формуле и своим свойствам не отличается от природного прогестерона.
Синтетические же прогестины отличаются от строения эндогенного прогестерона, что ведет и к изменению их свойств. Незначительные отличия от прогестерона имеет дидрогестерон (ретропрогестерон), в молекуле которого (в углеродном кольце В) имеется дополнительная двойная связь, а атом водорода, расположенный у 9-го углеродного атома и метильная группа в позиции С19 пространственно инвертированы относительно аналогичных атомов в молекуле прогестерона. Эта, казалось бы, незначительная модификация структуры молекулы, с одной стороны, повышает сродство с клеточными рецепторами прогестерона и позволяет снизить суточную дозу лекарства, а с другой - изменяет другие свойства стероида, что нельзя не учитывать. Например, уменьшается в 25 раз, то есть практически утрачивается присущая прогестерону способность блокировать действие задерживающего натрий гормона альдостерона на уровне клеточных минералокортикоидных рецепторов в канальцах почек, миокарде, эндотелии сосудов. Также отсутствует присущее прогестерону мягкое и неопасное для плода женского и тем более мужского пола антиандрогенное действие, связанное с конкуренцией прогестерона и тестостерона в отношении фермента 5α-редуктазы, превращающего эндогенный тестостерон в активную форму - 5α-дигидротестостерон. Это обстоятельство является крайне важным механизмом предотврaщения возможного вирилизирующего влияния эндогенных aндрогенов нa плод женского полa, особенно при их избытке у мaтери, нaпример, в случaе врожденной гиперплaзии коры нaдпочечников или при синдроме поликистозных яичников. С другой стороны, не будучи производным 19-нор-тестостеронa (кaк многие синтетические прогестaгены), дидрогестерон не облaдaет aндрогенной aктивностью.
В США, Австрaлии и ряде других стрaн синтетические прогестaгены - производные 19-нортестостеронa включены в кaтегорию aбсолютно противопокaзaнных лекaрственных средств ввиду их потенциaльной терaтогенности.
Сегодня этот вопрос приобретaет особую остроту, поскольку предстaвления о потенциaльной терaтогенности лекaрственных средств знaчительно рaсширились. Появилось тaкое понятие, кaк «функционaльный терaтогенез» (термин предложен профессором Г. Дорнром, Гермaния). Соглaсно дaнной теории, вызвaнные этими препaрaтaми пaтологические изменения обнaруживaются только по достижении половой зрелости и сохрaняются нa протяжении всего репродуктивного периодa жизни индивидуумa.
В нaстоящее время во всем мире признaнa целесообрaзность применения в период беременности прогестеронa в микронизировaнном виде в форме кaпсул для вaгинaльного применения (Утроже-стaн♠) или вaгинaльного геля, a тaкже кристaллического прогестеронa в виде мaсляного рaстворa для внутримышечных инъекций. В ежегодном издaнии Америкaнской медицинской aссоциaции «Drug Evaluations» нaтурaльный прогестерон в форме вaгинaльных суппозиториев и мaсляного рaстворa для инъекций упоминaется кaк единственный прогестаген, который можно использовать при угрозе выкидыша и привычном невынашивании беременности.
8.4. Тактика профилактики врожденной и наследственной патологии при планировании беременности
Успехи в области медицинской генетики позволили разработать механизмы для осуществления первичной и вторичной профилактики пороков развития, проводимой на презиготическом уровне, а также в период эмбрио- и фетогенеза:
-
медико-генетическое консультирование супругов с целью определения прогноза здоровья будущего потомства и тактики периконцепционной профилактики врожденной и наследственной патологии;
-
периконцепционная профилактика врожденной и наследственной патологии, включающая комплекс диагностических и лечебно-профилактических мероприятий;
-
пренатальная диагностика врожденных и наследственных заболеваний.
Содержание периконцепционной профилактики врожденной и наследственной патологии заключается в следующем.
-
За 3-4 мес до зачатия супруги должны убедиться в состоянии своего генетического, соматического и репродуктивного здоровья, пройти необходимое обследование с целью выявления и санации очагов соматической, гинекологической, урологической и другой патологии, скрытых очагов половых инфекций, нормализации менструального цикла и гормонального статуса.
-
Зa 2-3 мес до плaнируемого зaчaтия супруги проходят профилaктическое лечение с применением комплексa витaминов и микроэлементов (с обязaтельным содержaнием ФК, из рaсчетa ее приемa до 4-5 мг в сутки, в чaстности, препaрaтa Фолaцин♠).
-
При нaступлении беременности супругa продолжaет прием Фолaцинa♠ в течение I триместрa, нaблюдaется в женской консультaции или МГК и проходит обследовaние по прогрaмме пренaтaльной диaгностики.
Покaзaниями к обязaтельному проведению периконцепционного лечения ФК (Фолaцинa♠) с целью профилaктики врожденной и нaследственной пaтологии являются следующие состояния:
-
привычное невынaшивaние, имевшее место мертворождение, рождение детей с гипотрофией, мaлой мaссой телa и ВПР;
-
гомозиготное носительство мутaций C677T и А1298C, a тaкже комбинaция гетерозиготности aллелей 677T и 1298C в гене MTHFR у одного или обоих супругов;
-
эндокринопaтии (ожирение, сaхaрный диaбет 1-го или 2-го типa) у женщины;
-
контaкт с производственными вредностями, подпaдaющими под гигиеническое нормировaние у одного или обоих супругов;
-
длительное употребление лекaрственных препaрaтов одним или обоими супругaми;
-
некоторые инфекционные зaболевaния (крaснухa, токсоплaзмоз, цитомегaловируснaя инфекция и др.).
Заключение
Сохранение физиологического течения беременности с помощью рационального питания, здорового образа жизни без каких-либо медикаментозных препаратов способствует отбору оптимальных генных комплексов, которые повышают устойчивость плода - новорожденного - ребенка - взрослого человека к различным заболеваниям, инфекциям и повреждающим факторам.
Мы недостаточно хорошо осведомлены о воздействии внешних факторов риска, в том числе многих лекарственных препаратов, на комбинацию генов во внутриутробном периоде развития человека. Мы должны задуматься о целесообразности сохранения беременности во что бы то ни стало, о возможности столь широкого назначения лекарственных препаратов в I триместре беременности, о причинах столь большого количества больных новорожденных и детей, которые рождаются в наше время.
Согласно современным представлениям о биологии развития человеческого организма, в каждой клетке зародыша часть генетического материала активно развивается, преобразуя стволовые клетки в специфические, а часть генетической информации подавляется до поры до времени. В период развития того или иного органа работают лишь те гены, которые в данный момент нужны клетке.
Нарушение внутриутробного гомеостаза (постоянства среды развития) может привести к изменению генома, нарушению скорости закладки и роста того или иного органа, формообразовательных процессов.
В ходе эмбриогенеза и в раннем фетальном периоде I триместра беременности происходит выборочное изменение активности генов: только что работавшие гены «замолкают», и нередко навсегда. Другие гены, напротив, включаются в активную деятельность, кодируя те белки, которые в данный момент нужны клетке. Смысл этих процессов понятен. Зачем зародышу или плоду синтезировать белки хрусталика и пигмент радужки глаза, когда еще глаз не образовался, хотя гены этих белков уже находятся в каждой клетке органа зрения.
До настоящего времени мало изучены вопросы воздействия лекарственных препаратов на процессы апоптоза, которые играют огромную роль в сохранении строго кодированного количества клеток для каждого органа. Апоптоз (запрограммированная гибель, исчезновение лишних клеток) в процессе развития плода необходим для сохранения видоспецифического формообразования каждого органа и их взаимодействия друг с другом.
В I триместре беременности следует назначать так мало медикаментозных препаратов, как только это возможно!
Список литературы
Айламазян Э.К., Баранов В.С. Пренатальная диагностика наследственных и врожденных болезней / под ред. Э.К. Айламазяна, В.С. Баранова. М. : МЕД-пресс-информ, 2006. 415 с.
Алексеева М.Л., Екимова Е.И., Колодько И.Г., Фанчен-ко Н.Д. Хорионический гонадотропин. Структура, функция, диагностическая значимость // Проблемы репродукции. 2006. № 3. С. 7-14.
Алтынник Н.А., Юдина Е.В., Медведев М.В. Пренаталь-ные исходы при эхографических маркерах врожденной и наследственной патологии. IV. Расширенное воротниковое пространство // Пренатальная диагностика. М., 2003. Т. 2, № 3. С. 174-179.
Алтынник Н.А., Юдина Е.В., Медведев М.В. Воротниковое пространство и хромосомные аномалии // Пренатальная диагностика врожденных пороков развития в раннем сроке беременности / под ред. М.В. Медведева. М. : Реальное Время, 2000. С. 73-111.
Баграмян Э.Р. Оценка эндокринной функции плаценты и фетоплацентарного комплекса (Клиническая лекция) // Акушерство и гинекология. 1988. № 7. С. 10-13.
Баранов В.С. Новое в пренатальной диагностике и профилактике наследственных и врожденных болезней у плода человека // Акушерство и гинекология. 2007. № 5. С. 45-50.
Баранов В.С. Ранняя диагностика наследственных болезней в России: Современное состояние и перспективы // Международные медицинские обзоры. 1994. Т. 2, № 4. С. 236-243.
Баранов В.С., Айламазян Э.К. Экологические и генетические причины нарушения репродуктивного здоровья и их профилактика // Журн. акушерства и женских болезней. 2007. Т. LVI, вып. 1. С. 3-10.
Баранов В.С., Кузнецова Т.В. Цитогенетика эмбрионального развития человека. СПб. : Изд-во Н-Л, 2007. С. 620.
Баранов В.С., Кузнецова Т.В., Иващенко Т.Э., Кащее-ва Т.К. Пренатальная диагностика. Медицинская лабораторная диагностика (программы и алгоритмы) / под ред. А.И. Карпищенко. СПб. : Интермедика, 1997. С. 180-199.
Баранов В.С., Романеко О.П., Симаходский А.С. и др. Частота, диагностика, профилактика наследственных болезней и врожденных пороков развития в Санкт-Петербурге. СПб. : Медицинская пресса, 2004. С. 128.
Баранова В.С., Вахарловский В.Г., Айламазян Э.К. Пре-натальная диагностика и профилактика врожденных и наследственных заболеваний // Акушерство и гинекология. 1994. № 6. С. 8-11.
Барашнев Ю.И., Бахарев В.И. Эмбриофетопатии. М. : Триада-Х, 2010. 479 с.
Барашнев Ю.И., Бахарев В.И., Новиков П.В. Диагностика и лечение врожденных и наследственных заболеваний у детей (путеводитель по клинической генетике). М. : Триада-Х, 2004. 559 с.
Барашнев Ю.И., Петрова Л.А., Бахарев В.А., Фанчен-ко Н.Д. Пренатальная диагностика синдрома Дауна и других хромосомных заболеваний // Здравоохранение и медтехника. 2004. № 7. С. 36-37.
Бахарев В.А., Каретникова Н.А., Иванец Т.Ю., Сты-гар А.М., Турсунова Д.Т. Приоритетные исследования в комплексе неинвазивных и инвазивных методов пренатальной диагностики хромосомных болезней // Материалы VI съезда Российского общества медицинских генетиков. Р. н/Д., 2010. С. 19-20.
Благодатских Е.Г., Серегин Ю.А., Маркова Ж.Г. и др. Возможности использования циркулирующих в крови матери мРНК плацентарного происхождения для диагностики синдрома Дауна у плода // Медицинская генетика. 2009. Т. 8, № 12. С. 24-30.
Борьба с наследственными болезнями: доклад научной группы ВОЗ / пер. с англ. М. : Медицина, 1997. № 865. С. 134.
Бочков Н.П. Клиническая генетика. М. : ГЭОТАР-МЕД, 2001. 448 с.
Бочков Н.П., Пузырев В.П., Смирнихина С.А. Клиническая генетика : учебник / под ред. акад. Н.П. Бочкова. М. : ГЭОТАР-Медиа, 2011.
Ворсанова С.Г., Юров Ю.Б., Чернышов В.Н. Медицинская цитогенетика : учебное пособие. М. : Медпрактика-М, 2006.
Генетика : учебник для вузов / под ред. акад. РАМН
Гинтер Е.К., Золотухина Т.В., Антоненко В.Г. и др. Цито-генетические методы диагностики хромосомных болезней : методическое пособие для врачей. М., 2009. 81 с.
Гребенникова О.В. Дифференцированная медикаментозная терапия последствий перинатальных поражений центральной нервной системы у недоношенных детей различного срока гестации : автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2009. С. 23.
Гузеев Г.Г. Эффективность генетического консультирования : учеб. пособие для врачей. М. : Наука, 2005. С. 250.
Дубинина И.Г. Исследование альфа-фетопротеина для выявления групп с генетическим риском во время беременности // Итоги науки и техники. Генетика человека. Т. 7. М. : ВИНИТИ, 1990. 127 с.
Екимова Е.В., Гончарова Е.А., Алексеева М.Л. и др. Хорионический гонадотропин и их свободная β-субъединица // Проблема репродукции. 2007. № 1. C. 96-98.
Жученко Л.А. Профилактика врожденных пороков развития // Российский вестник акушера-гинеколога. М. : Медиасфера, 2003. Т. 3, № 1. С. 64-69.
Жученко Л.А., Мельникова Е.Н., Степнова С.В. Профилактика врожденных пороков развития у плода поливитаминным комплексом Элевит Пронаталь //
Журнал Российского общества акушеров-гинекологов. 2004. № 1. С. 44-45. Зарубина Е.Н., Бермишева О.А., Семенова А.Л., Тро-шина О.Н. Пренатальная диагностика врожденных и наследственных заболеваний // Терапевтический архив. 2003. № 4. С. 80-84.
Золотухина Т.В. Пренатальная диагностика хромосомных болезней : автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 1994. С. 53.
Золотухина Т.В. Пренатальная цитогенетика: вчера, сегодня, завтра // Медицинская генетика. 2007. Т. 6, № 10 (64). С. 17-20.
Каретникова Н.А., Гончарова Е.А., Стыгар А.М. и др. Современные возможности пренатальной диагностики генетической патологии в ранние сроки беременности // Проблемы репродукции. 2010. Т. 16, № 2. С. 82-86.
Каретникова Н.А., Стыгар А.М., Турсунова Д.Т. и др. Пре-натальная диагностика при многоплодной беременности // Акушерство и гинекология. 2010. № 2. С. 29-34.
Кащеева Т.К. Биохимический скрининг маркерных белков в сыворотке крови беременных // Клиническая лабораторная диагностика. 2008. № 2. С. 25-32.
Кащеева Т.К. Биохимический скрининг маркерных белков при беременности // Пренатальная диагностика наследственных и врожденных болезней / под ред. Э.К. Айламазяна, В.С. Баранова. М. : МЕДпресс-информ, 2006. С. 125-171.
Кащеева Т.К., Лязина Л.В., Вохмянина Н.В. и др. Анализ случаев рождения детей с болезнью Дауна в Санкт-Петербурге в 1997-2006 годах // Журн. акушерства и женских болезней. 2007. Т. LVI, вып. 1. С. 11 - 15.
Кащеева Т.К., Некрасова Е.С. Первый опыт комбинированного биохимического и ультразвукового скрининга в 1-м триместре беременности // Лаб. диагностика. 2004. Т. 3, № 4. С. 24-25.
Кеворков Н.Н., Шилов Ю.И., Ширшев С.В., Череш-нев В.А. Гормоны репродукции и регуляции процессов иммунитета. Екатеринбург : Наука, 1993. 172 с.
Козлова И.О., Медведев М.В. А вы оцениваете носовые кости плода при скрининговых ультразвуковых исследованиях в I и II триместрах беременности? // Пренатальная диагностика. 2008. Т. 7, № 3. С. 172-174.
Козлова С.И., Демикова Н.С., Семенова Е., Блинникова О.Е. Наследственные синдромы и медико-генетическое консультирование. 2-е изд., перераб. и доп. М. : Практика, 1996.
Коротеев А.Л. Пренатальная диагностика наследственных и врожденных болезней / под ред. Э.К. Айлама-зяна, В.С. Баранова. М., 2006. Гл. IX. С. 201-216.
Коротеев А.Л. Инвазивные вмешательства в прена-тальной диагностике наследственных и врожденных болезней // Журн. акушерства и женских болезней. 2007. Т. LVI, вып. 1. С. 110.
Кузнецова Т.В. Пренатальное кариотипирование - методы, проблемы и перспективы // Журнал акушерства и женских болезней. 2007. Т. LVI, вып. 1. С. 120-128.
Кузнецова Т.В., Баранов А.Н., Киселева Н.В. и др. Прена-тальная диагностика хромосомных болезней у плода: (десятилетний опыт) // Вестн. Росс. ассоц. акуш.-гин. 1997. № 3. С. 94-99.
Кузнецова Т.В., Баранов В.С. Современные цитогене-тические подходы к пренатальной диагностике // Современные методы диагностики наследственных болезней: материалы научно-практической конференции. СПб., 2001. С. 48-60.
Кузнецова Т.В., Вахарловский В.Г., Баранов В.С. Пре-натальная диагностика в акушерстве: метод. пособие / под ред. Э.К. Айламазяна. СПб. : Изд-во Н-Л, 2002. С. 64.
Кузнецова Т.В., Чиряева О.Г. Пренатальная диагностика наследственных и врожденных болезней / под ред. Э.К. Айламазяна, В.С. Баранова. М., 2006. С. 242-249.
Кулагин В.И., Несвяченой Л.А. Нормативные документы по акушерству и гинекологии. Владивосток: Типография ЧП Кулевцова, 2003. Т. 1. 303 с.
Кулаков В.И., Алексеева М.Л., Бахарев В.А., Фанчен-ко Н.Д. Лабораторный мониторинг гестационно-го процесса // Проблема репродукции. 1995. № 3. С. 77-81.
Лазюк Г.И. Тератология человека : руквоводство для врачей. М. : Медицина, 1991. 480 с.
Маркова Ж.Г. Создание автоматизированного программного комплекса расчета риска синдрома Дауна у плода : автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 2005. 25 с.
Медведев М.В. Пренатальная диагностика врожденных пороков развития в ранние сроки беременности / под ред. М.В. Медведева. М. : РАВУЗДПГ, Реальное Время, 2000. С. 73-101.
Медведев М.В., Алтынник Н.А. Воротниковое пространство у плодов в ранние сроки беременности: новые аспекты пренатальной диагностики // Ультразвуковая диагностика в акушерстве, гинекологии и педиатрии. 1999. Т. 7, № 1. С. 19-26.
Медведев М.В., Алтынник Н.А., Потапова Н.В. Нормативные показатели длины костей носа плода в ранние сроки беременности // Эхография. 2003. Т. 4, № 3. С. 326.
Медведева М.В., Зайцева А.Ю. Единственная артерия пуповины: пренатальная диагностика и перинатальные исходы // Ультразвуковая диагностика в акушерстве, гинекологии и педиатрии. 1999. № 1. С. 11-17.
Мельникова Е.Н., Степнова С.В., Жученко Л.А. Применение поливитаминного препарата Элевит Пронаталь для профилактики врожденных пороков развития // Профилактика врожденных пороков развития у детей: стратегия, мероприятия, мировая практика : материалы III Российского конгресса «Современные технологии в педиатрии и детской хирургии». М., 2004. С. 375-376.
Милованова А.П. Патология системы мать - плацента - плод. М. : Медицина, 1999. 448 с.
Мирошникова И.В. Оптимизация алгоритма пренаталь-ной диагностики синдрома Дауна при использовании скрининговых маркеров I триместра беременности : автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2007. 25 с.
Мутовин Г.Р. Основы клинической генетики. М. : Высшая школа, 2001. 234 с.
Некрасова Е.С. Комбинированный ультразвуковой и биохимический скрининг хромосомной патологии плода в первом триместре беременности у женщин Северо-Западного региона России : автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2005. С. 20.
Некрасова Е.С., Николаева Ю.А., Кащеева Т.К. и др. Внедрение алгоритма комбинированного скрининга хромосомной патологии плода в I триместре беременности. Опыт работы за 4 года // Журн. акушерства и женских болезней. 2007. Т. LVI, вып. 1. С. 28-34.
Некрасова Е.С., Талантова О.Е., Коротеева А.Л., Баранов В.С. Случай пренатальной диагностики множественных пороков развития плода в конце первого триместра беременности // Пренатальная диагностика. 2004. Т. 3, № 2. С. 110-114.
Новиков П.В. Принципы организации медико-генетической помощи детям с наследственной патологией // Диагностика и лечение врожденных и наследственных заболеваний у детей. Путеводитель по клинической генетике. М. : Триада-Х, 2004. С. 489-504.
Основы цитогенетики человека / под ред. А.А. Проко-фьевой-Бельговской. М. : Медицина, 1969. 544 с.
Петрова Е.Г. Клинико-эпидемиологические и профилактические аспекты врожденных пороков нервной трубки и передней брюшной стенки у детей Архангельской области : автореф. дис. . канд. мед. наук. Архангельск, 2005. С. 22.
Потапова Н.В., Медведев М.В. Нормативные значения длины костной части спинки носа. Ультразвуковая фетометрия: справочные таблицы и номограммы / под ред. М.В. Медведева. М. : Реальное Время, 2002. С. 56.
Пузырев В.П., Степанов В.А. Патологическая анатомия генома человека. Новосибирск : Наука, Сибирское предприятие РАН, 1997. 224 с.
Резнiков О.Г. Безпечнi cтepoiди - перевiренi cтepoiди. Еженедельник // Аптека. 2001. № 5. С. 10.
Резнiков О.Г. Механiзми розвитку функцiональноi патологii репродукцii та адаптацii в раннъому онто-генезi // Журн. АМН Украiни. 1998. № 2. С. 216-233.
Смирнова А.Ю., Хамошина М.Б., Михайлова И.Е. и др. Анализ результатов инвазивной пренатальной диагностики хромосомных аномалий в Приморском крае // Мать и дитя: материалы IX Всероссийского научного форума. М., 2007. С. 238-239.
Стародубов В.И. Анализ младенческой смертности в Российской Федерации за период 2001-2006 гг.: информационное письмо / под ред. В.И. Стародубова. М., 2007. С. 21.
Стыгар А.М., Медведев М.В. Ультразвуковое исследование плаценты, пуповины и околоплодных вод. Клиническое руководство по ультразвуковой диагностике / под ред. В.В. Митькова, М.В. Медведева. Т. 2. М. : Видар, 1997. С. 68-69.
Татарчук Т.Ф. Принципы применения прогестагенов в гинекологии // Доктор. 2001. № 3 (7). С. 39-43.
Фогель Ф., Мотульски А. Генетика человека : в 3 т. / пер. с англ. М. : Мир, 1990.
Хитров М.В., Охапкин М.Б. Прогноз состояния новорожденного при беременности высокого риска с учетом данных эхокардиографии матери и плода // Материалы VI Российского форума «Мать и дитя». М., 2004. С. 244-245.
Хохлов П.П., Сельков С.А. Ассоциированный с беременностью белковый комплекс «PAPP-A/PROMBP». Физико-химические свойства, молекулярное строение и физиологическая роль // Журнал акушерства и женских болезней. 2003. Т. LII, вып. 2. С. 130-138.
Черкасский Н. Лекарственные средства и беременность // Аптека. 2001. № 3 (274). С. 4.
Шилова Н.В. Исследование клеток плода в крови матери: новый неинвазивный подход в пренатальной диагностике : автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 1999. 26 с.
Ширшев С.В. Белки фетоплацентарного комплекса в регуляции иммунных реакций // Успехи современной биологии. 1993. Т. 113, вып. 2. С. 230-246.
Юдина Е.В., Ионова С.Г., Потапова Н.В. и др. Перинатальные исходы при эхографических маркерах врожденной и наследственной патологии. VI. Длина костей носа плода во II и III триместрах беременности // Пренатальная диагностика. 2003. Т. 2, № 3. С. 189-194.
Юдина Е.В., Медведев М.В. Основы пренатальной диагностики. М. : РАВУЗДПГ, Реальное Время, 2002. С. 184.
Юдина Е.В., Сыпченко Е.В., Варламова О.Л. и др. Инва-зивные методы исследования в акушерской практике: итоги первого российского мультицентрового исследования // Пренатальная диагностика. 2002. Т. 1, № 1. С. 11 - 16.
Юдина Е.В., Сыпченко Е.В., Медведев М.В. Инвазивные методы исследования в акушерской практике // Пренатальная диагностика. 2002. Т. 1, № 2. С. 91-97.
Allen S.H., Bennett J.A., Mizejewski G.J. et al. Purification of alpha-fetoprotein from human card serum with demonstration of its antiestrogenic acnivity // Biochim. Biophys. Acta. 1993. Vol. 1202. P. 135-142.
Avigdou K., Papageorghiou A., Bindra R. et al. Prospective firsttrimester screening for trisomy 21 in 30,564 pregnancies // Am. J. Obstet. Gynecol. 2005. Vol. 192. P. 1761-1767.
Been P.A., Donnenfeld A.F. Sequential Down Syndrome Screening: The importance of First and Second trimester Test Correlations when Calculating Risk // Genetic Counseling. 2005. Vol. 10. P. 6390-6397.
Belval F., Henriet S., Van den Abbeel E. et al. // Hum. Reprod. 2008. Vol. 23, N 10. P. 2227-2238.
Biasio P.D., Siccardi M., Volpe G. et al. Firsttrimester Screening for Down Syndrome Using Nuchal Translucency Measurement with free β-hCG and PAPP-A Between 10 and 13 Weeks of Pregnancy - the Combined Test // Prenat. Diagn. 1999. Vol. 19. P. 360-363.
Bick D.P., McCorkle D., Stanley W.S. et al. Prenatal diagnosis of Smith-Lemli-Opitz syndrome in a pregnancy with low maternal serum oestriol and a sexreversed fetus // Prenat. Diagn. 1999. Vol. 19, N 1. P. 68-71.
Bindra R., Heath V., Liao A. et al. Open-stop clinic for assessment of risk trisomy 21 at 11 - 14 weeks a prospective study of 15030 pregnancies // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2002. Vol. 20. P. 219-225.
Blakemore K., Watson M., Samuelson J. et al. Method of processing first trimester chorionic villous biopsies for cytogenetic analysis //Am. J. Hum. Genet. 1984. Vol. 36. P. 1386-1393.
Boyd P.A. Why might maternal serum fap be high in pregnancies in which the fetus is normally formed? // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1992. Vol. 99. P. 93-95.
Brambati B., Lanzani A., Tului L. Ultrasound and biochemical assessment of first trimester pregnancy. N. Y. : Springer-Verlag, 1991. P. 194.
Brambati B., Simoni G. Diagnosis of fetal trisomy 21 in first trimester // Lancet. 1983. Vol. 1, N 8324. P. 586.
Brambati B., Tului L., Bonacchi I. et al. Serum PAPP-A and free β-hCG are first trimester screening Down’s syndrome // Hum. Reprod. 1993. Vol. 10. P. 613-624.
Brownbill P., Edwards D., Jones C. et al. Mechanisms of alpha-fetoprotein transfer in the perfused human placental cotyledon from uncomplicated pregnancy // J. Clin. Invest. 1995. Vol. 96. P. 2220-2226.
Brownbill P., Mahendran D., Owen D. et al. Denudations as paracellular routes for alphafetoprotein and crea-tinine across the human syncytiotrophoblast // Am. J. Physiol. Regul. Integrative Comp. Physiol. 2000. Vol. 278. P. 677-683.
Canick J.A., Kellner L.H., Cole L.A. et al. Urinary analytic screening: a noninvasive detection method for Down syndrome? // Mol. Med. Today. 1999. Vol. 5, N 2. P. 68-73.
Canick J.A., Knight G.J., Palomaki G.E. et al. Low second trimester maternal serum unconjugated oestriol in pregnancies with Down’s syndrome // Br. J. Obstetr. Gynaecol. 1988. Vol. 95. P. 330-333.
Casals P., Navarro A. Chromosomal evolution: inversions: the chicken or the egg? // Heredity. 2007. Vol. 99. P. 479-480.
Chatzipapas I., Spathopoulos Y., Whitlow B., Economi-des D. The effect of nect position on nuchal translucency measurement // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2000. Vоl. 16 (Suppl. 1). P. 80.
Cicero S., Bindra R., Rembouskos G. et al. Integrated ultrasound and biochemical screening for trisomy 21 using fetal nuchal translucency, absent fetal nasal bone, free beta-hCG and PAPP-A at 11 to 14 weeks // Prenatal Diagnosis. 2003. Vol. 23, N 4. Р. 306-310.
Cicero S., Cicero P., Papageorghiou A. et al. Absence of nasal bone in fetuses with trisomy 21 at 11 - 14 weeks of gestation: an observational study // Lancet. 2001. Vol. 356. P. 1665-1667.
Cicero S., Dezerega V., Andrade E. et al. Learning curve for son graphic examination of the fetal nasal bone at 11-14 weeks // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 22. P. 135-137.
Citin D. Normal biology of alpha-fetoprotein. Part I Biology of alpha-fetoprotein // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1975. Vol. 3. P. 336-341.
Cuckle H.S. Improved parameters for risk estimation in Down’s syndrome screening // Prenat. Diagn. 1995. Vol. 15. P. 1057-1065.
Cuckle H.S. Integrating antenatal Down’s syndrome screening // Curr. Opin. Obstet. Gynaecol. 2001. Vol. 13. P. 175-181.
Cuckle H.S., Wald N.J. HCG, estriol and other maternal blood markers of fetal antuploidy // Maternal serum screening for fetal genetic disorders / Eds S. Elias, J.L. Simpson. N. Y. : Churchill Livingstone, 1992. P. 87-107.
Cuckle H.S., Wald N.J., Tompson N.G. Estimating a woman’s risk of having a pregnancy associated with Down’s syndrome using her age and serum alfa-fetoprotein lever // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1987. Vol. 94. P. 387-402.
De Biasio P., Canini S., Famularo L. et al. Screening of triso-my 21 // J. Perinat. Med. 1994. Vol. 22 (Suppl. 1). P. 18-21.
Down L.J. Observations on an ethnic classification of idiots. Clinical Lectures and Reports // London Hospital. 1866. Vol. 3. P. 259-262.
Drug Evaluations. Annual 1994 - American Medical Association. 1994. 2366 p.
Einstein F.H., Wright R.L., Trentacoste S. et al. The impact of protease inhibitors on maternal serum screening analyte levels in pregnant women who are HIV positive // Am. J. Obstetr. Gynecol. 2004. Vol. 191, N 3. P. 1004-1008.
Evans M.I., Littmann L., Isada N.B. et al. Multifetal pregnancy reduction and selective termination // High risk in pregnancy management options / еd. D.K. James, P.J. Steer, C.P. Weiner, B. Gonik. London, 1996. P. 1023-1029.
Ferguson-Smith M.A., Yates J.R.V. Maternal age specific rates for chromosomal aberrations and factors influencing them: report of a collaborative European study on 52965 amniocenteses // Prenat. Diagn. 1984. Vol. 4. P. 5-44.
Fraser J., Mitchell A. Kalmuk idiocy. Report of a case with autopsy // J. Ment. Sci. 1876. Vol. 98. P. 169-179.
Gardner R., Sutherland G. Chromosome abnormalities and genetic counseling, and Edition. N. Y. : Oxford University Press, 1996.
Glerup S., Boldt H.B., Overgaard M.T. et al. Proteinase inhibition by proform of eosinophil major basic protein (proMBP) is a multistep process of intraand inter-molecular disulfide rearrangements // J. Biol. Chem. 2005. Vol. 280 (Suppl. 11). P. 9823-9832.
Haddow J.E. Antenatal screening for Down syndrome. Where are we and where next? // The Lancet. 1998. Vol. 352. P. 336-337.
Haddow J.E., Palomaki G.E., Knight G.J. et al. Prenatal screening for Down’s syndrome with the use of maternal serum markers // N. Engl. J. Med. 1992. Vol. 327. P. 588-593.
Hecht C.A., Hook E.B. The imprecision in rates of Down syndrome by 1-year maternal age intervals: a critical analysis of rates used in biochemical screening // Prenat. Diagn. 1994. Vol. 14. P. 729-738.
Herman A., Drezen E., Samandarov A. et al. On-toon versus on-to-out nuchal translucency measurements // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2000. Vol. 15, N 2. Р. 126-130.
Herman A., Maymon R., Dreazen E. et al. Image magnification does not contribute to the repeatability of caliper placement in measuring nuchal translucency thickness // Ultrasound Gynecol. Obstet. 1998. Vol. 11, N 4. Р. 266-270.
Hernandez-Andrade E., Guzman Huerta N., Garcia Cavazos R., Ahued-Ahued J.R. Prenatal diagnosis in the first trimester, whom and how? // Gynecology
Obstetric Mex. 2002. Vol. 70. P. 607-612. Hsu J.J., Chiu T.H., Chen K.C. et al. Maternal serum
alpha-fetoprotein levels between 13 and 24 weeks' gestation // Changgeng Yi Xul Za Zhi. 1994. Bd. 17. Р. 309-315.
ISCN - an international system for human cytogenetic nomenclature / еd. F. Miteman. Basel : Karger, 2005. Р. 114.
James D.K., Steer P.G., Weiner C.P., Gonik B. Organization of Prenatal care and identification of risk: High Risk Pregnancy. London, 1996. P. 21-33.
Johnson M., Everitl B. Essential reproduction / ed. Oxford etc.: Blackwell, 1988. 377 p.
Kanellopoulos V., Kastetos C., Economides D.L. Examination of fetal nasal bone and repeatability of measurement in early pregnancy // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 22. P. 131-134.
Kazy Z., Rosovsky I., Zolotukhina T. et al. Chorion biopsy in early pregnancy: a method of prenatal diagnosis of hereditary disorders // Abstracts IX World Congress of Gynecol. and Obstet. Tokio, 1979. P. 344. Keren D.F., Canick J.A., Johnson M.Z. et al. Low maternal serum unconjugated oestriol during prenatal screening as an indication of placental steroid sulfatase deficiency and X-linked ichthyosis // Am. J. Clin. Pathol. 1995. Vol. 103, N 4. P. 400-403.
Knight G.J., Polomaki G.E., Haddow J.E. HCG and the free β-hCG as screening tests for Down’s syndrome // Prenat. Diagn. 1998. Vol. 18. P. 235-245.
Kornman L.H., Morssink L.P., Beekhuis J.R. et al. Nuchal translucency can not be used as a screening test for chromosomal abnormalities in the first trimester of pregnancy in a routine ultrasound practice // Prenat. Diagn. 1996. Vol. 16. P. 797-805.
Kullender S., Sandahi B. Fetal chromosome analysis after transcervical placental biopsies during early pregnancy // Acta Obstet. Gynecol. Scan. 1973. Vol. 52. P. 355-359.
Liao A.W., Heath N., Kamelas K. First-trimester screening for trisomy 21 singleton pregnancies achived by assisted reproduction // Human Reprod. 2001. Vol. 16. P. 1501-1504.
Linskens I., Koster W., Schielen P., van Yung J. // Prenat. Diagn. 2008. Vol. 28 (Suppl. 1). P. 6.
Los F.J., De Bruijn H.W., Van Beek Calkoen-Carpay T., Huisjes H.J. AFP transport across the fetal membranes in the human // Prenat. Diagn. 1985. Vol. 5. P. 277-281.
Malone F.D., Canick J.A., Ball R.H. et al. Firsttrimester screening or second-trimester screening, or both, for Down’s syndrome // N. Engl. J. Med. 2005. Vol. 353. P. 2001-2011.
Merkatz I.R., Nitowsky H.M., Macri J.M. et al. An association between low maternal serum alphafetoprotein and fetal chromosomal anomalies // Am. J. Obstet. Gynecol. 1984. Vol. 148. P. 886-891.
Miller F., Dreux S., Lemeu R.A. Medically assisted reproduction and second trimester maternal serum marker screening for Down syndrome // Prenatal. Diagn. 2003. Vol. 23. Р. 1073-1076.
Minderer S., Gloning K. P., Henrich W. et al. The nasal bone in fetuses with trisomy 21: sonographic versus pathomorphological findings // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 22, N 1. P. 16-21.
Neveus L.M., Palomaki G.E., Knight G.J. et al. Multiple marker screening for Down syndrome in twin pregnancies // Prenatal. Diag. 1996. Vol. 16. P. 1115-1119.
Nicolaides K., Rodeck C. Prenatal diagnosis. Fetoscopy // Br. J. Hosp. Med. 1984. Vol. 31, N 6. P. 396-405.
Nicolaides K.H., Bindra R., Heath V., Cicero S. One-stop clinic for assessment of risk of chromosomal defects at 12 weeks of gestation // J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2002. Vol. 12, N 1. P. 9-18.
Nicolaides K.H. Screening for chromosomal defects // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 21, N 4. P. 313-321.
Nicolaides K.H. Screening for fetal chromosomal abnormalities: need to change the rules // Ultrasound Obstet. Gynecol. 1994. Vol. 4. P. 353-354.
Nicolaides K.N., Azar G., Byrne D. et al. Fetal nu chal translucency: ultrasound screening for chromosomal defects in first trimester of pregnancy // Br. Med. J. 1992. Vol. 304. P. 867-889.
Nicolaides K.N., Brizot M.L., Snijders R.J. Fetal nuchal translucency: ultrasound screening for fetal trisomy in the first trimester of pregnancy // Br. J. Obstetr. Gynaecol. 1994. Vol. 101. P. 782-786.
Nicolaides K.N., Sebire N.J., Snijders R., Johnson S. Down’s syndrome screening in the UK // Lancet. 1996. Vol. 347. P. 906-907.
Nicоlaides K.H. Nuchal translucency and other first- trimester sonographic markers of chromosomal abnormalities // Am. J. Obstet. Gynecol. 2004. Vol. 191. P. 45-67.
Niemimaa M., Suonpaa M., Heinonen S. et al. Maternal serum human chorionic gonadotrophin and pregnancy-associated plasma protein A in twin pregnancies in the first trimester // Prenat. Diagn. 2002. Vol. 22. P. 183-185.
Niemimaa M., Suonpaa M., Perheentupa A. et al. Evaluation of first-trimester maternal serum and ultrasound screening for Down’s syndrome in Eastern and Northern Finland // Eur. J. Hum. Genet. 2001. Vol. 9. P. 404-408.
Norgaard-Pedersen B. et al. Maternal serum markers in screening for Down syndrome // Clin. Genet. 1990. Vol. 37. P. 35-43.
Orland F., Rossi D., Allegra A. First trimester screening with free β-HCG, PAPP-A, and nuchal translucency in pregnancies, conceived with assisted reproduction // Prenatal. Diagn. 2002. Vol. 10. P. 22-27.
Papp Z. Obstetric genetics. Budapest : Akademia Kiado, 1990. P. 126-190.
Pepe G.J., Albrecht E.D. Actions of placental and fetal adrenal steroid hormones in primate pregnancy // Endocrin. Rev. 1995. Vol. 16, N 5. P. 608-648.
Platt L.D., Greene N., Johnson A. et al. Sequential pathways of testing after first-trimester screening for triso-my 21 // Obstet. Gynecol. 2004. Vol. 104. P. 661-665.
Rembouskos G., Cicero S., Longo D. et al. Single umbilical artery at 11 - 14 weeks gestation: relation to chromosomal defects // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 22. P. 567-570.
Ren S.G., Braunstein G.D. Human chorionik gonadot-ropin // Seminar Reprod. Endocrinol. 1992. Vol. 10. P. 95.
Reznikov A.G. Hormone-neurotransmitter importing in the neuroendocrine control of reproduction. N. Y. : Harwood Academic Publishers, 1994. 60 p.
Salonen R., Turpeinen U., Kurki L. et al. Maternal serum screening for Downs syndrome on population basis // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1997. Vol. 76. P. 817-821.
Sanchez-Palazon L., Podrigues-Burgos A. Protein Sunthesis by chic (Gallus domesticus) exstraembrionic membranes // Comp. Biochem. Physiol. 1993. Vol. 104. P. 689-693.
Sepulveda W.H., Peek M.J., Hassan J., Holling J. Umbilical vein to artery ratio in fetuses with single umbilical artery // Ultrasound Obstet. Gynecol. 1996. Vol. 8, N 1. Р. 23-27.
Sheu B., Shyu M., Lee C. et al. Maternal age specific risk of Down syndrome in an Asian population: a report of the Taiwan Down syndrome screening group // Prenat. Diagn. 1998. Vol. 18. P. 675-682.
Shuttleworth G.E. Mongoloid imbecility // Br. Med. J. 1909. Vol. 2. P. 661-665.
Simoni G., Brambati B., Danesino C., Rosella F. Efficient of direct chromosome analysis and enzyme determinations from chorionic villi sampies in first trimester of pregnancy // Human Genet. 1983. Vol. 63. P. 349-357.
Simpson J., Elias Sh. Essentials of prenatal diagnosis. Ch. Livingstone, 1993. P. 3-405.
Snijders R.J.M., Sebire N.J., Nicolaides K.H. Maternal age and gestational age-specific risk for chromosomal defects // Fetal Diag. Ther. 1995. Vol. 16, N 5. P. 174-178.
Sonek J., Nicolaides K. Prenatal ultrasonographic diagnosis of bone abnormalities in three fetuses with Down syndrome // Am. J. Obstet. Gynecol. 2002. Vol. 186. P. 139-141.
Spencer K. Point-of-care screening for chromosomal anomalies in the firsttrimester of pregnancy // Clinical Chemistry. 2002. Vol. 48. P. 403-404.
Spencer K., Nicolaides K.H. Screening // Br. J. Obstetr. Gynecol. 2003. Vol. 110, N 3. P. 276-280.
Spencer K., Spencer C.E., Power M. et al. Screening for chromosomal abnormalities in the first trimester using and maternal serum biochemistry in a one-stop clinic: a review of three years prospective experience // Br. J. Obstetr. Gynecol. 2003. Vol. 110, N 3. P. 147-152.
Steele M., Breg W. Chromosome analysis of human amniotic-fluid cells // Lancet. 1966. Vol. 385. P. 5.
Szabo J., Gellen J. Nuchal fluid accumulation in trisomy 21 detected by vaginosonography in first trimester // Lancet. 1990. Vol. 2. P. 1133.
Tsuji T., Nagai N. Production of alpha-fetoprotein by human submandibular gland // Int. S. Dev. Biol. 1993. Vol. 37. P. 497-498.
Ulm B., Ulm M.R., Deutinger J., Bernaschek G. Umbilical artery Doppler velocimetry in fetuses with a single umbilical artery // Ultrasound Obstet. Gynecol. 1997. Vol. 90, N 2. P. 205-209.
Valenti C., Schutta E., Kehaty T. Prenatal Diagnosis of Down’s syndrome // Lancet. 1968. Vol. 220.
Von Kaisenberg C.S., Gasiorek-Wiens A., Bielicki M. et al. Screening for trisomy 21 by maternal age, fetal nuchal translucency and maternal serum biochemistry at 11-14 weeks: a German multicenter study // J. Maternal Fetal. Neonatal. Med. 2002. Vol. 12, N 2. P. 89-94.
Wald N., Cuckle H. Maternal serum alpha-fetoprotein measurement in antenatal screening for anencephaly and spina bifida in early pregnancy. Report of the UK Collaborative Study on Alphafetoprotein in Relation to Neural-Tube Defects // Lancet. 1977. Vol. 1. P. 1323.
Wald N.J., Hackshaw A.K. Advances in antenatal screening for Down syndrome // Baillieres Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2000. Vol. 14 (4). P. 563-580.
Wald N.J., Watt H.C., Hackshaw A.K. Integrated screening for Down’s syndrome on the basis of tests performed during first and second trimesters // N. Engl. Med. 1999. Vol. 341. P. 461-467.
Wald N.J., Cuckle H.S., Densem J.W. et al. Maternal serum unconjugated oestriol as an antenatal screening test for Down’s syndrome // Br. J. Obstetr. Gynaecol. 1988. Vol. 95. P. 334-341.
Wald N.J., Kennard A. Prenatal screening of Down syndrome // Principles and practice of medical genetics / еds D.L. Rimobi, J.M. Connor, R.E. Pyerits. N. Y. : Churchill Livingstone, 1996. P. 545-562.
Wald N.J., Kennard A., Haskshaw A., McGuire A. Antenatal screening for Down’s syndrome // Health Technol. Assessment. 1998. Vol. 2 (Suppl. 1). P. 1-122.
Wald N.J., Rish S., Hackshaw A.K. Combining nuchal translucency and serum markers in prenatal screening for Down’s syndrome in twin pregnancies // Prenatal. Diag. 2003. Vol. 23, N 7. P. 588-592.
Wald N.J., Rodeck C., Hackshaw A.K. et al. First and second trimester antenatal screening for Down’s syndrome: the results of the Serum, Urine and Ultrasound Screening Study (SURUSS)] // J. Med. Screen. 2003. Vol. 10. P. 56-104.
Wapner R., Thom E., Simpson J.L. et al. Firsttrimester screening for trisomy 21 and 18 // N. Engl. J. Med. 2003. Vol. 349. P. 1405-1413.
Wenstrom K.D., Jwen J., Noots L.R. et al. Elevated second-trimester human chorionic gonadotropin levels in association with poor pregnancy outcome // Am. J. Obstet. Gynecol. 1994. Vol. 171. P. 1038-1041.
Wojdemann K.R., Larsen S.O., Shalmi A.C. et al. // Prenat. Diagn. 2006. Vol. 26. P. 218-220.
Wright D., Bradbury I., Benn P. et al. Contingent screening for Down’s syndrome is an efficient alternative to nondisclosure sequential screening // Prenat. Diagn. 2004. Vol. 24. P. 762-776.