image

Орлова, Е. А. Современные принципы аллерген-специфической иммунотерапии : руководство для врачей / Е. А. Орлова. - Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2023. - 256 с. - ISBN 978-5-9704-7781-6, DOI: 10.33029/9704-7781-6-OEA-2023-1-256.

Аннотация

Руководство содержит систематизированную информацию о современных принципах клинического применения аллерген-специфической иммунной терапии, данные о ее видах и механизмах, схемах лечения, зарегистрированных лекарственных формах, показаниях и противопоказаниях к данному методу лечения.

Издание предназначено аллергологам-иммунологам, врачам общей практики, оториноларингологам, пульмонологам, педиатрам.

Благодарность

Выражаю свою искреннюю и глубокую благодарность за понимание, терпение и поддержку своей семье, моему дорогому мужу Бочарникову Денису и моим любимым детям Орловой Елизавете и Бочарникову Яромиру, а также моему верному другу Соколову Станиславу за помощь в создании данной книги

Список сокращений и условных обозначений

— торговое наименование лекарственного средства

— лекарственное средство не зарегистрировано в Российской Федерации

АГ — антиген

АСИТ — аллерген-специфическая иммунотерапия

БАД — биологически активная добавка

ВАО — Всемирная аллергологическая организация

ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения

ГК — глюкокортикоид

ИГК — ингаляционные глюкокортикоиды

ИР — индекс реактивности

ОФВ1 — объем форсированного выдоха за 1-ю секунду

ПКИТ — подкожная иммунотерапия

РААКИ — Российская ассоциация аллергологов и клинических имму­нологов

СЛИТ — сублингвальная иммунотерапия

AU — аллергенные единицы

B-reg — регуляторные В-лимфоциты

BU — биологические единицы

ЕААСI — Европейская академия аллергологии и клинической имму­нологии

ECP — эозинофильный катионный протеин

FcεR1 — высокоаффинный рецептор IgE

FDA — Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (США) (от англ. Food and Drug Administration)

Foxp3 — белок Forkhead box P3

GINA — Глобальная стратегия лечения и профилактики бронхиальной астмы (от англ. Global Initiative for Asthma)

Ig — иммуноглобулин

IL — интерлейкин

NK-клетки — клетки — натуральные киллеры

PNU — единицы белкового азота (от англ. protein nitrogen unit)

Th — Т-хелпер

T-reg — регуляторные Т-лимфоциты

Введение

Во всем мире наблюдается неуклонный рост IgE-зависимых аллергических заболеваний. Фармакологические препараты успешно позволяют контролировать симптомы и течение аллергических заболеваний, достигать ремиссии, предупреждать обострение, но не оказывают влияния на механизмы аллергического процесса, лежащие в основе патогенеза этих состояний. Из-за беспрецедентного роста распространенности аллергии и атопии в последние десятилетия внимание медицинского сообщества сфокусировано на тех стратегиях, которые способны повлиять на естественное течение болезни и воспрепятствовать "пандемии" аллергических заболеваний.

Аллерген-специфическая иммунотерапия (АСИТ) является единственным уникальным и не имеющим альтернативы методом лечения, воздействующим на патогенетические механизмы, изменяющим ответ иммунной системы на аллерген и естественное течение болезни.

Сегодня клиническая ценность АСИТ общепризнана в лечении аллергического ринита, аллергического конъюнктивита, бронхиальной астмы, атопического дерматита и анафилактических реакций на ужаление перепончатокрылыми насекомыми.

Развитие иммунологической толерантности - первостепенная цель терапии и профилактики аллергических заболеваний. АСИТ - одно из самых перспективных направлений в терапии IgE-зависимых аллергических болезней, она подробно изучается и представляет интерес потому, что моделирует такое состояние организма, при котором в результате проведенного лечения данный индивидуум будет иначе реагировать на аллерген. АСИТ тормозит раннюю и позднюю фазы IgE-опосредованной аллергической реакции, что в итоге приводит к развитию иммунологической толерантности, что является неоспоримым преимуществом этого метода терапии. Суть метода заключается в повторяющихся введениях причинно-значимых аллергенов в организм пациента в нарастающих дозах по определенной схеме. Именно этот метод позволяет осуществлять персонализированный подход к лечению конкретного пациента, имеющего различные клинические проявления болезни, спектр сенсибилизации, коморбидные состояния и психологические характеристики. Клинические результаты успешно проведенной АСИТ проявляются в длительной ремиссии болезни, уменьшении или исчезновении потребности в фармакотерапии, профилактике расширения спектра сенсибилизации. В настоящее время с целью доказательства эффективности и безопасности АСИТ проведено значительное количество многоцентровых плацебо-контролируемых международных исследований, созданы новые высокотехнологичные формы лечебных аллергенов, а на различных отечественных и зарубежных конгрессах по аллергологии и иммунологии активно обсуждаются современные возможности АСИТ и приводятся новые результаты хорошо продуманных исследований. На данном этапе развития науки в этой области активно изучаются не только эффективность и безопасность, но и прогностические возможности каждого метода АСИТ, ведется поиск биологических предикторов и маркеров эффективности. АСИТ занимает ведущее место в лечении аллергического ринита и конъюнктивита и атопической бронхиальной астмы. Данная позиция закреплена в международных и федеральных клинических рекомендациях по риниту и астме. Учеными предпринимаются попытки расширения спектра показаний для АСИТ, в частности в отношении пищевой аллергии, а также комбинированного ее использования совместно с таргетной терапией у пациентов с тяжелыми, плохо контролируемыми формами аллергических заболеваний.

И, тем не менее, несмотря на успехи изучения данного метода лечения в мировой медицине, значительную доказательную базу эффективности, накопленной в течение целого столетия, имеется проблема применения АСИТ в рутинной клинической практике. К сожалению, результаты исследований и экспертная оценка показывают, что АСИТ в нашей стране и других странах получают всего лишь 6–8% больных аллергическим ринитом. Связан этот факт с недостаточными знаниями части аллергологов-иммунологов о данном методе лечения, что в свою очередь вызывает страх перед назначением АСИТ нуждающимся пациентам. С такой проблемой чаще всего сталкиваются молодые специалисты, которые только закончили свое обучение, а также врачи, прошедшие только курсы профессиональной переподготовки. Недостаточная подготовка врачей аллергологов-иммунологов и несовершенное владение методикой проведения АСИТ неизбежно приводят к ее дискредитации и наносят значительный ущерб здоровью пациентов. С другой стороны, имеет место недостаточная осведомленность о сути и показаниях к АСИТ среди врачей других специальностей, в задачи которых входит своевременное направление пациента, с предполагаемой и даже подтвержденной сенсибилизацией к пыльцевым, бытовым и другим видам аллергенов, к врачу аллергологу-­иммунологу. Кроме того, определенное значение имеет и недостаточный ассортимент зарегистрированных лечебных аллергенов в нашей стране, а также использование биологически активных добавок в качестве инструмента для АСИТ. Немаловажно и то, что в нашей стране до сих пор применяются устаревшие водно-солевые формы аллергенов со стандартизацией на основе единиц белкового азота (PNU), а процесс создания собственных современных форм препаратов аллергенов крайне медленный. Эти причины лишают миллионы людей с аллергическими заболеваниями шанса избавиться от своей болезни и тем самым улучшить качество своей жизни. Недостаточное применение АСИТ тормозит прогресс в этой области знания.

Врач, проводящий АСИТ, должен хорошо владеть этим методом лечения, знать разные протоколы лечения, режимы дозирования и новые лечебные формы аллергенов, уметь вносить коррективы в схему лечения при появлении нежелательных побочных реакций и контролировать правильность приема аллергена. Достаточное количество курсов иммунотерапии, высокие кумулятивные дозы аллергена, продолжительность лечения, минимизация нежелательных явлений и высокая приверженность пациента к лечению - несомненные составляющие успеха, и, начиная АСИТ, врач обязан учитывать все эти аспекты.

Популяризация метода АСИТ как среди врачей различных специальностей, так и среди пациентов является крайне актуальной. В настоящее время важным направлением в медицине является персонализированный подход, а метод АСИТ соответствует его принципам.

В данном руководстве рассматривается современная концепция клинического применения АСИТ, представлены данные о ее видах и механизмах, приведены схемы лечения, показания и противопоказания к данному методу лечения. Данное руководство в первую очередь предназначено для аллергологов-иммунологов, кроме того, оно может быть полезным в получении новых знаний врачам общей практики, ЛОР-врачам, пульмонологам, педиатрам. Автор смеет надеяться, что настоящее издание поможет большому числу специалистов, искренне преданных своей профессии, расширить свои познания в отношении АСИТ, что позволит им широко применять метод в своей практической работе.

Глава 1. Актуальность проблемы аллергических заболеваний. Cовременный статус аллерген-специфической иммунотерапии

Понятие "аллергия" было предложено в 1906 г. австрийским педиатром Clemens von Pirquet для определения состояния измененных реакций организма на воздействие различных веществ. Введение этого понятия положило начало развитию новой науки - аллергологии.

Термин "аллергия" происходит от двух греческих слов: "αλλος" - другой, иной и "έργον" - действие. Буквальный перевод слова означает, таким образом, "действие по-другому".

Гиперчувствительностью называют повышенную чувствительность организма к какому-либо чужеродному веществу.

Аллергия - это реакция гиперчувствительности, запускаемая иммунологическими механизмами.

В современной науке данное понятие определяется следующим образом: аллергия - это состояние патологически повышенной реакции организма на какие-либо вещества чужеродной природы, в основе которой лежат обязательные и доказанные иммунологические механизмы. Патологические состояния, характеризующиеся образованием антител и специфически реагирующих лимфоцитов, развиваются в ответ на контакт с соответствующим аллергеном (или аллергенами), который рассматривается как этиологический фактор (или факторы) болезни.

Аллергические реакции возникают, когда иммунная система организма чрезмерно реагирует на вещества, которые обычно считаются безвредными.

Аллергию может вызвать широкий спектр аллергенов. В настоящее время уже известно более 20 тыс. аллергенов, и их количество продолжает возрастать. Аллергенами для человека могут стать различные виды пыльцы, клещи домашней пыли, плесневые грибы, перхоть и шерсть животных, яды насекомых и др. Некоторые из них являются сезонными: пыльца растений, аллергены насекомых (осы, пчелы), другие - круглогодичными: бытовые (домашняя пыль, споры плесневых грибов), эпидермальные (эпидермис, слюна животных), пищевые (молоко и молочные продукты, рыба, морепродукты, яйца, орехи, фрукты), аллергены насекомых жилых помещений (тараканы, моль) [1, 2].

Аллергические заболевания представляют собой хронический воспалительный процесс, в который вовлечены различные типы клеток, многочисленные цитокины и растворимые медиаторы, непосредственно аллергены, а также иммуноглобулин Е (IgE) [3].

Известно, что важнейшими иммунологическими процессами при аллергических заболеваниях являются сенсибилизация и иммунный ответ при повторном контакте с аллергеном. Аллергические заболевания проходят несколько стадий развития: иммунологическую, патохимическую и патофизиологическую, или стадию клинических проявлений.

Наиболее хорошо изучены механизмы формирования IgE-опосредованной аллергической гиперчувствительности, которая обусловливает развитие атопических или IgE-опосредованных аллергических заболеваний, где IgE играет главенствующую роль. Согласно современному определению, "атопия - это индивидуальная или семейная предрасположенность к выработке IgE в ответ на малые дозы аллергенов, обычно протеинов, и к развитию таких симптомов, как астма, риноконъюнктивит или дерматит" [2].

В результате развития IgE-опосредованных аллергических реакций чаще всего страдают верхние и нижние дыхательные пути, что проявляется различными клиническими респираторными симптомами аллергии в виде аллергического риноконъюнктивита и бронхиальной астмы. Если же атопический процесс затрагивает кожные покровы - формируется атопический дерматит. Формирование и течение аллергического ринита, атопической бронхиальной астмы и атопического дерматита зачастую взаимосвязано. Респираторные аллергические заболевания, к которым относятся бронхиальная астма и аллергический ринит, могут протекать как самостоятельно, так и в составе "дермато-респираторного синдрома". Дермато-респираторный синдром рассматривается не как совокупность различных аллергических заболеваний у одного пациента, а как естественный ход "атопического марша", то есть естественного течения атопии, характеризующийся последовательностью развития клинических симптомов сенсибилизации. У 80% детей, заболевших атопическим дерматитом в раннем детстве, впоследствии формируется аллергический ринит, у 10–20% детей развивается бронхиальная астма. Необходимо своевременно оценивать риск развития "атопического марша", выявляя особенности его течения и спектр причинно-значимых аллергенов.

Для возникновения клинических проявлений атопии требуется сочетание множественных факторов, основными из которых являются воздействие факторов внешней среды (аллергенов) и факторов внутренней среды организма (нарушение защитных барьеров). Клинические проявления атопии весьма характерны и включают внешние признаки минимального персистирующего воспаления (атопический тип).

Атопия часто сопровождается симптомами гиперреактивности железистой ткани, таких как гиперплазия аденоидных вегетаций или реактивный панкреатит. Пациенты с атопией часто болеют инфекционными заболеваниями, имеют склонность к затяжному течению инфекций и развитию осложнений. При атопических заболеваниях формируется замкнутый круг (circulus vitiosus ): аллергические заболевания способствуют повышенной восприимчивости к инфекциям, а инфекции способствуют сенсибилизации организма и обострению аллергических заболеваний. Известно также, что атопия ассоциирована с повышенной эмоциональностью, лабильностью вегетативной нервной системы и психоневрологическими расстройствами [4].

На протяжении XX столетия и в начале XXI в. на фоне изменений в окружающей среде, перемены образа жизни людей, индустриализации наблюдается увеличение распространенности аллергических заболеваний. Сегодня аллергия является проблемой общественного здравоохранения пандемических масштабов. Во многих странах мира проблема аллергических заболеваний рассматривается как общегосударственная. Актуальность данного вопроса постоянно подчеркивается на многочисленных научных форумах. Предлагаются различные пути совершенствования специализированной медицинской помощи, оказываемой данной категории больных. Распространенность аллергических заболеваний неуклонно растет как в развитых, так и в развивающихся странах [5–8]. Согласно прогнозам ученых, XXI в. станет веком аллергопатологии. Аллергические заболевания занимают третье место после сердечно-сосудистых и онкологических болезней. В некоторых экологически неблагоприятных регионах аллергические заболевания выходят на первое место. Отмечено также, что в течение каждого десятилетия показатели заболеваемости аллергией во всем мире удваиваются. Аллергию также называют "болезнью цивилизации". Сочетанное воздействие различных факторов: загрязнение окружающей среды отходами промышленного производства, неблагоприятные социальные условия, рост потребления различных лекарственных препаратов, интенсивное использование средств дезинфекции в быту и на производстве, применение пестицидов и гербицидов в сельском хозяйстве, изменение характера и качества питания, использование генетически модифицированных продуктов - создает условия для высоких аллергенных нагрузок на организм современного человека.

Беспокойство вызывает мировая статистика. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), распространенность аллергических заболеваний в популяции в различных странах варьирует от 10 до 40% [9]. Эпидемиологическое исследование, которое провела Всемирная аллергологическая организация (ВАО), показало, что приблизительно 305 млн (22%) из 1,39 млрд человек страдают различными аллергическими заболеваниями, такими как аллергический ринит, аллергический конъюнктивит, бронхиальная астма, экзема, пищевая аллергия, лекарственная аллергия и т.д. [10]. Распространенность аллергических заболеваний увеличивается повсеместно, даже в тех странах, где ранее ее показатели были низкими. Разумеется, это результат не только истинного роста заболеваемости аллергией, но также большей выявляемости и осведомленности о ней как врачей, так и пациентов.

Принимая во внимание эпидемиологические тенденции, Европейская академия аллергологии и клинической иммунологии (ЕААСI) предвидит, что менее чем через 15 лет болезнь распространится на половину населения континента. В настоящее время каждый четвертый человек среди населения Европы и Северной Америки страдает от симптомов респираторной аллергии, и, согласно прогнозам, к 2025 г. более 50% всех европейцев будет страдать от ее симптомов [11].

В настоящее время около 300 млн человек в мире страдают бронхиальной астмой и более 500 млн человек страдают аллергическим ринитом [12, 13].

По данным Института иммунологии (2015), в различных регионах Российской Федерации распространенность аллергических заболеваний колеблется от 17,5 до 30% населения. Соответственно, у каждого третьего - четвертого пациента в нашей стране может иметь место аллергопатология [2, 5].

Распространенность аллергических заболеваний значительно возросла среди детского населения и лиц молодого трудоспособного возраста, что приводит к значительным социально-экономическим последствиям: ухудшению качества жизни, снижению производительности труда и успеваемости в школе, проблемам с посещаемостью учебных заведений [8]. Вследствие высокой распространенности и частоты рецидивов аллергические заболевания создают серьезное финансовое бремя и потребляют значительные ресурсы системы здравоохранения. ВОЗ определила аллергические заболевания доминирующим классом среди всех болезней, требующих проведения глобальных исследований и значительных профилактических мероприятий в XXI в. [14].

Аллергические заболевания пагубно воздействуют не только на отдельных людей, но и на общество в целом. Общество столкнулось с проблемой увеличения сопутствующих затрат до масштаба, контролировать который вскоре станет невозможно. Принимая во внимание тот факт, что позитивных изменений в таких процессах, как урбанизация, индустриализация, загрязнение окружающей среды и колебания климата (повышение глобальной температуры, увеличение количества пыльцы и, соответственно, аэроаллергенов), не ожидается, укрепление и оптимизация профилактических и лечебных стратегий в отношении аллергических заболеваний являются единственным направлением дальнейших действий.

В связи с тем, что аллергические заболевания в настоящее время являются одной из наиболее значимых медико-социальных проблем для здравоохранения, в том числе и в Российской Федерации, повышение качества их диагностики, лечения и профилактики является первостепенной задачей.

Целью лечения аллергических заболеваний является контроль симптомов и уменьшение воспаления, и основные принципы и методы лечения одинаковы для всех больных. Терапия основана на трех принципах - избегание аллергенов, фармакологическое лечение и AСИТ. Наилучшая стратегия лечения аллергических заболеваний - это комбинированный подход, а именно сочетание всех мер воздействия [15].

Элиминация причинно-значимых аллергенов рекомендована, однако имеет ограниченную эффективность. Снижение концентрации аллергенов в повседневной жизни позволяет значительно сократить выраженность клинических проявлений и уменьшить объем фармакотерапии, однако полностью избежать контакта с аллергеном зачастую невозможно [16]. В отношении клещей эффективность элиминационных мер не доказана. При пыльцевой аллергии элиминация возможна только при переезде в другой климатический пояс, что сложно выполнимо, особенно у полисенсибилизированных пациентов. Данный подход наиболее эффективен при эпидермальной аллергии, однако некоторые пациенты могут быть сенсибилизированы, не контактируя непосредственно с домашними животными.

В лечении аллергии успешно используется симптоматическое фармакологическое лечение: антигистаминные и антилейкотриеновые препараты, сосудосуживающие, местные и системные глюкокортикоиды (ГК). Тем не менее очевидны и значительные недостатки фармакотерапии. Лечебные стратегии с применением антигистаминных, антилейкотриеновых препаратов, кортикоидов, агонистов β2 -адренорецепторов, направленные на подавление активности медиаторов и функции клеток иммунной системы, могут быть использованы только для контроля симптомов аллергического заболевания. Симптоматические лекарственные средства способствуют лишь временному облегчению, прекращение приема неизбежно приводит к рецидиву болезни. Иногда современные препараты недостаточно успешно борются с аллергией. Даже в хорошо контролируемых условиях клинических испытаний у части пациентов по-прежнему обнаруживаются симптомы. Кроме того, симптомы могут вернуться даже после многих лет непрерывной результативной терапии в момент прекращения ежедневного приема препарата. Пациенты часто злоупотребляют симптоматическим лечением. Длительный прием лекарственных средств может сопровождаться побочными эффектами. Наконец, при длительном применении лекарств у пациентов возникают соответствующие опасения, в связи с чем они не выполняют медицинских предписаний и либо бросают терапию, либо прибегают к "народным методам", зачастую с неудовлетворительными результатами, что только усугубляет проблему [16, 17]. Несмотря на прием лекарств, бóльшая часть больных со временем отмечает нарастание выраженности клинических проявлений, повышение потребности в лекарственных препаратах и снижение качества жизни. Все симптоматические фармакологические методы лечения работают лишь на подавление симптомов, а не на устранение основного заболевания. Препараты для симптоматического лечения не замедляют и не останавливают прогрессирование аллергического процесса. Многие пациенты (18–48%) продолжают страдать от симптомов аллергии, несмотря на оптимальную фармакотерапию [18]. Так, например, один из пяти пациентов с аллергическим ринитом остается неконтролируемым или не контролируется препаратами для симптоматического лечения должным образом. Около 25–33,6% пациентов, имеющих аллергический ринит, не удовлетворены своим текущим лечением. 40% пациентов с вновь установленным диагнозом аллергического ринита ожидали излечения от аллергии, а не только облегчения симптомов [13, 19–21].

Кроме того, стоимость новых лекарств растет, а количество больных увеличивается, эта непрерывная зависимость от медикаментов, очевидно, нецелесообразна.

Таким образом, даже современные усовершенствованные лекарственные препараты (ГК, антилейкотриеновые, антигистаминные и др.) не сделали революции в лечении аллергии: по-прежнему существуют формы болезни, резистентные к фармакотерапии; сохраняется риск побочных эффектов от лекарственных препаратов; при прекращении фармакотерапии отмечается возобновление симптомов. В связи с этим необходим более эффективный контроль симптомов, а также лечение с долгосрочным воздействием.

На данный момент единственным методом медицинского вмешательства, который может потенциально влиять на естественный ход заболевания, является АСИТ. АСИТ - абсолютно уникальный метод. Действие ее ориентировано не на симптомы аллергии, а на патогенез заболевания. Только АСИТ на сегодняшний день является единственным методом лечения IgE-зависимых аллергических заболеваний, при котором возможна перестройка характера иммунного ответа на ранее вызывавшие аллергическую реакцию раздражители, чем достигается выздоровление пациента. Такого эффекта не дает ни один фармакологический препарат.

АСИТ - это медицинская процедура, при которой происходит постепенное увеличение количества специфического аллергена, регулярно назначаемого пациенту с аллергией. Цель лечения - снижение чувствительности к данному аллергену, что проявляется в уменьшении или полном отсутствии клинических симптомов при его естественной экспозиции.

Таким образом, в современном понимании АСИТ - метод лечения IgE-зависимых аллергических заболеваний, состоящий во введении в организм пациента возрастающих доз того аллергена, к которому у больного выявлена повышенная чувствительность и который ответственен за клинические проявления заболевания, с целью снижения чувствительности к данному аллергену, проявляющейся в уменьшении или в полном отсутствии клинических симптомов при естественной экспозиции аллергена. Синонимы: гипосенсибилизация специфическая (устар.); аллерговакцинация; вакцинация аллергии специфическая [22–25].

АСИТ кардинально влияет на основные механизмы аллергического заболевания и способна изменить естественное течение аллергического процесса. АСИТ способствует не только уменьшению выраженности клинических проявлений, улучшению качества жизни, но и демонстрирует долгосрочную эффективность, которая может сохраняться в течение многих лет после прекращения лечения [7, 26].

АСИТ является целевым и эффективным решением, поскольку это единственный болезнь-модифицирующий метод терапии аллергических заболеваний, влияющий на все патогенетические звенья аллергического процесса. Болезнь-модифицирующая терапия - это терапия, направленная на фундаментальные механизмы патогенеза аллергического ринита, бронхиальной астмы и/или патологические изменения в дыхательных путях. В результате проведения АСИТ происходит изменение реагирования иммунной системы на ранее значимый для пациента аллерген. АСИТ имеет статус болезнь-модифицирующего лечения, поскольку:

  • приводит к снижению или отсутствию клинических жалоб, а также регрессу клинических проявлений при естественной экспозиции аллергена;

  • уменьшает вероятность возникновения и продолжительность обострения аллергического заболевания;

  • уменьшает потребность в лекарственных средствах как базисной, так и симптоматической терапии;

  • препятствует переходу аллергического заболевания из легких форм в более тяжелые;

  • уменьшает риски трансформации аллергического ринита в бронхиальную астму;

  • предупреждает расширение спектра сенсибилизации, к которым формируется повышенная чувствительность пациента.

Таким образом, проведение болезнь-модифицирующего лечения позволяет достичь ремиссии респираторного аллергического заболевания на длительное время. АСИТ является единственным лечением аллергии с пролонгированным эффектом в отношении всех симптомов [15, 26–29].

С момента первого использования экстракта пыльцы в лечебных целях прошло более 100 лет. В настоящее время АСИТ - научно обоснованный метод, обладающий обширной доказательной базой по вопросам эффективности и безопасности. Эффективность АСИТ имеет самый высокий уровень доказательности - Ia (метаанализы рандомизированных контролируемых исследований) и самую высокую степень рекомендаций - А. На сегодняшний день достигнут значительный прогресс в доказательстве эффективности и безопасности АСИТ в лечении респираторной аллергии и гиперчувствительности к яду. Также получены многообещающие данные в отношении специфической терапии пищевой аллергии и атопического дерматита. АСИТ действует как на раннюю, так и на позднюю фазу аллергического ответа, приводит к торможению не только аллерген-специфической реакции, но и к угнетению тканевой гиперреактивности, проявляющейся повышением чувствительности к медиатору аллергии - гистамину. Под действием АСИТ происходит подавление миграции эффекторных клеток в зону аллергического воспаления, возникает генерация регулирующих Т-лимфоцитов, способствующих индукции иммунологической толерантности, которая характеризуется подавлением пролиферативного и цитокинового ответа в отношении виновных аллергенов [7, 30, 31].

Лучший результат АСИТ достигается при своевременной ранней ее инициации и при соблюдении рекомендованных протоколов к каждому конкретному аллергену. Для достижения вышеописанных эффектов АСИТ, в том числе пролонгированных и модифицирующих болезнь, одинаково важны следующие моменты: высокая ежедневная доза лечебного аллергена; регулярность приема в соответствии с протоколом применения конкретного аллергена, указанным в инструкции; достаточная продолжительность лечения не менее 3 лет, и обычно не более 5 лет [22]. АСИТ входит во все рекомендации и согласительные документы по лечению аллергических заболеваний как в России, так и во всем мире.

Тем не менее следует отметить, что в некоторых исследованиях все же не было получено протективного эффекта АСИТ в отношении развития симптомов бронхиальной астмы. Так, например, в исследовании GAP, проводимом компанией ALK, в котором использовался аллерген тимофеевки в таблетках 75 000 SQ-T, не была выявлена разница в отношении риска развития астмы по сравнению с плацебо, однако показано положительное влияние на симптомы астмы и частоту применения медикаментов [32]. Ни в одном из регистрационных исследований препаратов, используемых в нашей стране, не было доказано превентивное воздействие АСИТ на развитие бронхиальной астмы у пациентов с аллергическим ринитом.

В использовании АСИТ с профилактической целью имеется немалое количество нерешенных вопросов. Эти вопросы касаются отбора пациентов, лечебных препаратов, путей и схем лечения, продолжительности иммунотерапии, определения стандартизированных индексов и оценок симптомов для оценки эффективности терапии и изучения фармакоэкономической пользы. При использовании АСИТ можно рассчитывать на протективный эффект в отношении развития бронхиальной астмы и новой сенсибилизации, но результат может быть различным в зависимости от препарата, схемы его применения и индивидуальных генетических особенностей пациента. Также следует отметить, что в настоящее время нет убедительных доказательств эффективности использования АСИТ для предотвращения развития аллергического заболевания у здоровых детей и взрослых, для профилактики развития респираторной аллергии у детей раннего возраста с атопическим дерматитом, у женщин, планирующих беременность, для предотвращения аллергии у ребенка [33].

Кроме того, несмотря на более чем 100-летнюю историю успешного применения АСИТ, по-прежнему существует дефицит пациентов, получающих это лечение, поэтому как врачей, так и пациентов следует лучше информировать о преимуществах этой терапии. К сожалению, АСИТ - это метод, к которому пациенты прибегают в последнюю очередь, порой через несколько лет от начала появления симптомов и установления диагноза и когда уже попробовали все остальные методы. Связано это с недостаточной осведомленностью как пациентов, так и самих врачей. Порой путь пациента составляет 10 лет и более, и лишь один из десяти пациентов в итоге получает АСИТ. Также существует проблема приверженности лечению, которую необходимо решать путем оптимизации процессов обучения и подробного консультирования пациентов. АСИТ должна проводиться подготовленными специалистами с использованием зарегистрированных для этого препаратов.

Таким образом, первостепенными задачами в настоящее время являются: доступность АСИТ в более короткие сроки и улучшение образования как пациентов, так и врачей различных специальностей. Смеем надеяться, что данное руководство окажет помощь в решении этих задач.

Список литературы

  1. Федоскова Т.Г., Ильина Н.И. Аллергические заболевания в клинической практике // РМЖ. 2005. № 15. C. 1022. Types of Allergies AAFA.org (электронный ресурс). https://www.aafa.org/types-of-allergies/.

  2. Рыбникова Е.А., Продеус А.П., Федоскова Т.Г. Современные подходы к лабораторной диагностике аллергии в помощь практикующему врачу // РМЖ. Медицинское обозрение. 2021. Т. 1, № 5. C. 43–49.

  3. Курбачева О.М., Галицкая М.А. Место омализумаба в терапии аллергических заболеваний // Медицинский совет. 2019. № 15. C. 38–49.

  4. Петренко Т.С., Ретюнский К.Ю., Филлипова А.С. и др. Психоневрологические расстройства у детей с атопическим дерматитом // Практическая медицина. 2019. Т. 3, № 17. С. 109–113.

  5. Федеральные клинические рекомендации по диагностике аллергических заболеваний. Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов (РAАКИ) (электронный ресурс). https://nrcii.ru/docs/Klinicheskie_rekomendacii_po_diagnostike_AZ.pdf.

  6. Pitsios C., Demoly P., Bilo M.B. et al. Clinical contraindications to allergen immunotherapy an EAACI position paper // Allergy. 2015. Vol. 70, N. 8. P. 897–909.

  7. Jutel M., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergy immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136, N. 3. P. 556–568.

  8. Global Strategy for Asthma Management and Prevention (update 2021). Global Initiative for Asthma Available from: www.ginasthma.org. 2021. P. 215.

  9. Statistics and Figures. Allergy Prevalence: Useful facts and figures. www.allergyuk.org (электронный ресурс). https://www.allergyuk.org/about-allergy/statistics-and-figures/.

  10. Warner J.O., Kaliner M.A., Crisci C.D. et al. Allergy practice worldwide: a report by the World Allergy Organization Specialty and Training Council // Int. Arch. Allergy Immunol. 2006. Vol. 139. P. 166–174.

  11. The European Academy of Allergy and Clinical Immunology (EAACI) Advocacy Manifesto. Tackling the Allergy Crisis in Europe Concerted Policy Action Needed (электронный ресурс). https://www.veroval.info/-/media/diagnostics/files/knowledge/eaaci_advocacy_manifesto.pdf.

  12. Calderon M.A., Demoly P., Gerth van Wijk R. et al. EAACI: Prevalence, severity and risk factors of allergic disorders among people in south India // Clin. Transl. Allergy. 2012. Vol. 2, N. 1. P. 20.

  13. Bousquet J., Khaltaev N., Cruz A.A. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) 2008 // Allergy. 2008. Vol. 63, Suppl. 86. P. 8–160.

  14. Nitin J., Palagani R., Shradha N.H. et al. Prevalence, severity and risk factors of allergic disorders among people in south India // Afr. Health. Sci. 2016. Vol. 16. P. 201–209.

  15. Федеральные клинические рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии // РААКИ. 2013. C. 13.

  16. Brożek J.L., Bousquet J., Agache I. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) guidelines 2016 revision // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 140, N. 4. P. 950–958.

  17. Астафьева Н.Г., Гамова И.В., Удовиченко Е.Н. Место аллергенспецифической иммунотерапии в лечении атопии. Эффективная фармакотерапия // Аллергология и иммунология. 2012. № 1. C. 6–16.

  18. Linneberg A., Dam Petersen K., Hahn-Pedersen J. et al. Burden of allergic respiratory disease: a systematic review // Clin. Mol. Allergy. 2016. Vol. 14. P. 12.

  19. Valovirta E, Myrseth Svein-Erik, Palkonen S. The voice of the patients: allergic rhinitis is not a trivial disease // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 8. P. 1–9.

  20. Bonini S. Survey of Rhinitis Phenotypes // World Allergy Organ. J. 2012. Vol. 5, Suppl. 2. P. 147.

  21. Hellings P.W., Dobbels F., Denhaerynck K. et al. Explorative study on patient’s perceived knowledge level, expectations, preferences and fear of side effects for treatment for allergic rhinitis // Clin. Transl. Allergy. 2012. Vol. 2, N. 1. P. 9.

  22. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen Immunotherapy User’s Guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  23. Mitsias D., Xepapadaki P., Makris M. et al. Immunotherapy in allergic diseases — improved understanding and innovation for enhanced effectiveness // Curr. Opin. Immunol. 2020. Vol. 66. P. 1–8.

  24. Sahin E., Bafageeh S.A., Güven S.G. et al. Mechanism of action of allergen immunotherapy // Am. J. Rhinol. Allergy. 2016. Vol. 30. P. 1–3.

  25. Globinska A., Boonpiyathad Т., Satitsuksanoa Р. et al. Mechanisms of allergen-specific immunotherapy: Diverse mechanisms of immune tolerance to allergens // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2018. Vol. 121, N. 3. P. 306–312.

  26. Sahin E., Dizdar D., Dine M.E. et al. Long-term effects of allergen-specific subcutaneous immunotherapy for house dust mite induced allergic rhinitis // J. Laryngol. Otol. 2017. Vol. 131, N. 11. P. 997–1001.

  27. Halken S., Larenas-Linnemann D., Roberts G. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: Prevention of allergy // Pediatr. Allergy Immunol. 2017. Vol. 28, N. 8. P. 728–745.

  28. Zielen S., Devillier P., Heinrich J. et al. Sublingual immunotherapy provides long-term relief in allergic rhinitis and reduces the risk of asthma: A retrospective, real-world database analysis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 1. P. 165–177.

  29. Marogna M., Tomassetti D., Bernasconi A. et al. Preventive effects of sublingual immunotherapy in childhood: an open randomized controlled study // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2008. Vol. 101, N. 2. P. 206–211.

  30. Курбачева О.М., Павлова К.С., Галицкая М.А. Аллерген-специфическая иммунотерапия. Аналитический обзор современных международных и отечественных позиционных документов // РАЖ. 2017. № 1. C. 24–32.

  31. Павлова К.С. Новые возможности аллерген-специфической иммунотерапии // Педиатрия (Прил. к журн. Consilium Medicum). 2017. № 4. C. 56–58.

  32. Valovirta E., Petersen T.H., Piotrowska T. et al. Results from the 5-year SQ grass sublingual immunotherapy tablet asthma prevention (GAP) trial in children with grass pollen allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2018. Vol. 141, N. 2. P. 529–538.

  33. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 с.

Глава 2. Исторические аспекты аллерген-специфической иммунотерапии

Среди различных терапевтических вмешательств, используемых для лечения аллергии, АСИТ занимает особое место. На сегодняшний день значительные успехи сделаны с точки зрения доказательства ее эффективности и безопасности одновременно для респираторной аллергии и гиперчувствительности к яду. Метод АСИТ имеет более чем 100-летнюю историю, и за это время пройден длинный путь от эмпирических знаний и индивидуального опыта к доказательной медицине. В истории становления АСИТ были взлеты и падения, периоды разочарований и неприятия метода, тем не менее сегодня, несмотря на то что ряд вопросов остается без ответа, АСИТ рассматривается как надежный терапевтический метод лечения аллергических заболеваний.

В периоде становления АСИТ выделяется четыре основные стадии [1, 2].

  • Донаучная стадия - от древних мифов до константинопольской вариоляции XVIII в.

  • Эмпирическая стадия - от E. Jenner до L. Noon и J. Freeman (1911).

  • "Интуитивная" стадия (стадия гипотез) - от работ A. Coca, R. Cooke, C. Prausnitz, H. Kuestner (20–30-е годы XX в.) и до открытия IgE (K. Ishizaka, T. Ishizaka, 1966).

  • Стадия "истинного" (достоверного) знания - от открытия IgE до настоящего времени.

Эпоха разработки принципа и методов АСИТ тесно связана с накоплением знаний о патогенезе аллергических заболеваний. Косвенными предпосылками открытия АСИТ являются все предыдущие наработки основателей микробиологии и иммунологии. Открытие Нуна и Фримена (основоположники АСИТ) стало возможным благодаря прогрессу, который к тому времени прошла мировая медицина, начиная с конца XVIII в. - времени работ Дженнера (E. Jenner) - заканчивая блестящими открытиями в конце XIX - начала XX в. в области микробиологии, иммунологии и аллергологии.

В 1819 г. английским врачом J. Bostock впервые было дано описание клинических проявлений сенной лихорадки, впоследствии в конце XIX в. другим врачом M. Wyman была выявлена этиология и связь заболевания с пыльцой растений. Впервые специфическая гипосенсибилизация была проведена C. Blackley в 1880 г., он продемонстрировал угнетение кожной чувствительности после процедуры нанесения пыльцы трав на участки поврежденного эпидермиса. В 1900 г. H. Curtis сообщил о благоприятном влиянии инъекций экстрактов пыльцы у пациентов с сенной лихорадкой и астмой. В начале ХХ в. учеными P. Portier, C. Richet, H. Meltzer, M. Otto, А.М. Безредко активно развивалось учение об анафилаксии. Если оценить открытие Нуна и Фримена в череде последовательного накопления знаний в этой области медицины, то можно констатировать, что оно знаменует собой окончание эмпирической стадии развития АСИТ [2].

Авторами метода АСИТ (2011) считают ученых: Леонарда Нуна (Leonard Noon, 1878–1913) (рис. 2-1) и Джона Фримена (John Freeman, 1877–1962) (рис. 2-2).

image
Рис. 2-1. Леонард Нун (1878–1913)
image
Рис. 2-2. Джон Фримен (1877–1962)

Биографические данные об этих ученых крайне скудны, о J. Freeman, прожившем долгую жизнь, известно больше, а о L. Noon, скончавшемся молодым, - практически ничего.J. Freeman в 1903 г. поступил в лабораторию выдающегося английского ученого A. Wright. По тем временам лаборатория A. Wright была одной из авторитетных микробиологических школ. Успех L. Noon и J. Freeman - это не счастливый случай исследователей-одиночек, а итог деятельности в рамках широкомасштабной программы, намеченной A. Wright. J. Freeman, обладавший гибким умом, быстро стал одним из его любимых учеников, которого он называл своим "сыном в науке". Известно, что J. Freeman до своей женитьбы жил на квартире у A. Wright. Не случайно учитель дал ему вместе с L. Noon относительную свободу действий в плане изучения сенной лихорадки и вообще аллергии, что стояло несколько в стороне от общего плана работ отделения.

О L. Noon известно немного. Он проходил обучение в Кембридже, посещал лекции в госпитале Св. Варфоломея в Лондоне. J. Freeman состоял в дружеских отношениях с L. Noon. Вместе они работали некоторое время в Институте Пастера в Париже в 1905–1906 гг., занимаясь изучением грибов и бактерий и иммунизацией морских свинок. С 1908 г. пара исследователей включилась в работу над проблемой специфической иммунотерапии сенной лихорадки. В этом же году они посетили Институт Пастера, где познакомились с достижением А.М. Безредки в области гипосенсибилизации. L. Noon и J. Freeman впервые использовали предсезонные подкожные инъекции пыльцевых экстрактов в возрастающих дозах для лечения сенной лихорадки. Исследователи также наблюдали, что при введении слишком высоких доз или слишком быстром их увеличении могут возникать осложнения, включая анафилактический шок. В 1911 г. обоих друзей ждал успех. Результаты эффективности АСИТ при лечении сезонного аллергического ринита были опубликованы в журнале "Lancet" от 10 июня 1911 г. Статья носила название "Профилактическая прививка против сенной лихорадки", основная суть которой заключалась в том, что введение аллергенов стимулирует резистентность. "Результаты этих экспериментов показали, что чувствительность больных сенной лихорадкой может быть уменьшена при соответствующей дозировке, по крайней мере, в сотни раз", - писал L. Noon [3]. Этот факт вдохновил исследователей в течение последующего столетия, и метод вошел в клиническую практику.

К сожалению, через два года после своего открытия, в возрасте всего 35 лет, L. Noon скончался от скоротечного туберкулеза легких (февраль 1913 г.). Некролог о нем был напечатан в журнале "Lancet". После скоропостижной смерти своего коллеги J. Freeman продолжил исследования и в 1914 г. выступил в печати с сообщением о трехлетнем клиническом опыте "Вакцинация против сенной лихорадки: сообщение о результатах, полученных за последние три года" [4]. J. Freeman практически всю жизнь занимался проблемой иммунотерапии аллергических заболеваний, опубликовав значительное число работ по этой проблеме [5–7]. Его труды широко цитировались в мировом сообществе ученых.

Память первооткрывателей АСИТ увековечена: помимо беспрецедентного цитирования, в Лондоне есть "здание Фримена" и "здание Нуна". Кроме того, Л. Нуна увековечили единицей аллергена: 31 "Нун (NOON)" - количество экстракта, полученного из 10–6 г вещества аллергена.

Несмотря на эмпирику и использование некорректных теоретических основ, исследования L. Noon и J. Freeman дали клиницистам убедительные доказательства эффективности метода лечения аллергии, что во многом обеспечило его скорейшее внедрение во всем мире.

Значительный вклад в развитие метода внесли венский врач K. Koessler и американский аллерголог R. Cooke.

K.Koessler (2014) принадлежит вторая ключевая публикация об успешном применении метода активной иммунизации при сенной лихорадке [8].

R.Cooke совершенствовал способы диагностики аллергических заболеваний, разрабатывал методы производства аллергенных вакцин и способы стандартизации и, в частности, предложил использовать метод Кьельдаля для определения единиц белкового азота (PNU), показал значение домашней пыли как аллергена, а также ввел термины "атопия" и "гипосенсибилизация" [9–12].

Кроме того, в это же время развивалась концепция бактериальной аллергии. Бактериальные респираторные вакцины были разработаны английским исследователем R. Allen (1908), примерно в те же годы, что и аллерговакцины Нуна и Фримена [13].

Лечебное действие бактериальных вакцин было продемонстрировано при состояниях, объединявшихся под названием "респираторно-аллергические заболевания, осложненные инфекцией", включая "инфекционную" астму. В качестве лечебного препарата использовали фракции условно патогенных и патогенных (зеленящего стрептококка, стафилококка, протея, синегнойной палочки, палочки Фридлендера и др.) микробов, приготовленных по методу Эндо-Вержиковского. Однако результаты контролируемых исследований последующего периода не подтвердили клинической эффективности применения бактериальных вакцин [14].

Важным моментом, способствовавшим развитию АСИТ, было нарастание числа положительных результатов ее применения, что стимулировало как расширение масштабов использования, так и поиски путей модернизации. Постепенно расширялся спектр заболеваний, при которых применялся метод АСИТ, - появились исследования в отношении бронхиальной астмы [10, 15, 16] и аллергии к яду перепончатокрылых насекомых [17].

Важной ступенью в развитии АСИТ явилась разработка и использование депо-вакцин и адъювантов с целью уменьшения частоты инъекций при АСИТ [18]. Были апробированы: суспендирование в оливковом или арахисовом масле, осаждение танниновой или соляной кислотой, смешивание с желатином, ланолином и др. Наибольшее распространение получили экстракты пыльцы, адсорбированные на гидроокиси алюминия. Данные модификации обеспечивали длительное непрерывное высвобождение аллергена [13].

Кроме того, помимо подкожного метода, с начала XX в. исследуются другие способы введения экстрактов аллергенов - внутрикожный, интралимфатический, оральный, ректальный, назальный. Некоторые из них совершенствуются и в настоящее время [19]. В 1910–1920-е гг. активно развивался оральный метод АСИТ, при котором спиртовые и ацетоновые экстракты растений в растительных маслах использовались для лечения атопического дерматита, коровье молоко и яйцо в малых дозах - при пищевой аллергии. Оральный метод оставался популярным до 1940–1950-х гг., однако постепенно интерес к методу снизился, в том числе из-за отсутствия убедительных доказательств эффективности и наличия отрицательных результатов, но в 1980–1990-е гг. пероральная АСИТ вновь стала объектом изучения [13, 20, 21].

Значительно позднее D. Morris (1969) описал сублингвальный способ применения аллергенов [14]. Подкожный и сублингвальный методы и по сей день являются ведущими способами АСИТ, при этом, согласно современным исследованиям, их сравнительная эффективность является равноценной [22].

В 1954 г. английский ученый A.W. Frankland выявил прямой дозозависимый эффект, продемонстрировав результаты первого двойного слепого исследования эффективности АСИТ у больных с сенной лихорадкой и астмой. Безусловно, первые контролируемые исследования АСИТ далеко уступают поздним работам, сделанным по правилам доказательной медицины и отвечающим на главные вопросы: эффективность и безопасность [23].

Таким образом, период 20–60-х гг. XX в., вплоть до открытия IgE, характеризовался увеличением количества исследований и статей по АСИТ, постепенным накоплением фактов в отношении теории, методологии и практики и перспективах развития. Он развивался параллельно с прогрессом медицины в целом и ее отраслей: иммунологии и аллергологии. Безусловно, шли поиски теоретического объяснения механизмов АСИТ.

Открытие IgE в 1966 г. супругами K. Ishizaka и Т. Ishizaka, работавшими в Денвере (США), стало основой для углубленных исследований химических и клеточных механизмов аллергии и знаменует переход от эмпирического периода к формированию обоснованных фундаментальных положений [24]. Накопление знаний о том, что в основе данного метода лечения лежат иммунологические механизмы, привело к появлению современного названия - специфическая (аллерген-специфическая) иммунотерапия - АСИТ [25].

В России АСИТ начала применяться благодаря трудам А.Д. Адо и его школы. А.Д. Адо и его учениками был внесен значительный вклад в развитие метода. Благодаря инициативе академика А.Д. Адо (рис. 2-3) в 1960-х гг. развивается отечественная школа аллергологии и специализированная аллергологическая служба.

image
Рис. 2-3. Андрей Дмитриевич Адо (1909–1997)

В 1961 г. академиком А.Д. Адо была организована первая в СССР научно-исследовательская аллергологическая лаборатория АМН СССР, открыт первый аллергологический кабинет в Москве. В 1967 г. начат серийный выпуск аллергенов для диагностики и лечения аллергических заболеваний и налажено производство многих важнейших групп аллергенов (пыльцевых, бытовых, пищевых, бактериальных и др.) в Москве, Казани, Ставрополе. Под руководством академика А.Д. Адо изучались природа и источники аллергенов, установлены аллергены краевого значения; начата работа по стандартизации аллергенов, стали создаваться, совершенствоваться и внедряться в практическое здравоохранение методы АСИТ. В этот период интенсивно развиваются научные и практические взаимосвязи между аллергологами всех республик Советского Союза. В 1970 г. были опубликованы результаты АСИТ в педиатрической практике. Советские ученые приняли активное участие в первом симпозиуме ВОЗ по проблеме стандартизации аллергенов в Женеве. К концу XX в. был открыт Институт иммунологии Министерства здравоохранения СССР, в настоящее время Институт иммунологии ФМБА, именно в нем проводятся основные исследования АСИТ, организационно оформляется Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов (РААКИ), которая получает международное признание и становится членом Европейской академии аллергологии и клинической иммунологии (European Academy of аllergy and Clinical Immunology, EAACI) [26]. Если еще 20–30 лет назад отмечалось абсолютное преобладание зарубежных источников литературы, то в последние десятилетия стало нарастать число отечественных публикаций. В целом, многолетний опыт проведения АСИТ в России также подтвердил высокую эффективность и безопасность этого метода лечения.

Начиная с 1980-х гг. в отношении АСИТ появились исследования, отвечающие современным требованиям (рандомизированные, двойные слепые, плацебо-контролируемые, одно- и многоцентровые, метаанализы). При этом продолжает нарастать число контролируемых исследований как по ПКИТ, так и по СЛИТ. И на сегодняшний день опубликованы результаты многочисленных контролируемых исследований, доказавшие эффективность и безопасность данного вида лечения. Кроме того, внимание ученых было направлено на разработку и модификацию самих аллергенов. В 1970-х гг. были разработаны аллергоиды - химически модифицировананные аллергены, которые до сих пор применяются в нашей стране, в 1980-х гг. созданы рекомбинантные аллергены, в 1990-х гг. - химически модифицированные MPL-связанные аллергены, в 2000-х гг. появились карбамилированные аллергены для СЛИТ, устойчивые к перевариванию протеолитическими ферментами [27].

Совершенствование АСИТ, разработка новых препаратов и методик их введения имеет большую перспективу, неразрывно связанную с получением новых знаний о механизмах развития аллергических болезней. Таким образом, АСИТ - метод с далеко не оконченной историей.

Список литературы

  1. Развитие метода аллерген-специфической иммунотерапии в 20–60-х годах XX века — до обнаружения IgE // Российский аллергологический журнал. 2011. № 2. C. 3–12.

  2. Воробьева О.В., Гущин И.С. Исторические предпосылки создания метода аллерген-специфической иммунотерапии (К 100-летию открытия) // Российский аллергологический журнал. 2010. № 5. C. 17–28.

  3. Noon L. Prophylactic inoculation against hay fever // The Lancet. 1911. Vol. 177, N. 1 (4580). P. 1572–1573.

  4. Freeman J. Vaccination against hay fever: report of results during the last three years // The Lancet. 1914. Vol. 183, N. 4730. P. 1178–1180.

  5. Freeman J. «Rush» inoculation with special reference to hay-fever treatment // The Lancet. 1930. Vol. 215, N. 5562. P. 744–747.

  6. Freeman J., Hughes W.H. Biological polyvalency of antigens with special reference to hay-fever // The Lancet. 1938. N. 1. P. 941–943.

  7. Freeman J. Dangers and disappointments of hay-fever desensitization // Int. Archives of Allergy. 1955. Vol. 6. P. 197–202.

  8. Koessler K.K. The specific treatment of hayfever by active immunization // Illinois Med. J. 1914. Vol. 26. P. 120–127.

  9. Cooke R.A. The treatment of hay fever by active immunization // Laryngoscope. 1914. Vol. 25. P. 108–112.

  10. Cooke R. Studies in specific hypersensitiveness. IV. New etiological factors in bronchial asthma // J. Immunol. 1922. Vol. 7, N. 2. P. 147–162.

  11. Coca A.F., Cooke R. On the classification of the phenomena of hypersensitiveness // J. Immunol. 1923. Vol. 8. P. 163–182.

  12. Cooke R.A., Stull A. The preparation and standardization of pollen extracts for the treatment of hay fever // J. Allergy. 1933. Vol. 6. P. 87–91.

  13. Cohen Sh.G., Evans R. III. Allergen immunotherapy in historical perspective // Clin. Allergy Immunol. 2008. Vol. 21. P. 1–29.

  14. Воробьева О.В., Гущин И.С. Развитие метода аллерген-специфической иммунотерапии в 20–60-х годах XX века — до обнаружения IgE // Российский аллергологический журнал. 2011. № 2. C. 3–12.

  15. Caulfield A.H.W. Sensitization in bronchial asthma and hay-fever // JAMA. 1921. Vol. 76, N. 16. P. 1071–1078.

  16. Walker I.C. Studies on the sensitization of patients with bronchial asthma (Study series III-XXXVI) // J. Med. Res. 1917. P. 35–37.

  17. Loveless M.H., Fackler W.R. Wasp venom allergy and immunity // Ann. Allergy. 1956. Vol. 14. P. 347.

  18. Stull A., Cooke R.A., Sherman W.B. Experimental and clinical studies of fresh and modified pollen extracts // J. Allergy. 1940. Vol. 11. P. 439.

  19. Meyer-Pittroff R. Behrendt H., Ring J. Specific immuno-modulation and therapy by means of high pressure treated allergens // High Pressure Research. 2007. Vol. 27, N. 1. P. 63–67.

  20. Khinci M.S., Poulsen L.K. et al. Clinical efficacy of sublingual and subcutaneous birch pollen allergen-specific immunotherapy: a randomized placebo controlled double blind study // Allergy. 2004. Vol. 59. P. 45–53.

  21. Пампура А.Н., Смирнова М.О. Возможности пероральной аллерген-специфической иммунотерапии в лечении пищевой аллергии у детей // Рос. аллергол. журн. 2009. № 5. C. 29–35.

  22. Durham S.R., Penagos M. Sublingual or subcutaneous immunotherapy for allergic rhinitis? // J. Allergy Clin. Immunol. 2016. Vol. 137, N. 2. P. 339–349.

  23. Frankland A.W., Augustin R. Prophylaxis of summer hay-fever and asthma: a controlled trial comparing crude grass-pollen extracts with the isolated main protein component // The Lancet. 1954. Vol. 266, N. 1. Issue 6821. P. 1055–1057.

  24. Ishizaka K., Ishizaka T., Hornbrook M.M. Physico-chemical properties of reaginic antibody. IV. Presence of a unique immunoglobulin as carrier of reaginic activity // J. Immunol. 1966. Vol. 97, N. 1. P. 75–85.

  25. Ring J., Gutermuth J. 100 years of hyposensitization: history of allergen specific immunotherapy (ASIT) // Allergy. 2011. Vol. 66, N. 6. P. 713–724.

  26. Астафьева Н.Г., Гамова И.В., Удовиченко Е.Н. Место аллерген-специфической иммунотерапии в лечении атопии. Эффективная фармакотерапия // Аллергология и иммунология. 2012. № 1. C. 6–16.

  27. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства) // Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 с.

Глава 3. Факторы развития аллергических заболеваний и характеристика иммунного ответа при атопии

3.1. Предикторы развития аллергических заболеваний

Понятие аллергия включает все варианты иммунологически опосредованных реакций повышенной чувствительности. Под атопией подразумевают клинические формы аллергических заболеваний, которые относятся, согласно классификации P. Gell и P. Coombs (1964), к аллергическим реакциям I типа. Атопия определяется как индивидуальная или наследственная способность производить IgE-антитела в ответ на низкие дозы аллергенов, что приводит к развитию симптомов аллергической бронхиальной астмы, риноконъюнктивита и атопического дерматита.

Для того чтобы развилось аллергическое заболевание, как правило, требуется взаимодействие нескольких различных факторов.

Определенное значение имеет наследственная предрасположенность. Часто атопические заболевания возникают у лиц с наследственной предрасположенностью к таким реакциям при естественной экспозиции аллергенов. Вероятность развития аллергических состояний у ребенка почти 100%, если более чем в двух поколениях его близких родственников имеются аллергические заболевания [1].

Хотя наследственная предрасположенность - важный предиктор развития атопии у индивидуума, однако она не оказывает решающего влияния на рост заболеваемости аллергией в целом. Атопическая конституция не во всех случаях генетически детерминирована, она может формироваться во время беременности матери, а также на протяжении первых месяцев жизни ребенка в связи с тем, что в это время множество факторов окружающей среды оказывают влияние на формирование иммунного ответа по атопическому пути. Считается, что приблизительно к двум годам жизни атопическая конституция является сформированной [2].

Исследования в области генетики аллергии выявили целый набор генов, ответственных за развитие аллергических и атопических болезней. Современные генетические исследования основываются на изучении комплексных взаимодействий комбинаций гаплотипов полиморфных генов, которые опосредуют фенотипы аллергического заболевания [3, 4].

Однако генетическая и наследственная предрасположенности являются не главными и не единственными факторами в развитии восприимчивости к аллергическим заболеваниям. Факторы внешней среды в комбинации с генетической предрасположенностью пациента могут способствовать развитию так называемых необычных форм астмы или атопического дерматита [5]. Один и тот же внешний фактор среды может вызывать разные эффекты у лиц с различными генетическими предпосылками в разные периоды жизни человека за счет возрастных изменений экспрессии генов [6].

Существует множество и других факторов, которые влияют на прогрессирование уже имеющегося аллергического заболевания.

Активно изучается роль экологических факторов в развитии аллергопатологии, в результате чего получены новые данные патогенеза атопии. Современные научные исследования демонстрируют, что эпидемическое распространение аллергии, безусловно, связано с происходящими изменениями окружающей среды, к которым относятся: загрязнение воздуха, особенности питания, инфекции и другие внешние факторы. Эпидемиологические исследования демонстрируют значительную взаимосвязь между воздействием поллютантов и развитием, а также прогрессированием бронхиальной астмы и других аллергических болезней. Аэрополлютанты могут усиливать аллергические реакции, модифицируя эпителий, воздействуя на иммунитет и увеличивая аллергенность отдельных антигенов, при этом аллергены и поллютанты в совокупности усиливают аллергическую реакцию [7]. Главный компонент загрязненного городского воздуха - взвешенные вещества - смесь твердых и жидких частиц различного происхождения, включающих пыльцевые зерна и плесневые споры. Дизельные выхлопные газы являются основными воздушными взвешенными частицами в атмосфере наиболее крупных городов мира. Дизельные выхлопные частицы могут выполнять роль адъювантов для различных аллергенов, стимулируют выработку IgE и обладают эффектами усиления аллергических симптомов у сенсибилизированных пациентов [8]. Озон относится к химическим оксидантам и составляет основную часть так называемого летнего смога. Самый существенный источник уличного NO2 - автомобильный выхлоп. Высокое содержание в воздухе озона и диоксида азота ассоциируется с ростом заболеваемости дыхательных путей и с госпитализациями в результате обострения астмы у детей и у взрослых [7]. Исследования когорт новорожденных показали, что воздействие табачного дыма на плод во внутриутробный период увеличивает риск развития сенсибилизации и бронхиальной астмы.

Имеют значение ксенобиотики, которые поступают в продукты питания в результате широкого применения пищевых добавок, использования несоответствующего упаковочного материла, несоблюдения условий хранения продуктов. Описаны реакции гиперчувствительности к различным пищевым консервантам (бензойная кислота - E210), азокрасителям (тартразин - E102, эритрозин - E127, желтый закат - E110, бриллиантовый черный - E151), к веществам - усилителям вкуса (глутамат натрия - Е621, аспартам - E951). Из-за сходства химической структуры с поверхностными субстанциями аспирина они могут увеличить продукцию лейкотриенов и вызвать симптомы, подобные непереносимости ацетилсалициловой кислоты. Кроме того, пищевые добавки могут являться причиной прямой дегрануляции тучных клеток с последующим высвобождением большого количества гистамина.

В этиопатогенезе аллергических заболеваний также определенная роль отводится инфекционным факторам [9]. На сегодняшний день рост распространенности аллергии отмечен преимущественно в развитых странах, что объясняет "гигиеническая гипотеза", подтвержденная эпидемическими и фундаментальными исследованиями. Показано, что воздействие некоторых инфекционных агентов может обеспечить защиту от атопии, в то время как другие инфекции способствуют развитию аллергических заболеваний. При этом наиболее важными факторами в развитии аллергических заболеваний являются: время экспозиции инфекции, свойства самого инфекционного агента и генетическая восприимчивость индивидуума. "Гигиеническая гипотеза" была предложена Strachan в 1989 г. Суть данной гипотезы заключается в том, что контакт с бактериальными агентами, наблюдающийся в период новорожденности, предупреждает последующее развитие аллергии, так как бактериальные продукты индуцируют Th1-иммунный ответ.

Ранняя иммунизация, широкое применение антибиотиков, высокий социальный уровень населения развитых стран приводят к сокращению инфекционных контактов у детей, тем самым создавая условия для девиации в сторону Th2-иммунного ответа, который определяет развитие аллергических реакций [10–12].

Самое широкое направление исследований касается изучения взаимосвязи вирусных инфекций и аллергических заболеваний. Вирусная инфекция выполняет роль триггера у детей с острой бронхиальной обструкцией или астмой в большинстве случаев [9]. Ухудшение контроля астмы у детей часто ассоциируется с риновирусной инфекцией [13, 14].

В обострении астмы также подтверждена потенцирующая роль атипичных бактерий Mycoplasma pneumoniae и Chlamydia pneumonia [15]. Роль бактерий и дрожжей также давно является предметом исследований при атопическом дерматите. Хорошо известно, что персистенция золотистого стафилококка может привести к обострениям атопического дерматита за счет экзотоксинов, которые, действуя как суперантигены, стимулируют активацию антигенпрезентирующих клеток, Т-лимфоцитов и кератиноцитов [16]. Оппортунистические виды дрожжей Malassezia также участвуют в развитии поражений кожи и обострении при атопическом дерматите [17].

Важную роль в развитии аллергопатологии играют местные эпителиальные факторы защиты, состояние барьерных тканей, а также пути попадания аллергена в организм, дозы и структурные характеристики аллергена.

У пациента с атопией исходно имеется повышенная проницаемость барьерных тканей - кожи, слизистых оболочек пищеварительного и дыхательного тракта, что облегчает доступ аллергена к антигенпрезентирующей клетке, в частности к дендритной клетке. Повышенная проницаемость барьерных тканей для аллергена является решающим фактором, обеспечивающим развитие сенсибилизации, а в последующем - и клинических симптомов аллергической реакции, которая вызвана разрешающим действием аллергена на эти барьеры. В каждом конкретном случае характер реагирования на аллерген формируется в различных условиях, для того чтобы сформировалось аллергическое заболевание, необходима предрасположенность, либо генетически опосредованная, либо приобретенная [18].

Таким образом, аллергические болезни в настоящее время рассматривают как гетерогенные заболевания, вызванные взаимодействием различных факторов.

3.2. Особенности иммунного ответа при атопии

У индивидуума с атопией специфический иммунный ответ на аллерген зависит от особенности реагирования его иммунной системы, и сюда можно отнести:

  • особенности состояния, строения и повышенная проницаемость барьерных тканей (кожи, слизистых оболочек пищеварительного и дыхательного тракта);

  • особенности функционирования антигенпрезентирующих клеток, дендритных клеток;

  • особенности дифференцировки Т-клеток и синтеза цитокинов;

  • особенности антителообразования.

Специфический иммунный ответ на антиген по атопическому пути проходит ряд последовательных этапов с момента контакта организма с аллергеном до конечных эффектов в тканях и органах-мишенях.

Данные этапы можно подразделить на:

  • проникновение аллергена через барьерные ткани и поступление во внутреннюю среду организма;

  • захват аллергена антигенпрезентирующей клеткой и последующая его презентация Т-лимфоцитам;

  • дифференцировка Т-клеток и синтез определенных цитокинов;

  • синтез аллерген-специфических антител;

  • эффекты в органах-мишенях - развитие симптомов и клиники аллергических состояний (аллергического ринита, аллергического конъюнктивита, бронхиальной астмы и системной анафилаксии и др.).

Проникновению аллергена внутрь организма способствует повышенная проницаемость барьерных тканей и органов, далее происходит непосредственное взаимодействие аллергена с иммунной системой организма. Эпителиальные клетки обычно образуют барьер, обеспечивая первую линию защиты от аллергенов окружающей среды. У пациентов, страдающих атопическими заболеваниями, барьерная функция нарушена, что приводит к повышению проницаемости гистогематических барьеров к аллергенам [19, 20]. На проницаемость гистогематических барьеров влияют протеолитическая активность самих аллергенов, состояние межклеточных контактов слизистой оболочки респираторного тракта, а также средовые воздействия (табачный дым, вирусные инфекции и др.). Все это приводит к возникновению хронического воспаления и создает условия для возникновения атопического иммунного ответа [21].

Выделяют две фазы иммунного ответа при аллергических заболеваниях: фаза сенсибилизации и эффекторная фаза [22].

Начинается данный процесс с обработки аллергена антигенпрезентирующими клетками (дендритными клетками) и также В-лимфоцитами. Затем антигенный материал презентируется на их поверхности другими клетками иммунной системы, что запускает каскад специфических иммунных реакций [23]. Эпителиальные клетки также способны стимулировать сенсибилизацию посредством продукции IL-25, IL-31, тимусного стромального лимфопоэтина (TSLP) и IL-33. Эти провоспалительные цитокины действуют на дендритные клетки и врожденные лимфоидные клетки 2 (ILC2), что способствует смещению иммунного ответа в Th2-профиль.

TSLP - важный цитокин в развитии Th2-опосредованной воспалительной реакции, так как он играет определяющую роль во взаимосвязи барьерных систем организма и в запуске и поддержании аллергического процесса [18, 24]. TSLP синтезируется эпителиальными и активированными тучными клетками и экспрессируется в эпителиальных клетках кожи, кишечника, легких и вилочковой железы. TSLP способствует активации выработки Th2-цитокинов TSLP и дифференцировке В-клеток [25].

Дифференцировку клеток из мультипотентных предшественников в конкретные клеточные пулы обеспечивает определенная сеть генов. В основе этого механизма лежат процессы, связанные с регуляцией экспрессии генов, при этом главная роль принадлежит транскрипционным факторам [26, 27].

Во время фазы сенсибилизации дендритные клетки слизистой оболочки дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта, эпидермального барьера захватывают аллерген и транспортируют его в близлежащие лимфатические узлы. Внутри лимфатических узлов антигены обрабатываются и презентируются наивным CD4+ T-клеткам молекулами комплекса гистосовместимости MHC II типа, что приводит к их дифференцировке в аллерген-специфичные CD4+ Th2-клетки.

В патогенезе атопических заболеваний дифференцировка Тh-клеток осуществляется по Th2-пути и главную роль играют Т-хелперы второго типа (Th2). CD4+ Th2-клетки экспрессируют транскрипционный фактор GATA3, являющийся строго специфичным для этого пула клеток. Активация клеток CD4+ Th2 происходит посредством фосфорилирования Т-клеточного фактора транскрипции GATA3. CD4+ Th2-клетки продуцируют высокие уровни определенных цитокинов - IL-4, IL-5, IL-13. Данные цитокины способствуют переключению В-клеток на выработку IgE. Th2-лимфоциты и синтезируемые ими цитокины ответственны за привлечение в процесс аллергического воспаления других эффекторных клеток - эозинофилов, тучных клеток и базофилов [28–30].

Натуральные киллеры (NK-клетки) и базофилы также способствуют процессу сенсибилизации, продуцируя IL-4 на ранних стадиях аллергического процесса. По мере созревания B-клетки памяти дифференцируются в плазматические клетки и начинают продуцировать большое количество аллерген-специфического IgE (sIgE). Зрелые наивные В-клетки связываются с антигеном в периферических лимфоидных органах. Они становятся активированными после взаимодействия с Т-клетками, специфичными для поступающего антигена. После активации B-клетки имеют два пути развития. Они мигрируют в фолликул, пролиферируют и образуют зародышевые центры или мигрируют во внефолликулярную область, пролиферируют и дифференцируются в короткоживущие плазматические клетки. В-клетки в зародышевом центре созревают с переключением синтеза иммуноглобулинов классов IgM, IgG или IgA на IgE [31, 32]. В дальнейшем В-клетки, которые покидают зародышевый центр, становятся либо В-клетками памяти, либо долгоживущими плазматическими клетками. В-клетки памяти делятся, а долгоживущие плазматические клетки не самообновляются. Последние обеспечивают длительное поддержание титров антигенспецифических АТ [33, 34].

Синтезированные IgE поступают в ткани и связываются с высокоаффинными мембранными FcεR1-рецепторами тучных клеток и базофилов.

После фазы сенсибилизации наступает эффекторная фаза иммунного ответа [35].

Повторный контакт с аллергеном приводит к его взаимодействию с фиксированными на тучных клетках IgE, присоединенными к FcɛRI на тучных клетках и базофилах, что индуцирует их дегрануляцию. Связывание с FcɛRI приводит к последующему высвобождению предварительно синтезированных провоспалительных биологически активных медиаторов (гистамин, гепарин и протеазы, простагландины, лейкотриены) и цитокинов, которые ответственны за реакцию ранней фазы и острое воспаление. Итогом является развитие острых симптомов аллергической реакции [36].

Ранняя фаза аллергического воспаления развивается через несколько минут, а в некоторых случаях - через несколько секунд после воздействия аллергена и продолжается 2–3 ч. Необходимо обратить внимание, что высвобождение цитокинов и хемокинов тучными клетками в реакции немедленной фазы важно для последующей реакции поздней фазы. Поздняя фаза ответа или отсроченная по времени фаза аллергического воспаления начинается через 4–6 ч после стимуляции и длится 18–24 ч. Развитие отсроченной фазы аллергического воспаления не связано с дополнительным воздействием аллергена. В поздней фазе происходит накопление медиаторов воспаления, продуцируемых эффекторными клетками, и активация аллерген-специфических Th2-клеток памяти. Эта фаза характеризуется инфильтратом, содержащим Th2-клетки, эози­нофилы и базофилы. Th2-клетки продуцируют различные цитокины, такие как IL-4, -5, -9, -13, поддерживающие аллергическое воспаление. Эти цитокины необходимы для переключения синтеза классов АТ, регулирования локального и системного синтеза IgE, рециркуляции эозинофилов, базофилов и тучных клеток. Также эти цитокины привлекают дополнительные воспалительные клетки в очаг воспаления, усиливая аллергическую реакцию и повреждение тканей [37]. Эозинофилы секретируют белки, повреждающие респираторный эпителий, в частности эозинофильный катионный белок (ECP) [24].

NK-клетки в сочетании с продуцирующими IL-17, Th17-клетками также потенциируют опосредованную через IL-8 миграцию и привлечение в зону аллергической реакции нейтрофилов, тем самым усиливая воспаление при аллергическом заболевании [38].

Кроме того, IL-9 и IL-10 дополнительно способствуют воспалению и повреждению тканей. Еще один механизм развития аллергического ответа организма связан с CD4+ CD25+ Foxp3+ T-reg-лимфоцитами. Эти клетки выполняют функции контроля гиперактивации иммунной системы и составляют до 10% лимфоцитов периферической крови [26]. Foxp3 - главный транскрипционный фактор регуляторных Т-клеток (T-reg). Сверхэкспрессия Foxp3 в обычных Т-клетках преобразует их фенотип в T-reg и подавляет их активность. Экспрессию Foxp3 индуцирует трансформирующий фактор роста β (TGFβ). Непрерывная экспрессия транскрипционного фактора Foxp3 имеет решающее значение для поддержания подавляющей деятельности T-reg. Подавление экспрессии Foxp3 способствует преобразованию T-reg в Th2-клетки, при этом активированные аллерген-специфические Th2-клетки взаимодействуют с В-лимфоцитами за счет продукции IL-4 и IL-13 и переключают синтез антител на изотип IgE [18, 39].

Th1-клетки и NK-клетки продуцируют интерферон-гамма (INFγ), который либо вызывает повреждение эпителиальных клеток, либо противодействует аллергическому воспалению, угнетая Th2-реакции.

Таким образом, отличительными характеристиками иммунного ответа на аллерген у больного с аллергическими заболеваниями являются:

  • повышенная проницаемость барьерных тканей, что облегчает проникновение аллергена во внутреннюю среду организма;

  • повышенная активность антигенпрезентирующих клеток (дендритных клеток и В-лимфоцитов), сформированная под действием TSLP;

  • повышенная экспрессия транскрипционного фактора GATA3, что способствует дифференцировке Тh0- в Th2-клетки;

  • повышенная продукция Th2-клетками провоспалительных цитокинов IL-4, -5, -13, что способствует синтезу IgЕ В-лимфоцитами.

Характер ответа организма на аллерген при аллергопатологии принципиально отличается от характера реагирования организма без атопии.

Характер иммунного ответа на аллерген можно видоизменить. Важное значение имеет способ подачи аллергена и доза. Если аллерген поступает не через слизистые оболочки в малых дозах, как это происходит при естественной экспозиции аллергена, а в высоких дозах и через другие пути попадания в организм (например, парентеральный путь), происходит изменение иммунного ответа. Иммунный ответ на аллерген в этом случае соответствует реакции организма практически здоровых лиц, не страдающих атопией.

Изменение способа поступления в организм аллергена приводит к переориентации иммунного ответа с патологического на физиологический, что и лежит в основе механизма воздействия АСИТ.

Список литературы

  1. Тренева М.С., Пампура А.Н. Вероятность аллергического заболевания ребенка при проявлениях аллергии у его родственников // Рос. аллерголог. журн. 2006. № 3. C. 40–43.

  2. Woodfolk J.A. T-cell responses to allergens // J. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 119. P. 280–294.

  3. Renz H., Conrad M., Brand S. et al. Allergic diseases, gene-environment interactions // Allergy. 2011. Vol. 66, Suppl. 95. P. 10–12.

  4. Koppelman G.H. Gene by environment interaction in asthma // Curr. Allergy Asthma Rep. 2006. Vol. 6. P. 103–111.

  5. Los H., Postmus P.E., Boomsma D.I. Asthma genetics and intermediate phenotypes: a review from twin studies // Twin Res. 2001. Vol. 4. P. 81–93.

  6. Simpson A., John S.L., Jury F. et al. Endotoxin Exposure, CD14 and Allergic Disease: An interaction between Genes and the Environment // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2006. Vol. 174. P. 386–392.

  7. Takizawa H. Impact of air pollution on allergic disease // Korean J. Intern. Medicine. 2011. Vol. 26. P. 262–273.

  8. Аникушина А.К., Митрофанова Е.С. Экологические факторы окружающей среды и аллергия // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2013. Т. 2, № 33. C. 7–14.

  9. Custovic A., Murray C., Simpson A. Allergy and infection: understanding their relationship // Allergy. 2005. Vol. 60, Suppl. 79. P. 10–13.

  10. Bresciani M., Parisi C., Manghi G., Bonini S. The hygiene hypothesis: does it function worldwide? // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 5. P. 147–151.

  11. Sudre B., Vacheyrou M., Braun-Fahrlander C. et al. High levels of grass pollen inside European dairy farms: a role for the allergy-protective effects of environment? // Allergy. 2009. Vol. 6. P. 1068–1073.

  12. Fishbein A.B., Fuleihan R.L. The hygiene hypothesis revisited: does exposure to infectious agents protect us from allergy? // Curr. Opin. Pediatr. 2012. Vol. 24. P. 98–102.

  13. Wark P.A., Johnston S.L., Bucchieri F. et al. Asthmatic bronchial epithelial cells have a deficient innate immune response to infection with rhinovirus // J. Exp. Med. 2005. Vol. 201. P. 937–947.

  14. Johnston N.W., Johnston S.L., Duncan J.M. et al. The September epidemic of asthma exacerbations in children: a search for etiology // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 115. P. 132–138.

  15. Gern J.E., Lemanske R.F. Infectious triggers of pediatric asthma // Pediatr. Clin. N. Am. 2003. Vol. 50. P. 555–575.

  16. Boguniewicz M., Leung D.Y. Recent insights into atopic dermatitis and implications for management of infectious complications // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 125. P. 4–13.

  17. Schmid-Grendelmeier P., Scheynius A., Crameri R. The role of sensitization to Malassezia sympodialis in atopic eczema // Chem. Immunol. Allergy. 2006. Vol. 91. P. 98–109.

  18. Пичужкина О.В., Гущин И.С., Курбачева О.М. Реаранжировка иммунного ответа в результате проведения аллергенспецифической иммунотерапии // Экспериментальная и клиническая аллергология. 2013. № 1. C. 43–48.

  19. Гущин И.С. IgE-опосредованная гиперчувствительность как ответ на нарушение барьерной функции тканей // Иммунология. 2015. № 1. C. 45–52.

  20. Georas S.N., Rezaee F. Epithelial barrier function: at the frontline of asthma immunology and allergic airway inflammation // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 134, N. 3. P. 509–520.

  21. Zhang Y., Zhang L. Prevalence of Allergic Rhinitis in China // Allergy Asthma Immunol. Res. 2014. Vol. 6, N. 2. P. 105–113.

  22. Sindher S.B., Long A., Acharya S. et al. The use of biomarkers to predict aero-allergen and food immunotherapy responses // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2018. Vol. 55, N. 2. P. 190–204.

  23. Ozdemir C., Akdis M., Akdis C.A. Nature of regulatory T cells in the context of allergic disease // Allergy Asthma Clin. Immunol. 2008. Vol. 15. P. 106–111.

  24. Гущин И.С., Курбачева О.М. Аллергия и аллерген-специфическая иммунотерапия. Москва: Фармарус Принт Медиа, 2010. 228 c.

  25. Wang Y.H., Ito T., Wang Y.H. et al. Maintenance and polarization of human TH2 central memory T cells by thymic stromal lymphopoietin-activated dendritic cells // Immunity. 2006. Vol. 24. P. 827–838.

  26. Ярилин А.А. Транскрипционные регуляторы дифференцировки Т-хелперов // Иммунология. 2010. № 3. C. 153–168.

  27. Miller S.A., Weinmann A.S. Common themes emerge in the transcriptional control of T helper and developmental cell fate decisions regulated by the T-box, GATA and ROR families // Immunology. 2009. Vol. 126. P. 306–315.

  28. Sindher S.B., Long A., Acharya S. et al. The use of biomarkers to predict aero-allergen and food immunotherapy responses // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2018. Vol. 55, N. 2. P. 190–204.

  29. Shamji M.H., Durham S.R. Mechanisms of immunotherapy to aeroallergens // Clin. Exp. Allergy. 2011. Vol. 41. P. 1235–1246.

  30. Ярилин А.А., Донецкова А.Д. Регуляторные Foxp3+Т-клетки и их роль при аллергии // Рос. аллергологический журнал. 2005. № 2. C. 22–26.

  31. Muramatsu M., Kinoshita K., Fagarasan S. et al. Class switch recombination and hypermutation require activation-induced cytidine deaminase (AID), a potential RNA editing enzyme // Cell. 2000. Vol. 102. P. 553–563.

  32. Pène J., Rousset F., Brière F. et al. IgE production by normal human lymphocytes is induced by interleukin 4 and suppressed by interferons gamma and alpha and prostaglandin E2 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. Vol. 85. P. 6880–6884.

  33. Luger E.O., Fokuhl V., Wegmann M. et al. Induction of long-lived allergen-specific plasma cells by mucosal allergen challenge // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 124. P. 819–826.

  34. Erazo A., Kutchukhidze N., Leung M. et al. Unique maturation program of the IgE response in vivo // Immunity. 2007. Vol. 26. P. 191–203.

  35. Sindher S.B., Long A., Acharya S. et al. The use of biomarkers to predict aero-allergen and food immunotherapy responses // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2018. Vol. 55, N. 2. P. 190–204.

  36. Лусс Л.В. Аллерген-специфическая иммунотерапия — основной эффективный метод лечения атопических заболеваний // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2004. № 1. C. 70–78.

  37. Pawankar R., Mori S., Ozu C. et al. Overview on the pathomechanisms of allergic rhinitis // Asia Pac. Allergy. 2011. Vol. 1, N. 3. P. 157–167.

  38. Wallace D.V., Dykewicz M.S., Bernstein D.I. et al. The diagnosis and management of rhinitis: an updated practice parameter // J. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 122, Suppl. 2. P. 1–84.

  39. Jutel M., Akdis C.A. Immunological mechanisms of allergenspecific immunotherapy // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 725–732.

Глава 4. Иммунологические механизмы аллерген-специфической иммунотерапии

Изучение изменений в иммунной системе, которые происходят в процессе АСИТ и после ее завершения, позволяют понять суть данного метода, и в настоящее время достигнут значительный успех в понимании его молекулярных и клеточных механизмов. В механизмах АСИТ определяющее значение имеет активация Т (Т-reg) и В (В-reg) - регуляторных клеток, а также толерогенных дендритных клеток. Эти клеточные популяции продуцируют медиаторы, способные переключать иммунный ответ на толерогенный путь. АСИТ проводится при IgE-опосредуемых аллергических заболеваниях, развитие которых в значительной мере связано с гиперактивацией иммунной системы и снижением контроля Т-reg-клеток (CD4+ CD25+ Foxp3+ T-reg, Th1, Th3). АСИТ является единственным методом, способным влиять на все патогенетические звенья аллергического процесса, на раннюю и позднюю фазы IgE-опосредованной аллергической реакции и тем самым видоизменять характер иммунного ответа организма на аллерген. Подавляющее большинство исследований, посвященных изучению иммунологических механизмов иммунотерапии, проведены при подкожном введении аллергенов [1].

Основные иммунологические механизмы АСИТ включают в себя: снижение эозинофилии, подавление ранней фазы аллергической реакции, изменение баланса Т-хелперов (Th1 и Th2) в сторону преобладания Th1, проявляемое повышением продукции целого ряда цитокинов, уменьшение пролиферации аллерген-специфических Т-лимфоцитов, супрессия IgE-ответа.

В результате АСИТ происходит подавление специфического аллерген-опосредованного воспаления, индукция регуляторных Т-клеток (T-reg), которые вырабатывают интерлейкин 10 (IL-10), и регуляторных В-клеток (B-reg), которые продуцируют IgA, IgG1 и IgG4. В процессе лечения уменьшается выработка специфических IgE В-клетками. АСИТ снижает количество и реактивность тучных клеток и эозинофилов, тормозит высвобождение медиаторов из клеток-мишеней (гистамина, хемокина, цитокинов). Конечной целью АСИТ является формирование аллерген-специфической толерантности [2, 3].

Индукция иммунологической толерантности - процесс многокомпонентный и протяженный по времени. Достижение иммуннологической толерантности к причинно-значимым аллергенам клинически выражается в отсутствии симптомов аллергических заболеваний при контакте с ними.

4.1. Иммунологические изменения в результате аллерген-специфической иммунотерапии

АСИТ воздействует на обе фазы аллергического ответа (рис. 4-1) - как раннюю, так и позднюю, следствием чего является подавление миграции клеток в ткани, снижение их количества и активности в слизистой оболочке органов-мишеней, что приводит не только к торможению аллерген-специфической реакции, но и к угнетению тканевой гиперчувствительности к медиаторам. Влияние иммунотерапии на обе фазы (раннюю и позднюю) иммунного ответа происходит независимо от пути введения аллергена. Однако время возникновения этих эффектов варьирует и зависит от способа введения аллергена. Так, например, при проведении ПКИТ аллергеном яда перепончатокрылых это происходит в течение нескольких часов, а при оральной иммунотерапии может занимать до 3–4 мес [4].

image
Рис. 4-1. Иммунологические изменения в результате аллерген-специфической иммунотерапии: АГ - антигистаминные препараты; ДК - дендритные клетки

Все иммунологические изменения, которые происходят в течение всего курса АСИТ, подразделяются на ранние (ранняя десенситизация) и поздние (поздняя десенситизация) (табл. 4-1).

Таблица 4-1. Сроки и типы изменений, вызываемые аллерген-специ­фической иммунотерапией
Фаза Быстрая десенситизация Ранняя толерантность Поздняя толерантность

Время от начала АСИТ

2–4 нед

1–3 мес

12–24 мес

Клинические признаки

Ослабление симптомов

Повышение триггерной дозы аллергена

Полная устойчивость к аллергену

Основные иммунные изменения

  • Подавление экспрессии H2R.

  • Снижение выработки гистамина и других медиаторов

  • Появление специфических T-reg.

  • Раннее повышение IgE

  • Созревание специ­фических T-reg.

  • Появление Th1 и B-reg.

  • Переключение на синтез IgG4 и IgA.

  • Стойкое снижение IgE

Примечание : АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

4.2. Ранние иммунологические механизмы (ранняя десенситизация)

Самые ранние эффекты АСИТ обусловлены десенсибилизацией тучных клеток и базофилов. В течение первых часов после приема аллергена начинается период ранней десенсибилизации - подавление дегрануляции тучных клеток и базофилов путем селективного влияния на гистаминовые рецепторы (H2R), что приводит к высвобождению гистамина, лейкотриенов и других медиаторов в меньшем количестве, чем требуется для развития аллергической реакции.

Затем следует постепенное увеличение аллерген-специфических T-reg- и B-reg-клеток и супрессия эффекторных Th2-клеток. Меняется уровень специфических IgE-антител - первоначальное раннее увеличение аллерген-специфического IgE в сыворотке крови в начале лечения сменяется стойким снижением их уровня. Параллельно происходит увеличение аллерген-специфического IgG4, что обусловливает индукцию аллерген-специфической толерантности и развитие десенситизирующего действия АСИТ. Синтез специфических IgG4-антител начинается через несколько недель после старта терапии аллергенами, а в дальнейшем имеется тенденция к их стойкому повышению, которое достигает оптимальных значений в течение 1–3 лет [5–8].

4.3. Поздние иммунологические механизмы (Поздняя десенситизация)

Через несколько месяцев после инициации АСИТ уменьшается число тканевых тучных клеток, эозинофилов и их медиаторов. Успешный результат АСИТ также характеризуется уменьшением тучных клеток, базофилов и эозинофилов в коже, слизистой носа, бронхов, конъюнктив в ответ на провокацию или естественную экспозицию аллергена. Снижение в тканях количества тучных клеток и эозинофилов, повышение порога активации эозинофилов и Т-клеток приводит к снижению назальной, бронхиальной и кожной реактивности в ответ на провокацию аллергеном, что и определяет лечебный эффект АСИТ.

После первого года АСИТ значительно возрастает доля нулевых "наивных" Т-лимфоцитов (Th0). На втором году значительно увеличивается уровень Th1-клеток, которые начинают преобладать над Th2 [9, 10].

Успешно проведенная АСИТ повышает порог концентрации аллергенов, необходимой для индукции немедленных реакций или развития поздней фазы аллергического воспаления в органе-мишени. Постепенно происходит снижение кожной реактивности, что можно выявить постановкой кожных тестов со специфическим аллергеном [2]. Кроме того, АСИТ подавляет бронхиальную, назальную и конъюнктивальную гиперреактивность к неспецифическим стимулам [11].

4.4. Влияние аллерген-специфической иммунотерапии на клеточные факторы

В формировании физиологического иммунного ответа на аллерген ключевым звеном является изменение аллерген-специфической реактивности Т-клеток, а основная роль принадлежит появлению популяции аллерген-специфических Т-reg. Т-reg играют определяющую роль в реализации иммунологических эффектов успешно проведенной АСИТ. Идентификация Т-reg в качестве основных регуляторов иммунологических процессов и подтверждение их важной роли в формировании толерантности к аллергенам открыло перспективный путь профилактики и лечения аллергических заболеваний. Длительное применение высоких доз аллергена в процессе АСИТ видоизменяет Т-клеточный ответ таким образом, что дифференцировка Тh происходит по пути образования именно Т-reg [7, 12, 13].

Аллерген-специфические CD4+ T-клетки, которые преимущественно продуцируют IL-4, IL-10, IFNγ, представляют собой Th1-, Th2-, T-reg-клетки. Все три типа клеток представлены как у здоровых людей, так и у лиц, страдающих аллергическими заболеваниями, но в разных пропорциях. У практически здоровых лиц преобладают Т-reg-клетки, продуцирующие IL-10, трансформирующий фактор роста бета (TGFβ), тогда как у лиц, страдающих аллергическими заболеваниями, преобладают Th2-клетки, продуцирующие IL-4. Преобладание тех или иных субпопуляций T-клеток определяет, будет ли старт аллергического процесса. T-reg высвобождают IL-10 и TGFβ и блокируют дегрануляцию тучных клеток. В различных исследованиях изучены и описаны нарушения баланса и функциональной активности различных субпопуляций T-reg-лимфоцитов с последующей нормализацией их количественных и качественных характеристик на фоне успешного проведения АСИТ [14, 15].

Т-reg играют ключевую роль не только в формировании, но и поддержании иммунологической толерантности к аллергенам [16]. T-reg-клетки участвуют в распознавании антигена и подавляют активность других клеток, в частности эффекторных Т-лимфоцитов, что является необходимым условием для полного развития Т-клеточной толерантности [17]. Данный пул клеток изучен в многочисленных исследованиях, посвященных иммунных механизмам АСИТ, в которых показано, что увеличение количества аллерген-специфических T-reg-клеток и уменьшение эффекторных Th2-клеток сопровождалось улучшением клинических показателей [18–20].

В различных исследованиях показаны нарушения соотношения и функциональной активности различных субпопуляций T-reg-клеток при аллергических заболеваниях, с последующей нормализацией их количественных и качественных характеристик на фоне АСИТ [14, 15, 20]. В случае успешной АСИТ развивается иммунологическая толерантность периферических Т-клеток и снижается порог активации тучных клеток и базофилов.

Среди B-клеток также выделяют субпопуляции в зависимости от секретируемых цитокинов. В-reg контролируют чрезмерные воспалительные реакции через IL-10, который в свою очередь ингибирует провоспалительные цитокины и поддерживает дифференцировку T-reg, подавляет эффекторные Т-клетки, способствует индукции T-reg-клеток, ингибирует созревание дендритных клеток, подавляет провоспалительный ответ, снижает синтез IgE-антител и стимулирует продукцию плазматическими клетками противовоспалительных "блокирующих" антител IgG4. Помимо индукции выработки IL-10, В-reg-клетки вносят вклад в формирование толерантности на фоне АСИТ путем выработки TGFβ и IL-35 [16].

Характеристикой В-reg-клеток, синтезирующих IL-10, является высокая экспрессия на клеточной поверхности рецепторов CD25, CD71, CD73 [21]. В течение нескольких месяцев после начала проведения АСИТ происходит увеличение в несколько раз количества таких аллерген-специфических В-reg-клеток [22, 23].

Также B-reg способствуют развитию толерантности к аллергенам за счет влияния на функцию дендритных клеток, среди которых также выделяются различные подтипы с разными свойствами.

Дендритные клетки, как антиген-презентирующие клетки, обладают способностью как индуцировать аллергическое воспаление, так и иммунологическую толерантность путем регуляции Т-клеточного ответа, за счет своего толерогенного подтипа. Действие толерогенного подтипа дендритных клеток обусловлено их стимуляцией синтеза T-reg-клеток [24–26].

В недавних исследованиях продемонстрировано, что толерогенный пул дендритных клеток подавляет аллергическое воспаление в дыхательных путях. При проведении оральной АСИТ участвует в транспорте аллергенов в регионарные лимфатические узлы и активации антигенспецифических T-reg-клеток [27, 28].

Согласно некоторым данным, NK-клетки также способны принимать участие в достижении иммунологической толерантности при проведении АСИТ. Данный тип клеток также имеет различные субпопуляции, одна из которых - синтезирующая IL-10 - способна подавлять реакцию антигенспецифических Т-клеток [29].

Определенный вклад в индукцию иммунологической толерантности вносят врожденные лимфоидные клетки (ILC-клетки) - субкласс лимфоцитов, не имеющий специфических антигенных рецепторов, участвующий в патогенезе как аллергических, так и не аллергических заболеваний, и подразделяемый, в зависимости от поверхностных маркеров, факторов транскрипции и продуцируемых ими цитокинов на три группы - ILC1, ILC2, ILC3 [30]. Так, например, в процессе развития аллергических заболеваний ILC2-клетки синтезируют сходный цитокиновый профиль с Th2-клетками. По последним данным, проведение АСИТ приводит к значительному снижению количества ILC2-клеток в периферической крови или подавляет их сезонное повышение у пациентов с аллергическим ринитом по сравнению с контролем [31–33].

Таким образом, во время проведения АСИТ увеличивается количество Т-reg и B-reg-клеток. Эти клеточные популяции продуцируют медиаторы, способные переключать иммунный ответ на толерогенный путь, основными из которых являются IL-10, IL-35 и TGFβ. Определенный вклад вносят и другие популяции клеток - дендритные клетки, NK-клетки и ILC2-клетки.

Клетки иммунной системы вовлекаются при развитии иммунологической толерантности аллергена в разной степени в зависимости от способа введения [34]. Эти популяции регуляторных клеток в конечном итоге приводят к формированию изменений гуморального иммунного ответа [35, 36].

Изменение цитокинового профиля играет важную роль в механизмах АСИТ. На фоне терапии в первую очередь увеличивается синтез IL-10, который уменьшает секрецию различных провоспалительных цитокинов тучными клетками, снижает функцию и деятельность эозинофилов и ингибирует производство IL-5 Th0- и Th2-клетками, ингибирует продукцию GM-CSF и экспрессию CD 40 активированными эози­нофилами и усиливает гибель эозинофилов [37]. IL-10 способствует дифференцировке Т-reg, подавляет провоспалительный ответ, снижает продукцию IgE-антител и усиливает образование IgG4-антител [35].

В результате АСИТ, вследствие интенсивной антигенной стимуляции, помимо увеличения продукции IL-10 происходит увеличение синтеза IFNγ, IL-12 Т-клетками, повышение содержания CD4+ CD25+ Foxp3+ Т-клеток, что свидетельствует о переключении Th2-цитокинового профиля на Th1-цитокиновый профиль [38]. Синтез цитокина IL-12 имеет обратную зависимость от продукции IL-4, ключевого цитокина аллергических реакций, а IFN-γ стимулирует выработку B-лимфоцитами антител класса IgG [39]. Снижение активности Th2-лимфоцитов на фоне АСИТ характеризуется снижением продукции IL-4. Важным медиатором Т-регуляторных клеток, выработка которого усиливается в результате АСИТ, является TGFβ, так как этот цитокин вызывает подавление клеточного ответа по Th2-типу, уменьшая продукцию IL-5, и тем самым подавляет индуцированную экспозицией аллергена эозинофилию и аллергическое воспаление. Также была выявлена корреляция снижения симптомов аллергического ринита со снижением эозинофилии и экспрессии IL-5 в слизистой оболочке носа [40, 41]. Кроме того, под влиянием АСИТ наблюдается усиление экспрессии рецепторов для IL-2, что приводит к нормализации дисбаланса Th1/Th2-лимфоцитов. У детей с бронхиальной астмой АСИТ клещевыми и пыльцевыми лечебными аллергенами приводила к повышению продукции IL-10, IL-2, IFNγ и снижению уровня провоспалительных цитокинов (IL-1, TNFα, IL-6, IL-8) в сыворотке крови [42]. Таким образом, в результате развития аллерген-специфической толерантности происходит переориентация иммунного ответа - подавление активности Th2-лимфоцитов и снижение синтеза и уровня вырабатываемых ими цитокинов, а также супрессия пролиферации Т-клеток [43].

4.5. Влияние аллерген-специфической иммунотерапии на гуморальные факторы

В процессе АСИТ имеют значение и гуморальные факторы, и механизмы иммунного ответа. Позитивный результат АСИТ сопровождается увеличением продукции IgG4, IgG1 и IgA в секретах, супрессией повышения уровня специфических IgE-антител к аллергенам [6].

Один из механизмов АСИТ заключается в повышении выработки специфических IgG, обладающих блокирующими свойствами, в первую очередь подтипа IgG4, в меньшей степени субкласса IgG1. IgG4, или специфические "блокирующие" антитела, получили название из-за своей способности связывать in vitro в сыворотке пациента молекулы IgE. Эти антитела в эксперименте способны к пассивному переносу, что доказывает защитную противоаллергическую роль гуморальных механизмов. Кроме того, при сублингвальном способе введения препарата образуются специфические IgA и IgG1 антитела с подобной ролью. Происходит раннее переключение активности В-клеток на выработку IgG4-антител. IgG4-антитела связывают аллерген до того, как он достигает IgE, фиксированных на поверхности тучных клеток или базофилов, что предотвращает активацию и дегрануляцию этих клеток, а также IgE-зависимую презентацию аллергена Т-клеткам. Следствием этого является уменьшение на мембране тучных клеток или базофилов количества активированных FcεRI-рецепторов к IgE, что в свою очередь ведет к снижению их эффекторного ответа и подавляет аллергическое воспаление [16, 44–47].

Если продукция антител класса IgE приводит к развитию аллергических реакций, то продукция IgG, специфичных для того же антигена, приводит к тому, что аллерген-специфические IgG выступают в роли антагонистов IgE и блокируют развитие вызываемого ими аллергического воспаления. Сдвиг баланса между продукцией антител класса IgE и IgG в сторону IgG является принципиально важным для успешной АСИТ.

Повышение антител класса IgG4, как правило, ассоциируется с уменьшением клинической симптоматики, которое происходит в результате аллерген-блокирующего эффекта на уровне тучных клеток и/или на уровне антигенпрезентирующих клеток (предотвращает IgE-опосредованную активацию Т-клеток) [48]. На современном этапе в ряде исследований было выявлено повышение уровня антител подтипа IgG4 у больных аллергическим ринитом (АР) и бронхиальной астмой (БА) при проведении АСИТ различными аллергенами. В недавнем исследовании показано, что у пациентов с АР, сенсибилизированных к пыльце тимофеевки, с сопутствующей БА и без, использование рекомбинантной смеси пяти аллергенов тимофеевки приводило к повышению уровня аллерген-­специфических IgG1, IgG4 к Phlp1, Phlp5, при этом уровень IgG1 достигал максимума перед первым сезоном цветения, а IgG4 - перед вторым сезоном [49]. На современном этапе результаты многих клинических исследований подтверждают, что увеличение уровня аллерген-специфического IgG4 в сыворотке крови на ранних и поздних этапах АСИТ сопровождается клиническим улучшением [46, 50, 51].

Уровень блокирующих антител коррелирует с суммарной дозой, введенной при АСИТ аллергенной вакцины. Уровень специфических IgG в сыворотке достигает максимума после 2 лет АСИТ и в последующем не претерпевает существенных изменений, после окончания АСИТ несколько снижается. Описаны множественные IgG4-опосредованные иммунологические эффекты. Основными из них являются: подавление высвобождения медиаторов, вызванное непосредственным ингибированием взаимодействия с аллерген-специфическими IgE или опосредованно с помощью ингибирования FcγRIIB и FcγRI [52] подавление высвобождения гистамина из базофилов с помощью специфических IgG [53]. Антитела класса IgG снижают уровень аллерген-специфических антител класса IgE при связывании с эпитопами на поверхности аллергена, снижая, таким образом, антигенпрезентирующую емкость соответствующих типов клеток [54]. Итогом этих воздействий является снижение симптомов заболевания и потребности в медикаментах.

Влияние АСИТ на продукцию IgE. На фоне АСИТ изначально происходит увеличение аллергенспецифического IgE (sIgE), однако это не расценивается как отрицательный эффект, так как повышение IgE не сопровождается усилением симптоматики и наблюдается у значительной части пациентов. Связано это с естественным механизмом адаптивного ответа на аллерген, который заключается в образовании иммуноглобулинов плазматическими клетками. Затем в течение месяцев или лет лечения его постепенное снижение в сыворотке крови [55]. Постепенное снижение уровня специфических IgE в периферической крови может также способствовать долгосрочной клинической толерантности [56].

Хотя некоторые авторы считают, что снижение IgE относительно небольшое и слабо коррелирует с клиническим улучшением на фоне АСИТ [11]. При успешном результате АСИТ у детей с БА обнаружено снижение уровня Е-селектина, ICAM-1 и RANTES [42]. Кроме того, АСИТ, проводимая подкожным методом, помимо системного эффекта, вызывает локальные иммунологические изменения в шоковом органе. В процессе АСИТ у пациентов было выявлено локальное увеличение количества Foxp3+ CD25+ -регуляторных клеток в назальной слизи [57].

Таким образом, результатом успешно проведенной АСИТ является изменение гуморального и клеточного характера реагирования на аллерген, снижение тканевой (органной) чувствительности при воздействии на организм аллергена, подавление аллерген-специфической и неспецифической тканевой гиперчувствительности и гиперреактивности, ингибирование морфологических и функциональных признаков аллергического воспаления. Несмотря на успехи в изучении механизма АСИТ, полностью он и до сих пор не изучен.

4.6. Особенности иммунологических механизмов при сублингвальной иммунотерапии и других методах аллерген-специфической иммунотерапии

Иммунологические механизмы при СЛИТ в целом сходны с механизмами ПКИТ, но в то же время имеются некоторые различия между двумя методами. Следует подчеркнуть, что особенности механизма СЛИТ менее изучены. Для иммунотерапии сублингвальное введение аллергенов является оптимальной формой применения в связи с большим количеством иммунокомпетентных клеток в слизистой оболочке рта [58].

Клиническая эффективность СЛИТ и любой иммунотерапии аллергенами является дозозависимой [59]. При СЛИТ лечебный аллерген удерживается под языком в течение 1–2 мин перед проглатыванием. Растворение и высвобождение сублингвальных аллергенов (раствора или таблеток) в течение 2–3 мин способствуют распределению аллергенов за счет стимуляции слюнотечения; определяют оптимальный захват аллергенов из подьязычной области; предотвращают внезапный запуск/активацию провоспалительных клеток, например, тучных клеток, которые выделяют гистамин. Кинетика высвобождения аллергенов и их поглощение могут влиять на переносимость препарата [60].

СЛИТ характеризуется высокой эффективностью, быстрым достижением положительного результата и максимальной безопасностью. При СЛИТ фаза наращивания дозы либо отсутствует, либо она минимально сокращена, при этом доза вводимого аллергена изначально крайне высокая, что связано с меньшей реактогенностью слизистых оболочек. При СЛИТ используются очень высокие дозы аллергена, намного превышающие порог аллергенной проницаемости барьерных систем. Для достижения сходного лечебного действия дозы аллергена при сублингвальной АСИТ в 50–100 раз превышают дозы аллергена, используемые при ПКИТ [61].

Презентация аллергена аллерговакцины при СЛИТ имеет ряд особенностей. При СЛИТ аллерген длительное время контактирует с обширной поверхностью Вальдеерова кольца ротоглотки (нёбные и глоточные миндалины, боковые валики глотки, слизистая оболочка рта). Вальдеерово кольцо ротоглотки через лимфатические сосуды тесно связано с системой лимфатических узлов шеи, подчелюстной области и трахеи. Аллергены проходят через слизистую оболочку за 15–30 мин. Далее лечебные аллергены захватываются толерогенными дендритными клетками (клетками Лангерганса). Дендритные клетки ротовой полости обеспечивают протолерогенные механизмы в слизистой оболочке ротовой полости. Захват аллергена происходит через FcεRI и/или другие структуры, экспрессируемые дендритными клетками слизистой ротовой полости. Они экспрессируют на своей мембране молекулы ICAM-1, LFA-3, выполняющие адгезивные функции. Также дендритные клетки экспрессируют молекулы, выполняющие костимулирующие функции, такие как CD80/В7–1, CD86/В7–2, CD40. Дендритные клетки ротовой полости индуцируют высвобождение IL-10. Кроме того, захват аллергена дендритными клетками замедляет их созревание и снижает экспрессию рецепторов хемокина 7 (CCR7), что способствует миграции и увеличению дендритных клеток в течение 12–24 ч в периферических лимфоидных органах - шейных, подчелюстных лимфатических узлах. Ослабление созревания дендритных клеток и снижение экспрессии хемокина 7 (CCR7) являются доказательством локального контакта дендритных клеток с Т-клетками в слизистой ротовой полости после захвата аллергена во время миграции в лимфоидные ткани [62]. Дендритные клетки слизистой ротовой полости индуцируют Т-reg-клетки, а именно CD4+ CD25+ Foxp3+ T-reg-клетки [63].

Далее дендритные клетки слизистой оболочки полости рта захватывают аллерген, созревают и мигрируют в регионарные лимфатические узлы, где представляют аллерген Т- и В-лимфоцитам, что способствует дальнейшему системному иммунному эффекту СЛИТ. Индуцируется иммунологическая толерантность: синтез Тh1- и Т-reg-лимфоцитов, цитокинов Тh1 фенотипа иммунного ответа (IL-10, IFNγ, TGFβ). Сродство рецептора T-reg-клеток к антигену значительно выше, чем у других Т-лимфоцитов, в результате чего доза антигенов, необходимая для их активации, в 10–100 раз меньше, чем доза аллергена, требующаяся для активации эффекторных Т-клеток. Клиническими исследованиями подтверждены преимущества высокодозной СЛИТ [61].

Презентация антигена и миграция дендритных клеток в лимфоидные структуры слизистых оболочек и регионарные лимфоузлы приводят к их взаимодействию с "наивными" лимфоцитами (Th0) и развитию толерантности. В регионарных лимфоузлах происходит активация Т-лимфоцитов, обладающих супрессивной функцией, и синтезируются блокирующие антитела [62.] При проглатывании аллергена со слюной в иммунологический процесс вовлекается также лимфатическая система пищеварительного тракта - Пейеровы бляшки и др. В презентации антигена аллерговакцины, поступающего пероральным путем, участвуют антигенпрезентирующие энтероциты желудочно-кишечного тракта, экспрессирующие молекулы HLA II класса. На поверхности энтероцитов экспрессируются рецепторы для IFNγ, IL-4 и IL-17. Эти клетки также секретируют такие цитокины, как IFNα, TNF, IL-1, -6, -12, -15, -17, -18, гемопоэтины и хемокины. Презентация аллергена аллерговакцины способствует стимуляции CD8+ Т-клеток. Существует также путь презентации антигена с участием CD1-системы, ее молекулы экспрессируются на антиген-презентирующих клетках и эпителиальных клетках желудочно-кишечного тракта [64].

Длительный контакт лечебного аллергена со слизистой оболочкой ротовой полости и желудочно-кишечного тракта является залогом успешного результата при СЛИТ, так как при сублингвальном приеме аллергена создаются условия для максимально длительной антигенной стимуляции иммунной системы лимфоглоточного кольца и желудочно-кишечного тракта.

Через лимфатическую систему реализуется системный иммунный ответ [1]. Попадая в кровь, аллерген вовлекает в иммунный процесс общую иммунную систему с участием Т- и В-лимфоцитов. Образуются клоны лимфоцитов иммунологической памяти, которые подготавливают организм пациента к развитию иммунологической толерантности. Существует несколько механизмов иммунологической толерантности к аллергену: анергия, делеция или супрессия аллерген-специфических Т-клеток, и какой механизм будет задействован, зависит преимущественно от дозы вводимого аллергена [11, 65]. При сублингвальном приеме высоких доз аллергена, которые в несколько раз превосходят дозы при парентеральном применении, развивается анергия или делеция реактивных Т-лимфоцитов. При высокой концентрации аллергена эпителиальные клетки кишечника, дендроциты и макрофаги собственной пластинки и лимфоидных фолликулов начинают продуцировать IL-18, который совместно с IL-12 стимулирует дифференцировку "наив­ных" Т-лимфоцитов (Тh0) в Т-хелперы первого типа (Тh1) [66].

На фоне проведения СЛИТ концентрация аллерген-специфических IgG4 увеличивается [67, 68]. В некоторых исследованиях показано, что на фоне СЛИТ происходит увеличение аллерген-специфического IgA [69]. Также была показана дозозависимая индукция аллерген-специфических IgA в сыворотке крови больных [62]. Кроме того, на фоне СЛИТ повышается концентрация IL-10 и TGFβ [62, 70–72]. На фоне СЛИТ в слюне и сыворотке крови выявлено снижение эозинофильного катионного протеина (ECP) и IL-13 [73, 74]. Концентрация триптазы в назальном секрете уменьшается в ответ на назальную провокацию аллергеном [75].

В ряде исследований выявлено снижение кожной сенсибилизации на фоне СЛИТ при бронхиальной астме [76, 77], пищевой аллергии [78, 79], атопическом дерматите [80]. Также у больных бронхиальной астмой при проведении СЛИТ обнаружено снижение гиперреактивности бронхов [76, 77].

Тем не менее на сегодняшний день влияние СЛИТ на местный иммунный ответ слизистой глоточного кольца и желудочно-кишечного тракта изучено недостаточно и данные не получили однозначной трактовки.

Хотя классическими и наиболее эффективными методами признаются ПКИТ и СЛИТ и по этим методикам введения аллергена накоплено наибольшее количество информации, продолжается изучение механизмов действия и других методов АСИТ, к которым относится оральное, внутрилимфатическое, эпикутанное, внутрикожное, локальное назальное введение [47].

Эффективность оральной иммунотерапии (ОИТ) изучается при пищевой аллергии. Суть оральной иммунотерапии заключается в регулярном пероральном введении постоянно увеличивающихся доз пищевого аллергена. Метод используется при лечении аллергии на арахис, куриное яйцо и коровье молоко [81]. В большинстве исследований увеличение исходно низких доз аллергена происходило в течение нескольких недель - месяцев, однако ОИТ индуцировала иммуномодуляцию только при условии, что прием ежедневной средней дозы, как правило, продолжался. Возможности долговременной постоянной толерантности при ОИТ вероятно ограничены, когда введение аллергена прекращается.

Внутрилимфатическое введение аллергена является также мало распространенным методом АСИТ в связи с рисками побочных явлений, связанными с парентеральным введением, что ограничивает его применение. Кроме того, метод более сложный технически. Однако у него есть и определенные преимущества. Данный метод предполагает внутрилимфатическое введение аллергена и характеризуется быстрым достижением клинической эффективности за счет сокращения количества введений и длительности лечения [82, 83].

Эпикутанное введение аллергена осуществляется с помощью фиксируемых на коже пластырей. Этот метод был продемонстрирован при лечении пыльцевой, пищевой аллергии, а также аллергии к клещам домашней пыли [84]. В недавнем исследовании показано, что данный способ введения аллергена при лечении пыльцевой аллергии к семейству березовых приводил к значительному увеличению пролиферации аллерген-специфических Т-лимфоцитов, но не оказывал влияния на специ­фические IgE- и IgG-ответы [85]. В то же время эпикутанное введение аллергена арахиса способствовало увеличению уровней специ­фических IgG4 и изменению соотношения IgG4/IgE у пациентов с аллергией на арахис [86]. Вопрос о стойкости толерогенного эффекта и необходимости его поддержания остается открытым. Преимуществом эпикутанного метода введения аллергена является низкий риск как местных, так и системных нежелательных явлений [84].

Локальная назальная иммунотерапия крайне редко используется, эффективна только при лечении аллергического ринита. Технически метод крайне сложен, так как требует значительной подготовки специалистов и высокотехнологичного инструментария [87].

В целом после успешно проведенной АСИТ происходит заметное изменение характера иммунного ответа организма на аллерген, что характеризуется изменением различных иммунологических параметров. Наблюдается изменение Т-клеточного ответа, характеризующееся образованием T-reg, индуцирующих периферическую Т-клеточную толерантность, что способствует функциональной инактивации клеток при встрече с аллергеном. В результате АСИТ формируется возможность тормозить атопический иммунный ответ. Происходит модуляция функции В-клеток, вызывающая изменение синтеза IgE и IgG. Подавляется функция эффекторных клеток (эозинофилы, базофилы, тучные клетки), что характеризуется снижением пороговой активации тучных клеток и базофилов и подавлением IgE-зависимого высвобождения гистамина, торможением высвобождения провоспалительных цитокинов из тучных клеток за счет действия IL-10. Снижается активность эозинофилов, и уменьшается продукция IL-5 покоящимися Th0- и Th2-клетками у человека.

Таким образом, в результате проведения АСИТ достигается иная возможность иммунного ответа на аллерген. Однако данная возможность реализуется только при изменении условий попадания аллергена в организм - временного режима, дозы аллергена и путей введения аллергена. Если у пациента, у которого в естественных условиях сформировался атопический характер реагирования на аллерген, поступающий в него через естественные эпителиальные барьеры в малых дозах, изменить способ поступления и дозы аллергена в организм, то данный организм отреагирует на аллерген иным иммунологическим вариантом, который повлечет за собой снижение чувствительности к данному аллергену.

Список литературы

  1. Sahin E., Bafageeh S.A., Güven S.G. et al. Mechanism of action of allergen immunotherapy // Am. J. Rhinol. Allergy. 2016. Vol. 30. P. 1–3.

  2. Intel М., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergen immunotherapy. Part II: Mechanisms, standardization, and pharmacoeconomics // J. Allergy Clin. Immunol. 2016. Vol. 137, N. 2. P. 358–368.

  3. Федоров А.С., Литвинова Л.С., Бут-Гусаим В.И. и др. Аллерген-специфическая иммунотерапия: терапевтические вакцины для аллергических заболеваний // Медицинская иммунология. 2015. Т. 17, № 5. C. 407–422.

  4. Burks A.W., Calderon M.A., Casale T. et al. Update on allergy immunotherapy: American Academy of Allergy, Asthma & Immunology/European Academy of Allergy and Clinical Immunology/PRACTALL consensus report // J. Allergy Clin. Immunol. 2013. Vol. 131. P. 1288–1296.

  5. Novak N., Mete N., Bussmann C. et al. Early suppression of basophil activation during allergen-specific immunotherapy by histamine receptor 2 // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130. P. 1153–1158.

  6. Гущин И.С., Курбачева О.М. Аллергия и аллерген-специфическая иммунотерапия. Москва: Фармарус Принт Медиа, 2010. 228 с.

  7. Jutel M., Akdis C.A. Immunological mechanisms of allergenspecific immunotherapy // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 725–732.

  8. James L.K., Durham S.R. Update on mechanisms of allergen injection immunotherapy // Clin. Exp. Allergy. 2008. Vol. 38. P. 1074–1088.

  9. Wachholz P.A., Nouri-Aria K.T., Wilson D.R. et al. Grass pollen immunotherapy for hayfever is associated with increases in local nasal but not peripheral Th1:Th2 cytokine ratios // Immunology. 2002. Vol. 105. P. 56–62.

  10. Wilson D.R., Nouri-Aria K.T., Walker S.M. et al. Grass pollen immunotherapy: symptomatic improvement correlates with reductions in eosinophils and IL-5 mRNA expression in the nasal mucosa during the pollen season // J. Allergy Clin. Immunol. 2001. Vol. 107. P. 971–976.

  11. Akdis M., Akdis C.A. Mechanisms of allergen-specific immunotherapy: Multiple suppressor factors at work in immune tolerance to allergens // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 133, N. 3. P. 621–631.

  12. Vidal C., Enrique E., Gonzalo A. et al. Diagnosis and allergen immunotherapy treatment of polysensitised patients with respiratory allergy in Spain: an Allergists’ Consensus // Clin. Transl. Allergy. 2014. Vol. 4. P. 2–12.

  13. Akdis C.A., Akdis M. Mechanisms and treatment of allergic disease in the big picture of regulatory T cells // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 123. P. 735–746.

  14. Ihara F., Sakurai D., Yonekura S. et al. Identification of specifically reduced Th2 cell subsets in allergic rhinitis patients after sublingual immunotherapy // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 9. P. 1823–1832.

  15. Layhadi J.A., Eguiluz-Gracia I., Shamji M.H. Role of IL-35 in sublingual allergen immunotherapy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 19, N. 1. P. 12–17.

  16. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen Immunotherapy User’s Guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  17. Leqoux F.P., Lim J.B., Cauley A.W. et al. CD4+ T cell tolerance to tissue-restricted self antigens is mediated by antigen-specific regulatory T cells rather than deletion // Immunity. 2015. Vol. 43. P. 896– 908.

  18. Ryan J.F., Hovde R., Glanville J. et al. Successful immunotherapy induces previously unidentified allergen-specific CD4+ T-cell subsets // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2016. Vol. 113. P. E1286–E1295.

  19. Suorez-Fueyo A., Ramos T., Galan A. et al. Gras tablet sublingual immunotherapy downregulates the TH2 cytokine response followed by regulatory T-cell generation // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 133. P. 130–138.

  20. Boonpiyathad T., Sokolowska M., Morita H. et al. Der p 1-specific regulatory T-cell response during house dust mite allergen immunotherapy // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 5. P. 976–985.

  21. Stanic B., van de Veen W., Wirz O.F. et al. IL-10-overexpressing В cells regulate innate and adaptive immune responses // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 135, N. 3. P. 771–780.

  22. Boonpiyathad T., Meyer N., Moniuszko M. et al. High-dose bee venom exposure induces similar tolerogenic В-cell responses in allergic patients and healthy beekeepers // Allergy. 2017. Vol. 72. P. 407–415.

  23. Patil S.U., Ogunniyi A.O., Calatroni A. et al. Peanut oral immunotherapy transiently expands circulating Ara h 2-specific В cells with a homologous repertoire in unrelated subjects // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136. P. 125–134.

  24. Shamji M.H., Kappen J.H., Akdis M. et al. Biomarkers for monitoring clinical efficacy of allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis and allergic asthma: an EAACI Position Paper // Allergy. 2017. Vol. 72. P. 1156–1173.

  25. Pulendran B., Tang H., Manicassamy S. Programming dendritic cells to induce T (H) 2 and tolerogenic responses // Nat. Immunol. 2010. Vol. 11, N. 8. P. 647–655.

  26. Gordon J.R., Ma Y., Churchman L. et al. Regulatory dendritic cells for immunotherapy in immunologic diseases // Front. Immunol. 2014. Vol. 5. P. 7.

  27. Sun W., Wei J.W., Li H. et al. Adoptive cell therapy of tolerogenic dendritic cells as inducer of regulatory T cells in allergic rhinitis // International Forum of Allergy & Rhinology. 2018. Vol. 8, N. 11. P. 1291–1299.

  28. Tanaka Y., Nagashima H., Bando K. et al. Oral CD103(–)CDllb(+) classical dendritic cells present sublingual antigen and induce Foxp3(+) regulatory T cells in draining lymph nodes // Mucosal Immunol. 2017. Vol. 10. P. 79–90.

  29. Deniz G., Erten G., Kucuksezer U.C. et al. Regulatory NK cells suppress Antigen-Specific T cell responses // J. Immunol. 2008. Vol. 180, N. 2. P. 850–857.

  30. Globinska A., Kowalski M.L. Innate lymphoid cells: the role in respiratory infections and lung tissue damage // Exp. Rev. Clin. Immunol. 2017. Vol. 13. P. 991–999.

  31. Kortekaas Krohn I., Shikhagaie M.M., Golebski K. et al. Emerging roles of innate lymphoid cells in inflammatory diseases: Clinical implications // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 837–850.

  32. Lao-Araya M., Steveling E., Scadding G.W. et al. Seasonal increases in peripheral innate lymphoid type 2 cells are inhibited by subcutaneous grass pollen immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 134, N. 5. P. 1193–1195.

  33. Fan D.C., Wang X.D., Wang C.S. et al. Suppression of immunotherapy on group 2 innate lymphoid cells in allergic rhinitis // Chin. Med. J. (Engl). 2016. Vol. 129, N. 23. P. 2824–2828.

  34. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 с.

  35. Van de Veen W., Wirz O.F., Globinska A. et al. Novel mechanisms in immune tolerance to allergens during natural allergen exposure and allergen-specific immunotherapy // Curr. Opin. Immunol. 2017. Vol. 48. P. 74–81.

  36. Akdis M., Verhagen J., Taylor A. et al. Immune responses in healthy and allergic individuals are characterized by a fine balance between allergen-specific T regulatory 1 and T helper 2 cells // J. Exp. Med. 2004. Vol. 199. P. 1567–1575.

  37. Ohkawara Y., Lim K.G., Glibetic M. et al. CD40 expression by human peripheral blood eosinophils // J. Clin. Invest. 1996. Vol. 97. P. 1761–1766.

  38. Pipet A., Botturi K., Pinot D. et al. Allergen-specific immunotherapy in allergic rhinitis and asthma. Mechanism and proof of efficacy // Respir. Med. 2009. Vol. 103. P. 800–812.

  39. Hamid Q.A., Schotman E., Jacobson M.R. et al. Increases in IL-12 messenger RNA + cells accompany inhibition of allergen-induced late skin responses after successful grass pollen immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 1997. Vol. 99. P. 254–260.

  40. Wilson D.R., Nouri-Aria K.T., Walker S.M. et al. Grass pollen immunotherapy: symptomatic improvement correlates with reductions in eosinophils and IL-5 mRNA expression in the nasal mucosa during the pollen season // J. Allergy Clin. Immunol. 2001. Vol. 107. P. 971–976.

  41. Jutel M., Akdis M., Budak F. et al. IL-10 and TGF-beta cooperate in the regulatory T cell response to mucosal allergens in normal immunity and specific immunotherapy // Eur. J. Immunol. 2003. Vol. 33, N. 5. P. 1205–1214.

  42. Балаболкин И.И. Аллергенспецифическая иммунотерапия у детей с аллергическими заболеваниями: современные подходы к ее проведению и клиническая эффективность // Педиатрия. 2012. Т. 91, № 2. C. 81–88.

  43. Ozdemir C., Kucuksezer U.C., Akdis M. et al. Mechanisms of Aeroallergen Immunotherapy: Subcutaneous Immunotherapy and Sublingual Immunotherapy // Immunology and allergy clinics of North America. 2016. Vol. 36, N. 1. P. 71–86.

  44. Flicker S., Valenta R. Renaissance of the blocking antibody concept in type I allergy // Int. Arch. Allergy Immunol. 2003. Vol. 132. P. 13–24.

  45. Nouri-Aria K.T., Wachholz P.A., Francis J.N. et al. Grass pollen immunotherapy induces mucosal and peripheral IL-10 responses and blocking IgG activity // J. Immunol. 2004. Vol. 172. P. 3252–3259.

  46. Wachholz P.A., Durham S.R. Mechanisms of immunotherapy: IgG revisited // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2004. Vol. 4, N. 4. P. 313–318.

  47. Mitsias D., Xepapadaki P., Makris M. et al. Immunotherapy in allergic diseases — improved understanding and innovation for enhanced effectiveness // Curr. Opin. Immunol. 2020. Vol. 66. P. 1–8.

  48. Aalberse R.C., Stapel S.O., Schuurman J. et al. Immunoglobulin G4: an odd antibody // Clin. Exp. Allergy. 2009. Vol. 39, N. 4. P. 469–477.

  49. Jutel M., Jaeger L., Suck R. et al. Allergen-specific immunotherapy with recombinant grass pollen allergens // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 116. P. 608–613.

  50. Orengo J.M., Radin A.R., Kamat V. et al. Treating cat allergy with monoclonal IgG antibodies that bind allergen and prevent IgE engagement // Nat. Common. 2018. Vol. 9. P. 1421.

  51. Freiberger S.N., Zehnder M., Gafvelin G. et al. lgG4 but no lgG1 antibody production after introlymphatic immunotherapy with recombinant MAT-Feld1 in human // Allergy. 2016. Vol. 71. P. 1366–1370.

  52. Kepley C.L., Cambier J.C., Morel P.A. et al. Negative regulation of FcepsilonRI signaling by FcgammaRII costimulation in human blood basophils // J. Allergy Clin. Immunol. 2000. Vol. 106. P. 337–348.

  53. Wurtzen P.A., Lund G., Lund K. et al. A double-blind placebo-controlled birch allergy vaccination study II: correlation between inhibition of IgE binding, histamine release and facilitated allergen presentation // Clin. Exp. Allergy. 2008. Vol. 38, N. 8. P. 1290–1301.

  54. Wachholz P.A., Soni N.K., Till S.J. et al. Inhibition of allergen-IgE binding to B cells by IgG antibodies after grass pollen immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2003. Vol. 112. P. 915–922.

  55. Bousquet J., Lockey R.F., Mailling H.J. WHO Position Paper. Allergen Immunotherapy: therapeutic vaccines for allergic diseases // Allergy. 1998. Vol. 53, Suppl. 44. P. l–42.

  56. Scadding G.W., Calderon M.A., Shamji M.H. et al. Effect of 2 years of treatment with sublingual grass pollen immunotherapy on nasal response to allergen challenge at 3 years among patients with moderate to severe seasonal allergic rhinitis: The GRASS randomized clinical trial // JAMA. 2017. Vol. 317. P. 615–625.

  57. Radulovic S., Jacobson M.R. Durham S.R. et al. Grass pollen immunotherapy induces Foxp3-expressing CD4+ CD25+ cells in the nasal mucosa // Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 121, N. 6. P. 1467–1472.

  58. Mascarell L., Thierry Batard T., Cuiné J.F. et al. The Bioavailability of Allergens in Allergy Tablets Depends on Several Factors // Int. Arch. Allergy Immunol. 2018. Vol. 175, N. 4. P. 252–253.

  59. Calderоn M.A., Larenas D., Kleine-Tebbe J. et al. European Academy of Allergy and Clinical Immunology task force report on ‘dose-response relationship in allergen-specific immunotherapy’ // Allergy. 2011. Vol. 66, N. 10. P. 1345–1359.

  60. Allam J.P., Würtzen P.A., Reinartz M. et al. Phl p 5 resorption in human oral mucosa leads to dose-dependent and time-dependent allergen binding by oral mucosal Langerhans cells, attenuates their maturation, and enhances their migratory and TGF-beta1 and IL-10-producing properties // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 126, N. 3. P. 638–645.

  61. Костина Е.М., Белан Э.Б., Трушина Е.Ю. и др. Сублингвальная аллерген-специфическая иммунотерапия как оптимальный и безопасный метод лечения больных с аллергопатологией // Практическая аллергология. 2021. № 1. C. 48–53.

  62. Moingeon P., Batard T., Fadel R. et al. Immune mechanisms of allergen-specific sublingual immunotherapy // Allergy. 2006. Vol. 61, N. 2. P. 151–165.

  63. Tanaka Y., Nagashima H., Bando К. et al. Oral CD103(–)CDllb(+) classical dendritic cells present sublingual antigen and induce Foxp3(+) regulatory T cells in draining lymph nodes // Mucosal. Immunol. 2017. Vol. 10. P. 79–90.

  64. Shanahan F. Nutrient tasting and signaling mechanisms in the gut. Mechanisms of immunologic sensation of intestinal contents // F. Am. J. Physiol. 2000. Vol. 278. P. 191–196.

  65. Taylor A., Verhagen J., Akdis C.A. et al. T regulatory cells in allergy and health: a question of allergen specificity and balance // Int. Arch. Allergy Immunol. 2004. Vol. 135, N. 1. P. 73–82.

  66. Takahashi T., Kuniyasu Y., Toda M. Immunologic self-tolerance maintained by CD25+CD4+ naturally anergic and suppressive T-cells: induction of autoimmune disease by breaking their aneigic/suppressivc state // Int. Immunol. 1998. Vol. 10. P. 1969–1980.

  67. Radulovic S., Wilson D., Calderon M. et al. Systematic reviews of sublingual immunotherapy (SLIT) // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 740–752.

  68. Wilson D.R., Lima M.T., Durham S.R. Sublingual immunotherapy for allergic rhinitis: systematic review and meta-analysis // Allergy. 2005. Vol. 60. P. 4–12.

  69. Bahceciler N.N., Arikan C., Taylor A. et al. Impact of sublingual immunotherapy on specific antibody levels in asthmatic children allergic to house dust mites // Int. Arch. Allergy Immunol. 2005. Vol. 136. P. 287–294.

  70. Savolainen J., Jacobsen L., Valovirta E. Sublingual immunotherapy in children modulates allergen-induced in vitro expression of cytokine mRNA in PBMC // Allergy. 2006. Vol. 6. P. 1184–1190.

  71. Calamita Z., Saconato H., Pela A.B. et al. Efficacy of sublingual immunotherapy in asthma: review of randomized-clinical trials using the Cochrane Collaboration method // Allergy. 2006. Vol. 61. P. 1162–1172.

  72. Alvarez-Cuesta E., Bousquet J. Standards for practical allergen-specific immunotherapy // Allergy. 2006. Vol. 61, Suppl. 82. P. 1–20.

  73. Ciprandi G., Fenoglio D., Cirillo I. et al. Induction of interleukin 10 by sublingual immunotherapy for house dust mites: a preliminary report // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2005. Vol. 95. P. 38–44.

  74. Lombardi C., Giargioni S., Melchiorre A. et al. Safety of sublingual immunotherapy with monomeric allergoid in adults: multicenter post-marketing surveillance study // Allergy. 2001. Vol. 56. P. 989–992.

  75. Marcucci F., Sensi L., Frati F. et al. Effects on inflammation parameters of a double-blind, placebo controlled one-year course of SLIT in children monosensitized to mites // Allergy. 2003. Vol. 58. P. 657–662.

  76. Ciepiela O., Zawadzka-Krajewska A., Kotuła I. et al. The influence of sublingual immunotherapy on several parameters of immunological response in children suffering from atopic asthma and allergic rhinitis depending on asthma features // Pneumonol. Alergol. Pol. 2014. Vol. 82, N. 6. P. 503–510.

  77. Criado Molina A., Guerra Pasadas F., Daza Munoz J.C. Immunotherapy with an oral Alternaria extract in childhood asthma. Clinical safety and efficacy and effects on in vivo and in vitro parameters // Allergol. Immunopathol. 2002. Vol. 30, N. 6. P. 319–330.

  78. Patriarca G., Nucera E., Roncallo C. Oral desensitizing treatment in food allergy: clinical and immunological results // Aliment. Pharmacol. Ther. 2003. Vol. 17, N. 3. P. 459–465.

  79. Meglio P., Bartone E., Plantamura M. A protocol for oral desensitization in children with IgE-mediated cow`s milk allergy // Allergy. 2004. Vol. 59. P. 980–987.

  80. Choi J.S., Ryu H.R., Yoon C.H. et al. Treatment of patients with refractory atopic dermatitis sensitized to house dust mites by using sublingual allergen immunotherapy // Ann. Dermatol. 2015. Vol. 27, N. 1. P. 82–86.

  81. Mantyla J., Thomander T., Hakulinen A. et al. The effect of oral immunotherapy treatment in severe IgE-mediated milk, peanut, and egg allergy in adults // Immun. Inflamm. Dis. 2018. Vol. 6. P. 307–311.

  82. Patterson A.M., Bonny A.E., Shiels W.E. et al. Three-injection intralymphatic immunotherapy in adolescents and young adults with grass pollen rhinoconjunctivitis // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2016. Vol. 116. P. 168–170.

  83. Johansen P., von Moos S., Mohanan D. et al. New routes for allergen immunotherapy // Hum. Vaccin Immunother. 2012. Vol. 8, N. 10. P. 1525–1533.

  84. Aricigil M., Muluk N.B., Sakarya E.U. et al. New routes of allergen immunotherapy // Am. J. Rhinol. Allergy. 2016. Vol. 30. P. 193–197.

  85. Campana R., Moritz K., Neubauer A. et al. Epicutaneous allergen application preferentially boosts specific T-cell responses in sensitized patients // Sci. Rep. 2017. Vol. 7, N. 1. P. 1–11.

  86. Jones S.M. Sicherer S.H., Burks A.W. et al. Epicutaneous immunotherapy for the treatment of peanut allergy in children and young adults // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 139. P. 1242–1252.

  87. Passalacqua G., Canonica G.W. Local nasal specific immunotherapy for allergic rhinitis // Allergy Asthma Clin. Immunol. 2006. Vol. 2. P. 117–123.

Глава 5. Классификация аллерген-специфической иммунотерапии

5.1. Классификация по способу введения лечебного аллергена

При разных режимах, схемах и способах введения аллергенов удается достигнуть преимущественного воздействия на разные составляющие механизма АСИТ. Протоколы/схемы АСИТ не являются универсальными - они уникальны для каждого метода и препарата. Различия в схемах обусловлены различиями в химических и терапевтических свойствах препарата. Препараты лечебных аллергенов выпускаются в разных лекарственных формах и в зависимости от формы выпуска подразделяются на инъекционные и неинъекционные лечебные аллергены , соответственно, выделяют следующие способы введения препарата:

Инъекционные:

  • подкожная иммунотерапия (ПКИТ);

  • интралимфатическая;

  • интраэпителиальная (внутрикожная) иммунотерапия.

Неинъекционные:

  • сублингвальная иммунотерапия (СЛИТ);

  • пероральная (оральная иммунотерапия);

  • эпикутанная;

  • интраназальная;

  • эндобронхиальная.

Существует множество схем проведения АСИТ. Любая схема лечения для достижения оптимальных результатов подразумевает введение в организм определенной дозы аллергена. Дозы вводимого аллергена значительно варьируют в зависимости от схемы лечения, при парентеральном введении суммарные дозы аллергена меньше, чем при сублингвальном, но при любой схеме АСИТ аллерген вводят в организм в дозе, многократно превышающей естественную его экспозицию. При СЛИТ количество получаемого аллергена зависит от формы выпуска препарата. Для таблеток - это фиксированная доза (так как они неделимые), а при использовании препаратов в виде капель становится возможным индивидуальный подбор, исходя из чувствительности, но одновременно повышается риск неправильного введения, нарушения техники терапии [1].

Инъекционные способы проведения аллерген-специфической иммунотерапии

Подкожная иммунотерапия (ПКИТ) - один из самых распространенных и эффективных способов АСИТ, когда аллерген вводится подкожно в область верхней трети плеча. Длительное время подкожное введение аллергена являлось доминирующим методом АСИТ, классическая и ускоренная схемы терапии с успехом применяются и в настоящее время. Интралимфатический - аллерген вводится внутрилимфатически, в настоящее время активно изучается. Внутрикожная иммунотерапия - аллерген вводится внутрикожно, применяется редко, изучается.

Неинъекционные способы проведения аллерген-специфической иммунотерапии

Сублингвальная иммунотерапия (СЛИТ) - при этом способе лечения аллерген рассасывается и удерживается под языком в течение 1–2 мин и затем проглатывается или выплевывается. За последние годы сублингвальный метод аллерген-специфической иммунотерапии стал преобладающим методом терапии аллергенами, так как доказал свою эффективность и высокий уровень безопасности. Пероральная иммунотерапия (оральная иммунотерапия) предусматривает одномоментное проглатывание аллергена в каплях, таблетках или капсулах.

Считается, что скорость растворения таблетки влияет на проникновение аллергена и захват иммунными клетками. Высвобождение аллергена из лиофилизата происходит в 15 раз быстрее, и, вероятно, подобное свойство позволило уменьшить количество аллергена в лиофилизированных таблетках при сохранении высокой эффективности. Согласно технологии Zydis высвобождение 100% аллергена происходит за 15 с. Быстрорастворимые лиофилизированные СЛИТ-таблетки компании ALK обеспечивают удобный для пациентов прием препарата [24, 25].

Эпикутанная иммунотерапия предусматривает накожное нанесение аллергена, как правило, с помощью закрепляемых на коже пластырей. В настоящее время активно изучается. Интраназальный и эндобронхиальный способы АСИТ - при этих методах водная или порошкообразная форма аллергена вводится в нос или бронхи при помощи пипетки или специального устройства. В позиционных документах ВОЗ, EAACI и Европейского общества детской аллергии и клинической иммунологии (ESPACI) эндобронхиальная иммунотерапия не рекомендована, так как ее эффективность недостаточно документирована и существует риск развития тяжелых побочных эффектов. В связи с этим в настоящее время оба способа почти не используются.

Таким образом, наиболее распространенными способами проведения АСИТ являются ПКИТ и СЛИТ. Эффективность как ПКИТ, так и СЛИТ, подтверждена не только большим количеством плацебо, контролируемых многоцентровых клинических исследований, но и многолетней врачебной практикой, что позволило АСИТ занять достойное место в терапии аллергических заболеваний.

5.2. Классификация в зависимости от длительности протокола и схемы аллерген-специфической иммунотерапии

Для АСИТ используются лечебные аллергены только согласно инструкции (протоколу) к ним во избежание риска побочных реакций и нежелательных явлений.

В зависимости от длительности протокола АСИТ может быть:

  • предсезонной;

  • предсезонно-сезонной;

  • круглогодичной.

Также существуют: классические (длительные) и ускоренные (доступны только для водно-солевых аллергенов в условиях аллергологического стационара) схемы лечен ия [2].

Предсезонный протокол - применяют при пыльцевой сенсибилизации, проводят данный протокол водно-солевыми экстрактами лечебных аллергенов отечественного производства. Введение аллергенов заканчивается перед цветением причинно-значимых растений.

Предсезонно-сезонный протокол - проводят при пыльцевой сенсибилизации, в основном используются препараты для сублингвальной терапии.

Предсезонно-сезонный протокол:

  • длительность лечения примерно 6 мес;

  • начало лечения за 4 мес до сезона пыления "виновных" аллергенов;

  • лечение прекращается по окончании сезона цветения;

  • рекомендуется продолжать лечение не менее трех последовательных сезонов.

Круглогодичный протокол - проводится при выявлении бытовой сенсибилизации, сюда относят лечебные аллергены клещей вне зависимости от производителя и способа введения. При круглогодичном протоколе АСИТ продолжается как минимум три последовательных года без перерыва.

При круглогодичном лечении аллергенами из клеща домашней пыли анализируются переносимость, правильность приема препарата, соблюдение схемы, а эффективность оценивается с 6–12 мес терапии.

Оценка эффективности терапии в случае пыльцевой аллергии проводится уже в первый и последующие сезоны паллинации и через 3–4 мес после окончания сезона.

На сегодняшний день наиболее распространенными и доступными для широкой практики являются два основных способа введения аллергена: ПКИТ и СЛИТ.

У производителя аллергенов ALK-Abello (Дания) возможны предсезонно-сезонный и круглогодичный протоколы в отношении пыльцевых аллергенов. Обоснованием такого подхода является дозозависимый эффект АСИТ.

В большинстве случаев любой протокол проведения АСИТ включает два этапа:

  • I этап - этап достижения максимальной терапевтической дозы;

  • II этап - этап поддерживающей терапии (фаза основной терапии).

У производителя аллергенов ALK-Abello (Дания) нет I этапа - этапа набора дозы. У зарегистрированных в Российской Федерации отечественных водно-солевых аллергенов и у аллергенов производителей Stallergenes Greer (Франция), Lofarma S.p.A. (Италия) есть этап набора дозы.

5.3. Классификация по этиологической принадлежности аллергена

  • Бытовые.

  • Пыльцевые.

  • Эпидермальные.

  • Инсектные.

  • Грибковые.

Грибковых, эпидермальных и инсектных лечебных аллергенов в Российской Федерации на настоящий момент не зарегистрировано.

5.4. Классификация по типу аллергена

Лечебные препараты для АСИТ по типу аллергена разделяются на:

  • препараты с неизмененной белковой молекулой аллергена (аллергены);

  • препараты, подвергшиеся химическому изменению (аллергоиды).

Аллергены - препараты, содержащие белковые молекулы, не подвергавшиеся трансформации, полученные путем экстракции и очистки природного сырья или рекомбинантным способом.

Аллергоиды - препараты из химически модифицированных белковых молекул аллергена. Аллергены, полученные из природного сырья, подвергаются обработке формальдегидом, что приводит к ослаблению их способности реагировать с антителами (IgE) за счет блокады эпитопов аллергена альдегидными группами и/или одновременной полимеризации молекул. Подобная химическая трансформация приводит к образованию менее реактогенных и более устойчивых к денатурации аллергоидов. Данная технология используется при производстве отечественных аллергоидов для парентерального введения ("Микроген", РФ). У аллергенных эпитопов при данном способе производства сохраняется способность распознаваться рецепторами лимфоцитов и индуцировать иммунологическую толерантность. Альтернативная технология - карбамилирование, связывание лизина цианатом калия - используется при производстве аллергоидов для сублингвальной терапии производителем Лофарма (Италия). В ходе карбамилирования образуются мономерные аллергоиды с низкой молекулярной массой, но способные давать иммунный лечебный эффект. Преимуществом аллергоидов является то, что они вызывают меньше побочных реакций, так как при химической обработке значительно снижается их способность вызывать дегрануляцию тучных клеток. За счет модифицированной устойчивости аллергоиды имеют меньшую кратность введения и применяются в больших концентрациях по сравнению с водно-солевыми экстрактами, они более безопасны, что особенно важно при парентеральном введении, однако случаи развития тяжелых системных реакций на аллергоиды также возможны. Применение аллергоидов невозможно с диагностической целью для прик-тестов (волдырь на коже значительно меньше по сравнению с аллергеном при сходных концентрациях белка в препарате) [3, 4].

5.5. Классификация по количеству аллергенов в лечебном препарате

Лечебные препараты для АСИТ по количеству аллергенов в лечебном препарате разделяются:

  • моноаллергены;

  • миксты аллергенов (смеси).

Моноаллергены содержат один вид определенного аллергена.

Миксты аллергенов (смеси) содержат несколько близкородственных видов аллергенов.

Практически подавляющее количество пациентов являются полисенсибилизированными, что требует лечения каждой клинически значимой сенсибилизации. В случае полисенсибилизации пациент может принимать сразу два отдельных препарата. Также производятся лечебные аллергены со сложным составом. В США популярно изготовление смеси из неродственных видов аллергена персонально для каждого пациента. В Европейском союзе такой метод также был популярен, но сейчас практически не используется. В Российской Федерации данный подход не применяется, при проведении ПКИТ в Российской Федерации при полисенсибилизации аллергены вводятся, не смешивая, в разные части руки одновременно. Одномоментное применение нескольких аллергенов (как правило, не более двух) удобно для пациента и повышает комплайенс терапии. В то же время возможна разная чувствительность к аллергенам и, соответственно, неодинаковая переносимость. В большинстве случаев при одновременной полисенсибилизации к клещам пыли и пыльцевым аллергенам при проведении ПКИТ, скорее всего, аллерген клеща домашней пыли будет переноситься лучше, чем пыльца растений. При СЛИТ одновременный прием двух препаратов не приводит к значительному повышению нежелательных побочных эффектов, если по отдельности они переносятся удовлетворительно [4, 5].

При пыльцевой аллергии в сезон паллинации в одно время обычно цветут несколько видов близкородственных растений, и пациенты, как правило, имеют перекрестную или ко-сенсибилизацию. Некоторые производители выпускают смеси пыльцы аллергенов в зависимости от сезона цветения. В Российской Федерации зарегистрирован препарат Оралейр для СЛИТ, производитель Stallergenes Greer (Франция), который содержит пять видов пыльцы семейства мятликовых. Отечественный производитель АО НПО "Микроген" выпускает микст-аллергоиды и микст-аллергены деревьев, злаковых, сорных для ПКИТ.

Согласно современным знаниям по аллергологии при проведении АСИТ у пациента, сенсибилизированного к нескольким растениям одного семейства (пыльца этих растений состоит из гомологичных белков), возможно использовать аллерген, содержащий пыльцу основного растения. Основное растение является, как правило, наиболее распространенным, сезонно производит большое количество пыльцы, содержит основные белки своей группы и вызывает симптомы у большинства пациентов. Согласно современным представлениям о гомологии и кросс-реактивности аллергенов EAACI AIT Guidelines рекомедует: экстракты для АСИТ на основе одного вида аллергена достаточны для охвата всего спектра видов аллергенов из того же биологического семейства, когда гомология подтверждена. Согласно рекомендациям EMA Guideline on Allergen Products: единственный представитель гомологичной группы может быть выбран в качестве репрезентативного вида в продукте аллергена и достаточно доказать эффективность в гомологичной группе только с репрезентативным аллергеном [6–8].

5.6. Аллерген-специфическая иммунотерапия при сенсибилизации к пыльце

В настоящее время имеются широкая распространенность и прогрессирующий рост заболеваемости пыльцевой аллергией во многих странах, в том числе в Российской Федерации, где ее распространенность составляет от 10 до 25%. Сенсибилизация и аллергия к пыльце растений встречаются как во взрослой, так и в детской популяции. Распространенность пыльцевой аллергии зависит от природно-климатических, экологических и этнографических особенностей.

В средней полосе Российской Федерации выделяют три основных периода пыления растений, связанных с одной из трех групп аллергенных растений: деревья, злаковые, сорные.

Весенний период обострения пыльцевой аллергии (апрель - май) связан с пылением деревьев: березы, ольхи, орешника, дуба, клена, ясеня и др. Пыльца хвойных деревьев (ель, сосна), которые пылят с середины мая до середины июня, причиной поллиноза бывает редко.

Летний подъем заболеваемости (июнь - июль) вызывает цветение злаковых трав. Наибольшей аллергенной активностью обладают дикорастущие злаки: тимофеевка, пырей, мятлик луговой, костер, лисохвост, райграс, наименьшей - культивируемые злаки (рожь, кукуруза и др.).

Летне-осенний пик обострения связан с бурным пылением сорных трав (сложноцветных и маревых): полыни, лебеды, подсолнечника, чернобыльника, а в южных регионах - амброзии, конопли, циклахены.

В зависимости от региона ведущая роль в этиологии поллиноза принадлежит разным группам пыльцевых аллергенов. Установлено, что в центральной полосе России чаще заболевание связано с сенсибилизацией к пыльце злаковых трав, деревьев, сорных трав. На юге России основные аллергены - амброзия, полынь, подсолнечник, кукуруза. В Сибири в спектре сенсибилизации преобладает пыльца деревьев и злаков [9, 10]. Более редко встречается моносенсибилизация к какому-то одному аллергену, и в основном она регистрируется в детской популяции [4]. В большинстве случаев выявляется сенсибилизация к нескольким аллергенам одной группы или разным группам пыльцевых аллергенов. У таких больных клинические симптомы присутствуют весь пыльцевой сезон. Интенсивность клинических проявлений связана с концентрацией пыльцы растений в воздухе. Для каждого региона характерен свой график пыления растений.

Для появления клинической симптоматики достаточно содержания 20 пыльцевых зерен в 1 м3 воздуха. Пациенты с высокой степенью сенсибилизации реагируют и на меньшее содержание пыльцы. У 17–20% пациентов наряду с типичными проявлениями поллиноза в виде аллергического риноконъюнктивита и бронхиальной астмы развивается так называемая пыльцевая интоксикация - нарушение сна, раздражительность, иногда повышение температуры до субфебрильных значений, слабость, потливость, снижение аппетита. Реже встречаются кожные проявления поллиноза: острая аллергическая крапивница, ангиоотек, обострение атопического дерматита. Для этих проявлений также характерна четкая сезонность, связь с пребыванием в определенной местности. Дерматологические симптомы могут развиваться и вне пыльцевого сезона при использовании кремов, мазей, лосьонов, содержащих растительные компоненты. У больных, сенсибилизированных к пыльцевым аллергенам, нередко развивается перекрестная пищевая аллергия к продуктам растительного происхождения [9, 10].

При пыльцевой аллергии эффективность АСИТ продемонстрирована в отношении уменьшения выраженности симптомов и снижения объема симптоматической терапии при аллергическом рините в сочетании с конъюнктивитом и при бронхиальной астме. АСИТ пыльцевыми аллергенами более эффективно снижает выраженность симптомов аллергического ринита по сравнению с АСИТ клещами домашней пыли. Сила эффекта АСИТ в отношении симптомов аллергического риноконъюнктивита сопоставима с топическими стероидами и превосходит антигистаминные и антилейкотриеновые препараты.

Эффективность АСИТ при пыльцевой аллергии подтверждают данные многочисленных метаанализов, в которых был показан положительный эффект терапии в большинстве исследований в отношении влияния на симптомы и объем получаемой терапии при пыльцевой аллергии, хотя включенные исследования были не равнозначными по времени оценки конечных точек, когорт пациентов, использовались разные схемы и препараты для АСИТ [11].

При АСИТ пыльцевыми аллергенами частота побочных эффектов выше, чем при терапии клещом домашней пыли, однако они не зависят от возраста и одинаково встречаются как у взрослых, так и у детей [12].

Также интересным является факт, что АСИТ пыльцевыми аллергенами, помимо воздействия на симптомы ринита, значимо влияет на глазные симптомы, что значимо, так как симптомы конъюнктивита часто встречаются именно при пыльцевой аллергии [13].

Для лечения пыльцевой аллергии успешно применяются как ПКИТ, так и СЛИТ. В большинстве случаев эффект от АСИТ в виде уменьшения как симптомов, так и снижения обьема медикаментозной терапии следует ожидать уже в первый сезон пыления.

5.7. Сенсибилизация к пыльце деревьев

В Российской Федерации и Северной и Центральной частях Европы наиболее распространенными являются деревья, относящиеся к семейству букоцветные, основными представителями которого являются береза, ольха, лещина, граб, бук, дуб.

Клинические и иммунохимические наблюдения указывают на высокую степень перекрестной реактивности между аллергенами пыльцы семейства Betulaceae , что является следствием высокой степени гомологии аминокислотных последовательностей. Это объясняет также, почему десенсибилизация экстрактом пыльцы березы обеспечивает эффективную защиту от воздействия пыльцы других представителей Betulaceae . Значимый факт, что воздействие пыльцы березы доминирует над воздействием пыльцы других видов Betulaceae , особенно в России. Известно, что пыльца березы содержит несколько аллергенов, обозначаемых как Bet v 1, Bet v 4, Bet v 6 и Bet v 7. Мажорным аллергеном является Bet v 1 - первично сенсибилизирующий аллерген для средней полосы Российской Федерации, и гомологи содержатся во всех представителях вида. Bet v 1 - положительные пациенты обычно полисенсибилизированы не только к березе, но и ко многим другим видам растений (ольхе, лесному ореху, грабу и др.). В связи с этим аллергические заболевания с сенсибилизацией к аллергенам деревьев семейства букоцветные можно лечить аллергеном березы [14, 15].

Основные представители семейства букоцветные (березовые) (рис. 5-1 - 5-4).

image
Рис. 5-1. Ольха клейкая
image
Рис. 5-2. Береза повислая
image
Рис. 5-3. Граб
image
Рис. 5-4. Лещина обыкновенная

Зарегистрированными препаратами для ПКИТ для лечения аллергии на деревья являются водно-солевые аллергены отечественного производства НПО "Микроген", в виде моноаллергенов и в виде микст-аллергенов. Также зарегистрированным, но не доступным к приобретению является препарат Фосталь "Аллерген пыльцы деревьев" (Stallergenes Greer, Франция).

Большее распространение в практике имеют аллергены для СЛИТ. В настоящее время аллергены для СЛИТ при аллергии на пыльцу деревьев существуют в двух формах - капельной и таблетированной и представлены двумя производителями. Доступен к применению и покупке аллерген Сталораль "Аллерген пыльцы березы" (Stallergenes Greer, Франция) в виде капель подъязычных из пыльцы березы, с аллергенной активностью 10 ИР и 300 ИР. На момент написания руководства препарат Итулазакс (ALK-Abello, Дания) в виде лиофилизированных таблеток подъязычных из пыльцы березы, с аллергенной активностью 12 SQ-HDM пока не доступен и должен поступить в продажу в Российской Федерации в текущем году.

Несомненным преимуществом капельной формы препарата является возможность гибкого дозирования, особенно у пациента, имеющего высокую степень сенсибилизации, однако этот способ доставки СЛИТ не лишен недостатков, так как возможны уменьшение вводимой дозы и, соответственно, учитывая дозозависимый эффект СЛИТ, снижение эффективности.

В исследованиях и рутинной практике подтверждена эффективность препарата Сталораль "Аллерген пыльцы березы" (Stallergenes Greer, Франция).

С целью определения оптимальной дозы для СЛИТ пыльцой березы у данного производителя было проведено слепое контролируемое исследование с использованием суточной дозы 300 ИР в режиме предсезонно-сезонной терапии в течение двухлетнего периода. Согласно результатам этого исследования средний скорректированный балл симптомов риноконъюнктивита с учетом приема медикаментов в группе, получавшей аллерген березы 300 ИР/сут, снизился на 30,6%. При этом наблюдались равноценная эффективность и безопасность СЛИТ аллергеном пыльцы березы 300 ИР/мл, как у пациентов с наличием перекрестной пищевой непереносимости, так и без нее. Системных реакций в ходе исследования не было зафиксировано [16].

Следует подчеркнуть, что для достижения максимального эффекта АСИТ при лечении данным препаратом необходимо ведение пациента на максимальных дозах. Для препарата Сталораль "Аллерген пыльцы березы" залогом оптимальной эффективности являются 4 нажатия ежедневно (240 ИР), снижение применяемой дозы может быть рассмотрено лишь как опция по соображениям безопасности. Данный препарат зарегистрирован для взрослых и детей с 5 лет.

Вторым зарегистрированным препаратом аллергена березы для СЛИТ в Российской Федерации с 12 лет в форме лиофилизированных таблеток является препарат Итулазакс (ALK-Abello, Дания) с аллергенной активностью 12 SQ-HDM. Лиофилизированные таблетки содержат пыльцу березы, стандартизированную в единицах качества по главному аллергену Bet v 1.

В отношении данного препарата было проведено исследование, в котором лечебный аллерген продемонстрировал уже в первый сезон паллинации значительную эффективность, которая оценивалась по шкале симптомов TCS и индексу применения медикаментов в сезон цветения березы. Общий индекс TCS снизился на 40%, индекс по шкале дневных симптомов DSS - на 37%, средний индекс приема медикаментов DMS - на 49%. Кроме того, были получены иммунологически доказательства в виде синтеза нейтрализующих антител и IgG [17].

5.8. Сенсибилизация к пыльце злаковых трав

Среди трав представители семейства мятликовых или злаковых являются наиболее распространенными. Злаки встречаются на всех континентах. Даже в Антарктиде встречается два вида злаков. Семейство злаков включает 759 родов и 11 554 вида.

Основные представители семейства злаковых трав (рис. 5-5 - 5-11).

image
Рис. 5-5. Мятлик луговой
image
Рис. 5-6. Овсяница луговая
image
Рис. 5-7. Ежа сборная
image
Рис. 5-8. Райграсс высокий
image
Рис. 5-9. Плевел многолетний
image
Рис. 5-10. Бухарник шерстистый
image
Рис. 5-11. Тимофеевка луговая

Для ПКИТ зарегистрированы водно-солевые аллергены и аллергоиды отечественного производства АО НПО "Микроген", РФ. Препарат Алюсталь "Аллерген пыльцы луговых трав" (Stallergenes Greer, Франция) - суспензия для подкожного введения из смеси пыльцы трав в равных пропорциях (ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая), с аллергенной активностью 0,01; 0,1; 1; 10 ИР/мл временно недоступен.

Для АСИТ при аллергии на семейство злаковых трав методом СЛИТ зарегистрированы три препарата в форме таблеток: лиофилизированные таблетки Гразакс (ALK-Abello, Дания) из тимофеевки луговой, с аллергенной активностью 12 SQ-HDM; таблетки Оралейр (Stallergenes Greer, Франция) из смеси трав в равных пропорциях (ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая), с аллергенной активностью 10 и 300 ИР; таблетки мономерного карбамилированного аллергоида Лайс Грасс (Lofarma S.p.A., Италия) из смеси трав в равных пропорциях (бухарник шерстистый, тимофеевка луговая, мятлик луговой), с аллергенной активностью 300 и 1000 АЕ.

Когда аллергены являются кросс-реактивными, выбора пыльцы одного вида в пределах этого семейства для АСИТ может быть достаточно. Например, тимофеевка луговая Phleum pratense содержит в своем составе все группы аллергенов злаковых трав и покрывает аллергенный состав всех злаковых трав средней полосы. Основные мажорные аллергены тимофеевки луговой - Phl р 1, Phl р 5. Аллергены основных злаковых трав гомологичны. Это делает возможность эффективной АСИТ аллергеном одной тимофеевки при сенсибилизации к другим злаковым травам. Препарат пыльцы тимофеевки успешно применяется для лечения аллергии на любые злаки. Зарегистрированным таблетированным монопрепаратом тимофеевки для СЛИТ на территории Российской Федерации является лечебный аллерген Гразакс (ALK-Abello, Дания). Возможен к применению с возраста 5 лет [18, 19].

Препарат соответствует современным рекомендациям и руководствам по выпуску аллергенов, согласно которым возможно использовать один репрезентативный аллерген из гомологичной группы [20].

В отношении оценки данного препарата проведено много исследований. Согласно инструкции препарат применяется в терапии аллергического ринита и конъюнктивита у взрослых и детей (5 лет и старше), вызванной сенсибилизацией к пыльце трав с перекрестной сенсибилизацией к пыльце тимофеевки луговой (Phleum pratense).

Согласно данным исследований количество симптомов снижается на 30%, а объем базисной симптоматической терапии на 38%, при одновременном повышении нейтрализующих антител в сыворотке у пациентов. Клинический эффект начинается с первого сезона применения СЛИТ лиофилизатом пыльцы тимофеевки [21]. Клинический эффект к пятому году наблюдения за пациентами стабильно сохранялся по сравнению с плацебо. Кроме того, сохранялись повышенные уровни блокирующих специфических IgG 4 к тимофеевке [22]. Подобные результаты достигнуты и в детской популяции, при этом препарат демонстрировал высокую безопасность. Помимо этого, были получены данные по оценке вторичных точек эффективности: отмечалось достоверное снижение симптомов уже имеющейся астмы, объема получаемой терапии и улучшение параметров форсированного выдоха (ОФВ1 ). Не была достигнута первичная точка, заключавшаяся в доказательстве того, что АСИТ профилактирует время возникновения бронхиальной астмы. Возможно, это связано с дизайном исследования. В конечной точке исследования определялось количество дней до первых симптомов астмы, но группа пациентов включала детей разного возраста с различной характеристикой заболевания. В отношении симптомов ринита и астмы эффективность лечения в исследовании была доказана [23].

В то же время возможен и другой вариант, когда лечебный аллерген включает смесь злаков. Например, аллерген Оралейр (Stallergenes Greer, Франция) представляет собой таблетки из смеси трав в равных пропорциях - ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая. Возможен к применению с возраста 5 лет. Согласно инструкции схема проведения АСИТ препаратом Оралейр предусматривает применение высоких поддерживающих доз лечебного аллергена (300 ИР/сут), которая была определена в многоцентровом исследовании, где сравнивали эффективность и безопасность различных доз: 100, 300, 500 ИР/сут и плацебо. Клинический эффект от применения 100 ИР/сут не отличался от плацебо, дозы 300 и 500 ИР показали сходную эффективность, при увеличении побочных реакций в зависимости от увеличения дозы аллергена. Именно поэтому доза 300 ИР определена как наиболее эффективная и безопасная [26].

В долгосрочном исследовании на взрослой популяции после 3 лет предсезонно-сезонного лечения в течение двухлетнего периода последующего наблюдения продемонстрировано уменьшение количества симптомов DMS на 36% по сравнению с плацебо и объема получаемых медикаментов, при этом частота побочных эффектов значимо уменьшалась с каждым годом терапии [27].

Эффективность и безопасность препарата Оралейр продемонстрирована и в исследовании на детской популяции в виде изменения индекса назальных и глазных симптомов по шкале RTSS по сравнению с плацебо уже в первый сезон пыления трав. При сравнении с группой традиционного фармакологического лечения у пациентов было на 28% меньше симптомов [28, 29]. Частота развития всех побочных реакций была сопоставима с результатами исследований, проводимых у взрослых.

Несмотря на то что в исследования по оценке эффективности данных аллергенов Гразакс и Оралейр было включено большое количество пациентов, сравнительных исследований между данными препаратами нет, и нет данных, что какой-либо из препаратов имеет большую эффективность, несмотря на меньшее содержание аллергена в таблетке-лиофилизате.

В отношении эффективности аллергоида Лайс Грасс (Lofarma S.p.A., Италия) проведено мало исследований, и они включали небольшое количество пациентов, но в них также показано достоверное изменение шкалы симптомов (на 34%) и потребности в медикаментах (на 49%) при отсутствии серьезных побочных реакций [30].

5.9. Сенсибилизация к пыльце сорных трав

Сорные травы - это не ботаническое семейство, а обобщенное понятие. Сорные травы имеют в составе различные мажорные аллергены с неодинаковым химическим строением. Если гомология между белками небольшая или растение содержит множество неродственных белков, применение микстов из пыльцы сорных трав для АСИТ ведет к снижению эффективных концентраций аллергена. Распространенными сорными растениями на территории средней полосы Российской Федерации также является полынь обыкновенная, амброзия полыннолистная. Внешне растения полынь обыкновенная и амброзия полыннолистная очень похожи, однако мажорные аллергены у них разные. При сенсибилизации к пыльце сорных трав целесообразно выбирать лечебный аллерген в моновиде.

Мажорный аллерген полыни обыкновенной - Art v 1. Лечебный аллерген полыни обыкновенной в форме капель (Stallergenes Greer, Франция) в настоящее время находится на стадии регистрации.

Ключевым мажорным аллергеном амброзии с распространенностью IgE до 95% является Amb a 1. 90–95% людей с аллергией на амброзию проявляют реактивность IgE именно к этой молекуле. Amb a 11 был определен как второй мажорный аллерген с реактивностью IgE до 66%.

Основные представители сорных трав (рис. 5-12, 5-13).

image
Рис. 5-12. Амброзия полыннолистная
image
Рис. 5-13. Полынь обыкновенная

Для ПКИТ зарегистрированы водно-солевые моно- и микст-аллергены и аллергоиды отечественного производства АО НПО "Микроген", РФ. Зарегистрированным таблетированным лечебным аллергеном амброзии полыннолистной является препарат Рагвизакс 12 SQ-HDM (ALK-Abello, Дания) [31–34].

Клинические исследования эффективности аллергена Рагвизакс были проведены на европейской и американской популяции пациентов с симптомами аллергического ринита и бронхиальной астмы вследствие высокой распространенности этого растения в США. После терапии, начиная с первого сезона терапии, общая оценка симптомов в пиковое цветение достоверно снизилась по сравнению с плацебо. Иммунологическая эффективность проявлялась в нарастании блокирующих IgG4 к концу сезона цветения [35, 36]. Кроме того, препарат также испытывался в детской популяции у пациентов с проявлениями аллергии на амброзию в виде аллергического ринита и/или бронхиальной астмы, где также были продемонстрированы положительные результаты в отношении симптомов и приема базисных препаратов [37]. Возможен безопасный сочетанный прием препаратов аллергена амброзии с таблетками пыльцы тимофеевки этого же производителя, так как их эффективность и переносимость была изучена в клиническом исследовании. Сначала была инициирована терапия тимофеевкой 75 000 SQ ежедневно, через 2 нед добавлен аллерген амброзии 12 SQ-А утром, тимофеевка перенесена на вечер, и через еще 2 нед аллергены принимались утром последовательно с разницей в 5 мин. Все схемы терапии демонстрировали равноценную безопасность, реакций, потребовавших введения эпинефрина, не было зарегистрировано, все реакции были от легкой до средней степени тяжести [38].

5.10. Аллергены клещей домашней пыли

При аллергии к клещу домашней пыли эффективность АСИТ показана в уменьшении выраженности симптомов и снижении объема симптоматической терапии при аллергическом рините в сочетании с конъюнктивитом, при бронхиальной астме и при атопическом дерматите.

В России сенсибилизация к бытовым аллергенам выявляется у 15–45% больных, страдающих аллергическими заболеваниями. Сенсибилизация к бытовым аллергенам является одной из распространенных, наблюдается более чем у 50% пациентов с аллергическим ринитом и бронхиальной астмой, хотя в сравнении с другими видами сенсибилизации клинически является менее очевидной. Клещи домашней пыли имеют сходное строение и относятся к одному отряду. Географическая распространенность различных видов клещей различается в разных регионах мира. Сенсибилизация развивается к тем видам клещей, которые встречаются и максимально распространены на той территории, где проживает пациент. Основным источником аллергенов домашней пыли в РФ, США и ЕС являются клещи рода Dermatophagoides: D. pteronyssinus, D. farinae , для которых домашняя пыль является средой обитания. Acarus siro является амбарно-зерновым клещом, его встречаемость в домашней пыли в Российской Федерации варьирует в широких пределах от 1 до 14% в зависимости от образца и года проведения исследования [39]. В азиатских странах сенсибилизация развивается преимущественно к клещам рода Blomia . Для Dermatophagoides определено 39 аллергенов. Наибольшей значимостью у лиц с повышенной чувствительностью к аллергенам клещей домашней пыли обладают основные белки D. pteronyssinus Der p 1, Der p 2 и Der p 23, соответствующие им у D. farinae - Der f 1 и Der f 2. Тропомиозин (Der р 10) проявляется перекрестными реакциями с пищевой непереносимостью креветок, ракообразных, атопией к тараканам. Данный белок участвует в клинике, формируя перекрестные реакции, но не является определяющим в проведении АСИТ [40]. Частота сенсибилизации к этим белкам у лиц, имеющих сенсибилизацию к клещам домашней пыли, проживающих на территории России, варьирует от 70 до 100% в зависимости от региона проживания. АСИТ клещами домашней пыли является единственным видом иммунотерапии, входящим в рекомендации GINA 2021 [41].

Подтверждение сенсибилизации аллергоанамнезом часто бывает недостаточным, так как пациенты не замечают прямого воздействия бытовых аэроаллергенов при хороших жилищных условиях. Только у 1/3 пациентов удается собрать яркий аллергоанамнез с наличием в классических проявлениях симптомов при контакте с пылью во время уборки квартиры, при пребывании в старых деревянных домах. Наиболее часто атопия к клещу домашней пыли проявляется персистирующим течением заболевания без значимых сезонных обострений [42].

АСИТ клещами домашней пыли эффективна как при аллергическом рините, так и при бронхиальной астме [43–47]. Иммунотерапия аллергенами клеща домашней пыли - один из наиболее полезных инструментов в лечении респираторных аллергических заболеваний при наличии подтвержденных показаний [48]. Согласно современным рекомендациям, АСИТ, в том числе и клещами домашней пыли, должна проводиться не менее 3 лет подряд [49]. За годы лечения необходима этапная оценка эффективности по определенному графику. Считается, что эффект от СЛИТ клещом домашней пыли начинается через 6 мес от старта терапии. На этом временном отрезке возможна корректировка дозы, в случае недостаточного эффекта и если она допустима. В связи с небыстрым формированием терапевтического эффекта с аллергенами клеща домашней пыли к окончательной оценке эффективности приступают не ранее чем через 12 мес от начала лечения [48]. В одном из последних исследований было показано, что увеличение дозы у пациентов с недостаточным результатом через 6 мес терапии через год приводило к аналогичным результатам группы пациентов исходно, успешно ответивших на терапию, причем у детей отмечалась более быстрая динамика, по сравнению с взрослыми, хотя конечные точки не отличались у пациентов различного возраста [51]. Оценка эффективности АСИТ бывает затруднена тем, что многие пациенты на фоне ее применения продолжают получать базисную противовоспалительную терапию. Ни один из доступных лабораторных показателей не валидирован для оценки эффективности АСИТ [50].

Несмотря на то что в настоящее время не существует общепринятых биомаркеров, прогнозирующих клиническую эффективность АСИТ, было показано, что уровень специфических IgG4 к клещам пыли нарастает в течение 4 мес после старта иммунотерапии и, в большинстве случаев, коррелирует с динамическим улучшением симптомов [52].

АСИТ клещами домашней пыли, согласно данным кохрейновского метаанализа, демонстрирует высокую безопасность. Нежелательные реакции при проведении АСИТ аллергеном клеща домашней пыли, как правило, имеют нетяжелый локальный характер, встречаются в 3 раза реже, чем при терапии пыльцевыми аллергенами [44].

Обсуждается возможность проведения АСИТ аллергенами клещей Dermatophagoides при другой клещевой сенсибилизации в связи с тем, что нет доступных лечебных аллергенов, кроме D. farina и D. pteronyssinus . Экспертами рассматривается вариант пробной АСИТ клещами Dermatophagoides при сенсибилизации к клещам других родов (Blomia , Acarus siro ) длительностью 6 мес, по завершении которых необходимо принять решение о целесообразности продолжения полного курса лечения. Возможность такой замены связана с ко-сенсибилизацией между клещами Dermatophagoides и Blomia [53, 54].

В настоящее время имеется недостаточное количество работ, изучающих долговременные эффекты АСИТ, большинство из них не имеют долговременного периода наблюдения.

Зарегистрированными препаратами для ПКИТ в Российской Федерации являются водно-солевые аллергены: аллерген из клеща Dermatophagoides pteronyssinu s для диагностики и лечения ("Биомед", РФ) и аллерген из домашней пыли для диагностики и лечения ("Биомед", РФ) и аллергоид из домашней пыли для лечения ("Микроген", РФ). Аллергены домашней пыли и клещей домашней пыли не являются взаимозаменяемыми, так как реакция на пыль может быть вызвана примесями различных белков. Следует отметить, что предпочтение в отношении лечения аллергии к бытовым аллергенам следует отдавать именно лечению клещом домашней пыли, поскольку домашняя пыль - это неоднородный субстрат и препараты аллергенов домашней пыли имеют нестабильный состав. Следует использовать лечебные препараты аллергенов клещей домашней пыли определенного рода при любой возможности.

К пролонгированной форме лечебных аллергенов относится препарат Алюсталь "Аллерген клещей" , производителем которого является Stallergenes Greer (Франция), адсорбированный на суспензии алюминия гидроксида, и представляет собой ультрафильтрованный экстракт аллергена из клещей Dermatophagoides pteronyssinus, Dermatophagoides farinae в равных пропорциях. В настоящее время (на момент написания руководства) в Российскую Федерацию не завозится.

В Российской Федерации зарегистрированными лечебными аллергенами для СЛИТ являются: Сталораль "Аллерген клещей" (Stallergenes Greer, Франция) в форме капель подъязычных из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus , D. farina ), с аллергенной активностью 10 и 300 ИР; аллерген Акаризакс (ALK-Abello, Дания) в форме лиофилизированных таблеток подьязычных из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 12 SQ-HDM и мономерный аллергоид Лайс Дерматофагоидес (Lofarma S.p.A., Италия) в форме таблеток подъязычных из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 300 и 1000 АЕ. В отношении данных лечебных аллергенов проведено достаточно исследований, в которых продемонстрированы их эффективность и безопасность, как во взрослой, так и в детской популяции.

В крупном многоцентровом исследовании аллергена клеща домашней пыли Сталораль "Аллерген клещей" (Stallergenes Greer, Франция), в котором оценивались контроль симптомов бронхиальной астмы, дозы ингаляционных ГК (ИГК), данные опросников ACQ и AQLQ, размер кожных проб и sIgE, подтверждены как эффективность, так и безопасность терапии данным видом аллергена [55].

В регистрационном исследовании лиофилизированных таблеток клеща домашней пыли (ALK-Abello, Дания) на пациентах 12 лет и старше с симптомами респираторной аллергии (аллергический ринит и бронхиальная астма) и с сенсибилизацией к клещу домашней пыли, авторы, сравнивая различные дозы аллергена, пришли к выводу о большей эффективности высоких доз [56]. В двойном слепом многоцентровом исследовании, проведенном на когорте подростков и взрослых с аллергическим ринитом и астмой, СЛИТ данным препаратом привела к улучшению симптомов ринита и астмы, при этом более убедительные результаты получены в эксперименте, при котором пациент получал провокацию клещами пыли в экспозиционной герметичной камере. В исследовании были использованы две дозировки. Уменьшение симптомов по комбинированной шкале TNSS составило 48,6% для дозы 12 DU и 26,6% для дозы 6 DU, что доказывает высокий эффект проводимой терапии, но большую эффективность при применении более высокой дозы [57]. Серьезных нежелательных явлений в процессе АСИТ зарегистрировано не было. Препарат Акаризакс (ALK-Abello, Дания) содержит равное количество аллергенов Der p 1 и Der f 1 и стандартизуются по 4 мажорным аллергенам [58].

В отношении карбамилированных таблетированных аллергоидов клеща домашней пыли (рис. 5-14) Лайс Дерматофагоидес (Lofarma S.p.A., Италия) данных по изучению эффективности и безопасности немного, так как производитель не проводил мультицентровые исследования [59].

image
Рис. 5-14. Клещ домашней пыли

5.11. Характеристика наиболее распространенных методов аллерген-специфической иммунотерапии

Сублингвальная иммунотерапия

За последние годы для проведения АСИТ стали чаще применяться сублингвальные аллергены, выпускаемые в виде растворов и дозируемые каплями или таблеток. Стандартизация сублингвальных аллергенов производится в тех же единицах, что и лечебных аллергенов для подкожного введения, но дозы вводимых сублингвальных аллергенов во много раз выше, чем при подкожном введении. Препараты аллергенов для сублингвального приема в Российской Федерации представлены тремя производителями аллергенов: ALK-Abello (Дания), Stallergenes Greer (Франция), Lofarma S.p.A. (Италия). Stallergenes Greer (Франция) поставляет на отечественный фармакологический рынок аллерген в виде двух форм: раствора для подъязычного приема и таблеток с аллергеном, адсорбированным на микрокристаллической целлюлозе. Lofarma S.p.A. (Италия) поставляет аллерген в виде таблеток с аллергоидом, адсорбированным на микрокристаллической целлюлозе. ALK-Abellо (Дания) поставляет лечебный аллерген для сублингвального приема в виде лиофилизированных быстрорастворимых таблеток.

Общий принцип действия любой из этих форм заключается в том, что аллерген удерживается под языком в течение 1–2 мин и затем проглатывается или выплевывается, при этом аллерген высвобождается в ротовой полости, затем активно проникает через слизистую [60]. Максимальная интенсивность поглощения аллергена наблюдается в течение первых 2–3 мин, в первую минуту поглощение аллергена незначительное, поэтому этого времени недостаточно, удержание аллергена в течение 2–3 мин в полости рта - необходимое условие эффективной СЛИТ. Это обусловлено физиологией орального иммунного ответа и актуально как для аллергенов в форме капель, так и для таблетированных аллергенов любых производителей. Каждая форма (капли, таблетки лиофилизат, таблетки аллергена или аллергоида адсорбированные) имеет определенные преимущества и недостатки. Преимуществом формы доставки в виде капель является то, что капли можно гибко дозировать и изменять дозу индивидуально, в зависимости от переносимости. Недостатком является то, что данная форма требует определенных условий хранения (аллерген надлежит хранить в холодильнике при температуре от 2 до 8 °C). При приеме капель возможны: вероятность ошибок, пропуск доз, самостоятельное изменение разовой дозы пациентом, что приводит к более низкому комплайенсу. В отличие от капель таблетированные формы более универсальны. Таблетированные формы не требуют специальных условий хранения. Недостатком является то, что при приеме таблеток невозможно индивидуальное дозирование, они неделимы. Производители Stallergenes Greer (Франция), Lofarma S.p.A. (Италия) выпускают таблетированные формы, применение которых начинается с этапа набора дозы, так как имеются таблетки со сниженной концентрацией аллергена, что обеспечивает более комфортное начало терапии, и вероятность развития нежелательных реакций при этом более низкая. Производитель ALK-Abello (Дания) выпускает формы таблеток со сниженной концентрацией аллергена, соответственно, нет этапа набора дозы. Данный недостаток может способствовать более высокому риску нежелательных реакций в начале терапии у высоко сенсибилизированных пациентов. В то же время этот же производитель выпускает таблетки в виде лиофилизатов, преимущество которых перед обычными таблетками заключено в более быстром высвобождении аллергена. Лиофилизаты растворяются в ротовой полости практически мгновенно, что позволяет уменьшать дозу аллергена в препарате и тем самым повышать безопасность [61].

Длительное время эффективность сублингвальной иммунотерапии была спорной и не получила широкого распространения. С появлением большего разнообразия лечебных аллергенов для СЛИТ эта методика стала использоваться наиболее часто. Появление СЛИТ позволило минимизировать негативное психологическое воздействие инъекций, что особенно важно в педиатрической практике. СЛИТ при лечении детей в последние годы становится наиболее приоритетной методикой, поскольку имеет определенные преимущества. Прием препарата осуществляется самостоятельно, контакт с врачом происходит в рабочем порядке или по необходимости, не требуется дополнительного посещения лечебного учреждения. Достоинствами СЛИТ являются хорошая переносимость больными лечебных доз препаратов, возможность достижения очень высоких курсовых доз аллергена, высокий профиль безопасности, низкая степень риска развития анафилактических реакций, отсутствие риска заражения опасными для жизни инфекциями, существующего при инъекционном введении препаратов. В то же время наблюдается бóльшая комплаентность пациентов: нет необходимости частых визитов к врачу, нет страха и сопротивления лечению, особенно детей младшего возраста. Сублингвальная АСИТ проводится по протоколу в соответствии с инструкцией к лечебному препарату. При СЛИТ первый прием препарата осуществляется в присутствии лечащего врача, далее пациент по определенной схеме самостоятельно принимает аллерген с контрольными визитами к лечащему врачу. Кратность назначения препарата корректируется в соответствии со степенью переносимости и состоянием здоровья пациента [62].

Метод СЛИТ обретает все бóльшую популярность, поскольку характеризуется значительными преимуществами.

Преимущества СЛИТ:

  • локальный метод АСИТ;

  • безопасен как для взрослых, так и для детей;

  • после назначения врачом пациенты могут принимать препарат самостоятельно, не посещая клиники (что отличает СЛИТ от инъекционной иммунотерапии);

  • Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) признала СЛИТ как альтернативу ПКИТ. Эффективность СЛИТ сопоставима с подкожной АСИТ;

  • хорошая переносимость лечебных доз препаратов;

  • возможность достижения очень высоких курсовых доз аллергена;

  • низкая степень риска развития анафилактических реакций;

  • отсутствие риска переноса опасных для жизни инфекций, существующая при инъекционном введении препаратов;

  • экономия времени врача и пациента;

  • высокая приверженность лечению со стороны пациентов.

Для ряда пациентов такой метод лечения неприемлем в силу отсутствия личной готовности к самостоятельному приему препарата, боязни развития тяжелых реакций. У молодых людей и подростков уровень личной мотивации к лечению снижен, что может влиять на уровень приверженности лечению. В такой ситуации требуется внимательное отношение родственников и своевременное напоминание о приеме препарата. По этой причине некоторые пациенты отказываются от приема СЛИТ в пользу ПКИТ, несмотря на очевидную экономию личного времени и отсутствие потребности в дополнительном посещении лечебного учреждения и консультации врача.

Недостатки СЛИТ:

  • большая ответственность пациента;

  • низкая приверженность у некоторых лиц.

Таким образом, развитие фармацевтической промышленности и создание новых аллерговакцин для проведения сублингвальной АСИТ расширяет возможности этого высокоэффективного метода терапии аллергических заболеваний. Появление сублингвальных лечебных аллергенов открыло новую эру применения АСИТ, которая характеризуется высоким профилем безопасности, сопоставимой с инъекционной АСИТ эффективностью и большей приверженностью к лечению. СЛИТ является более современным методом лечения, при этом требует бóльшей ответственности от пациента.

Подкожная иммунотерапия

ПКИТ является традиционным методом (рис. 5-15), широко используемым аллергологами во всем мире. Именно парентеральное введение аллергена многие годы выступает как основная и хорошо зарекомендовавшая себя методика АСИТ и в нашей стране. ПКИТ подтвердила свою высокую эффективность при различных аллергических заболеваниях, хотя она ассоциирована с некоторыми нежелательными явлениями и организационными неудобствами (необходимость парентерального введения аллергена и выполнения процедуры в аллергологическом кабинете) [63]. ПКИТ проводится врачом-аллергологом в условиях специализированного кабинета. При проведении парентерального метода пациент получает подкожные инъекции аллергена в возрастающих дозах в нижнюю треть плеча. Считается, что ПКИТ менее финансово затратная, чем СЛИТ, в связи с тем, что обычно дозы и количество препарата на курс лечения гораздо меньшие, препараты обладают меньшей стоимостью, однако непрямые расходы на консультативную помощь, транспорт, потеря времени из-за необходимости визитов в клинику вносят коррективы в окончательную стоимость терапии.

image
Рис. 5-15. Метод подкожной иммунотерапии

Существуют классические (длительные) и ускоренные (доступны только для водно-солевых экстрактов в условиях аллергологического стационара) схемы лечения. Лечение проводится в два этапа: наращивание дозы до максимально переносимой и поддерживающий курс.

Инъекционные препараты на данном этапе представлены водно-солевыми аллергенами, аллергоидами, аллергенами, депонированными на носителе (кальция фосфат, алюминия гидроксид и L-тирозин).

Водно-солевые экстракты были первыми лечебными аллергенами, получившими широкое распространение. Использование водно-солевых экстрактов признано во всем мире, препараты для ПКИТ высокоэффективны, но обладают повышенным количеством побочных эффектов. Многолетней практикой в нашей стране доказано, что АСИТ водно-солевыми экстрактами аллергенов отечественного производства является эффективным методом лечения различных аллергических заболеваний, как ринита, так бронхиальной астмы с бытовой и пыльцевой сенсибилизацией.

При создании аллергоида проводится модификация экстракта аллергена формальдегидом или глутаровым альдегидом. Использование аллергоидов должно увеличить безопасность АСИТ при сохранении высокой эффективности. В России аллергоиды производятся компанией НПО "Микроген". Депонированные лечебные аллергены являются усовершенствованными формами. Депонирование на носителе обусловливает более медленное высвобождение аллергена из места инъекции, что может повышать безопасность при их введении. Тем не менее следует помнить, что анафилактические реакции при применении таких форм аллергенов все же возможны. Депонированными аллергенами для ПКИТ в России зарегистрированы препараты производства компании Stallergenes (Франция), которые, к сожалению, временно не завозятся на территорию Российской Федерации и не доступны для покупки и использования. Лечебный аллерген Фосталь адсорбирован на суспензии кальция фосфата. Препарат содержит ультрафильтрованный экстракт смеси пыльцы деревьев (ольха, береза, граб, орешник обыкновенный). Лечебный аллерген Алюсталь "Аллерген луговых трав" адсорбирован на суспензии алюминия гидрооксида - ультрафильтрованный экстракт аллергена пыльцы луговых трав (ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая).

В случае пыльцевой сенсибилизации ПКИТ должна начинаться заблаговременно за несколько месяцев до начала сезона пыления причинно-значимых аллергенов. Водно-солевые аллергены применяются по предсезонной схеме - их введение должно закончиться до начала сезона паллинации не менее чем за 2 нед.

Этап набора дозы есть у всех инъекционных форм аллергенов, продолжается он несколько месяцев. У аллергоидов этап набора короче за счет их сниженной реактогенности. После завершения этапа набора дозы наступает этап поддерживающих доз, который в случае пыльцевой сенсибилизации продолжается до начала цветения причинно-значимых пыльцевых аллергенов. Сезонный протокол подразумевает ежегодный этап набора доз, что определенно можно расценить как недостаток, поскольку это уменьшает суммарную ежегодную дозу полученного аллергена. Кроме того, увеличивается частота посещений пациентом лечебного учреждения, снижая его приверженность к лечению. Введение поддерживающих доз в сезон пыления причинно-значимых растений возможно, если пациент находится в клинической ремиссии; аллерген не вводится в период максимальных (пиковых) концентраций причинно-значимых аллергенов, поддерживающая доза аллергена уменьшена в 2 раза. Наличие латентной сенсибилизации к другим видам аллергенов (пыльце злаковых или сорных трав) не имеет значения при продолжении лечения. При развитии клинических проявлений АР, конъюнктивита, БА, связанных с началом сезона пыления причинно-значимых растений, ПКИТ должна быть прекращена. Возобновление ПКИТ в этом случае будет зависеть от временного промежутка, потребовавшегося для купирования обострения.

После завершения этапа набора дозы в случае бытовой сенсибилизации (аллергены клещей домашней пыли) наступает круглогодичный этап введения поддерживающих доз не менее 3 лет.

При использовании депонированных пролонгированных форм аллергенов (для которых это предусмотрено инструкцией) после достижения максимальной переносимой дозы возможен переход на введение поддерживающих доз 1 раз в 4–6 нед для второго и третьего года лечения. Преимуществом депонированных форм является возможность их использования по круглогодичной схеме независимо от вида аллергена, со снижением дозы во время поллинации причинно-значимых пыльцевых аллергенов и более редкое введение на этапе поддерживающих доз, что упрощает проведение АСИТ как для пациента, так и для врача.

5.12. Классический парентеральный (подкожный) метод отечественными водно-солевыми экстрактами аллергенов

Лечебную смесь аллергенов для иммунотерапии готовят с учетом выраженности выявляемой к ним чувствительности, выбирая при этом главные, клинически значимые аллергены.

Не рекомендуется смешивать неродственные аллергены, поскольку они обладают взаимно подавляющей активностью (пыльцевые аллергены теряют свою активность при смешивании с аллергенами клещей домашней пыли). Начальную дозу лечебных аллергенов подбирают путем аллергометрического титрования с использованием прик-теста или внутрикожного теста с последующим началом АСИТ с разведения аллергенов, вызвавших сомнительную или слабоположительную реакцию. Этап наращивания дозы проводят в условиях стационара, и этап поддерживающей терапии - амбулаторно. Чаще всего АСИТ начинают с введения аллергенов в разведении 1:1 000 000 (10–6 ). Ориентировочной начальной дозой является 0,1 мл в разведении 1:1 000 000. При данном способе АСИТ осуществляют постепенное наращивание дозы вводимого аллергена до достижения максимальной терапевтической дозы и в последующем проводят поддерживающую терапию. На этапе достижения максимальной терапевтической дозы первые инъекции делают ежедневно или через день, последующие - с интервалами 7–10 дней. На этапе достижения максимальной терапевтической дозы лечебные аллергены в концентрации с 10–6 (0,01 PNU в 1 мл) по 10–4 (1 PNU в 1 мл) вводят ежедневно или через день, затем с интервалом 7–10 дней до достижения поддерживающей дозы, которую вводят с интервалом 14 дней. В случае пыльцевой сенсибилизации максимально достигнутую дозу повторяют до начала сезона цветения растений (этап поддерживающей терапии). Лечение заканчивают за 2 нед до начала пыления растений, к пыльце которых имеется повышенная чувствительность. В случае сенсибилизации к бытовым аллергенам лечение продолжают согласно круглогодичному протоколу введения, максимально достигнутую поддерживающую дозу вводят не менее 3 лет.

В табл. 5-1 приведена примерная классическая схема АСИТ водно-солевыми неинфекционными аллергенами. Схема условна, дозы и кратность введения могут меняться в зависимости от чувствительности пациента, однако требуется определенный практический опыт для таких вариаций.

Таблица 5-1. Примерная классическая схема аллерген-специфической иммунотерапии водно-солевыми аллергенами
Разведение аллергена PNU, мл Доза вводимого аллергена

1:1 000 000 (10–6 )

0,01

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1:100 000 (10–5 )

0,1

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1:10 000 (10–4 )

1,0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1:1000 (10–3 )

10,0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1:100 (10–2 )

100,0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1:10 (10–1 )

1000,0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

Примечание : PNU - единицы белкового азота.

5.13. Ускоренный парентеральный метод отечественными водно-солевыми экстрактами аллергенов

Ускоренная схема проведения АСИТ разработана Ю.А. Порошиной и соавторами в 1988 г. [64]. В табл. 5-2 приведена ускоренная схема АСИТ водно-солевыми экстрактами аллергенов. Ускоренные схемы АСИТ используют в случаях, когда возникает необходимость в сокращении сроков лечения и в ускорении достижения поддерживающей дозы лечебных аллергенов для продолжения лечения. При проведении ПКИТ по ускоренной схеме аллергены вводят от 2 до 3 раз в сутки с интервалом 2 ч, лечение проводят в аллергологическом отделении. Данная схема лечения требует высокой квалификации специалиста, в связи с более высоким риском развития анафилактических реакций. Ориентировочная начальная доза аллергена - 10–6 0,2 мл, конечная доза аллергена - 10–1 1,0 мл. С учетом индивидуальной переносимости лечения кратность инъекций может быть сокращена до 1 в сутки или 1 через день (по усмотрению лечащего врача). После выписки из стационара максимально достигнутую дозу (0,5–1,0 мл в разведении 1:10) повторяют с интервалами 1 раз в 14 дней (этап поддерживающей терапии). Лечение заканчивают за 1–2 нед до начала пыления растений, к пыльце которых имеется повышенная чувствительность. В случае бытовой сенсибилизации введение аллергенов проводится в соответствии с круглогодичным протоколом.

Таблица 5-2. Ускоренная схема аллерген-специфической иммунотерапии водно-солевыми экстрактами аллергенов
Дни № инъекции Разведение аллергена Доза, мл PNU в дозе

1

1

2

3

1:1 000 000

0,2

0,4

0,8

0,002

0,004

0,008

2

4

5

6

1:100 000

0,2

0,4

0,8

0,02

0,04

0,08

3

7

8

9

1:10 000

0,2

0,4

0,8

0,2

0,4

0,8

4

10

11

12

1:1000

0,2

0,4

0,8

2

4

8

5

13

14

15

1:100

0,2

0,3

0,4

20

30

40

6

16

17

18

1:100

0,5

0,6

0,7

50

60

70

7

19

20

21

1:100

1:10

0,8

0,9

0,1

80

90

100

8

22

23

24

1:10

0,2

0,3

0,4

200

300

400

9

25

26

27

1:10

0,5

0,6

0,7

500

600

700

10

28

29

30

1:10

0,8

0,9

1,0

800

900

1000

Примечание : PNU - единицы белкового азота.

Водно-солевые аллергены характеризуются определенными недостатками. Помимо вариабельности иммунобиологической активности их серьезным недостатком является необходимость ручного разведения перед курсом иммунотерапии и титрование дозы в зависимости от индивидуальной чувствительности пациента. Несоответствие международным требованиям к аллергенам, а также значительное число инъекций (около 40–50) на курс все больше ограничивают их использование. В табл. 5-3 приведена схема АСИТ отечественными аллергоидами (применимо к аллергоидам из пыльцы деревьев, злаковых трав, полыни, домашней пыли). Первые подкожные инъекции аллергоидов проводятся ежедневно или через день. При введении аллергоидов в разведении 1:100 интервал между инъекциями увеличивается и составляет 3 дня. Цельный аллергоид может вводиться с интервалом 7 дней.

Таблица 5-3. Схема аллерген-специфической иммунотерапии аллергоидами
№ инъекции Разведение аллергена Доза, мл PNU в дозе

1

2

3

1:10 000

0,1

0,3

0,7

0,1

0,3

0,7

4

5

6

1:1000

0,1

0,3

0,7

1

3

7

7

8

9

10

1:100

0,1

0,3

0,5

0,7

10

30

50

70

11

12

13

14

15

1:10

0,1

0,3

0,5

0,7

0,9

100

300

500

700

900

16

17

18

19

20

21

22

23

24

25

Цельный

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1,0

1000

2000

3000

4000

5000

6000

7000

8000

9000

10 000

Примечание : PNU - единицы белкового азота.

5.14. Адъювантные аллерговакцины

В настоящее время для АСИТ все большую популярность приобретают адъювантные (депонированные) аллерговакцины. Депонирование позволяет снизить риск развития побочных реакций, обеспечить постепенное освобождение аллергена из места введения и снизить количество инъекций на курс лечения. К пролонгированным формам лечебных аллергенов относится препарат Алюсталь "Аллерген луговых трав" , Фосталь "Аллерген пыльцы деревьев" , Алюсталь "Аллерген клещей" , производителем которых является Stallergenes Greer (Франция), адсорбированные либо на суспензии кальция фосфата, либо алюминия гидроксида. В настоящее время (на момент написания руководства) в Российскую Федерацию не завозятся, но являются зарегистрированными лечебными аллергенами. В табл. 5-4 представлены основные характеристики адъювантных аллерговакцин и водно-солевых аллергенов.

Таблица 5-4. Характеристика адъювантных аллерговакцин и водно-солевых аллергенов
Характеристика Адъювантные аллергены: Алюсталь "Аллерген луговых трав" , Фосталь "Аллерген пыльцы деревьев" , Алюсталь "Аллерген клещей" (Stallergenes Greer, Франция) Водно-солевые аллергены: "Биомед" (РФ), АО НПО "Микроген" (РФ)

Стандартизация, разведение

Набор аллергенов готов к применению.

Стандартизирован, имеется постоянство при переходе от одного флакона к другому.

Уменьшенное количество инъекций

Необходимость титрования.

Вероятность возникновения ошибки при разведении.

Не стандартизирован, колебания активности препарата

Контроль иммунологической активности

Присутствует.

Дозирование мажорных аллергенов. Известная и неизменная иммунологическая и биохимическая активность

Отсутствует.

PNU не связаны с иммунологической и биохимической активностью

Контроль распространения аллергена в организме

Наличие адъюванта приводит к постепенному высвобождению и диффузии аллергена, повышает безопасность и возможность применения высоких доз лечебного аллергена

Немедленное полное высвобождение аллергена сопряжено с риском возникновения побочных реакций и анафилактического шока

Использование в период цветения

Возможно снижение дозы на 1/2, рекомендуется EAACI

Не используются

Рекомендации ВОЗ, ARIA

Рекомендуется использование депонированных аллергенов для ПКИТ

Не рекомендуются

Следует подчеркнуть, что вышеописанные схемы ПКИТ являются примерными. С учетом данных обследования и наблюдения за пациентом аллерголог может изменить схему АСИТ: либо уменьшить дозу аллергена при очередной инъекции, либо сохранить ее прежней - при очередной инъекции в случае появления предвестников аллергической симптоматики, при возникших инфекциях, при удлинении интервалов между инъекциями, при предшествовавшей аллергенной экспозиции, при системных реакциях на предшествовавшие инъекции и т.д.

В целом ПКИТ имеет определенные недостатки, так как лечение проводится в условиях аллергологического кабинета или стационара, что ограничивает возможности перемещения пациента и требует врачебного контроля в течение 30 мин после каждой инъекции. При проведении ПКИТ от врача-аллерголога требуются высокая квалификация и опыт, поскольку она сопряжена с более высоким риском нежелательных явлений. Именно в специализированном аллергологическом подразделении предусмотрено наличие необходимых средств не только для проведения АСИТ, но и для купирования побочных реакций, если они возникают. Парентеральная методика лечения требует обязательного тщательного осмотра пациента перед каждой инъекцией, наблюдения за пациентом в течение определенного времени после инъекции, с последующим контрольным осмотром. Именно поэтому при правильном проведении парентеральной иммунотерапии - это эффективный и безопасный метод, однако при недостаточной квалификации врача, неграмотном ведении больного или при нарушении методики возможны серьезные осложнения. Подкожный метод АСИТ требует регулярного посещения врача, проведения специальных медицинских манипуляций, нахождения в отделении после введения инъекции. Так формируется более тесный контакт с врачом и снижение у пациента уровня личной ответственности за прием препарата, что обеспечивает психологический комфорт пациента. Для некоторых пациентов этот момент является очень важным и способствует повышению уровня приверженности к терапии. Другие парентеральные методы АСИТ, такие как внутрикожный, внутрилимфатический, в широкой практике не применяются, хотя имеются сообщения о высокой их безопасности, что связано с невозможностью попадания аллергена непосредственно в кровоток [65].

В целом можно выделить как преимущества, так и недостатки ПКИТ.

Преимущества ПКИТ:

  • постоянное наблюдение врачом;

  • отсутствие необходимости запоминать схему терапии;

  • отсутствие необходимости ежедневно (несколько раз в неделю) принимать препараты;

  • возможность проводить лечение вне зависимости от наличия персистирующих заболеваний полости рта.

Недостатки ПКИТ:

  • высокий риск развития системных побочных эффектов;

  • процедура инъекций;

  • временные затраты;

  • стоимость;

  • ограниченное число больных;

  • длительность курса.

При сопоставимой эффективности и экономической целесообразности ПКИТ и СЛИТ выбор лечебного метода должен основываться на:

  • наличии/отсутствии дополнительных противопоказаний к проведению ПКИТ и СЛИТ;

  • индивидуальных характерологических особенностях пациента с учетом приверженности к терапии;

  • возможности соблюдения протокола;

  • наличии/отсутствии и выраженности побочных реакций в ходе проведения лечения.

В табл. 5-5 представлена стратегия выбора метода проведения аллерген-специфической иммунотерапии - ПКИТ или СЛИТ.

Таблица 5-5. Выбор стратегии терапии - сублингвальная иммунотерапия или подкожная иммунотерапия?
СЛИТ ПКИТ

Дисциплинированным и самостоятельно выполняющим предписания врача пациентам

Пациентам, которым необходим тесный и регулярный контакт с врачом

Пациентам с непереносимостью подкожной АСИТ

Пациентам, не желающим ежедневно (несколько раз в неделю) принимать препараты

Детям, из-за страха уколов

Пациентам, имеющим противопоказания к сублингвальной АСИТ (персистирующие заболевания полости рта)

Пациентам, не имеющим возможности регулярно посещать врача для инъекций

Примечание : СЛИТ - сублингвальная иммунотерапия; ПКИТ - подкожная иммунотерапия; АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

5.15. Основные лечебные аллергены для сублингвальной иммунотерапии и подкожной иммунотерапии, зарегистрированные в Российской Федерации

В соответствии с законодательством Российской Федерации применение препаратов, не зарегистрированных в нормативных документах Министерства здравоохранения Российской Федерации, запрещено. К настоящему времени на территории Российской Федерации в Государственном реестре лекарственных средств зарегистрированы следующие лечебные аллергены (табл. 5-6, 5-7). Некоторые лечебные аллергены являются зарегистрированными, но временно не завозятся.

Таблица 5-6. Препараты для сублингвальной иммунотерапии, зарегистрированные в Российской Федерации (https://grls.rosminzdrav.ru/)
Препараты Описание

Бытовые аллергены (клещи домашней пыли)

Сталораль "Аллерген клещей" (Stallergenes Greer, Франция)

Капли подъязычные из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 10 и 300 ИР

Акаризакс (ALK-Abello, Дания)

Таблетки-лиофилизат подъязычные из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 12 SQ-HDM

Лайс Дерматофагоидес (Lofarma S.p.A., Италия)

Таблетки подъязычные из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 300 и 1000 АЕ, мономерный аллергоид

Пыльцевые аллергены (береза)

Сталораль "Аллерген пыльцы березы" (Stallergenes Greer, Франция)

Капли подъязычные из пыльцы березы, с аллергенной активностью 10 и 300 ИР

Итулазакс (ALK-Abello, Дания)

Таблетки-лиофилизат подъязычные из пыльцы березы, с аллергенной активностью 12 SQ-HDM

Пыльцевые аллергены [злаковые (луговые) травы]

Гразакс (ALK-Abello, Дания)

Таблетки-лиофилизат подъязычные из пыльцы тимофеевки, с аллергенной активностью 12 SQ-HDM

Лайс Грасс (Lofarma S.p.A., Италия)

Таблетки подъязычные из смеси трав в равных пропорциях (бухарник шерстистый, тимофеевка луговая, мятлик луговой), с аллергенной активностью 300 и 1000 АЕ, мономерный аллергоид

Оралейр (Stallergenes Greer, Франция)

Таблетки подъязычные из смеси трав в равных пропорциях (ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая), с аллергенной активностью 10 и 300 ИР

Пыльцевые аллергены (сорные травы)

Рагвизакс (ALK-Abello, Дания)

Таблетки-лиофилизат подъязычные из пыльцы амброзии, с аллергенной активностью 12 SQ-HDM

Примечание : ИР - индекс реактивности.

Таблица 5-7. Препараты для подкожной иммунотерапии, зарегистрированные в Российской Федерации (https://grls.rosminzdrav.ru/)
Препараты Описание

Бытовые аллергены (клещи домашней пыли)

Алюсталь "Аллерген клещей" (Stallergenes Greer, Франция)

Суспензия для подкожного введения из смеси клещей домашней пыли в равных пропорциях (D. pteronyssinus, D. farina ), с аллергенной активностью 0,01; 0,1; 1; 10 ИР/мл

Аллергоид из домашней пыли для лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт домашней пыли в виде раствора для подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Аллерген из клеща Dermatophagoides pteronyssinus для диагностики и лечения ("Биомед", РФ)

Водно-солевой экстракт клеща домашней пыли в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения из клеща домашней пыли (D. pteronyssinus ) с аллергенной активностью (5000±2000)/мл, PNU

Аллерген из домашней пыли для диагностики и лечения ("Биомед", РФ)

Водно-солевой раствор для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения из клеща домашней пыли (D. pteronyssinus ) с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Пыльцевые аллергены (береза и семейство букоцветные)

Фосталь "Аллерген пыльцы деревьев" (Stallergenes Greer, Франция)

Суспензия для подкожного введения из смеси пыльцы деревьев в равных пропорциях (ольха, береза, граб орешник), с аллергенной активностью 0,01; 0,1; 1; 10 ИР/мл

Аллерген из пыльцы березы висячей для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы березы висячей в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы дуба черешчатого для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы дуба черешчатого в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы орешника (лещины обыкновенной) для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы лещины обыкновенной в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы клена ясенелистного для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы клена ясенелистного в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы ольхи клейкой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы ольхи клейкой в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы ясеня обыкновенного для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы ясеня обыкновенного в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Микст-аллерген из пыльцы деревьев для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы деревьев для диагностики и лечения [береза висячая, дуб черешчатый, клен ясенелистный, орешник (лещина обыкновенная), ясень обыкновенный, ольха клейкая] в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Микст-аллергоид пыльцевой ольхи, березы, лещины для лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы деревьев для лечения [ольха клейкая, береза висячая, орешник (лещина обыкновенная)] в виде раствора подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Пыльцевые аллергены [злаковые (луговые) травы]

Алюсталь "Аллерген пыльцы луговых трав" (Stallergenes Greer, Франция)

Суспензия для подкожного введения из смеси пыльцы трав в равных пропорциях (ежа сборная, колосок душистый обыкновенный, плевел многолетний, мятлик луговой, тимофеевка луговая), с аллергенной активностью 0,01 ИР/мл, 0,1 ИР/мл, 1 ИР/мл, 10 ИР/мл

Аллерген из пыльцы тимофеевки луговой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы тимофеевки луговой в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы полевицы белой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы полевицы белой в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы костра прямого для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы костра прямого в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы мятлика лугового для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы мятлика лугового в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы кукурузы обыкновенной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы кукурузы обыкновенной в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы ежи сборной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-волевой экстракт пыльцы ежы сборной в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы ржи посевной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы ржи посевной в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы райграса пастбищного для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы райграсса пастбищного в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы овсяницы луговой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы овсяницы луговой в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы лисохвоста лугового для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы лисохвоста лугового в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы пырея ползучего для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы пырея ползучего в виде раствора для кожных проб, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы тимофеевки луговой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы тимофеевки луговой для лечения в виде раствора подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы ежи сборной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы ежи сборной для лечения в виде раствора подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы овсяницы луговой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы овсяницы луговой для лечения в виде раствора подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Микст-аллергоид пыльцевой ежи, овсяницы и тимофеевки для лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы ежы сборной, овсяницы луговой, тимофеевки луговой в виде раствора подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Пыльцевые аллергены (сорные травы)

Аллерген из пыльцы амброзии полыннолистной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы амброзии полыннолистной в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы полыни горькой для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы амброзии полыннолистной в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы одуванчика лекарственного для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы одуванчика лекарственного в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы циклахены дурнишниколистной для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы циклахены дурнишниколистной в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы лебеды татарской для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы лебеды татарской в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллерген из пыльцы подсолнечника однолетнего для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы подсолнечника однолетнего в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Микст-аллерген из пыльцы сорных трав и подсолнечника для диагностики и лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы сорных трав (амброзии полыннолистной, лебеды татарской, полыни горькой) и подсолнечника однолетнего для диагностики и лечения в виде раствора для диагностики, внутрикожного и подкожного введения с аллергенной активностью (10 000)/мл, PNU

Аллергоид пыльцевой полыни горькой для лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы полыни горькой для лечения в виде раствора для подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Аллергоид пыльцевой амброзии полыннолистной для лечения (АО НПО "Микроген", РФ)

Водно-солевой экстракт пыльцы амброзии полыннолистной для лечения в виде раствора для подкожного введения с аллергенной активностью (10 000±2500)/мл, PNU

Примечание : ИР - индекс реактивности; PNU - единицы белкового азота.

5.16. Отличия лекарственных препаратов от биологически активных добавок

В силу разных причин: отсутствие зарегистрированных сублингвальных стандартизированных аллергенов в достаточном количестве, в частности аллергенов сорных трав, высокой стоимости АСИТ, особенностей фармацевтического рынка Российской Федерации и государственного регулирования регистрации лекарственных препаратов и биологически активных добавок, использование БАД во всех сферах медицины стало очень распространенным явлением. Однако практикующему врачу необходимо помнить о постановлении Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 20.05.2009 № 36 "О надзоре за биологически активными добавками к пище (БАД)" (п. 4) : руководителям органов управления здравоохранением субъектов Российской Федерации принять меры по недопущению назначения медицинскими работниками БАД в качестве средств, оказывающих лечебный эффект [Федеральный закон от 13.03.2006 № 38-ФЗ (ред. от 01.05.2019) "О рекламе"].

Реклама БАД не должна:

  • создавать впечатление о том, что они являются лекарственными средствами и/или обладают лечебными свойствами;

  • создавать впечатление о преимуществах таких добавок путем ссылки на факт проведения исследований, обязательных для их регистрации, а также использовать результаты иных исследований в форме прямой рекомендации к применению таких добавок.

Таким образом, согласно регламентирующим документам, можно выделить следующие отличия лекарственных препаратов от биологически активных добавок (табл. 5-8).

Таблица 5-8. Отличия лекарственных препаратов от биологически активных добавок (https://www.rospotrebnadzor.ru, https://www.consultant.ru)
Характеристика Лекарственные препараты Биологические добавки

Цель применения

Профилактика и лечение пациентов с заболеваниями

В качестве дополнения к питанию

Доказательная база

Изученный механизм действия.

Эффективность и безопасность доказана в клинических исследованиях с обязательным плацебо-контролем

Редко проводятся клинические исследования эффективности и безопасности.

Даже если исследования проводятся, то без плацебо-контроля и подтвержденной статистической достоверности

Государственный контроль качества

Стандартизованный состав в соответствии с нормативными документами, обязательная сертификация каждой партии

Для производства достаточно подтвердить заявленный состав во время регистрации. Каждая партия не проходит контроль

Качество сырья

Высокая степень переработки сырья

Не известно

Показания и противопоказания

Четкий режим дозирования, определенный перечень показаний и противопоказаний

Данные категории не применимы.

Показаний нет, поскольку БАДы не применяются для лечения.

Противопоказаний нет, так как нет клинических исследований

Регистрация в Минздраве

Для регистрации в Российской Федерации проходят обязательные доклинические и клинические исследования

Клинических исследований не проходят.

Регистрируются на основании санитарно-эпидемиологической экспертизы

Количественная и качественная стандартизация заявленных биологически активных веществ

Проводятся в обязательном порядке. Каждая партия "сравнивается" с эталонным образцом на производстве. При несовпадении - партия отбраковывается

Не проводится, достаточно факта присутствия биологически активных веществ, заявленных в составе продукта при регистрации.

Иногда могут проводиться "контрольные" закупки

Примечание : БАД - биологически активная добавка.

Например, целая серия "Антиполлин", производство Burly Казахстан, позиционируется как лечебные аллергены для АСИТ, но согласно инструкции является БАД. В связи с этим использование их для проведения АСИТ недопустимо.

5.17. Перспективные направления оптимизации аллерген-специфической иммунотерапии

Эволюция аллергенов идет в сторону повышения безопасности. Золотым стандартом АСИТ является ПКИТ и СЛИТ. Однако существует необходимость усовершенствования и оптимизации АСИТ с целью повышения ее эффективности и безопасности. Непрерывное развитие фармацевтической промышленности и науки делает возможным появление новых препаратов лечебных аллергенов и способов их введения. Возможными направлениями оптимизации являются: изменение пути введения аллергена и модификация структуры аллерговакцины для получения более быстрого, безопасного эффекта. Новые пути введения аллерговакцин, описанные выше, широкого распространения в практике пока не получили в связи со сложностями в их применении и недостаточными исследованиями. Особый интерес для исследователей и производителей представляет и модернизация самих аллерговакцин. В фокусе исследований находятся: различные рекомбинантные аллергены дикого типа, конъюгаты, адъюванты, эпитопные аллерены, изоформы аллергенов, олигопептиды аллергенов, химеры, генно-инженерные ДНК-вакцины, комбинации с вирусными вакцинами [66–70].

Целью разработки различных модификаций аллергенов является получение вакцин со сниженной аллергенностью, то есть с меньшими побочными эффектами, и более высокой иммуногенностью, то есть с постоянным качеством и без балластных молекул, которые могут влиять на безопасность. Развитие новых технологий может стать способом снижения стоимости аллерговакцин и АСИТ. Тем не менее пока не получено убедительных данных, что новые формы аллергенов или способы введения имеют значительное преимущество.

Список литературы

  1. Shin Y.S., Jung J-W., Park J-W. et al. Clinical efficacy of allergen-specific immunotherapy from patient and physician perspectives // Yonsei Med. J. 2019. Vol. 60, N. 5. P. 446.

  2. Воронина Н.В., Жолондзь Н.Н., Мамровская Т.П. и др. Аллергенспецифическая иммунотерапия в лечении атопических заболеваний // Дальневосточный медицинский журнал. 2015. № 1. C. 87–92.

  3. Петрова С.Ю., Бержец В.М., Петрова Н. и др. Перспективы развития лечебных форм аллергенов. От абстрактных проблем к конкретным решениям // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2018. № 1. C. 40–47.

  4. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 с.

  5. Maloney J., Berman G., Gagnon R. et al. Sequential treatment initiation with timothy grass and ragweed sublingual immunotherapy tablets followed by simultaneous treatment is well tolerated // J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2016. Vol. 4, N. 2. P. 301–309.

  6. Douladiris N., Savvatianos S., Roumpedaki I. et al. A molecular diagnostic algorithm to guide pollen immunotherapy in Southern Europe: towards component-resolved management of allergic diseases // Int. Arch. Allergy Immunol. 2013. Vol. 162. P. 163–172.

  7. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI allergen immunotherapy user`s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  8. Roberts G., Pfaar O., Akdis C.A. et al. EAACI Guidelines on allergen immunotherapy: allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 765–798.

  9. Передкова Е.В. Пыльцевая аллергия // Астма и аллергия. 2013. № 1. С. 3–5.

  10. Минаева Н.В., Корюкина И.П. Аллергический ринит в практике педиатра: как определить и чем помочь // МС. 2018. № 11. С. 142–146.

  11. Abramson M.J., Puy R.M., Weiner J.M. Injection allergen immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2010. Vol. 8. CD001186.

  12. Fortescue R., Kew K.M., Leung M.S.T. Sublingual immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2020. Vol. 9. CD011293.

  13. Calderon M.A., Penagos M., Sheikh A. et al. Sublingual immunotherapy for allergic conjunctivitis. Cochrane systematic review and meta-analysis // Clinical & Experimental Allergy. 2011. Vol. 41, N. 6. P. 1263–1272.

  14. Wahn U., Bachert C., Heinrich J. et al. Real-world benefits of allergen immunotherapy for birch pollen-associated allergic rhinitis and asthma // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 3. P. 594–604.

  15. Couroux P., Ipsen H., Stage B.S. et al. A birch sublingual allergy immunotherapy tablet reduces rhinoconjunctivitis symptoms when exposed to birch and oak and induces IgG4 to allergens from all trees in the birch homologous group // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 2. P. 361–369.

  16. Worm M., Rak S., De Blay F. et al. Sustained efficacy and safety of a 300 IR daily dose of a sublingual solution of birch pollen allergen extract in adults with allergic rhinoconjunctivitis: result of a double-blind, placebo-controlled study // Clinical and Translational Allergy. 2014. Vol. 4. P. 1–11.

  17. Biedermann T., Kuna P., Panzner P. et al. The SQ tree SLIT-tablet is highly effective and well tolerated: Results from a randomized, double-blind, placebo-controlled phase III trial // J. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 143, N. 3. P. 1058–1066.

  18. Gangl K., Niederberger V., Valenta R. Multiple grass mixes as opposed to single grasses for allergen immunotherapy in allergic rhinitis // Clin. Exp. Allergy. 2013. Vol. 43, N. 11. P. 1202–1216.

  19. Durham S.R., Emminger W., Kapp A. et al. SQ-standardized sublingual grass immunotherapy: confirmation of disease modification 2 years after 3 years of treatment in a randomized trial // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 129, N. 3. P. 717–725.

  20. Johansen N., Weber R.W., Ipsen H. et al. Extensive IgE cross-reactivity towards the Pooideae grasses substantiated for a large number of grass-pollen-sensitized subjects // Int. Arch. Allergy Immunol. 2009. Vol. 150, N. 4. P. 325–334.

  21. Dahl R., Kapp A., Colombo G. et al. Efficacy and safety of sublingual immunotherapy with grass allergen tablets for seasonal allergic rhinoconjunctivitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2006. Vol. 118, N. 2. P. 434–440.

  22. Reich K., Gessner C., Kroker A. et al. Immunologic Effects and Tolerability Profile of In-Season Initiation of a Standardized-Quality Grass Allergy Immunotherapy Tablet: A Phase III, Multicenter, Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Trial in Adults with Grass Pollen-Induced Rhinoconjunctivitis // Clinical Therapeutics. 2011. Vol. 33, N. 7. P. 828–840.

  23. Valovirta E., Petersen T.H., Piotrowska T. et al. Results from the 5-year SQ grass sublingual immunotherapy tablet asthma prevention (GAP) trial in children with grasspollen allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2018. Vol. 141, N. 2. P. 529–538.

  24. Ohashi-Doi K., Kito H., Du W. et al. Bioavailability of house dust mite allergens in sublingual allergy tablets is highly dependent on the formulation // Int. Arch. Allergy Immunol. 2017. Vol. 174, N. 1. P. 26–34.

  25. Lund K., Kito H., Skydtsgaard M.B. et al. The importance of tablet formulation on allergen release kinetics and efficiency comparison of freeze-dried and compressed grass pollen sublingual allergy immunotherapy tablet formulations // Clin. Then. 2019. Vol. 41, N. 4. P. 742–753.

  26. Didier A., Malling H.J., Worm M. et al. Optimal dose, efficacy, and safety of once-daily sublingual immunotherapy with a5-grass pollen tablet for seasonal allergic rhinitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 120. P. 1338–1345.

  27. Didier A., Worm M., Horak F. et al. Sustained 3-year efficacyof pre- and coseasonal 5-grass-pollen sublingual immunotherapy tablets in patients with grass pollen-induced rhinoconjunctivitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 128. P. 559–566.

  28. Devillier P., Chassany O., Vicaut E. et al. The minimally important difference in the Rhinoconjunctivitis Total Symptom Score in grass-pollen-induced allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2014. Vol. 69, N. 12. P. 1689–1695.

  29. Wahn U., Tabar A., Kuna P. et al. Efficacy and safety of 5-grass-pollen sublingual immunotherapy tablets in pediatric allergic rhinoconjunctivitis // Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2009. Vol. 123, N. 1. P. 160–166.

  30. Mosges R., Ritter B., Kayoko G. et al. Carbamylated monomeric allergoids as a therapeutic option for sublingual immunotherapy of dust mite- and grass pollen-induced allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review of published trials with a meta-analysis of treatment using Lais tablets // Acta Dermatovenerol. Alp. Pannonica Adriat. 2010. Vol. 19, N. 3. P. 3–10.

  31. Chen K-W., Marusciac L., Tamas P.T. et al. Ragweed pollen allergy: burden, characteristics, and management of an imported allergen source in Europe // Int. Arch. Allergy Immunol. 2018. Vol. 176, N. 3–4. P. 163–180.

  32. Taramarcaz P., Lambelet B., Clot B. et al. Ragweed (Ambrosia) progression and its health risks: will Switzerland resist this invasion? // Swiss. Med. Wkly. 2005. Vol. 135. P. 538–548.

  33. Wurtzen P.A., Hoof I., Christensen L.H. et al. Diverse and highly cross-reactive T-cell responses in ragweed allergic patients independent of geographical region // Allergy. 2019. P. 137–147.

  34. El Kelish A., Zhao F., Heller W. et al. Ragweed (Ambrosia artemisiifolia) pollen allergenicity: SuperSAGE transcriptomic analysis upon elevated CO2 and drought stress // BMC Plant Biology. 2014. Vol. 14. P. 1–16.

  35. Nolte H., Maloney J. The global development and clinical efficacy of sublingual tablet immunotherapy for allergic diseases // Allergology International. 2018. Vol. 67, N. 3. P. 301–308.

  36. Nelson H.S. Ragweed allergy immunotherapy tablet MK-3641 (Ragwitek®) for the treatment of allergic rhinitis // Expert Review of Clinical Immunology. 2018. Vol. 14, N. 12. P. 1003–1011.

  37. Nolte H., Bernstein D.I., Nelson H.S. et al. Efficacy and safety of ragweed SLIT-Tablet in children with allergic rhinoconjunctivitis in a randomized, placebo-controlled trial // J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2020. Vol. 8, N. 7. P. 2388–2331.

  38. Moloney J., Berman G., Gagnon R. et al. Sequential treatment initiation with timothy grass and ragweed sublingual immunotherapy tablets followed by simultaneous treatment is well tolerated // J. Allergy Clin. Immunol Pract. 2016. Vol. 4, N. 2. P. 301–309.

  39. Желтикова Т.Б., Антропова А.Б., Мокроносова М.А. Многолетняя динамика акарокомплекса домашней пыли и cтруктуры сенсибилизации к бытовым аллергенам у атопических больных // Иммунология. 2016. Т. 1, № 37. C. 25–28.

  40. Arroabarren E., Echechipia S., Galbete A. et al. Association between component-resolved diagnosis of house dust mite allergy and efficacy and safety of specific immunotherapy // J. Investig Allergol. Clin. Immunol. 2019. Vol. 29, N. 2. P. 164–167.

  41. Global strategy for asthma management and prevention (update 2021). Global Initiative for Asthma Available from: www.ginasthma.org. 2021. P. 215.

  42. Костина Е.М., Молотилов Б.А. Опыт применения сублингвальной иммунотерапии у больных с сенсибилизацией к клещам домашней пыли // РМЖ. Т. 1, № 8. C. 14–18.

  43. Dhami S., Nurmalatov U., Arasi S. et al. Allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review and meta-analysis // Allergy. 2017. Vol. 72, N. 11. P. 1597–1631.

  44. Fortescue R., Kew K.M., Leung M.S.T. Sublingual immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2020. Vol. 9. CD011293.

  45. Song Y., Long J., Wang T. et al. Long-term efficacy of standardised specific subcutaneous immunotherapy in children with persistent allergic rhinitis due to multiple allergens including house dust mites // J. Laryngol. Otol. 2018. Vol. 132, N. 3. P. 230–235.

  46. Sahin E., Dizdar D., Dine M.E. et al. Long-term effects of allergen-specific subcutaneous immunotherapy for house dust mite induced allergic rhinitis // J. Laryngol. Otol. 2017. Vol. 131, N. 11. P. 997–1001.

  47. Орлова Е.А., Костина Е.М., Трушина Е.Ю. Опыт применения СЛИТ пациентами с бронхиальной астмой сквозь призму пандемии коронавирусной инфекции // Фарматека. 2021. № 5. С. 60–68.

  48. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI allergen immunotherapy user`s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  49. Roberts G., Pfaar O., Akdis C.A. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 765–798.

  50. Shamji M.H., Kappen J.H., Akdis M. et al. Biomarkers for monitoring clinical efficacy of allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis and allergic asthma: an EAACI Position Paper // Allergy. 2017. Vol. 72. P. 1156–1173.

  51. Gao Y., Lin X., Ma J. et al. Enhanced efficacy of dust mite sublingual immunotherapy in low-response allergic rhinitis patients after dose increment at 6 months: a prospective study // International Archives of Allergy and Immunology. 2020. Vol. 181, N. 4. P. 311–319.

  52. Zhao D., Lai X., Tian M. et al. The Functional IgE-Blocking Factor Induced by Allergen-Specific Immunotherapy Correlates with lgG4 Antibodies and a Decrease of Symptoms in House Dust Mite-Allergic Children // Int. Arch. Allergy Immunol. 2016. Vol. 169, N. 2. P. 113–120.

  53. Chen S., Zheng Y., Chen B. et al. Clinical response to subcutaneous dermatophagoides pteronyssinus immunotherapy in children with allergic rhinitis and asthma is independent of sensitization to blomia tropicalis allergens // Int. Arch. Allergy Immunol. 2019. Vol. 178, N. 2. P. 201–210.

  54. Soh J.Y., Thalayasingam M., Ong S. et al. Sublingual immunotherapy in patients with house dust mite allergic rhinitis: prospective study of clinical outcomes over a two-year period // J. Laryngol. Otol. 2016. Vol. 130, N. 3. P. 272–277.

  55. Wang L., Yin J., Fadel R. et al. House dust mite sublingual immunotherapy is safe and appears to be effective in moderate, persistent asthma // Allergy. 2013. Vol. 69. P. 1181–1188.

  56. Mosbech H., Deckelmann R., de Blay F. et al. Standardized quality (SQ) house dust mite sublingual immunotherapy tablet (ALK) reduces inhaled corticosteroid use while maintaining asthma control: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 134. P. 568–575.

  57. Nolte H., Maloney J., Nelson H.S. et al. Onset and dose related efficacy of house dust mite sublingual immunotherapy tablets in an environmental exposure chamber // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 135. P. 1494–1501.

  58. Nolte H., Bernstein D.I., Nelson H.S. et al. Efficacy of house dust mite SLIT-tablet in North American adolescents and adults in a randomized, placebo-controlled trial // J. Allergy Clin. Immunol. 2016. Vol. 138, N. 6. P. 1631–1638.

  59. Mösges R., Ritter B., Kayoko G. et al. Carbamylated monomeric allergoids as a therapeutic option for sublingual immunotherapy of dust mite- and grass pollen-induced allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review of published trials with a meta-analysis of treatment using Lais tablets // Acta Dermatovenerol Alp. Pannonica Adriat. 2010. Vol. 19, N. 3. P. 3–10.

  60. Allam J.P., Wiirtzen P.A., Reinartz M. et al. Phi p 5 resorption in human oral mucosa leads to dose-dependent and time-dependent allergen binding by oral mucosal Langerhans cells, attenuates their maturation, and enhances their migratory and TGF-bl and IL-10-producing properties // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 126, N. 3. P. 638–645.

  61. Lund K., Kito H., Skydtsgaard M.B. et al. The Importance of tablet formulation on allergen release kinetics and efficiency comparison of freeze-dried and compressed grass pollen sublingual allergy immunotherapy tablet formulations // Clin. Then. 2019. Vol. 41, N. 4. P. 742–753.

  62. Курбачева О.М., Павлова К.С. Федеральные клинические рекомендации. Аллерген-специфическая иммунотерапия // РАЖ. 2016. № 4–5. C. 55–61.

  63. Sahin E., Bafageeh S.A., Güven S.G. et al. Mechanism of action of allergen immunotherapy // Am. J. Rhinol. Allergy. 2016. Vol. 30. P. 1–3.

  64. Балаболкин И.И. Аллергенспецифическая иммунотерапия у детей с аллергическими заболеваниями: современные подходы к ее проведению и клиническая эффективность // Педиатрия. 2012. Т. 91, № 2. C. 81–88.

  65. Козулина И.Е, Павлова К.С., Курбачева О.М. Клиническая эффективность подкожной и сублингвальной аллерген-специфической иммунотерапии аллергического ринита и конъюнктивита // Российский аллергологический журнал. 2016. Т. 6, № 13. C. 63–69.

  66. Gunawardana N.C., Durham S.R. New approaches to allergen immunotherapy // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2018. Vol. 121, N. 3. P. 293–305.

  67. Pauli G., Larsen T.H., Pak S.et al. Efficacy of recombinant birch pollen vaccine for the treatment of birch-allergic rhinoconjunctivitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 122, N. 5. P. 951–960.

  68. Jutel M., Jaeger L., Suck R. et al. Allergen-specific immunotherapy with recombinant grass pollen allergens // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 116. P. 608.

  69. Valenta R., Niederberger V. Recombinant allergens for immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 119. P. 826–830.

  70. King T.P., Jim S.Y., Monsalve R.I. et al. Recombinant allergens with reduced allergenicity but retain immunogenicity of the natural allergens: hybrids of yellow jacket and paper was venom allergen antigen 5s // J. Immunol. 2001. Vol. 166. P. 6057–6065.

Глава 6. Стандартизация аллергенов

Аллерговакцины представляют собой лекарственные препараты, используемые для диагностики, профилактики и лечения аллергических заболеваний. Безопасное и эффективное применение препаратов аллергенов, используемых в диагностике и терапии аллергических заболеваний, зависит от стандартизации и методов контроля их качества.

Стандартизация аллергенов - это комплекс процедур, направленный на оценку активности лечебных и диагностических препаратов аллергенов стандартными методами и минимизацию различий между сериями препаратов не только внутри одного производства, но и с целью обеспечения взаимозаменяемости препаратов между разными производителями [1].

Стандартизация лечебного аллергена является сложной задачей, так как необходимо создать препарат с единым значением для людей разного пола, возраста, расы, с разной сенсибилизацией, с различным иммунным ответом.

Идеальный лечебный аллерген - это стандартизированный в соответствии с требованиями препарат, содержащий только основные мажорные белки, имеющий стабильный состав и воспроизводимость между сериями. Преимуществом для использования обладают аллергены, стандартизированные биологическим и одновременно лабораторным способом.

Разнообразие лечебных препаратов и схем их применения привело к сложности оценки и сравнения аллергенов. В связи с этим результаты клинических исследований одного лечебного аллергена могут полноценно быть применимы только к конкретному препарату и не могут быть экстраполированы на подобные аллергены другого производителя. Высокое качество аллергенных препаратов является ключевым условием успешного лечения аллергических заболеваний. Именно поэтому современная стандартизация аллергенных экстрактов имеет первостепенное значение для улучшения их качества и предоставления врачам надежных и безопасных препаратов для диагностики и лечения аллергических заболеваний. Аллергенная активность препарата в первую очередь обусловлена биологической активностью исходного сырья. Известно, что в разных сериях сырья, в зависимости от времени и места сбора, возможна различная вариабельность композиции и концентрации аллергенов. Сгладить природные вариации биологической активности экстрактов помогает процесс стандартизации, гарантирующий стабильность препарата, предсказуемость реакции пациента и эффективность терапии. Это гарантирует стабильность иммунологической активности препарата, что в свою очередь дает врачу уверенность в безопасности терапии [1, 7]. С целью повышения безопасности и сохранения основной характеристики - иммуногенности - лекарственные формы аллергенов совершенствуются. Стандартизированный экстракт аллергена высокого качества имеет большое значение не только для качественной и точной диагностики, но и для проведения эффективной и безопасной АСИТ. Аллергологи-иммунологи должны стремиться использовать для лечения и диагностики аллергических заболеваний хорошо стандартизированные аллергены. В настоящее время для этого во всем мире разрабатываются проекты достижения стандартизации экстрактов аллергенов. Основная проблема стандартизации аллергенных препаратов связана с отсутствием единых протоколов и правил стандартизации для всех производителей. Большинство производителей пользуются собственными внутренними стандартами качества и производства аллергенов, что вызывает сложности в случае необходимости эквивалентной замены препарата аллергена одного производителя на аллерген другого производителя. Это также приводит к тому, что проводить качественный сравнительный анализ эффективности препаратов разных производителей также сложно. И так как в настоящее время в мире не существует единой системы стандартизации лечебных аллергенов, приоритетной целью является формирование единой Всемирной стратегии стандартизации аллергенных препаратов.

Как было показано выше, в настоящее время не существует единых правил стандартизации аллергенов. Для препаратов аллергенов, выпускаемых в США, Евросоюзе и Российской Федерации, применяются различные подходы. Производители используют различные системы обозначения активности аллергенов. Нет соответствия и формул пересчета между различными единицами аллергенности. Производители не могут принять консенсусное решение в отношении не только содержания аллергена в препарате и периодичности его введения, но даже маркировка аллергенов вызывает споры.

Стабильность оказываемого эффекта является необходимым требованием к любому препарату. Первоначально используемая стандартизация по весу действующего вещества не смогла найти применение вследствие различных технологий изготовления.

Биологическая стандартизация, которая осуществляется на сенсибилизированном организме добровольцев с аллергопатологией, также имеет ряд недостатков. Во-первых, компании-производители не смогли прийти к соглашению об использовании единой технологии биологического тестирования. В Европе применяются различные модификации прик-тестов с гистамином без положительного контроля, в США - внутрикожные тесты. Во-вторых, способность препарата аллергена вызывать кожную реакцию при введении не всегда приводит к стабильному иммунному ответу, обеспечивающему долговременную эффективность. В-третьих, не существует референсных значений иммунного ответа на АСИТ и понимания, какая доза аллергена должна быть в препарате. В-четвертых, разные способы применения аллергена значимо различаются по дозам, при СЛИТ суммарное количество доз существенно больше, чем при ПКИТ, а при оральной иммунотерапии аллерген вообще считается в граммах.

Таким образом, на сегодняшний день в стандартизации аллергенов существует несколько подходов - в США внедряется система национальных стандартных образцов, биологическая активность которых определена одной методикой, в Европе каждая фирма-производитель создает собственные внутренние стандарты (IHRS), охарактеризованные разными методами, но с обязательной оценкой главных аллергенов. Все препараты, выпускаемые в Российской Федерации, стандартизированы в единицах белкового азота, основные принципы производства и стандартизации аллергенов приведены в Государственной фармакопее (ГФ РФ XIII) [2]. Подобные органы надзора есть и в других странах. Фармакопея дает самые общие рекомендации, и это не позволяет привести все лечебные аллергены к одному эталону. Кроме того, технологии стандартизации у компаний-производителей являются коммерческой тайной.

Резюмируя, можно сказать, что стандартизация - это обязательное условие выпуска высококачественного лечебного аллергена, так как необходимо приведение препарата к единому эталону и выражение его аллергенности в общепринятых единицах. Единая стандартизация аллергенов обеспечивает оценку активности лекарственного препарата, безопасность, возможных рисков и пользы, недопущение появления препаратов ненадлежащего качества, а также возможность экстраполировать результаты исследований одного аллергена на подобный аллерген другого производителя.

Водные экстракты аллергенов растений, животных, клещей и насекомых широко используют для диагностики и лечения аллергических заболеваний уже более века [3]. В России препараты аллергенов производят именно по такой технологии. Но следует подчеркнуть, что данная технология является устаревшей. Аллергены из природного сырья (пыльца растений, эпителий животных, клещи домашней пыли, пищевые продукты и др.) получают с помощью экстракции, используя водно-солевые буферные растворы. Экстракты нативных аллергенов представляют собой сложные белково-липополисахаридные комплексы, состоящие из аллергенных и неаллергенных компонентов. Аллергенные компоненты, в свою очередь, делятся на главные и второстепенные, их соотношение определяет биологическую активность препарата. Технология приготовления экстрактов аллергенов на основе природного сырья включает несколько этапов: измельчение, экстракция, очистка, диализ, стерилизация, проба на токсичность [4, 39]. Оценка качества исходного сырья имеет существенное значение. В сырье для производства аллергенов регламентируется содержание посторонних примесей. При проведении визуального и микробиологического анализа исследуемого образца любые посторонние примеси должны составлять не более 1%. Для измельчения сырья применяется лабораторный миксер и ультразвуковые приборы. При экстракции используют слабощелочную среду с рН 7,5–8,5 для предотвращения закисления раствора. Для поддержания рН используют буферные растворы. Обезжиренное сырье смешивают с наиболее подходящим раствором и проводят экстрагирование в тест-системе при комнатной температуре от 17 до 24 ч при постоянном встряхивании. Полученные таким методом водно-солевые экстракты содержат, помимо аллергенных, другие компоненты и примеси, что существенно влияет на качество препарата. В связи с этим аллергенные экстракты подвергают специальной очистке, которая проводится различными способами: осаждением, центрифугированием, фильтрованием либо их сочетанием. После очистки экстракта проводится диализ, в процессе которого удаляются низкомолекулярные вещества и пигменты. Далее экстракты аллергенов, предназначенные для АСИТ, подвергаются стерилизации. Наиболее эффективным методом является фильтрация через бактериальные фильтры. Данный способ подходит для термолабильных веществ. Контроль стерильности осуществляется путем посева на питательные среды для выявления возможного роста микроорганизмов. Также проводят токсикологический контроль, который включает в себя определение рН [5]. Отечественные диагностические и лечебные аллергены стандартизируют по содержанию в препарате единиц белкового азота (PNU), а их аллергенную активность устанавливают по результатам кожного тестирования на чувствительных к этому аллергену пациентах, поскольку количество белка не всегда коррелирует с биологической активностью, однако количественно аллергены не оцениваются ни in vitro , ни in vivo.

1 PNU равняется 5–10 мг азота или 0,06 мг белка.

Существенным недостатком данного метода является то, что он оценивает лишь общее количество белка в экстракте аллергена без учета, какая его часть приходится на мажорный аллерген, которая обладает необходимой аллергенной активностью, а какая присутствует в неактивном состоянии в виде неспецифических компонентов. Следствием этого является значительная вариабельность иммунобиологической активности диагностического или лечебного аллергена от серии к серии. При применении препаратов, стандартизированных по этому критерию, сложно прогнозировать реакцию пациента и быть уверенным в эффективности терапии. Помимо вариабельности иммунобиологической активности серьезным недостатком водно-солевых аллергенов является необходимость их ручного разведения непосредственно перед курсом АСИТ и титрование дозы в зависимости от индивидуальной чувствительности пациента [6].

В связи с тем, что выпускаемые отечественными производителями лечебные и диагностические аллергены стандартизируются еще старым методом (по содержанию единиц белкового азота), необходимо привести отечественные технологии получения и стандартизации аллергенных препаратов в соответствие с мировым уровнем. В России органом, осуществляющим стандартизацию, контроль качества и чистоты лечебных аллергенов, является Государственный научно-исследовательский институт стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов имени Л.А. Тарасевича.

В целом при производстве препаратов аллергенов можно выделить несколько этапов. Активность и эффективность лечебного аллергена значительно зависит от качества первоначального натурального сырья. Имеет значение, как проходит сбор первоначального сырья - в естественных условиях или имеется собственное производство, степень загрязненности другими биологическими агентами. Важны особенности технологии очистки натурального сырья от примесей, поэтому подготовка сырья - важный этап.

Для производства пыльцевых аллергенов используется пыльца, собранная на специальных территориях в период активного пыления. Пыльца не должна содержать примеси из другой пыльцы. В РФ допускается не более 10% пыльцы других видов растений в исходном сырье, в ЕС - не более 5%. Для усреднения параметров исходного сырья рекомендуется использование смеси пыльцы, полученной за 2–3 сезона. После сбора сырья, его измельчения, экстракции аллергена происходит первичный контроль качества биологического продукта визуально с помощью микроскопии. В препарате аллергена допускается наличие не более 0,5–1% посторонних примесей. Пыльцевые аллергены наиболее просты в производстве, так как пыльца легко собирается, измельчается и при правильном выращивании растений достаточно однородна. Соблюдение данных условий позволяет получить сырье, содержащее естественную экспозицию белковых молекул.

Аллергены клещей домашней пыли выращивают искусственно в стерильных условиях на определенных питательных средах однородного антигенного состава. Производителями поддерживается видовой контроль популяции, поэтому содержание основных антигенов клещей более стабильно по сравнению с видами, живущими в естественных условиях. Несмотря на единообразие технологии в целом при подготовке сырья, у различных производителей могут быть колебания в конечном составе белков.

Сложности приготовления и сбора сырья имеются в производстве аллергенов животных, библиотечной и домашней пыли. В данном случае имеют значение множественные факторы. Домашняя пыль, используемая при производстве бытовых аллергенов, собирается с поверхности мебели в домах пациентов, страдающих аллергией. Пыль представляет собой сложную и явно различающуюся комбинацию минеральных и биологических частиц. Основной фракцией белкового аллергена в домашней пыли являются домашние клещи, но помимо них домашняя пыль всегда содержит различные примеси, которые зависят от климатической зоны и состава иных аллергенов помещений. В пыли могут присутствовать определенные количества эпителия животных, плесневых грибов, пыльцы растений, белков пищи, различное содержание которых может зависеть от географии, сезона, времени и других факторов [8–10]. В связи с этим аллергены клещей домашней пыли предпочтительнее, чем аллергены домашней пыли, так как они имеют более стабильный состав. Аллергены домашней пыли и клещей домашней пыли не являются взаимозаменяемыми, так как реакция на пыль может быть вызвана примесями других белков. Каждая новая серия домашней пыли должна проверяться по возможности с помощью кожных проб, и переход между сериями требует снижения дозы вводимого аллергена в целях безопасности [11].

Аллергены животных не ограничиваются белками шерсти. Значимую роль играют аллергены слюны, половых желез и желез внешней секреции. Для производства эпидермальных аллергенов используют аллергены шерсти здоровых представителей определенного вида животного, не имеющих кожных заболеваний и инфекций. Порода животного не регламентируется, так как не найдено существенной разницы по содержанию аллергена Can f 1 между различными породами собак, то есть гипоаллергенных пород собак не существует. А вот количество аллергена у разных представителей внутри одной породы может значительно варьировать. Состав аллергена в сырье меняется в зависимости от пола животного и состояния его кожи. Животные с себореей, самцы и пожилые собаки продуцируют больше Саn f 1, чем особи той же породы без этих отягощающих факторов [12, 13]. Также было показано, что в большинстве случаев аллергии на собаку определяется сенсибилизация к простатическому калликреину Can f 5, который содержится в основном в моче, в меньшей степени шерсти и только у самцов [14]. Лечебные аллергены из шерсти собак содержат неизвестное количество Can f 5, так как его количество не регламентируется, и, соответственно, препараты могут демонстрировать разную эффективность при проведении АСИТ.

Следующим этапом производства аллергена является механическое или ультразвуковое измельчение и очищение от посторонних примесей путем концентрирования, центрифугирования, фильтрации и т.д. Сравнение аллергенов по весу, которое обычно используется в традиционной фармакологии, при производстве аллергенов вызывает сложности. Принципиальное значение имеет стабильность аллергена, так как имеется опасность разрушения белков и потери аллергенности при производстве и транспортировке. Такие этапы, как очистка, замораживание, лиофилизация, могут разрушать часть молекул.

Дальнейшим этапом является собственно стандартизация и разведение аллергена до нужного объема.

В конечном итоге препараты лечебных аллергенов представляют собой сложный комплекс белков, полисахаридов, липидов и ферментов. Часть молекул иммунологически инертна, другая может вызвать IgE-зависимый ответ. Белки, к которым развивается чувствительность более чем половины пациентов, называются мажорными, именно они определяют иммунный ответ и толерантность в процессе АСИТ. При производстве аллергена необходимо сохранить естественное разнообразие при условии сохранения высокой концентрации основных аллергенных молекул. Молекулярные структуры аллергена могут иметь изоформы и различные эпитопы для распознавания. Антигенраспознающий рецептор лимфоцита распознает один эпитоп в молекуле аллергена, в результате чего продуцируется специфическое антитело. На сложный по структуре белок будут продуцироваться изоформы IgE. Точность распознавания эпитопа может зависеть от индивидуальных особенностей синтеза IgE. Помимо существования различных эпитопов аллергенной молекулы источники аллергенов содержат множество белковых молекул, одна часть которых также интенсивно распознается Т-рецепторами и приводит к формированию иммунной памяти, другая - не вызывает иммунного ответа, либо он начинается позже. В настоящее время нет единой позиции в отношении содержания только определенных мажорных аллергенов.

Обязательная стандартизация аллергенов должна проводиться по следующим признакам: суммарная аллергенная активность; биологическая активность; содержание в препарате главных и вспомогательных аллергенов в единице массы препарата.

Суммарную аллергенную активность лекарственного препарата определяют и стандартизируют по соотношению вызываемой им кожной реакции на аллерген (прик-тест) со степенью кожной реакции на гистамин у больных, сенсибилизированных к данному аллергену [15].

В основе метода биологической стандартизации лежит оценка силы реакции организма на аллерген. Биологическую активность препарата определяют посредством его способности связывания комплекса антиген-антитело (АГ-АТ). Для оценки биологической активности используют методы in vitro и in vivo.

Возможно проведение исследований in vitro с помощью различных лабораторных методов, направленных на определение количества и качественного состава белка. Определяется концентрация мажорного аллергена в образце, а его наличие подтверждается посредством связывания со специфическими сыворотками. К методам in vitro , используемым для оценки IgE-связывающих свойств препарата, относятся: изоэлектрофокусирование, электрофорез в полиакриламидном геле с додецил-сульфатом натрия, IgE-иммуноблоттинг, перекрестный радиоиммуно­электрофорез, радиоаллергосорбентный тест.

Возможно проведение исследований in vivo на сенсибилизированных добровольцах путем постановки кожных проб и сравнения их с положительным контролем или размером реакции на эталонную партию аллергена. К методам in vivo относятся: прик-тесты, аппликационные, скарификационные, внутрикожные тесты [16]. Кожное тестирование с раствором аллергена проводят у высоко сенсибилизированных пациентов с клиническими проявлениями заболевания. Методика тестирования и оценки кожных проб также неодинаковая. В Европейском союзе принята практика кожных прик-тестов, в США - внутрикожных тестов. Стандартизацию проводят по величине волдыря у добровольца после введения аллергена. По величине реакции можно оценивать качество и активность препарата. Однако нет единых критериев включения добровольцев в эталонную группу пациентов, у разных производителей свои критерии отбора.

Как правило, используется комплексный подход к стандартизации: аллерген стандартизируют биологическим способом с помощью провокационных проб, а далее в процессе производства происходит лабораторный контроль качества.

Определение содержания главных аллергенов, преимущественно ответственных за повышенную чувствительность организма к сложному по составу аллергену, является приоритетным для всех производителей.

ВОЗ впервые предприняла попытку к единой стандартизации, инициировав создание референсных растворов важнейших аллергенов, в которых позднее было определено массовое содержание мажорных компонентов.

ВОЗ также была предложена система международных единиц - International Units (IU). В этих единицах выражается биологическая активность международных стандартов, разработанных организацией [17]. Однако пока, несмотря на все достоинства, международные референс-стандарты не получили широкого распространения. Каждый производитель использует свой IHRS и активность каждого стандарта выражает в своих собственных единицах. Разработка одной унифицированной единицы, по которой проводилась бы стандартизация у подавляющего большинства производителей, до сих пор остается нерешенной проблемой. Препараты аллергенов хранятся в Лондоне в Национальном институте стандартизации и контроля. Активность этих стандартных препаратов принята ВОЗ за эталон и составляет 100 000 IU (International Units). В качестве референсного международного стандарта доступно всего пять наименований аллергенов: клещ домашней пыли, пыльца тимофеевки, березы, амброзии, экстракт шерсти собаки. Кроме того, есть дополнительный перечень аллергенов, который хранится, но не заявлен как международный стандарт. Разработанные стандартные образцы рекомендованы для сравнения препаратов от разных производителей, а также разных серий одной фирмы при условии, что используемые методики прошли процедуру валидации [18–20]. В настоящее время работы в этом направлении продолжаются, однако имеются сложности, так как данный проект не был поддержан регуляторными органами США и ЕС, список очень ограничен, и, по сути, стандартизация в International Units не применяется.

В зависимости от производителя иммунологическая активность может выражаться в различных единицах: биологические единицы - Biological Units (BU), биологические аллергенные единицы - Biological Allergenic Units (BAU), аллергенные единицы - Allergy Units (AU), единицы активности АСИТ - Specific treatment units (STU), индекс реактивности - Index of reactivity (IR) и др.

В настоящее время наиболее широко распространены две системы стандартизации аллергенов:

  • ВAU или AU (Вioequivalent Allergy Units - биоэквивалентные аллергенные единицы), разработанная Turkeltaub в лаборатории FDA в США, основанная на кожной реакции пациента in vivo , выраженной в суммарном диаметре эритемы в мм на внутрикожное титрование аллергеном;

  • BU (Biological Units - биологические единицы), разработанная и применяемая в Европе, позволяющая измерять дозу аллергена в биоэквивалентных единицах, которые рассчитываются по кожной реакции при прик-тестировании, 1000 BU/мл эквивалентны кожной реакции пациента на раствор гистамина в дозе 10 мг/мл [21–23].

В США регулирующим органом, осуществляющим стандартизацию, контроль качества и чистоты лечебных аллергенов, является FDA (Food and Drug Administration - Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов). Также вопросами стандартизации аллергенов занимается Центр по биологической оценке и исследованиям (Center for Biologics Evaluation and Research, CBER). CBER разработал требования, предъявляемые к американскому стандартному образцу аллергенной активности, и рекомендовал методы для его оценки [24]. В качестве стандартного образца активности используют одну из серий аллергенного экстракта (эталонная серия), выпускаемого на производстве, общую аллергенную активность которого оценивают в биоэквивалентных единицах (Вioequivalent Allergy Units, BAU) [25]. Терапевтическая эффективность этой серии также должна быть подтверждена. Эталонная серия должна быть охарактеризована либо по общей аллергенной активности, либо по содержанию мажорных аллергенов. В аллергенах из яда насекомых проводится оценка ферментативной активности. Для первоначальной оценки общей аллергенной активности CBER рекомендует использовать внутрикожные тесты на пациентах с аллергическими заболеваниями. Эталонную серию тестируют в трех разведениях. Через 15 мин измеряют диаметр (максимальный и минимальный) эритемы, вызванной данным разведением аллергена, которые затем суммируют и вычисляют логарифм дозы, при которой сумма диаметров равна 50 мм (D50). За референсную активность принимается эритема размером 50 мм, которая образуется после введения 0,05 мл стандартизируемого раствора. Аллергенность такого раствора принимается эквивалентной биологической активности, обозначаемой как D50. После умножения на коэффициент концентрация маточного раствора обозначается 100 000 BAU/мл. Все производители, выпускающие свою продукцию на рынок в Северной Америке, сравнивают активность с референсом FDA [26]. Для оценки активности последующих серий стандартного образца, а также коммерческих серий препаратов кожное тестирование можно заменить подходящим тестом in vitro , который зарегистрировал CBER. Выбор теста определяется природой аллергена (конкурентный иммуноанализ, белок по Кьельдалю, радиальная иммунодиффузия). Результаты теста in vitro должны коррелировать с методом внутрикожных разведений [27].

В Европейской фармакопее сформулирован свод требований, которым должны соответствовать стандартные образцы и коммерческие препараты. Стандартный препарат требуется охарактеризовать по содержанию белка (спектрофотометрия), профилю белка (изоэлектрическое фокусирование, электрофорез в полиакриламидном геле, иммуноэлектрофорез, капиллярный электрофорез, хроматография или масс-спектрометрия), аллергенным компонентам (главным и второстепенным аллергенам) (иммуноблоттинг). Во всех возможных случаях устанавливают количественное содержание отдельных аллергенных компонентов. Европейская фармакопея предъявляет ряд требований к качеству препаратов аллергенов. В первую очередь, требования предъявляются к качеству исходного сырья, используемого для приготовления аллергенных препаратов. Так, например, содержание пыльцы других растений для смесей пыльцы разных видов не должно превышать 1% и для пыльцы одного вида - 0,5% (устанавливается подсчетом пыльцевых частиц под микроскопом). В экстрактах клещей не допускается попадания в сырье посторонних видов клещей. Должны быть идентифицированы виды насекомых, из которых экстрагируется яд для производства аллергенов. Пищевые аллергены должны отвечать требованиям, предъявляемым к продуктам питания. Кроме того, согласно требованиям Европейской фармакопеи, препараты аллергенов, предназначенные для парентерального введения, и препараты для проведения кожного тестирования должны быть стерильными и производиться в асептических условиях. Содержание консервантов, их природа и концентрация в аллергенных экстрактах также регламентируется. В лиофилизированных препаратах нормируется содержание воды не более 5%. Содержание белков должно составлять от 80 до 120% от указанного количества. Их уровень определяется хроматографическими методами и масс-спектрометрией, методами изоэлектрического фокусирования, электрофореза в полиакриламидном геле с додецил-сульфатом натрия, иммуноэлектрофореза, капиллярного электрофореза. В препаратах, в которых в качестве адсорбентов используются алюминия или кальция фосфат, нормируется содержание алюминия или кальция, оно должно составлять от 80 до 120% от указанного количества. Суммарная аллергенная активность должна находиться в пределах от 50 до 150% от указанного количества (определяется путем подавления связывающей способности специфических IgE антител или эквивалентного метода in vitro ). Содержание индивидуальных аллергенов должно составлять от 50 до 200% от указанного количества для каждого компонента. Европейская фармакопея также дает полноценную характеристику аллергенов как фармацевтических препаратов [28].

В Европейских странах оценкой соответствия экстрактов аллергенов всем современным требованиям Европейской фармакопеи занимается ЕМА (European Medicines Agency - Европейское агентство по лекарственным средствам) [28, 29]. В руководство EMA включены рекомендации относительно критериев аттестации стандартных образцов, выбора методик, используемых для контроля качества, в том числе анализа постоянства характеристик препарата от серии к серии [29]. Там же вводится понятие гомологичных групп аллергенов для возможной экстраполяции данных, полученных при изучении свойств одного аллергена, на группу.

К одной гомологичной группе относятся аллергены, которые соответствуют следующим критериям:

  • сопоставимые по физико-химическим и биологическим свойствам исходного материала;

  • должна быть перекрестная реактивность и структурная гомология аллергенов;

  • идентичная лекарственная форма готового препарата;

  • идентичный процесс производства экстракта аллергена и готового препарата.

Единственный представитель гомологичной группы может быть выбран в качестве репрезентативного вида в продукте аллергена, достаточно доказать эффективность в гомологичной группе только с репрезентативным аллергеном. В дальнейшем из группы выбирается один репрезентативный аллерген. Результаты исследований по качеству, безопасности и эффективности могут частично экстраполироваться с репрезентативного аллергена на остальные аллергены той же гомологичной группы. Исследования по безопасности необходимо проводить только для репрезентативного аллергена, для других аллергенов, входящих в одну гомологичную группу, требуются постмаркетинговые отчеты. Экстраполяция данных клинических исследований рассматривается согласно специальному руководству рабочей группы по эффективности [30].

Большинство производителей аллергенных препаратов в ЕС используют собственные утвержденные внутренними инструкциями способы стандартизации аллергена. В Евросоюзе каждая фирма-производитель создает собственные внутренние стандартные образцы аллергенов (in house reference standard, IHRS), которым присваивает собственные единицы измерения активности, при этом имеется значительное разнообразие единиц активности аллергенов, единых требований к биологической стандартизации не предусмотрено. Активность первой серии стандартного образца оценивают разными тестами in vivo (в основном кожные пробы), последующих - тестами in vitro (иммуноанализ). Коммерческие препараты должны пройти испытания на подлинность (идентификацию) путем сравнения белкового и аллергенного профиля препарата с профилем стандартного образца одним из перечисленных выше методов, применяемых для IHRS. Должна быть определена общая аллергенная активность относительно IHRS методами in vitro , основанными на ингибировании связывающей способности аллерген-специфических IgE-антител. Также следует оценить содержание индивидуальных аллергенов (аллергенных компонентов) [31–36].

Однако использование собственных внутренних стандартов делает практически невозможным сравнение качества продукции различных производителей. Даже если количество главных аллергенов установлено, различия в методиках количественного определения, эталонных экстрактах могут повлиять на результат. Именно поэтому, чтобы сравнить диагностические и иммунотерапевтические свойства аллергенов разных производителей, необходимо использовать одинаковые аналитические методики.

С этой целью был инициирован проект CREATE, целью которого являлась унификация методов оценки и измерения содержания основных мажорных аллергенов в референсных образцах. Планировалось изучить и стандартизировать 9 молекул: Bet v 1, Phl р 1, Phl р 5а и Phl р 5b, Ole е, Der р 1, Der p 2, Der f 1, Der f 2. К 2008 г. к окончанию проекта было стандартизировано определение аллергенов Bet v 1 и Phl р 5, которые вошли в Европейскую фармакопею [37]. В настоящее время наличие содержания этих 2 белков обязательно для соответствующих продуктов лечебных аллергенов в Евросоюзе. Для остальных препаратов каждый производитель был вынужден создать внутренний эталон качества и выпускать продукцию единообразно своему образцовому аллергену.

Преимущества препаратов, стандартизированных в единицах иммунобиологической активности:

  • постоянство концентрации и активности аллергена;

  • уверенность в подборе дозы;

  • прогнозируемость реакции пациента;

  • уверенность в безопасности и эффективности.

Последние научные исследования в области молекулярной аллергологии показывают, что при стандартизации особое внимание необходимо уделить именно количественной оценке отдельных компонентов молекул аллергенов - главным, мажорным аллергенам. Поскольку единицы биологической активности трудно сопоставимы у разных производителей, активность препарата может быть выражена в концентрациях "мажорных" аллергенов. Современные технологии позволили изучить и синтезировать структуру аллергенных протеинов, тем самым начав новую эпоху в аллергологии - эпоху молекулярной аллергодиагностики. Данные технологии активно применяются при стандартизации аллергенных препаратов и позволяют количественно определять в них мажорные и минорные аллергены, что облегчает процесс стандартизации. В настоящий момент данное направление является приоритетным в области стандартизации экстрактов аллергенов. Новые технологии клонирования белковых молекул уже сейчас позволили получить многие важные аллергены (аллергены пыльцы растений, клеща домашней пыли, эпидермиса некоторых животных, насекомых, ядов перепончатокрылых и др.) в виде индивидуальных рекомбинантных белков, имеющих сравнимую аллергенную активность с соответствующими природными белковыми аллергенами. Такая новая технология облегчит стандартизацию аллергенных препаратов, позволив количественно определять главные аллергены в производственных сериях лекарственных форм.

6.1. Методики и единицы биологической стандартизации различных препаратов, зарегистрированных в Российской Федерации

Stallergenes Greer - одна из первых компаний, которая поняла важность стандартизации аллергенов в единицах иммунобиологической активности. Единица IR (ИР) - индекс реактивности - была создана в 1983 г. Система стандартизации в компании Stallergenes Greer соответствует требованиям европейских и отечественных регуляторных органов и осуществляется на всех стадиях производственного цикла, начиная от контроля качества сырьевого экстракта до подтверждения аллергенной активности конечного продукта. В основе иммунобиологической стандартизации лежит создание экстракта, используемого как эталон IHRP. Все последующие серии препарата сравниваются с эталоном, их активность подгоняется до установленного значения, в итоге получают препарат с гарантированным постоянством аллергенной активности и соответствием указанным дозам от серии к серии.

Этапы стандартизации.

  1. Полная характеристика референтного экстракта, включающая полный качественный и количественный анализ входящих в состав мажорных и минорных аллергенов, определение аллергенной активности, формирование потенциальных кандидатов на референтный препарат.

  2. Калибровка in vivo и создание референтного препарата. При­меняется тройное разведение потенциального экстракта, четырехкратное тестирование каждого разведения у 30 пациентов, сенсибилизированных к данному аллергену. Диаметр папулы измеряется с помощью специального программного обеспечения. В качестве эталона применяется геометрическое среднее размера волдыря, эквивалентного положительному контролю, в качестве которого используют прик-тест, с раствором кодеина фосфата 9%. Применяется 4-кратная постановка пробы с серийным разведением аллергена 1/10. Кожная реакция после нанесения 100 IR аллергена соответствует реакции положительного контроля 7 мм. Концентрация, дающая диаметр 7 мм у подавляющего большинства пациентов, выбирается как референс.

  3. Корректировка активности промышленного экстракта. Референтный препарат пересматривается и меняется с определенной периодичностью. Производство промышленного экстракта проводится с корректировкой активности на каждом этапе: измерение аллергенной активности промышленного экстракта методом ИФА в сравнении с референтным препаратом, подгонка активности, тестирование конечного продукта (аллергенная активность конечного продукта снова подтверждается ИФА) [38].

Таким образом, в основе стандартизации лежит сочетание лабораторных и клинических методов определения активности аллергенного экстракта. Доза выпускаемого препарата приводится к дозе, показавшей свою эффективность и безопасность в ходе клинических двойных слепых плацебо-контролируемых исследований.

ALK-Abello применяет современные технологии стандартизации с применением биологических и комплекса лабораторных методов. Единицы стандартизации у производителя - SQ-U (Standardized Quality Units), основанные не на результатах разнообразных провокационных проб, которые могут отличаться у разных людей, а на основании клинической эффективности препарата по данным клинических исследований. Оптимальная поддерживающая доза для среднестатистического пациента с аллергией определяется эмпирически в клинических испытаниях и обозначается как 100 000 SQ-U. Для таблеток оптимальная доза определяется в крупномасштабных клинических исследованиях с определением ответа на дозу. Оптимальная доза представляет собой компромисс (баланс) между эффективностью и безопасностью.

Критерии стандартизации данного производителя:

  • комплектность;

  • мажорный аллерген;

  • потенция образца;

  • стандартизация от серии к серии.

Комплектность - это один из четырех критериев стандартизации в компании. По этому критерию происходит выпуск партии нового аллергена. Комплектность - это значит, что в экстракте аллергена должно быть определенное количество компонентов, как в качественном, так и в количественном составе. Комплектность по составу белка. Например, экстракт аллергена клещей домашней пыли стандартизируется по четырем мажорным компонентам, то есть будут оцениваться минимум четыре компонента. Экстракт новой партии сравнивается с эталоном внутреннего образца.

Мажорный аллерген - в каждой партии ведется количественный подсчет мажорного аллергена в препарате.

Потенция образца - это также один из четырех критериев выпуска партии. Потенциал образца - это способность аллергена вызывать аллергическую реакцию. Он оценивается с помощью постановки кожных проб. У компании есть определенное количество реальных людей с подтвержденной сенсибилизацией на определенный аллерген. При выпуске партии аллергена этим людям проводят кожные прик-тесты с помощью этого аллергена, чтобы определить способность конкретного аллергена из конкретной партии вызывать аллергическую реакцию, чтобы нивелировать различия в потенциале сырья от года к году.

Каждую партию сравнивают с внутренним эталонным образцом - это светокопия, которая хранится в компании и на ней были проведены все клинические испытания и регистрационные исследования. Каждая партия сравнивается с внутренним эталонным образцом. ALK разрабатывает препараты экстрактов аллергенов на основе одного представителя гомологичной группы в соответствии с рекомендациями EAАCI и EMA.

Преимущества использования одного или как можно меньшего количества экстрактов аллергенов заключается в том, что выращивание, сбор и производство исходного сырья значительно упрощается. Вариабельность конечного продукта потенциально снижается, так как присутствует только один источник аллергенов и не требуется смешивание нескольких экстрактов. Контроль соответствия конечного продукта от партии к партии осуществляется более простым и надежным способом, что полностью соответствует текущим требованиям Европейских и Североамериканских гайдлайнов.

Lofarma S.p.A. Производит мономерные карбамилированные химически модифицированные аллергоиды, применяет единицу измерения АЕ (аллергенные единицы). Аллергенная единица характеризует антигенную детерминанту. Одна АЕ эквивалентна 1/40 провоцирующей дозы натурального экстракта определенного аллергена при проведении назального провокационного теста у пациентов с аллергией. После стандартизации происходит трансформация аллергена в аллергоид, и провокационная назальная проба с аллергоидом становится невозможной.

Список литературы

  1. Невская Л.В., Лавренчик Е.И., Жданова М.Ю. и др. Международный опыт стандартизации препаратов аллергенов // БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2017. Т. 4, № 17. C. 222–229.

  2. ОФС.1.7.2.0034.15. Определение подлинности аллергенов. Государственная фармакопея Российской Федерации. Москва. 2015. Т. 2. С. 852–861.

  3. Slater J., Menzies S., Bridgewater J. et al. The US Food and Drug Administration review of the safety and effectiveness of nonstandardized allergen extracts // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 129. P. 1014–1019.

  4. Хаитов Р.М., Ильина Н.И. Аллергология и иммунология: Национальное руководство. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 656 с.

  5. Игнатов А.А., Раменская Г.В., Смирнов В.В. Современные тенденции в стандартизации препаратов аллергенов // Фармакокинетика и фармакодинамика. 2015. № 1. C. 16–20.

  6. Балаболкин И.И., Рылеева И.В., Юхтина Н.В. и др. Аллергенспецифическая иммунотерапия детей с аллергическими заболеваниями и возможности повышения ее эффективности // Педиатрия. 2006. № 2. C. 81–85.

  7. Курбачева О.М., Павлова К.С. Федеральные клинические рекомендации. Аллерген-специфическая иммунотерапия // РАЖ. 2016. № 4–5. C. 55–61.

  8. Barnes С., Portnoy J.M., Ciaccio С.Е. et al. A comparison of subject room dust with home vacuum dust for evaluation of dust-borne aeroallergens // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2013. Vol. 110, N. 5. P. 375–379.

  9. Shroba J., Barnes C., Nanda M. et al. Ara h2 levels in dust from homes of individuals with peanut allergy and individuals with peanut tolerance // Allergy Asthma Proc. 2017. Vol. 38, N. 3. P. 192–196.

  10. Желтикова Т.М., Антропова А.Б., Мокроносова М.А. Многолетняя динамика акарокомплекса домашней пыли и структуры сенсибилизации к бытовым аллергенам у атопических больных // Иммунология. 2016. Т. 1, № 37. C. 25–28.

  11. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 с.

  12. Vredegoor D.W., Willemse T., Chapman M.D. et al. Can f 1 levels in hair and homes of different dog breeds: lack of evidence to describe any dog breed as hypoallergenic // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130, N. 4. P. 904–909.

  13. Ramadour M., Guetat M., Guetat J. et al. Dog factor differences in Can f 1 allergen production // Allergy. 2005. Vol. 60, N. 8. P. 1060–1064.

  14. Mattsson L., Lundgren T., Everberg H. et al. Prostatic kallikrein: a new major dog allergen // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 123, N. 2. P. 362–368.

  15. Желтикова Т.М. Аллергены для аллерген-специфической иммунотерапии: достижения и проблемы // Consilium medicum (Педиатрия). 2012. № 1. С. 29–31.

  16. Игнатов А.А., Раменская Г.В., Смирнов В.В. Современные тенденции в стандартизации препаратов аллергенов // Фармакокинетика и фармакодинамика. 2015. № 1. C. 16–20.

  17. Боков Д.О., Смирнов В.В. К вопросу стандартизации аллергенных экстрактов: пути дальнейшего развития // Сеченовский вестник. 2013. № 4. C. 39–46.

  18. Esch R.E., Plunkett G.A. Immunotherapy preparation guidelines, rules, and regulation // Curr. Allergy Asthma Rep. 2013. Vol. 13, N. 4. P. 406–413.

  19. Chapman M.D., Ferreira F., Villalba M. et al. The European Union CREATE project: a model for international standardization of allergy diagnostics and vaccines // J. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 122, N. 5. P. 882–889.

  20. Filep S., Tsay A., Vailes L. et al. A multi-allergen standard for the calibration of immunoassays: CREATE principles applied to eight purified allergens // Allergy. 2012. Vol. 67, N. 2. P. 235–241.

  21. Белан Э.Б. Аллерген-специфическая иммунотерапия аллергических заболеваний // Астраханский медицинский журнал. 2018. Т. 3, № 14. C. 146–149.

  22. Белан Э.Б., Гущин И.С. Аллергия и аллерген-специфическая иммунотерапия. Москва: Фармарус Принт Медиа, 2010. 28 с.

  23. Аллергология. Федеральные клинические рекомендации / под ред. Р.М. Хаитова, Н.И. Ильиной. Москва: Фармарус Принт Медиа, 2014. 126 с.

  24. A Short History of the National Institutes of Health (электронный ресурс). https://history.nih.gov/display/history/A+Short+History+of+the+National+Institutes+of+Health.

  25. Turkeltaub P.C. Biological standardization of allergenic extracts // Allergol. Immunopathol. (Madr.). 1989. Vol. 17, N. 2. P. 53–65.

  26. Turkeltaub P.C., Rastogi S.C., Baer H. et al. A standardized quantitative skin-test assay of allergen potency and stability: studies on the allergen dose-response curve and effect of wheal, erythema, and patient selection on assay results // J. Allergy Clin. Immunol. 1982. Vol. 70, N. 5. P. 343–352.

  27. Guidance for Industry on the Content and Format of Chemistry, Manufacturing and Controls Information and Establishment Description Information for an Allergenic Extract or Allergen Patch Test. U.S. Department of Health and Human Services Food and Drug Administration Center for Biologics Evaluation and Research. 1999. 23 p.

  28. Allergen products // European Pharmacopoeia 9.0. 2010. P. 811–813.

  29. Guideline on allergen products: production and quality issues // EMA. Committee for medicinal products for human use (CHMP) (EMEA/CHMP/BWP/304831/2007). 2008. P. 16.

  30. Guideline on the clinical development of products for specific immunotherapy for the treatment of allergic diseases // EMA. Committee for medicinal products for human use (CHMP) (CHMP/EWP/18504/2006). 2008. P. 13.

  31. Major allergens strongly underrepresented in some immunotherapy against bee stings (электронный ресурс). https://www.news-medical.net/news/20170517/Major-allergens-strongly-underrepresented-in-some-immunotherapy-against-bee-stings.aspx.

  32. Zakzuk J., Kilimajer J., Lockey R.F. Allergen Standardization and Characterization (электронный ресурс). https://www.worldallergy.org/education-and-programs/education/allergic-disease-resource-center/professionals/allergen-standardization-and-characterization.

  33. Becker W.M., Vogel L., Vieths S. Standardization of allergen extracts for immunotherapy: where do we stand? // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2006. Vol. 6, N. 6. P. 470–475.

  34. Palomares O., Crameri R., Rhyner C. The contribution of biotechnology toward progress in diagnosis, management, and treatment of allergic diseases // Allergy. 2014. Vol. 69, N. 12. P. 1588–1601.

  35. Van Ree R., Chapman M.D., Ferreira F. et al. The CREATE project: development of certified reference materials for allergenic products and validation of methods for their quantification // Allergy. 2008. Vol. 63, N. 3. P. 310–326.

  36. Takai T., Okamoto Y., Okubo K. et al. Japanese Society of Allergology task force report on standardization of house dust mite allergen vaccines — secondary publication // Allergol. Int. 2015. Vol. 64, N. 2. P. 181–186.

  37. Van Ree R., Chapman M.D., Ferreira F. et al. The CREATE project: development of certified reference materials for allergenic products and validation of methods for their quantification // Allergy. 2008. Vol. 63, N. 3. P. 310–326.

  38. Larenas-Linnemann D., Cox L.S. European allergen extract units and potency: review of available information // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2008. Vol. 100, N. 2. P. 137–145.

Глава 7. Показания и противопоказания к проведению аллерген-специфической иммунотерапии

АСИТ показана только в тех случаях, если выявлена взаимосвязь между клинической картиной болезни и экспозицией аллергена (положительный аллергологический анамнез), к которому у больного имеется сенсибилизация, подтвержденная результатами кожных проб и/или определением sIgE в сыворотке крови [1].

Показания к проведению АСИТ:

  • аллергический ринит с проявлениями средней или тяжелой степени тяжести в сочетании с аллергическим конъюнктивитом или без него;

  • атопическая контролируемая бронхиальная астма легкой и среднетяжелой степени (FEV1 более 70% от должных величин на фоне адекватной фармакотерапии);

  • инсектная аллергия (в том числе с анафилактическими реакциями на яд перепончатокрылых насекомых);

  • атопический дерматит легкого и среднетяжелого течения с высокой степенью сенсибилизации. Наилучшие результаты АСИТ при атопическом дерматите были показаны у пациентов с доказанной сенсибилизацией к аллергенам клещей домашней пыли. Наличие атопического дерматита не является противопоказанием для проведения АСИТ у пациентов с сопутствующими респираторными аллергическими заболеваниями (аллергический ринит, атопическая бронхиальная астма) [2].

АСИТ при респираторной аллергии назначают при выполнении следующих условий:

  • продолжительность заболевания не менее 2 лет для пыльцевой сенсибилизации и не менее 12 мес для круглогодичной сенсибилизации;

  • за развитие клинических проявлений заболевания ответственны именно эти аллергены, имеется четкая связь обострения заболевания с контактом с причинно-значимым аллергеном (например, сезонные обострения, соответствующие региональному календарю пыления причинно-значимых аллергенов для пыльцевой сенсибилизации);

  • подтвержденная сенсибилизация (положительные результаты кожных проб и/или уровень специфических IgE не менее второго класса реакции);

  • должны быть учтены и при необходимости купированы обострения интеркуррентных заболеваний;

  • до начала лечения проведены элиминационные мероприятия.

Противопоказания к проведению АСИТ. При назначении АСИТ необходим тщательный учет противопоказаний к этому лечению. АСИТ противопоказана пациентам с такой сопутствующей патологией, которая способна повышать риск развития тяжелых системных реакций, ассоциированных с ее проведением.

Клиническое противопоказание к АСИТ - это ситуация, при которой аллерген не должен быть назначен, так как он может нарушить состояние здоровья данного пациента в связи с наличием сопутствующих заболеваний и/или их медикаментозной терапией, а также в силу возрастных ограничений [3, 4]. Противопоказания должны быть исчерпывающими, четко сформулированными и обоснованными.

Предпосылки к созданию позиционного документа EAACI по клиническим противопоказаниям к АСИТ. Существуют понятия "абсолютных" или "относительных" клинических противопоказаних к АСИТ . На сегодняшний день по ряду вопросов противопоказаний доказательная база ограничена. До 2015 г. не было общего согласия в вопросе о том, являются ли некоторые сопутствующие заболевания и состояния клиническими противопоказаниями и применимы ли они одновременно к АСИТ ингаляционными аллергенами и к иммунотерапии ядами. Термины "абсолютные" или "относительные" противопоказания употреблялись в литературе неоднозначно, что приводило к возникновению клинических, правовых и этических разногласий. Были расхождения при классификации клинических противопоказаний для различных форм АСИТ на "абсолютные" или "относительные". Кроме того, вопросы вызывало, применимо ли одно и то же клиническое противопоказание одновременно к СЛИТ и ПКИТ. В 2015 г. была сформирована оперативная группа Европейской академии аллергологии и клинической иммунологии (EAACI) для оценки и пересмотра клинических противопоказаний на основании обзора современной литературы по АСИТ, а также для обновления рекомендаций для сублингвальной и подкожной АСИТ при респираторной иммунотерапии и иммунотерапии ядами. В общей сложности были детально проанализированы 2333 опубликованные статьи. Большинство из них были тематическими докладами или сериями клинических случаев. 150 статей содержали значимую информацию о клинических противопоказаниях. Анализировались и изучались национальные и международные позиционные документы и руководства. В результате этой работы EAACI был опубликован позиционный документ, в которым представлены все основные противопоказания для АСИТ [4].

Для назначения курса АСИТ необходимо учитывать не только различную сопутствующую патологию, но и оценивать соотношение "риск/польза" для каждого пациента. Лечение пациента с относительным противопоказанием оправдано, если ожидаемая польза превышает любой риск, возникший при проведении АСИТ. Следовательно, врач должен объяснить пациенту клинические противопоказания с точки зрения соотношения риска и пользы лечения при назначении АСИТ. Окончательное решение о проведении АСИТ должно быть основано на полном анализе состояния конкретного пациента, его сопутствующих заболеваниях, используемой базисной фармакотерапии, а также оценке соотношения риска и пользы у данного конкретного пациента.

Основным документом при принятии решения о назначении конкретного препарата для АСИТ пациенту, о его противопоказаниях и возможных нежелательных явлений является инструкция к этому препарату.

Противопоказания для проведения АСИТ:

  • тяжелые иммунопатологические состояния и иммунодефициты;

  • онкологические заболевания;

  • тяжелые психические расстройства;

  • невозможность соблюдения пациентом схемы назначенного лечения;

  • лечение β-блокаторами, включая топические формы;

  • прием ингибиторов АПФ;

  • прием ингибиторов МАО;

  • отсутствие контроля бронхиальной астмы (FEV1 менее 70% на фоне адекватной фармакотерапии, в том числе тяжелая форма бронхиальной астмы);

  • сердечно-сосудистые заболевания, при которых возможны осложнения при использовании эпинефрина (Адреналина );

  • дети младше 5 лет;

  • аутоиммунные заболевания;

  • беременность, грудное вскармливание (для фазы инициации и набора дозы).

Временные противопоказания для проведения АСИТ:

  • обострение основного заболевания;

  • любые интеркуррентные заболевания в стадии обострения;

  • вакцинация.

Дополнительные противопоказания для СЛИТ:

  • персистирующие повреждения слизистой оболочки ротовой полости: язвы, эрозии;

  • персистирующие заболевания пародонта;

  • открытая рана в полости рта;

  • недавняя экстракция зуба, другие хирургические манипуляции в полости рта;

  • гингивит, сопровождающийся кровоточивостью десен;

  • тяжелые воспалительные заболевания слизистой оболочки ротовой полости.

Окончательное решение о назначении АСИТ должно быть основано на индивидуальной оценке любого медицинского состояния и риска/пользы для каждого пациента [4].

Тяжелые иммунопатологические состояния и иммунодефициты

Теоретически возможно отрицательное влияние АСИТ на пациентов с иммунными расстройствами или на пациентов, принимающих иммунодепрессанты. Согласно рекомендациям ЕААСI (позиционное письмо 2015 г.) АСИТ при данном состоянии следует назначать в зависимости от индивидуальных особенностей пациентов. Поскольку первичные иммунодефициты имеют различные клинические варианты и механизмы развития, при принятии решения следует в первую очередь руководствоваться оценкой потенциальной эффективности и безопасности. Следует рассматривать иммунодефицит в качестве относительного противопоказания к АСИТ.

Сопутствующая терапия иммунодепрессантами также рассматривается как относительное противопоказание, поскольку данная группа препаратов может негативно повлиять на результат АСИТ [4].

ВИЧ-инфекция без тяжелых симптомов (категории А и B, "ранней и средней стадии", согласно классификации CDC от 1993 г.) и при условии, что число CD4+ T-лимфоцитов >200 клеток/мкл, является относительным противопоказанием к проведению АСИТ, и должна быть проведена оценка в индивидуальном порядке. На основании ограниченных данных не выявлено отрицательного влияния АСИТ на течение ВИЧ-инфекции, более частые или более тяжелые побочные эффекты не ожидаются. Также не ожидается снижение эффективности АСИТ, но это не может быть исключено. Было показано, что АСИТ может провоцировать умеренное увеличение вирусной нагрузки и ограниченную пролиферацию Т-клеток, однако эти изменения купировались самостоятельно на фоне продолжения активной антиретровирусной терапии [5]. Нецелесообразно проведение АСИТ на стадии вторичных заболеваний при ВИЧ-инфекции, характеризующейся присоединением оппортунистических инфекций, и онкологической патологии. Стадия С (СПИД) (по CDC-классификации 1993 г.) - абсолютное противопоказание для АСИТ [4, 6]. Следует подчеркнуть, контролируемых исследований АСИТ у ВИЧ-инфицированных пациентов проведено немного, и текущие опубликованные исследования АСИТ у ВИЧ-инфицированных пациентов проведены на фоне активной антиретровирусной терапии. Нет исследований о безопасности АСИТ ВИЧ-инфицированных пациентов, не получающих антиретровирусную терапию.

Онкологические заболевания

Контролируемые исследования, касающиеся эффективности и безопасности АСИТ у пациентов, имеющих онкологическую патологию, отсутствуют. Повышенный риск обострения злокачественной онкологической патологии в результате АСИТ является теоретическим, так как нет информации относительно ухудшения состояния при злокачественных новообразованиях после АСИТ. Не ожидается появления более частых или серьезных нежелательных явлений при проведении АСИТ. Не ожидается, что АСИТ будет менее эффективной у пациентов со злокачественными новообразованиями. Однако злокачественные новообразования рассматриваются как абсолютное противопоказание к АСИТ [4].

В то же время проведение АСИТ рекомендована у пациентов из группы высокого риска (жизнеугрожающие реакции) с аллергией к ядам перепончатокрылых. Длительная ремиссия и врачебный консилиум с онкологом позволяют рассмотреть вопрос об АСИТ при комплексной оценке показаний и рисков [7].

Тяжелые психические расстройства

Тяжелые психические расстройства затрудняют сотрудничество врача и пациента, тем самым способствуя низкой эффективности АСИТ. Кроме того, ставится под сомнение безопасность АСИТ у этой группы пациентов. АСИТ не следует назначать пациентам, не способным к общению и взаимодействию с врачом, так как они не смогут сообщить о ранних симптомах системной реакции. СЛИТ пациентам с психическими заболеваниями может быть предложена только в случае, если она будет проводиться под контролем опекуна [4, 8].

Невозможность соблюдения пациентом схемы назначенного лечения

АСИТ будет менее эффективной у пациентов с проблемами приверженности к лечению и плохим комплайенсом, так как приверженность пациентов к лечению необходима не только для того, чтобы гарантировать максимальную эффективность, но и избежать связанных с АСИТ побочных эффектов. Низкий комплайенс может стать причиной прекращения АСИТ. Не рекомендуется проводить АСИТ, если существует подозрение на отсутствие сотрудничества между врачом и пациентом [9]. Часто пациенты мало информированы о методе АСИТ, его результатах и вероятности возникновения побочных реакций, что в итоге может привести к ряду неудач. В одном из исследований было продемонстрировано, что значительная часть пациентов (37%) ожидала в результате АСИТ полного выздоровления, другие (18%) предполагали, что улучшение возникнет в течение нескольких дней от начала лечения, и только треть (32%) пациентов, получавших АСИТ, были информированы о рисках, связанных с данным видом лечения. Кроме того, с течением времени пациенты забывают информацию, связанную с АСИТ, осведомленность пациентов в течение первых 6 мес терапии выше, чем пациентов, получавших лечение более длительно [10].Согласно проведенным исследованиям, причинами низкого комплайенса при проведении АСИТ являются: недостаточная информированность пациента (отсутствие понимания профилактического эффекта АСИТ); особенности лечения (нежелательные явления, отсутствие положительной динамики от лечения); значительные временные затраты, в частности при ПКИТ, и недостаточная интеграция лечения в повседневную жизнь; недостаточное консультирование пациента врачом, в частности в связи с финансовыми тратами [8].

Лечение бета-блокаторами, включая топические формы

β-Блокаторы препятствуют действию эпинефрина на β-рецепторы в случае развития анафилаксии. Следовательно, лечение с помощью эпинефрина может быть неэффективным при развитии анафилаксии в ходе проведения АСИТ. У пациентов с симптомами респираторной аллергии прием бета-блокаторов считается относительным противопоказанием для АСИТ. По возможности бета-блокаторы у пациентов, получающих АСИТ, должны быть заменены на альтернативные препараты. В случае если бета-блокаторы являются необходимыми и нет эффективной замены, необходимо провести тщательную оценку и взвесить индивидуальный риск и пользу для конкретного пациента. У пациентов, получающих бета-блокаторы, нежелательные явления не встречаются чаще, однако могут быть более серьезными. Нет данных о меньшей эффективности АСИТ у таких пациентов [4]. При проведении СЛИТ риски системных реакций и частота применения эпинефрина минимальны, поэтому проведение АСИТ возможно при тщательной оценке "риск/польза" [9].

Прием ингибиторов ангиотензинпревращающего фермента

Ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента (АПФ) блокируют превращение ангиотензина I в ангиотензин II, что приводит к вазодилатации. В случае развития анафилаксии будет сложно противодействовать гипотонии при ингибированной ренин-ангиотензин-альдостероновой системе. У пациентов, получающих ингибиторы АПФ, нежелательные явления не встречаются чаще, однако могут быть более серьезными. Нет доказательств того, что АСИТ ингаляционными аллергенами менее эффективна у этих пациентов. Нет доказательств того, что АСИТ ядами также менее эффективна у этих пациентов. По возможности ингибиторы АПФ должны быть заменены альтернативными препаратами. Если ингибиторы АПФ необходимы и эффективная замена невозможна, применение АСИТ у такой категории пациентов должно быть оценено с позиций индивидуального соотношения "риск/польза" [4].

Прием ингибиторов моноаминоксидазы

При оказании неотложной медицинской помощи эпинефрин может вызвать тяжелую форму гипертензии или тахикардии у пациентов, принимающих ингибиторы моноаминоксидазы (МАО). Нет данных о более частых или серьезных нежелательных явлениях при проведении АСИТ у пациентов, получающих ингибиторы МАО. Нет данных о меньшей эффективности АСИТ у таких пациентов. Следует с осторожностью применять эпинефрин у пациентов, получающих ингибиторы МАО. Ингибиторы МАО должны быть заменены альтернативными препаратами. Если ингибиторы МАО необходимы и эффективная замена невозможна, применение АСИТ расценивают индивидуально с позиции "риск/польза" [4].

Отсутствие контроля бронхиальной астмы (FEV1 менее 70% на фоне адекватной фармакотерапии, в том числе тяжелая форма бронхиальной астмы)

ПКИТ у пациентов с бронхиальной астмой. Несмотря на то что летальные случаи, связанные с АСИТ при бронхиальной астме, встречаются крайне редко, вопросы безопасности лечения при данном состоянии являются крайне важными. Не ожидается появления какого-либо отрицательного влияния АСИТ на течение бронхиальной астмы, однако при плохо контролируемой астме и, возможно, при частично контролируемой астме может возникнуть кратковременное ухудшение. Было доказано, что неконтролируемая астма является фактором риска для развития более частых и серьезных нежелательных явлений, связанных с АСИТ [10]. Данные по контролируемой астме являются противоречивыми. Ожидается, что АСИТ будет не менее эффективной у пациентов с тяжелой или неконтролируемой астмой.

СЛИТ у пациентов с бронхиальной астмой. Не ожидается какого-либо отрицательного воздействия СЛИТ на течение бронхиальной астмы. Нет данных, свидетельствующих о более частых или серьезных нежелательных явлениях, связанных с наличием бронхиальной астмы. Есть ограниченное количество данных по эффективности СЛИТ при тяжелой и неконтролируемой астме. Не ожидается, что СЛИТ будет менее эффективной при тяжелой форме астмы.

АСИТ ядами у пациентов с бронхиальной астмой. Не ожидается какого-либо отрицательного воздействия иммунотерапии ядами на течение бронхиальной астмы. Нет данных, свидетельствующих о более частых или серьезных нежелательных явлениях при иммунотерапии ядами у пациентов с бронхиальной астмой. Не ожидается, что иммунотерапия ядами будет менее эффективной при тяжелой форме астмы.

Плохо контролируемая/неконтролируемая астма является абсолютным (но, возможно, временным) противопоказанием для АСИТ. Частично контролируемая астма является относительным противопоказанием для АСИТ.

При хорошо контролируемой бронхиальной астме, независимо от степени тяжести и объема базисной терапии, АСИТ рекомендована. Практической рекомендацией у пациентов с бронхиальной астмой является обязательное проведение оценки функции внешнего дыхания (спирометрии) перед началом АСИТ. Динамическую оценку данных пикфлоуметрии требуется проводить в течение всего периода лечения. При проведении АСИТ при частично-контролируемом течении бронхиальной астмы и наличии персистирующих симптомов перед каждой инъекцией необходимо оценить текущий уровень контроля заболевания и провести пикфлоуметрию. При уменьшении пиковой скорости выдоха более чем на 20% от лучшего индивидуального значения очередную инъекцию следует отложить, даже если это значение находится в пределах возрастных норм [4, 9, 11].

Сердечно-сосудистые заболевания, при которых возможны осложнения при использовании эпинефрина (Адреналина )

Нет данных об отрицательном влиянии АСИТ на сердечно-сосудистые заболевания. Нет доказательств того, что побочные эффекты у этих пациентов появляются чаще или они более тяжелые. Тем не менее алгоритм лечения побочных эффектов у этих пациентов может потребовать изменений. Нет данных о меньшей эффективности АСИТ у таких пациентов. Нестабильные или прогрессирующие сердечно-сосудистые заболевания являются относительными противопоказаниями для АСИТ ингаляционными аллергенами. Практической рекомендацией является тщательная оценка тяжести и текущей терапии сердечно-сосудистого заболевания перед началом АСИТ совместно с кардиологом [4].

Дети младше 5 лет

Негативного влияния АСИТ не ожидается. Нежелательные реакции при АСИТ случаются не чаще, и реакции не являются более тяжелыми в этой возрастной группе. Никакой разницы в профиле безопасности СЛИТ у детей в возрасте младше 5 лет и у детей старшего возраста установлено не было. Нет доказательств того, что АСИТ является менее эффективной в этой возрастной группе. Тем не менее требуется большая доказательная база. АСИТ не проводится у детей от 0 до 2 лет, этот возраст является абсолютным противопоказанием.

В некоторых клинических исследованиях показана эффективность и безопасность СЛИТ у детей в возрасте от 3 лет [12, 13]. Однако таких исследований проведено немного, и требуются дополнительные клинические исследования для подтверждения эффективности и долгосрочной клинической пользы применения АСИТ у детей раннего возраста. Именно поэтому дошкольный возраст (2–5 лет) является относительным противопоказанием для АСИТ. АСИТ у пациентов этого возраста следует рассматривать в качестве терапевтической опции только в ограниченных случаях [4].

Данные рекомендации обусловлены особенностями созревания иммунной системы у детей раннего возраста, а также со сложившейся практикой клинических исследований. Большинство проведенных исследований с целью изучения эффективности и безопасности АСИТ начинается с возраста 18 лет, поэтому в педиатрической практике накоплено меньше данных. Иммунная система младенца является относительно незрелой. Активное созревание ее происходит в течение первых лет жизни ребенка и напрямую связано с воздействием множества инфекционных и неинфекционных факторов. В раннем детском возрасте имеется высокая частота пищевой аллергии, что связано со сдвигом иммунной системы в сторону Th2-ответа. Именно в этом возрасте впервые дебютируют и другие аллергические заболевания [15]. В то же время функциональная активность врожденного, адаптивного и местного иммунитета у детей раннего возраста слабее, чем у детей старшего возраста и взрослых [16, 17]. Это может обусловливать и несовершенство процессов формирования иммунологической толерантности. В связи с этим предполагается, что при проведении АСИТ у детей младшего возраста эффективный ответ может не быть достигнут [18].

Согласно рекомендациям согласительного документа по АСИТ у детей ассоциацией детских аллергологов и иммунологов России возраст 5 лет рассматривается как нижний предел для инициации данного вида терапии. Проведение АСИТ в этой возрастной группе младше 5 лет невозможно юридически. Данная рекомендация основывается на практических соображениях, так как дети в возрасте до 5 лет имеют определенные сложности в отношении комплайентности приема. Дети до 5 лет не могут своевременно сообщить о ранних симптомах нежелательных явлений, что может привести к несвоевременному оказанию помощи и пересмотру схемы лечения [8]. У детей старше 5 лет показания и противопоказания к проведению АСИТ такие же, как и у взрослых. Клинические исследования АСИТ у детей старше 5 лет показали достаточно высокую клиническую эффективность как ПКИТ, так и СЛИТ при аллергическом рините и бронхиальной астме, что может косвенно свидетельствовать об идентичности механизмов иммунного ответа у взрослых и детей старшего возраста [9, 19–24].

Аутоиммунные заболевания

Не существует доказательств того, что АСИТ вызывает аутоиммунные заболевания или аутоиммунные нарушения. Данные некоторых докладов, указывающие на взаимосвязь между ПКИТ и аутоиммунными заболеваниями, не подтверждаются большим реестром обсервационных исследований. Случаи развития синдрома Шегрена, рассеянного склероза, перикардита, васкулита, ревматоидного артрита и склеродермии в течение первого года АСИТ у пациентов, не имевших признаков аутоиммунного заболевания до инициации начала АСИТ, являются спорадическими [25, 26].

Описано несколько случаев возможной взаимосвязи аутоиммунных заболеваний и АСИТ лечебными аллергенами на основе алюминия. Однако в контролируемых исследованиях не было выявлено повышенного риска дебюта аутоиммунных заболеваний на фоне АСИТ. Нет данных о меньшей эффективности АСИТ у пациентов с аутоиммунными заболеваниями. Следует соблюдать осторожность при назначении АСИТ пациентам с аутоиммунными заболеваниями. В случае развития аутоиммунного заболевания на фоне АСИТ, терапию следует прекратить. АСИТ противопоказана пациентам с аутоиммунными заболеваниями в активной стадии. Таким образом, аутоиммунные заболевания в стадии ремиссии являются относительным противопоказанием для АСИТ. Аутоиммунные заболевания в стадии обострения являются абсолютным противопоказанием [4].

Беременность, грудное вскармливание (для фазы инициации и набора дозы)

Безопасность инициации и продолжение АСИТ во время беременности, а также влияние АСИТ на развитие атопии у потомства в настоящее время активно изучаются. При исследовании потенциальных тератогенных и эмбриотоксических свойств лечебных аллергенов не было получено статистически достоверных данных, свидетельствующих об их влиянии на сперматогенез, овариогенез или фертильность. У животных применение лечебных аллергенов не приводило к летальному, токсическому или тератогенному действию на плод, не изменяло функциональную активность плаценты и обмен между матерью и плодом питательными веществами и газообмен, не приводило к изменению активности миометрия и рождению плода с выраженными аномалиями развития.

Также не было получено данных о нежелательном влиянии аллергенов на плод у женщин, получавших АСИТ во время беременности. В четырех исследованиях изучали продолжение АСИТ во время беременности, в двух оценивали инициацию АСИТ во время беременности и в пяти наблюдали эффект АСИТ на развитие атопии у потомства. Никаких значимых различий среди беременных женщин, получающих АСИТ (ПКИТ или СЛИТ) лечебными аллергенами, по сравнению с контролем не было найдено: ни по частоте недоношенности, ни по гипертензии/протеинурии, ни по врожденным порокам развития или перинатальной смертности новорожденных. Доступные данные не показывают снижения развития атопических заболеваний у потомства в результате АСИТ в период беременности. Не найдено публикаций, что АСИТ у женщин, планирующих беременность, приводит к предотвращению аллергии у ребенка.

Таким образом, существуют веские доказательства отсутствия повышенного риска при проведении АСИТ во время беременности. Не ожидаются более частые и тяжелые побочные реакции во время беременности, если поддерживающая фаза хорошо переносится. Однако необходимо учитывать возможный риск развития системных реакций во время проведения АСИТ, которые сами по себе могут привести к прерыванию беременности, а также потребовать дополнительного введения таких препаратов, как эпинефрин. Развитие анафилаксии может поставить под угрозу исход беременности. Нет данных о меньшей эффективности АСИТ при беременности. Нет данных о снижении эффективности АСИТ при ее начале во время беременности. Начало АСИТ во время беременности кажется безопасным, но требуется больше доказательств. Согласно клиническим рекомендациям тактика врача должна быть следующей. Абсолютно противопоказано начинать АСИТ во время беременности. Согласно данным исследований, продолжение АСИТ во время беременности является безопасным. Если беременность наступила во время проведения АСИТ и лечение хорошо переносится, АСИТ рекомендуется продолжать, но с осторожностью. Не рекомендуется начинать АСИТ во время грудного вскармливания [4, 29, 30].

Другие состояния, наличие которых может влиять на безопасность аллерген-специфической иммунотерапии

Эозинофильный эзофагит часто ассоциирован с пыльцевой аллергией и оральным аллергическим синдромом. Эозинофильный эзофагит может повышать риск развития нежелательных явлений, хотя имеющихся сведений на данный момент недостаточно. Как и при любом нестабильном течении аллергического заболевания, в том числе и эозинофильном эзофагите, нецелесообразно инициировать АСИТ. В период ремиссии эозинофильного эзофагита возможно применение ПКИТ. Использование СЛИТ противопоказано при эозинофильном эзофагите, так как имеется повышенный риск ухудшения заболевания из-за местного контакта аллергена с иммунными клетками слизистой пищевода [31, 32].

Хронические вирусные инфекции (гепатит В или С в неактивной стадии) не рассматриваются в качестве противопоказаний для АСИТ [4].

Наличие в анамнезе анафилактического шока при проведении АСИТ (для подкожной АСИТ). У пациентов с тяжелыми системными реакциями (анафилаксией) в анамнезе и выраженной сенсибилизацией рекомендуется оценивать данный показатель для прогнозирования спонтанной анафилаксии и вероятного системного мастоцитоза. Дегрануляция тучных клеток может быть спонтанной, и у некоторых пациентов повышенный уровень сывороточной триптазы свидетельствует о повышенном риске системных реакций [33]. Пациентам с серьезными системными реакциями при проведении ПКИТ в качестве альтернативы может быть предложена СЛИТ. При ПКИТ анафилаксия у детей встречается реже, чем у взрослых. При СЛИТ анафилаксия крайне редка, так как сублингвальный способ более безопасен [9].

Временные противопоказания для проведения аллерген-специфической иммунотерапии

Обострение основного заболевания и любых интеркуррентных заболеваний в стадии обострения

При соблюдении инструкции большинство пациентов хорошо переносят и ПКИТ, и СЛИТ. В случае обострения любого аллергического заболевания или сопутствующей патологии АСИТ прерывают до полного купирования обострения. У высоко чувствительных пациентов рекомендованы щадящее лечение и индивидуальная корректировка дозы аллергена при необходимости более осторожного введения во избежание обострения аллергического заболевания [12, 34].

Вакцинация и аллерген-специфическая иммунотерапия

Вопрос вакцинации при условии, что АСИТ имеет длительный протокол, особенно актуален для пациентов детского возраста. Вакцинация против инфекционных заболеваний должна проводиться в сроки, максимально приближенные к календарю вакцинации. Желательно провести плановую вакцинацию за 1 мес до начала АСИТ или, при наличии такой возможности, после окончания терапии. При проведении предсезонного или предсезонно-сезонного протокола желательно проведение вакцинации в осенний период. В случае круглогодичного протокола принятие решение о вакцинации проводится в соответствии с клиническими рекомендациями или инструкциями по лечебному аллергену. Необходимость проведения вакцинации во время АСИТ определяет лечащий врач.

При круглогодичных протоколах АСИТ и необходимости вакцинации делают перерыв в лечении. Вакцинация не проводится на I этапе наращивания дозы. При долгосрочном проведении АСИТ (в режиме "без остановки" в течение 3 и более лет) на II этапе (поддерживающая терапия) возможно проведение вакцинации при соблюдении следующих условий.

При проведении инъекционной АСИТ:

  • вакцинация не проводится на этапе набора дозы;

  • на этапе поддерживающей терапии инъекцию АСИТ и профилактическую вакцинацию в один день не проводят, вакцинация проводится не ранее чем через 7–10 дней после инъекции аллергена;

  • очередную инъекцию аллергена осуществляют не ранее чем через 3 нед после вакцинации (при отсутствии побочных реакций на введение вакцины).

При проведении неинъекционной (сублингвальной) АСИТ:

  • вакцинация не проводится на этапе набора дозы;

  • на этапе поддерживающей терапии прием лечебного аллергена временно прерывают: за 3 дня до, в день введения вакцины и в течение 10–14 дней после вакцинации [34].

Дополнительные противопоказания для сублингвальной иммунотерапии

Орофарингеальные инфекции и локальные поражения в ротовой полости (эрозии, язвы, гингивиты, стоматиты, пародонтиты и т.д.) могут быть потенциальными факторами риска при проведении СЛИТ. Данные состояния нельзя оставлять без внимания, так как дефекты слизистой могут снизить переносимость аллергена из-за возможного системного проникновения в кровоток через эрозии, тем самым повышается риск нежелательных явлений. Кроме того, возможно ухудшение течения инфекционного процесса вследствие местных иммунных реакций в результате локального действия аллергена. В большинстве инструкций прописано, что данные состояния являются временным противопоказанием для СЛИТ. Практической рекомендацией является временное прерывание АСИТ до полного купирования инфекционного процесса и заживления слизистой [8, 35, 36].

Таким образом, к "абсолютным" противопоказаниям относятся неконтролируемая бронхиальная астма, активные злокачественные новообразования, СПИД, возраст ребенка младше двух лет. Кроме того, беременность является "абсолютным" противопоказанием для начала АСИТ.

К "относительным" противопоказаниям относятся частично контролируемая астма, использование блокаторов β2 -адренорецепторов и ингибиторов АПФ, сердечно-сосудистые заболевания, ВИЧ-инфекция, иммунодефициты и употребление иммунодепрессивных препаратов, психические расстройства.

При назначении АСИТ следует в обязательном порядке учитывать индивидуальные особенности пациентов и тщательно взвешивать в каждом случае соотношение "риск/польза", исходя из соображений целесообразности АСИТ. Проведение АСИТ пациенту с относительными противопоказаниями оправдано, если польза превышает возможный риск ухудшения состояния.

Список литературы

  1. Павлова К.С. Новые возможности аллерген-специфической иммунотерапии // Педиатрия (Прил. к журн. Consilium Medicum). 2017. № 4. C. 56–58.

  2. Аллергология. Федеральные клинические рекомендации // Аллергенспецифическая иммунотерапия. 2013. С. 124.

  3. Курбачева О.М., Павлова К.С., Галицкая М.А. Клинические противопоказания к АСИТ // Российский аллергологический журнал. 2017. Т. 2, № 14. C. 10–21.

  4. Pitsios C., Demoly P., Bilo M.B. et al. Clinical contraindications to allergen immunotherapy: an EAACI position paper // Allergy. 2015. Vol. 70, N. 8. P. 897–909.

  5. Randhawa I.S., Junaid I., Klaustermeyer W.B. Allergen immunotherapy in a patient with human immunodeficiency virus: effect on T-cell activation and viral replication // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2007. Vol. 98, N. 5. P. 495–497.

  6. Iemoli E., Borgonovo L., Fusi A. et al. Sublingual allergen immunotherapy in HIV-positive patients // Allergy. 2016. Vol. 71, N. 3. P. 412–415.

  7. Aeberhard J., Haeberli G., Muller U.R. et al. Specific immunotherapy in hymenoptera venom allergy and concomitant malignancy: a retrospective follow-up focusing on effectiveness and safety // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. 2017. Vol. 27, N. 6. P. 370–377.

  8. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI allergen immunotherapy user`s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  9. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 c.

  10. Senna G.E., Makatsori M., Schiappoli M. et al. Subcutaneous allergen specific immunotherapy: best clinical practice as cornerstone for future development // Eur. Ann. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 43, N. 5. P. 135–140.

  11. Cox L., Lаrenas-Linnemann D., Lockey R.F. et al. Speaking the same language: The World Allergy Organization Subcutaneous Immunotherapy Systemic Reaction Grading System // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 125, N. 3. P. 569–574.

  12. Sanchez-Borges M., Bernstein D.I., Calabria C. Subcutaneous Immunotherapy Safety: Incidence per Surveys and Risk Factors // Immunol. Allergy Clin. North. Am. 2020. Vol. 40, N. 1. P. 25–39.

  13. Fiocchi A., Pajno G., La Grutta S. et al. Safety of sublingual-swallow immunotherapy in children aged 3 to 7 years // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2005. Vol. 95, N. 3. P. 254–258.

  14. Agostinis F., Tellarini L., Canonica G.W. et al. Safety of sublingual immunotherapy with a monomeric allergoid in very young children // Allergy. 2005. Vol. 60. P. 133.

  15. Simon A.K., Hollander G.A., McMichael A. Evolution of the immune system in humans from infancy to old age // Proc. Biol. Sci. 2015. Vol. 282, N. 1821. Art 20143085.

  16. Yu J.C., Khodadodi H., Malik A. et al. Innate immunity of neonates and infants // Front. Immunol. 2018. Vol. 9. P. 1759.

  17. Belderbos M., Levy O., Bont L. Neonatal innate immunity in allergy development // Curr. Opin. Pediatr. 2009. Vol. 21, N. 6. P. 762–769.

  18. Arasi S., Corsello G., Villani A. et al. The future outlook on allergen immunotherapy in children: 2018 and beyond // Ital. J. Pediatr. 2018. Vol. 44, N. 1. P. 80.

  19. Bousquet J., Pfaar O., Togias A. et al. 2019 ARIA Care pathways for allergen immunotherapy // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 1. P. 2087–2102.

  20. Dhami S., Nurmalatov U., Arasi S. et al. Allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review and meta-analysis // Allergy. 2017. Vol. 72, N. 11. P. 1597–1631.

  21. Radulovic S., Calderon M.A., Wilson D. et al. Sublingual immunotherapy for allergic rhinitis // Cochrane Database Syst. Rev. 2010. Vol. 12. CD002893.

  22. Masuyama K., Okamoto Y., Okamiya K. et al. Efficacy and safety of SQ house dust mite sublingual immunotherapy-tablet in Japanese children // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 12. P. 2352–2363.

  23. Frati F., Scurati S., Puccinelli P. et al. Development of an allergen extract for sublingual immunotherapy — evaluation of Staloral // Expert. Opin. Biol. Ther. 2009. Vol. 9, N. 9. P. 1207–1215.

  24. Valovirta E., Petersen T.H., Piotrowska T. et al. Results from the 5-year SQ grass sublingual immunotherapy tablet asthma prevention (GAP) trial in children with grassмpollen allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2018. Vol. 141, N. 2. P. 529–538.

  25. Turkcapar N., Kinikli G., Sak S.D. et al. Specific immunotherapy-induced Sjogren’s syndrome // Rheumatol. Int. 2005. Vol. 26, N. 2. P. 182–184.

  26. Nakajima H., Ohtsuka S., Nishina T. et al. Multiple sclerosis after allergen-specific immunotherapy and influenza vaccination // Eur. Neurol. 2003. Vol. 50, N. 4. P. 248–249.

  27. Quirce S., Fernandez Rivas M., Losada E. et al. Recurrent pericarditis: a rare complication of allergen immunotherapy // Allergy. 1992. Vol. 47, N. 4. Pt. 1. P. 343–345.

  28. Ghoreschi K., Fischer J., Biedermann T. Manifestation of rheumatoid arthritis during subcutaneous allergen-specific immunotherapy with bee venom // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130, N. 6. P. 1438–1440.

  29. Oukhman P., Kim H.L., Ellis A.K. Allergen immunotherapy in pregnancy // Allergy Astma Clin. Immunol. 2015. Vol. 11. P. 31.

  30. Shaikh W., Shaiks S. A prospective study on the safety of sublingual immunotherapy in pregnancy // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 741–743.

  31. Egan M., Atkins D. What is the relationship between eosinophilic esophagitis (EoE) and aeroallergens? Implications for allergen immunotherapy // Curr. Allergy Asthma Rep. 2018. Vol. 18, N. 8. P. 43.

  32. Cafone J., Capucilli P., Hill D.A. et al. Eosinophilic esophagitis during sublingual and oral allergen immunotherapy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 19, N. 4. P. 350–357.

  33. Winslow A.W., Turbyville J.C., Sublett J.W. et al. Comparison of systemic reactions in rush, cluster, and standard-build aeroallergen immunotherapy // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2016. Vol. 117, N. 5. P. 542–545.

  34. Федеральные клинические рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии // РААКИ. 2013. C. 13.

  35. Pfaar O., Bachert C., Bufe A. et al. Guideline on allergen-specific immunotherapy in IgE-mediated allergic diseases: S2k Guideline of the German Society for Allergology and Clinical Immunology (DGAKI), the Society for Pediatric Allergy and Environmental Medicine (GPA), the Medical Association of German Allergologists (AeDA), the Austrian Society for Allergy and Immunology (OGAI), the Swiss Society for Allergy and Immunology (SGAI), the German Society of Dermatology (DDG), the German Society of Oto- Rhino-Laryngology, Head and Neck Surgery (DGHNO-KHC), the German Society of Pediatrics and Adolescent Medicine (DGKJ), the Society for Pediatric Pneumology (GPP), the German Respiratory Society (DGP), the German Association of ENT Surgeons (BV-HNO), the Professional Federation of Paediatricians and Youth Doctors (BVKJ), the Federal Association of Pulmonologists (BDP) and the German Dermatologists Association (BVDD) // Allergo J. Int. 2014. Vol. 23, N. 8. P. 282–319.

  36. Calderon M.A., Simons F.E., Mailing H.J. et al. Sublingual allergen immunotherapy: mode of action and its relationship with the safety profile // Allergy. 2012. Vol. 67, N. 3. P. 302–311.

Глава 8. Безопасность аллерген-специфической иммунотерапии. Побочные реакции и меры по их предупреждению

АСИТ связана с определенным риском развития побочных реакций, о котором должен быть информирован каждый пациент до начала ее проведения. АСИТ может вызвать побочные реакции в связи с наличием в экстракте аллерген-активных компонентов. Неаллергенные компоненты экстракта (например, пигменты и др.) могут вызвать неиммунные или иммуннотоксические эффекты. В связи с этим наиболее перспективными считаются рекомбинантные лечебные и диагностические аллергены, для которых характерны: стабильность аллергенов; стандартизация; содержание в составе только антигенных компонентов; отсутствие микробной контаминации; минимальный риск побочных эффектов и т.д. [1, 2].

Наиболее часто реакции возникают при проведении ПКИТ, пероральный метод АСИТ характеризуется лучшим профилем безопасности.

При проведении АСИТ могут возникнуть различные побочные реакции, которые можно подразделить на:

  • местные;

  • системные.

Также можно выделить не-IgE-опосредованные и IgE-опосредованные реакции.

К не-IgE-опосредованным реакциям относят такие состояния, как:

  • астения, головная боль;

  • обострение доклинического течения атопического дерматита;

  • замедленные реакции по типу сывороточной болезни (артралгия, миалгия, крапивница, тошнота, аденопатия, лихорадка), что требует отмены АСИТ.

Отдельно можно выделить вегетативно-сосудистые реакции.

8.1. Вегетативно-сосудистые реакции

Вегетативно-сосудистые реакции (вазовагальные реакции), в отличие от анафилаксии, не проявляются тахикардией, гиперемией и зудом кожи, крапивницей, ангионевротическим отеком и бронхоспазмом. Для вазовагальных реакций характерна взаимосвязь с психогенным триггером (медицинское обследование/процедура, страх перед инъекцией). Клинически у такого пациента отмечается брадикардия, бледность кожных покровов, артериальная гипотензия. Практической рекомендацией является тщательный сбор анамнеза с выявлением этих реакций ранее.

В случае развития вазовагальных реакций необходимо:

  • уложить пациента, приподняв нижние конечности;

  • ввести п/к атропин 0,3–0,5 мл каждые 10 мин (максимум - 2 мг взрослым и 1 мг детям);

  • ввести внутривенно раствор NaCl до нормализации артериального давления [3].

8.2. Местные реакции

Местные реакции - это реакции, возникающие в области введения аллергена. Местные реакции встречаются как при ПКИТ (эритема, зуд, уплотнение и отек в месте инъекции лечебного аллергена), так и при СЛИТ (орофарингеальный зуд, отек, жжение слизистой ротовой полости, языка и подъязычной области, першение в горле) [4].

Гастроинтестинальные симптомы (рвота, диарея, изжога, боли в животе), ассоциированные со СЛИТ, могут быть квалифицированы как местные реакции, если только они ассоциированы с оромукозальными симптомами.

Если помимо оромукозальных проявлений наблюдаются другие системные симптомы, то состояние расценивается как системная реакция.

При СЛИТ в большинстве случаев местные реакции проходят самостоятельно в течение 15–30 мин после приема аллергена, при ПКИТ - в течение суток, однако в некоторых случаях могут сохраняться более длительное время.

Классификация местных побочных реакций при сублингвальной иммунотерапии

Легкая степень - симптомы не беспокоят пациента, не требуют симптоматического лечения или прекращения СЛИТ.

Умеренная степень - симптомы беспокоят пациента, не требуют симптоматического лечения или прекращения СЛИТ.

Тяжелая степень - симптомы причиняют беспокойство, требуют симптоматического лечения и прекращения СЛИТ [5].

Тактика лечения - большинство СЛИТ-ассоциированных местных реакций наблюдаются в течение короткого периода в самом начале лечения. Они прекращаются в течение нескольких дней или недель без какого-либо медикаментозного вмешательства. С целью уменьшения выраженности местных реакций симптоматически возможно назначение антигистаминных препаратов второго поколения, применение препаратов данной группы на эффективность АСИТ не влияет.

Тактика в отношении проведения АСИТ. Появление выраженных и длительно сохраняющихся местных реакций является поводом для пересмотра индивидуального графика проведения АСИТ.

Местная реакция при СЛИТ (рис. 8-1).

image
Рис. 8-1. Местная побочная реакция на сублингвальную иммунотерпию

Классификация местных побочных реакций при подкожной иммунотерапии

Местные реакции при ПКИТ считаются незначительными , если у больного сразу после введения экстракта аллергена возникают гиперемия, отек и волдырь диаметром менее 5 см для взрослых или менее 3 см для детей.

Тактика лечения. Пузырь со льдом на область местной реакции.

Тактика в отношении проведения АСИТ. Продолжить АСИТ без изменений.

Местные реакции при ПКИТ считаются выраженными , если у больного сразу после введения экстракта аллергена возникают гиперемия, отек и волдырь диаметром более 5 см для взрослых или более 3 см у детей или волдырь, не исчезающий более 24 ч.

Тактика лечения. Пероральные антигистаминные препараты (блокаторы H1 -гистаминовых рецепторов второго поколения). В случае неэффективности пероральных антигистаминных препаратов - пероральные ГК: 1–2 мг/кг в сутки в течение 2–3 дней, пузырь со льдом на область местной реакции.

8.3. Тактика в отношении проведения аллерген-специфической иммунотерапии

Фаза начальной терапии (набор дозы): во время следующей инъекции необходимо повторить предшествующую, хорошо переносимую дозу. Если не наблюдается нежелательная реакция, то во время последующих инъекций продолжить увеличение дозы.

Фаза поддержания дозы: во время следующей инъекции необходимо ввести только половину стандартной дозы. Если не наблюдается нежелательная реакция, во время последующих инъекций вернуться к полной дозе.

При наличии выраженных, длительно сохраняющихся, местных реакциях лечащий врач может изменить схему введения аллергена, увеличив промежутки между очередными инъекциями. Тщательно соблюдают технику инъекций, так как введение аллергена внутрикожно или внутримышечно способствует развитию местных и системных реакций [6, 7].

Прием антигистаминных препаратов во время проведения АСИТ существенно снижает вероятность развития и выраженность местных реакций, но не может полностью предотвратить развитие системных реакций. Профилактическое назначение Н1 -антигистаминных препаратов и эпинефрина не рекомендуется, поскольку эти препараты угнетают местную реакцию, а ее выраженность иногда позволяет предсказать развитие тяжелых местных и системных реакций на последующее введение аллергена. Выраженные местные реакции вызывают опасения у пациентов, но для прогнозирования развития системных реакций их значимость подвергается сомнению. Большинство исследований свидетельствуют о том, что местные реакции не являются строгими предикторами системных реакций, вне зависимости от метода АСИТ. Тем не менее требуется тщательная оценка любой реакции, и они не должны оставаться без внимания специалиста [8, 9].

Местная реакция при ПКИТ (рис. 8-2).

image
Рис. 8-2. Местная побочная реакция на подкожную иммунотерапию (а, б)

8.4. Системные реакции

Системные реакции - это реакции, возникающие вне области введения аллергена. Как правило, системные реакции возникают при нарушении правил проведения АСИТ. Диапазон системных реакций может варьировать - от легких до угрожающих жизни или фатальной анафилаксии. Следует отметить, что системные реакции при АСИТ - явление довольно редкое при соблюдении всех правил проведения и соответствующих рекомендаций по безопасности. Как было отмечено выше, наличие и выраженность местных реакций не служат предвестником развития системных реакций. Известно, что некоторые пациенты, у которых возникли системные реакции во время проведения АСИТ, вообще не отмечали местных реакций. Наличие и выраженность местных реакций не являются предикторами системных реакций, какой бы метод АСИТ ни применялся. Нет исследований, в которых было бы доказано, что увеличение частоты местных реакций при проведении ПКИТ способно увеличить риск возможных будущих системных реакций. Так, некоторые пациенты, у которых возникли системные реакции во время проведения АСИТ, вообще не отмечали местных реакций. Однако появление выраженных и длительно сохраняющихся местных реакций является поводом для пересмотра индивидуального графика проведения АСИТ. Прием антигистаминных препаратов во время проведения АСИТ существенно снижает вероятность развития и выраженность местных реакций, но не может полностью предотвратить развитие системных реакций.

Системные реакции характеризуются генерализованными проявлениями и/или симптомами, возникающими вне места инъекции или приема препарата: покраснением кожи, крапивницей, зудом, отеком Квинке, бронхоспазмом, анафилаксией. Чаще наблюдаются при ПКИТ в течение нескольких минут после инъекции аллергена и в редких случаях - спустя 30 мин. Несмотря на то что тяжелые системные реакции редкие, они могут привести к летальному исходу, поэтому врач и медсестра всегда должны быть готовы оказать больному неотложную помощь. Системные побочные реакции у детей встречаются реже, чем у взрослых. Пациенты, проходящие курс АСИТ, всегда должны иметь при себе лекарства для снятия симптомов аллергии, такие как ГК, симпатомиметические и антигистаминные препараты. Пациент должен немедленно обратиться к врачу при возникновении зуда ладоней, рук, подошв ног, крапивницы, отека губ, гортани, сопровождающихся затрудненным глотанием и изменением голоса. Угрожающие жизни реакции требуют проведения интенсивной терапии и стационарного наблюдения в течение не менее 1 сут. При возникновении системных реакций обязательным является пересмотр программы АСИТ для данного пациента. Частота возникновения системных побочных реакций может быть обусловлена степенью сенсибилизации пациента и тяжестью основного заболевания, выбранным режимом введения аллергена, особенностью наращения его дозы, объемом сопутствующей терапии, чаще наблюдается у пациентов с БА и аллергической крапивницей.

По степени тяжести системные реакции разделяют на легкие и средней тяжести, они не угрожают жизни пациента, и тяжелые, угрожающие жизни.

Классификация системных побочных реакций при аллерген-специфической иммунотерапии

Легкие системные реакции проявляются заложенностью носа, чиханьем, зудом в носу, зудом век, покраснением глаз, слезотечением, першением в горле, сухим кашлем.

Реакции средней тяжести выражаются затруднением дыхания, кожным зудом и высыпаниями по всему телу.

Тяжелые реакции характеризуются бронхоспазмом, ангиоотеком, генерализованной крапивницей, отеком гортани, анафилактическим шоком. Частота развития легких и средней тяжести реакций, как правило, не более 10% при проведении ПКИТ ускоренным методом и существенно ниже - при проведении ПКИТ классическим методом. Частота развития тяжелых реакций при лечении респираторными лечебными аллергенами (бытовые и пыльцевые) крайне низка (менее 0,001%). Такие реакции возможны при АСИТ инсектными аллергенами.

Также к системным реакциям могут быть отнесены такие, как головная боль, повышение температуры тела до субфебрильных значений, боли в суставах, ощущение дискомфорта, появление которых связано с инъекциями аллергенов.

Классификация по степени тяжести системных реакций, принятая Европейской академией аллергологии и клинической иммунологии (EAACI).

0. Нет реакции или реакция неспецифическая (вероятно, это реакции, неопосредованные IgE, то есть дискомфорт, головная боль, боли в суставах и т.д.).

1. Легкие системные реакции. Локализованная крапивница, ринит или легкий бронхоспазм [снижение пиковой скорости выдоха (ПСВ) не более, чем на 20%].

2. Среднетяжелые системные реакции. Медленно (более 15 мин) развивающаяся крапивница и/или бронхоспазм (снижение ПСВ не более, чем на 40%).

3. Тяжелые, но не угрожающие жизни системные реакции. Быстрое (менее 15 мин) развитие генерализованной крапивницы ангиоотека и/или бронхоспазм (снижение ПСВ более, чем на 40%).

4. Анафилактический шок. Падение артериального давления, немедленно развивающаяся гиперемия кожных покровов, зуд, генерализованная крапивница, бронхоспазм, стридорозное дыхание (ангиоотек).

Чаще всего в практической аллергологии используется упрощенная градация оценки степени тяжести системных реакций.

1-я степень - появление крапивницы или симптомов со стороны респираторной системы.

2-я степень - возникновение симптомов бронхообструкции с крапивницей и абдоминальных симптомов и без них.

3-я степень - анафилактическая реакция [3].

Легкие системные реакции (локализованная крапивница, ринит или легкий бронхоспазм)

Тактика лечения. Пероральные антигистаминные препараты (блокаторы Н1 -гистаминовых рецепторов). Пероральные ГК: от 2 до 60 мг/сут в течение 2–3 дней.

Тактика в отношении проведения АСИТ. Фаза начальной терапии (набор дозы). Возврат на 1–2 шага назад в схеме набора дозы, если не наблюдается нежелательная реакция, то во время последующих инъекций продолжить увеличение дозы.

Фаза основного лечения (поддержания дозы). Сокращение дозы на 20–40%, и при хорошей переносимости, во время последующих инъекций, постепенно вернуться к полной дозе.

Системные реакции средней степени тяжести (ринит средней степени тяжести, крапивница средней степени тяжести)

Тактика лечения. Пероральные ГК от 2 до 60 мг/сут в течение 2 или 3 дней. Пероральные антигистаминные препараты (блокаторы Н1 -гистаминовых рецепторов).

Тактика в отношении проведения АСИТ. Фаза начальной терапии (набор дозы). Контроль симптомов. Во время следующей инъекции повторить предшествующую, хорошо переносимую дозу и при отсутствии нежелательных реакций, во время последующих инъекций, продолжить увеличение дозы.

Фаза основного лечения (поддержания дозы). Контроль симптомов. Во время следующей инъекции ввести только половину стандартной дозы и при хорошей переносимости, во время последующих инъекций, вернуться к полной дозе.

Системные реакции средней степени тяжести [бронхиальная астма средней степени тяжести (бронхоспазм или снижение пиковой скорости выдоха, сопровождающиеся или не сопровождающиеся кашлем или респираторным дистресс-синдромом)]

Тактика лечения. Рекомендовано две ингаляции β2 -агониста короткого действия (повторяются через 5–10 мин) или распыление через небулайзер β2 -агониста (сальбутамол в дозе 0,02 мл/кг 0,5% раствора).

Тактика в отношении проведения АСИТ. Фаза начальной терапии (набор дозы). Контроль симптомов. Во время следующей инъекции повторить предшествующую, хорошо переносимую дозу и при отсутствии нежелательных реакций, во время последующих инъекций, продолжить увеличение дозы.

Фаза основного лечения (поддержания дозы). Контроль симптомов. Во время следующей инъекции ввести только половину стандартной дозы и при хорошей переносимости, во время последующих инъекций, вернуться к полной дозе.

Системные реакции тяжелой степени тяжести (крапивница тяжелой степени тяжести, ангионевротический отек тяжелой степени тяжести)

Тактика лечения. Пероральные ГК: от 2 до 60 мг/сут в течение 2 или 3 дней. Пероральные антигистаминные препараты (блокаторы Н1 -гистаминовых рецепторов).

Тактика в отношении проведения АСИТ. Купировать реакцию и убедиться, что симптомы полностью исчезли. Вопрос о том, продолжать АСИТ в более низких дозах или прекратить АСИТ, решается индивидуально для каждого пациента.

Системные реакции тяжелой степени тяжести (бронхиальная астма тяжелой степени)

Тактика лечения. Распыление через небулайзер β2 -агониста (сальбутамола в дозе 0,02 мл/кг 0,5% раствора или ингаляции β2 -агониста короткого действия (повторяются через 5–10 мин); метилпреднизолон 2 мг/кг внутривенно; кислород интраназально.

Тактика в отношении проведения АСИТ. Купировать реакцию и убедиться, что симптомы полностью исчезли. Вопрос о том, продолжать АСИТ в более низких дозах или прекратить АСИТ, решается индивидуально для каждого пациента.

Системные реакции тяжелой степени тяжести (анафилактический шок)

Тактика лечения. Алгоритм лечения анафилактического шока описан ниже.

Тактика в отношении проведения АСИТ. Прекратить АСИТ [7].

Факторы риска развития системных аллергических реакций

Факторы риска могут быть ятрогенного, связанные с самой АСИТ, и индивидуального характера, связанные с особенностями реагирования и сопутствующей патологией самого пациента. Ятрогенные ошибки, связанные с введением экстракта аллергена не тому пациенту или в неправильной дозе, чаще встречаются при ПКИТ. При развитии анафилаксии при проведении АСИТ аллерголог-иммунолог должен идентифицировать факторы, связанные непосредственно с самой иммунотерапией и с непосредственным состоянием здоровья пациента.

Факторы, связанные с самой АСИТ:

  • использование смеси аллергенов;

  • проведение лечения по ускоренной схеме;

  • передозировка аллергена;

  • применение нестандартизированного аллергена;

  • перерывы в режиме дозирования;

  • несоблюдение рекомендаций производителя при переходе на новую партию;

  • слишком быстрое увеличение дозы аллергена на начальных этапах АСИТ;

  • нарушение техники инъекции;

  • ошибки, допущенные при заполнении медицинской карты, выборе экстракта аллергена, его разведения и дозы;

  • замена старого экстракта новым.

Факторы, связанные с самим пациентом:

  • системные реакции в анамнезе, включая анафилаксию на АСИТ;

  • предыдущие тяжелые локальные реакции;

  • острая инфекция (например, ОРВИ);

  • повышение температуры;

  • инфекции или повреждения слизистой полости рта (например, язвы, периодонтит, гингивит и т.п.) во время проведения СЛИТ;

  • бронхиальная астма, особенно тяжелая или неконтролируемая;

  • системный мастоцитоз;

  • предменструальный статус;

  • молодой возраст;

  • эмоциональный стресс;

  • гипертиреоз;

  • прием отдельных лекарственных препаратов (бета-блокаторов, ингибиторов АПФ);

  • симптомы аллергии в момент проведения лечения и дополнительный контакт с аллергеном, входящим в состав экстракта (например, контакт с пыльцой березы в сезоне ее цветения во время проведения АСИТ аллергеном пыльцы березы);

  • высокая чувствительность к аллергену и высокая концентрация аллергена в воздухе;

  • чрезмерное употребление алкоголя, чрезмерные физические нагрузки, посещение сауны.

В целом риск развития анафилаксии или фатальных реакций на АСИТ очень низкий [5].

К основным факторам риска тяжелых жизнеугрожающих системных реакций, ассоциированных с ПКИТ, в большинстве случаев относят тяжелую или плохо контролируемую астму, заболевания сердечно-сосудистой системы и мастоцитоз. Риск повышается у больных, принимающих β-адреноблокаторы. Высокий риск анафилаксии может быть у больных, принимающих β-адреноблокаторы в связи с низкой чувствительностью к эпинефрину. Другими группами препаратов, прием которых также может спровоцировать тяжелую степень анафилаксии, являются: ингибиторы АПФ, блокаторы ангиотензин-II-рецепторов, ингибиторы МАО. Данный эффект связан со стимуляцией симпатической системы [2].

Симптоматическая и/или плохо контролируемая астма была определена как способствующий фактор развития большинства фатальных и угрожающих жизни ПКИТ-ассоциированных реакций. Предполагается, что одной из эффективных мер по обеспечению безопасности применения АСИТ является оценка контроля над бронхиальной астмой перед инъекцией дозы аллергена. Такой подход может быть фактором, снижающим вероятность развития фатальных осложнений [10]. Кроме того, дегрануляция тучных клеток может быть спонтанной, в отдельных случаях повышенный уровень сывороточной триптазы свидетельствует о повышенном риске системных реакций. У пациентов с тяжелыми системными реакциями (анафилаксией) в анамнезе, особенно при выраженной сенсибилизации, рекомендуется оценивать данный показатель для прогнозирования спонтанной анафилаксии и вероятного системного мастоцитоза [11].

Потенциальными факторами риска ПКИТ-ассоциированных системных реакций являются: высокий уровень реактивности по результатам кожных тестов, проведение курса на пике паллинации, режимы с введением высоких доз аллергена, определенный этап терапии (этап поддерживающих доз против режима наращивания дозы аллергена). Однако ни один из этих факторов не был четко установлен [12, 13].

Кроме того, вероятность развития побочных эффектов при проведении АСИТ зависит от дозы вводимого аллергена. Вероятность развития системных побочных реакций на начальных дозах аллергена крайне низка и повышается с увеличением дозы вводимого аллергена. Увеличение частоты побочных эффектов происходит при применении более высоких доз аллергена. За счет высокого профиля безопасности при СЛИТ дозозависимый эффект проявляется меньше, чем при ПКИТ.

ПКИТ связана с большим риском непосредственно контакта аллергена с циркулирующими провоспалительными базофилами и лимфоцитами, что обусловливает более высокий пик развития нежелательных явлений [4, 14, 15]. При ПКИТ - нарушение протокола, использование разовой дозы не в соответствии с инструкцией, более быстрое ее наращивание, чем рекомендовано производителем, ассоциировано с большей частотой развития системных нежелательных явлений. Особенно высокий риск анафилаксии сопряжен с ускоренными и молниеносными методами АСИТ даже при профилактическом назначении антигистаминных препаратов [8, 16].

К провоцирующим факторам развития системных реакций можно отнести несоблюдение пациентами гипоаллергенной диеты во время проведения АСИТ и употребление в пищу продуктов, дающих перекрестные аллергические реакции. Пациентам с выраженной пищевой непереносимостью на время проведения АСИТ можно назначать препараты кромоглициевой кислоты перорально, как это рекомендуется при пищевой аллергии. Рекомендуется предварительно проводить обследование органов желудочно-кишечного тракта и коррекцию выявленных нарушений до начала курса АСИТ.

Больным с бытовой сенсибилизацией, учитывая невозможность полного исключения контакта с причинно-значимым аллергеном (клещ домашней пыли), на время проведения АСИТ необходимо усиливать базисную терапию и назначать антигистаминные препараты [12, 13, 17–19].

8.5. Причины фатальных случаев анафилаксии при проведении аллерген-специфической иммунотерапии

Препаратом первого выбора экстренной помощи при развитии анафилаксии является эпинефрин. Запоздалое введение эпинефрина может быть также причиной фатального исхода больного [2]. У эпинефрина практически нет противопоказаний к применению при анафилаксии, но очень важно соблюдать интервал и дозу введения препарата. Предпочтительным является внутримышечное введение эпинефрина в область переднелатеральной поверхности бедра. Внутримышечное введение обеспечивает высокую и быструю биодоступность препарата (в мышцах эпинефрин вызывает расширение сосудов, пик концентрации достигается через 10 мин), лучший профиль безопасности и более продолжительный эффект по сравнению с внутривенным введением. Внутривенный доступ, как правило, затруднен. Пункция вены занимает время, в условиях низкого системного артериального давления и стрессовой ситуации венепункция затягивает оказание помощи. Скорость применения эпинефрина является определяющей, и именно она влияет на выживаемость пациента при анафилактическом шоке. При нарушении микроциркуляции подкожное всасывание может быть нарушено, поэтому этот метод также не приоритетен. Внутримышечно эпинефрин вводят в разведении 1:1000 (1 мг/мл, 0,01 мл/кг, максимальная разовая доза - 0,5 мг для взрослых). Рекомендуемая доза эпинефрина - 0,03–0,05 мг внутримышечно; если симптомы ухудшаются или у больного персистируют тяжелые симптомы, его можно повторно вводить каждые 15–20 мин. Большинству пациентов достаточно одной или двух доз. После инъекции эпинефрина больным нельзя сразу садиться или вставать, так как это может приводить к синдрому пустой нижней полой вены/пустого желудочка и внезапной смерти. Внутривенное введение показано пациентам с тяжелой анафилаксией, не ответившим на внутримышечную инъекцию, или при сердечно-сосудистом коллапсе (доза 0,1 мкг/кг в минуту).

Эпинефрин может быть неэффективен у больных, принимающих β-адреноблокаторы. Может иметь значение индивидуальная чувствительность к эпинефрину и ятрогенные ошибки в купировании анафилаксии. Больного с тяжелой аллергической реакцией в обязательном порядке госпитализируют в стационар, поскольку в некоторых случаях возможен рецидив симптомов.

За рубежом доступен эпинефрин в виде ауто-инъектора в фиксированных дозировках: 0,15 мг для детей массой тела до 30 кг; для детей весом более 30 кг и взрослых - 0,3 мл (в США для взрослых используют максимально 0,5 мл), который пациент может ввести себе самостоятельно в наружную поверхность бедра. Предварительно пациент проходит инструктаж у аллерголога-иммунолога.

Фатальные случаи анафилаксии во время проведения АСИТ могут зависеть от следующих факторов:

  • плохая абсорбция эпинефрина;

  • резистентность к эпинефрину;

  • задержка в приеме эпинефрина;

  • несвоевременное введение повторных доз эпинефрина;

  • прием препаратов, ослабляющих эффект эпинефрина;

  • слишком низкая доза эпинефрина;

  • изначально тяжелые симптомы [2, 7, 20].

Алгоритм оказания помощи при анафилактическом шоке [21]

Анафилаксия - это жизнеугрожающая системная реакция гиперчувствительности. Она характеризуется быстрым развитием потенциально жизнеугрожающих изменений гемодинамики и/или нарушениями со стороны дыхательной системы. Возможно развитие анафилаксии с поражением кожи, слизистых и желудочно-кишечного тракта без гемодинамических и дыхательных нарушений.

Анафилактический шок (АШ) - острая недостаточность кровообращения в результате анафилаксии, проявляющаяся снижением систолического артериального давления (АД) ниже 90 мм рт.ст. или на 30% рабочего уровня и приводящая к гипоксии жизненно важных органов.

Классификация анафилактического шока по степени тяжести

1-я степень тяжести анафилактического шока. АД снижено на 30–40 мм рт.ст. от рабочих величин. Гемодинамические нарушения незначительные. Начало АШ может сопровождаться появлением предвестников (зуд кожи, сыпь, першение в горле, кашель и др.). Пациент в сознании, может быть возбуждение или вялость, беспокойство, страх смерти. Отмечается чувство жара, шум в ушах, головная боль, сжимающая боль за грудиной. Кожные покровы гиперемированы, возможны крапивница, ангиоотек, риноконъюнктивит, кашель.

2-я степень тяжести анафилактического шока. АД ниже 90–60/40 мм рт.ст. Гемодинамические нарушения более выражены. Возможна потеря сознания. У больного может быть чувство беспокойства, страха, ощущение жара, слабость, зуд кожи, крапивница, ангиоотек, симптомы ринита, затруднение глотания, осиплость голоса (вплоть до афонии), головокружение, шум в ушах, парестезии, головная боль, боли в животе и области сердца. При осмотре - кожа бледная, иногда синюшная, одышка, стридорозное дыхание, хрипы в легких. Тоны сердца глухие, тахикардия, тахиаритмия. Может быть рвота, непроизвольное мочеиспускание и дефекация.

3-я степень тяжести анафилактического шока. АД 60–40/0 мм рт.ст. Потеря сознания. Нередко судороги, холодный липкий пот, цианоз губ, расширение зрачков. Тоны сердца глухие, сердечный ритм неправильный, пульс нитевидный.

4-я степень тяжести анафилактического шока. АД не определяется. Тоны сердца и дыхание не прослушиваются.

Гипотония для детей определена как:

  • <70 мм рт.ст. от 1 мес до 1 года;

  • [<70 мм рт.ст. + (2 × возраст в годах)] от 1 до 10 лет;

  • <90 мм рт.ст. от 11 до 17 лет.

Первым признаком гипотонии у детей может быть быстро нарастающая тахикардия.

Алгоритм действия при развитии анафилактического шока

Всем пациентам с анафилактическим шоком незамедлительно вводится эпинефрин внутримышечно в переднебоковую поверхность верхней трети бедра, при необходимости - через одежду из расчета 0,01 мг/кг. Данная локализация предпочтительна в сравнении с введением в дельтовидную мышцу и подкожным введением. Максимальная разовая доза для взрослого пациента составляет 0,5 мг, для ребенка - 6–12 лет - 0,3 мг, до 6 лет - 0,15 мг. При отсутствии ответа на первую дозу не менее чем через 5 мин, внутримышечно ввести повторную дозу эпинефрина для достижения клинического эффекта.

При недостаточном ответе на две и более дозы эпинефрина внутримышечного введения внутривенное введение эпинефрина осуществляется только при мониторировании сердечной деятельности. При отсутствии эффекта от внутримышечного введения эпинефрина ввести его внутривенно в разведении до 1:10 000 (1 мл раствора эпинефрина на 10 мл раствора натрия хлорида 0,9%).

При неэффективности трех болюсов эпинефрина, введенных внутривенно или внутримышечно, начать инфузию эпинефрина в дозе 0,1 мкг/кг в минуту с титрованием дозы (до 1 мкг/кг в минуту).

Рекомендуется всех пациентов с анафилактическим шоком уложить в положение на спине, приподнять нижние конечности. Нельзя поднимать пациента или переводить его в положение сидя, так как это в течение нескольких секунд может привести к фатальному исходу. В случае если пациент без сознания, следует повернуть его голову в сторону, выдвинуть нижнюю челюсть для предупреждения западения языка, асфиксии и предотвращения аспирации рвотными массами. Если у пациента установлены зубные протезы, их необходимо удалить.

Рекомендуется всем пациентам с анафилактическим шоком обеспечить поступление кислорода средним потоком через лицевую маску для восполнения кислорода в тканях организма.

Пациентам с анафилактическим шоком после введения эпинефрина рекомендовано внутривенно введение солевых растворов болюсно для профилактики гиповолемии. Рекомендованная доза солевых растворов составляет 20 мл/кг массы тела. Применяется подогретый (по возможности) 0,9% раствор натрия хлорида или, предпочтительнее, сбалансированный солевой раствор (500–1000 мл для пациента с нормотензией и 1000–2000 мл для пациента с артериальной гипотензией). При наличии в анамнезе сердечной недостаточности вводят не более 250 мл за 5–10 мин, у детей - 20 мл/кг.

Пациенту с анафилактическим шоком после введения эпинефрина рекомендовано введение системных глюкокортикоидов для снижения риска продленной фазы респираторных проявлений. Начальные дозы: взрослым: дексаметазон 8–32 мг внутривенно капельно, или преднизолон 90–120 мг внутривенно капельно или струйно, или метилпреднизолон 50–120 мг внутривенно струйно, или гидрокортизон 200 мг внутримышечно или внутривенно медленно, бетаметазон 8–32 мг внутривенно капельно. Детям: метилпреднизолон 1 мг/кг, максимум 50 мг, или преднизолон 2–5 мг/кг, или гидрокортизон детям старше 12 лет - 100 мг, 6–12 лет - 50 мг, младше 6 лет - 25 мг внутримышечно или внутривенно медленно, или бетаметазон 20–125 мкг/кг или 0,6–3,75 мг/мл через 12 или 24 ч. Длительность и доза кортикоидов для системного использования подбирается индивидуально в зависимости от тяжести клинических проявлений.

После стабилизации АД, если есть проявления со стороны кожи и слизистых, рекомендовано введение антигистаминных препаратов системного действия для уменьшения проницаемости капилляров, отека тканей, зуда и гиперемии. Рекомендуемые дозы: клемастин 0,1% - 2 мл (2 мг) взрослым для внутривенного или внутримышечного введения, детям - внутримышечно по 25 мкг/кг в сутки, разделяя на 2 инъекции; хлоропирамин 2% - 1 мл (20 мг) для внутривенного или внутримышечного введения взрослым 1–2 мл, детям - начинают лечение с дозы 5 мг (0,25 мл); дифенгидрамин для взрослого - 25–50 мг, для ребенка весом менее 35–40 кг - 1 мг/кг, максимально 50 мг. Начало действия антигистаминных препаратов существенно превышает начало действия эпинефрина, поэтому нет пользы их немедленного введения после возникновения эпизода шока. Существенным ограничением применения антигистаминных является факт возможного усугубления гипотензии при быстром внутривенном введении.

Пациентам с анафилактическим шоком при сохраняющемся бронхоспазме, несмотря на введение эпинефрина, рекомендовано применение селективного β2 -адреностимулятора.

Данная схема может служить только в качестве общего руководства. Медицинские действия врач устанавливает индивидуально в каждом отдельном случае.

В отличие от ПКИТ, при СЛИТ нежелательные системные реакции встречаются значительно реже, и профиль ее безопасности значительно выше. Ошибки при применении СЛИТ редко приводят к тяжелым нежелательным реакциям. Период набора дозы при СЛИТ короче, чем при ПКИТ, а у некоторых производителей аллергенов он вообще отсутствует, что еще раз свидетельствует о безопасности сублингвального приема. У производителей Stallergenes Greer и Lofarma S.p.A. есть фаза набора дозы, но она короткая, у производителя ALK-Abello она отсутствует. Возможной опцией является перевод пациента на СЛИТ при возникновении у него реакций при подкожном введении аллергена. Тем не менее в отношении таких пациентов рекомендуется все равно соблюдать осторожность при лечении [4, 10].

Случаи системных реакций при СЛИТ носят редкий и спорадический характер. В отчетах всех стран за весь период применения СЛИТ зарегистрировано всего 13 реакций нефатальной анафилаксии. Четких предикторов для развития СЛИТ-ассоциированных системных реакций установлено не было. В отличие от ПКИТ, при СЛИТ случаи развития системных реакций, вероятно, не связаны с режимом введения аллергенов, их дозой, симптомами астмы или выраженностью сенсибилизации. Причины их возникновения, возможно, связаны с грубым нарушением протокола проведения СЛИТ: многократным превышением рекомендованных доз, приемом первой дозы в домашних условиях, отсутствием контроля БА. Поскольку СЛИТ применяется в условиях отсутствия контроля медицинским персоналом, пациента необходимо предупредить о возможном развитии побочных эффектов терапии и дать четкие инструкции в отношении различных клинических сценариев. Частота развития системных побочных реакций может зависеть от степени сенсибилизации пациента, тяжести аллергического заболевания, потери контроля над ним. В России за весь период наблюдения применения СЛИТ случаев анафилаксии не зарегистрировано. Высокий профиль безопасности СЛИТ обусловлен целым рядом иммунологических механизмов при данном способе введения аллергена. Подробно иммунологический механизм описан выше. При СЛИТ процессинг и представление аллергена иные, чем при ПКИТ. Большая часть аллергена в ротовой полости захватывается и процессируется локально, и системное проникновение менее вероятно. Основными антигенпрезентирующими клетками ротовой полости являются клетки Лангерганса и дендритные клетки. Данная субпопуляция клеток является толерогенной. Иммунная система ротовой полости запрограммирована на преобладание толерантности, а не на аллергические реакции, что и обеспечивает более высокий профиль безопасности СЛИТ. Аллергические реакции в ротовой полости, разумеется, возможны, но они всегда проявляются слабее по сравнению с кожей или дыхательными путями. Взаимосвязаны они с тем, что ткани ротовой полости все же содержат определенное число тучных клеток и эозинофилов, однако количество их различное в разных анатомических областях ротовой полости. Тучные клетки максимально локализуются в области тканей языка, чем в других тканях ротовой полости, что объясняет его частый отек при проведении СЛИТ [10].

Таким образом, мерами по предупреждению осложнений при АСИТ является тщательная индивидуальная оценка "риск/польза", а также тесное сотрудничество врача, пациента, местных регуляторных органов, фармацевтических компаний - производителей аллергенов и дальнейшее проведение клинических исследований. Применение унифицированной классификационной ступенчатой системы АСИТ-ассоциированных (СЛИТ и ПКИТ) местных и системных побочных реакций позволит лучше проводить сравнительную характеристику и усовершенствовать методы безопасности применения АСИТ в клинической практике.

Список литературы

  1. Norman G., Falth-Magnusson K. Adverse reactions to skin prick testing in children — prevalence and possible risk factor // Pediatr. Allergy Immunol. 2009. Vol. 20. P. 273–278.

  2. Liss G., Murphy-Berendts K., Epstein T. et al. Factors associated with severe versus mild immunotherapy-related systemic reactions: a case-referent study // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 127. P. 1298–1300.

  3. Мачарадзе Д.Ш. Кожные пробы: методика проведения, роль в диагностике аллергических болезней и подготовке к проведению АСИТ: Учебно-методическое пособие. Издание второе. Москва, 2015. 128 c.

  4. Jutel M., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergy immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136, N. 3. P. 556–568.

  5. Pfaar O., Bachert C., Bufe A. et al. Guideline on allergen-specific immunotherapy in IgE-mediated allergic diseases: S2k Guideline of the German Society for Allergology and Clinical Immunology (DGAKI), the Society for Pediatric Allergy and Environmental Medicine (GPA), the Medical Association of German Allergologists (AeDA), the Austrian Society for Allergy and Immunology (OGAI), the Swiss Society for Allergy and Immunology (SGAI), the German Society of Dermatology (DDG), the German Society of Oto- Rhino-Laryngology, Head and Neck Surgery (DGHNO-KHC), the German Society of Pediatrics and Adolescent Medicine (DGKJ), the Society for Pediatric Pneumology (GPP), the German Respiratory Society (DGP), the German Association of ENT Surgeons (BV-HNO), the Professional Federation of Paediatricians and Youth Doctors (BVKJ), the Federal Association of Pulmonologists (BDP) and the German Dermatologists Association (BVDD) // Allergo J. Int. 2014. Vol. 23, N. 8. P. 282–319.

  6. Passalacqua G., Sastre J., Pfaar O. et al. Comparison of allergenic extracts from different origins: the value of the FDA’s bioequivalent allergy unit (BAU) // Expert. Rev. Clin. Immunol. 2016. Vol. 12, N. 7. P. 733–739.

  7. Cox L., Nelson H., Lockey R. et al. Allergen immunotherapy: a practice parameter third update // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 127, Suppl. 1. P. 1–55.

  8. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI allergen immunotherapy user`s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  9. Senna G.E., Makatsori M., Schiappoli M. et al. Subcutaneous allergen specific immunotherapy: best clinical practice as cornerstone for future development // Eur. Ann. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 43, N. 5. P. 135–140.

  10. Calderon M.A., Simons F.E., Mailing H.J. et al. Sublingual allergen immunotherapy: mode of action and its relationship with the safety profile // Allergy. 2012. Vol. 67, N. 3. P. 302–311.

  11. Winslow A.W., Turbyville J.C., Sublett J.W. et al. Comparison of systemic reactions in rush, cluster, and standard-build aeroallergen immunotherapy // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2016. Vol. 117, N. 5. P. 542–545.

  12. Курбачева О.М., Павлова К.С. Федеральные клинические рекомендации. Аллерген-специфическая иммунотерапия // РАЖ. 2016. № 4–5. C. 55–61.

  13. Курбачева О.М., Павлова К.С., Галицкая М.А. Аллерген-специфическая иммунотерапия. Аналитический обзор современных международных и отечественных позиционных документов // РАЖ. 2017. № 1. C. 24–32.

  14. Di Bona D., Magistd S., Masciopinto L. et al. Safety and treatment compliance of subcutaneous immunotherapy: A 30-year retrospective study // Respir Med. 2020. Vol. 161. Art 105843.

  15. Calderon M.A., Vidal C., Rodriguez Del Rio P. et al. European Survey on Adverse Systemic Reactions in Allergen Immunotherapy (EASSI): a real-life clinical assessment // Allergy. 2017. Vol. 72, N. 3. P. 462–472.

  16. Sanchez-Borges M., Bernstein D.I., Calabria C. Subcutaneous immunotherapy safety: incidence per surveys and risk factors // Immunol. Allergy Clin. North Am. 2020. Vol. 40, N. 1. P. 25–39.

  17. Alvarez-Cuesta E., Bousquet J. Standards for practical allergen-specific immunotherapy // Allergy. 2006. Vol. 61, Suppl. 82. P. 1–20.

  18. Bousquet J., Lockey R.F., Mailling H.J. WHO Position Paper. Allergen immunotherapy: therapeutic vaccines for allergic diseases // Allergy. 1998. Vol. 53, Suppl. 44. P. l–42.

  19. Гущин И.С., Курбачева О.М. Аллергия и аллерген-специфическая иммунотерапия. Москва: Фармарус Принт Медиа, 2010. 228 c.

  20. Мировые стандарты аллерген-специфической иммунотерапии. Научный обзор. Abbott, Stallergenes. 2010. 33 c.

  21. Ильина Н.И., Заболотских И.Б., Астафьева Н.Г. и др. Анафилактический шок. Клинические рекомендации Российской ассоциации аллергологов и клинических иммунологов и Общероссийской общественной организации «Федерация анестезиологов и реаниматологов» // Вестник интенсивной терапии им. А.И. Салтанова. 2020. № 3. С. 15–26.

Глава 9. Аллерген-специфическая иммунотерапия при аллергическом рините и бронхиальной астме

В настоящее время получено большое количество доказательств эффективности и безопасности АСИТ при респираторных заболеваниях: аллергическом рините, бронхиальной астме [1].

Введение с правильными интервалами причинно-значимого аллергена больному приводит к изменению иммунного ответа и в дальнейшем уменьшает выраженность симптомов и снижает риск обострений заболевания [2].

У пациентов с аллергическим ринитом и бронхиальной астмой АСИТ проводят различными экстрактами аллергенов: пыльцы деревьев, луговых и сорных трав, клещом домашней пыли, плесневыми грибами и эпидермальными аллергенами. В клинической практике рекомендовано применение стандартизированных экстрактов, так как эффективность и безопасность АСИТ напрямую зависят от их качества. При аллергическом рините и бронхиальной астме возможны как ПКИТ, так и СЛИТ. Наиболее востребованным на сегодняшний день методом АСИТ при респираторных заболеваниях является СЛИТ, так как такой метод введения аллергена считается наиболее удобным и безопасным.

Согласно рекомендациям ARIA (Аллергический ринит и его влияние на астму, от англ. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma) АСИТ показана к применению у пациентов с умеренными и тяжелыми, а также персистирующими симптомами аллергического ринита, и особенно у тех, у кого фармакотерапия малоэффективна [3, 4].

Заключение о клинической эффективности АСИТ (СЛИТ и ПКИТ) при сезонном и круглогодичном аллергическом рините основывается на данных метаанализов, обобщивших результаты двойных слепых плацебо-контролируемых исследований [5–10].

Систематические обзоры и позиционные документы по АСИТ единогласно свидетельствуют, что при применении данного метода у пациентов с аллергическим ринитом могут быть достигнуты значительные клинические результаты: купирование назальных и глазных симптомов, уменьшение объема базисных контролирующих фармакопрепаратов, повышение качества жизни пациентов, профилактика прогрессирования аллергического ринита, профилактика развития бронхиальной астмы и уменьшение риска развития новых видов сенсибилизации [1, 10–14].

Фармакопрепараты (антигистаминные, антилейкотриеновые, топические ГК) успешно контролируют симптомы, но не влияют на иммунопатогенез заболевания, кроме того, ряд из них обладает побочными эффектами. СЛИТ при сезонном аллергическом риноконъюнктивите может значимо снижать их дозу уже в первый сезон цветения от старта терапии [15].

В последнем крупном метаанализе (2017) с участием 6379 пациентов, получавших ПКИТ, и 13 636 пациентов, получавших СЛИТ, подтверждено, что данная терапия привела к значительному снижению выраженности клинических проявлений, при этом анализ подгрупп по шкале оценки симптомов подтверждает эффективность как ПКИТ, так и СЛИТ. ПКИТ и СЛИТ одинаково эффективны для всех категорий пациентов как у взрослых, так и у детей. Эффективность АСИТ подтверждена при лечении как круглогодичными, так и сезонными аллергенами. Анализ ПКИТ экстрактами аллергенов и аллергоидами демонстрирует доказательство эффективности подобной терапии [7].

После окончания проведения АСИТ клиническая эффективность длительно сохраняется [16]. Все окончательные результаты применения АСИТ у пациентов с аллергическим ринитом однозначно демонстрируют четкое фармакоэкономическое преимущество данного метода над другими видами лечения [17].

Патологический воспалительный процесс в дыхательных путях у пациентов с бронхиальной астмой определяется различными патогенетическими механизмами. Патофизиологические механизмы аллергического фенотипа бронхиальной астмы являются достаточно сложными и обусловливают различные варианты заболевания [18].

Диагностика и знание фенотипов бронхиальной астмы может помочь в индивидуальном подходе к ведению пациентов, в том числе их отборе для проведения успешной АСИТ [19]. Современная терапия бронхиальной астмы способна эффективно контролировать симптомы и текущий воспалительный процесс, однако не влияет на регуляцию иммунного ответа, лежащую в основе такого воспаления [20]. Фармакопрепараты очень ограниченно могут влиять на прогрессирование заболевания. При бронхиальной астме АСИТ может изменить в лучшую сторону уровень контроля у лиц, не получающих достаточного объема терапии.

Согласно международному консенсусу по АСИТ, ПКИТ и СЛИТ могут применяться у пациентов с бронхиальной астмой легкого и среднетяжелого течения, ассоциированной с аллергическим риноконъюнктивитом, при условии адекватного контроля над бронхиальной астмой при помощи фармакотерапии [1].

В 2018 г. СЛИТ с аллергенами клеща домашней пыли была включена в ступенчатую схему терапии в рекомендациях GINA (Global Initiative for Asthma - Глобальная стратегия лечения и профилактики бронхиальной астмы). Согласно Глобальной стратегии лечения и профилактики бронхиальной астмы пересмотра 2021 г., АСИТ рекомендована в ступенчатой терапии у пациентов с бронхиальной астмой с сенсибилизацией к клещам домашней пыли. В данном документе ПКИТ и СЛИТ рассматриваются как альтернативные варианты лечения пациентов с бронхиальной астмой и аллергическим ринитом [21]. На сегодня АСИТ не может быть рекомендована в качестве единственного метода терапии, когда астма является единственным проявлением респираторной аллергии.

АСИТ и фармакотерапия при аллергической бронхиальной астме не являются конкурирующими опциями, они гармонично дополняют друг друга, предоставляя возможности достижения наилучшего результата лечения.

Стероид-спарринг эффект при бронхиальной астме способствует лучшему клиническому эффекту в отношении симптомов астмы. Потенциальный стероид-спарринг эффект АСИТ с ИГК крайне важен, так как АСИТ способна уменьшить дозу ИГК и предотвратить их потенциальные побочные эффекты у пациентов с астмой. Для обоих методов АСИТ - как ПКИТ, так и СЛИТ - было продемонстрировано уменьшение контролирующей дозы ИГК на фоне проведения АСИТ [22–24].

Наибольшее количество исследований проведено в отношении АСИТ при пыльцевой и клещевой сенсибилизации. Эффективность ПКИТ [7, 25, 26] и СЛИТ при БА подтверждена результатами нескольких метаанализов [7, 9, 27–29].

В недавнем метаанализе (2017) [7] с участием 20 015 пациентов оценивалась эффективность ПКИТ и СЛИТ, а также предпочтительный метод АСИТ (ПКИТ или СЛИТ) у пациентов с легкой или среднетяжелой бронхиальной астмой. В большинстве исследований сообщалось о снижении выраженности симптомов по шкале оценки симптомов к концу лечебного периода АСИТ. При этом АСИТ эффективна как у взрослых, так и у детей. Сравнительный анализ ПКИТ и СЛИТ продемонстрировал большую эффективность ПКИТ в сравнении со СЛИТ. Доказана эффективность АСИТ у пациентов с легкой и среднетяжелой астмой. Предполагается наличие преимуществ у пациентов со среднетяжелой и тяжелой астмой, но требуется больше исследований по оценке эффективности АСИТ у пациентов со среднетяжелой и тяжелой астмой. Подтверждена эффективность АСИТ у моносенсибилизированных пациентов с бронхиальной астмой. Предположительно, АСИТ одинаково эффективна как у пациентов с моносенсибилизацией, так и у пациентов с полисенсибилизацией. Применение АСИТ у полисенсибилизированных пациентов с астмой требует дальнейшего изучения. АСИТ снижает потребность в лекарственных средствах по шкале потребности лекарств. Анализ подгрупп продемонстрировал эффективность АСИТ у детей, применение у взрослых требует больших доказательств.

В последнем метаанализе R. Fortescue (2020) продемонстрированы эффективность и влияние СЛИТ на симптомы бронхиальной астмы над плацебо. В данном метаанализе разделение по типу аллергена не проводилось. Результатом анализа был вывод о равном количестве нежелательных явлений у детей, подростков и взрослых, а также значительно большей частоте встречаемости нежелательных побочных эффектов при лечении пыльцевой аллергии по сравнению с лечением клещом домашней пыли [30].

Таким образом, успешная АСИТ позволяет снизить объем необходимой пациенту базисной терапии и количество препаратов, используемых по потребности для купирования симптомов [31–33].

Помимо уменьшения выраженности симптомов АСИТ способна затормозить прогрессирование БА [34].

Тяжелая и/или неконтролируемая БА - основной независимый фактор риска как для фатальных, так и нефатальных побочных эффектов, поэтому является главным противопоказанием для проведения АСИТ, как ПКИТ, так и СЛИТ [1, 35].

У пациентов с респираторными аллергическими заболеваниями (аллергический риноконъюнктивит, бронхиальная астма легкого течения) в сочетании с атопическим дерматитом не существует противопоказаний для проведения АСИТ.

В настоящее время одной из нерешенных проблем практического применения АСИТ является способ оценки ее эффективности при бронхиальной астме как в клинических исследованиях, так и в практической работе [36].

Детальная методика оценки эффективности проводимого лечения не представлена в современных руководствах по АСИТ [32, 33].

Список литературы

  1. Jutel M., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergy immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136, N. 3. P. 556–568.

  2. Трусова О.В., Камаев А.В., Трофимов В.И. и др. Оценка диагностической диагностики аллерген-специфической терапии с аллергенами клещевой пыли у пациентов с бронхиальной астмой с помощью индекса симптомов и препаратов // Практическая пульмонология. 2020. № 4. C. 10–15.

  3. Brożek J.L., Bousquet J., Agache I. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) guidelines — 2016 revision // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 140, N. 4. P. 950–958.

  4. Bousquet J., Schunemann H.J., Samolinski B. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA): achievements in 10 years and future needs // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130. P. 1049–1062.

  5. Calderon M., Alves B., Jacobson M. et al. Allergen injection immunotherapy for seasonal allergic rhinitis // Cochrane Database Syst. Rev. 2007. Vol. 2007, N. 1. CD001936.

  6. Compalati E., Passalacqua G., Bonini M. et al. The efficacy of sublingual immunotherapy for house dust mites respiratory allergy: result of a GA2LEN meta-analysis // Allergy. 2009. Vol. 64. P. 1570–1579.

  7. Dhami S., Nurmalatov U., Arasi S. et al. Allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review and meta-analysis // Allergy. 2017. Vol. 72, N. 11. P. 1597–1631.

  8. Olaguibel J.M., Alvarez Puebla M.J. Efficacy of sublingual allergen vaccination for respiratory allergy in children: conclusion from one metaanalysis // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. 2005. Vol. 15. P. 9–16.

  9. Penagos M., Compalati E., Tarantini F. et al. Efficacy of sublingual immunotherapy in the treatment of allergic rhinitis in pediatric patients 3 to 18 years of age: A meta-analysis of randomized, placebo-controlled, double-blind trials // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2006. Vol. 97. P. 141–148.

  10. Wilson D.R., Lima M.T., Durham S.R. Sublingual immunotherapy for allergic rhinitis: systematic review and meta-analysis // Allergy. 2005. Vol. 60. P. 4–12.

  11. Canonica G.W., Bousquet J., Casale T. et al. Sublingual immunotherapy: World Allergy Organization Position Paper 2009 // Allergy. 2009. Vol. 64. P. 1–59.

  12. Canonica G.W., Cox L., Pawankar R. et al. Sublingual immunotherapy: World Allergy Organization position paper 2013 update // World Allergy Organization Journal. 2014. Vol. 7, N. 1. P. 6.

  13. Burks A.W., Calderon M.A., Casale T. et al. Update on allergy immunotherapy: American Academy of Allergy, Asthma & Immunology/European Academy of Allergy and Clinical Immunology/PRACTALL consensus report // J. Allergy Clin. Immunol. 2013. Vol. 131. P. 1288–1296.

  14. Malling H.J., Bousquet J. Subcutaneous immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis, allergic asthma, and prevention of allergic diseases // Clin. Allergy Immunol. 2008. Vol. 21. P. 343–358.

  15. Devillier Р., Dreyfus J.-F., Demoly Р. et al. A meta-analysis of sublingual allergen immunotherapy and pharmacotherapy in pollen-induced seasonal allergic rhinoconjunctivitis // BMC Med. 2014. Vol. 12. P. 71.

  16. Tahamiler R., Saritzali G., Canakcioglu S. Long-term efficacy of sublingual immunotherapy in patients with perennial rhinitis // Laryngoscope. 2007. Vol. 117. P. 965–969.

  17. Berto P., Frati F., Incorvaia C. Economic studies of immunotherapy: a review // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 8. P. 585–589.

  18. Amin H.S., Liss G.M., Bernstein D.I. Evaluation of near-fatal reactions to allergenimmunotherapy injections // J. Allergy Clin. Immunol. 2006. Vol. 117. P. 169–175.

  19. Agache I., Akdis C., Jutel M. et al. Untangling asthma phenotypes and endotypes // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 835–846.

  20. Jutel M., Van de Veen W., Agache I. et al. Mechanisms of allergen-specific immunotherapy and novel ways for vaccine development // Allergol. Int. 2013. Vol. 62. P. 425–433.

  21. Global Strategy for Asthma Management and Prevention (update 2021). Global Initiative for Asthma. Available from: www.ginasthma.org. 2021. 215 p.

  22. Mosbech H., Deckelmann R., de Blay F. et al. Standardized quality (SQ) house dust mite sublingual immunotherapy tablet (ALK) reduces inhaled corticosteroid use while maintaining asthma control: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 134. P. 568–575.

  23. de Blay F., Kuna P., Prieto L. et al. SQ HDM SLIT tablet (ALK) in treatment of asthma — post hoc results from a randomised trial // Respir. Med. 2014. Vol. 108. P. 1430–1437.

  24. Marogna M., Braidi C., Bruno M.E. et al. The contribution of sublingual immunotherapy to the achievement of control in birchrelated mild persistent asthma: a real-life randomised trial // Allergol. Immunopathol. (Madr.). 2013. Vol. 41. P. 216–224.

  25. Abramson M.J., Puy R.M., Weiner J.M. Allergen immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2003. Issue 4.

  26. Abramson M.J., Puy R.M., Weiner J.M. Injection allergen immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2010. Vol. 8. CD001186.

  27. Calamita Z., Saconato H., Pela A.B. et al. Efficacy of sublingual immunotherapy in asthma: review of randomized-clinical trials using the Cochrane Collaboration method // Allergy. 2006. Vol. 61. P. 1162–1172.

  28. Tao L., Shi B., Shi G. et al. Efficacy of sublingual immunotherapy for allergic asthma: retrospective meta-analysis of randomized, double-blind and placebo-controlled trials // The Clinical Respiratory Journal. 2014. Vol. 8. P. 192–205.

  29. Penagos M., Compalati E., Tarantini F. et al. Efficacy of sublingual immunotherapy in the treatment of allergic rhinitis in pediatric patients 3 to 18 years of age: A meta-analysis of randomized, placebo-controlled, double-blind trials // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2006. Vol. 97. P. 141–148.

  30. Fortescue R., Kew K.M., Leung M.S.T. Sublingual immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst Rev. 2020. Vol. 9. CD011293.

  31. Dhami S., Kakourou A., Asamoah F. et al. Allergen immunotherapy for allergic asthma: a systematic review and meta-analysis // Allergy. 2017. Vol. 72, N. 12. P. 1825–1848.

  32. Agache I., Lau S., Akdis C.A. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: house dust mite-driven allergic asthma // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 5. P. 855–873.

  33. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen Immunotherapy User`s Guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  34. Schmitt J., Wüstenberg E., Küster D. et al. The moderating role of allergy immunotherapy in asthma progression: results of a population-based cohort study // Allergy. 2020. Vol. 75, N. 3. P. 596–602.

  35. Calderon M.A., Simons F.E., Malling H.J. et al. Sublingual allergen immunotherapy: mode of action and its relationship with the safety profile // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 302–311.

  36. Pfaar O., Demoly P., Gerth van Wijk R. et al. European Academy of Allergy and Clinical Immunology. Recommendations for the standardization of clinical outcomes used in allergen immunotherapy trials for allergic rhinoconjunctivitis: an EAACI Position Paper // Allergy. 2014. Vol. 69, N. 7. P. 854–867.

Глава 10. Аллерген-специфическая иммунотерапия при пищевой аллергии

Пищевая аллергия - это распространенный и весьма опасный вид аллергии, в связи с частыми проявлениями в виде тяжелых анафилактических реакций, наиболее часто встречающийся в детской практике.

По современным представлениям пищевую аллергию принято разделять на два класса или типа.

К первому относятся аллергические реакции на стабильные (полные) пищевые аллергены. Эти аллергены устойчивы к высоким температурам, изменению pH и действию протеаз. При термической обработке пищи и воздействии желудочного сока они не теряют своих антигенных свойств. Сенсибилизация организма к ним происходит через желудочно-кишечный тракт. Чаще всего такой тип пищевой аллергии формируется в раннем детстве. Для этого типа характерны генерализованные симптомы, затрагивающие желудочно-кишечный тракт (рвота, диарея), кожу и подкожную клетчатку (крапивница и ангиоотек), дыхательные пути (бронхоспазм, гиперсекреция слизи, отек слизистой оболочки). Типичной пищей, являющейся причиной аллергии первого класса, являются яйца, молоко, злаки, арахис, рыба. Наиболее часто истинная пищевая аллергия развивается по механизмам первого типа (IgE-опосредованного). В этом случае у пациента с атопией синтезируются IgЕ-антитела к специфическим эпитопам (участкам белка) того или иного пищевого аллергена. Именно в этой связи интерес представляет использование для лечения таких пациентов АСИТ. Практически любой пищевой продукт может выступать как аллерген и стать причиной развития пищевой аллергии. Однако наиболее выражены сенсибилизирующие свойства у продуктов белкового происхождения, содержащих животные и растительные белки, такие как молоко, яйцо, пшеница, соя, арахис, орехи, рыба и ракообразные. Такие пищевые продукты, как яйца, молоко, арахис, часто встречаются в повседневном рационе, а также они могут быть включены в состав приготовленных блюд. Являясь термостабильными, следы этих аллергенов могут присутствовать на поверхностях при приготовлении пищи или на руках близких родственников и вызывать симптомы аллергии у лица с пищевой непереносимостью [1, 2].

Пищевую аллергию второго класса провоцируют аллергены, лабильные к действию желудочного сока, протеаз и термической обработке. Возникает она как у детей, так и у взрослых, сенсибилизированных к ингаляционным аллергенам. Вызывается употреблением в пищу сырых овощей, фруктов, специй, орехов. Типичным проявлением второго класса реакций является синдром оральной аллергии, вызываемой термо- и хемолабильными аллергенами. Термин оральный аллергический синдром обозначает совокупность клинических проявлений IgE-опосредованных аллергических реакций на слизистой оболочке рта и глотки у пациентов с пыльцевой сенсибилизацией при употреблении в пищу различных фруктов, овощей, орехов и специй. В основе синдрома оральной аллергии лежит перекрестная реактивность между пыльцевыми и пищевыми растительными аллергенами, что связано с тем, что определенные фрукты и овощи имеют гомологичные белки с пыльцой растений, схожие по пространственной конфигурации и аминокислотной последовательности молекул. В этом случае первичная сенсибилизация происходит при ингаляционном поступлении белков пыльцы. Ведущими симптомами орального аллергического синдрома являются зуд и покалывающая боль слизистой рта, дисфония, внезапно начинающийся отек губ, языка, мягкого неба и глотки, иногда сопровождаемые зудом в ушах и ощущением "комка в горле". Симптомы возникают в момент употребления пищи и обычно постепенно самостоятельно уходят в течение нескольких минут. Среди больных аллергическим ринитом с пыльцевой сенсибилизацией часто выявляют перекрестную пищевую аллергию к фруктам и овощам, которая проявляется в виде орального аллергического синдрома. Классическим примером синдрома оральной аллергии является возникновение данных симптомов у пациентов с аллергией на пыльцу березы при употреблении ими в пищу фруктов семейства розовых из порядка розоцветных (Rosaceae ): яблок, груш, вишни, персика и т.д. Распространенность и спектр причинных аллергенов, вызывающих синдром оральной аллергии, зависит от вида пыльцевой сенсибилизации. В целом 26–40% всех больных поллинозом страдают от проявлений орального аллергического синдрома. В России существуют географические различия в распространенности поллиноза и синдрома оральной аллергии. В разных областях поллиноз обусловлен сенсибилизацией к пыльце растений различной таксономической принадлежности. Также различаются пищевые привычки населения и способы приготовления растительной пищи. Если для средней полосы характерно преобладание сенсибилизации к пыльце березы, то в южных районах на первое место по сенсибилизирующей значимости выходит пыльца злаков и сорных трав. В северной Европе также наиболее часто встречается сенсибилизация к пыльце лиственных деревьев, и синдром оральной аллергии чаще всего возникает при употреблении в пищу фруктов из семейства Rosaceae и орехов. В южноевропейских странах при преобладании поллиноза, вызванного сенсибилизацией к пыльце сорных и злаковых трав, также самой частой причиной синдрома оральной аллергии являются фрукты семейства Rosaceae . В Японии, где пыльцевая аллергия в основном обусловлена пыльцой японского кедра, синдром оральной аллергии встречается у 7–17% больных, при этом пищевую аллергию у них чаще всего вызывают дыня и киви. Синдром оральной аллергии встречается в Северной Америке и ассоциирован с поллинозом к пыльце амброзии. Интересен тот факт, что на территориях, свободных от пыльцы березы и амброзии, только один из пяти пациентов с поллинозом имеет проявления синдрома оральной аллергии [3].

Появившийся в последние годы метод диагностики с использованием молекулярных компонентов позволяет наиболее точно определить молекулы аллергенов, вызывающие синдром оральной аллергии, что крайне важно для определения прогноза эффективности АСИТ [4].

Вполне очевидным является вывод, что поскольку синдром оральной аллергии возникает при обязательной первичной сенсибилизации к пыльцевым аллергенам, то и успешно проведенная АСИТ также будет эффективна по отношению к синдрому оральной аллергии. Но до сих пор сообщения о влиянии АСИТ пыльцевыми аллергенами на синдром оральной аллергии противоречивы [5, 6]. Показано, что при синдроме оральной аллергии у больных с сенсибилизацией к пыльце березы АСИТ пыльцевыми аллергенами формировала толерантность к растительной пище, по крайней мере, в течение последующих 30 мес. Кожные пробы с пищевыми аллергенами становились у таких больных отрицательными [7]. Также есть и другие сообщения об успешном лечении синдрома оральной аллергии [8]. Отсутствие результата по влиянию на симптомы орального аллергического синдрома в других исследованиях АСИТ, возможно, связано с присутствием в организме больных клонов Т-лимфоцитов, отвечающих на стимуляцию только пищевыми аллергенами и не реагирующих на пыльцевые аллергены. Именно поэтому АСИТ пыльцевыми аллергенами в их отношении являлась неэффективным методом лечения.

О первом случае лечения методом оральной иммунотерапии с целью лечения пищевой аллергии сообщалось в журнале "Lancet" в 1908 г., в котором был точно описан эпизод тяжелой анафилаксии у ребенка в ответ на употребление куриного яйца. Было продемонстрировано, что большое количество яичного белка может переноситься хорошо после постепенной десенсибилизации, достигнутой путем длительного употребления виновного продукта. В связи с этим был поднят вопрос о том, как долго следует проводить подобную терапию. В настоящее время эти проблемы актуальнее, чем когда-либо, в связи с растущим числом публикаций и научных работ, посвященных иммунотерапии пищевой аллергии [9].

В настоящее время принято положение, что, хотя АСИТ при пищевой аллергии является важной областью научных исследований, проведение ее в рутинной клинической практике не рекомендовано из-за высокого риска побочных реакций, в том числе анафилаксии. Высокий риск анафилаксии и развитие побочных реакций связано с непостоянством и нестабильностью дозы получаемого белка.

Часто у пациентов пищевая аллергия проявляется симптомами анафилаксии, в этой связи оральный способ введения аллергенов намного опаснее, чем сублингвальный или подкожный. Несмотря на немалое количество клинических исследований АСИТ при пищевой аллергии, на современном этапе нет ни одного протокола АСИТ, который продемонстрировал бы и максимальную эффективность, и безопасность при пищевой аллергии. Следует отметить, что в основном эти работы носят экспериментальный и научный характер. В исключительных случаях только специализированные центры с опытным персоналом и соответствующим оборудованием могут проводить АСИТ при пищевой аллергии. В Российской Федерации нет зарегистрированных препаратов пищевых аллергенов для лечения. АСИТ с пищевыми аллергенами в настоящее время изучается и рекомендована только в тех случаях, когда симптомы серьезны (пищевая анафилаксия) и причину трудно избежать. АСИТ при пищевой аллергии проводится лишь в том случае, когда в основе заболевания лежит реагиновый механизм, а пищевой продукт является жизненно необходимым (например, аллергия к молоку у детей). Многие исследователи говорят о низкой эффективности АСИТ пищевыми аллергенами при пищевой аллергии, и вопрос о целесообразности проведения специфической иммунотерапии при пищевой аллергии требует дальнейшего изучения. В настоящее время в фокусе внимания специалистов - проведение исследований при аллергии к молоку, яйцу и арахису.

При пищевой аллергии задача АСИТ заключается в развитии у пациента устойчивой невосприимчивости и долговременной толерантности к пищевому аллергену. Однако результат иммунотерапии часто носит временный характер, и рецидив пищевой аллергии часто наблюдается после прекращения регулярного приема поддерживающей дозы пищевого аллергена. Именно поэтому в настоящее время стоит вопрос определения оптимальной длительности иммунотерапии пищевыми аллергенами.

В качестве методов АСИТ, применяемых при пищевой аллергии, возможны: оральная иммунотерапия, сублингвальная иммунотерапия. Другими экспериментальными методами являются эпикутанная и интранодуллярная иммунотерапия. Однако АСИТ при пищевой аллергии, вне зависимости от метода, всегда сопряжена с высоким риском анафилаксии.

Оральная иммунотерапия - это наиболее перспективный и эффективный метод, который позволяет достичь десенсибилизации к значительному количеству пищевого аллергена [10]. Целью оральной иммунотерапии является обеспечение индивидуальной защиты от случайного проглатывания аллергена путем повышения порога чувствительности к аллергену. Основной нерешенной проблемой при оральной иммунотерапии является достижение консенсуса относительно доз аллергена и схемы его введения. Иммунотерапия пищевыми аллергенами вызывает десенсибилизацию, однако требует продолжительного периода времени лечения. Может ли иммунотерапия пищевыми аллергенами вызывать длительную толерантность, при которой лечение может быть прекращено, - определенно сказать нельзя.

В руководстве по аллерген-специфической иммунотерапии EAACI оральная иммунотерапия рекомендована как метод с высокой краткосрочной эффективностью в отношении аллергии на молоко, яйцо и арахис с возраста 4 или 5 лет. В то же время в документе не приводится рекомендуемых схем ввода продукта. Фармацевтические компании не выпускают лечебные препараты пищевых аллергенов, что затрудняет широкое распространение метода [11]. Считается, что оральная иммунотерапия с применением необработанных или термически обработанных продуктов более эффективна, чем ПКИТ [12].

Практически начало оральной иммунотерапии значимым пищевым аллергеном начинается с дозы ниже пороговой, то есть минимальной дозы, которая требуется для инициации аллергической реакции. В процессе оральной иммунотерапии с течением времени для достижения иммунной толерантности ежедневная минимальная доза аллергена (в миллиграммовом диапазоне) постепенно увеличивается, например, каждые 2 нед в течение нескольких месяцев. При оральной иммунотерапии по сравнению с другими методами АСИТ вводятся достаточно большие суммарные дозы аллергена. В результате оральной иммунотерапии можно достичь не только переносимости того количества аллергена, чтобы избежать опасной для жизни реакции из-за случайного воздействия, но и десенсибилизации в такой степени, что будет возможно употребление значимых пищевых аллергенов в минимальном количестве (граммах). Вследствие того, что наиболее распространенной и значимой является аллергия к яйцу и коровьему молоку, в отношении именно этих продуктов имеется большинство исследований [12–15].

Следует отметить, что достигнутые эффекты при оральной иммунотерапии нестабильны и недолговременны. Вопрос длительности сохранения толерантности остается открытым. В одном из исследований показано, что десенсибилизация в ходе оральной иммунотерапии была достигнута у всех пациентов, в течение полугода дети могли употреблять яйцо без последствий, однако после 3-месячного перерыва толерантность сохранялась только у трети пациентов. Возможно, кратковременные эффекты оральной иммунотерапии диктуют необходимость более длительных курсов терапии и продолжения планового употребления аллергенов яйца в постоянном режиме в течение жизни [16, 17]. В другом двойном слепом рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании с участием детей, получавших оральную иммунотерапию куриным яйцом, было выявлено, что лишь около трети пациентов сохраняли толерантность через 2 года [18].

Оральная иммунотерапия особенно при наращивании дозы сопряжена с высокими рисками серьезных побочных реакций, таких как анафилаксия и эозинофильный эзофагит. В связи с этим пациенты должны быть информированы о возможных серьезных последствиях такого лечения.

Пищевая аллергия на арахис - одна из самых распространенных, особенно среди детей США. В США, например, от нее страдает 1,4% детей и 0,6% взрослых. В России единой статистики по стране нет. Таким пациентам приходится избегать и постоянно проверять состав продуктов, в которых может содержаться арахис или его следы. Даже мельчайшие количества аллергена (одна тридцатая часть ореха) могут вызвать опасные осложнения, вплоть до анафилактического шока и смерти. В связи с этим перспективной кажется проведение оральной иммунотерапии при аллергии на арахис. В одном из зарубежных исследований продемонстрирован успешный результат оральной гипосенсибилизации арахисом, в результате которой 41,9% пациентов группы контроля стали переносить дозу в 4,5 г в сравнении с плацебо [19].

Недавно закончено исследование биофармацевтической компании Aimmune Therapeutics, Inc., занимающейся разработкой и выводом на рынок способов терапии потенциально угрожающих жизни пищевых аллергических состояний в США. В конце января 2020 г. компания объявила об одобрении FDA препарата Palforzia для проведения АСИТ у пациентов с аллергией на арахис. Препарат Palforzia предназначен для проведения оральной иммунотерапии у пациентов с подтвержденным диагнозом аллергии на арахис. Результатом этой терапии ожидается уменьшение симптомов аллергических реакций, включая анафилаксию, которые могут возникнуть при случайном воздействии арахиса. Применение препарата возможно с четырехлетнего возраста. Препарат представляет собой капсулы, содержащие арахисовые аллергены в небольших количествах, и предназначен для ежедневного перорального применения. Препарат следует применять на фоне диеты, исключающей употребление арахиса. Первую (меньше 30 мг) дозу препарата пациент получает под наблюдением специалистов, так как не исключено развитие осложнений. Каждые несколько недель дозировка увеличивается, пока не достигнет максимальной терапевтической, которая примерно равна двум арахисовым бобам или небольшому бутерброду с арахисовым маслом. В финальном рандомизированном контролируемом испытании препарата Palforzia приняли участие 496 испытуемых в возрасте от 4 до 17 лет. У каждого из них развивалась аллергическая реакция на прием всего 30 мг арахисового белка. К концу исследования, которое длилось 12 мес, оказалось, что у 50,3% пациентов из экспериментальной группы развилась устойчивость к однократному приему 1000 мг аллергена, по сравнению с 2,4% в контрольной группе (p <0,00001). А на меньшую дозировку в 300 мг развилась устойчивость у 96,3% пациентов, получавших лечение. К сожалению, еще на этапе отбора выяснилось, что далеко не все переносят препарат даже в стартовой дозировке. 12,4% испытуемых покинули исследование в связи с возникновением тяжелых аллергических реакций на лечение, таких как воспаление пищевода, хроническая тошнота, рвота и диарея [20]. Конечно, пока рано говорить об эффективном лечении пищевой аллергии. Новый препарат служит исключительно для профилактики серьезных осложнений при случайных контактах с аллергенами. На первых порах лекарственное средство будет доступно только в США. Кроме того, компания ведет разработку альтернативных средств доставки аллергенов в организм, например, в виде капель под язык и эпикутанных пластырей.

Сублингвальное применение аллергенов рассматривается также как перспективный метод лечения пищевой аллергии. Введение пищевого аллергена осуществляется под язык, где его держат в течение нескольких минут, так же как и при лечении респираторной аллергии. Исследования пока носят единичный характер. Первое плацебо-контролируемое исследование при пищевой аллергии на фундук было опубликовано в 2005 г. [21]. При проведении СЛИТ при пищевой аллергии доза аллергена значительно ниже (<10 мг/сут), а профиль безопасности - несравнимо выше, но порог реактивности, достигаемый в конце лечения, обычно недостаточно высок. Несмотря на то что во время проведения иммунотерапии отмечается увеличение уровня IgG-специфических антител к вводимым пищевым аллергенам и уменьшение базофильной активации, в настоящее время достоверных биомаркеров, позволяющих прогнозировать клинический ответ на проведение данного вида терапии, нет. Эффективность может быть подтверждена только посредством проведения орального провокационного теста. Хороший клинический ответ при проведении иммунотерапии при пищевой аллергии ассоциирован с более продолжительной АСИТ и большим количеством продуктов, к которым необходимо сформировать толерантность [9].

Эпикутанная иммунотерапия является экспериментальным методом, сутью которого является применение накожного пластыря с аллергеном в минимальных дозах, имеющим перспективу, так как при данном способе доставки имеется меньший риск нежелательных явлений и возможно, что некоторые пациенты предпочтут ношение кожного пластыря оральному введению продукта [23]. Преимуществом эпикутанной иммунотерапии является то, что эпидермис содержит большое количество антигенпрезентирующих клеток, что обеспечивает возможность местного презентирования антигенов при одновременном отсутствии системных реакций на аллергены, так как в эпидермисе нет кровеносных сосудов [23]. Однако и при этом способе доставки аллергена возможны нежелательные явления в виде контактного дерматита в месте прикрепления пластыря. В настоящее время в стадии разработки находится патч с аллергеном арахиса. В отношении пищевой аллергии в систематическом обзоре литературы отмечается большая гетерогенность в протоколах, применяемых различными исследовательскими группами в таких вопросах, как метод обработки и изготовления пищевых аллергенов; наращивание дозы аллергена и ее поддержание; процедура проведения оральных провокационных тестов. Вследствие этого нет единого утвержденного протокола, который продемонстрировал бы эффективность и безопасность проведения АСИТ при пищевой аллергии в масштабных мультицентровых исследованиях.

В настоящее время эксперты сходятся во мнении, что, хотя иммунотерапия при пищевой аллергии является важной областью исследования, она все еще не готова для рутинного применения в медицинской практике вследствие риска развития побочных реакций, включая анафилаксию. Такая процедура лечения должна проводиться только в высокоспециализированных центрах с квалифицированным персоналом и необходимым оборудованием для оказания неотложной помощи, а также соответствующим клиническим протоколом, одобренным местным этическим комитетом [9, 24, 25].

Список литературы

  1. Сидорович О.И., Лусс Л.В. Пищевая аллергия. Принципы диагностики и лечения // Медицинский совет. 2016. № 16. C. 141–147.

  2. Воусе J.A., Assa’ad A., Burks W.A. et al. Guidelines for the diagnosis and management of food allergy in the United States: report of the NIAID-sponsored expert panel // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 126, Suppl. 6. P. 58.

  3. Inomata N., Morita A., Kirino M. et al. Oral allergy syndrome due to plant-derived foods: a clinical review of 63 patients over a period of 6 years // Arerugi. 2007. Vol. 56. P. 1276–1284.

  4. Сергеев А.В., Мокроносова М.А. Синдром оральной аллергии // Медицинская иммунология. 2011. Т. 13, № 1. C. 7–28.

  5. Курбачева О.М., Муажон Ф., Павлова К.С. и др. Феномен перекрестной реактивности аллергенов и аллерген-специфическая иммунотерапия // Российский аллергологический журнал. 2010. Т. 1, № 7. C. 32–40.

  6. Bucher X., Pichler W.J., Dahinden C.A. et al. Effect of tree pollen specific, subcutaneous immunotherapy on the oral allergy syndrome to apple and hazelnut // Allergy. 2004. Vol. 59. P. 1272–1276.

  7. Asero R. How long does the effect of birch pollen injection SIT on apple allergy last? // Allergy. 2003. Vol. 58. P. 435–438.

  8. Nucera E., Aruanno A., Lombardo C. et al. Apple desensitization in two patients with PR-10 proteins allergy // Allergy. 2010. Vol. 65. P. 1060–1061.

  9. Jutel M., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergy immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136, N. 3. P. 556–568.

  10. Tang M.L.K., Mullins R.J. Food allergy: is the prevalence increasing? // Intern. Medical. J. 2017. Vol. 47. P. 256–261.

  11. Pajno G.B. Fernandez-Rivas M., Arasi S. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: IgE mediated food allergy // Allergy. 2018. Vol. 73. P. 799–815.

  12. Burks A.W., Jones S.M., Wood R.A. et al. Oral immunotherapy for treatment of egg allergy in children // N. Engl. J. Med. 2012. Vol. 367. P. 233–343.

  13. Buchanan A.D., Green T.D., Jones S.M. et al. Egg oral immunotherapy in non-anaphylactic children with egg // Allergy. Immunol. 2007. Vol. 119. P. 199–205.

  14. Vickery B.P., Pons L., Kulis M. et al. Individualized IgE dosing based on oral egg immunotherapy and the development of tolerance // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2010. Vol. 105. P. 444–450.

  15. Romantsik O., Tosca M.A., Zappettini S. et al. Oral and sublingual immunotherapy for egg allergy (Review) // Cochrane Database Syst. Rev. 2018. Issue 4. CD010638.

  16. Caminiti L., Pajno G.B., Crisafulli G. et al. Oral immunotherapy for egg allergy: a double-blind placebo-controlled study, with postdesensitization follow-up // J. Allergy Clin. Immunol Pract. 2015. Vol. 3, N. 4. P. 532–539.

  17. Tang M.L., Martino D.J. Oral immunotherapy and tolerance induction in childhood // Pediatr. Allergy Immunol. 2013. Vol. 24, N. 6. P. 512–520.

  18. Sindher S., Fleischer D.M., Spergel J.M. Oral immunotherapy for treatment of egg allergy in children // N. Engl. J. Med. 2012. Vol. 367. P. 233–243.

  19. Blumchen K., Trendelenburg V., Ahrens F. et al. Efficacy, safety, and quality of life in a multicenter, randomized, placebo-controlled trial of low-dose peanut oral immunotherapy in children with peanut allergy // J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2019. Vol. 7, N. 2. P. 479–491.

  20. Aimmune Therapeutics’ Pivotal Phase 3 PALISADE Trial of AR101 Meets Primary Endpoint in Patients with Peanut Allergy. https://www.drugs.com/clinical_trials/aimmune-therapeutics-pivotal-phase-3-palisade-trial-ar101-meets-primary-endpoint-patients-peanut-17717.html.

  21. Enrique E., Pineda F., Malek T. et al. Sublingual immunotherapy for hazelnut food allergy: a randomized, double-blind, placebo-controlled study with a standardized hazelnut extract // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 116. P. 1073–1079.

  22. Sindher S., Fleischer D.M., Spergel J.M. Advances in the treatment of food allergy: sublingual and epicutaneous immunotherapy // Immunol. Allergy Clin. North Am. 2016. Vol. 36. P. 39–54.

  23. Casale T.B., Stokes J.R. Immunotherapy: what lies beyond // J. Allergy Clin. Immunology. 2014. Vol. 133. P. 612–619.

  24. de Silva D., Geromi M., Panesar S.S. et al. Acute and long-term management of food allergy: systematic review // Allergy. 2014. Vol. 69. P. 159–167.

  25. Muraro A., Werfel T., Hoffmann-Sommergruber K. et al. EAACI food allergy and anaphylaxis guidelines: diagnosis and management of food allergy // Allergy. 2014. Vol. 69. P. 1008–1025.

Глава 11. Аллерген-специфическая иммунотерапия и инсектная аллергия

Инсектная аллергия - это аллергия, возникающая при укусе, ужалении насекомых, при соприкосновении с ними, вдыхании частиц тел насекомых или продуктов их жизнедеятельности [1].

В последние годы отмечается неуклонный рост инсектной аллергии. Инсектная аллергия встречается у 1–7% населения во всем мире с большей распространенностью среди лиц среднего и старшего возраста [2]. Распространенность аллергических реакций на укусы насекомых в России составляет 0,1–0,4% в зависимости от региона с пиком в период их активного размножения [3].

Всех насекомых можно разделить на 2 большие группы в зависимости от пути поступления в организм аллергена:

  • жалящие насекомые - представители отряда перепончатокрылых, семейств Apidae (пчелы, шмели), Vespidae (настоящие осы, шершни) и Formicidae (муравьи);

  • нежалящие насекомые - некусающие насекомые (мотыль, моль, бабочки, саранча, кузнечики, ручейники); кусающие (тараканы, жуки); кровососущие (комары, мошки, слепни, клопы, блохи, вши).

Сенсибилизация при контакте с насекомыми может происходить парентеральным, ингаляционным, контактным и алиментарным путем [1]. Аллергены насекомых выделены, охарактеризованы и зарегистрированы в Международной номенклатуре аллергенов (IUIS), опубликованной на веб-сайте www.allergen.org. Наиболее изучены аллергены жалящих насекомых.

После укуса жалящими насекомыми у большинства людей появляются типичные местные симптомы и только у 2,4–26,4% формируется локальная аллергическая реакция [1, 4].

Ужаление перепончатокрылыми насекомыми (пчелами и осами) может вызывать системные, а иногда и фатальные анафилактические реакции. Распространенность различных системных реакций на ужаления пчел и ос варьирует в пределах 0,3–7,5% у взрослых и до 3,4% у детей [1, 5].

В Российской Федерации наибольшее значение в развитии инсектной аллергии принадлежит жалящим насекомым семейства Apidae , к которому относят пчел и шмелей семейства Vespidae (шершни, осы настоящие, длинные, бумажные), а также Formicidae - семейство муравьев [6].

Яд перепончатокрылых содержит низкомолекулярные соединения (биогенные амины, аминокислоты, фосфолипиды), основные пептиды (мелиттин, апамин, и др.) и высокомолекулярные белки-ферменты (фосфолипаза А2, гиалуронидаза, щелочная и кислая фосфатазы, эстеразы, ариламидазы). Биогенные амины вызывают вазодилатацию, отек и боль. Пептиды и фосфолипазы ответственны за развитие токсических эффектов. Высокомолекулярные пептиды и ферменты, как правило, вызывают аллергические реакции [7].

Согласно имеющимся данным риск развития аллергии на ужаления перепончатокрылыми насекомыми возрастает с увеличением количества укусов, особенно если 2 укуса возникают в течение короткого периода времени (до 2 мес) [8].

Сердечно-сосудистые заболевания и их лечение с помощью β-блокаторов и ингибиторов ангиотензин-превращающего фермента связаны с более тяжелыми и даже фатальными системными реакциями при ужалении. Мастоцитоз и синдром моноклональной активации тучных клеток также является серьезным фактором риска развития тяжелых анафилактических реакций у больных с аллергией к яду жалящих насекомых. В недавних исследованиях была показана положительная корреляция между базальным уровнем триптазы и тяжестью системных реакций после ужаления у пациентов без мастоцитоза, не получавших ранее АСИТ [9–11].

Аллергические реакции на укусы жалящих насекомых у пациентов с атопическими заболеваниями, такими как аллергический ринит, бронхиальная астма или атопический дерматит, встречаются с той же частотой, что и в целом у населения, но системные и местные реакции у больных с атопией и дефектом кожного барьера протекают значительно тяжелее [12].

Гиперчувствительность к яду перепончатокрылых может быть опосредована иммунологическими (IgE-опосредованная или не-IgE-опосредованная аллергия) и неиммунологическими механизмами [13].

По степени выраженности и механизму развития реакции на укусы перепончатокрылых подразделяют на:

  • нормальные местные реакции;

  • большие (выраженные) местные реакции;

  • системные аллергические;

  • системные токсические реакции;

  • необычные реакции.

В практической аллергологии наиболее часто для верификации диагноза используют классификацию аллергических реакций на ужаление перепончатокрылыми насекомыми, предложенную Mueller [14].

Нормальные местные реакции. Нормальная местная реакция на укус перепончатокрылых, не имеющая отношения к аллергии, представляет собой болезненный, иногда зудящий локальный волдырь или эритему, сопровождаемые отеком диаметром до 5–10 см. Как правило, в течение нескольких часов симптомы проходят самостоятельно.

Большие (выраженные) местные реакции. Большие местные реакции встречаются у 2,4–26,4% населения в целом [1]. Большие местные реакции не являются прогностическими предикторами развития системных аллергических реакций при ужалениях перепончатокры­лыми в дальнейшем. Вероятность развития анафилаксии на последующие укусы составляет не более 5% [1, 15]. Большие местные реакции сопровождаются зудом и болью и могут вызывать большой дискомфорт, особенно когда они локализуются в области лица. При ужалениях в конечности большие местные реакции иногда сопровождаются увеличением лимфатических узлов и лимфангитом. Местные аллергические реакции на яд насекомых также могут быть опасными при ужалении в область головы или шеи. Прогрессивно нарастающий отек в области рта и горла может привести к асфиксии. Патогенетические механизмы больших местных реакций различны, но основным у большинства из них выявляется IgE-опосредованный механизм. В других случаях возможен клеточный или смешанный механизм развития [16].

Системные реакции. Системная аллергия на яд перепончатокрылых - наиболее частая причина анафилаксии в Европе, на нее приходится большинство тяжелых реакций, возникающих у взрослых, и вторая по частоте причина анафилаксии у детей. В Европе и США системные реакции чаще всего вызваны укусами ос [15]. В Российской Федерации большинство случаев анафилаксии как проявление инсектной аллергии также связано с ужалением ос [17]. Симптомы обычно развиваются в течение нескольких минут от ужаления и варьируют от кожных проявлений в виде крапивницы и/или ангиоотека до анафилактического шока [11]. Следует отметить, что половина смертельных случаев от анафилаксии при инсектной аллергии происходит у людей, у которых не отмечено ранее аллергических реакций на ужаление [18].

Системные токсические реакции. Ряд компонентов яда перепончатокрылых (фосфолипаза и гиалуронидаза) оказывают токсическое действие. Токсические реакции зависят от состава и от дозы яда и возникают только после многочисленных, обычно от 50 до нескольких сотен укусов.

Необычные реакции. Необычные реакции на ужаления перепончатокрылыми насекомыми встречаются редко, а систематические исследования недоступны. В литературе описаны синдромы, связанные с ужалениями перепончатокрылыми, с проявлениями в виде лихорадки, артралгий, крапивницы, ангионевротических отеков, лимфаденопатии и неврологических симптомов; периферической невропатии; экстрапирамидных синдромов и острого диссеминированного энцефаломиелита [19]. За их развитие могут быть ответственны токсические или не-IgE-опосредованные иммунологические механизмы. Причинно-следственная связь с укусом для многих из этих необычных реакций сомнительна, особенно если они основаны только на одном или нескольких сообщениях о случаях.

Диагностика аллергии к ядам перепончатокрылых насекомых включает тщательный сбор анамнеза, кожное тестирование и определение в сыворотке крови специфических IgE. Пациентам, имеющим только большие локальные реакции на ужаления, диагностические тесты, как правило, не рекомендуются [11, 20, 21]. Врачам следует также учитывать, что повышенные уровни сывороточного IgE к ядам перепончатокрылых у пациентов с нормальными или большими местными реакциями в анамнезе не являются прогностическими для будущего развития системных реакций [11, 22].

Пациенты, перенесшие системные реакции на ужаления перепончатокрылыми насекомыми, должны быть обязательно направлены к врачу аллергологу-иммунологу и обследованы для выявления причинно-значимого насекомого, так как они являются кандидатами для проведения АСИТ ядами перепончатокрылых. В этом случае диагностические тесты включают кожные пробы и/или определение аллерген-специфических сывороточных IgE к яду [23].

Повышенный исходный уровень триптазы в сыворотке крови может быть связан с тяжелыми системными реакциями при кожном мастоцитозе, однако в настоящее время вопрос ценности и необходимости измерения базальной триптазы в сыворотке крови пациентам с системными аллергическими реакциями на жалящих насекомых остается открытым [11].

Каждый пациент, перенесший системную аллергическую реакцию на ужаление перепончатокрылыми насекомыми, должен быть направлен к врачу-аллергологу для консультации по оказанию самостоятельной неотложной помощи при последующих ужалениях и определения возможности проведения АСИТ [24].

АСИТ инсектными аллергенами в настоящее время является наиболее эффективным методом лечения аллергии на яд перепончатокрылых с результатом, сохраняющимся в течение нескольких лет после прекращения лечения. Специфическая иммунотерапия аллергенами из ядов перепончатокрылых насекомых - это единственный способ предотвращения системных реакций на ужаление насекомых, в том числе тяжелых анафилактических реакций с летальным исходом. АСИТ аллергеном из яда перепончатокрылых насекомых эффективна у подавляющего числа пациентов [25]. АСИТ значительно улучшает качество жизни этих пациентов, избавляя от страха повторных анафилаксий. АСИТ инсектными аллергенами быстро снижает риск развития анафилаксии после укуса на 98%, а поддерживающее лечение в большинстве случаев можно прекратить через 5 лет [26]. К 4 годам инъекций частота последующих укус-индуцированных реакций составляет 3%. Процент реакций может незначительно увеличиваться после прекращения инъекций, но не сообщалось, что он составляет >10% в последующем [27]. АСИТ инсектными аллергенами наиболее результативна при длительном лечении пациентов с анафилаксией в анамнезе. Считается, что 5-летняя АСИТ инсектными аллергенами защищает большинство пациентов, причем 3-летней длительности терапии, вероятно, достаточно в определенных группах (например, для детей с легкими реакциями). Пожизненное лечение можно рекомендовать пациентам с особыми факторами риска тяжелых реакций [28].

Специфическая иммунотерапия аллергенами из ядов состоит из фазы достижения максимальной терапевтической дозы и фазы основного лечения. АСИТ инсектными аллергенами показана при анафилаксии II степени (по классификации Ринга и Мессмера) и при наличии IgE-опосредованной сенсибилизации. Анафилактическая реакция на укус I степени в сочетании с повышенным риском повторного воздействия и ухудшением качества жизни также является показанием для АСИТ инсектными аллергенами. Согласно рекомендациям EAACI, АСИТ инсектными аллергенами может быть начата у детей в возрасте до 5 лет при наличии анафилактической реакции на укус II степени. Продолжительность АСИТ ядом насекомых обсуждается в течение многих лет. Большинство авторов рекомендует продолжать АСИТ до получения отрицательных кожных тестов и специфических IgE. Длительное наблюдение за пациентами демонстрирует сохранение эффективности АСИТ, проведенной в течение 3–5 лет, и после прекращения лечения. Рецидив заболевания после окончания АСИТ встречается чаще у пациентов, имеющих определенные факторы риска. На сегодняшний день определены факторы риска рецидива системных реакций после отмены АСИТ: пожилой возраст; сопутствующие сердечно-сосудистые и легочные заболевания; более тяжелая клиническая картина до лечения; аллергия на пчелиный яд; низкий порог кожной реактивности; патологии, обусловленные тучными клетками; повышение уровня триптазы в сыворотке крови; тяжелые реакции перед АСИТ инсектными аллергенами; системные побочные реакции при проведении АСИТ инсектными аллергенами (на лечебные инъекции или укусы); повторные укусы после АСИТ инсектными аллергенами; интервал времени после окончания АСИТ. Для таких пациентов рекомендовано продолжать инъекции аллергена пожизненно [29, 30].

Тем не менее вопрос о том, когда можно безопасно прекратить АСИТ инсектными аллергенами для обеспечения долгосрочной защиты, является открытым. Недавно были опубликованы результаты исследования, целью которого было оценить эффективность АСИТ инсектными аллергенами в течение длительного периода наблюдения после отмены и исследовать потенциальные предикторы тяжелых реакций после повторных укусов в клинической практике. В исследование вошли 257 пациентов, получавших лечение экстрактами яда осы или медоносной пчелы, которые закончили прием АСИТ инсектными аллергенами в июле 2018 г. Из этих 257 пациентов 147 (57,2%) были повторно ужалены после прекращения АСИТ. Средняя продолжительность АСИТ инсектными аллергенами в группе повторно ужаленных составила 10 лет (от 2 до 25 лет), а среднее время наблюдения после прекращения АСИТ составило 4 года (от 1 до 26 лет). Только у 5 (3,4%) пациентов наблюдались системные реакции после прекращения иммунотерапии, у 17 (11,6%) регистрировались большие локальные реакции, а у остальных 125 (85%) человек реакций не было вообще. Общая частота системных реакций была на 3,4% ниже по сравнению с ранее сообщавшейся в литературе. По мнению авторов, это связано с более длительным периодом лечения (в среднем 10 лет) и индивидуальным подходом к прекращению АСИТ с учетом факторов риска системных реакций. В данном исследовании впервые сообщено о результатах повторных укусов в течение длительного периода наблюдения до 26 лет. В частности, в исследование был включен 31 пациент (12%) со сроком наблюдения более 10 лет после прекращения АСИТ. Согласно опубликованным данным вероятность развития системных реакций через 5 лет после окончания АСИТ составила 2,6%, через 10 лет - 3,8% и через 20 лет - 10,1%. Отдельно была проанализировна группа пациентов, у которых наблюдались реакции во время АСИТ инсектными аллергенами из-за повторных укусов перепончатокрылых (n = 20) или в результате инъекций аллергенов (n = 2). После прекращения АСИТ 11 человек из них были повторно ужалены, и только у 2 из них развились большие локальные реакции. Оценивалось и значение сывороточной триптазы. Из 11 пациентов с высоким уровнем сывороточной триптазы (то есть ≥11,5 пг/л, от 11,6 до 32 пг/л) четверо были повторно ужалены более чем один раз после окончания АСИТ, и только в двух случаях развились большие локальные реакции. В остальных случаях реакции отсутствовали [28].

Наращивание дозы может проводиться по ускоренной схеме или классическим методом. Согласно недавно проведенному проспективному зарубежному исследованию протокол ультрабыстрого наращивания дозы аллергена в начальной фазе АСИТ является привлекательным подходом, при этом такой подход одинаково безопасен как у взрослых, так и у детей. Исследуемая популяция включала 134 ребенка (средний возраст 12,6±3,7 года, мальчики - 70,1%) и 207 взрослых (средний возраст 42,4±14,0 года, мужчины 47,8%). Количество детей в подгруппах аллергии на пчелиный яд и осиный яд было сопоставимо, хотя сенсибилизация к яду осы преобладала во взрослой группе (70,1%). Кожная реакция на оба яда чаще встречалась у детей, чем у взрослых (p <0,001), однако у детей были более высокие концентрации общего IgE и специфического IgE к яду пчелы (оба значения p <0,001). Системные аллергические реакции при ультрабыстром наращивании дозы возникали у 6,2% пациентов (3,7% у детей и 7,7% у взрослых). У взрослых системные реакции чаще возникали у пациентов, получавших яд пчелы, чем экстракты яда осы (21,4% против 2,6%; p <0,001). Та же картина наблюдалась у детей (7,2% против 0%; p = 0,058). Однако у детей системные реакции встречались реже, чем у взрослых. Тяжесть системных реакций не отличалась у детей и взрослых [31].

На сегодняшний день маркеров эффективности АСИТ инсектными аллергенами in vitro не установлено. Провокационная проба с укусом живым насекомым во время АСИТ инсектными аллергенами по-прежнему является предпочтительным методом оценки эффективности терапии, хотя и не стандартизированным. Пациенты, у которых сохраняется реакция на провокацию укусом во время АСИТ инсектными аллергенами, должны продолжить лечение, используя удвоенную поддерживающую дозу. Продолжительность лечения в этом случае составляет 3–5 лет, начиная с момента повышения дозы. Диагностическое тестирование с укусом не рекомендуется в Германии, поскольку оно считается ненадежным и связано с высокими рисками для пациента [32].

Если АСИТ инсектными аллергенами плохо переносится, то переносимость может быть достигнута с помощью дополнительного применения омализумаба. Омализумаб продемонстрировал эффективность в защите пациентов от тяжелых реакций, связанных с АСИТ инсектными аллергенами, особенно у пациентов с высоким риском развития тяжелых реакций. Тем не менее до сих пор не определены допустимая доза и курс лечения омализумабом для достижения переносимости и обеспечения безопасности при АСИТ инсектными аллергенами. В будущем, возможно, и другие биологические препараты могут быть использованы для предотвращения тяжелых реакций во время АСИТ инсектными аллергенами [25].

Модифицированные экстракты, в том числе абсорбированные тирозином, также могут повысить безопасность АСИТ инсектными аллергенами, сохраняя при этом эффективность [33].

Достаточно широкая распространенность инсектной аллергии в разных регионах Российской Федерации, разнообразная тяжесть клинических проявлений как местных, так и системных, свидетельствует об актуальности данной темы. Пациентам, имеющим в анамнезе системные реакции, своевременная АСИТ жизненно необходима. К сожалению, в настоящий момент в нашей стране не зарегистрированы ни отечественные, ни зарубежные аллерговакцины для проведения АСИТ при инсектной аллергии.

Список литературы

  1. Зяблицкая Н.К., Ковалева Ю.С., Кокина О.А. и др. Инсектная аллергия: местные и системные проявления // Клиническая дерматология и венерология. 2020. Т. 5, № 19. С. 691–699.

  2. Heddle R., David B.K., Golden M.D. World Allergy Organization. Allergy to insect stings and bites (электронный ресурс). https://www.worldallergy.org/education-and-programs/education/allergic-disease-resource-center/professionals/allergy-to-insect-stings-and-bites.

  3. Тамразова О.Б., Стадникова А.С., Воробьева А.С. Кожные реакции на укусы насекомых // Педиатрия. Consilium Medicum. 2019. № 3. C. 34–39.

  4. Bilò M.B., Bonifazi F. The natural history and epidemiology of insect venom allergy: clinical implications // Clin. Exp. Allergy. 2009. Vol. 39, N. 10. P. 1467–1476.

  5. Bilò B.M., Bonifazi F. Epidemiology of insect-venom anaphylaxis // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 8, N. 4. P. 330–337.

  6. Федоскова Т.Г., Лусс Л.В. Кожные проявления инсектной аллергии. Принципы медикаментозной терапии и профилактики // Российский аллергологический журнал. 2014. Т. 3. С. 37–46.

  7. Аллергология и иммунология / Под ред. Р.М. Хаитова, Н.И. Ильиной. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2014. 656 с.

  8. Antonicelli L., Bilò M.B., Bonifazi F. Epidemiology of Hymenoptera allergy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2002. Vol. 2, N. 4. P. 341–346.

  9. Ruëff F., Przybilla B., Biló M.B. et al. Predictors of severe systemic anaphylactic reactions in patients with Hymenoptera venom allergy: importance of baseline serum tryptase-a study of the European Academy of Allergology and Clinical Immunology Interest Group on Insect Venom Hypersensitivity // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 124, N. 5. P. 1047–1054.

  10. Bilò M.B., Tontini C., Martini M. et al. Clinical aspects of hymenoptera venom allergy and venom immunotherapy // Eur. Ann. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 51, N. 6. P. 244–258.

  11. Golden DBK. Insect sting allergy: new guidelines from the European and USA consensus groups: algorithms and recommendations // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 19, N. 5. P. 456–461.

  12. Settipane G.A., Newstead G.J, Boyd G.K. Frequency of Hymenoptera allergyin an atopic and normal population // J. Allergy Clin. Immunol. 1972. Vol. 50, N. 3. P. 146–150.

  13. Antonicelli L., Bilò M.B., Bonifazi F. Epidemiology of hymenoptera allergy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2002. Vol. 2, N. 4. P. 341–346.

  14. Mueller H.L. Diagnosis and treatment of insect sensitivity // J. Asthma Res. 1966. Vol. 3, N. 4. P. 331–333.

  15. Bilò M.B., Tontini C., Martini M. et al. Clinical aspects of hymenoptera venom allergy and venom immunotherapy // Eur. Ann. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 51, N. 6. P. 244–258.

  16. Severino M., Bonadonna P., Passalacqua G. Large local reactions from stinging insects: from epidemiology to management // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 9, N. 4. P. 334–337.

  17. Фассахов Р.С., Решетникова И.Д., Сафина Л.Ф. Анафилактические реакции на ужаление перепончатокрылыми — ситуация в регионе Казани и существующие проблемы // Российский аллергологический журнал. 2014. № 1. C. 53–58.

  18. Schaarschmidt M.L., Gutknecht M., Schoeben L. et al. Disease burden, psychological well-being and attitudes regarding the set of emergency medication in adults with insect venom allergy // Int. Arch. Allergy Immunol. 2018. Vol. 176, N. 2. P. 150–156.

  19. Mingomataj E.Ç., Bakiri A.H., Ibranji A. et al. Unusual reactions to hymenoptera stings: what should we keep in mind? // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2014. Vol. 47, N. 1. P. 91–99.

  20. Терехова Е.П. Аллергия к жалящим насекомым: современные подходы к диагностике и терапии // Эффективная фармакотерапия. 2017. Т. 7, № 1. C. 58–66.

  21. Mohd Adnan K. A review on Respiratory allergy caused by insects // Bioinformation. 2018. Vol. 14, N. 9. P. 540–553.

  22. Tripolt P., Arzt-Gradwohl L., Čerpes U. et al. Large local reactions and systemic reactions to insect stings: Similarities and differences // PLoS One. 2020. Vol. 15, N. 4. Art. # e0231747. P. 1–8.

  23. Abrams E.M., Golden DBK. Approach to Patients with Stinging Insect Allergy // Med. Clin. North. Am. 2020. Vol. 104, N. 1. P. 129–143.

  24. Sturm G.J., Varga E.M., Roberts G. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: Hymenoptera venom allergy // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 744–764.

  25. Ridolo E., Pellicelli I., Kihlgren P. et al. Immunotherapy and biologicals for the treatment of allergy to Hymenoptera stings // Expert. Opin. Biol. Ther. 2019. Vol. 19, N. 9. P. 919–925.

  26. Abrams E.M., Golden D.B.K. Approach to patients with stinging insect allergy // Med. Clin. North. Am. 2020. Vol. 104, N. 1. P. 129–143.

  27. Ochfeld E.N., Greenberger P.A. Stinging insect allergy and venom immunotherapy // Allergy Asthma Proc. 2019. Vol. 40, N. 6. P. 372–375.

  28. Martini M., Corsi A., Agolini S. et al. High long-term efficacy of venom immunotherapy after discontinuation // Allergy. Vol. 75, N. 7. P. 1793–1796.

  29. Sturm G.J., Varga E.M., Roberts G. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: Hymenoptera venom allergy // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 744–764.

  30. Федеральные клинические рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии // РААКИ. 2013. C. 13.

  31. Nittner-Marszalska M., Cichocka-Jarosz E., Małaczyńska T. et al. Safety of Ultrarush Venom Immunotherapy: Comparison Between Children and Adults // J. Investig Allergol. Clin. Immunol. 2016. Vol. 26, N. 1. P. 40–47.

  32. Adib-Tezer H., Bayerl C. Honeybee and wasp venom allergy: Sensitization and immunotherapy // J. Dtsch. Dermatol. Ges. 2018. Vol. 16, N. 10. P. 1228–1247.

  33. Severino M., Simioni L., Bonadonna P. et al. Efficacy and safety of honeybee and wasp tyrosine-adsorbed venom immunotherapy // World Allerg. Organ. J. 2019. Vol. 12, N. 12. P. 1–6.

Глава 12. Аллерген-специфическая иммунотерапия и атопический дерматит

Атопический дерматит - распространенное аллергическое заболевание. В зависимости от патогенетических механизмов выделяют IgE-опосредованный тип и не-IgE-опосредованный тип атопического дерматита, обусловленный Т-клеточными реакциями и не связанный с продукцией IgE.

При IgE-опосредованном типе атопического дерматита ведущая роль в механизме развития принадлежит генетически детерминированному доминированию иммунного ответа по Th2-типу. Повышение уровней общего и специфических IgE в сыворотке крови является важным диагностическим критерием атопической гиперчувствительности и позволяет установить патогенетический вариант. IgE-опосредованный тип атопического дерматита характеризуется наличием высокого индекса атопии, то есть выраженным отягощением наследственности аллергическими заболеваниями, выявлением положительных кожных проб с экзогенными аллергенами [1].

АСИТ считается полностью эффективным видом терапии при респираторных атопических заболеваниях, но при атопическим дерматите имеются противоречивые клинические результаты. Вопрос о потенциальной роли АСИТ как метода терапии пациентов с атопическим дерматитом и аэроаллергенной сенсибилизацией все еще остается дискутабельным. АСИТ характеризуется положительным эффектом у пациентов с атопическим дерматитом с определенным видом сенсибилизации. Так, лучшие доказательства эффективности АСИТ получены у пациентов с атопическим дерматитом, сенсибилизированных к клещу домашней пыли. Однако, учитывая скорость иммунного ответа, круглогодичный контакт с клещами, достаточно сложно проследить причинную связь между воздействием пыли и обострениями атопического дерматита.

Атопический дерматит - многофакторное заболевание, со сложным механизмом развития, и сенсибилизация не всегда является основной причиной его развития, поэтому АСИТ при данной патологии показана не всем пациентам [2]. Важным условием для проведения АСИТ является наличие у пациента именно IgE-опосредуемого механизма болезни. В связи с этим при планировании АСИТ пациенту с атопическим дерматитом необходимо проводить качественную и полноценную диагностику с целью минимизации рисков ухудшения течения заболевания и получения максимального эффекта от данной терапии. Проведение АСИТ без четкого определения показаний неизбежно приведет к дискредитации метода.

Исторически при назначении АСИТ для лечения респираторной аллергии исследователи стали отмечать положительный эффект в улучшении течения и атопического дерматита [5]. Было показано, что АСИТ аэроаллергенами при атопическом дерматите приводила к снижению индекса SCORAD (Scoring of Atopic Dermatitis Severity Index) и количеству используемых для лечения топических глюкокортикоидов [5–7, 20]. Однако очевидным стал факт, что АСИТ может улучшить течение атопического дерматита лишь у отдельных пациентов [21]. Положительные результаты удается достигнуть только в случаях IgE-зависимого атопического дерматита [5, 6]. Эффективность и безопасность АСИТ при атопическом дерматите была продемонстрирована в отдельных наблюдениях, в исследованиях с малыми когортами и нескольких более крупных многоцентровых исследованиях. Анализ клинических случаев и исследования небольших когорт пациентов продемонстрировал положительное влияние АСИТ на состояние кожи у таких больных.

В настоящее время определено, что атопический дерматит не является противопоказанием к проведению АСИТ у пациентов с другими респираторными аллергическими заболеваниями, такими как аллергический ринит и бронхиальная астма. Согласно исследованиям этот метод лечения может быть эффективен при сочетании атопического дерматита с бронхиальной астмой, аллергическим риноконъюнктивитом и сенсибилизацией к клещам домашней пыли. АСИТ возможна и у пациентов с изолированным атопическим дерматитом при наличии четких доказательств возникновения обострений этого заболевания с экспозицией к причинно-значимым аллергенам [2].

Согласно международному консенсусу по АСИТ, пациенты с положительным IgE-ответом и симптомами атопического дерматита, триггером которого являются четко идентифицируемые аллергены, являются потенциальными кандидатами для проведения АСИТ [3].

Согласно отечественным клиническим рекомендациям АСИТ возможно проводить как пациентам с атопическим дерматитом с сопутствующими респираторными аллергическими заболеваниями, так и пациентам с атопическим дерматитом без респираторных аллергических заболеваний при выявленной сенсибилизации к аллергенам клещей домашней пыли [4].

При проведении АСИТ предпочтительно использование современных стандартизированных лечебных аллергенов.

АСИТ при атопическом дерматите может проводиться клещевыми, пыльцевыми эпидермальными аллергенами и аллерговакцинами, однако больше всего исследований проведено при клещевой сенсибилизации [5–8].

Возможность проведения иммунотерапии аллергенами у пациентов с атопическим дерматитом подтверждается различными как более ранними, так и более поздними опубликованными исследованиями и метаанализами [9–11].

Установлено, что проведение АСИТ препаратами клеща домашней пыли улучшает течение дерматита в любом возрасте при наличии клинически значимой сенсибилизации. Было показано, что как у взрослых, так и у детей в результате АСИТ происходило снижение выраженности симптомов зуда, высыпаний, уровней общего IgE и эозинофилов крови [12]. Аналогичные результаты были получены в недавнем исследовании СЛИТ клещами домашней пыли (2019), где кроме эффективности изучался еще и дозозависимый эффект от терапии. Было показано, что у пациентов, получавших средние и высокие дозы аллергена, отмечался более выраженный эффект к 6-му месяцу терапии: уменьшение SCORAD и снижение количества топических ГК [13]. Однако большинство исследований проведено на взрослой когорте пациентов, и работы различаются по методологии, критериям отбора пациентов и оценке эффективности [10, 14, 15]. Также больше исследований проведено в отношении оценки эффективности подкожного метода АСИТ, в отношении СЛИТ исследований недостаточно [16–18]. В руководстве EAACI по АСИТ вопросу применения ее при атопическом дерматите уделено мало внимания [19].

В 2013 г. был опубликован метаанализ эффективности АСИТ при атопическом дерматите, в который были включены восемь рандомизированных и контролируемых (шесть - ПКИТ, два - СЛИТ) исследований, в которых был показан успешный результат. Но авторы подчеркивают значительную неоднородность проведенных исследований, некоторые из которых имели небольшое количество пациентов, что ограничивает достоверность этого метаанализа [11]. Однако более масштабное проспективное плацебо-контролируемое исследование, вошедшее в указанный метаанализ, показало эффективность АСИТ только у пациентов с тяжелым течением АД (индекс SCORAD >50) [6].

В настоящее время в рутинной практике АСИТ не рекомендуется в качестве основного базисного варианта лечения атопического дерматита. Однако, согласно мнению экспертов, АСИТ может рассматриваться для отдельных пациентов с сенсибилизацией к клещу домашней пыли, пыльце березы или сорных трав при тяжелом течении заболевания, с подтвержденным анамнезом клинического обострения после воздействия причинно-значимого аллергена и положительным результатом тестирования [2, 22]. При этом эксперты сходятся во мнении, что АСИТ вполне может использоваться при атопическом дерматите, в случае если у пациента с атопическим дерматитом имеются сопутствующие респираторные аллергические заболевания (аллергический риноконъюнктивит или аллергическая астма), которые являются показаниями для проведения АСИТ. Эти пациенты являются предпочтительными кандидатами для АСИТ.

Малочисленными являются исследования, касающиеся изучения механизма АСИТ при атопическом дерматите и оценки изменения клинико-иммунологических показателей после проведения аллерген-специ­фической иммунотерапии. В недавнем исследовании, целью которого было изучить изменения иммунологических показателей в крови и коже после проведения АСИТ клещом домашней пыли при атопическом дерматите легкой и средней степени тяжести с сопутствующим аллергическим ринитом, было показано, что после АСИТ клинические показатели и барьерные функции кожи значительно улучшились, но не было обнаружено значительных изменений в уровнях иммуноглобулина Е в коже или сыворотке и реактивности прик-теста [23].

При наличии сочетанной сенсибилизации к аллергену клеща домашней пыли и пыльцевым аллергенам проведение АСИТ приводило к длительной ремиссии, снижению потребности в базисной лекарственной терапии и улучшению качества жизни [24]. При лечении пациентов с пыльцевой сенсибилизацией и перекрестным оральным синдромом редко может наблюдаться обострение атопического дерматита, и положительный результат может быть достигнут при проведении АСИТ пыльцевыми аллергенами [25].

Мало публикаций по эффективности АСИТ в детской когорте. Относительно недавно опубликовано исследование по оценке эффективности АСИТ аллергеном клеща домашней пыли у детей и подростков с атопическим дерматитом в сочетании с аллергическим ринитом, в котором продемонстрирован хороший результат [26].

Несмотря на то что АСИТ в настоящее время рекомендуется как метод лечения при сенсибилизации к клещам, интерес представляет эффективность данного вида терапии у больных атопическим дерматитом, сенсибилизированных к перхоти животных [27]. В недавнее исследование, посвященное изучению эффективности АСИТ, были включены 19 пациентов с атопическим дерматитом с сенсибилизацией к кошачьей и/или собачьей перхоти. Только у двух пациентов был изолированный атопический дерматит, у других 17 пациентов было одно или несколько сопутствующих аллергических заболеваний, таких как аллергический ринит, аллергическая астма или аллергический конъюнктивит. Продолжительность АСИТ - до 58 мес. В результате АСИТ получено клиническое улучшение течения заболевания, симптомы стали хорошо контролироваться, наблюдалось снижение уровня специфических IgE и повышение уровня IgG4. Авторы отмечают, что у этих пациентов не наблюдалось никаких побочных эффектов. АСИТ с использованием кошачьей и/или собачьей перхоти может быть эффективным вариантом лечения для пациентов с тяжелым атопическим дерматитом и другими респираторными аллергическими сопутствующими заболеваниями, которые не могут полностью избежать контакта с аллергеном перхоти животных.

Таким образом, в настоящее время существует необходимость дальнейших исследований для выделения групп пациентов с атопическим дерматитом, у которых эффективность АСИТ будет максимальной и выработка толерантности к аллергену приведет к длительной ремиссии [28, 29].

Список литературы

  1. Балаболкин И.И., Булгакова В.А., Елисеева Т.И. Иммунопатогенез и современные возможности атопического дерматита у детей // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2017. Т. 49, № 2. C. 12–22.

  2. Wollenberg A., Barbarot S., Bieber T. et al. Consensus-based European guidelines for treatment of atopic eczema (atopic dermatitis) in adults and children: part II // J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2018. Vol. 32, N. 6. P. 850–878.

  3. Jutel M., Agache I., Bonini S. et al. International consensus on allergy immunotherapy // Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 136, N. 3. P. 556–568.

  4. Тактика диагностики и лечения аллергических заболеваний и иммунодефицитов: практическое руководство / под ред. Р.М. Хаитова. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2019. 152 c.

  5. Werfel T., Breuer K., Rueff F. et al. Usefulness of pecific immunotherapy in patients with atopic dermatitis and allergic sensitization to house dust mites: a multi-centre, randomized, dose-response study // Allergy. 2006. Vol. 61. P. 202–205.

  6. Novak N., Bieber T., Hoffmann M. et al. Efficacy and safety of subcutaneous allergen-specific immunotherapy with depigmented polymerized mite extract in atopic dermatitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130. P. 925–931.

  7. Bussmann C., Böckenhoff A., Henke H. et al. Does allergen-specific immunotherapy represent a therapeutic option for patients with atopic dermatitis? // J. Allergy Clin. Immunol. 2006. Vol. 118. P. 1292–1298.

  8. Novak N. Allergen specific immunotherapy for atopic dermatitis // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 7. P. 542–546.

  9. Lee J., Park C.O., Lee K.H. Specific immunotherapy in atopic dermatitis // Allergy Asthma Immunol. Res. 2015. Vol. 7, N. 3. P. 221–229.

  10. Nahm D-H., Kim M-E., Kwon B. et al. Clinical efficacy of subcutaneous allergen immunotherapy in patients with atopic dermatitis // Yonsei. Med. J. 2016. Vol. 57, N. 6. P. 1420–1426.

  11. Bae J.M., Choi Y.Y., Park С.О. et al. Efficacy of allergen-specific immunotherapy for atopic dermatitis: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials // J. Allergy Clin. Immunol. 2013. Vol. 132. P. 110–117.

  12. Lee J., Lee H., Noh S. et al. Retrospective analysis on the effects of house dust mite specific immunotherapy for more than 3 years in atopic dermatitis // Yonsei. Med. J. 2016. Vol. 57, N. 2. P. 393–398.

  13. Liu L., Chen J., Xu J. et al. Sublingual immunotherapy of atopic dermatitis in mite-sensitized patients: a multi-centre, randomized, double-blind, placebo-controlled study // Artif. Cells Nanomed. Biotechnol. 2019. Vol. 47, N. 1. P. 3540–3547.

  14. Shin Y.S., Jung J-W., Jung-Won Park J.-W. et al. Clinical efficacy of allergen-specific immunotherapy from patient and physician perspectives // Yonsei. Med. J. 2019. Vol. 60, N. 5. P. 446–453.

  15. Bumbacea R.S., Corcea S.A., Ali S. et al. Mite allergy and atopic dermatitis: Is there a clear Iink? (Review) // Experimental and Therapeutic. Medicine. 2020. Vol. 20. P. 3554–3560.

  16. Passalacqua G., Bagnasco D., Canonica G.W. 30 years of sublingual immunotherapy // Allergy. 2020. Vol. 75. P. 1107–1120.

  17. Gendelman S.R., Lang D.M. Sublingual immunotherapy in the treatment of atopic dermatitis: a systematic review using the GRADE system // Curr. Allergy Asthma Rep. 2015. Vol. 15. P. 498.

  18. Smith D.M., Freeman Т.М. Sublingual immunotherapy for other indications venom large local, latex, atopic dermatitis, and food // Immunol. Allergy Clin. N. Am. 2020. Vol. 40. P. 41–57.

  19. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI allergen immunotherapy user`s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  20. Compalati E., Rogkakou A., Giovanni Passalacqua G. et al. Evidences of efficacy of allergen immunotherapy in atopic dermatitis: an updated review // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 12, N. 4. P. 427–433.

  21. Darsow U. Allergen-specific immunotherapy for atopic eczema — updated // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 12. P. 665–669.

  22. Wollenberg A., Christen-Zäch A., Taieb A. et al. ETFAD/EADV Eczema task force 2020 position paper on diagnosis and treatment of atopic dermatitis in adults and children // J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2020. Vol. 34, N. 12. P. 2717–2744.

  23. Hajdu K., Kapitány A., Dajnoki Z. et al. Improvement of clinical and immunological parameters after allergen-specific immunotherapy in atopic dermatitis // J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2021. Vol. 35, N. 6. P. 1357–1361.

  24. Wyrzykowska N., Czarnecka-Operacz M. Long-term efficacy of allergen specific immunotherapy in atopic dermatitis patients // Clin. Transl. Allergy. 2015. Vol. 5, Suppl. 1. P. 6.

  25. Incorvaia C., Ridolo E. Mauro M. et al. Allergen immunotherapy for birch-appele syndrome: what do we know? // Immunotherapy. 2017. Vol. 9. P. 1271–1278.

  26. Lee S-H., Kim M-E., Shin Y.S. et al. Safety of ultra-rush schedule of subcutaneous allergen immunotherapy with house dust mite extract conducted in an outpatient clinic in patients with atopic dermatitis and allergic rhinitis // Allergy Asthma Immunol. Res. 2019. Vol. 11, N. 6. P. 846–855.

  27. Chu H., Park K.H., Kim S.M. et al. Allergen‐specific immunotherapy for patients with atopic dermatitis sensitized to animal dander // Immun. Inflamm. Dis. 2020. Vol. 8, N. 2. P. 165–169.

  28. Slavyanokaya T.A., Derkach V.V., Sepiashvili R.I. Debates in allergy medicine: specific immunotherapy efficiency in children with atopic dermatitis // World Allergy Organ. J. 2016. Vol. 9. P. 15.

  29. Tam H.H., Calderon M.A., Manikam L. et al. Specific allergen immunotherapy for the treatment of atopic eczema: a Cochrane systematic review // Allergy. 2016. Vol. 71, N. 9. P. 1345–1356.

Глава 13. Причины неэффективности аллерген-специфической иммунотерапии и меры по ее предупреждению

К сожалению, в некоторых случаях ожидаемого эффекта от АСИТ получить не удается и ожидания врача и пациента не всегда оправдываются.

Перед началом АСИТ следует выполнить ряд условий, без которых иммунотерапия может быть неэффективной.

Схематично алгоритм назначения АСИТ можно представить следующим образом, при этом требуется комплексная оценка всех составляющих данного алгоритма:

  • тяжести основного заболевания и сопутствующей патологии;

  • подтверждение сенсибилизации и выявление причинно-значимых аллергенов;

  • индивидуальное определение показаний и противопоказаний;

  • выбор лечебного аллергена;

  • проведение предварительной образовательной работы;

  • назначение АСИТ.

Отсутствие результата может быть обусловлено рядом причин. Они могут быть связаны как с самим заболеванием, возможными диагностическими ошибками, так и непосредственно с проведением самой АСИТ. Важная роль принадлежит пациенту. Имеет значение его отношение к АСИТ, активность, участие в лечении и сотрудничество с врачом.

Причины, связанные с заболеванием:

  • ошибки в верификации диагноза;

  • ошибки в выявлении полного спектра сенсибилизации;

  • ошибки определения показаний и противопоказаний к лечению;

  • ошибки выбора аллергена для АСИТ, метода и протокола.

Причины, связанные с пациентом:

  • непонимание пациентом целей и задач лечения;

  • отсутствие активного участия пациента в лечении и сотрудничестве с врачом;

  • несоблюдение протокола АСИТ.

Причины, связанные с диагностикой:

  • поздняя диагностика;

  • несвоевременное назначение АСИТ;

  • не выявленные коморбидные состояния и заболевания.

Причины, связанные с лечением:

  • отказ от АСИТ при появлении незначительных нежелательных эффектов;

  • низкая поддерживающая доза;

  • недостаточное количество курсов АСИТ;

  • высокая экспозиция аллергена [1].

Причины, связанные с заболеванием. Верификация диагноза, учет показаний и противопоказаний. Верификация диагноза - первый и важный шаг для определения стратегии и выбора тактики ведения конкретного пациента. Принимая решение о назначении АСИТ, врач должен руководствоваться федеральными клиническими рекомендациями [2].

Алгоритм верификации диагноза и решения о возможности проведения АСИТ можно представить следующим образом.

1. Верификация диагноза проводится на основании оценки совокупности:

  • клинико-анамнестических данных и инструментального обследования;

  • аллергологического обследования (кожные тесты, определение специфических IgE в сыворотке);

  • молекулярной аллергодиагностики (при необходимости).

Перед началом иммунотерапии необходимо провести ревизию и пересмотр диагноза с определением степени тяжести и удостовериться, что жалобы и симптомы у пациента имеют аллергический генез и связаны с сенсибилизацией. Существует много коморбидных состояний, когда симптомы могут сочетаться и заболевания могут маскировать друг друга. Так, например, аллергический ринит может сочетаться с вазомоторным или медикаментозным ринитом, имеющим не иммунную природу, но схожие симптомы. Именно поэтому следует оценить, симптомы какого заболевания являются превалирующими.

2. Определение аллергического фенотипа.

3. Оценка взаимосвязи аллергической сенсибилизации и симптомов заболевания.

Для выявления причинно-значимого аллергена и фоновых сенсибилизаций необходимо провести аллергодиагностику. АСИТ назначают в случае положительных кожных проб или при выявлении повышенного уровня специфических IgE. Считается, что сенсибилизация должна соответствовать как минимум умеренному классу. Часто пациенты являются полисенсибилизированными или же у них имеется сенсибилизации к паналлергенам, минорным белкам. В этих случаях необходимо определение мажорных компонентов пыльцы растений для выбора главного аллергена. Определение ко-сенсибилизации необходимо для оценки риска АСИТ и оптимального времени ее начала. Сенсибилизация к минорным аллергенам повышает частоту побочных реакций при ПКИТ.

  • при отсутствии связи между аллергическим заболеванием и сенсибилизацией - назначение фармакотерапии;

  • при наличии связи между аллергическим заболеванием и сенсибилизацией - назначение к фармакотерапии дополнительно АСИТ.

АСИТ не будет эффективна, если для лечения выбран клинически незначимый аллерген. Наиболее значимый аллерген не должен выбираться по результатам наибольшей реактивности кожных тестов или по самому высокому уровню специфического IgE.

Выбор наиболее значимого аллергена должен основываться на следующих характеристиках:

  • наибольшая продолжительность симптомов в году;

  • самые тяжелые симптомы;

  • основное влияние на качество жизни;

  • аллерген труднее всего избежать.

При латентной сенсибилизации (положительные результаты кожных тестов, или выявлены специфические IgE-антитела при отсутствии клинических проявлений заболевания) АСИТ не проводят [1].

4. Оценка показаний и противопоказаний для АСИТ.

Решение о назначении АСИТ основывается на оценке состояния конкретного пациента, учете показаний и противопоказаний к АСИТ, оценке сопутствующих заболеваний и их фармакотерапии. Перед началом АСИТ следует удостовериться в отсутствии противопоказаний. При наличии абсолютных противопоказаний АСИТ не проводят. Если противопоказание является временным или относительным, необходимо принять меры, добиться ремиссии заболевания и начать лечение после. Врач должен принимать окончательное решение при назначении лечения аллергенами, оценивая баланс "риск/польза".

5. Достижение ремиссии аллергических заболеваний и сопутствующих хронических заболеваний.

Важно во избежание осложнений начинать АСИТ в ремиссию аллергических заболеваний. Ремиссия может быть естественной (например, в зимний период при пыльцевой аллергии) или достигнутой на фоне адекватной базисной терапии. АСИТ возможна на фоне базисной терапии любыми группами препаратов: антигистаминных, интраназальных ГК; ИГК, антилейкотриеновых. Так, например, бронхиальная астма должна быть контролируемой на протяжении минимум 1 мес перед инициацией АСИТ, так как это минимальный срок для оценки контроля астмы. На момент старта АСИТ пациент с астмой должен иметь приемлемые показатели функции легких, в частности ОФВ1 должен составлять не менее 70% от должного у взрослых и 80% у детей. Низкий ОФВ1 является не только показателем неконтролируемого течения астмы, но и предиктором риска возможных системных реакций на проведение иммунотерапии аллергенами [3].

Следует иметь в виду, что этот уровень также может быть не совсем оптимальным для конкретного пациента детского возраста, так как многие дети имеют показатели ОФВ1 гораздо выше референсных значений, которые были получены в середине прошлого века на европейской популяции [4]. Оптимально контролировать функцию внешнего дыхания в динамике и инициировать АСИТ при показателях, соответствующих наилучшим индивидуальным показателям пациента. При частично контролируемом и неконтролируемом течении бронхиальной астмы или при снижении уровня контроля после старта АСИТ необходимо пересмотреть базисную терапию для достижения контроля.

Прием лекарств базисной терапии - антигистаминных, антилейкотриеновых препаратов, топических ГК - не влияет на формирование толерантности при АСИТ.

Следует также добиться и ремиссии различных хронических заболеваний. На этапе подготовки к курсу АСИТ необходимо провести плановую санацию возможных очагов инфекции (по показаниям посещение ЛОР, стоматолога, специалистов). При проведении СЛИТ оценить состояние слизистой полости рта на предмет дефектов слизистой оболочки. СЛИТ следует временно отложить до заживления ран, так как попадание аллергена на поврежденную слизистую обычно вызывает сильную аллергическую реакцию и замедляет заживление дефекта.

6. Выбор аллергена, метода и протокола для АСИТ.

Выбирая метод АСИТ, важно учитывать индивидуальную характеристику пациента. Для успешного проведения иммунотерапии необходимо наличие на рынке препаратов лечебных аллергенов в достаточном разнообразии. При проведении СЛИТ требуется нескольких визитов в клинику, при проведении ПКИТ необходимы регулярные посещения, что необходимо учитывать при выборе метода и при планировании графика визитов.

Сублингвальная АСИТ рекомендуется:

  • дисциплинированным и самостоятельно выполняющим предписания врача пациентам;

  • пациентам, имевшим ранее выраженные реакции на подкожную АСИТ;

  • детям из-за боязни уколов;

  • пациентам, не имеющим возможности регулярно посещать аллергологический кабинет для инъекций.

Подкожная АСИТ рекомендуется:

  • пациентам, которым необходим регулярный контакт с врачом;

  • пациентам, не желающим ежедневно принимать аллерген;

  • пациентам, имеющим противопоказания для СЛИТ (заболевания и дефекты слизистой оболочки полости рта).

Причины, связанные с пациентом. Непонимание пациентом цели АСИТ может быть одной из причин отказа от лечения [5]. Чтобы назначенный курс АСИТ был успешным, необходимо проводить обучение больного и ухаживающих за ним лиц и привлекать их к совместной разработке плана лечения. Для этого больного предварительно знакомят со схемой лечения и его осложнениями. Также необходимо заранее преду­предить пациента об общей стоимости АСИТ.

Информация может быть представлена пациенту как в устной форме, так и в форме брошюр или чек-листов. Для достижения наилучшего результата предпочтительно сочетание методов образовательной работы. Желательно обеспечить эффективную коммуникацию не только между врачом и пациентом, но и между лечебным учреждением и пациентом. Можно предоставлять дополнительную информацию об АСИТ на сайте клиники, путем создания памяток и письменных планов действий в случае развития нежелательных явлений. На первом приеме в обязательном порядке необходимо подписать информированное согласие. Также необходимо провести обучение технике приема лекарственных аллергенов.

Длительность лечения, необходимость соблюдения режима и техники приема лекарственного препарата могут обусловить проблему низкого комплайенса и приверженности терапии, что в свою очередь станет причиной недостаточного эффекта. Это подтверждено целым рядом исследований: около половины больных, получавших АСИТ, продолжили лечение на второй год, и еще меньше, порядка трети - на третий год. При этом для пациентов, прекративших АСИТ в первый год лечения, была выявлена четкая корреляция с возрастом: наибольшее число случаев отказа от лечения наблюдалось в группе младших дошкольников [6–8].

Причины прекращения АСИТ:

  • отсутствие видимого эффекта;

  • отказ ребенка от лечения вследствие развития местных нежелательных явлений (особенно для детей младшего возраста - неприятный вкус, неудобство использования таблетированной формы);

  • системные нежелательные явления;

  • неудобство (нехватка времени и др.);

  • семейные проблемы.

Наиболее часто прекращение АСИТ было зафиксировано в первые 3 мес терапии. Согласно данным исследования, при низкой комплайентности половина больных, получающих СЛИТ, прекращают лечение аллергенами уже в первый год и лишь 10% заканчивают полный трехлетний курс АСИТ [9].

Несомненно, что повышение приверженности терапии с учетом всех возможных проблем длительной схемы лечения является основной из задач, решение которой позволит в каждом индивидуальном случае выйти на оптимальный уровень эффективности АСИТ. Персонализированный подход в каждом индивидуальном случае может предполагать как назначение дополнительного визита, так и телефонный контакт. Одинаково важными слагаемыми успеха АСИТ являются наличие индивидуального плана, включающего рекомендации по купированию нежелательных явлений, подбор препарата с учетом предпочтений и возраста пациента, информирование о болезни и методах лечения, мероприятиях элиминационного режима [10].

Любое бездействие и выжидательная позиция специалиста, несвоевременное назначение необходимого лечения должны быть четко обоснованы наличием доказанных противопоказаний к использованию того или иного метода терапии, иначе подобная тактика может быть расценена как некачественное оказание медицинской помощи.

Перед назначением АСИТ для улучшения комплайенса и приверженности к лечению с пациентом необходимо обсудить следующие вопросы:

  • что такое IgE-опосредованное аллергическое заболевание, возможные варианты исходов и течения;

  • какие цели АСИТ, и как может АСИТ изменить течение заболевания;

  • когда пациент почувствует эффект АСИТ;

  • какие необходимы ограничения на фоне АСИТ (максимальное избегание контакта с "виновным" аллергеном, при необходимости соблюдение элиминационной диеты);

  • какие возможные нежелательные явления в процессе АСИТ, какие из них возникают часто (действие пациента при их возникновении), а какие могут быть опасны (алгоритм действия при их возникновении);

  • почему АСИТ следует проводить длительно не менее 3–5 лет.

При отсутствии полной информации у пациента невозможно достичь эффективного взаимодействия с врачом, что может привести к плохой приверженности терапии, отсутствию контроля заболевания и в итоге неудовлетворенности результатами АСИТ как врача, так и пациента. При проведении ПКИТ у пациента имеется возможность регулярного контакта с медицинским персоналом. Пациент может задать вопросы при появлении нежелательных побочных реакций, присоединении сопутствующей патологии, в случае изменения базисной фармакотерапии. Врач имеет возможность оценить переносимость лечения и может вносить изменения (снижение дозы вводимого аллергена, увеличение интервала между инъекциями, при необходимости назначение фармакотерапии, коррекция терапии сопутствующих заболеваний) в протокол АСИТ.

При СЛИТ контакт с врачом также имеет важное значение. Возможны как личные, так и дистанционные контакты, во время которых врач может оценить переносимость лечения, правильность приема препарата, соблюдение схемы лечения, а пациент также имеет возможность задать интересующие его вопросы. Таким образом, контакт с врачом при проведении АСИТ любым методом в значительной степени повышает мотивацию приверженности к терапии.

Как известно, на интенсивность клинических проявлений аллергических заболеваний влияет концентрация экзоаллергенов в воздухе, что может касаться и бытовых, и пыльцевых, и эпидермальных аллергенов. В аллергологии существует такое понятие, как "пыльцевой шторм", когда концентрация пыльцы в воздухе превышает среднее значение в несколько раз. Такая высокая концентрация аллергена может быть разной по продолжительности в разные календарные года и занимать от одного до нескольких дней. У части больных с аллергическим ринитом течение болезни становится более тяжелым и для достижения контроля требуется бóльший объем фармакотерапии, а у некоторых к симптомам аллергического ринита присоединяются признаки бронхиальной обструкции, что, безусловно, осложняет, утяжеляет течение заболевания. Кроме того, есть категория пациентов, у которых респираторные симптомы сочетаются с кожными проявлениями, например, атопического дерматита. У этой сложной когорты пациентов, страдающих и респираторными проявлениями аллергии, и кожными проявлениями одновременно, ожидаемо нарастают все симптомы. Даже пациенты, которые получают второй и третий курсы АСИТ, могут почувствовать появление незначительных симптомов респираторной аллергии в периоды очень высоких концентраций респираторных аллергенов и при так называемом "пыльцевом шторме". Это, безусловно, не говорит о неэффективности проводимой терапии. Скорее, иммунотерапия обусловливает более мягкое течение подобного пика пыления в сравнении с пациентами, не получавшими АСИТ, и может служить показанием для продления курса АСИТ или повышения поддерживающей дозы (в случае использования низких поддерживающих доз аллергена). С учетом сезонных особенностей аллергенов, значимых для пациента, АСИТ предпочтительно начинать в тот период времени, когда аллергенная стимуляция минимальна.

В отношении диеты также должны быть соответствующие рациональные рекомендации. В случае пищевой аллергии и анафилаксии в анамнезе необходимо рекомендовать полную элиминацию аллергена, который вызывает тяжелые реакции. В случае возможного орального аллергического синдрома следует минимизировать употребление продуктов, вызывающих его проявления. Недопустимы шаблонные ограничения - всего красного и желтого, перекрестно-реагирующих продуктов - в случае, если пациент их переносит хорошо. Большинство же пациентов, получающих АСИТ по поводу аллергии к клещам пыли, в подобных рекомендациях не нуждаются. При СЛИТ рационально не употреблять продукты, обладающие раздражающим действием и травмирующие слизистые полости рта (семечки, сухарики, чипсы, специи).

Причины, связанные с диагностикой. Определенную проблему представляет несвоевременное назначение АСИТ специалистами, несмотря на имеющиеся доказательства эффективности этого метода. Необоснованная длительная "выжидательная" тактика особенно часто встречается применительно к детской возрастной категории. Так, в зарубежном исследовании, включившем 260 детей в возрасте от 5 до 17 лет c диагнозами аллергического ринита и бронхиальной астмы, симптоматическая терапия была назначена в 98,5% случаев, при этом АСИТ была назначена лишь в 56,9% случаев. Почти 2/3 врачей предпочитали наблюдение, назначая АСИТ лишь в случаях ухудшения симптоматики или при развитии у ребенка бронхиальной астмы [11].

Поздняя диагностика аллергического заболевания часто приводит к его утяжелению и неконтролируемому течению и присоединению других аллергических состояний. Так, например, к аллергическому риниту часто присоединяются бронхиальная астма и атопический дерматит. Нередко добавляются хроническая обструктивная болезнь легких и заболевания ЛОР-органов, которые ухудшают эффективность АСИТ. При полипозном риносинусите полипозные образования приводят к постоянной назальной обструкции, а в тяжелых случаях даже к ремоделированию костных стенок носовых пазух. Выраженное искривление носовой перегородки также проявляется односторонним или двусторонним затруднением или отсутствием носового дыхания. Затруднение оттока секрета из придаточных пазух нередко приводит к присоединению вторичной инфекции. Вследствие частых рецидивов пациент не может соблюдать протокол и не получает высокую дозу аллергена, что не дает проявиться эффекту АСИТ в полной мере и приводит к дискредитации метода в глазах пациента.

Позднее назначение АСИТ часто связано с тем, что к ней прибегают в последнюю очередь, когда эффекта фармакотерапии и в ряде случаев нетрадиционных методов лечения не получено. Часто пациент лечится самостоятельно, бесконтрольно применяя лекарственные средства, что не только не приводит к регрессу симптомов, но и ведет к возникновению серьезных осложнений. Нередко от начала заболевания до консультации аллерголога-иммунолога порой проходит от 8 до 10 лет [12].

Причины, связанные с лечением. Для достижения оптимального клинического эффекта необходимы высокие дозы лечебного аллергена. Концепция дозозависимой эффективности применима как для СЛИТ, так и для ПКИТ, так как высокие дозы необходимы для индукции иммунологической и клинической толерантности [13, 14].

Низкая доза вводимого аллергена также является одной из причин недостаточного эффекта АСИТ. В некоторых случаях в качестве поддерживающей дозы остается низкая доза аллергена и, таким образом, кумулятивная доза оказывается недостаточной для достижения необходимого результата терапии.

Ошибки при проведении ПКИТ:

  • после набора дозы для поддерживающей терапии применяется низкая доза аллергена;

  • выбраны большие временные промежутки между инъекциями;

  • низкая доза аллергена назначена из-за нежелательных побочных реакций или обострения сопутствующих заболеваний;

  • АСИТ начата в стационаре ускоренным методом, а на амбулаторном этапе не предпринимаются попытки дальнейшего наращивания дозы;

  • при начале АСИТ ускоренным методом в стационаре, на амбулаторном этапе пациент прекратил лечение (не понял объяснений врача; решил, что большое количество полученных инъекций обеспечит ему клинический эффект) или лечение прервано из-за недостатка времени у пациента.

Ошибки при проведении СЛИТ:

  • нетщательное соблюдение методики приема аллергена - недостаточное время удержания аллергена в подъязычной области;

  • несоблюдение четких интервалов между приемами аллергена и несвоевременное увеличение дозы аллергена на этапе ее наращивания;

  • в случае использования капельной формы аллергена - неправильное использование дозатора.

Отсутствие эффекта от проводимой АСИТ не должно быть абсолютным поводом для отказа от лечения аллергенами. В случае отсутствия эффекта требуется тщательный анализ всех вышеперечисленных факторов. Отмена АСИТ должна быть четко аргументирована и понятна как врачу, так и пациенту.

Список литературы

  1. Передкова Е.В., Себекина О.В., Ненашева Н.М. Причины неэффективности аллерген-специфической иммунотерапии // Практическая аллергология. 2021. № 2. C. 30–38.

  2. Федеральные клинические рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии. 2013. 14 c.

  3. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen Immunotherapy User`s Guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  4. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 c.

  5. Roberts G., Pfaar O., Akdis C.A. et al. EAACI Guidelines on allergen immunotherapy: Allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 765–798.

  6. Sieber J., De Geest S., Shah-Hosseini K. et al. Medication persistence with long-term, specific grass pollen immunotherapy measured by prescription renewal rates // Curr. Med. Res. Opin. 2011. Vol. 27. P. 855–861.

  7. Trebuchon F., David M., Demoly P. Medical management and sublingual immunotherapy practices in patients with house dust mite-induced respiratory allergy: a retrospective, observational study // Int. J. Immunopathol Pharmacol. 2012. Vol. 25. P. 193–206.

  8. Pajno G.B., Caminiti L., Crisafulli G. et al. Adherence to sublingual immunotherapy in preschool children // Pediatr. Allergy Immunol. 2012. Vol. 23. P. 688–689.

  9. Malet A., Azpeitia A., Gutierrez D. et al. Comprehensive study of patients’ compliance with sublingual immunotherapy in house dust mite perennial allergic rhinitis // Adv. Ther. 2016. Vol. 33. P. 1199–1214.

  10. Вишнева Е.А., Намазова-Баранова Л.С. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей: перспективы профилактики и лечения // Педиатрическая фармакология. 2015. Т. 5, № 12. C. 532–536.

  11. Ibero M., Justicia J.L., Alvaro M. et al. Diagnosis and treatment of allergic rhinitis in children: Results of the PETRA study // Allergol. Immunopathol. (Madr.). 2012. Vol. 40, N. 3. P. 138–143.

  12. Valero A., lusticia J.L., Anton E. et al. Epidemiology of allergic rhinitis caused by grass pollen or house-dust mites in Spain // Am. J. Rhinol. Allerg. 2011. Vol. 25, N. 4. P. 123–128.

  13. Calderоn M.A., Larenas D., Kleine-Tebbe J. et al. European Academy of Allergy and Clinical Immunology task force report on ‘dose-response relationship in allergen-specific immunotherapy’ // Allergy. 2011. Vol. 66, N. 10. P. 1345–1359.

  14. Passalacqua G., Sastre J., Pfaar O. et al. Comparison of allergenic extracts from different origins: the value of the FDA’s bioequivalent allergy unit (BAU) // Expert. Rev. Clin. Immunol. 2016. Vol. 12, N. 7. P. 733–739.

Глава 14. Общие рекомендации по аллерген-специфической иммунотерапии. Меры по предупреждению осложнений аллерген-специфической иммунотерапии

Выявление клинически значимого аллергена из числа тех, к которым есть повышенная чувствительность, проводят аллергологи путем совокупного анализа данных аллергологического анамнеза, кожных проб, специфического иммунологического обследования (определение уровня иммуноглобулинов Е), при необходимости провокационных назальных и конъюнктивальных тестов и аллергокомпонентной диагностики. Для АСИТ отбирают именно те причинно-значимые аллергены, элиминация которых невозможна (пыльца, клещи домашней пыли, яд насекомых и др.) и которые обусловливают симптомы аллергического заболевания у данного пациента.

АСИТ может проводиться только специально обученными специалистами (врачами аллергологами-иммунологами), имеющими знания и опыт проведения этого вида лечения. АСИТ должна осуществляться врачами, способными оказывать экстренную помощь в случае развития аллергических реакций. Даже среди опытных специалистов существует практика промедления назначения эпинефрина при анафилаксии. Несмотря на большое количество клинических рекомендаций, врачами часто в первую очередь используются парентеральные антигистаминные препараты и ГК, которые не влияют значимо на системное артериальное давление. Врач должен хорошо знать чек-лист оказания помощи при анафилаксии, где препаратом первого выбора является эпинефрин.

Обязанностью врача-терапевта, педиатра, а также узких специалистов (ЛОР-врачей, пульмонологов) при выявлении аллергического заболевания или подозрении на него является направление пациента к врачу аллергологу-иммунологу для решения, в частности, вопроса о проведении АСИТ.

Важными моментами при проведении АСИТ являются:

  • 1) высокая квалификация среднего медперсонала. Необходимо ежегодное обучение правильному проведению АСИТ. Средний медперсонал также должен уметь оказывать неотложную помощь при развитии нежелательных реакций. Медперсонал должен быть обучен и иметь письменную инструкцию о технике асептической обработки рук перед проведением иммунотерапии и любых инъекций;

  • 2) подготовка аллерголога-иммунолога по иммунотерапии (врач несет персональную ответственность за правильное выполнение всех требований руководящих принципов по АСИТ).

14.1. Этапы и алгоритм проведения иммунотерапии и условия предупреждения развития осложнений аллерген-специфической иммунотерапии

  • При принятии решения о проведении АСИТ должно быть обязательно подписано информированное согласие пациента на проведение данного метода лечения (см. пример в приложении 1).

  • Первый прием аллерговакцины, вне зависимости от пути введения и лекарственной формы, проводится в кабинете врача аллерголога-иммунолога. Перед первым введением аллерговакцины в документации пациента фиксируется допуск пациента к началу лечения: статус основного заболевания, отсутствие противопоказаний, данные осмотра, при наличии интеркуррентного заболевания оценивается и его статус.

  • Инъекционный метод АСИТ проводится только в условиях аллергологического кабинета или стационара.

  • При проведении инъекционного метода категорически запрещена выдача лечебного аллергена на руки и самостоятельное введение аллергена самим пациентом.

  • При проведении СЛИТ первый прием препарата осуществляется в присутствии лечащего врача, далее пациент по схеме, согласно инструкции, принимает аллерген самостоятельно. При повторных курсах, проводимых по предсезонно-сезонному протоколу и круглогодичных курсах, возобновляемых после длительного перерыва, также первый прием аллерговакцины осуществляется в присутствии врача.

  • Контрольные визиты при СЛИТ к лечащему врачу в среднем проводятся раз в 3 мес, при необходимости чаще, также возможны телефонные контакты или консультации посредством телемедицины.

  • При СЛИТ в каждый визит необходимо оценить состояние слизистой оболочки полости рта, отсутствие воспалительных явлений, повреждений. Особенно важно это сделать в педиатрической практике, так как часто выявляются механические повреждения слизистой от случайного прикусывания, свежие ранки от выпавшего зуба, зоны раздражения слизистой от агрессивной пищи и напитков, явления стоматита. Часто в детской практике применяются ортодонтические аппараты для коррекции прикуса. Ортодонтические брекет-системы не являются противопоказанием для АСИТ, но это также следует учитывать при назначении СЛИТ и дать дополнительные рекомендации пациенту. У взрослых пациентов следует обращать внимание на возможные имплантации зубов.

  • Каждый пациент должен быть информирован о возможности развития серьезных побочных реакций, необходимости выполнения определенных правил во время проведения АСИТ, а также о мерах профилактики и купирования этих реакций.

  • Перед каждой инъекцией аллергена врач обязан провести осмотр пациента, оценить наличие реакций от предыдущих инъекций аллергена и оценить целесообразность введения следующей дозы.

  • Врач обязан вести специально разработанную медицинскую документацию - индивидуальный протокол аллерген-специфической иммунотерапии.

  • Обязательным условием является доступность противошокового набора. В специализированном аллергологическом подразделении (аллергологический кабинет, отделение) должно быть предусмотрено наличие необходимых средств не только для проведения АСИТ, но и для купирования возможных побочных реакций.

  • Необходимо контролировать состояние пациента в течение не менее 30 мин после инъекции аллергена, при введении больших доз аллергена, высокой степени сенсибилизации и при проведении ускоренного метода требуется более длительное наблюдение - не менее 60 мин.

  • Врач должен четко определять показания и противопоказания для проведения АСИТ в каждом конкретном случае.

  • Требуется неукоснительно следовать утвержденным протоколам проведения АСИТ в зависимости от вида аллергена и способа введения, отклонения от протокола возможны лишь в сторону облегчения аллергенной нагрузки: увеличения временных промежутков между введением аллергена (но не дольше разрешенных интервалов), повторения предыдущей дозы в случае развития выраженных побочных местных реакций и снижения поддерживающей дозы. Пациенты, получающие ПКИТ, должны получать вакцину в соответствии с инструкцией к препарату. Для пациентов, получающих СЛИТ, необходимо разработать график наблюдения, также желательно в соответствии с инструкцией.

  • В связи с тем, что пациент получает СЛИТ дома, важен контроль и курация пациента врачом, а также доступность врача по телефонной связи или посредством мессенджеров для быстрого решения возникающих вопросов. На первых порах очень высок риск прекращения терапии из-за возникновения местных нежелательных реакций, поэтому необходим контрольный визит в течение первого месяца терапии и предварительная разъяснительная работа о ходе лечения. В ходе разъяснительной работы необходимо обратить внимание пациента на то, что локальные нежелательные явления развиваются часто, их появление служит показателем того, что аллерген для лечения выбран правильно, что они либо купируются самостоятельно, либо легко преодолимы с помощью медикаментозной терапии в подавляющем большинстве случаев.

  • Наиболее уязвимыми в плане приверженности к лечению являются круглогодичные протоколы СЛИТ. После прохождения первого месяца терапии основная масса пациентов прекращает лечение в связи с потерей мотивации на терапию. Причиной этого является отсутствие четкого плана наблюдения и редкие осмотры. При проведении СЛИТ, в особенности по круглогодичному протоколу, необходимо обеспечить: постоянную доступность связи с лечащим врачом, например, по телефону или мессенджерам для решения возникающих вопросов; контрольные визиты для оценки хода лечения, комплайентности, переносимости лечения, обсуждения графика вакцинаций и др. каждые 3–6 мес.

  • Внеплановые визиты проводятся при развитии или обострении сопутствующих заболеваний, обострений основного заболевания, а также по мере необходимости в случае возникновения вопросов у пациента.

  • Обязательная регулярная оценка эффективности лечения проводится при круглогодичном протоколе АСИТ 1 раз в год, при АСИТ с пыльцевыми аллергенами - после сезона цветения причинно-значимых растений.

  • На регулярных визитах принимают решения о возможности снижения объема фармакотерапии основного заболевания (в связи с формированием стойкого эффекта АСИТ), а также время прекращения АСИТ.

  • Для оценки комплаентности пациента можно применять различные приемы: составленные в свободной форме в таблице на бумаге оценка и подсчет принятых доз; оценка по количеству истраченных доз/упаковок аллерговакцины, в сопоставлении с ожидаемым приемом по формуле расчета комплайентности. Сколько раз пациент должен был применить препарат к моменту визита (Nожид ): ______________ . Сколько раз пациент фактически применил препарат к моменту визита (Nреал ): ______________ . Комплайентность = Nреал /Nожид ×100%. Приверженность к терапии составляет _______________ %. Например, на очередном визите отмечаем, что пациент получал СЛИТ в течение 30 дней; перерывов в лечении не было; истратил 30 таблеток. Комплайенс составил 100%. Удовлетворительным считается комплайенс 80% и выше. Для применения расчета пациент может предъявлять используемые и истраченные упаковки и флаконы аллерговакцины.

  • Необходимость проведения вакцинации во время АСИТ определяет лечащий врач, исходя из соображений целесообразности, риска и пользы. В случае экстренной вакцинации и вакцинации по эпидемическим показаниям необходимо руководствоваться инструкцией к препарату. В случае недоступности информации, касающейся вакцины/лечебного аллергена, необходимо руководствоваться клиническими рекомендациями экспертов. Подробно условия вакцинации во время проведения АСИТ описаны в главе "Показания и противопоказания к проведению аллерген-специфической иммунотерапии".

  • Необходимо использовать только стандартизированные препараты. Использование препаратов, прошедших биологическую стандартизацию, позволяет быть в относительной уверенности в стабильности состава и активности аллергена в препарате. Использование стандартизированных аллергенов более безопасно, не требует снижения дозы при переходе на новую серию препарата.

  • Для достижения стабильного результата, согласно международным руководствам и федеральным клиническим рекомендациям, длительность лечения должна составлять от 3 до 5 лет, хотя эффект АСИТ уже заметен после одного года лечения.

  • АСИТ подразумевает подбор удобного режима приема лекарств и его включение в ритм жизни пациента. Важно также учитывать приверженность пациента СЛИТ или ПКИТ как в плане соблюдения протокола, так и в плане установки на эффективность того или иного метода. При выборе метода АСИТ необходимо учитывать индивидуальные особенности характера пациента, а также такие факторы, как удаленность пациента от клиники, сложный график работы/учебы и другие виды занятости, которые создают предпосылки к редким визитам в клинику, что не подходит для ПКИТ. Пациент, который боится инъекций, является кандидатом на СЛИТ. Кандидатом для СЛИТ, как правило, будет ребенок. Тяжелые системные реакции в анамнезе при проведении ПКИТ указывают на целесообразность назначения СЛИТ. Более высокий профиль безопасности СЛИТ имеет преимущество использования СЛИТ в сравнении с ПКИТ. Важны активное участие пациента (его родителей) в данном вопросе, учет его мнения при выборе метода АСИТ, поскольку это обеспечивает высокий комплайенс и соответственно лучший эффект. При соблюдении этого условия у больного появляется чувство ответственности за успех терапии, и он будет лучше следовать тактике лечения, выработанной совместно с врачом.

  • При недостаточной эффективности АСИТ в каждом конкретном случае необходимо в первую очередь рассматривать вероятность низкого комплайенса [1–5].

  • Требуется периодическая оценка эффективности терапии, которая проводится клинически путем оценки симптомов и объема получаемой терапии до и после АСИТ, для чего используются различные опросники (см. раздел "Приложения"). Можно оценить степень удовлетворенности пациента лечением и выявить уменьшение симптомов и активных жалоб, а также снижение объема фармакотерапии. Объективных биологических маркеров в настоящее время нет. Снижение индекса активации тучных клеток, нарастание специфического IgG4 и других описано в работах многих исследователей, но доказательной базы для рекомендаций определять их в рутинной практике нет.

  • Также в некоторых случаях следует своевременно принять решение о прекращении АСИТ. АСИТ следует прекратить при наступлении отчетливого клинического эффекта терапии после 3–5 лет ее проведения, низком комплайенсе пациента, появлении любого противопоказания к проведению АСИТ, наличии плохо переносимых, неуправляемых побочных эффектов терапии, повторных системных реакциях, отсутствии значимого эффекта через 1–2 года проведения терапии.

Пациенту должны быть выданы памятки (отрывные чек-листы, где есть информация о схеме приема аллергена, возможных нежелательных реакциях, алгоритм действия при их возникновении). Целесообразно ведение дневника АСИТ, куда пациент вносит сведения о приеме определенной дозы аллергена, появлении нежелательных реакций, приеме лекарственных препаратов (если возникает такая необходимость). Это дисциплинирует пациента и может помочь врачу внести корректировку в протокол АСИТ, а при необходимости назначить базисную фармакотерапию.

Поскольку СЛИТ проводится в домашней обстановке, должны быть приняты следующие меры предосторожности:

  • пациенту (или родителям, если проводится лечение ребенка) должны быть предоставлены четкие письменные инструкции о действиях в случае развития нежелательной реакции;

  • аллерген должен храниться в безопасном, недоступном для детей месте, в соответствии с температурными условиями хранения;

  • необходимо обучить пациента (родителей, если проводится лечение ребенка) правильной технике приема препарата;

  • важно, чтобы пациент посещал врача как минимум три раза в год для подтверждения эффективности лечения и выявления возможных нежелательных эффектов;

  • желательно предоставление контактного телефона лечащего врача для возможности обсуждения некоторых вопросов посредством телефонного контакта.

Поскольку проведение сублингвальной АСИТ подразумевает продолжительное лечение, специальной строгой диеты, как в случае с инъекционными методами АСИТ, не требуется. Однако в дни употребления продуктов-гистаминолибераторов в большом количестве принимать аллергенный препарат не следует. В каждом случае при наличии перекрестной пищевой непереносимости рекомендуется индивидуальная диета.

Аллергологический кабинет должен быть оснащен всем необходимым для оказания экстренной помощи в случае развития побочных реакций при АСИТ, а пациенты должны быть полностью информированы о данном виде лечения и риске возможных побочных реакций, что необходимо детально фиксировать документально. Международными рекомендациями и руководством по качественной медицинской помощи предусмотрено, что инъекция экстракта аллергена должна производиться врачом или медицинской сестрой под наблюдением врача.

Оборудование, рекомендуемое для учреждений, в которых проводится АСИТ:

  • 1) эпинефрин (раствор для инъекций, 1 мг/мл);

  • 2) оборудование для оксигенотерапии;

  • 3) оборудование для внутривенных инъекций и инфузий;

  • 4) антигистаминные препараты для приема внутрь и для инъекций;

  • 5) сальбутамол: в виде аэрозоля (+ спейсер) или в виде раствора для небулайзера (+ небулайзер);

  • 6) ГК для приема внутрь и в виде растворов для внутривенного введения.

Перед инъекцией или первоначальным введением аллерговакцины для СЛИТ необходимо:

  • проверить набор для оказания первой помощи (подробности представлены выше);

  • проверить состояние пациента - выяснить:

    • любые реакции, которые могли быть следствием предыдущей инъекции;

    • любые реакции, которые могли бы считаться относящимися к терапии (инфекция, или приступ бронхиальной астмы, или обострение симптомов аллергии);

    • любые препараты, принимавшиеся в перерыве между принятием АСИТ;

    • убедиться, что у пациентов с бронхиальной астмой пиковая скорость выдоха более чем 70% от "наилучшего личного" показателя;

  • требуется проверить лечебный препарат (аллерген):

    • уточнить состав, концентрацию и срок годности аллергена;

    • проверить дозу, которая должна быть введена путем сравнения ее с предшествующей дозой и с графиком введения доз;

    • уточнить период времени с момента последней инъекции;

    • использовать одноразовый шприц 1 мл (с градуировкой 1/100);

    • встряхнуть флакон и с соблюдением правил асептики набрать в шприц точный объем раствора, который подлежит введению;

    • введение производится путем точной глубокой подкожной инъекции в нижнюю дельтовидную область руки. Всегда следует оттягивать поршень шприца назад, чтобы убедиться, что игла не попала в кровеносный сосуд.

После инъекции и введения первоначальной дозы при СЛИТ следует:

  • Понаблюдать за пациентом в течение 30–60 мин после инъекции. Для пациентов из группы высокого риска (например, с высокой степенью сенсибилизации) требуется более длительный период наблюдения. Отсроченные системные реакции составляют до половины всех системных реакций, возникая без каких-либо предшествующих симптомов либо являясь частью двухфазной реакции. Именно поэтому врачи и пациенты должны быть осведомлены о возможности развития отсроченных реакций и о плане действий в таких случаях: рекомендуется увеличить время наблюдения до 60 мин после введения аллергена.

  • Перед тем как пациент покинет кабинет врача или клинику, следует проверить место инъекции и подъязычную область при СЛИТ.

  • Порекомендовать пациенту до окончания дня избегать интенсивной физической нагрузки, горячей ванны и сауны.

  • Порекомендовать пациенту проконсультироваться с врачом или обратиться за неотложной помощью в случае развития отсроченной реакции.

  • Записать все подробности инъекции в карту или дневник проведения АСИТ.

Мерой по повышению безопасности АСИТ является использование депонированных аллергенов. Разработка более совершенных молекул адъювантов для аллерговакцин является эффективным способом повышения безопасности АСИТ. Депо-вакцины подразумевают меньшую кратность инъекций, соответственно, сокращается количество визитов к врачу. Адъювант (Adjuvant) - вспомогательное средство, вводимое в организм при проведении инъекции препарата вместе с аллергеном для неспецифической стимуляции иммунного ответа. В позиционных документах ВОЗ и ARIA рекомендуется использование депонированных аллергенов для подкожной АСИТ. Адъювант обеспечивает постепенное высвобождение аллергена в организме. В качестве адъюванта используются химические вещества различной природы, нерастворимые или плохо растворимые в воде, в основном гидроокись алюминия и фосфат кальция. В качестве адъюванта в большинстве аллерговакцин используется алюминия гидроксид. Однако этот адъювант имеет существенный недостаток - он может стимулировать проаллергическое воспаление 2-го типа. В последние десятилетия в качестве адъюванта применяют тирозин, фосфат кальция. Перспективным считается включение в состав аллерговакцин наночастиц, вирусоподобных частиц. Такой подход может способствовать образованию дополнительного слоя защиты аллергена от деструкции и, как следствие, достижению более высокой концентрации лечебного аллергена на месте действия и увеличению иммуногенных свойств аллерговакцины, а также снижению реактогенности и риска побочных реакций [2]. Идеальный адъювант должен иметь надежный профиль безопасности, способность абсорбировать аллергены в депо, что приводит к снижению аллергенности и риска серьезных нежелательных реакций и должен улучшать иммуногенность.

14.2. Возможность применения базисных и симптоматических лекарственных средств во время аллерген-специфической иммунотерапии

В рутинной практике у врача всегда возникают вопросы о необходимости и безопасности использования антигистаминных препаратов, топических глюкокортикоидов и моноклональных антител на фоне АСИТ [6–8].

В большинстве исследований по АСИТ пациенты, как правило, получают базисные и симптоматические препараты. В рутинной практике антигистаминные препараты также могут быть использованы одновременно с АСИТ. Использование их возможно симптоматически в сезон цветения для купирования проявлений аллергии, вызванной естественной экспозицией аллергена. Также применение их не исключено для профилактики нежелательных реакций на введение лечебного аллергена в начале терапии. Использование антигистаминных препаратов у пациентов позволяет существенно уменьшить частоту побочных эффектов, избежать серьезных нежелательных реакций и достигнуть более высоких доз на этапе поддерживающего лечения. Использование антигистаминных препаратов в качестве превентивного лечения распространено при проведении ПКИТ, особенно при ускоренных схемах терапии или лечении ядами перепончатокрылых. На сегодняшний день нет оснований для опасения влияния антигистаминных препаратов на эффективность терапии, однако рекомендуется использование Н1 -антигистаминных препаратов второго поколения. Кроме того, в связи с тем, что антигистаминные средства могут маскировать нежелательные реакции у высоко сенсибилизированных пациентов, следует оставлять их под наблюдением в течение не менее 60 мин после приема аллергена. Также следует отметить, что антигистаминные препараты не профилактируют анафилактический шок при введении аллергена.

Использование ингаляционных и интраназальных ГК при лечении АСИТ пациентов с бронхиальной астмой и аллергическим ринитом также возможно в качестве сопутствующей терапии, поскольку только пациент с контролируемым состоянием аллергического заболевания - это кандидат для АСИТ. В клинических исследованиях по оценке эффективности АСИТ при бронхиальной астме все пациенты получали одновременно базисную терапию ИГК с целью достижения контроля заболевания. АСИТ была эффективной. Потенциальный стероид-спарринг эффект АСИТ с ИГК крайне важен, так как АСИТ способна уменьшить дозу ИГК и предотвратить их потенциальные побочные эффекты у пациентов с бронхиальной астмой. Для обоих методов АСИТ - как ПКИТ, так и СЛИТ - было продемонстрировано уменьшение контролирующей дозы ИГК на фоне проведения АСИТ [9].

ИГК имеют минимальный системный побочный эффект и не оказывают негативного влияния на формирование толерантности в процессе АСИТ. Таким образом, и в рутинной клинической практике применение ИГК возможно и допустимо.

В исследованиях с дополнительным назначением моноклональных препаратов (омализумаб) во время АСИТ продемонстрировано его профилактическое действие в отношении риска развития нежелательных реакций. Однако пока в инструкции по применению омализумаба такого показания нет. Эффективности сочетанной терапии омализумаба и АСИТ посвящена отдельная глава настоящего издания.

Тактика врача при перерыве в аллерген-специфической иммунотерапии

Временное прерывание АСИТ может быть по разным причинам:

  • ОРВИ или другое острое интеркуррентное заболевание;

  • обострение основного заболевания;

  • организационные моменты (отъезды, несвоевременное приобретение очередной упаковки аллерговакцины и др.).

Дополнительные причины для временного прерывания СЛИТ:

  • нарушение целостности слизистой оболочки полости рта (стоматит, травма, выпадение или удаление зуба и т.д.);

  • острый гастрит, гастроэнтерит, обострение рефлюксной болезни.

В случае развития описанных причин АСИТ прерывают и пересматривают протокол ведения пациента с необходимостью провести коррекцию первой дозы аллерговакцины после перерыва. Общей рекомендацией является снижение очередной дозы примерно на половину по сравнению с предыдущей. Однако более точные указания следует найти в инструкции по применению вводимого аллергена. Необходимо ориентироваться на инструкции о возобновлении лечения после перерыва, данные производителем конкретного аллергена.

При ПКИТ коррекция дозы проводится при первой явке пациента после перерыва в лечении. При проведении АСИТ отечественными водно-солевыми аллергенами, в случае прерывания курса по любой причине, при возобновлении лечения требуется уменьшить очередную дозу, то есть вернуться по схеме АСИТ на 2–4 дозы назад. При длительном прерывании протокола, более 14 дней, следует вернуться на 1 разведение назад.

Тактика в отношении депонированных препаратов следующая (табл. 14-1).

При перерывах в лечении препаратов для СЛИТ тактика врача представлена в табл. 14-2.

Таблица 14-1. Тактика при пропусках в лечении депонированных аллергенов [10–12]
Длительность перерыва Тактика

Этап набора дозы

От 1 до 2 нед

Повторить предыдущую дозу и продолжить набор дозы

От 2 нед до 1 мес

Ввести минимальный объем (0,1 мл) той дозы, на которой было прервано лечение. Продолжать набор дозы согласно схеме начального этапа терапии

Более 1 мес

Ввести минимальный объем (0,1 мл) препарата концентрацией в 10 раз меньше, чем доза препарата, используемая до перерыва в лечении. Далее продолжить набор дозы, согласно схеме начального этапа терапии

Этап поддерживающей терапии

Менее 6 нед

Продолжить в той же дозе и объеме

От 6 нед до 6 мес

Перейти на начальный этап лечения концентрации 1 ИР в объеме 0,1 мл и продолжить лечение, согласно схеме начальной терапии, до достижения поддерживающей дозировки

Примечание : ИР -индекс реактивности.

Таблица 14-2. Тактика при пропусках в лечении препаратов для сублингвальной иммунотерапии [10–12]
Длительность перерыва Тактика

Сталораль "Аллерген березы" ,

Сталораль "Аллерген клещей"

Этап набора дозы

Менее 7 дней

Продолжить набор дозы без изменений

Более 1 мес

Возобновить прием препарата с одного нажатия той же самой концентрацией, на которой было прервано лечение, и увеличивать набор дозы, согласно схеме начального этапа терапии

Этап поддерживающей терапии

Менее 7 дней

Возобновить лечение без изменений

От 1 нед до 1 мес

Возобновить прием препарата с одного нажатия концентрации 300 ИР и увеличивать набор дозы, согласно схеме начального этапа терапии, до оптимально хорошо переносимой дозы

От 1 до 6 мес

При перерыве более 1 мес консультация врача-специалиста обязательна, рекомендуется возобновить прием препарата с одного нажатия концентрации 300 ИР в присутствии врача. Далее увеличивать набор дозы, согласно схеме начального этапа терапии, до оптимально хорошо переносимой дозы

Оралейр

Менее 7 дней

Возобновить прием препарата в той же дозе, на которой было прервано лечение, под обязательным медицинским наблюдением

Более 7 дней

Проконсультироваться с лечащим врачом для корректировки лечения

Лайс Дермофагоидес , Лайс Грасс

Менее 2 нед

Возобновить прием препарата в той же дозе, на которой было прервано лечение, под обязательным медицинским наблюдением

Более 2 нед

Проконсультироваться с лечащим врачом для корректировки лечения

Гразакс , Рагвизакс , Акаризакс , Итулазакс

Более 7 дней

Проконсультироваться с лечащим врачом для корректировки лечения

Примечание : ИР -индекс реактивности.

Список литературы

  1. Павлова К.С. Новые возможности аллерген-специфической иммунотерапии // Педиатрия (Прил. к журн. Consilium Medicum). 2017. № 4. C. 56–58.

  2. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen Immunotherapy User`s Guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  3. Roberts G., Pfaar O., Akdis C.A. et al. EAACI Guidelines on Allergen Immunotherapy: Allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 765–798.

  4. Трусова О.В., Камаев А.В., Макарова И.В. Проблемы выбывания пациентов с лечения сублингвальной аллерген-специфической терапией с аллергеном клещей домашней пыли, и пути их преодоления // РАЖ. 2020. Т. 2, № 17. C. 53–60.

  5. Аллерген-специфическая иммунотерапия у детей (на правах руководства). Согласительный документ Ассоциации детских аллергологов и иммунологов России. Москва: Адаир, 2021. 198 c.

  6. Didier A., Malling H.J., Worm M. et al. Optimal dose, efficacy, and safety of once-daily sublingual immunotherapy with a5-grass pollen tablet for seasonal allergic rhinitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 120. P. 1338–1345.

  7. Ohashi Y., Nakai Y., Murata K. Effect of pretreatment with fexofenadine on the safety of immunotherapy in patients with allergic rhinitis // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2006. Vol. 96, N. 4. P. 600–605.

  8. Virchow J.C. et al. Efficacy of a house dust mite sublingual allergen immunotherapy tablet in adults with allergic asthma: a randomized clinical trial // JAMA. 2016. Vol. 315, N. 16. P. 1715–1725.

  9. Демко И.В., Собко Е.А., Ищенко О.П. Клиническая эффективность специфической иммунотерапии при бронхиальной астме // Сибирское медицинское обозрение. 2010. Т. 62, № 2. С. 72–76.

  10. Инструкция по применению лекарственного препарата для медицинского применения Фосталь «Аллерген пыльцы деревьев». МЗ РФ. 2016. 10 с.

  11. Инструкция по применению лекарственного препарата для медицинского применения Алюсталь «Аллерген пыльцы луговых трав». МЗ РФ. 2016. 11 с.

  12. Инструкция по применению лекарственного препарата для медицинского применения Алюсталь «Аллерген клещей». МЗ РФ. 2016. 11 с.

Глава 15. Полисенсибилизированные пациенты и тактика проведения аллерген-специфической иммунотерапии

Определение спектра сенсибилизации является важнейшим фактором в диагностике аллергопатологии. Проблема полисенсибилизации является значимой как у детей, так и у взрослых. Следует отметить, что с возрастом происходит расширение спектра сенсибилизации, поэтому ранняя диагностика, проведение комплексного обследования и лечения, включая АСИТ, являются необходимыми для предотвращения прогрессирования атопического марша и улучшения качества жизни пациентов с аллергопатологией. В клинической практике большинство пациентов аллергическими заболеваниями являются полисенсибилизированными (около 80% больных), и клиническое значение могут иметь несколько аллергенов. Поливалентная сенсибилизация может выявляться в самых различных вариациях и сочетаниях нескольких аллергенов у одного пациента. Однако клиническую значимость имеет чувствительность не ко всем выявленным аллергенам. Множественная аллергия зачастую сопровождается более выраженными клиническими проявлениями болезни. Количество аллергенов, к которым сенсибилизирован пациент, менее значимо, чем клинические проявления, вызванные сенсибилизацией к тому или иному аллергену. Заключение о моносенсибилизации или полисенсибилизации делается в зависимости от количества положительных тестов с различными аллергенами или выявленных специфических IgE.

Моносенсибилизация - это сенсибилизация к одному индивидуальному аллергену, подтвержденная выявленными специфическими IgE или положительными кожными пробами.

Полисенсибилизация - это сенсибилизация к двум и более аллергенам, подтвержденная выявленными специфическими IgE или положительными кожными пробами.

Полисенсибилизированный пациент необязательно имеет полиаллергию, в то время как полиаллергичный пациент обязательно будет полисенсибилизированным.

Полиаллергия - это клинически подтвержденная аллергия к двум и более аллергенам. В этом случае выявленная взаимосвязь между воздействием специфического аллергена и развитием клинических проявлений подтверждается положительными кожными пробами или наличием выявленных специфических IgE.

Понятие "полисенсибилизация" включает в себя перекрестную реактивность, когда тот же самый IgE связывается с различными аллергенами, имеющими сходную структуру, и ко-сенсибилизацию - одновременное присутствие различных IgE, связывающихся с аллергенами, не имеющими сходной структуры.

Важной задачей врача является установление причинно-значимого аллергена, вызывающего клинические проявления у пациента. Установление причинно-значимого аллергена проводится с применением различных методов диагностики (сбор анамнеза, кожное тестирование, выявление специфических иммуноглобулинов Е, провокационные тесты).

Верно выполненные кожные пробы - важный инструмент диагностического алгоритма. Они высокоспецифичны и высокочувствительны, однако положительные результаты кожных проб не всегда коррелируют с наличием и выраженностью клинических проявлений аллергического заболевания. Выявление того или иного уровня специфических IgE, несмотря на имеющуюся корреляцию между уровнем IgE и риском аллергии, также не служит указанием на наличие или отсутствие клинических проявлений. То есть выявление само по себе тех или иных значений специ­фических IgE не является доказательством, что именно они ответственны за клинические симптомы заболевания. Кроме того, сенсибилизация к одним аллергенам лучше выявляется путем проведения кожного тестирования, а к другим - с помощью определения специфических IgE [1].

Кроме того, при оценке результатов кожных проб и значений специ­фических IgE следует помнить о существовании сенсибилизации к широко распространенным паналлергенам. Паналлергены ответственны за IgE-опосредованные перекрестные реакции между пыльцевыми и пищевыми растительными аллергенами, поэтому могут приводить к ошибочному заключению о полисенсибилизации у пациентов с пыльцевой сенсибилизацией. При случае выявления положительных кожных проб, указывающих на полисенсибилизацию, в действительности реальный статус пациента может быть и полисенсибилизацией, и замаскированной моносенсибилизацией. Значимое диагностическое значение в этом случае может иметь молекулярная аллергодиагностика. С ее помощью можно выявить in vitro главные (мажорные), второстепенные (минорные) аллергокомпоненты и паналлергены.

15.1. Тактика врача для выявления полисенсибилизации

Необходим тщательный сбор данных анамнеза, во время которого формируется представление о наличии или отсутствии сезонности или круглогодичности клинических симптомов заболевания. При одном лишь качественно собранном анамнезе можно с достаточной степенью достоверности предположить причинно-значимый аллерген, ответственный за клиническую симптоматику. Например, для пыльцевой аллергии характерна четко выраженная сезонность симптомов, связанная с временем пыления растений. Появление симптомов в весенние месяцы характерно для сенсибилизации к пыльце деревьев, в летние месяцы (июнь - июль) - для сенсибилизации к пыльце злаков, август - сентябрь - сенсибилизации к пыльце сорных трав. Наличие орального аллергического синдрома при употреблении в пищу яблок или фундука, например, четко связано с аллергией на пыльцу березы. Далее требуется проведение кожного тестирования с аллергенными экстрактами и/или определение специфических IgE. Применение кожного аллерготестирования или определение уровня специфических IgE увеличивает точность диагноза до 97–99%. Кроме того, для диагностики могут быть дополнительно использованы провокационные тесты, однако выполняются они далеко не везде.

Следующим этапом при выявлении полисенсибилизации по результатам кожных проб необходимо использовать компонентную аллергодиагностику для выявления причинно-значимого аллергена. Если полисенсибилизация, выявленная при проведении кожных проб, подтверждается результатами компонентной диагностики, то пациент действительно является полисенсибилизированным, а при наличии соответствующей симптоматики - и полиаллергичным [2].

Иногда уже первых двух этапов обследования достаточно, и их выполнение сужает круг подозреваемых аллергенов до определения причинно-значимого аллергена или группы аллергенов, возможных для назначения АСИТ. К пациенту с поливалентной аллергией требуется индивидуальный подход. Необходимо учитывать ряд факторов: тип и степень тяжести симптомов, их влияние на качество жизни пациента, выявление аллергена, вызывающего наиболее длительную по времени симптоматику в течение года, возможность осуществления элиминационных мероприятий.

Полиаллергичный пациент представляет сложность и в плане диагностики, и в плане лечения даже для опытного врача-аллерголога. Единого подхода в отношении этой когорты пациентов нет. В отношении проведения АСИТ полисенсибилизированным пациентам на настоящий момент не существует унифицированных национальных или международных рекомендаций. Тактика проведения АСИТ полисенсибилизированному пациенту зависит от спектра имеющихся лечебных аллергенов, опыта врача-аллерголога, желания и экономических возможностей пациента, существующих локальных стандартов и клинических рекомендаций. К сожалению, на сегодняшний день имеется ограниченное количество публикаций результатов исследований, касающихся одновременного проведения АСИТ несколькими аллергенами. В клинических исследованиях убедительно доказано, что АСИТ одинаково эффективна как у моносенсибилизированных, так и у полисенсибилизированных пациентов при условии, что для лечения выбран правильный аллерген [3, 4].

В разных странах, в силу тех или иных причин, сформировались свои взгляды на оптимальные подходы к АСИТ у полисенсибилизированных пациентов. Так, например, в Северной Америке врачи предпочитают назначать лечение смесями аллергенов, в странах ЕС больше распространено лечение индивидуальными аллергенами. В нашей стране практикуются оба подхода. Исходя из предположения о тождественности аллергенов одной группы, некоторые аллергологи смешивают аллергены отечественного производства. Например, аллергены пыльцы ольхи и березы из группы пыльцевых аллергенов деревьев или аллерген домашней пыли и аллерген клеща. Помимо водно-солевых аллергенов, в России зарегистрированы и широко применяются индивидуальные сертифицированные импортные аллергены. Некоторые врачи предпочитают лечить полиаллергичных пациентов одним наиболее клинически значимым аллергеном [5].

Рекомендации Европейского медицинского агентства (ЕМА) для производителей по приготовлению экстрактов аллергенов и составлению смесей экстрактов аллергенов основываются на принципе гомологичных групп. В одну гомологичную группу могут входить, например, клещи домашней пыли D. pteronyssisus и D. farinae , в то время как другие клещи, например, мучной клещ Acarussiro и клещ домашней пыли Glycyphagus domesticus , гомологичными не являются. Представители семейства буко­цветных - береза, ольха, граб, орешник, дуб - являются гомологичными, тогда как клен, ива, европейский бук, платан, тополь не гомологичны. Среди злаковых трав гомологичными являются колосок душистый, ежа, овсяница, бухарник шерстистый, ячмень, плевел, тимофеевка, мятлик луговой, негомологичными - гребенник обыкновенный и свинорой пальчатый. Аллергены из гомологичных групп, как правило, принадлежат к одному или близким таксономическим семействам. Экстракты аллергенов одной гомологичной группы сходны по составу, физико-химическим и биологическим свойствам сырья, производственному процессу обработки и получения окончательного продукта, а также имеют структурное сходство, лежащее в основе перекрестных реакций. Рекомендуется использование смеси разных аллергенов внутри гомологичной группы (Dermatophagoides , пыльца Betulaceae , пыльца Pooideae ), которые имитируют естественную экспозицию. Смешивание аллергенов явно отражается на фармакологической стабильности и точности дозировки, что создает трудности с подсчетом правильной дозы введенного аллергена, а следовательно, может приводить к проблемам безопасности при клиническом использовании такого препарата. Рекомендации ЕМА указывают на то, что аллергологам не следует смешивать неродственные аллергены, и однозначно не советуют смешивать друг с другом сезонные и круглогодичные аллергены, а также аллергены, обладающие протеолитической активностью, такие как экстракты клещей домашней пыли, плесеней и насекомых без достаточных на то оснований [6].

Тактика назначения АСИТ полисенсибизированному пациенту (рис. 15-1).

image
Рис. 15-1. Алгоритм назначения аллерген-специфической иммунотерапии у полисенсибилизированных пациентов. АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия

Множественные спектры сенсибилизации предполагают поиск главного аллергена, вызывающего симптомы заболевания.

Выбор наиболее значимого аллергена должен основываться на следующих характеристиках:

  • наибольшая продолжительность симптомов в году;

  • самые тяжелые симптомы;

  • основное влияние на качество жизни;

  • труднее всего избежать.

Наиболее значимый аллерген не должен выбираться по результатам наибольшей реактивности кожных аллергопроб или по самому высокому уровню специфического IgE. Алгоритм назначения АСИТ при сенсибилизации к двум и более группам аллергенов включает, прежде всего, определение аллергена, вызывающего наиболее интенсивные симптомы. Есть некоторые особенности назначения АСИТ полисенсибилизированному пациенту. АСИТ двумя аллергенами проводится параллельно отдельно или в смеси только для пациентов, у которых эти два аллергена имеют схожие выраженные клинические проявления, влияют на качество жизни и накладываются во времени. В случае его обнаружения больному проводят АСИТ одним аллергеном или смесью родственных аллергенов. Эксперты рекомендуют начать АСИТ с того аллергена, который вызывает наиболее тяжелые симптомы. Курс лечения должен начинаться аллергеном, наиболее важным с клинической точки зрения. Окончив трехлетний курс лечения первым аллергеном, необходимо сделать перерыв в лечении длительностью 1 год, после чего начать АСИТ вторым по клинической важности аллергеном. Но тогда при соблюдении рекомендуемых схем лечения речь идет о 6–7-летнем периоде, и, конечно же, такой подход подразумевает низкую приверженность пациента к лечению. Целесообразно в этом случае проводить параллельное лечение двумя аллергенами с соблюдением определенных правил.

При наличии двух клинически значимых аллергенов лечение может проводиться как параллельно индивидуальными аллергенами, так и путем введения смеси гомологичных аллергенов. По возможности предпочтение следует отдавать назначению двух индивидуальных аллергенов параллельными курсами. В случае если два аллергена имеют одинаковую клиническую значимость, начинают с одного аллергена, через год - старт лечения вторым клинически значимым аллергеном. Очень важно регулярно оценивать эффективность, переносимость и приверженность пациента к терапии [7]. АСИТ двумя аллергенами предпочтительно проводить отдельно назначаемыми стандартизированными высококачественными препаратами, что особенно важно при АСИТ негомологичными аллергенами.

Лечение смесью аллергенов может рассматриваться при соблюдении следующих условий:

  • изготовление смеси аллергенов технически выполнимо по критериям GMP (good manufacturing practice);

  • смесь аллергенов разрешена к применению надзорными и регулирующими органами страны;

  • компоненты смеси представлены в ней в эффективных концентрациях, доказанных клиническими испытаниями;

  • дозы индивидуальных аллергенов в смеси должны быть выверены: например, по 1/2 дозы каждого аллергена в двухаллергенной смеси или по 1/3 каждого аллергена в трехаллергенной смеси. Следует помнить о том, что не существует научного обоснования для определения доли каждого аллергена в смеси, ориентируясь на результаты выраженности кожных проб или уровни специфических IgE. Если используется смесь аллергенов, нет необходимости варьировать соотношение между отдельными аллергенами (аллергены используются в равных пропорциях) [8].

Смешивание нескольких экстрактов аллергенов связано с риском протеолитической деградации и возможной антигенной конкуренции из-за сатурации их процессинга в месте введения, что может нарушать иммуногенность аллергена и эффективность АСИТ [3].

15.2. Проведение аллерген-специфической иммунотерапии параллельно двумя аллергенами при подкожной иммунотерапии и сублингвальной иммунотерапии

В случае ПКИТ подкожные инъекции проводятся почти одновременно, но в разные места (разные конечности). В такой ситуации целесообразно делать 30-минутный перерыв между введением первого и второго аллергенов. Такой подход позволит при возникновении нежелательной или системной реакции выявить аллерген, вызвавший ее, и будет возможность скорректировать схему АСИТ. В то же время это позволит минимизировать количество посещений врача. Однако наиболее распространенная практика опытных врачей - одновременные инъекции в разные руки. Обязательным условием является наблюдение за пациентом в течение 30–40 мин после инъекции.

При проведении СЛИТ двумя аллергенами (учитывая ее превосходный профиль безопасности) возможны два подхода. Оба аллергена можно принимать утром с интервалом 30 мин между первым и вторым препаратом или первый аллерген принимают утром, а второй - вечером в этот же день. Возможный эффект антигенной конкуренции и "иммунного насыщения" в слизистой оболочке полости рта может быть преодолен соблюдением 30-минутного интервала между введениями аллергенов [8].

Имеющиеся на фармацевтическом рынке инъекционные и подъязычные формы аллергенов также дают возможность комбинирования курсов ПКИТ и СЛИТ. Например, сочетание АСИТ круглогодичным аллергеном и предсезонно-сезонный курс СЛИТ пыльцевым аллергеном позволят избежать эффекта антигенной конкуренции в месте введения, сохраняя эффективность и надежность при правильном выборе и проведении терапии.

Как правило, лечение одновременно более чем двумя группами аллергенов не проводят. Согласно мнению экспертов, для проведения АСИТ лучше всего выбрать два аллергена, наиболее важных с клинической точки зрения у данного пациента. АСИТ тремя и более аллергенами (одновременно) проводится редко. АСИТ тремя аллергенами может быть применена в исключительных случаях, когда все они явно вызывают клиническую симптоматику, и компонентная диагностика подтвердила вовлеченность каждого аллергена в патогенез заболевания. В таких случаях врач должен принять взвешенное решение, основанное на оценке баланса эффективности и безопасности такого подхода - приведет ли лечение несколькими аллергенами даже в сочетании с медикаментозной базисной терапией к уменьшению симптоматики заболевания и облегчению состояния пациента и не будет ли такой подход излишне опасным для пациента. В случае если выбор будет сделан в сторону лечения тремя аллергенами, то при проведении АСИТ следует придерживаться общих правил и, принимая во внимание указания, данные для АСИТ двумя аллергенами, вводить аллерген в разные места и в разное время [8].

Кроме того, при выборе лечения должны быть учтены предпочтения пациента в отношении пути введения лечебного аллергена, приверженности стоимости и наличия высококачественных лечебных форм аллергена. Во всех случаях следует использовать стандартизированные экстракты аллергенов [3].

Таким образом, комбинированные схемы АСИТ с использованием инъекционных и/или сублингвальных форм аллергенов должны проводиться строго по показаниям, с учетом рекомендаций экспертов и локальных методических рекомендаций. Разнообразие лекарственных форм лечебных аллергенов позволяет персонализировать схемы АСИТ. Однако в каждом случае поливалентной сенсибилизации и полиаллергии врач-аллерголог, опираясь на современные рекомендации и собственный опыт, должен определить количество лечебных аллергенов, пути их введения в организм при проведении АСИТ.

Список литературы

  1. Bousquet J., Heinzerling R., Bachert C. et al. Global allergy and asthma European network: Practical guide to skin prick tests in allergy to aeroallergens // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 18–24.

  2. Воронцова И.М., Коровкина Е.С. Стратегия и тактика аллерген-специфической иммунотерапии у полисенсибилизированных пациентов // Педиатрия. 2016. Т. 6, № 95. C. 139–144.

  3. Calderon M.A., Cox L., Casale T.B. et al. Multiple-allergen and single-allergen immunotherapy strategies in polysensitized patients: looking at the published evidence II // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 129, N. 4. P. 929–934.

  4. Bousquet P.J., Castelli C., Daures J.P. et al. Assessment of allergen sensitization in a general population-based survey (European Community Respiratory Health Survey I) // Ann. Epidemiol. 2010. Vol. 20. P. 797–803.

  5. Cox L., Jacobsen L. Comparison of allergen immunotherapy practice patterns in the United States and Europe // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2009. Vol. 103. P. 451–459.

  6. European Medicines Agency. Guideline on allergen products: production and quality issues. London. 2008 EMEA/ CHMP/BWP/304831/2007.

  7. Demoly P., Makatsori M., Casale T.B. et al. The potential role of allergen: immunotherapy in stepping down asthma treatment // J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2017. Vol. 5, N. 3. P. 640–648.

  8. Demoly P., Passalacqua G., Pfaar O. et al. Management of the polyallergic patient with allergy immunotherapy: a practice-based approach // Allergy Asthma Clin. Immunol. 2016. Vol. 12. P. 2–12.

Глава 16. Длительность аллерген-специфической иммунотерапии и клиническая оценка эффективности

АСИТ видоизменяет характер реагирования иммунной системы на аллерген и влияет на естественное течение аллергических болезней. Под ее воздействием отмечается снижение органной и тканевой чувствительности к причинно-значимым аллергенам; проведение ее способствует достижению длительной и стойкой ремиссии аллергических заболеваний, уменьшению потребности в противоаллергических препаратах. АСИТ более эффективна на раннем этапе болезни, она предупреждает расширение спектра сенсибилизации, лечебное действие АСИТ достигается в полной мере после повторных (3–5) курсов лечения. После завершения курса АСИТ маркером эффективности лечения следует рассматривать уменьшение клинических симптомов аллергической болезни и потребности в медикаментах. Клиническая эффективность АСИТ зависит от большого количества разнообразных эндогенных и экзогенных факторов, оказывающих влияние на механизмы формирования иммунологической толерантности. Интерес представляет, например, влияние окружающей среды на иммунный ответ в период проведения АСИТ. Была изучена клиническая эффективность АСИТ у пациентов детского возраста, проживающих в различных условиях - сельской и городской местности. При сравнении дети сельских районов имели достоверно лучший результат [1].

Рекомендованная продолжительность АСИТ, согласно российским и международным документам, составляет 3–5 лет. И в отношении этого срока у экспертов нет разногласий.

Результаты многочисленных плацебо-контролируемых проспективных исследований ПКИТ показали, что проведение АСИТ в течение 3 лет способствует длительной ремиссии заболевания после прекращения терапии. Результаты проспективных исследований СЛИТ в течение 3 лет также продемонстрировали ремиссию на протяжении 7 и 8 лет. В связи с этим считается, чтобы получить длительный эффект АСИТ, необходимо проводить лечение не менее трех лет [2–4]. В процессе АСИТ требуется регулярная оценка эффективности лечения. Для этого и при проведении клинических исследований, и в рутинной практике используются различные валидизированные шкалы. Своевременная тщательная оценка эффективности лечения способствует улучшению взаимодействия врача и пациента, дает дополнительную мотивацию на продолжение лечения. В итоге улучшается комплайенс, пациент более тщательно соблюдает режим лечения в дальнейшем. Периодическая оценка необходима для определения длительности терапии. Если эффект от лечения есть, следует продолжать АСИТ в течение рекомендованной производителем длительности, которая для всех препаратов составляет 3–5 лет. Однако в способах оценки эффективности лечения международные эксперты не достигли консенсуса [5]. Отсутствуют общепринятые валидированные системы оценки, и продолжается дискуссия о том, какие именно результаты лечения (clinical outcomes) должны оцениваться при АСИТ.

Минимальная обязательная продолжительность курса для достижения стойкого эффекта, в том числе долгосрочных результатов, составляет 3 года. После проведенных 3 лет терапии может быть принято решение о ее продолжении до общей продолжительности 4 или 5 лет. Более длительные курсы проводятся редко, и, возможно, они не оправданны. В каждом конкретном случае решение о продолжительности АСИТ принимается врачом индивидуально, своевременно оценивая данные об эффективности и переносимости лечения, обсуждая с пациентом тактику лечения. Более продолжительные курсы лечения могут быть показаны пациентам с замедленным формированием клинического эффекта АСИТ. В случае стойкой ремиссии заболевания, после 3–5 лет курсов лечения АСИТ прекращают. При рецидиве симптомов через несколько лет после прекращения АСИТ следует рассмотреть повторные курсы, так как повторное проведение курсов АСИТ также дает отчетливый положительный результат [2, 5–7].

АСИТ уменьшает выраженность симптомов, а также сокращает потребность в лекарственных средствах. Оценка выраженности симптомов и потребности в лекарствах является обязательным критерием клинической эффективности АСИТ.

Для объективной оценки эффективности АСИТ используются различные шкалы. Клинические критерии эффективности ПКИТ и СЛИТ могут включать индивидуальную оценку выраженности симптомов аллергического риноконъюнктивита (TSS) и астмы (ASS), учет потребности в лекарственных средствах (MS) или их комбинированную оценку (CSMS), оценку качества жизни (опросники RQLQ, AQLQ), выраженность симптомов по визуальной аналоговой шкале (VAS), подсчет дней с контролем симптомов, оценка удовлетворенности лечением (опросники ESPIA).

Некоторые шкалы, которые могут быть использованы в оценке эффектов АСИТ, представлены в приложении к данному изданию. В нашей стране для оценки клинического результата лечения для пациентов с бронхиальной астмой А.Д. Адо была предложена 4-балльная шкала. Данная шкала проста и удобна в использовании. Помимо оценки течения бронхиальной астмы она может быть использована и у пациентов с аллергическим ринитом. Недостатком является некоторая субъективность - часто пациент симптомы ОРВИ может квалифицировать как симптомы ринита и оценка результата терапии самим пациентом бывает заниженной. В клинических исследованиях по АСИТ используются валидизированные шкалы, учитывающие не только симптомы аллергического заболевания, но и необходимый объем фармакотерапии. Могут быть использованы комбинированная оценка симптомов и терапии CSMS (combined symptom and medication score) и Allergy-Control-SCORE [8, 9]. Наиболее часто проводится оценка тяжести симптомов, связанных с воздействием пыльцы (например, в сезон цветения, который должен быть точно определен для пыльцевых аллергенов), с учетом приема медикаментов, выраженная в баллах. Средний балл симптомов аллергического риноконъюнктивита основан на ежедневной оценке симптомов ринита (чихание, зуд в носу, выделения из носа, заложенность носа) и конъюнктивита (зуд глаз, слезотечение) по 4-балльной шкале и прием препаратов неотложной терапии по 6-балльной шкале оценки симптомов и приема медикаментов. Комбинированные шкалы оценки симптомов и медикаментов дают возможность максимально объективно оценить течение аллергического заболевания у пациента, вывести количественные показатели, доступные для сравнения и статистической обработки. Они логичны, и несложно устроены, и рекомендованы научным сообществом EAACI. Определенными недостатками является то, что используются либо электронные дневники, либо бумажные формы, что требует определенных затрат времени как со стороны пациента, так и стороны врача для дальнейшей статистической обработки. В связи с этим в практическом здравоохранении их использование не распространено. Кроме того, в клинических исследованиях часто рекомендуется принимать лекарственные препараты только в режиме по потребности, в том числе и препараты, предназначенные для базисной терапии. Также применение данных шкал затруднительно у неорганизованных пациентов и лиц, адаптированных к симптомам болезни. В клинических исследованиях эффективности АСИТ при астме с сенсибилизацией к клещу домашней пыли возможен к использованию более обширный перечень оценки различных параметров [10]. Несомненным преимуществом данного перечня является возможность комплексной оценки течения бронхиальной астмы (учитываются число обострений, контроль астмы, фармакотерапия, функция легких, качество жизни, безопасность) за длительный отчетный период. Важность изучения качества жизни пациентов с аллергическими заболеваниями также хорошо известна. Также может оцениваться удовлетворенность терапией.

Помимо клинических критериев (оценка выраженности симптомов, потребности в лекарственных препаратах, качества жизни и удовлетворенности терапией) для мониторинга эффективности АСИТ используют объективные данные, полученные путем проведения спирометрии, провокационных тестов с аллергеном, использования камер экспозиции, передней активной риноманометрии, акустической риноманометрии или измерения пикового назального инспираторного потока. Так, например, назальная провокационная проба является не только клиническим способом диагностики аллергического ринита, результат этой пробы используется в качестве важного показателя эффективности в клинических исследованиях при проведении АСИТ [11, 12].

Провокационные тесты используются редко, в основном в научных исследованиях, так как они сложные, затратные по времени и не всегда безопасные. Провокационные камеры, обеспечивающие экспозицию аллергенов, доступны лишь в единичных зарубежных исследовательских центрах. Несмотря на многочисленные исследования и поиск биомаркеров эффективности АСИТ, на сегодняшний день пока ни один из них не рекомендован для данной оценки в рутинной клинической практике. В рутинной практике критериями эффективности АСИТ являются только краткосрочные и долгосрочные клинические изменения в течении заболевания.

Критерии клинической эффективности:

  • уменьшение выраженности симптомов заболевания;

  • сокращение сроков обострений;

  • снижение потребности в фармакотерапии и уменьшение объема лечения;

  • изменение течения аллергического заболевания (стойкая ремиссия, которая сохраняется после окончания лечения, предотвращение атопического марша - расширения спектра сенсибилизации, пред­отвращение развития новых клинических форм атопического заболевания).

Долгосрочные эффекты - изменение естественного течения аллергического заболевания оценивается, как правило, по окончании терапии.

Следует отметить, что часто в практике аллергологи пренебрегают оценкой клинического эффекта, оценивая результат анамнестически после сезона, а в случае круглогодичного протокола по мере консультирования пациента. Оценивается примерное количество жалоб больного, степень удовлетворенности терапией, качество жизни пациента.Для оценки динамики состояния пациента необходимо за определенный отчетный период приводить информацию в форме эпикриза. В эпикризе должны быть отражены значимые симптомы и особенности течения аллергического заболевания, полученная пациентом за отчетный период фармакотерапия, нежелательные явления в ходе АСИТ. Могут быть приложены результаты оценки аналоговой шкалы силы симптомов, не требующих проведения затруднительных статистических расчетов и многодневного сбора информации. Сроки проведения оценки эффективности АСИТ имеют очень важное значение. Их необходимо соблюдать для адекватности оценки и в том числе для принятия взвешенного решения о продолжении или прекращении АСИТ. Не следует приступать к оценке эффективности слишком рано. Например, при лечении аллергенами клеща домашней пыли рекомендованный период для оценки эффективности составляет 1 год от начала терапии, хотя ряд признаков наступления эффекта АСИТ может проявиться в более ранние сроки (6–9 мес от начала терапии) [5].

При клещевой аллергии оценка проводится на сроках 1 год, 2 года и далее на фоне проведения АСИТ. Отечественными исследователями был предложен этапный эпикриз на пациента, получающего СЛИТ с аллергенами клеща домашней пыли, который составляется 1 раз в год. Эпикриз имеет лаконичный дизайн, содержит сводную таблицу клинических проявлений бронхиальной астмы, аллергического ринита, необходимой базисной и экстренной терапии. Заполнение эпикриза незатратно по времени, не связано с необходимостью ежедневного кропотливого ведения дневника пациента с фиксацией всех симптомов, перечислением медикаментов, а также сложной работы по обработке дневниковых записей. Система позволяет получить количественный результат, удобный для практического применения [13].

При пыльцевой аллергии оценка проводится за предыдущий до начала терапии сезон цветения и далее каждый год по окончании очередного сезона цветения причинно-значимых аллергенов. В случае отсутствия эффекта после первого года или курса АСИТ необходимо оценить: курсовую дозу полученного аллергена путем подсчета PNU при лечении водно-солевыми аллергенами или количества упаковок сублингвального препарата, соблюдение пациентом схемы лечения, наличие перерывов в лечении за период (в особенности при лечении сублингвальными формами). Следует провести ревизию диагноза, пересмотреть правильность выбора аллергена для лечения и на основании этого индивидуально принять решение о продолжении или прекращении АСИТ [5]. Практикующий врач в процессе проведения АСИТ обязан регулярно оценивать эффективность лечения. Своевременная оценка эффекта лечения улучшает взаимодействие врача и пациента, дает мотивацию на продолжение лечения и тщательное выполнение пациентом режима лечения в дальнейшем, способствует правильному выбору продолжительности терапии.

АСИТ считают неэффективной, если в течение двух лет у больного не произошло заметного клинического улучшения: уменьшения симптомов болезни и потребности в лекарственных препаратах.

Список литературы

  1. Pawlowski M., Jerzynska J., Podlecka D. et al. Effectiveness of immunotherapy in children depends on place of living A p // Allergol. Immunopathol. (Madr.). 2017. Vol. 45, N. 3. P. 272–275.

  2. Marogna M., Spadolini I., Massolo A. et al. Long-lasting effects of sublingual immunotherapy according to its duration: a 15-year prospective study // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 126, N. 5. P. 969–975.

  3. James L.K., Durham S.R. Update on mechanisms of allergen injection immunotherapy // Clin. Exp. Allergy. 2008. Vol. 38. P. 1074–1088.

  4. Jutel M., Akdis C.A. Immunological mechanisms of allergenspecific immunotherapy // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 725–732.

  5. Alvaro-Lozano М., Akdis С.A., Akdis М. et al. EAACI Allergen immunotherapy user’s guide // Pediatr. Allergy Immunol. 2020. Vol. 31, Suppl. 25. P. 1–101.

  6. Roberts G., Pfaar O., Akdis C.A. et al. EAACI Guidelines on allergen immunotherapy: allergic rhinoconjunctivitis // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 4. P. 765–798.

  7. Arasi S., Passalacqua G., Caminiti L. et al. Efficacy and safety of sublingual immunotherapy in children // Expert. Rev. CIin. Immunol. 2016. Vol. 12, N. 1. P. 49–56.

  8. Pfaar O., Demoly P., Gerth van Wijk R. et al. European Academy of Allergy and Clinical Immunology. Recommendations for the standardization of clinical outcomes used in allergen immunotherapy trials for allergic rhinoconjunctivitis: an EAACI Position Paper // Allergy. 2014. Vol. 69, N. 7. P. 854.

  9. Hafner D., Reich K., Matricardi P.M. et al. Prospective validation of Allergy-Control-SCORETM: a novel symptom-medication score for clinical trials // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 629–636.

  10. Agache I., Lau S., Akdis C.A. et al. EAACI guidelines on allergen immunotherapy: house dust mite-driven allergic asthma // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 5. P. 855–873.

  11. Auge J., Vent J., Agache I. et al. EAACI Position paper on the standardization of nasal allergen challenges // Allergy. 2018. Vol. 73, N. 8. P. 1597–1608.

  12. Eguiluz-Gracia I., Testera-Montes A., Gonzalez M. et al. Safety and reproducibility of nasal allergen challenge // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 6. P. 1125–1134.

  13. Трусова О.В., Камаев А.В., Макарова И.В. Проблемы выбывания пациентов с лечения сублингвальной аллерген-специфической терапией с аллергеном клещей домашней пыли, и пути их преодоления // РАЖ. 2020. Т. 2, № 17. C. 53–60.

Глава 17. Биологические маркеры - возможные кандидаты для оценки прогноза и эффективности аллерген-специфической иммунотерапии

В оценке эффективности АСИТ рассматривается ряд лабораторных показателей, но пока научное сообщество не пришло к единому мнению относительно этого вопроса. Тем не менее дальнейший поиск прогностических биомаркеров и биологических параметров контроля ответа на АСИТ будет иметь огромное значение в современной клинической практике. Выявление новых биомаркеров и проведение широкомасштабных исследований позволит более точно определить механизмы аллергии и улучшить отбор пациентов для проведения АСИТ. Такие параметры должны легко определяться в крови или других биологических жидкостях организма. Однако пока некоторые из этих изучаемых показателей слабо коррелируют с клиническими эффектами АСИТ, ряд других доступен только для оценки в рамках научных исследований.

Биологические критерии редко используются в рутинной клинической практике, в большинстве случаев их применяют в клинических исследованиях. Исследуют системные или локальные биомаркеры в сыворотке крови или в других биологических жидкостях [1]. Экспертами выделены наиболее перспективные биомаркеры контроля клинической эффективности АСИТ: подклассы IgE, подклассы IgG, тест активации базофилов, ингибирующая активность сыворотки в отношении IgE, цитокины, клеточные маркеры и маркеры in vivo[2].

17.1. Локальные биомаркеры

В качестве локальных биомаркеров изучаются уровни эозинофильного катионного протеина (ECP), секреторного IgA (sIgA), аллерген-специфического IgA.

Наиболее часто для мониторинга эффективности АСИТ оценивают уровень ECP непосредственно в шоковом органе. Данный маркер позволяет объективно охарактеризовать интенсивность локального воспаления в процессе терапии и в период естественной экспозиции аллергенов [3].

В результате успешно проведенной АСИТ происходят изменения в мукозальном иммунитете, которые направлены на усиление адаптивных свойств организма. В связи с этим в качестве биомаркера эффективности АСИТ рассматривается определение sIgA в назальном секрете и аллерген-специфических IgA в слюне [4].

Также аллерген-специфический IgG4 и IgG1 пробуют изучать в различных биологических жидкостях. При проведении АСИТ генетически модифицированными аллергенами было показано увеличение аллерген-специфических IgG4 и IgG1 в назальном лаваже и уменьшение назальной гиперреактивности [5]. В одном из недавних исследований продемонстрировано локальное повышение уровня специфических IgG4 в назальном содержимом при проведении АСИТ аллергеном пыльцы трав [6].

Однако необходимы дальнейшие исследования для выявления взаимосвязи между данными показателями и клиническим ответом на АСИТ.

17.2. Системные биомаркеры

В качестве системных биомаркеров исследуют уровень IL-10, TGFβ, аллерген-специфических IgA и IgG4, соотношение аллерген-специфических IgE/IgG4, соотношение аллерген-специфического IgE к IgE общему, IgE-BF (IgE-blockingfactor), IgE-FAB (IgE-Facilitated Allergen Binding), маркеры активации базовилов, регуляторные Т-клетки (Т-reg), регуляторные B-клетки (В-reg), дендритные клетки (DC) [2, 7].

Активно изучаемыми биомаркерами являются общий IgE, специфические IgE и соотношение специфического IgE к общему IgE.

Накопленный опыт свидетельствует, что отдельное измерение уровня общего IgE не продемонстрировало прогностической значимости при проведении АСИТ.

Повышенный уровень специфических IgE при наличии характерных клинических симптомов аллергического заболевания является стандартом для подтверждения диагноза. В связи с этим данный параметр может использоваться в качестве биомаркера при назначении АСИТ [8]. Кроме того, определение данного параметра в результате достижений молекулярной аллергодиагностики возможно не только в качестве диагностического биомаркера, но и в качестве показателя, предсказывающего эффективность и безопасность терапии. Например, сенсибилизация к мажорным аллергенам Der р 1 или Der p 2 может являться предиктором хорошей эффективности СЛИТ аллергеном клеща домашней пыли [9]. Более подробно данные взаимосвязи представлены в главе о значении молекулярной аллергодиагностики при проведении АСИТ. В большинстве клинических исследований выявлено увеличение уровня специфических IgE в течение первых месяцев после инициации АСИТ. Повышение уровня специфических IgE не сопровождалось ухудшением клинической симптоматики. В дальнейшем наблюдается снижение уровня специфических IgE после 6 мес лечения [10]. Тем не менее использование данного параметра в оценке эффективности АСИТ является спорным.

Делаются попытки оценить эффективность АСИТ путем анализа соотношения аллерген-специфического IgE к общему IgE. Для мониторинга эффективности АСИТ интерес представляет определение локального аллерген-специфического IgE к общему IgE [2].

В исследованиях было продемонстрировано, что в сравнении с пациентами с неудовлетворительным результатом лечения у пациентов с успешно проведенной АСИТ (ПКИТ и СЛИТ) исходное соотношение аллерген-специфического IgE к общему IgE выше [11–13]. Однако, несмотря на то что в некоторых исследованиях получены подтверждения корреляционной зависимости между этими коэффициентными изменениями в выраженности клинических симптомов у пациентов после проведения АСИТ, необходимо проведение дополнительных исследований для изучения надежности использования данного параметра для качественного прогнозирования клинического эффекта АСИТ [14].

Имеются попытки определения в качестве биомаркеров показателей IgE-BF (IgE-blockingfactor) и IgE-FAB (IgE-Facilitated Allergen Binding) в сыворотке крови [15, 16]. IgE-BF является важным регуляторным фактором, препятствующим связыванию IgE-антител с антигеном, в результате чего происходит торможение развития аллергического воспаления и клинических проявлений аллергии. На сегодняшний день только в одном исследовании изучалась взаимосвязь между уровнем IgE-BF и клиническим ответом на АСИТ [17]. С помощью IgE-FAB оценивают связывание комплекса антиген-IgE с B-клетками. Было продемонстрировано, что после АСИТ аллергенами пыльцы березы и злаковых трав IgE-FAB уменьшается [16]. Ингибирующая активность сыворотки крови для IgE-FAB коррелирует с клиническим улучшением и сохраняется в течение 2 лет [17]. Однако данных о взаимосвязи между уровнем ингибирующей активности сыворотки для IgE-FAB и клиническим ответом на АСИТ недостаточно [2].

Достаточно широко в клинических исследованиях используются определение аллерген-специфического IgG1, IgG4 и соотношение специфического IgE к IgG4 в сыворотке крови. Известно, что IgG-антитела выступают в роли блокирующих антител путем конкуренции с IgE за одни и те же эпитопы, что предотвращает последующую активацию и дегрануляцию тучных клеток и базофилов. Этот механизм играет важнейшую протективную роль в процессе АСИТ. При естественной экспозиции и аллергена синтезируются преимущественно IgG1-антитела, которые выполняют протективную роль, но их количественная характеристика и период существования в настоящее время окончательно не изучены. В то же время при повторном искусственном воздействии аллергена, в частности при проведении АСИТ, происходит образование аллерген-специфических IgG4-антител. Блокирующее действие аллерген-специфических IgG4-антител в настоящее время рассматривается в качестве одного их основных механизмов АСИТ, и считается, что данный показатель значимо коррелирует с результатом АСИТ и его повышение может свидетельствовать об успешно проведенном лечении [18, 19]. В ходе АСИТ сывороточные уровни аллерген-специфических IgG4-антител в течение первых месяцев лечения повышаются в несколько раз по сравнению с исходными значениями [20].

Однако также было показано, что по окончании АСИТ уровень аллерген-специфических IgG4-антител может снижаться вплоть до исходного значения, несмотря на продолжающееся улучшение клинической симптоматики [17]. Тем не менее возможна вариабельность продукции аллерген-специфических IgG4-антител в зависимости от дозы, пути введения и общей иммуногенности аллергена [21]. В связи с этим аллерген-специфические IgG4-антитела не могут рассматриваться в качестве надежного биомаркера клинической эффективности АСИТ.

При проведении АСИТ также изучалось соотношение специфических IgЕ- и IgG4-антител, и было выявлено изменение данного параметра в ходе АСИТ, тем не менее значимость этого показателя в качестве биомаркера в клинической практике в настоящее время остается неизвестной [22].

В настоящее время определение подклассов IgG с целью оценки эффективности АСИТ в рутинной практике не рекомендуется.

Интерес представляет изучение роли и функции базофилов в ходе АСИТ. Известно, что тест активации базофилов дает возможность идентифицировать сенсибилизирующий аллерген, вызывающий выработку IgE, а также оценивать аллергенный потенциал специфических IgE-антител [23].

В качестве маркеров эффективности АСИТ изучают активацию базофилов, используя CD-63, CD-203с. Полученные данные при проведении АСИТ противоречивы [2]. Согласно одним результатам исследований, при проведении АСИТ наблюдается подавление активации базофилов [24–26], что коррелирует с клиническим ответом на АСИТ [27]. Другие исследования не демонстрируют снижения маркеров базофилов в случае успешной АСИТ [28–30]. Вероятно, противоположные результаты могут быть связаны с путем введения аллерговакцины, и, предположительно, СЛИТ менее выражено подавляет дегрануляцию базофилов в отличие от ПКИТ.

Определение уровня ряда цитокинов также пробуют использовать в качестве биомаркеров АСИТ. В этом отношении интерес представляют IL-4, -5, -9, -10, -12, -13, -17, IFNγ, TGFβ, TARC, TRAIL. Полученные данные противоречивы. Так, согласно результатам ряда исследований, на фоне АСИТ происходит увеличение продукции IL-12, INFγ, IL-10, TGFβ в сыворотке крови [31–34], по результатам других работ, изменений цитокинового профиля получено не было [35, 36].

Предполагается, что для оценки эффективности АСИТ определение уровня цитокинов непосредственно в органе-мишени будет более показательным, но таких исследований выполнено недостаточно [2, 37, 38].

Интерес представляет и изучение клеточных биомаркеров (табл. 17-1) - регуляторных Т-клетки (T-reg), регуляторных В-клетки (B-reg) и дендритных клеток (DC).

Таблица 17-1. Основные объективные маркеры эффективности аллерген-специфической иммунотерапии
Методология Параметр Изменения в результате АСИТ

Еx vivo

Иммуноглобулины: sIgE, sIgG1, sIgG4, sIgA

  • Раннее увеличение и прогрессирующее снижение sIgE.

  • Увеличение sIgG1 и sIgG4 в сыворотке крови.

  • Увеличение sIgA в секрете слизистых оболочек, а также увеличение их блокирующей активности

sIgE/tIgE

Чем выше соотношение sIgE/tIgE, тем лучше ответ на АСИТ

Аллерген-специфическая реактивность Т-клеток

Увеличение T-reg, продуцирующих IL-10 и TGFβ; снижение Th2-цитокинов в сыворотке и увеличение IL-10

Аллерген-специфическая реактивность В-клеток

Увеличение количества продуцирующих IL-10, B-reg и продукция ими sIgG4-антител

Дендритные клетки (DC)

Увеличение экспрессии маркеров, связанных с регуляторными фенотипами DC

Функцио­наль­ные тесты in vitro

Активация базофилов

Снижение активации базофилов

Примечание : АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

Выявлено локальное увеличение количества T-reg в слизистой оболочке носа на фоне АСИТ [39, 40]. В некоторых исследованиях выявлено наличие корреляции между T-reg и улучшением клинических симптомов аллергии в результате АСИТ [41]. Однако требуются дополнительные исследования для подтверждения данной корреляции с клинической эффективностью АСИТ.

Согласно имеющимся данным, можно выделить следующие изменения в основных биологических маркерах аллергопатологии при проведении АСИТ (см. табл. 17-1).

Таким образом, поиск биомаркеров, отражающих эффективность АСИТ, крайне необходим и представляет интерес в научном сообществе. Однако общепринятых валидизированных методологий использования биологических маркеров для подтверждения формирования толерантности и эффективности АСИТ в настоящее время нет.

Список литературы

  1. Aj J.A., Colburn W.A., DeGruttola V.G. et al. Biomarkers and surrogateend points: Preferred definitions and conceptual framework // Clin. Pharmacol. Ther. 2001. Vol. 69, N. 3. P. 89–95.

  2. Shamji M.H., Kappen J.H., Akdis M. et al. Biomarkers for monitoring clinical efficacy of allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis and allergic asthma: an EAACI Position Paper // Allergy. 2017. Vol. 72. P. 1156–1173.

  3. Marccuci F., SensiL G. et al. Eosiniphil cationic protein and specific IgE in serum and nasal mucosa of patients with grass-pollen allergic rhinitis and asthma // Allergy. 2001. Vol. 56, N. 3. P. 231–236.

  4. Cevit O., Kendirli S.G., Yilmaz M. et al. Specific allergen immunotherapy: effect on immunologic markers and clinical parameters in asthmatic children // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. 2007. Vol. 17, N. 5. P. 286–291.

  5. Reisinger J., Horak F., Pauli G. et al. Allergen-specific nasal IgG antibodies induced by vaccination with genetically modified allergens are associated with reduced nasal allergen sensitivity // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 116. P. 347–354.

  6. Shamji M.H., Kappen J., Abubakar-Waziri H. et al. Nasal allergen-neutralizing lgG4 antibodies block IgE-mediated responses: Novel biomarker ofsubcutaneous grass pollen immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 143. P. 1067–1076.

  7. Коровкина Е.С., Воронцова И.М. Возможности оценки эффективности аллерген-специфической иммунотерапии // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2015. № 4. C. 10–15.

  8. Bousquet J., Pfaar O., Togias A. et al. 2019 ARIA Care pathways for allergen immunotherapy // Allergy. 2019. Vol. 74, N. 11. P. 2087–2102.

  9. Chen K-W., Zieglmayer P., Zieglmayer R. et al. Selection of house dust mite-allergic patients by molecular diagnosis may enhance success of specific immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunology. 2019. Vol. 143, N. 3. P. 1248–1252.

  10. Sindher S.B., Long A., Acharya S. et al. The use of biomarkers to predict aero-allergen and food immunotherapy responses // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2018. Vol. 55, N. 2. P. 190–204.

  11. DiLorenzo G., Mansueto P., Pacor M.L. et al. Evaluation of serum s-IgE/total IgE ratio in predicting clinical response to allergen-specific immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 123. P. 1103–1110.

  12. Eifan A.O., Akkoc T., Yildiz A. et al. Clinical efficacy and immunological mechanisms of sublingual and subcutaneous immunotherapy in asthmatic/rhinitis children sensitized to house dust mite: an open randomized controlled trial // Clin. Exp. Allergy. 2010. Vol. 40. P. 922–932.

  13. Li Q., Li M., Yue W. et al. Predictive factors for clinical response to allergy immunotherapy in children with asthma and rhinitis // Int. Arch. Allergy Immunol. 2014. Vol. 164. P. 210–217.

  14. Shamji M.H., Durham S.R. Mechanisms of allergenimmunotherapy for inhaled allergens and predictive biomarkers // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 140, N. 6. P. 1485–1498.

  15. Petersen A.B., Gudmann P., Milvang-Gronager P. et al. Performance evaluation of a specific IgE assay developed for the ADVIA centaur immunoassay system // Clin. Biochem. 2004. Vol. 37. P. 882–892.

  16. Wurtzen P.A., Lund G., Lund K. et al. A double-blind placebo-controlled birch allergy vaccination study II: correlation between inhibition of IgE binding, histamine release and facilitated allergen presentation // Clin. Exp. Allergy. 2008. Vol. 38, N. 8. P. 1290–1301.

  17. Shamji M.H., Ljorring C., Francis J.N. et al. Functional rather than immunoreactive levels of IgG4 correlate closely with clinical response to grass pollen immunotherapy // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 217–226.

  18. Jones S.M., Burks A.W., Keet C. et al. Long-term treatment with egg oral immunotherapy enhances sustained unresponsiveness that persists after cessation of therapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2016. Vol. 137, N. 10. P. 1117–1127.

  19. Huber S., Lang R., Steiner M. et al. Does clinical outcome of birch pollen immunotherapy relate to induction of blocking antibodies preventing IgE from allergen binding? A pilot study monitoring responses during first year of AIT // Clin. Transl. Allergy. 2018. Vol. 8, N. 8. P. 39.

  20. Chen J., Zhou Y., Wang Y. et al. Specific immunoglobulin E and immunoglobulin G4 toward major allergens of house-dust mite during allergen-specific immunotherapy // Am. J. Rhinol. Allergy. 2017. Vol. 3. P. 156–160.

  21. Siroux V., Lupinek C., Resch Y. et al. Specific IgE and IgG measured by the MeDALL allergen-chip depend on allergen and route of exposure: the EGEA study // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 139. P. 643–654.

  22. Burk C.M, Kulis M., Leung N. et al. Utility of component analyses in subjects undergoing sublingual immunotherapy for peanut allergy // Clin. Exp. Allergy. 2016. Vol. 46. P. 347–353.

  23. Caruso M., Cibella F., Emma R. et al. Basophil biomarkers as useful predictors for sublingual immunotherapy in allergic rhinitis // Int. Immunopharmacol. 2018. Vol. 60. P. 50–58.

  24. Schmid J.M., Wurtzen P.A., Dahl R. et al. Early improvement in basophil sensitivity predicts symptom relief with grass pollen immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 134. P. 741–744.

  25. Ozdemira S.K., Sin B.A., Gulogu D. et al. Short-term preseasonal immunotherapy: is early clinical efficacy related to the basophil response? // Int. Arch. Allergy Immunol. 2014. Vol. 164. P. 237–245.

  26. Барычева Л.Ю., Душина Л.В., Медведенко Ю.Н. Изменение реактивности базофилов и синтеза специфических иммуноглобулинов под влиянием аллерген-иммунотерапии // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2020. Т. 64, № 1. C. 15–23.

  27. Shamji M.H., Layhadi J.A., Scadding G.W. et al. Basophil expression of diamine oxidase: a novel biomarker of allergen immunotherapy response // J. Allergy Clin. Immunol. 2015. Vol. 135. P. 913–921.

  28. Van Overtvelt L., Baron-Bodo V., Horiot S. et al. Changes in basophil activation during grass-pollen sublingual immunotherapy do not correlate with clinical efficacy // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 1530–1537.

  29. Wachholz P.A., Durham S.R. Mechanisms of immunotherapy: IgG revisited // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2004. Vol. 4, N. 4. P. 313–318.

  30. Gomez E., Fernandez T.D., Dona I. et al. Initial immunological changes as predictors for house dust mite immunotherapy response // Clin. Exp. Allergy. 2015. Vol. 45. P. 1542–1553.

  31. Jutel M., Akdis M., Budak F. et al. IL-10 and TGF-beta cooperate in the regulatory T cell response to mucosal allergens in normal immunity and specific immunotherapy // Eur. J. Immunol. 2003. Vol. 33, N. 5. P. 1205–1214.

  32. Faith A., Richards D.F., Verhoef A. et al. Impaired secretion of interleukin-4 and interleukin-13 by allergen-specific T-cells correlates with defective nuclear expression of NF-AT2 and jun B: relevance to immunotherapy // Clin. Exp. Allergy. 2003. Vol. 33. P. 1209–1215.

  33. Bohle B., Kinaciyan T., Gerstmayr M. et al. Sublingual immunotherapy induces IL-10-producing T regulatory cells, allergen-specific T-cell tolerance, and immune deviation // J. Allergy Clin. Immunol. 2007. Vol. 120. P. 707–713.

  34. Cosmi L., Santarlasci V., Angeli R. et al. Sublingual immunotherapy with Dermatophagoides monomeric allergoid down-regulates allergen-specific immunoglobulin E and increases both interferon-gamma- and interleukin-10-production // Clin. Exp. Allergy. 2006. Vol. 36. P. 261–272.

  35. Francis J.N., Till S.J., Durham S.R. Induction of IL-10+CD4+CD25+ T cells by grass pollen immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2003. Vol. 111. P. 1255–1261.

  36. Wachholz P.A., Nouri-Aria K.T., Wilson D.R. et al. Grass pollen immunotherapy for hayfever is associated with increases in local nasal but not peripheral Th1:Th2 cytokine ratios // Immunology. 2002. Vol. 105. P. 56–62.

  37. Scadding G.W., Eifan A.O., Lao-Araya M. et al. Effect of grass pollen immunotherapy on clinical and local immune response to nasal allergen challenge // Allergy. 2015. Vol. 70. P. 689–696.

  38. Kirmaz C., Kirgiz O.O., Bayrak P. et al. Effects of allergen-specific immunotherapy on functions of helper and regulatory T cells in patients with seasonal allergic rhinitis // Eur. Cytokine Netw. 2011. Vol. 22. P. 15–23.

  39. Radulovic S., Jacobson M.R. Durham S.R. et al. Grass pollen immunotherapy induces Foxp3-expressing CD4+ CD25+ cells in the nasal mucosa // Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 121, N. 6. P. 1467–1472.

  40. Golebski K., Röschmann K.I.L., Toppila-Salmi S. et al. The multi-faceted role of allergen exposure to the local airway mucosa // Allergy. 2013. Vol. 68, N. 2. P. 152–160.

  41. Lou W., Wang C., Wang Y. et al. Responses of CD4() CD25() Foxp3(+) and IL-10-secreting type I T regulatory cells to cluster-specific immunotherapy for allergic rhinitis in children // Pediatr. Allergy Immunol. 2012. Vol. 23. P. 140–149.

Глава 18. Аллерген-специфическая иммунотерапия и таргетная терапия

При соблюдении протокола АСИТ является безопасным и высокоэффективным методом терапии многих аллергических заболеваний, приводит к улучшению качества жизни пациента и уменьшению затрат на лечение. Тем не менее в некоторых случаях в ходе АСИТ в ответ на введение аллергена возможен риск возникновения нежелательных побочных проявлений в виде местных или системных реакций, самой тяжелой из которых, как было описано выше, является анафилактический шок. Безопасность АСИТ из-за возможных анафилактических реакций остается проблемой в основном при подкожном способе введения лечебных аллергенов [1]. При таких случаях предпочтение отдается либо безопасному сублингвальному методу АСИТ, либо АСИТ полностью прекращается [2]. Кроме того, в связи с рядом различных факторов (тяжелое течение аллергических заболеваний, индивидуальные особенности пациентов, применяемый метод и протокол АСИТ) возможны неудачи в достижении конечного результата АСИТ. Именно поэтому существует большой интерес к разработке новых лекарств или комбинации методов лечения, которые могли бы облегчить не только течение аллергических заболеваний, но и были бы максимально безопасными, эффективными и удобными в применении.

Одним из возможных направлений повышения эффективности и безопасности АСИТ является ее применение с параллельным введением моноклональных антител (как анти-IgE-, так и анти-IL-4-антител) [3, 4]. Наиболее изученным препаратом этой группы лекарственных средств является омализумаб.

IgE является ключевой мишенью воздействия в терапии аллергических болезней. Основной метод нейтрализации IgE - достижение специфического связывания свободного IgE в сыворотке крови для предотвращения его взаимодействия с рецепторами на клетках-мишенях, что приводит к подавлению ранних или поздних аллерген-индуцированных специфических реакций. Действие омализумаба основано на важной роли IgE в аллергическом воспалении и выражается в снижении уровня циркулирующего пула свободных IgE и подавлении экспрессии FcR1-рецепторов на поверхности базофилов и дендритных клеток.

Омализумаб представляет собой рекомбинантные гуманизированные моноклональные анти-IgE-антитела, которые содержат 95% человеческого белка и 5% белка мыши в Fab-области, селективно связывающие свободные IgE человека. Снижение уровня свободного IgE и подавление экспрессии FcεRI на тучных клетках и базофилах являются основными механизмами действия омализумаба. Снижая уровень циркулирующего свободного IgE, омализумаб препятствует связыванию IgE с высокоаффинными FcεRI- и с низкоаффинными FcεRI-рецепторами, предотвращая высвобождение медиаторов из тучных клеток и базофилов при стимуляции их специфическим аллергеном. Анти-IgE-антитела избирательно распознают и конкурентно связывают IgE, образуя небольшие (<1000 кДа) комплексы, которые элиминируются с помощью ретикулоэндотелиальной системы печени, не вызывая побочных эффектов. Взаимодействие омализумаба со свободно циркулирующими IgE приводит к снижению их уровня в крови на 99%. Омализумаб не взаимодействует с уже фиксированными на мембранах тучных клеток иммуноглобулинами и, следовательно, не способен инициировать активацию тучных клеток или базофилов (в этом случае это могло бы вызвать развитие анафилактической реакции).

Снижение циркулирующих IgE уменьшает плотность высокоаффинных рецепторов FcεRI на поверхности тучных клеток и базофилов, что приводит к снижению их возбудимости и предупреждает высвобождение медиаторов. Вероятно, данный эффект возможен потому, что плотность рецепторов FcεRI регулируется уровнем свободного IgE в сыворотке [5].

Посредством уменьшения экспрессии FcR1 на дендритных клетках омализумаб подавляет процессинг антигена (аллергена) и представление его Т-клеткам, что в свою очередь препятствует дифференцировке их в Th2-клетки, подавляет активацию Th2-лимфоцитов и приводит к снижению продукции Th2-цитокинов. Кроме того, омализумаб способен вызывать апоптоз эозинофилов. Лечение омализумабом снижает активацию эозинофилов и эозинофильную инфильтрацию. Таким образом, омализумаб может действовать на раннюю и позднюю фазы аллергического ответа [6].

Последние исследования показали высокую эффективность моноклональных анти-IgE-антител при лечении IgE-опосредованных аллергических заболеваний - атопической бронхиальной астмы среднего и тяжелого течения, аллергического ринита и при сочетании этих нозологий. Применяется препарат в зависимости от массы тела пациента и исходной концентрации IgE в сыворотке крови.

Учитывая влияние омализумаба на уровень свободного IgE и экспрессию FcεRI на тучных и дендритных клетках, он может повысить индукцию иммунологической толерантности во время проведения АСИТ и тем самым привести к большей эффективности лечения. Кроме того, по последним данным, сочетание АСИТ с введением анти-IgE-антител может изменить ее профиль безопасности, способствуя снижению риска нежелательных системных реакций.

Первые результаты комбинированного применения АСИТ и омализумаба у пациентов, страдающих сезонным аллергическим ринитом с сенсибилизацией к пыльце деревьев или злаков, были опубликованы в 2002 г. В течение первых 12 нед пациентам проводилась предсезонная АСИТ соответствующими аллергенами, после чего к АСИТ была добавлена терапия омализумабом или плацебо. Этот момент совпадал с началом сезона пыления этиологических аллергенов. Вторая фаза продолжалась в течение 24 нед. Показано, что эффективность терапии комбинации АСИТ плюс омализумаб была статистически значимо выше, чем в группе, получавшей АСИТ плюс плацебо. Однако существенной разницы в числе или выраженности побочных реакций в группах, свидетельствующей о повышении безопасности АСИТ при применении ее на фоне омализумаба, в этом исследовании не наблюдалось [7].

В другом исследовании, проведенном позднее, предварительная терапия омализумабом значительно повысила безопасность "молниеносной" АСИТ у пациентов с аллергическим ринитом, вызванным пыльцой амброзии. У пациентов, получавших дополнительно омализумаб, было получено значительное снижение риска серьезных нежелательных реакций во время фазы набора дозы. Было показано пятикратное снижение риска анафилаксии, связанной с подкожной АСИТ. Кроме того, результаты проведенного исследования также продемонстрировали, что эффективность комбинированного лечения была существенно выше, чем в группах, получавших только АСИТ или только омализумаб, что свидетельствует о кумуляции эффекта двух видов терапии [8].

Тот же результат был получен у пациентов с аллергической бронхиальной астмой, рандомизированных для лечения омализумабом или плацебо. У пациентов, получавших омализумаб, было значительно меньше системных аллергических реакций на AСИТ, чем у пациентов, получавших плацебо [9].

Протективная роль омализумаба была продемонстрирована у пациентов с высоким риском системных реакций на АСИТ. У детей с тяжелой аллергической бронхиальной астмой предварительное введение омализумаба и дальнейшая подкожная АСИТ способствовали хорошей безопасности и переносимости данного лечения [10].

Особую сложность представляет лечение пациентов с аллергией на яд перепончатокрылых насекомых, так как прекращение АСИТ лечебными аллергенами из яда перепончатокрылых повышает риск развития дальнейших жизнеугрожающих реакций на ужаления [11]. В большинстве исследований сообщалось о способности омализумаба обеспечивать толерантность в результате лечения у пациентов с повторными системными реакциями [12]. Возможно, что в некоторых неудачных случаях, где не было получено данного эффекта, использовались недостаточные дозы омализумаба. В подтверждение этому недавно было показано, что увеличение дозы омализумаба до 450 мг обеспечивает толерантность к системным реакциям у пациентов, которые не отвечают на стандартные дозы омализумаба [13]. Тем не менее обнадеживающие данные в отношении лечения аллергии на яд перепончатокрылых комбинацией омализумаб плюс АСИТ остаются ограниченными (описания случаев), и необходимы структурированные клинические испытания [14–18].

При пищевой аллергии механизм взаимодействия комбинации омализумаба с оральной иммунотерапией также активно изучается [19]. Оральная иммунотерапия считается эффективной для лечения пищевой аллергии, но недостаточно безопасной из-за высокого риска побочных реакций, что существенно ограничивает ее применение [20]. Совместное использование омализумаба с оральной иммунотерапией может усовершенствовать ее протоколы и повысить результаты лечения у пациентов с пищевой аллергией [21–24].

Омализумаб был исследован в нескольких клинических исследованиях при тяжелой аллергии на арахис, молоко, яйца и множественной пищевой аллергии со значительным клиническим улучшением как у взрослых, так и у детей [8, 14, 17, 19, 25–27].

Результаты проведенных исследований показывают, что комбинированное лечение омализумаб плюс АСИТ позволяет иммунной системе десенсибилизироваться к пищевым аллергенам быстрее и безопаснее, чем только при оральной иммунотерапии. Исходно назначаются инъекции омализумаба раз в 2 нед ежемесячно в течение не менее 8 нед для истощения свободного IgE и снижения поверхностной экспрессии FcεRI на тучных клетках, затем присоединяют оральное введение аллергена. После нескольких недель совместного применения омализумаба и пищевого аллергена моноклональное антитело отменяется [28]. Клинический результат коррелировал с влиянием омализумаба на реактивность базофилов, которая играет значимую роль на начальных стадиях аллергической реакции на пищевые продукты [22–24]. Использование омализумаба при проведении оральной иммунотерапии позволяло в некоторых случаях использовать несколько пищевых аллергенов и снизить риск анафилаксии при проведении АСИТ [19].

В настоящее время продолжают проводиться клинические исследования для подтверждения безопасности и эффективности омализумаба при лечении пищевой аллергиии, выяснения поддерживающей дозы и оценки устойчивости толерантности. Омализумаб до настоящего времени не зарегистрирован для лечения анафилаксии и пищевой аллергии, кроме того, есть определенные возрастные ограничения.

Таким образом, возможность использования АСИТ в сочетании с омализумабом продолжает активно изучаться за рубежом.

Возможность сочетанного применения омализумаба и АСИТ в Российской Федерации ограничена, что связано с рядом причин. В первую очередь, это обусловлено ограниченным набором лечебных аллергенов, зарегистрированных в нашей стране, недостаточным применением самой АСИТ, а также экономической составляющей. В Российской Федерации до сих пор применяются водно-солевые аллергены. Как описывалось ранее, при проведении АСИТ водно-солевыми экстрактами аллергенов ускоренным методом риск развития системных реакций повышается с быстрым наращиванием дозы аллергена. У некоторых пациентов системные реакции развиваются повторно при введении таких или более высоких доз аллергена. Одним из вариантов применения анти-IgE-антител во время АСИТ может быть введение омализумаба именно таким пациентам (или пациентам с чрезвычайно высокой степенью сенсибилизации) за 1 нед до предполагаемого введения так называемой критической дозы (когда риск развития системной реакции наиболее вероятен). В отношении применения комбинации омализумаба с другими зарегистрированными аллергенами в нашей стране опыт также недостаточный.

Благодаря результатам международных клинических исследований возможность комбинированного использования омализумаба с АСИТ для лечения аллергических заболеваний становится все более очевидной. С учетом опыта применения препарата, а также механизма его действия можно предположить, что омализумаб не только повысит эффективность и безопасность АСИТ, но и расширит показания к ней. Биологическая терапия может быть ценным дополнением к AСИТ при респираторной и пищевой аллергии, особенно на этапах набора дозы, когда неблагоприятные явления ожидаются чаще. Объединение биологической терапии и АСИТ является перспективным подходом, позволяющим сделать возможным проведение АСИТ для конкретного пациента, снизить частоту и тяжесть нежелательных явлений (особенно во время набора дозы), а также повысить эффективность самой АСИТ. Необходимы масштабные исследования, чтобы улучшить отбор пациентов, которым было бы полезно добавление к АСИТ биологических препаратов, а также важно определить оптимальные режимы дозирования, продолжительность лечения и провести адекватную оценку фармакоэкономических аспектов [11, 29].

Список литературы

  1. James C., Bernstein D.I. Allergen immunotherapy: an updated review of safety // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 17, N. 1. P. 55–59.

  2. Normansell R., Kew K.M., Bridgman A.L. Sublingual immunotherapy for asthma // Cochrane Database Syst. Rev. 2015. Issue 8. CD011293.

  3. Курбачева О.М., Галицкая М.А. Место омализумаба в терапии аллергических заболеваний // Медицинский совет. 2019. № 15. C. 38–49.

  4. Ильина Н.И., Курбачева О.М., Павлова К.С. Эффективность аллерген-специфической иммунотерапии на фоне приема препарата Омализумаб у пациентов с атопическими заболеваниями // Вопросы современной педиатрии. 2008. Т. 3, № 7. C. 44–51.

  5. Beck L., Marcotte G., MacGlashan D. et al. Omalizumab Binduced reductions in mast cell Fcepsilon RI expression and function // J. Allergy Clin. Immunol. 2004. Vol. 114. P. 527–530.

  6. Holgate S., Casale T.B., Wenzel S. et al. The antiinflammatory effects of omalizumab confirm the central role of IgE in allergic inflammation // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. Vol. 115. P. 459–465.

  7. Kueher J., Brauburger J., Sielen S. et al. Efficacy of combination treatment with anti IgE plus specific immunotherapy in polysenstized children and adolescents with seasonal allergic rhinitis // J. Allergy. Clin. Immunol. 2002. Vol. 109. P. 274–280.

  8. Casale T.B., Busse W.W., Kline J.N. et al. Omalizumab pretreatment decreases acute reactions after rush immunotherapy for ragweed-induced seasonal allergic rhinitis // J. Allergy Clin. Immunol. 2006. Vol. 117, N. 1. P. 134–140.

  9. Massanari M., Nelson H., Casale T. et al. Effect of pretreatment with omalizumab on the tolerability of specific immunotherapy in allergic asthma // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 125, N. 2. P. 383–389.

  10. Lambert N., Guiddir T., Amat F. et al. Pretreatment by omalizumab allows allergen immunotherapy in children and young adults with severe allergic asthma // Pediatr. Allergy Immunol. 2014. Vol. 5, N. 8. P. 829–832.

  11. Dantzer J.A., Wood R.A. The use of omalizumab in allergen immunotherapy // Clin. Exp. Allergy. 2018. Vol. 48, N. 3. P. 232–240.

  12. Incorvaia C., Mauro M., Gritti B.L. et al. Venom immunotherapy in patients with allergic reactions to insect stings // Expert. Rev. Clin. Immunol. 2018. Vol. 14, N. 1. P. 53–59.

  13. Boni E., Incorvaia C., Mauro M. Dose dependence of protection from systemic reaction stovenom immunotherapy by omalizumab // Clin. Mol. Allergy. 2016. Vol. 14. P. 14.

  14. Wood R.A., Kim J.S., Lindblad R. et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled study of omalizumab combined with oral immunotherapy for the treatment of cow’s milk allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2016. Vol. 137. P. 1103–1110.

  15. Martorell-Calatayud C., Michavila-Gómez A., Martorell-Aragonés A. et al. Anti-IgE-assisted desensitization to egg and cow’s milk in patients refractory to conventional oral immunotherapy // Pediatr. Allergy Immunol. 2016. Vol. 27. P. 544–546.

  16. MacGinnitie A., Rachid R., Gragg H. et al. Omalizumab facilitates rapid oral desensitization for peanut allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 139, N. 3. P. 873–881.

  17. Andorf S., Purington N., Block W.M. et al. Anti-IgE treatment with oral immunotherapy in multifood allergic participants: a double-blind, randomised, controlled trial // Lancet. Gastroenterol Hepatol. 2018. Vol. 3. P. 85–94.

  18. Takahashi M., Soejima K., Taniuchi K. et al. Oral immunotherapy combined with omalizumab for high-risk cow’s milk allergy: a randomized controlled trial // Sci. Rep. 2017. Vol. 7. Art. #7453. P. 1–10.

  19. Abdel-Gadir A., Schneider L., Casini A. et al. Oral immunotherapy with omalizumab reverses the Th2 cell-like programme of regulatory T cells and restores their function // Clin. Exp. Allergy. 2018. Vol. 48, N. 7. P. 825–836.

  20. Begin P., Chinthrajah R.S., Nadeau K.C. Oral immunotherapy for the treatment of food allergy // Hum. Vaccin. Immunother. 2014. Vol. 10. P. 2295–2302.

  21. Labrosse R., Graham F., DesRoches A. et al. The use of omalizumab in food oral immunotherapy // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 2017. Vol. 65. P. 189–199.

  22. Frischmeyer-Guerrerio P.A., Masilamani M., Gu W. et al. Mechanistic correlates of clinical responses to omalizumab in the setting of oral immunotherapy for milk allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. Vol. 140. P. 1043–1053.

  23. Savage J.H., Courneya J.P., Sterba P.M. et al. Kinetics of mast cell, basophil, and oral food challenge responses in omalizumab-treated adults with peanut allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2012. Vol. 130. P. 1123–1129.

  24. Rafi A., Do L.T., Katz R. et al. Effects of omalizumab in patients with food allergy // Allergy Asthma Proc. 2010. Vol. 31. P. 76–83.

  25. Umetsu D.T, Rachid R., Schneider L.C. Oral immunotherapy and anti-IgE antibody treatment for food allergy // World Allergy Organ. J. 2015. Vol. 8. P. 20.

  26. Nadeau K.С., Schneider L.C., Hoyte L. et al. Rapid oral desensitisation in combination with omalizumab therapy in patients with cow’s milk allergy // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 127. P. 1622–1624.

  27. Schneider L.C., Rachid R., LeBovidge J. et al. A pilot study of omalizumab to facilitate rapid oral desensitisation in high-risk peanut-allergic patients // J. Allergy Clin. Immunol. 2013. Vol. 132. P. 1368–1374.

  28. Begin P., Dominguez T., Wilson S.P. et al. Phase 1 results of safety and tolerability in a rush oral immunotherapy protocol to multiple foods using omalizumab // J. Allergy Clin. Immunol. 2014. Vol. 10. Art. #7.

  29. Ильина Н.И., Курбачева О.М., Павлова К.С. Возможности комбинированного применения аллерген-специфической иммунотерапии с параллельным введением анти-IgE-антител в лечении пациентов с атопическими заболеваниями // Российский аллергологический журнал. 2008. № 2. C. 17–27.

Глава 19. Значение молекулярной аллергодиагностики в определении причинно-значимых аллергенов и прогнозировании эффективности аллерген-специфической иммунотерапии

Диагностика аллергии не представляет больших затруднений при наличии типичных симптомов у пациента. В целом решение проблемы диагностики аллергического заболевания значительно зависит от уровня профессиональной подготовки врача аллерголога-иммунолога. Анамнестические данные пациента являются определяющим компонентом в предполагаемом диагнозе аллергической болезни. Только анамнез более чем на 60% может определить клинический диагноз аллергического заболевания. Однако аллергологический диагноз, как известно, без подтверждающих диагностических тестов может быть только вероятным, и предполагаемый диагноз требует подтверждения аллергологическим обследованием.

Стандартная диагностика аллергического заболевания болезни включает:

  • тщательно собранный аллергологический анамнез пациента;

  • осмотр врача;

  • подтверждение IgE - сенсибилизации с помощью тестов: in vivo (прик-тесты, внутрикожные пробы) и/или in vitro (определение уровня sIgE в сыворотке крови пациента).

В случаях несоответствия данных анамнеза и результатов клинико-лабораторных исследований на следующем этапе возможно проведение провокационных тестов, которые проводят пациенту в специализированных отделениях [1].

В идеале кандидатами для АСИТ должны быть пациенты с положительным аллергологическим анамнезом обострения аллергического заболевания после экспозиции с причинно-значимым аллергеном и положительными результатами аллергологического обследования [положительные кожные пробы и/или содержание sLgE в сыворотке крови >0,35 кЕ/л (не менее двух классов)].

В то же время не всегда удается выявить сенсибилизацию и, тем самым, найти причину аллергии. Иногда это бывает сложно подтвердить с помощью провокационных тестов, которые тоже имеют свои показания или существенные ограничения.

Сегодня многие из наиболее распространенных аллергенных молекул клонированы или очищены, описаны трехмерные структуры этих молекул, и их можно постоянно производить промышленным способом. Из-за растущего количества выявляемых аллергенов была предложена систематическая номенклатура аллергенов , одобренная Всемирной организацией здравоохранения и Подкомитетом номенклатуры аллергенов Международного союза иммунологических обществ (WHO/IUIS). Подкомитет отвечает за разработку и ведение систематической номенклатуры аллергенных молекул, а также за обширную базу известных аллергенных белков, доступную на www.allergen.org. Аллергенные молекулы называют, используя латинское название их семейства (род и вид). Например, аллергены, которые начинаются на Phl p, происходят от Phleum pratense (тимофеевка). Для отличия разных аллергенов из одних источников к названию добавляют номер (например, Phl p 1, Phl p 2 и т.д.). Номера присваиваются аллергенам в порядке их открытия. Молекулы аллергенов классифицируются по семействам белков в зависимости от их структуры и биологической функции [2].

Молекулярная аллергодиагностика - новая эра в диагностике аллергических заболеваний. Появление нового вида диагностики произошло конце 1980-х гг. благодаря внедрению ДНК-технологий, в результате чего удалось охарактеризовать и клонировать молекулы аллергенов и определить аллергенные детерминанты при различных аллергических заболеваниях.

Молекулярная аллергодиагностика применяется, если традиционных диагностических тестов, данных анамнеза недостаточно для выявления этиологически значимого аллергена и выбора лечебного аллергена для проведения АСИТ. Молекулярная аллергодиагностика является удобным и высокоточным инструментом для дифференцирования истинной сенсибилизации и перекрестных реакций у полисенсибилизированных пациентов, так как позволяет определить сенсибилизацию к аллергенам у пациента на молекулярном уровне.

Роль молекулярной аллергодиагностики стремительно возрастает среди рутинных лабораторных исследований. С момента внедрения в лабораторную диагностику молекулярной аллергодиагностики активно развивается и на сегодняшний день имеется более 130 аллергенных молекул для аллерген-специфического IgE-тестирования in vitro . Молекулярная аллергодиагностика на сегодняшний день реализуется в технологиях различных фирм-производителей. Золотым стандартом молекулярной аллергодиагностики является технология ImmunoCAP Allergen Components "Phadia AB".

Молекулярная аллергодиагностика - это молекулярное картирование аллергенной сенсибилизации пациента с применением высокоочищенных нативных аллергенов натурального происхождения или аллергокомпонентов (рекомбинантных аллергенных молекул), вместо цельных экстрактов аллергенов [3]. При молекулярной аллергодиагностике происходит количественное измерение sIgE против специфического аллергенного компонента IgE. sIgE показывают сенсибилизацию к соответствующему аллергенному компоненту.

В молекулярной аллергодиагностике для описания частоты встречаемости аллергокомпонентов применяются понятия "мажорного" и "минорного" аллергена .

Мажорные аллергокомпоненты (M) - это аллергенные молекулы, антитела к которым встречаются более чем у половины пациентов в популяции, реагирующей на данный источник.

Минорные аллергокомпоненты (m) - это аллергены с распространенностью менее 10% [4].

Первоначально молекулярная аллергодиагностика может казаться сложной, однако с приобретением все большего опыта в этой области полученная информация с помощью этого метода становится проще для понимания и дает больше полезных данных для практикующего врача-аллерголога. Это особенно актуально в случае диагностики перекрестной пищевой и пыльцевой аллергии и при выборе АСИТ.

Для проведения аллерготестов in vivo в настоящее время доступны экстракты аллергенов, представляющих собой природные смеси аллергенных и неаллергенных молекул, не стандартизированные по составу мажорных (главных) и минорных компонентов. Многие биологические источники содержат высокоактивные кросс-реагирующие аллергокомпоненты, например, профилин, который представлен с широкой вариабельностью в пыльце растений и растительных пищевых продуктах. Сенсибилизация вследствие воздействия таких паналлергенов служит причиной положительных результатов тестов (серопозитивности) к большому количеству экстрактов аллергенов. Некоторые молекулы являются уникальными маркерами специфических источников аллергенов, что позволяет определить первичную сенсибилизацию. В то же время у различных молекул аллергенов имеются общие эпитопы (антигенсвязывающие сайты), а одни и те же IgE-антитела способны взаимодействовать с различными молекулами аллергенов, имеющими сходную структуру, но различное происхождение и источники, обусловливая перекрестную реактивность. Мажорный белок - это показатель истинной аллергии, минорный белок - это показатель перекрестной реакции. Одной из самых важных характеристик молекулярной аллергодиагностики является свойство разделять истинную сенсибилизацию и сенсибилизацию, вызванную перекрестной реактивностью. Эта информация позволяет клиницистам определить, сколько источников аллергенов нужно учитывать при постановке диагноза: один, несколько близкородственных или несколько неродственных источников. Выявление перекрестно-реагирующих аллергенов предоставляет ценную информацию о сенсибилизации к нескольким разным источникам. У лиц с аллергопатологией могут продуцироваться sIgE к отдельным видам или общие антитела ко многим источникам аллергенов. Таким образом, пациент может иметь истинную сенсибилизацию ко многим неродственным видам из-за иммунологической перекрестной реактивности к структурно похожим аллергенам. Чем ближе виды друг к другу в таксономическом отношении, тем выше степень структурного и иммунологического сходства между аллергенами. Стоит отметить, что некоторые перекрестно-реактивные молекулы могут вызывать клинически значимые симптомы, в то время как другие не вызывают подобных симптомов.

С помощью молекулярной аллергодиагностики можно выявить не просто причинно-значимый аллерген, а выявить мажорные и минорные белки предполагаемого аллергена. Эти данные помогают определить истинную причину заболевания. При совпадении результатов кожного тестирования с данными молекулярной аллергодиагностики по определению мажорного аллергена прогнозируется высокая степень эффективности АСИТ. Таким образом, одно из наиболее важных клинических применений молекулярной аллергодиагностики - это способность определять причинно-значимую молекулу аллергена и отличать специфические молекулы от маркеров перекрестной реактивности.

Благодаря использованию молекулярной аллергодиагностики возросла точность диагноза при диагностике пищевых аллергий, связанных с аллергией на пыльцу растений. Примером может служить аллергия на арахис, при которой сенсибилизация Ara h 2 считается истинным маркером аллергии на арахис и вызывает системные реакции. В то же время Ara h 8 является маркером перекрестной реактивности между пищевыми аллергенами и пыльцой деревьев из семейства Fagales и ассоциируется в основном со слабыми, оральными реакциями [5]. Именно поэтому определение IgE-ответа к ряду пищевых аллергенов может снизить необходимость в провокационных пищевых тестах.

В случае сенсибилизации пыльцой разных видов растений молекулярная аллергодиагностика позволяет в ряде случаев повысить точность диагноза, проведенного традиционными методами - с помощью кожных тестов. Молекулярная аллергодиагностика может выявить новые клинически значимые сенсибилизации или исключить неинформативную сенсибилизацию, вызванную симптоматически незначимыми перекрестно-реактивными аллергенами.

При использовании ограниченного набора молекул для диагностики выявить можно только те аллергены, для выявления которых тест был разработан изначально. Например, при использовании положительных кожных прик-тестов или тестов на sIgE к Phleum pratense (тимофеевка) только Phl p 1 и Phl p5 могут указывать на истинную сенсибилизацию, в то время как Phl p 7 и Phl p 12 позволяют идентифицировать sIgE к полькальцинам и профилинам. Выявление других молекул, таких как Phl p 2 и Phl p 4, может повысить точность диагностики. Если исследовать все эти молекулы, можно получить достаточно репрезентативный IgE-профиль для Phleum pratense . Если же оценивается ответ только на одну или несколько молекул, характеристика IgE-профиля будет недостаточной и менее точной [6].

При использовании традиционных кожных прик-тестов некоторые аллергены могут быть слабо представлены в экстрактах из-за биологической вариабельности источников аллергенов. Например, Can f 5, аллерген из простаты самцов собаки, вызывает чувствительность у значительной части пациентов с аллергией на собаку. Однако в экстрактах аллергенов для кожных тестов в качестве источника аллергенов обычно используется шерсть собаки. В результате кожные тесты не могут выявить чувствительность пациента к Can f 5 из-за его низкой концентрации в шерсти собаки, а определение Can f 5 с помощью молекулярной аллергодиагностики может повысить точность диагностики аллергии на собаку [7].

Важно, что любую аллергодиагностику (все тесты на sIgE), включая в том числе и тесты молекулярной аллергодиагностики, необходимо оценивать с учетом данных анамнеза пациента, так как сенсибилизация аллергеном необязательно подразумевает клинические проявления. Этот момент особенно важен, так как ответ каждого пациента с аллергией на аллергены из разных источников индивидуален, то есть каждый индивид имеет свой уникальный IgE-профиль на молекулярном уровне.

Молекулярная аллергодиагностика позволяет более точно оценить риск и степень развития аллергических реакций, особенно в случае пищевых аллергий. Различные продукты питания содержат уникальные аллергенные молекулы, устойчивые или чувствительные к нагреванию и расщеплению. Стабильность молекулы и анамнез пациента помогают врачу оценить риск системных или локальных реакций. Лабильные аллергены связаны с локальными реакциями (типично-оральные симптомы), а термически обработанная пища обычно нормально переносится, в то время как стабильные аллергены обычно связаны с системными реакциями. Оценка риска развития аллергических реакций у пациентов также одна из потенциальных возможностей молекулярной аллергодиагностики.

Молекулярная аллергодиагностика позволяет минимизировать необходимость проведения провокационных тестов и повысит точность рекомендаций для исключения контакта с аллергеном. Поскольку профили сенсибилизации пациента могут отличаться в зависимости от проявлений и тяжести болезни, выявление молекул "низкого риска" и "высокого риска" позволяют уменьшить использование потенциально опасных диагностических процедур, таких как провокационные тесты. Подобная информация также может улучшить рекомендации по контролю болезни для пациентов, например, уменьшение контакта с источником аллергенов.

Кроме того, профиль сенсибилизации пациента может влиять на общую симптоматику и тяжесть течения заболевания, в частности, полисенсибилизация к нескольким разным аллергенам из одного источника может усилить тяжесть симптомов [8].

Таким образом, молекулярная аллергодиагностика позволяет повысить точность диагноза и прогноза при аллергических заболеваниях и играет важную роль в:

  • дифференцировке истинной сенсибилизации и перекрестной реактивности у полисенсибилизированных пациентов, что улучшает определение причинно-значимых аллергенов. С помощью молекулярной аллергодиагностики можно обнаружить сенсибилизацию к определенным перекрестно-реагирующим аллергенным белкам или белковым семействам, что вносит вклад в определение причинного источника аллергенов и более корректных рекомендаций пациенту с учетом исключения контакта с аллергеном;

  • выявлении причинно-значимых аллергенов, что особенно важно для назначения АСИТ;

  • прогнозировании успешного проведения АСИТ и в подборе пациентов для данного вида терапии;

  • кроме того, помогает оценить риск развития реакций, связанных с определенными аллергенами (то есть тип реакции, местная или системная тяжелых реакций) при пищевой аллергии, что уменьшает, таким образом, необоснованное волнение пациента и необходимость проведения пищевых провокационных тестов.

АСИТ - дорогостоящее лечение, которое проводится длительно (3–5 лет), поэтому верно поставленный диагноз, определение причинно-значимых аллергенов, подбор действительно подходящих пациентов является очень важным для оптимизации лечебного процесса, в том числе со стороны фармакоэкономической целесообразности. Основой иммунотерапии является "специфичность" - это значит, что АСИТ изменяет иммунный ответ только против того аллергена, которым была проведена вакцинация. В итоге для назначения АСИТ необходим точный этиологический диагноз, при котором аллерген, вызывающий клинические симптомы, должен быть однозначно идентифицирован.

Для многих пациентов достаточно анамнеза и традиционных IgE-тестов на основе экстрактов аллергенов для определения причинного аллергена. Такая ситуация типична при моносенсибилизации к пыльце растений, так как имеется четко определенный период цветения, который минимально перекрывается с периодами цветения других растений или другими источниками аллергенов.

Сложность диагноза возрастает, когда у пациента наблюдается полисенсибилизация, выявляемая традиционными диагностическими тестами на основе экстрактов аллергенов, а данных анамнеза недостаточно для точного определения природы сенсибилизации. Такая ситуация может наблюдаться у относительно большого количества пациентов, поскольку подавляющее большинство пациентов является полисенсибилизированными. У полисенсибилизированных пациентов множественные положительные результаты, полученные с использованием экстрактов аллергенов, являются таковыми из-за наличия перекрестно-реактивных аллергенов в диагностических экстрактах [9, 10].

У полисенсибилизированных пациентов наиболее значимые аллергены для АСИТ более точно определяются с помощью молекулярной аллергодиагностики. Было показано, что использование молекулярной аллергодиагностики позволяет скорректировать назначение АСИТ более чем у половины пациентов по сравнению с использованием кожных прик-тестов. Такие данные указывают на то, что для полисенсибилизированных пациентов существует риск назначения некорректной АСИТ. В данном случае этиологический диагноз представляет сложность и традиционных диагностических тестов на основе экстрактов аллергенов и анамнеза недостаточно для точного определения природы сенсибилизации [6, 9, 11–15].

Например, при проведении кожных прик-тестов пациент с первичной сенсибилизацией к травам может давать положительный результат в тесте на березу. Такая перекрестная реактивность наблюдается из-за того, что используемый в тесте экстракт березы содержит профилин (Bet v 2), который во многом похож на профилины трав (например, Phl p 12). Несомненно, использование рекомбинантных или очищенных аллергенов поможет разграничить первичную сенсибилизацию и перекрестную реактивность. В вышеприведенном примере пациент с sIgE к Phl p 1 и Phl p 5, но не против Bet v 1, действительно сенсибилизирован к пыльце трав. Если также выявлены s IgE к Phl p 12 (профилину), то, скорее всего, именно профилин будет причиной положительных результатов в кожных прик-тестах с экстрактом березы, который тоже содержит профилин. Таким образом, основываясь на данных идентификации аллергенов, необходимо назначать АСИТ только пыльцой трав.

Одним из важнейших аспектов молекулярной аллергодиагностики является прогнозирование эффективности АСИТ. Коммерческие экстракты лечебных аллергенов для АСИТ стандартизированы по мажорным аллергенам и содержат лишь минимальные или вариабельные количества минорных аллергенов или не содержат их совсем [16]. Это связано с современными требованиями, предъявляемыми к лечебным аллергенам (высокая степень концентрации мажорных аллергенов). Использование молекулярной аллергодиагностики также позволяет решить данную проблему и подобрать пациентов для АСИТ [17].

Пациенты с сенсибилизацией только к минорным аллергенам с большой долей вероятности не получат достаточное количество аллергена для эффективной АСИТ. При отсутствии мажорных аллергенов и обнаружении позитивного минорного аллергена в исследованиях назначение АСИТ считается нецелесообразным, так как имеется худший прогноз результатов терапии. Пациенты с сенсибилизацией только к минорным аллергенам с большой долей вероятности не получат достаточную дозу аллергена, необходимую для эффективной АСИТ. Было показано, что у пациентов, проходивших двухлетний курс АСИТ пыльцой трав или березы, результат терапии был более удовлетворительным при сенсибилизации к мажорным аллергенам березы или трав по сравнению с пациентами, сенсибилизированными только минорными, перекрестно-реактивными аллергенами [18].

Основные принципы выбора аллергена для АСИТ с помощью молекулярной аллергодиагностики для прогнозирования ее эффективности:

  • согласно концепции молекулярной аллергодиагностики эффективность AСИТ будет высокой при повышенном уровне sIgЕ на M- и отсутствии антител на m-компоненты;

  • при повышенном уровне sIgЕ одновременно на M- и m-белки эффективность АСИТ может быть недостаточно эффективной;

  • при повышенном уровне sIgЕ к m-белкам и отсутствии антител на M-белки аллергена АСИТ на этот аллерген проводить не рекомендуется [12, 19].

Для прогноза эффективности АСИТ различными экстрактами деревьев и трав наиболее часто используются следующие аллергокомпоненты:

  • для прогноза эффективности АСИТ пыльцой деревьев (береза) - Bet v 1, Bet v 2, Bet v 4;

  • для прогноза эффективности АСИТ пыльцой злаковых трав (тимофеевка) - Phl p 1, Phl p 5b, Phl p 7, Phl p 12;

  • для прогноза эффективности АСИТ пыльцой полыни - Аrt v 1, Art v 3;

  • для прогноза эффективности АСИТ пыльцой амброзии - Amb a 1;

  • для прогноза эффективности АСИТ экстрактами клещей домашней пыли - Der p 1, Der p 2, Der p 10;

  • для прогноза эффективности АСИТ экстрактами перхоти кошки - Fel d 1, Fel d 4, Fel d 2;

  • для прогноза эффективности АСИТ экстрактами перхоти собаки - Can f 1, Can f 2, Can f 3, Can f 5;

  • для прогноза эффективности АСИТ экстрактами ядов перепончатокрылых - Api m 1, MUXF3, CCD, Ves V 5, Pol d 5.

Таким образом, можно выделить следующие группы мажорных и минорных аллергокомпонентов, применяемых для диагностики аллергопатологии и прогнозирования АСИТ (табл. 19-1, 19-2).

Таблица 19-1. Мажорные аллергокомпоненты, применяемые для прогнозирования аллерген-специфической иммунотерапии [20]
Молекула аллергена Принадлежность к суперсемейству

Bet v 1

PR-10

Phl p 1, Phl p 5b

PR-10

Аrt v 1, Art v 3

PR-10, LTD

Amb a 1

PR-10

Fel d 1, Fel d 4

Утероглобин, липокалин

Can f 1, Can f 2

Липокалины

Api m 1

Главный аллергокомпонент яда пчелы

Ves V 5, Pol d 5

Главные аллергокомпоненты яда осы

Der p 1, Der p 2

Главные аллергокомпоненты клещей домашней пыли

Таблица 19-2. Минорные аллергокомпоненты, применяемые для прогнозирования аллерген-специфической иммунотерапии [20]
Аллергокомпонент Принадлежность к белковому суперсемейству

Bet v 2

Профилин

Bet v 4

Са-связывающий протеин

rPhl p 7

Са-связывающий протеин

rPhl p 12

Профилин

Fel d 2

Сывороточный альбумин

Can f 3, Can f 5

Сывороточный альбумин

MUXF3

Перекрестно-реактивные карбонатные детерминанты

CCD

Перекрестно-реактивные карбонатные детерминанты

Der p 10

Тропомиозин

Примеры прогноза эффективности АСИТ. Если аллергические реакции у пациента обусловлены сенсибилизацией к главному компоненту аллергена Bet v 1 пыльцы березы, то с высокой степенью вероятности можно прогнозировать высокий терапевтический эффект от АСИТ с экстрактом пыльцы березы, который будет содержать высокую концентрацию этого компонента (табл. 19-3). С другой стороны, если пациент сенсибилизирован к минорным компонентам аллергена (например, Bet v 2 или Bet v 4 пыльцы березы), проведенная иммунотерапия экстрактом, содержащим Bet v 1, будет недостаточно эффективной. Более того, есть опасения, что АСИТ с аллергенными компонентами, к которым пациент не чувствителен, может вызвать развитие новой сенсибилизации, что скорее ухудшит симптомы, чем устранит их [21].

Таблица 19-3. Прогноз эффективности аллерген-специфической иммунотерапии, береза

Эффективность АСИТ

Bet v 1 "+"

Bet v 1 "+"

Bet v 1 "–"

Bet v 2, Bet v 4 "–"

Bet v 2, Bet v 4 "+"

Bet v 2,

Bet v 4 "+"/"–"

Высокая

Средняя

Слабая

Примечание : АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

В отношении аллергенов злаковых трав позиция аналогичная. Если у пациента обнаружены sIgE к мажорным аллергенам трав при наличии симптомов поллиноза, ему показана АСИТ экстрактом пыльцы злаков. Однако если пациент сенсибилизирован не к главному аллергену тимофеевки Phl p 1, а к минорному Phl p 7, в таких случаях АСИТ ему противопоказана, поскольку экстракты для иммунотерапии стандартизированы только для некоторых аллергенных детерминант (Phl p 1 - Phl p 5). Так, в исследовании B. Borghesan установлено, что треть больных с поллинозом сенсибилизировано именно к минорным аллергенам Phl р 7 и Phl р 12, соответственно, именно эта часть пациентов не получит эффекта от АСИТ (табл. 19-4) [22].

Таблица 19-4. Прогноз эффективности аллерген-специфической иммунотерапии, тимофеевка

Эффективность АСИТ

Phl p 1, Phl p 5b; "+"

Phl p 1, Phl p 5b; "+"

Phl p 1, Phl p 5b; "–"

Phl p 7, Phl p 12; "–"

Phl p 7, Phl p 12; "+"

Phl p 7, Phl p 12; "+"/"–"

Высокая

Средняя

Слабая

Примечание : АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

Аналогично АСИТ клещом домашней пыли назначать не следует, если пациент сенсибилизирован к традиционному экстракту клещей домашней пыли, однако его антитела реагируют с Der p 10 (тропомиозином), а не с Der p 1, Der p 2 или Der f 1, Der f 2. АСИТ в данном случае будет неэффективна, так как экстракты содержат в основном Der p 1, Der p 2 и Der f 1, Der f 2, а концентрация Der p 10 низкая или варьируется (табл. 19-5).

Таблица 19-5. Прогноз эффективности аллерген-специфической иммунотерапии, клещ домашней пыли

Эффективность АСИТ

Der p 1, rDer p 2; "+"

Der p 1, rDer p 2; "+"

Der p 1, Der p 2; "–"

Der p 10; "–"

Der p 10; "+"

Der p 10; "+"

Высокая

Средняя

Слабая

Примечание : АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.Молекулярная аллергодиагностика также может способствовать более точному отбору пациентов для АСИТ ядом перепончатокрылых. Сенсибилизация к мажорным аллергенам Api m 1 медоносной пчелы и Ves v 5 и/или Ves v 1 осы может помочь в разделении истинной двойной сенсибилизации к яду пчел и ос и перекрестной реактивности из-за присутствия CCD [23].

Теоретически подробное определение молекул, против которых вырабатываются sIgE, может позволить разработать индивидуальную АСИТ, основанную только на аллергенах с точно зафиксированным IgE-ответом для каждого конкретного пациента. На практике же это сложно. Во-первых, если учитывать все источники аллергенов, то количество возможных комбинаций профилей сенсибилизации огромно. Во-вторых, каждый рекомбинантный аллерген нужно отдельно тестировать и регистрировать, что несет значительные финансовые затраты для производителей. Таким образом, индивидуальная АСИТ - это до сих пор далекая перспектива [24].

Исходя из описанных выше преимуществ молекулярной аллергодиагностики, пациентов, которые нуждаются в данной диагностике, можно разделить на несколько групп.

Для части пациентов молекулярная аллергодиагностика является полезным и интересным, но не критически важным исследованием. Для моносенсибилизированных пациентов (например, к аллергенам домашних животных или клещей) и пациентов с однозначной историей болезни и симптоматическим лечением значительные выгоды от молекулярной аллергодиагностики, по сравнению с традиционными диагностическими тестами, отсутствуют.

Ранее пациенты, сенсибилизированные к одному или двум источникам аллергенов, были наиболее распространенным типом пациента в клинической практике, в настоящее время они становятся меньшинством. Фактически полисенсибилизированные пациенты, а также пациенты с подозрением на перекрестную реактивность должны обязательно проходить молекулярную аллергодиагностику.

Пациенты с сенсибилизацией к одному или нескольким респираторным аллергенам, которые также страдают от пищевой аллергии, должны проходить молекулярную аллергодиагностику в обычном режиме.

Международные руководства рекомендуют первый этап диагностики проводить на основе данных истории болезни пациента, а определение уровня IgE в реакциях с экстрактами аллергенов (in vitro аллерген-специ­фический IgE или кожные прик-тесты) выполнять на втором этапе. Молекулярная аллергодиагностика считается подходом третьей линии диагностики, использующимся в случае, если исследований первого и второго уровня недостаточно для точного диагноза. Для опытных клиницистов молекулярная аллергодиагностика может быть включена во второй этап.

Таким образом, в ряде случаев решение о назначении АСИТ должно быть основано не только на диагностике с использованием экстрактов аллергенов, но и верифицировано в тестах со специфическими маркерами - аллергокомпонентами.

Внедрение молекулярной диагностики в широкую клиническую практику позволит значительно улучшить качество оказываемой помощи. Использование данного метода в комплексной диагностике аллергических заболеваний поможет не только своевременно и точно установить причинный аллерген, но и обеспечить высокую эффективность назначаемой АСИТ в любых ее формах (как сублингвальной, так и парентеральной) и избежать развития возможных осложнений. Несмотря на то что молекулярная аллергодиагностика - это сложная область исследований, она предоставляет новую и клинически значимую информацию для аллерголога. В ближайшем будущем молекулярная аллергодиагностика станет стандартным инструментом в арсенале аллерголога. Именно поэтому для врачей нужны образовательные программы и курсы по данной методике.

Кроме того, этот метод имеет огромное преимущество перед использованием скарификационных кожных проб и прик-тестов:

  • простота диагностики для пациентов - требуется только сдать кровь из вены;

  • безопасность для пациентов - нет риска системных анафилактических реакций;

  • возможность проведения в любой период заболевания (даже в период обострения) в любом возрасте;

  • возможность проведения на фоне фармакотерапии;

  • нет противопоказаний для проведения исследования.

Список литературы

  1. Bousquet J., Heinzerling R., Bachert C. et al Global Allergy and Asthma European Network: Practical guide to skin prick tests in allergytoaero allergens // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 18–24.

  2. Radauer C., Bublin M., Wagner S. et al. Allergens are distributed into few protein families and possess a restricted number of biochemical functions // J. Allergy Clin. Immunol. 2008. Vol. 121. P. 847–852.

  3. A WAO-ARIA-GA2LEN consensus document on molecular-based allergy diagnosis. Update 2020 // World Allergy Organ. J. 2020. Vol. 13, N. 2. Art. #100091.

  4. Sastre J. Molecular diagnosisin allergy // Clin. Exp. Allergy. 2010. Vol. 22. P. 454–461.

  5. Nicolaou N., Custovic A. Molecular diagnosis of peanut and legume allergy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 11. P. 222–228.

  6. Sastre J., Landivar M.E., Ruiz-Garcia M. et al. How molecular diagnosis can change allergen-specific immunotherapy prescription in a complex pollen area // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 709–711.

  7. Mattsson L., Lundgren T., Everberg H. et al. Prostatickallikrein: anew majordog allergen // J. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 123, N. 2. P. 362–368.

  8. Nicolaou N., Custovic A. Molecular diagnosis of peanut and legume allergy // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 11. P. 222–228.

  9. Weber R.W. Cross-reactivity of polle nallergens: impact on allergen immunotherapy // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2007. Vol. 99. P. 203–211.

  10. Santos A., Van Ree R. Profilins: mimickers of allergy or relevant allergens? // Int. Arch. Allergy Immunol. 2011. Vol. 155. P. 191–204.

  11. Cox L., Jacobsen L. Comparison of allergen immunotherapy practice patterns in the United States and Europe // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2009. Vol. 103. P. 451–459.

  12. Cox L., Nelson H., Lockey R. et al. Allergen immunotherapy: a practice parameter third update // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 127, Suppl. 1. P. 1–55.

  13. Nelson H.S. Specific immunotherapy with allergen mixes: what is the evidence? // Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 2009. Vol. 9. P. 549–553.

  14. Santos A., Van Ree R. Profilins: mimickers of allergy or relevant allergens? // Int. Arch. Allergy Immunol. 2011. Vol. 155. P. 191–204.

  15. Шарикадзе Е.В. Эффективность современной аллергодиагностики и аллерген-специфической терапии у детей первых 5 лет жизни // Клиническая аллергология, иммунология и инфектология. 2015. № 3. C. 45–47.

  16. Focke M., Marth K., Valenta R. Molecular composition and biological activity of commercial birch pollenaller genex tracts // Eur. J. Clin. Invest. 2009. Vol. 39. P. 429–436.

  17. Федоров А.С., Литвинова Л.С., Бут-Гусаим В.И. и др. Аллерген-специфическая иммунотерапия: терапевтические вакцины для аллергических заболеваний // Медицинская иммунология. 2015. Т. 17, № 5. C. 407–422.

  18. Schmid-Grendelmeier P. Recombinantallergens. For routine use or still only science? // Hautarzt. 2010. Vol. 61. P. 946–953.

  19. Jutel M., Akdis C.A. Immunological mechanisms of allergenspecific immunotherapy // Allergy. 2011. Vol. 66. P. 725–732.

  20. Агафонова Е.В., Решетникова И.Д., Фассахов Р.С. Компонентная аллергодиагностика: возможности прогнозирования эффективности аллерген-специфической иммунотерапии // Практическая медицина. 2016. Т. 95, № 3. C. 7–12.

  21. Campana R., Vrtala S., Maderegger B. et al. Hypoallergenic derivatives of the major birch pollen allergen Bet v 1 obtained by rational sequence reassembly // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. Vol. 126. P. 1024–1031.

  22. Borghesan B. In vivo and viro allergydiagnostics: itistimetore — appraisethecosts // Clin. Chem. Lab. Med. 2007. Vol. 45. P. 391–395.

  23. Muller U., Schmid-Grendelmeier P., Hausmann O. et al. IgE torecombinantallergens Api m 1, Ves v 1, and Ves v 5 distin guish double sensitization from crossreaction in venom allergy // Allergy. 2012. Vol. 67. P. 1069–1073.

  24. Cromwell O., Häfner D., Nandy A. Recombinant allergens for specific immunotherapy // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. Vol. 127. P. 865–872.

Глава 20. Аллерген-специфическая иммунотерапия и COVID-19

Пандемия COVID-19 повлияла на многие сферы общественной жизни, в том числе и на лечение аллергических заболеваний [1, 2]. Европейской академией аллергологии и клинической иммунологии были разработаны рекомендации относительно проведения АСИТ во время пандемии COVID-19 с целью поддержать аллергологов и всех врачей, осуществляющих АСИТ в своей текущей повседневной практике. Готовность аллергологической клиники и информированность специалистов крайне важна для того, чтобы неукоснительно следовать инструкции в соответствии с рекомендациями ВОЗ и локальных документов во время пандемии. В настоящее время имеются четкие рекомендации, как проводить лечение во время пандемии и у пациентов, инфицированных SARS-CoV-2.

20.1. Рекомендации для неинфицированных лиц во время пандемии COVID-19

АСИТ способствует контролю как аллергической бронхиальной астмы (от легкой до тяжелой степени), так и аллергического ринита, поэтому пациентам необходимо продолжать АСИТ и держать под контролем течение заболеваний, так как при прекращении лечения существует риск развития обострений, что может потребовать обращения в отделение неотложной помощи и повысит риски контакта с инфицированными людьми.

Прерывать СЛИТ не рекомендуется. СЛИТ следует продолжать в ранее назначенном врачом стандартном режиме. Режим терапии не должен меняться или прерываться: это чрезвычайно важно для достижения долгосрочного терапевтического эффекта АСИТ. Пациент должен иметь достаточное количество медикаментов на срок не менее 14 дней возможного карантина.

Прерывать ПКИТ не рекомендуется, особенно при потенциально опасных для жизни аллергиях, таких как аллергия на укусы насекомых. ПКИТ следует продолжать в обычном режиме, однако следует рассмотреть увеличение интервала до верхнего предела разрешенного времени, что снизит частоту посещений медицинского учреждения. Пациенту необходимо связаться с лечащим аллергологом и согласовать дальнейшую схему.

При выборе метода инициации АСИТ следует отдать предпочтение сублингвальному способу, так как СЛИТ дает возможность принимать ее дома, тем самым избегая необходимости посещать аллергологическую клинику и врача, что было бы связано с риском заражения.

Как ПКИТ, так и СЛИТ может быть продолжена во время пандемии COVID-19:

  • у любых бессимптомных пациентов без подозрения на инфекцию SARS-CoV-2 и/или контакт с SARS-CoV-2-положительными лицами;

  • у любого пациента с отрицательным результатом теста;

  • у любого пациента после адекватного карантина;

  • у любого пациента с обнаружением сывороточного IgG к SARS-CoV-2 без вирус-специфического IgM;

  • у выздоровевших пациентов после инфекции COVID-19.

В рекомендациях даны ответы на значимые вопросы, которые встали перед пациентами и специалистами.

Влияет ли АСИТ на иммунную защиту пациентов и, следовательно, делает их более уязвимыми для COVID-19? Механизмы иммунной защиты от вирусных инфекций не зависят от тех иммунологических изменений, которые происходят при иммунотерапии. Иначе говоря, АСИТ не влияет на иммунную защиту от вирусных инфекций. Именно поэтому пациенты, получающие АСИТ, не имеют ни большего, ни меньшего риска воздействия/развития COVID-19, или гриппа, или риновирусной инфекции (табл. 20-1).

Таблица 20-1. Иммунологические изменения при аллерген-специфической иммунотерапии и COVID-19 [3]
Иммунологические изменения АСИТ COVID-19

Т-клеточный ответ

Подавление Th2-клеток, индукция T-reg- и Th-клеток

Лимфопения в тяжелых случаях

CD8+ T-клетки

Несущественное влияние

Наблюдается тяжелая лимфопения преимущественно CD8+ T-клеток

Th1–Th2-ответ

АСИТ уменьшает аллерген-специфические реакции

Тяжелое заболевание сопровождается системной тяжелой воспалительной реакцией с цитокиновым штормом

Эозинофилия

Уменьшение их количества и медиаторов в носовой полости

Системное снижение их количества наблюдается более чем у половины больных

Уровень специфических антител

sIgE снижаются в конце курса, с ранним повышением IgG4

В острой фазе повышение вирус-специфических IgM. Повышение IgG в период реконвалесценции

Примечание: АСИТ - аллерген-специфическая иммунотерапия.

20.2. Рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии в отношении диагностированных случаев COVID-19 или подозрения на инфекцию SARS-CoV-2

Следует ли продолжать АСИТ, если у пациента был контакт с больным COVID-19? Рекомендуется принимать решение в зависимости от текущего состояния пациента и дальнейшего развития ситуации. В случае развития симптомов респираторной инфекции, лихорадки и ухудшении общего состояния АСИТ следует прервать и продолжать только после выздоровления пациента, что согласуется с общими рекомендациями по проведению АСИТ и инструкцией препаратов для иммунотерапии аллергенами.

Если у пациента подтвержденный диагноз COVID-19, следует ли прервать АСИТ? Согласно инструкции по применению лечебных аллергенов, АСИТ должна быть приостановлена в случае любой вирусной или бактериальной инфекции с такими симптомами, как лихорадка, кашель, и ухудшения общего состояния и может продолжиться после выздоровления пациента. Это положение также применимо к инфекции COVID-19. В подтвержденных случаях следует прекратить АСИТ, как ПКИТ, так и СЛИТ, независимо от тяжести заболевания, пока симптомы полностью не исчезнут и/или не будет пройден адекватный карантин.

Как возобновить АСИТ после перенесенного COVID-19? Воз­обновление АСИТ после перенесенной COVID-19 следует проводить после консультации врача, назначившего лечение. У пациентов, которые выздоровели от COVID-19 или у которых обнаружено достаточно антител к SARS-CoV-2 после бессимптомного заболевания, АСИТ может быть начата или продолжена по плану в обычном режиме.

Как проводить вакцинацию против COVID-19 во время АСИТ? Данных о влиянии АСИТ на выработку антител, индуцированную вакциной COVID-19, нет. Как для ПКИТ, так и для СЛИТ, сохраняются те же требования, как и для любых других вакцинаций, проводимых параллельно с АСИТ. Более подробная информация дана в главе "Показания и противопоказания к проведению аллерген-специфической иммунотерапии" [4–6].

Список литературы

  1. Трушина Е.Ю., Костина Е.М., Орлова E.A. Оптимизация терапии больных бронхиальной астмой в условиях коронавирусной инфекции // Медицинский совет. 2021. № 16. C. 92–98.

  2. Орлова Е.А., Куликова О.А., Костина Е.М. Клинический опыт сублингвальной аллерген-специфической иммунотерапии аллергического ринита в условиях пандемии коронавирусной инфекции // Фарматека. 2020. Т. 27, № 10. C. 72–79.

  3. Klimek L., Jutel M., Akdis C. et al. Handling of allergen Immunotherapy in the COVID-19 pandemic: An ARIA-EAACI statement // Allergy. 2020. Vol. 75, N. 7. P. 1546–1554.

  4. Jutel M., Torres M.J., Palomares O. et al. COVID-19-vaccination in patients receiving allergen immunotherapy (AIT) or biologicals — EAACI recommendations // Allergy. 2022. Vol. 77, N. 8. P. 2313–2336.

  5. Pitsios C., Tsoumani M., Bilò M.B. et al. Contraindications to immunotherapy: a global approach // Clin. Transl. Allergy 2019. Vol. 9. Art. #45.

  6. German Society for Allergy and Clinical Immunology (DGAKI) (электронный ресурс). https://dgaki.de/gefaehrliche-defizite-in-der-allergologie-bleibt-der-patient-auf-der-strecke/.

Заключение

АСИТ - единственный этиопатогенетический метод терапии аллергических заболеваний, с IgE-зависимым механизмом развития, который назначается при наличии четких доказательств связи между симптомами болезни и экспозицией аллергена. АСИТ индуцирует клиническую и иммунологическую толерантность, способствует развитию длительной ремиссии, может предотвращать прогрессирование аллергопатологии, расширение спектра сенсибилизации и имеет фармакоэкономический эффект. Для этого необходимы: правильная и своевременная диагностика аллергических заболеваний; выявление полного спектра клинически значимых аллергенов; соблюдение показаний, протокола лечения и учет противопоказаний для АСИТ; этапная оценка эффективности и переносимости АСИТ. Именно в этом заключается грамотное ведение пациента, что позволяет рассчитывать на клиническую эффективность АСИТ. Персонализированный подход к проведению АСИТ у каждого пациента может способствовать успеху лечения. АСИТ оказывает положительное влияние на качество жизни пациента и членов его семьи. Тем не менее есть и ряд определенных проблем и нерешенных вопросов. Метод АСИТ является недостаточно используемым в терапии аллергических заболеваний вследствие недостатка информированности специалистов; недостаточного доступа пациентов к специалистам, занимающимся лечением данной патологии; проблем возмещения материальных затрат на лечение; продолжительного периода терапии; настороженности как пациентов, так и врачей в отношении эффективности и безопасности метода. Значительным барьером для дальнейшего развития метода АСИТ, особенно его новых технологий, является недостаток двойных слепых плацебо-контролируемых исследований в отношении препаратов аллергенов. В Российской Федерации недостаточно зарегистрированных лечебных аллергенов. Нет собственного производства стандартизированных лечебных форм аллергенов, отвечающих современным требованиям.

Вопросы, которые требуют решения:

  • требуется проведение масштабных многоцентровых исследований с применением новых продуктов как для СЛИТ, так и для ПКИТ;

  • требуется проведение масштабных мультицентровых исследований в педиатрии с целью анализа эффективности и безопасности применения АСИТ у детей младшего возраста и определения оптимального возраста для начала терапии;

  • требуется согласование и утверждение критериев клинической эффективности;

  • требуется разработка практических руководств, которые принимали бы во внимание социально-экономические различия и политику здравоохранения в различных регионах и государствах;

  • требуется единая стандартизация лечебных аллергенов, используемых в АСИТ;

  • требуется оптимизация сроков проведения АСИТ;

  • требуется изучение и применение биомаркеров с целью отбора пациентов для АСИТ и контроля ее эффективности;

  • требуется улучшение профиля безопасности АСИТ;

  • требуются исследования эффективности и безопасности АСИТ в лечении атопического дерматита, пищевой и инсектной аллергии;

  • необходим серьезный анализ экономической эффективности применения АСИТ;

  • требуется качественная подготовка специалистов аллергологов-иммунологов, в том числе и повышение знаний в отношении проведения АСИТ.

Автор смеет надеяться, что данное руководство поможет повысить интерес специалистов к проблеме АСИТ, а также будет способствовать более широкому применению данного метода в практической аллергологии.

Приложения

Приложение 1. Информированное согласие пациента

(Название медицинского учреждения)

ИНФОРМИРОВАННОЕ СОГЛАСИЕ ПАЦИЕНТА

Вы обратились в __________________________________ для лечения по поводу аллергического заболевания. Вам предлагается проведение аллерген-специфической иммунотерапии (АСИТ). Для успешного лечения Вам необходимо ознакомиться с правилами поведения во время проведения АСИТ.

АСИТ - основной метод лечения аллергических заболеваний. Суть метода заключается в снижении чувствительности организма путем введения постепенно возрастающих доз аллергенов. Лечение проводится амбулаторно под обязательным контролем лечащего врача.

ПРАВИЛА ПОВЕДЕНИЯ ВО ВРЕМЯ АЛЛЕРГЕН-СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ИММУНОТЕРАПИИ

  1. Соблюдайте гипоаллергенную диету.

  2. Перед очередной инъекцией аллергена обязательно обратитесь к лечащему врачу для осмотра.

  3. Оставайтесь в процедурном кабинете не менее 30 мин после инъекции аллергена.

  4. При любом изменении в состоянии здоровья (покраснение, отек, зуд в месте инъекции, затруднение носового дыхания, зуд в полости носа, чихание, кашель, затруднение дыхания, чувство жара, недомогания, позывы на мочеиспускание и дефекацию) немедленно обратитесь к врачу или медицинской сестре.

  5. Женщины обязаны предупреждать лечащего врача о начале менструального цикла.

  6. Информируйте лечащего врача в случае обострения любого хронического заболевания.

Важно помнить, что бесконтрольное лечение и несоблюдение правил поведения во время АСИТ могут привести к тяжелым аллергическим реакциям, самой тяжелой из которых является анафилактический шок.

СОГЛАСИЕ ПАЦИЕНТА

Я (подлинная подпись) _____________________ подтверждаю, что прочитал(-а) информационный лист пациента; имел(-а) возможность обсудить интересующие меня вопросы с лечащим врачом и обязуюсь выполнять правила поведения во время лечения.

*Список запрещенных продуктов и рекомендуемых продуктов выдан на руки.

Фамилия пациента ____________ Подпись _________ Дата _______

Фамилия врача ________________ Подпись _________ Дата _______

Приложение 2. Рекомендации пациенту при проведении аллерген-специфической иммунотерапии

  • Во время курса АСИТ Вы должны регулярно посещать врача-аллерголога и подробно информировать его о состоянии вашего здоровья.

  • Проводить АСИТ нельзя при обострении аллергического заболевания - бронхиальной астмы, аллергического ринита, конъюнктивита, крапивницы и др.

  • При инфекционных и вирусных заболеваниях (ангина, грипп, ОРВИ и др.), обострении язвенной болезни, ишемической болезни сердца, при высоком артериальном давлении применять аллергены нельзя.

  • За час до введения аллергена и в течение 2–3 ч после него следует избегать больших физических нагрузок. Соблюдать режим труда и отдыха.

  • В день проведения АСИТ употребление алкогольных напитков запрещается.

  • Перед каждым применением аллергена следует сообщать врачу или медицинской сестре, как Вы перенесли предыдущее введение аллергена. Не следует самовольно ускорять лечение и делать большие перерывы в лечении.

  • В период АСИТ можно применять только медикаменты, которые разрешены врачом-аллергологом.

  • В период АСИТ проведение любых профилактических прививок против инфекционных заболеваний возможно только с разрешения врача-аллерголога.

  • После каждого применения аллергена необходимо наблюдение врача-аллерголога в течение 30 мин.

  • Натощак введение аллергена не проводят.

Приложение 3. Дневник аллерген-специфической иммунотерапии

Ф.И.О. ______________________________

Диагноз _____________________________

Аллерген (аллергоид) ___________________

Дата Разведение аллергена Доза, мл Доза, PNU Подпись, м/с Местная реакция Общая реакция Подпись врача

Приложение 4. Шкала оценки симптомов бронхиальной астмы, предложенная А.Д. Адо

  • Отличный эффект (4 балла) - ремиссия заболевания.

  • Хороший эффект (3 балла) - очень редкие и легкие симптомы, резкое снижение потребности в медикаментах.

  • Удовлетворительный эффект (2 балла) - обострения заболевания происходят реже, симптомы - более легкие.

  • Неудовлетворительный эффект (1 балл) - эффект отсутствует.

Приложение 5. Индекс общей комбинированной оценки симптомов и терапии (CSMS)

Симптомы Диапазон Примечания

Назальные

Зуд в носу

0–3

0 - нет симптомов.

1 - легкие симптомы, легко переносятся, не влияют на самочувствие.

2 - четкое ощущение симптома, беспокоит постоянно.

3 - невозможно переносить, влияние на сон, дневную активность

Чихание

0–3

Отделяемое из носа

0–3

Заложенность

0–3

Конъюнктивальные

Зуд/покраснение

0–3

Слезотечение

0–3

Общая оценка симптомов за день (от англ. daily symptom score, dSS)

0–3 (сумма симптомов/N признаков)

Для оценки симптомов на клеща домашней пыли глазные симптомы не учитываются

Оценка терапии dMS

Антигистаминные (местно или системно)

1

Интраназальные стероиды (в том числе и вместе с топическими антигистаминными)

2

Оральные стероиды

3

Общая оценка дневной получаемой терапии (dMS)

0–3

CSMS - общая комбинированная оценка симптомов и терапии

dSS (0–3) + dMS (0–3)

0–6

Приложение 6. Перечень положительных изменений при проведении аллерген-специфической иммунотерапии клещом домашней пыли при клещевой бронхиальной астме

Важность Признак Что оценивать

Чрезвычайно высокая

Обострения

Число обострений за период

Число пациентов, имеющих хотя бы одно обострение

Время до развития первого обострения на фоне снижения дозы ИГК или отмены ИГК

Контроль астмы

ACQ, АСТ, другие способы оценки, применяющиеся в практике учреждения

Стероид-сберегающий эффект

Процент снижения дозы ИГК при условии сохранения контроля

Безопасность

Системные реакции, частота, степень выраженности

Высокая

Симптомы

Подсчет симптомов и потребляемой терапии, в любой форме, как принято в практике учреждения

Потребность в фармакотерапии

Качество жизни

AQLQ

Функция легких

Процентное или абсолютное увеличение MOC25, MOC50, MOC75, MOC25–75, нарастание ПД20 аллергена в провокационном тесте

Безопасность

Местные реакции, частота, степень выраженности

Менее высокая

Функция легких

Процентное или абсолютное увеличение ОФВ1

Неспецифическая гиперреактивность бронхов: нарастание ПД20 метахолина/гистамина в провокационном тесте

Примечание : ИГК - инглаляционный (и пероральный) глюкокортикоид; ОФВ1 - объем форсированного выдоха за 1 с.

Приложение 7. Шкала оценки среднего скорректированного балла симптомов с учетом приема медикаментов

0 — отсутствие симптомов (без явных проявлений/симптомов).

1 — легкие симптомы (проявление/симптом явно присутствует, но в минимальной степени; переносится легко).

2 — умеренные симптомы (ясное ощущение проявлений/симптомов, которые беспокоят, но терпимы).

3 — выраженные симптомы (тяжело переносимые проявления/симп­томы; препятствуют повседневной деятельности и/или сну).

Инструкции по оценке приема препаратов неотложной терапии

Используйте следующие количественные показатели для оценки примененной терапии:

0 - отсутствие дополнительной терапии.

2 - антигистаминные препараты.

4 - местное применение глюкокортикоидов.

6 - пероральное применение глюкокортикоидов.

ШКАЛА ОЦЕНКИ СРЕДНЕГО СКОРРЕКТИРОВАННОГО БАЛЛА СИМПТОМОВ С УЧЕТОМ ПРИЕМА МЕДИКАМЕНТОВ

Чихание

Выделения из носа

Зуд в носу

Заложенность носа

Зуд в глазах

Слезящиеся глаза

Препараты неотложной терапии

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 = отсутствие;

1 = легкие

0 - отсутствие.

2 - антигистаминные препараты.

4 - местное применение глюкокортикоидов.

6 - пероральное применение глюкокортикоидов.

Максимум: 6

2 = умеренные

2 = умеренные

2 = умеренные

2 = умеренные

2 = умеренные

2 = умеренные

3 = выраженные

3 = выраженные

3 = выраженные

3 = выраженные

3 = выраженные

3 = выраженные

Выраженные

Выраженные

Выраженные

Выраженные

Выраженные

Выраженные

Сумма баллов (максимум: 24)

Приложение 8. Визуально-аналоговая шкала риноконъюнктивита

Инструкции. Укажите, насколько выраженными были Ваши симптомы аллергического риноконъюнктивита по шкале от "совсем не выражены" (слева) до "чрезвычайно сильные" (справа) за минувший сезон цветения полыни.

image

Приложение 9. Анкета по удовлетворенности пациентов терапией

Оцените следующие ситуации, касающиеся проводимого лечения.

Согласны ли Вы со следующими утверждениями (за период последних 2 мес)?

Всегда Часто (во многих случаях) В половине случаев Иногда Никогда

1. Поскольку провожу лечение, у меня меньше симптомов (жалоб)

5

4

3

2

1

2. Мое лечение работает

5

4

3

2

1

3. Мое лечение работает быстрее, чем я ожидал

5

4

3

2

1

4. Благодаря проводимой терапии я могу ходить в места, где раньше у меня была аллергия

5

4

3

2

1

5. Мое лечение помогает мне осуществлять мою ежедневную деятельность

5

4

3

2

1

6. Благодаря проводимой терапии я могу ходить куда угодно с моей семьей или друзьями

5

4

3

2

1

7. Благодаря проводимой терапии я могу работать или учиться лучше

5

4

3

2

1

8. Благодаря лечению я гораздо больше могу наслаждаться активным отдыхом

5

4

3

2

1

9. Благодаря проводимой терапии я не чувствую себя плохо в некоторых ситуациях

5

4

3

2

1

10. Благодаря лечению я улучшил качество жизни

5

4

3

2

1

11. В целом я очень доволен моей терапией

5

4

3

2

1

12. Я бы рекомендовал мое лечение другим людям

5

4

3

2

1

Приложение 10. Опросник по качеству жизни больных бронхиальной астмой (AQLQ)

Ф.И.О. ________________________________________________

Дата опроса ____________________________________________

Пожалуйста, ответьте на все вопросы, обведя кружком цифру, которая наилучшим образом отражает, как Вы себя чувствовали в связи с Вашей астмой в течение последних 2 нед.

В какой степени из-за астмы Вы были ограничены в перечисленных ниже видах деятельности в течение последних 2 нед?

Полностью ограничен(-а) Очень сильно ограничен(-а) Сильно чен(-а) Умеренно ограничен(-а) Частично ограничен(-а) Немного ограничен(-а) Совсем не ограничен(-а)

1. Значительная физическая активность (например, быстрая ходьба, выполнение упражнений, взбегание по лестнице, занятия спортом)

1

2

3

4

5

6

7

2. Умеренная активность (например, прогулки, домашняя работа, работа в саду, покупки, подъем по лестнице)

1

2

3

4

5

6

7

3. Социальная активность (например, разговоры, игры с домашними животными/детьми, посещение друзей/родственников)

1

2

3

4

5

6

7

4. Активность, связанная с работой/учебой* (выполнением служебных заданий)

1

2

3

4

5

6

7

5. Сон

1

2

3

4

5

6

7

*Если Вы не работаете, то выполнение Ваших повседневных обязанностей.

Насколько сильные дискомфорт или огорчение Вы испытывали за последние 2 нед?

Чрезвычайно сильные Очень выраженные Выраженные Умеренно выраженные Слабые Очень слабые Не испытывал(-а)

6. Насколько сильные дискомфорт или огорчение Вы испытывали из-за скованности в груди?

1

2

3

4

5

6

7

В целом, как часто за последние 2 нед Вы:

Все время Почти все время Часто Иногда Редко Почти никогда Никогда

7. Чувствовали озабоченность по поводу того, что у Вас астма?

1

2

3

4

5

6

7

8. Чувствовали одышку из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

9. Испытывали симптомы астмы из-за воздействия табачного дыма?

1

2

3

4

5

6

7

10. Чувствовали хрипы в груди?

1

2

3

4

5

6

7

11. Чувствовали необходимость избегать ситуаций или обстановки из-за табачного дыма?

1

2

3

4

5

6

7

Насколько сильные дискомфорт или огорчение вы испытывали за последние 2 нед?

Чрезвычайно сильные Очень сильные Сильные Умеренные Слабые Очень слабые Не испытывал(-а)

12. Насколько сильные дискомфорт или недомогание Вы испытывали за последние 2 нед из-за кашля?

1

2

3

4

5

6

7

В целом, как часто за последние 2 нед Вы:

Все время Почти все время Часто Иногда Редко Почти никогда Никогда

13. Чувствовали себя расстроенным(-ой) или огорченным(-ой) из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

14. Испытывали чувство тяжести в груди?

1

2

3

4

5

6

7

15. Чувствовали озабоченность в связи с необходимостью использовать лекарства от астмы?

1

2

3

4

5

6

7

16. Испытывали потребность откашляться?

1

2

3

4

5

6

7

17. Испытывали симптомы астмы из-за воздействия пыли?

1

2

3

4

5

6

7

18. Испытывали затрудненный выдох из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

19. Чувствовали необходимость избегать ситуаций или обстановки из-за пыли?

1

2

3

4

5

6

7

20. Просыпались утром с симптомами астмы?

1

2

3

4

5

6

7

21. Испытывали страх, что у вас нет под рукой лекарств для лечения астмы?

1

2

3

4

5

6

7

22. Испытывали затрудненное дыхание?

1

2

3

4

5

6

7

23. Испытывали симптомы астмы из-за влияния погоды/загрязнения воздуха?

1

2

3

4

5

6

7

24. Просыпались ночью из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

25. Избегали или ограничивали выход на улицу из-за погоды/загрязненного воздуха?

1

2

3

4

5

6

7

26. Испытывали симптомы астмы из-за воздействия резкого запаха/парфюмерии?

1

2

3

4

5

6

7

27. Боялись удушья?

1

2

3

4

5

6

7

28. Чувствовали необходимость избегать ситуаций/обстановки из-за резкого запаха или парфюмерии?

1

2

3

4

5

6

7

29. Чувствовали, что астма мешает Вам хорошо спать ночью?

1

2

3

4

5

6

7

30. Чувствовали, что дыхание требует больших усилий?

1

2

3

4

5

6

7

Насколько была ограничена Ваша деятельность в течение последних 2 нед?

Серьезно ограничена (большинство дел не выполнено) Очень ограничена Умеренно ограничена (несколько дел не выполнено) Умеренно ограничена (несколько дел не выполнено) Слабо ограничена (очень мало дел не выполнено) Почти совсем не ограничена Не ограничена (все дела выполнены)

31. Вспомните обо всех делах, которыми Вам хотелось бы заниматься в течение последних 2 нед. Насколько Ваша деятельность была ограничена из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

Насколько Вы были ограничены в течение последних 2 нед?

Полностью ограничен(-а) Чрезвычайно ограничен(-а) Очень ограничен(-а) Умеренно ограничен(-а) Немного ограничен(-а) Чуть-чуть ограничен(-а) Совсем не ограничен(-а)

32. В целом из всего, что Вы делали на протяжении последних 2 нед, насколько Вы были ограничены из-за астмы?

1

2

3

4

5

6

7

Код раздела

Симптомы: 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 29, 30.

Ограничение активности: 1, 2, 3, 4, 5, 11, 19, 25, 28, 31, 32.

Эмоциональная функция: 7, 13, 15, 21, 27.

Экологические стимулы: 9, 17, 23, 26.