image

Кишкун А.А.

18-01-2023

Справочник заведующего клинико-диагностической лабораторией / А. А. Кишкун. - 2-е изд., перераб. и доп. - Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2021. - 912 c. : ил. ― DOI: 10.33029/9704-6439-7-LAB-2021-1-912. ISBN 978-5-9704-6439-7.

Аннотация

В справочнике представлены основные аспекты деятельности клинико-диагностической лаборатории. Большое внимание уделено проблемам аккредитации специалистов лаборатории, стандартизации, лицензирования, управления производственной и экономической деятельностью лабораторий.

Предложены рекомендации по оснащению различных типов медицинских лабораторий и требования к их размещению. С позиций доказательной медицины рассмотрены построение и организация производственных процессов в лаборатории. Для всех производственных процессов и процедур приведены индикаторы качества. Дан системный анализ современных лабораторных анализаторов, используемых для получения результатов анализов. Освещены основные подходы к информатизации деятельности лаборатории. Показаны практические пути автоматизации производства результатов лабораторных анализов. Впервые проанализированы вопросы перехода деятельности клинико-диагностических лабораторий от традиционного контроля качества лабораторных исследований к оценке их вклада в эффективное лечение пациентов.

Глубина и всесторонний анализ информации об экономической и клинической эффективности деятельности лаборатории, безусловно, вызовут интерес у специалистов клинической лабораторной диагностики.

Издание предназначено врачам клинической лабораторной диагностики, студентам вузов и руководителям медицинских учреждений.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

* - торговое наименование лекарственного средства и/или фармацевтическая субстанция

АКТГ - адренокортикотропный гормон

АЛТ - аланинаминотрансфераза

АСТ - аспартатаминотрансфераза

АЧТВ - активированное частичное тромбопластиновое время

ВИЧ - вирус иммунодефицита человека

ВКК - внутренний (внутрилабораторный) контроль качества

ВОЗ - Всемирная организация здравоохранения

ВУК - всеобщее управление качеством

ГГТП - у-глютамилтранспептидаза

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота

ИМ - инфаркт миокарда

ИФА - иммуноферментный анализатор (ИФА)

ИЭ - инфекционный эндокардит

КДЛ - клинико-диагностическая лаборатория

КК - креатинкиназа

КК-МВ - МВ-фракция креатинкиназы

КОС - кислотно-основное состояние

ЛАС - лабораторная автоматизированная система

ЛДГ - лактатдегидрогеназа

ЛИС - лабораторная информационная система

ЛПВП - липопротеины высокой плотности

ЛПНП - липопротеины низкой плотности

ЛПУ - лечебно-профилактическое учреждение

МИС - медицинская информационная система

МНО - международное нормализованное отношение

МСН - среднее содержание гемоглобина в эритроците

МСНС - средняя концентрация гемоглобина в эритроците

НК - нуклеиновая кислота

НЛП - нормальные лабораторные показатели

ОКС - острый коронарный синдром

ОМС - обязательное медицинское страхование

ОП - отношение правдоподобия

ПБА - патогенные биологические агенты

ПДЗ - предельно допустимые значения

ПСА - простатоспецифический антиген

ПЦ - предсказательная ценность

ПЦ- - предсказательная ценность отрицательного теста

ПЦ+ - предсказательная ценность положительного теста

ПЦР - полимеразная цепная реакция

РНК - рибонуклеиновая кислота

СОП - стандартная операционная процедура

СОЭ - скорость оседания эритроцитов

СПИД - синдром приобретенного иммунодефицита

СРБ - С-реактивный белок

сТ4 - свободный тироксин

Т3 - трийодтиронин

Т4 - тироксин

ТТГ - тиреотропный гормон

ФСВОК - Федеральная система внешней оценки качества

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute) - Институт клинических лабораторных стандартов

COLABIOCLI - Латиноамериканская конфедерация клинической биохимии

CV - коэффициент вариации (Coefficient of Variation)

EFLM - Европейская федерация клинической химии и лабораторной медицины (European Federation of Clinical Chemistry and Laboratory Medicine)

HbA1c - гликозилированный гемоглобин

ICSH - Международный комитет по стандартизации в гематологии (International Committee for Standardization in Haematology)

Ig - иммуноглобулин

ISI - международный индекс чувствительности (International Sensitivity Index)

JSCC - Японское общество клинической химии (Japan Society of Clinical Chemistry)

MCV - средний объем эритроцита (Mean Corpuscular Volume)

NCCLS - Национальный комитет по стандартизации клинических лабораторий (США) (National Committee for Clinical Laboratory Standards)

SAPS II - упрощенная шкала острых физиологических изменений (Simplified Acute Physiology Score)

TAT - время получения результата анализа (TurnAround Time)

TTP - единый процесс лабораторного тестирования (Total Testing Process)

ПРЕДИСЛОВИЕ

Клинико-диагностическая лаборатория (КДЛ) представляет собой технологический комплекс - специализированное производство в составе более крупного предприятия - поликлиники или стационара. Функции лаборатории как составной части лечебно-профилактического учреждения (ЛПУ) состоят в обеспечении его потребности в лабораторной информации (результатах лабораторных анализов). Задачи руководителя КДЛ состоят в обеспечении соответствия лаборатории по номенклатуре, качеству и производительности потребностям медицинского учреждения. Однако в настоящее время этого уже недостаточно. Современная КДЛ должна демонстрировать приемлемую эффективность технологического процесса производства анализов путем подбора оборудования, сочетания автоматизированных и ручных методик исследования, разделения труда, управления качеством, учетом и рациональным использованием материальных ресурсов и т.д. Из технологического комплекса в составе предприятия лаборатория постепенно становится предприятием в составе ЛПУ. В связи с этим на первый план выходит экономическая эффективность деятельности КДЛ. Сам факт существования КДЛ в составе ЛПУ все больше определяется экономическим расчетом. Номенклатура и объем исследований из основных параметров внешней по отношению к лаборатории среды становится предметом принятия управленческого решения. Источником обновления основных фондов становится деятельность самой лаборатории. Полностью изменяется контекст работы заведующего КДЛ. Из руководителя производства заведующий КДЛ становится управляющим предприятием, область ответственности которого несравненно шире. Новые условия деятельности КДЛ - экономически целесообразное существование и развитие на рынке лабораторных услуг. Задачи руководителя - укрепление позиций лаборатории на рынке за счет эффективного использования имеющихся ресурсов.

На смену существованию КДЛ в рамках финансирования по остаточному принципу постепенно приходит здоровый прагматизм, выражающийся прежде всего в поиске путей дальнейшего самостоятельного экономического функционирования КДЛ. Расчет себестоимости лабораторных исследований, определение критериев оценки экономической эффективности деятельности КДЛ, рентабельность лаборатории - это те важнейшие показатели, которые определяют сам факт существования лабораторий любой формы собственности в современных условиях. Кроме того, без их понимания невозможно выбрать правильный путь реформирования службы клинической лабораторной диагностики. Лаборатория должна сама определять направления своего развития и находить средства для его обеспечения. Представляется, что наиболее реальным практическим выходом из данной ситуации является постепенный переход КДЛ к осуществлению своей деятельности в рамках планирования и обоснованного бюджета. Это будет первый шаг КДЛ по переходу к реальной самостоятельности, где в дальнейшем финансовые результаты, клиническая и экономическая оправданность и эффективность станут основными критериями при принятии управленческих решений. Этим обусловливается стремительный рост значимости прикладных аспектов экономических наук - бухгалтерского учета, финансов предприятий, менеджмента, маркетинга и так далее для современной КДЛ. Одновременно происходит и поиск путей решения этих сложных и в определенной степени неизвестных специалистам КДЛ проблем. Всесторонняя информатизация деятельности КДЛ - это единственно реальный способ их решения.

Процесс производства результатов лабораторных исследований, его всесторонняя информатизация и повышение экономической эффективности деятельности КДЛ тесно взаимосвязаны. При этом роль заведующего КДЛ в этих процессах чрезвычайно велика. Основной путь к повышению качества результатов лабораторных анализов и снижения затрат на их производство - это путь управления этими процессами, которые должны быть стандартизированы и доступны контролю. Однако целый ряд стоящих перед КДЛ проблем не могут быть решены специалистами лаборатории. Управление финансами КДЛ, формирование бюджета, маркетинг и продвижение лабораторных услуг на современном рынке требуют привлечения к решению этих задач финансистов, менеджеров, специалистов по бухгалтерскому учету и в области информатизации. Только такое объединение усилий разноплановых специалистов способно решать возникающие проблемы.

Следствием этой организационной трансформации должно стать разделение традиционных и новых функций управления между несколькими руководителями КДЛ (менеджерами), которое уже сейчас наблюдается в коммерческих лабораториях, изначально созданных как предприятия.

Коренное изменение условий деятельности КДЛ, необходимость выживания в рыночных условиях и достижения коммерческого успеха требуют понимания и практического использования современных подходов к управлению экономической эффективностью деятельности лабораторий.

Безопасность пациента является краеугольной составляющей обеспечения качественной медицинской помощи. Для этого необходимо иметь модели процессов, которые могут служить стандартом, гарантирующим правильное выполнение процедур. Специалистами лаборатории должны постоянно предприниматься и реализовываться шаги, направленные на обеспечение безопасности пациента. Организация системы безопасности пациента в клинической лабораторной диагностике должна базироваться на понимании и обнаружении источников ошибок и того, как использовать концепцию организации безопасности, чтобы минимизировать эти ошибки или обеспечить их выявление до причинения вреда пациенту.

В настоящее время признано, что объем лабораторных исследований необязательно идет рука об руку с затратами на их производство и влиянием на клинические результаты лечения пациентов. Появились данные, что лаборатории с более высокими затратами на производство результатов лабораторных анализов и умеренным объемом исследований могут обеспечить лучшие клинические результаты, чем лаборатории с большим объемом и низкой себестоимостью анализов. Появляется все больше свидетельств того, что правильное назначение лабораторных исследований и улучшение их использования в лечении больных могут быть эффективными направлениями деятельности для снижения затрат на лабораторное тестирование.

Вместе с тем необходимо констатировать очень тревожные тенденции в отношении клинической лабораторной диагностики как отдельной самостоятельной специальности. Во-первых, Министерство науки и высшего образования РФ перенесло клиническую лабораторную диагностику из группы специальностей «Клиническая медицина» в группу специальностей «Медико-биологические науки». Во-вторых, произошло выделение микробиологии в медицинскую микробиологию, а еще раньше - генетики в лабораторную генетику, то есть фактическое отделение клинической микробиологии и генетики от клинической лабораторной диагностики. Эти тенденции стали следствием низкой оценки профессионализма врачей клинической лабораторной диагностики, деятельности профессиональных организаций в области клинической лабораторной диагностики со стороны организаторов здравоохранения и клиницистов и неспособности вносить реальный вклад в лечение больных, а не просто обеспечивать качественные результаты анализов.

Главная цель данного справочника состоит в оказании реальной практической помощи специалистам клинической лабораторной диагностики и руководству ЛПУ в решении этих сложных насущных проблем.

Глава 1. ОРГАНИЗАЦИОННЫЕ ОСНОВЫ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

В процессе лечения больные подвергаются множеству диагностических обследований. Среди них важное место занимают клинические лабораторные исследования. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), доля лабораторных исследований составляет 75-90% от общего числа различных видов исследований, проводимых у пациента в лечебных учреждениях, в 60-70% клинических случаев правильный диагноз пациенту врачи ставят на основании данных результатов лабораторных исследований и принимают более 70% врачебных решений.

Лабораторные исследования назначаются для постановки и подтверждения диагноза, проведения дифференциальной диагностики заболеваний, определения прогноза, обоснования тактики лечения, его изменения или оценки эффективности и достижения целей проводимой терапии. Практическое решение этих задач в ЛПУ возложено на различные типы медицинских лабораторий. Организационные принципы выполнения лабораторных исследований в первую очередь зависят от принятых в стране форм оказания медицинской помощи.

1.1. ФОРМЫ ОКАЗАНИЯ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ

В настоящее время медицинская помощь населению РФ оказывается в больницах, специализированных диспансерах, диагностических центрах, поликлиниках, амбулаториях, фельдшерско-акушерских пунктах. Согласно Федеральному закону «Об основах охраны здоровья граждан в РФ» 2020 г., выделяют следующие виды медицинской помощи:

  1. первичная медико-санитарная помощь - является основой оказания медицинской помощи и наиболее востребованным ее видом, включает мероприятия по профилактике, диагностике, лечению заболеваний и состояний, медицинской реабилитации, наблюдению за течением беременности, формированию здорового образа жизни и санитарно-гигиеническому просвещению населения;

  2. специализированная, в том числе высокотехнологичная медицинская, помощь - это медицинская помощь, оказываемая пациентам при заболеваниях, требующих специальных методов диагностики и лечения и использования сложных медицинских технологий; высокотехнологичная медицинская помощь - это помощь, оказываемая больному с применением новых технологий в медицине;

  3. скорая медицинская помощь - это система организации круглосуточной экстренной медицинской помощи при угрожающих жизни состояниях и заболеваниях на месте происшествия и в пути следования в ЛПУ;

  4. паллиативная медицинская помощь - активная, всеобъемлющая помощь пациенту, страдающему заболеванием, которое не поддается лечению.

Медицинская помощь может оказываться в следующих условиях:

  1. вне медицинской организации (по месту вызова бригады скорой, в том числе скорой специализированной, медицинской помощи, а также в транспортном средстве при медицинской эвакуации);

  2. амбулаторно (в условиях, не предусматривающих круглосуточного медицинского наблюдения и лечения), в том числе на дому при вызове медицинского работника;

  3. в дневном стационаре (в условиях, предусматривающих медицинское наблюдение и лечение в дневное время, но не требующих круглосуточного медицинского наблюдения и лечения);

  4. стационарно (в условиях, обеспечивающих круглосуточное медицинское наблюдение и лечение).

По формам оказания медицинскую помощь можно разделить на три следующие группы:

  1. плановая медицинская помощь - медицинская помощь, оказываемая при заболеваниях и состояниях, не сопровождающихся угрозой жизни пациента, не требующих экстренной и неотложной медицинской помощи, отсрочка оказания которой на определенное время не повлечет за собой ухудшения состояния пациента, угрозу его жизни и здоровью;

  2. неотложная медицинская помощь - медицинская помощь, оказываемая при внезапных острых заболеваниях, состояниях, обострении хронических заболеваний, не опасных для жизни и не требующих экстренной медицинской помощи;

  3. экстренная медицинская помощь - медицинская помощь, оказываемая при внезапных, опасных для жизни состояниях, острых заболеваниях, обострении хронических заболеваний, для устранения угрожающих жизни состояний пациента.

Кроме того, существует понятие «скорая медицинская помощь». Скорая медицинская помощь - вид и система экстренной медицинской помощи, оказываемой при неотложных состояниях больным и пострадавшим на догоспитальном этапе выездными бригадами. Некоторая путаница в понятиях «скорая медицинская помощь» и «неотложная медицинская помощь» связана с тем, что на протяжении истории СССР и РФ эти службы неоднократно разъединяли и объединяли. На службу скорой медицинской помощи были возложены функции по оказанию экстренной помощи:

  • больным, находящимся вне квартиры (улица, общественное место, производство), независимо от повода к вызову;

  • гражданам, пострадавшим от всех видов несчастных случаев независимо от места их нахождения;

  • психически больным, нуждающимся в срочной консультации врача-психиатра;

  • женщинам при родах или нарушении нормального течения беременности.

Неотложная медицинская помощь - комплекс диагностических, лечебных и эвакуационных мероприятий, безотлагательно выполняемых больному (пострадавшему) при остром заболевании (травме, остром отравлении) в целях восстановления и поддержания жизненно важных функций организма, предупреждения развития опасных для жизни осложнений. Неотложная медицинская помощь в максимально доступном объеме должна быть оказана не только на месте происшествия и по пути следования в лечебное учреждение, но и в ЛПУ.

«Неотложные состояния» - условный термин, объединяющий различные острые заболевания и патобиохимические нарушения, которые угрожают жизни больного и требуют экстренных лечебных мероприятий или при которых необходимо в кратчайшие сроки облегчить состояние больного. Неотложные состояния встречаются при заболеваниях и поражениях многих органов и систем. Эти состояния могут возникнуть не только вследствие острых заболеваний и травм, но и в результате обострения хронических болезней или развития осложнений. До сих пор не существует единой классификации неотложных состояний. Многообразие действующих факторов, ситуаций, при которых возникают неотложные состояния, приведено в табл. 1.1.

Таблица 1.1. Неотложные состояния
Неотложные состояния при заболеваниях внутренних органов Неотложные состояния при заболеваниях других органов и систем Состояния при техногенных катастрофах Неотложные состояния при острых отравлениях и интоксикациях Неотложныесостояния в результате лекарственной терапии
  1. Неотложные состояния как проявление болезни, возникающие у практически здоровых людей.

  2. Неотложные состояния, возникающие как осложнение имеющейся соматической патологии.

  3. Неотложные состояния у больных другой патологией, имеющих изменения или заболевания внутренних органов

  1. Хирургические болезни.

  2. Неврологические болезни.

  3. Инфекционные болезни.

  4. Акушерско-гинекологическая патология.

  5. Психические болезни

  1. Поражение ионизирующим излучением.

  2. Поражение отравляющими веществами.

  3. Поражение биологическими агентами

  1. Пищевые отравления, отравления грибами.

  2. Отравления техническими жидкостями, медикаментозные.

  3. Отравления ядохимикатами.

  4. Укусы животных, насекомых

  1. Идиосинкразия.

  2. Аллергия.

  3. Анафилактический шок.

  4. Токсическое воздействие

Неотложность состояния определяется в основном следующими факторами:

  1. степенью и скоростью нарушения функций жизненно важных органов и систем (нарушением гемодинамики, функции центральной нервной системы, дыхания, количеством и скоростью кровопотери и т.д.);

  2. исходом неотложного состояния или заболевания - наличием высокого риска тяжелых поражений [угроза инсульта - при артериальной гипертонии; нарушений ритма - при инфаркте миокарда (ИМ); острой дыхательной недостаточности - при сепсисе и т.п.];

  3. крайним беспокойством и поведением больного.

Учитывая все эти факторы, неотложные состояния можно объединить в следующие группы:

  1. непосредственно угрожающие жизни патологические состояния;

  2. непосредственно не угрожающие жизни патологические состояния или заболевания, но при которых такая угроза может стать реальной в любое время;

  3. состояния, при которых отсутствие своевременной медицинской помощи может повлечь за собой стойкие изменения в организме пациента;

  4. состояния, при которых в кратчайший срок необходимо облегчить страдания больного;

  5. состояния, требующие срочного медицинского вмешательства в интересах окружающих в связи с поведением больного.

Среди неотложных состояний есть несущие непосредственную угрозу жизни больного в ближайшие минуты и часы (1-2 ч, реже дольше) - это так называемые экстренные состояния. Экстренные состояния, как правило, требуют только парентерального введения лекарственных препаратов, готовности проведения реанимационных мероприятий и обязательной госпитализации больного по возможности в специализированное отделение.

1.2. ТИПЫ МЕДИЦИНСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ И ИХ ЗАДАЧИ

Клиническая лабораторная диагностика является важнейшим разделом работы учреждений и организаций, осуществляющих медицинскую деятельность.

Клиническая лабораторная диагностика - это медицинская специальность, предметом деятельности специалистов которой являются клинические лабораторные исследования.

Специалисты с высшим медицинским образованием, имеющие подготовку в области клинической лабораторной диагностики, квалифицируются как врачи клинической лабораторной диагностики. Специалисты со средним медицинским образованием получают квалификацию по специальности «лабораторная диагностика» или «лабораторное дело».

Сферой практической деятельности специалистов клинической лабораторной диагностики - выполнения клинических лабораторных исследований служат подразделения медицинских учреждений, носящие названия КДЛ или отделений клинической лабораторной диагностики, основной задачей которых является своевременное и полноценное обеспечение аналитически надежной лабораторной информацией потребностей медицинской помощи пациентам при оценке состояния здоровья, диагностике заболеваний, слежении за результатами предпринимаемых лечебных мер, прогнозе исходов заболеваний и качества жизни в последующем.

Медицинское предназначение клинических лабораторных исследований определяет возможность разнообразных условий их выполнения - в стационарных и амбулаторных учреждениях здравоохранения различного профиля и мощности, в условиях экстренной помощи, при профилактических осмотрах и диспансеризации, при медико-генетических исследованиях.

Современные медицинские лаборатории выполняют широкий спектр анализов. Их структура обычно соответствует задачам ЛПУ. В ЛПУ могут быть представлены лаборатории экспресс-диагностики, предназначенные для проведения экстренных анализов; КДЛ общего типа, которые обеспечивают выполнение наиболее распространенных лабораторных исследований; специализированные лаборатории (бактериологическая, ПЦР-лаборатория[1]), основной задачей которых является выполнение определенного вида анализов с использованием высокотехнологичного оборудования, а также централизованные лаборатории, проводящие лабораторные исследования для нескольких ЛПУ. Выделение отдельных лабораторий в ЛПУ с позиций доказательной медицины и клинической практики не является оправданным, так как в целом они предоставляют разнообразную клиническую информацию о едином патологическом процессе у конкретного больного. Разделение этой единой информации о больном на сегменты может иметь целый ряд негативных последствий (поздняя диагностика, ошибочная оценка результатов и т.д.). Об этом свидетельствует и опыт развитых стран мира. Именно поэтому все лаборатории ЛПУ должны функционировать в рамках единой организационной структуры - КДЛ в виде отделов или департаментов.

1.2.1. ЛАБОРАТОРИЯ ЭКСПРЕСС-ДИАГНОСТИКИ

Лабораторные тесты являются одним из основных инструментов, используемых при принятии решений в клинической практике. Экстренные и неотложные лабораторные исследования составляют уникальную подгруппу тестов, характеризующуюся их высоким приоритетом.

Задачей лабораторной диагностики неотложных состояний является выполнение исследований, результаты которых необходимы для постановки диагноза в неотложной или экстренной ситуации, для оценки тяжести состояния больного, определения прогноза, коррекции заместительной или медикаментозной терапии. Для пациентов с неотложными состояниями практически важен как можно более короткий временной интервал, в течение которого необходимо выполнить исследование и сообщить результат лечащему врачу. Именно поэтому лабораторные исследования, которые проводятся пациентам в неотложной ситуации в силу ограниченности времени их выполнения, называют срочными анализами, а в экстренной - критическими, или экспресс-анализами. В действительности данные термины отражают временную сущность таких исследований. В соответствии с формами оказания медицинской помощи (неотложной и экстренной медицинской помощи) лабораторные исследования необходимо разделять на неотложные и экстренные.

Неотложные/экстренные лабораторные исследования - это совокупность методов качественного и/или количественного анализа различного биологического материала, которые позволяют получить результат лабораторного исследования в течение короткого времени. С практической точки зрения неотложные/экстренные лабораторные исследования - лабораторные тесты, определенные лечебным учреждением как критически важные для диагностики, оценки тяжести состояния, определения прогноза, ухода за пациентами, для мониторинга и анализа тенденций течения заболевания.

Основное отличие неотложных и экстренных лабораторных исследований лежит в плоскости временных затрат на их выполнение и той конкретной клинической ситуации, в которой находится пациент. Временные затраты на выполнение неотложных исследований могут колебаться в значительных пределах и зависят от технической оснащенности лаборатории, вида исследования, квалификации персонала. Так, для получения результата подсчета лейкоцитарной формулы крови требуется 30-40 мин со времени доставки крови в лабораторию (время уходит на фиксацию мазка, его окраску, сушку и подсчет); на определение кислотно-основного состояния (КОС), уровня глюкозы в крови, электролитов на автоматических анализаторах требуется 2-3 мин, а на исследование активности ферментов и субстратов ручными методами - от 10 до 40 мин.

В настоящее время считается общепринятым, что при проведении неотложных лабораторных исследований время от взятия биологического материала до получения результата исследования не должно превышать 40 мин для специализированных лечебных учреждений и 1 ч - для экспресс-лабораторий многопрофильных лечебных учреждений.

Однако современные представления о критических (экстренных) состояниях и способах их коррекции предъявляют более высокие требования к временным параметрам выполнения экстренных лабораторных исследований. Критическое состояние рассматривается реаниматологией как экстремальное неотложное состояние, сопровождающееся нарушением витальных функций организма, которое требует немедленного протезирования и коррекции жизнеобеспечивающих функций, таких как дыхание, сердечная деятельность, работа выделительной системы и др. Для успешного оказания реанимационной помощи таким пациентам время выполнения экстренных лабораторных исследований не должно превышать 3-5 мин. К таким исследованиям относятся исследование КОС, определение гемоглобина, гематокрита, концентрации глюкозы в крови, исследование электролитов (калий, натрий, кальций, хлориды), лактата. При наличии соответствующего аналитического оборудования, близком территориальном расположении лаборатории экспресс-диагностики и отделения реанимации или приемного отделения возможно обеспечить получение жизненно важной информации о состоянии больных в эти временные интервалы.

Специалисты лаборатории определяют временные интервалы для выполнения неотложных лабораторных исследований с момента поступления биологического материала в лабораторию до передачи результатов анализа врачу-клиницисту, мотивируя это тем, что другие факторы, которые могут повлиять на время получения результатов, находятся вне их прямого контроля. Клиницисты рассматривают временные интервалы для выполнения неотложных лабораторных исследований с момента назначения теста до получения результатов, так как любые задержки в получении результатов исследований могут влиять на своевременность оказания медицинской помощи пациенту. Безусловно, последний подход в определении временных интервалов для выполнения лабораторных исследований является правильным при оказании неотложной медицинской помощи, так как это единый путь, а не сумма определенных отрезков на этом пути. На рис.1.1 представлены различные подходы к оценке временных интервалов выполнения неотложных лабораторных исследований в ряде больниц Великобритании (Al-Talib M., Leslie I., 2017).

pic 0001
Рис. 1.1. Временные затраты при выполнении неотложных лабораторных исследований

Официальные документы, регламентирующие проведение неотложных лабораторных исследований, у нас в стране практически отсутствуют. До недавнего времени основным руководящим документом, регламентирующим создание и функционирование лабораторий экспресс-диагностики, служил приказ Минздрава СССР от 19 августа 1969 г. № 605, согласно которому один круглосуточный пост врача-лаборанта и фельдшера-лаборанта создается из расчета на 12-15 реанимационных коек и дежурный лаборант - в приемном отделении при дежурной бригаде семь врачей и более в лечебном учреждении. В этом же приказе четко определено, что лаборатория экспресс-диагностики выполняет исследования только для больных реанимационных отделений и операционных, дается перечень лабораторных исследований для оценки основных жизненно важных параметров больного. В части лечебных учреждений страны лаборатории экспресс-диагностики работают в соответствии с этим приказом.

В Положении об организации деятельности отделения экстренной медицинской помощи лечебно-профилактического учреждения, изложенном в приложении 1 к Порядку оказания скорой медицинской помощи, утвержденному приказом Минздравсоцразвития России от 1 ноября 2004 г. № 179, приведен перечень кабинетов для проведения диагностических и лечебных мероприятий, который включает кабинет клинико-лабораторной диагностики. В приложении 2 данного приказа «Рекомендуемые штатные нормативы стационарного отделения скорой медицинской помощи лечебно-профилактического учреждения» предусмотрено выделение штатных должностей врача кабинета клинико-лабораторной диагностики из расчета 1,5 ставки на 50 поступающих больных (пострадавших) в сутки (для обеспечения круглосуточной работы) и фельдшера-лаборанта из расчета 3,25 ставки на 50 поступающих больных (пострадавших) в сутки (для обеспечения круглосуточной работы). В сумме 1,5 ставки врача и 3,25 ставки фельдшера-лаборанта составляют 4,75 ставки, необходимой для обеспечения круглосуточной работы.

Современный приказ Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 919н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи взрослому населению по профилю "анестезиология и реаниматология"» также содержит ряд элементов, регламентирующих выполнение неотложных лабораторных исследований. В приказе констатируется, что он регулирует вопросы оказания анестезиолого-реанимационной помощи взрослому населению в медицинских организациях независимо от их организационно-правовой формы, а сама анестезиолого-реанимационная помощь включает в том числе и лабораторный контроль за адекватностью анестезии и/или интенсивной терапии.

В приложении 5 к данному приказу «Рекомендуемые штатные нормативы медицинского и другого персонала отделения анестезиологии-реанимации медицинской организации» указывается, что в штат отделения вводятся 4,75 ставки медицинского лаборанта (один круглосуточный пост) на шесть реанимационных коек. Ставки врачей клинической лабораторной диагностики для отделения анестезиологии-реанимации медицинской организации данным приказом не предусмотрены. В приложении 7 приказа представлено «Положение об организации деятельности центра анестезиологии-реанимации медицинской организации», согласно которому центры анестезиологии-реанимации организуются на функциональной основе в медицинских организациях, имеющих в своем составе два подразделения и более, оказывающих анестезиолого-реанимационную помощь. В состав центров анестезиологии-реанимации могут включаться следующие структурные подразделения медицинского учреждения:

  • лаборатория биохимическая;

  • лаборатория клиническая;

  • другие лаборатории.

В приложении 9 приказа Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 919н приведены Рекомендуемые дополнительные штатные нормативы медицинского и другого персонала Центра анестезиологии-реанимации медицинской организации, согласно которым в штатный состав центров анестезиологии-реанимации дополнительно вводится 4,75 ставки лаборанта (для обеспечения работы аппаратов для экстракорпоральной детоксикации и заместительной почечной терапии и аппарата для интраоперационного сбора крови и сепарации форменных элементов).

Важным для выполнения неотложных лабораторных исследований является приложение 10 данного приказа, в котором представлено «Положение об организации деятельности врача анестезиолога-реаниматолога». В пункте 11 приложения указывается, что при осуществлении интенсивного лечения врач - анестезиолог-реаниматолог осуществляет весь комплекс лечебных, профилактических и диагностических мероприятий, направленных на восстановление, стабилизацию и нормализацию нарушенных функций жизненно важных органов и систем, включающих симптоматическое и патогенетическое лечение, временное протезирование нарушенных функций, их своевременную диагностику и контроль (мониторинг) за ними. Данный пункт имеет существенное практическое значение для организации выполнения лабораторных анализов в палате пробуждения и операционном блоке (при отсутствии палат для реанимации и интенсивной терапии), то есть в тех случаях, когда специалисты лаборатории не предусмотрены штатным расписанием.

Вместе с тем в практической медицине остается совершенно неясным вопрос о том, кто должен проводить исследования в вечернее время для тяжелобольных, находящихся в других отделениях стационара и поступающих в приемное отделение, если число поступающих больных менее 50 в сутки. В некоторых лечебных учреждениях выполнение этих исследований возлагается на лабораторию экспресс-диагностики реанимационных отделений, другие лечебные учреждения организуют дежурство фельдшера-лаборанта в приемном отделении, но при отсутствии врача лабораторной диагностики в составе дежурной бригады значительно снижается качество проводимых там исследований и сужается их перечень.

При организации выполнения неотложных лабораторных исследований необходимо руководствоваться и приказом Минздравсоцразвития России от 19 августа 2009 г. № 599н «Об утверждении Порядка оказания плановой и неотложной медицинской помощи населению РФ при болезнях системы кровообращения кардиологического профиля». Согласно этому приказу (пункт 5.3), в лечебно-профилактическом учреждении, где оказывается неотложная помощь больным с сердечнососудистыми заболеваниями, обеспечивается проведение следующих лабораторно-инструментальных исследований и лечебно-диагностических вмешательств:

а) в экстренном (безотлагательном) порядке и в любое время суток:

  • общий анализ крови и мочи;

  • гематокрит;

  • уровень глюкозы, натрия, калия, магния, креатинина, тропонинов, креатинкиназы (КК), МВ-фракции креатинкиназы (КК-МВ), D-димера, фибриногена в плазме крови;

  • активированное частичное тромбопластиновое время (АЧТВ);

  • активированное время свертывания;

  • КОС и газовый состав крови;

  • искусственная вентиляция легких;

  • рентгенография органов грудной клетки;

  • гастродуоденоскопия.

Ряд других приказов Минздравсоцразвития России также содержат отдельные элементы, регламентирующие проведение неотложных лабораторных исследований. Так, приказ от 6 июля 2009 г. № 389н «Об утверждении порядка оказания медицинской помощи больным с острыми нарушениями мозгового кровообращения» констатирует, что неврологическое отделение для пациентов с острыми нарушениями мозгового кровообращения должно провести определение уровня глюкозы в периферической крови, международного нормализованного отношения (МНО), АЧТВ в течение 20 мин от момента забора крови. В приказе от 8 декабря 2009 г. № 966н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи больным с урологическими заболеваниями» говорится о том, что в ЛПУ, при котором создано урологическое отделение, обеспечивается определение/проведение медицинских исследований в экстренном порядке (в любое время суток) гематокрита, уровня глюкозы, натрия, калия, натрия, креатинина, мочевины в сыворотке крови, определение КОС.

Отсутствие единой структуры и четко регламентированной системы выполнения экстренных лабораторных исследований для больных отделений реанимации и интенсивной терапии, тяжелобольных, находящихся на лечении в других отделениях стационара, поступающих по неотложным показаниям в приемное отделение, определенных руководящими документами (приказами, методическими рекомендациями и т.д.), является серьезным недостатком в организации единой системы оказания пациенту качественной неотложной медицинской помощи в нашей стране. В связи с этим единственным практическим выходом из создавшейся ситуации является разработка и утверждение в каждом отдельном ЛПУ положения об организации выполнения неотложных лабораторных исследований в соответствии с имеющимися финансово-материальными, техническими, кадровыми и профессиональными ресурсами.

Выполнение лабораторных исследований больным с неотложными и экстренными заболеваниями и состояниями в лечебном учреждении может быть организовано следующими способами:

  1. внеочередным выполнением отдельных исследований в основной КДЛ учреждения;

  2. выделением в составе основной КДЛ круглосуточного (дежурного) подразделения;

  3. созданием отдельной лаборатории (экспресс-лаборатории) для круглосуточного выполнения неотложных и экстренных лабораторных исследований;

  4. выделением должностей лабораторных специалистов в штате профильных клинических подразделений, в которых часто возникает потребность в экстренном выполнении лабораторных исследований, и оснащением их средствами лабораторного анализа и методическим руководством со стороны заведующего основной КДЛ учреждения;

  5. обучением нелабораторного персонала клинических подразделений применению портативных устройств для необходимых исследований (преимущественно ориентировочных) при общем контроле за качеством исследований со стороны основной КДЛ учреждения.

В положении об организации выполнения неотложных лабораторных исследований необходимо изложить основные организационные аспекты выполнения таких исследований, включая перечень лабораторных тестов.

Для включения каждого теста в перечень неотложных исследований, которые должна выполнять лаборатория экспресс-диагностики, необходимо опираться на данные доказательной медицины. Итальянское общество клинической биохимии и клинической молекулярной биологии и Академия неотложной медицинской помощи в 2018 г. с позиций доказательной медицины провели оценку лабораторных тестов для их включения в перечень для диагностики неотложных состояний (табл. 1.2). Для этого использовали шкалу для оценки уровня доказательности рекомендаций: значение от 1,00 до 1,49 - сильная (настоятельная) рекомендация для использования теста; от 1,50 до 1,99 - слабая рекомендация; от 2,00 до 2,49 - не рекомендуется; значение от 2,50 до 3,00 - строго не рекомендуется (G. Lippia et al., 2018).

Таблица 1.2. Рекомендации для использования лабораторных тестов в диагностике неотложных состояний
Лабораторный тест Диапазон оценочной шкалы Сила рекомендаций

Анемия

Количество эритроцитов

Гемоглобин

Гематокрит

Средний объем эритроцита (MCV)

Показатель распределения эритроцитов по объему (RDW)

1,00-1,13

1,00

1,00-1,38

1,00-1,35

1,75-2,25

Сильная рекомендация

Сильная рекомендация

Сильная рекомендация

Сильная рекомендация

Не рекомендуется

Кровотечение

Протромбиновое время

АЧТВ

Фибриноген

Количество тромбоцитов

1,00-1,13

1,00-1,13

1,13-2,00

1,00

Сильная рекомендация

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

Сильная рекомендация

Венозный тромбоз

D-димер

1,00-1,50

Сильная рекомендация

Острый панкреатит

Общая амилаза

Панкреатическая амилаза

Липаза

2,25-2,75

1,88-2,13

1,25

Не рекомендуется

Не рекомендуется

Сильная рекомендация

Болезни печени

Аланинаминотрансфераза (АЛТ)

Аспартатаминотрансфераза (АСТ)

Y-Глютамилтранспептидаза (ГГТП)

Билирубин общий

Билирубин прямой

1,00

1,50-2,13

1,88-2,25

1,13-1,38

1,88-2,00

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

Не рекомендуется

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

ИМ

Кардиальный тропонин Т или I

КК-МВ

Миоглобин

Натрийуретические пептиды

1,00

2,38-3,00

2,88-3,00

1,88-2,63

Сильная рекомендация

Строго не рекомендуется

Строго не рекомендуется

Не рекомендуется

Болезни (повреждение) почек

Креатинин

Скорость клубочковой фильтрации

Мочевина

Цистатин С

Липокалин, ассоциированный с желатиназой нейтрофилов

1,00

1,50-1,75

1,25-1,75

2,63-2,75

2,13-2,38

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

Слабая рекомендация

Строго не рекомендуется

Не рекомендуется

Травма мышц

КК общая

Миоглобин

Креатинин

Лактатдегидрогеназа (ЛДГ)

1,00-1,75

1,38-2,25

1,00

2,38-2,63

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

Сильная рекомендация

Строго не рекомендуется

Инфекция

Количество лейкоцитов

С-реактивный белок

Прокальцитонин

Пресептин

Лактат

1,00

1,00-1,25

1,63-2,00

2,88

1,13-1,25

Сильная рекомендация

Сильная рекомендация

Слабая рекомендация

Строго не рекомендуется

Сильная рекомендация

Нарушение водно-электролитного баланса

Кальций общий

Кальций ионизированный

Магний

Натрий

Хлориды

Калий

Газовый состав крови

Сахарный диабет

Глюкоза

Гликозилированный гемоглобин

Осмолярность

1,00

2,50-2,88

1,50

Сильная рекомендация

Строго не рекомендуется

Слабая рекомендация

Наряду с научной доказанностью для включения лабораторных тестов в перечень для диагностики неотложных состояний существует множество международных клинических рекомендаций по данной проблеме. С появлением технологий, позволяющих получить результат анализа в считанные минуты, некоторые лаборатории экспресс-диагностики включили в свой перечень тестов даже определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

В соответствии с данными лабораторий экспресс-диагностики ведущих учреждений страны и зарубежных клиник оптимальным является следующий перечень неотложных исследований.

Перечень лабораторных исследований, выполняемых лабораторией экспресс-диагностики.

  • Общеклинические исследования.

    1. Общеклиническое исследование крови, включая СОЭ.

    2. Подсчет количества ретикулоцитов в крови.

    3. Исследование крови на присутствие плазмодий малярии.

    4. Общеклиническое исследование мочи.

    5. Общеклиническое исследование спинномозговой жидкости.

    6. Расчет объема циркулирующей крови (ОЦК), объема плазмы (ОП), глобулярного объема (ГО).

    7. Исследование биологического материала на скрытую кровь (кал, моча, содержимое желудка, содержимое брюшной полости).

  • Биохимические исследования.

    1. КОС крови.

    2. Альбумин в сыворотке.

    3. Общий белок в сыворотке.

    4. Креатинин в сыворотке.

    5. Азот мочевины в сыворотке.

    6. АСТ в сыворотке.

    7. АЛТ в сыворотке.

    8. Общая КК в сыворотке.

    9. КК-МВ в сыворотке.

    10. Тропонин Т или I в сыворотке.

    11. Миоглобин в сыворотке.

    12. Мозговой натрийуретический пептид (BNP) или N-терминальный промозговой натрийуретический пептид (NT-proBNP) в сыворотке.

    13. а-Амилаза в сыворотке и моче.

    14. а-Амилаза в содержимом брюшной полости.

    15. Липаза в сыворотке.

    16. Глюкоза в крови.

    17. Глюкоза в спинномозговой жидкости.

    18. Глюкоза в моче.

    19. Кетоновые тела в моче.

    20. Общий билирубин в сыворотке.

    21. Прямой билирубин в сыворотке.

    22. Калий в сыворотке.

    23. Натрий в сыворотке.

    24. Общий или ионизированный кальций в сыворотке.

    25. Хлор в сыворотке.

    26. Магний в сыворотке.

    27. Хлор в спинномозговой жидкости.

    28. Молочная кислота (лактат) в крови.

    29. Прокальцитонин в сыворотке.

    30. СРБ в сыворотке.

    31. Осмолярность плазмы.

    32. Осмолярность мочи.

    33. Концентрация алкоголя в крови.

    34. р-Хорионический гонадотропин в моче.

  • Исследование системы гемостаза.

    1. Активированное время свертывания крови.

    2. Протромбиновое время и МНО.

    3. АЧТВ.

    4. Тромбиновое время.

    5. Антитромбин III.

    6. Фибриноген.

    7. D-димер.

    8. Тромбоэластограмма.

  • Иммуногематологические исследования.

    1. Группа крови.

    2. Резус-фактор.

    3. Определение антител.

  • Определение концентрации лекарственных препаратов.

    1. Дигоксин.

    2. Фенобарбитал.

    3. Теофиллин.

    4. Хинидин.

    5. Прокаинамид (Новокаинамид*).

    6. Лидокаин.

    7. Литий.

Следует серьезно относиться к включению в перечень каждого лабораторного теста, оценивая в первую очередь его диагностическую значимость. Методические сложности выполнения исследования при большой диагностической ценности должны отходить на второй план. В перечне исследований должно быть указано, в каком материале выполняется определение субстрата или фермента, иначе клиницист может назначить исследование любого материала от больного по утвержденному перечню (например, определение мочевины, креатинина в моче), результаты которого не несут ценной информации для диагностики неотложного состояния и могут быть выполнены в плановом порядке. Перечень лабораторных исследований, выполняемых по срочным показаниям, должен быть согласован с ведущими специалистами лечебного учреждения. При составлении перечня неотложных лабораторных исследований необходимо учитывать современные тенденции развития клинической лабораторной диагностики. В обязательном порядке перечень должен включать лабораторные тесты с наибольшей клинической ценностью с позиций доказательной медицины.

Для улучшения лабораторного исследования у пациентов с неотложными состояниями оптимальным является выделение в составе КДЛ лаборатории экспресс-диагностики с соответствующим штатным обеспечением, в задачи которой будет входить выполнение лабораторных исследований для больных реанимационных отделений, операционных, приемного отделения и тяжелобольных других отделений стационара.

Эффективная лаборатория экспресс-диагностики является одним из основных требований к качеству оказания экстренной и неотложной медицинской помощи. Быстрые, надежные и точные результаты лабораторных тестов должны быть предоставлены в течение нескольких минут, поэтому время получения результатов анализов считается одним из важнейших показателей качества деятельности лаборатории экспресс-диагностики. Для того чтобы соответствовать задачам оказания неотложной помощи, лаборатории экспресс-диагностики должны применять различные принципы и процедуры, которые отличают их от центральной КДЛ. Надежные и оптимальные анализаторы необходимой производительности, хорошо обученный персонал, расположение лаборатории в непосредственной близости от отделения неотложной помощи позволяют обеспечить преимущества в оказании качественной медицинской помощи пациентам с неотложными состояниями.

Выделение в составе КДЛ лаборатории экспресс-диагностики позволит более эффективно решать вопросы использования аппаратуры, снабжения реактивами, повышения профессиональных навыков и знаний, оказания помощи в организации дежурства всеми подразделениями, контроля качества. Как пример может быть рекомендована следующая организация работы такой лаборатории экспресс-диагностики: до 15 ч (время окончания работы плановых лабораторий) лаборатория экспресс-диагностики выполняет неотложные исследования для больных реанимационных отделений, операционных и приемного отделения, где в это время идет наиболее интенсивная работа. При этом для обеспечения анестезиологов необходимой информацией о состоянии больного во время хирургического вмешательства в операционном блоке организуют рабочее место для одного фельдшера-лаборанта, который выполняет исследование КОС, определяет уровень гемоглобина, гематокрита, глюкозы, электролитов, времени свертывания крови. Все плановые исследования в это время выполняются для больных этих отделений плановыми лабораториями - клинической, биохимической, иммунологической. После 15 ч, когда интенсивность работы в операционных значительно снижается и заканчивает работу КДЛ, лаборатория экспресс-диагностики выполняет неотложные и назначенные на вечернее и ночное время плановые исследования для всех отделений стационара. Такая организация неотложных исследований требует постоянного состава сотрудников лаборатории, что в свою очередь дисциплинирует людей, повышает качество выполняемых исследований и ответственность за их выполнение, позволяет готовить специалистов лабораторной диагностики, способных работать в очагах стихийных бедствий и катастроф.

Утвержденное руководителем лечебного учреждения положение о лаборатории экспресс-диагностики является тем нормативным документом, на который опираются специалисты лаборатории в своей повседневной деятельности и который является обязательным к исполнению всеми руководителями и специалистами отделений стационара. Руководитель лаборатории экспресс-диагностики должен следить за тем, чтобы пункты положения не нарушались, и своевременно информировать руководителя лечебного учреждения или его заместителя по лечебной работе о превышении клиницистами своих полномочий. Это важная часть работы, которая должна проводиться регулярно.

В странах Западной Европы и США выполнение экстренных лабораторных исследований для пациентов отделений реанимации и интенсивной терапии, отделений неотложной медицинской помощи и операционного блока осуществляет средний медицинский и параклинический персонал этих отделений, все другие, более углубленные исследования проводят в центральной лаборатории. Другими словами, проведение экспресс-анализов организовано путем обучения нелабораторного персонала клинических подразделений при общем контроле за качеством исследований со стороны основной КДЛ. Это организационное направление лабораторных исследований получило название в зарубежной литературе point of care testing (POCT) - «анализ по месту оказания медицинской помощи» и является одним из наиболее перспективных. Для исследований персонал в основном использует портативные аналитические системы, которые не требуют существенной подготовки к выполнению анализов, или полуколичественные ориентировочные тесты, а перечень лабораторных анализов достаточно ограничен и включает исследование КОС, определение уровня гемоглобина, гематокрита, глюкозы, лактата, электролитов (то есть те исследования, которые можно выполнить в течение 3-5 мин), тропонина, миоглобина, КК, билирубина, креатинина, активированного времени свертывания крови, D-димера, р-хорионического гонадотропина и др.

Таким образом, в настоящее время существуют две концепции выполнения экстренных лабораторных исследований. Для ускоренного получения результатов исследования биохимических маркеров можно выполнить анализы в лаборатории экспресс-диагностики (если ее нет, то в центральной КДЛ) или использовать методологию POCT. С точки зрения доказательной медицины, если точность/неточность, результаты контроля качества, надежность и экономические затраты на проведение анализов эквивалентны для этих двух подходов, то время получения результатов исследований имеет важнейшее значение. Получение результатов анализов и принятие клинического решения, прежде чем у больного разовьются необратимые повреждения клеток жизненно важных органов, приводит к улучшению результатов лечения пациентов в режиме реального времени. В практических рекомендациях для лабораторной медицины Национальной академии клинической биохимии США (2006) указывается на то, что большинство рандомизированных исследований показали: POCT по сравнению непосредственно с проведением анализов в лаборатории экспресс-диагностики приводит к значительному снижению времени получения результатов анализов, своевременному принятию клинических решений и улучшению результатов лечения. В рекомендациях констатируется, что в отношении ряда лабораторных исследований использование концепции POCT приводит к сокращению времени ожидания результатов анализов врачом в 2 раза по сравнению с проведением исследований в традиционной экспресс-лаборатории, что позволяет в более короткие сроки поставить диагноз, быстро определить тактику лечения и снизить финансовые затраты на проведение ряда экстренных анализов. В табл. 1.3 приведены затраты времени на выполнение ряда лабораторных тестов в Главном Массачусетском госпитале США до и после внедрения оборудования POCT (Lewandrowski К., 2010).

Таблица 1.3. Затраты времени на выполнение лабораторных тестов в центральной лаборатории и при использовании оборудования point of care testing

Лабораторный тест

Время выполнения анализа, мин

Различие, мин (%)

центральная лаборатория

POCT

Анализ мочи (тестовые полоски)

40

4

-36 (90%)

Хорионический гонадотропин в моче

78

5

-73 (94%)

Глюкоза в крови

10

6

-4 (60%)

Кардиальные маркеры в крови

110

17

-93 (85%)

Среднее значение

59,5

8

-51,5 (87%) р=0,02

Концепция выполнения лабораторных исследований point of care все более широко используется в практической медицине развитых стран мира (и не только для диагностики неотложных состояний). Например, в США 88,7% исследований уровня глюкозы, 58,3% анализов протромбинового времени и АЧТВ, 47,7% исследований КОС и 45,5% исследований гематокрита выполняется медицинскими сестрами непосредственно возле больного (Titus K., 1996). В целом в США в настоящее время нелабораторным персоналом выполняется до 10% общего количества лабораторных тестов, и в течение следующих 5 лет ожидается двукратное увеличение этого объема. Вместе с тем аналитические характеристики (воспроизводимость, правильность, стабильность, чувствительность) портативных систем пока еще уступают уровню стационарных лабораторных анализаторов, используемых в экспресс-лабораториях и плановых КДЛ, что приводит к снижению достоверности лабораторных результатов. Тем не менее концепция лабораторных исследований POCT рассматривается как объективно полезная для решения проблем лабораторной диагностики неотложных состояний в силу значительного сокращения времени получения результатов анализов и расходов по содержанию лаборатории экспресс-диагностики, а аналитические возможности портативных аналитических систем неуклонно совершенствуются.

Концепция POCT (Point Of Care Testing) в настоящее время предоставляет возможность широкого выбора вариантов организации лабораторного исследования у пациентов с неотложными состояниями. В силу этого она является весьма перспективной для многих ЛПУ нашей страны. В первую очередь для лечебных учреждений, которые не имеют КДЛ либо имеют только одного специалиста по лабораторной диагностике со средним образованием (амбулаторно-поликлинические учреждения, участковые больницы, санатории, диспансеры). Во-вторых, концепцию POCT необходимо активно внедрять при осуществлении централизации лабораторных исследований в регионах, когда основная масса лабораторных анализов для пациентов поликлиник, городских, районных больниц, диагностических центров, диспансеров, родильных домов, женских консультаций выполняется в централизованной КДЛ, а в лечебном учреждении проводятся только неотложные исследования. В-третьих, в крупных ЛПУ, где имеются лаборатории экспресс-диагностики, портативные аналитические приборы необходимо использовать для оснащения приемного отделения, отделений реанимации и интенсивной терапии, операционного блока при их удаленном расположении от лаборатории. В-четвертых, портативные аналитические системы необходимо использовать в работе лабораторий экспресс-диагностики ЛПУ для выполнения неотложных исследований специалистами лаборатории в целях максимального сокращения сроков получения результатов анализов. В любом варианте для обеспечения необходимого качества результатов анализов выбор портативных аналитических систем, обучение работе и контроль за их применением должны осуществлять специалисты клинической лабораторной диагностики.

Национальная академия клинической биохимии США (2006) рекомендует выполнение следующих лабораторных тестов с использованием оборудования POCT:

  1. глюкоза;

  2. кардиальные биомаркеры при остром коронарном синдроме (ОКС): тропонины, BNP/NT-proBNP;

  3. исследование газового состава артериальной крови, уровня глюкозы, лактата, магния, параметров кооксиметрии, электролитов (Na+, K+, Cl-), ионизированного кальция при критических состояниях;

  4. оценка свертывающей системы: протромбиновое время, АЧТВ, активированное время свертывания крови;

  5. оценка функций почек: мочевина, креатинин;

  6. исследование билирубина в крови;

  7. исследование мочи на беременность.

Арсенал средств POCT постоянно обогащается новыми тестами и аналитическими системами, расширяющими и улучшающими их возможности использования в диагностике неотложных состояний. Практический опыт применения портативных анализаторов в развитых странах мира однозначно свидетельствует об их клинической эффективности и положительной роли в повышении качества оказываемой неотложной медицинской помощи.

Учитывая опыт развитых стран мира в организации проведения неотложных лабораторных исследований, необходимо и у нас в стране использовать смешанную систему организации выполнения таких исследований. Такой подход особенно актуален для крупных ЛПУ, имеющих в своем составе несколько разнопрофильных отделений реанимации и интенсивной терапии. Экономически и клинически нецелесообразно в таких ЛПУ иметь несколько лабораторий экспресс-диагностики. Достаточно одной хорошо оснащенной экспресс-лаборатории, располагающейся рядом с наиболее крупным отделением реанимации и интенсивной терапии (или дислоцирующейся на базе основной КДЛ), в которой круглосуточно работают специалисты клинической лабораторной диагностики, а отдаленно расположенные отделения реанимации и интенсивной терапии необходимо оснастить средствами POCT для проведения исследований КОС, уровня гемоглобина, гематокрита, глюкозы, лактата, электролитов и др. (в зависимости от профиля отделения).

1.2.2. КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКАЯ ЛАБОРАТОРИЯ

КДЛ общего типа являются наиболее распространенным типом медицинских лабораторий. Обычно они имеют единую структуру. Однако, несмотря на единую структуру КДЛ, в ней традиционно существует деление на более мелкие лаборатории или отделы, такие как клиническая лаборатория (отдел), лаборатория клинической биохимии (биохимическая), иммунологическая лаборатория, цитологическая лаборатория. Бактериологическая (микробиологическая) лаборатория часто не входит в состав КДЛ и функционирует как самостоятельное подразделение ЛПУ, то есть относится к специализированным лабораториям. Типичная структура КДЛ приведена на рис. 1.2.

pic 0002
Рис. 1.2. Типичная структура клинико-диагностической лаборатории

КДЛ ЛПУ является диагностическим подразделением ЛПУ и обладает всеми правами самостоятельного отделения, как и все другие лечебные и диагностические отделения учреждения.

КДЛ выполняет следующие основные задачи:

  1. организация и выполнение лабораторных исследований: гематологических, общеклинических, цитологических, биохимических, коагулологических, иммунологических и бактериологических;

  2. консультативная помощь врачам лечебных отделений в выборе наиболее информативных лабораторных тестов для обследования пациентов и оценке результатов лабораторных анализов.

Деление КДЛ на более мелкие лаборатории или отделы обусловлено особенностями анализируемого биологического материала, методами исследований, используемым оборудованием, профессиональной специализацией врачей клинической лабораторной диагностики.

Клиническая лаборатория (отдел) выполняет гематологические и общеклинические анализы. Гематологический анализ используется для диагностики и мониторирования заболеваний, при которых изменяются количество, размер или структура клеток крови. К ним относятся красные кровяные клетки (эритроциты), белые кровяные клетки (лейкоциты) и тромбоциты. Общий анализ крови - полный подсчет всех клеток крови с характеристиками их структуры (включая лейкоцитарную формулу крови) - наиболее часто назначаемый лабораторный анализ, характер изменений в котором указывает на наличие у пациента тех или иных заболеваний. По сути дела, это не один тест, а целый комплекс тестов, о чем более детально сказано в специальных главах данного руководства.

В современных КДЛ большую часть гематологических показателей определяют с помощью автоматических гематологических анализаторов. Использование анализатора существенно уменьшает объем биопробы для анализа, значительно сокращает время получения результатов исследования и повышает их точность. Вместе с тем часть гематологических показателей в лаборатории получают с использованием микроскопа. Микроскоп по-прежнему остается основным инструментом для анализа проб костного мозга.

Гематологические исследования играют важнейшую роль в диагностике злокачественных заболеваний крови (лейкозы, миеломная болезнь) и анемий. Не менее важное значение гематологические показатели имеют для оценки реакции организма на многие инфекционные и воспалительные заболевания, позволяя определять по динамике их изменений тяжесть течения и эффективность проводимого лечения.

Результаты большинства гематологических анализов бывают готовы в течение 4-6 ч, однако при необходимости некоторые из них можно выполнить в течение 30 мин - 1 ч в любое время суток.

Общеклинические исследования включают анализ физико-химических особенностей и клеточного состава других (кроме крови) биологических жидкостей организма больного - мочи, мокроты, жидкости серозных пространств (например, плевральной), спинномозговой (ликвора) жидкости, кала, отделяемого мочеполовых органов и т.д. Нередко результаты исследования биологических жидкостей играют решающую роль в постановке диагноза у пациента. Например, обнаружение большого количества лейкоцитов в моче для установления факта инфицирования мочевыводящих путей. Вместе с тем сбор каждого вида биоматериала для получения достоверных результатов анализа имеет свои особенности, которые должна знать медицинская сестра.

Несмотря на ужесточение требований к проведению паразитологических исследований со стороны санитарно-противоэпидемиологических служб (условия проведения паразитологических анализов должны соответствовать требованиям по работе с микроорганизмами III-IV групп патогенности), они по-прежнему выполняются клинической лабораторией. Основным биоматериалом для выявления паразитарных организмов является кал, реже исследованию подвергаются дуоденальное содержимое, соскобы с перианальных складок.

Цитологические исследования направлены на изучение морфологических характеристик отдельных клеток. Как правило, клетки соскабливают с поверхности таких анатомических образований, как шейка матки, бронхи, слизистая оболочка носа, гортань, желудок. Клетки на исследование можно забрать, используя аспирацию с помощью тонкой иглы и шприца (например, из плевральной полости, из солидных опухолей молочной железы). Из взвеси клеток в лаборатории готовят мазки на предметном стекле, их фиксируют, окрашивают и анализируют под микроскопом. Цитологические исследования используются в клинической практике в основном для диагностики предзлокачественных состояний и злокачественных опухолей. Часть цитологических исследований является обязательной составной частью скрининговых программ (массовое обследование населения с использованием наиболее эффективных методов для выявления распространенного заболевания). Например, анализ цервикальных мазков - обязательное исследование в скрининге женщин на наличие рака шейки матки.

Лаборатория клинической биохимии (биохимическая) выполняет широкий спектр анализов, которые необходимы для диагностики и оценки эффективности лечения многих заболеваний и состояний. Основными видами биологического материала, которые подвергаются анализу в биохимической лаборатории, являются кровь и моча. Кровь состоит из клеток (эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов) и жидкой части, которая представляет собой раствор многих неорганических и органических веществ. Эта и есть та жидкость, которую анализируют в большинстве биохимических тестов. Именно поэтому первым этапом после доставки проб крови в лабораторию для биохимических исследований является отделение жидкой части крови от клеток путем центрифугирования проб. Жидкая часть крови, которую получают после центрифугирования, может быть плазмой или сывороткой. Различие между плазмой и сывороткой определяется типом пробирки или фирменного приспособления (например, вакутейнер) в которую медицинская сестра берет кровь. Если для этой цели используют пробирку (вакутейнер) без всяких добавок, то кровь сворачивается и образуется сыворотка. Если же в пробирку (вакутейнер) добавлены антикоагулянты, кровь остается жидкой (не сворачивается), и получаемая после центрифугирования жидкая часть называется плазмой. Это важное отличие, которое должна понимать медицинская сестра при взятии проб крови. Для определения большинства биохимических показателей в лаборатории исследуют сыворотку, однако не для всех [например, для определения адренокортикотропного гормона (АКТГ) необходима плазма]. Кроме того, для определения показателей, характеризующих состояние свертывающей системы крови, необходима только плазма.

У здорового человека концентрация каждого компонента жидкой части крови находится в определенных пределах, которые отражают нормальное функционирование основных систем поддержания гомеостаза организма, его клеток и тканей. При заболеваниях нередко происходит нарушение баланса одного или нескольких биохимических показателей крови, обнаружение которых служит главным принципом диагностики при проведении биохимических исследований. Перечень патологических состояний, при которых биохимическое исследование крови и мочи играет важную роль, очень широк и включает заболевания сердца, легких, печени, почек, эндокринной и других систем. Некоторые опухолевые клетки высвобождают в кровь специфические субстанции, так называемые опухолевые маркеры, обнаружение которых биохимическими методами используется для мониторинга течения опухолевого процесса у больных.

Биохимическая лаборатория выполняет тесты для оценки состояния свертывающей системы крови. Данные тесты показаны большинству больных, направляемых в ЛПУ для хирургического лечения и находящихся на лечении в отделениях реанимации и интенсивной терапии. Многие пациенты из группы риска по сердечно-сосудистым заболеваниям принимают препараты, которые замедляют свертывание крови. Антикоагулянтная терапия должна обязательно сопровождаться мониторированием состояния крови, чтобы вовремя предупредить такой опасный ее побочный эффект, как кровотечение.

Большинство биохимических анализов выполняется в КДЛ на автоанализаторах. Производительность анализаторов в разных лабораториях может существенно отличаться. В небольших лабораториях анализаторы способны тестировать 20-30 проб в час по 10 биохимическим параметрам, в крупных - 200-400 проб в час. Результаты большинства биохимических тестов готовы в день поступления проб, при выполнении исследований для пациентов с неотложными состояниями - в течение 1 ч.

Иммунологическая лаборатория выполняет тесты, результаты которых необходимы для диагностики различных заболеваний и состояний, в основе которых лежат иммунологические механизмы. К таким заболеваниям относятся врожденные (первичные) и приобретенные (вторичные) иммунодефициты. В основе иммунодефицита лежит недостаточность определенного звена иммунной системы. Например, недостаточность системы фагоцитоза приводит к частым рецидивам гнойных инфекций, а недостаточность клеточного звена иммунитета (дефицит Т-хелперов) - к развитию синдрома приобретенного иммунодефицита (СПИДа). Нередко в клинической практике встречаются заболевания, при которых иммунная система организма человека формирует иммунный ответ против собственных тканей и клеток. Основное следствие такого нарушения иммунного ответа - выработка антител к нормальным клеткам. Такие антитела называются аутоантителами, а заболевания, которые развиваются вследствие повреждения такими антителами здоровых клеток организма человека, - аутоиммунными. Определение в крови аутоантител к определенным клеткам и клеточным структурам играет решающую роль в диагностике ряда заболеваний щитовидной железы, печени, почек, пернициозной и гемолитической анемии.

Наиболее ответственной частью деятельности иммунологической лаборатории является определение группы крови и резус-фактора у пациента. Операция переливания крови стала настолько обычной процедурой, что можно легко недооценить ее опасность. Вместе с тем необходимое часто для спасения жизни больного переливание донорской крови связано со значительным риском для него. Правильное определение группы крови и резус-фактора как у донора, так и пациента в лаборатории, грамотные действия медицинской сестры по идентификации больного, безошибочное заполнение паспортных данных пациента в бланке-заявке на исследование в значительной степени снижают этот риск.

При попадании любой инфекции в организм человека иммунная система продуцирует антитела к специфическим антигенам (белкам) инфекционного агента (бактерии, вирусы, простейшие, паразиты, грибы). Повышение уровня специфических антител в крови, которые можно определять серологическими методами, является показателем инфицирования больного тем или иным видом микроорганизма. Наряду со специфическими антителами серологические методы исследования позволяют обнаруживать специфические антигены в крови, что также свидетельствует о присутствии определенного возбудителя. Тестирование крови на наличие специфических антигенов и антител является важнейшим методом диагностики вирусных инфекций, таких как вирус иммунодефицита человека (ВИЧ), вирусных гепатитов В и С, а также сифилиса.

1.2.3. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКАЯ ЛАБОРАТОРИЯ

Приказом Минздравмедпрома РФ от 19 января 1995 г. № 8 «О развитии и совершенствовании деятельности лабораторий клинической микробиологии (бактериологии) лечебно-профилактических учреждений» были созданы отделы клинической микробиологии (бактериологии) в КДЛ республиканских, краевых, областных больниц и крупных многопрофильных больниц (600 коек и более). Отдел клинической микробиологии (бактериологии) был создан в составе КДЛ ЛПУ на правах ее структурного подразделения. В дальнейшем часть бактериологических лабораторий стали функционировать как самостоятельная структурные подразделения, что не способствует развитию клинической лабораторной диагностики в лечебном учреждении.

Бактериологическое исследование проводится в целях лабораторной диагностики инфекционных и паразитарных заболеваний, предупреждения возникновения и распространения инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, выявления дисфункций систем организма человека, вызванных микроорганизмами.

В бактериологической (микробиологической) лаборатории работают специалисты с различным уровнем образования. Заведующим бактериологической лабораторией может быть медицинский работник, соответствующий квалификационным требованиям к медицинским и фармацевтическим работникам с высшим образованием, по направлению подготовки «Здравоохранение и медицинские науки» по специальности «медицинская микробиология» или «бактериология», или дополнительным профессиональным образованием по специальности «медицинская микробиология» или «бактериология», «вирусология» и профессиональному стандарту, имеющий стаж работы не менее 3 лет (приказ Минздрава России от 8 октября 2015 г. № 707н, с изменениями, внесенными приказом Минздрава России от 15 июня 2017 г. № 328н). На должность врача - медицинского микробиолога, врача-бактериолога, врача-вирусолога, врача-паразитолога, врача - лабораторного миколога микробиологической лаборатории может быть назначен медицинский работник, соответствующий квалификационным требованиям по соответствующей специальности, а на должность биолога - специалист с немедицинским образованием. Специалисты со средним специальным образованием включают медицинских лабораторных техников (фельдшеров-лаборантов) и лаборантов микробиологической лаборатории. Они должны соответствовать квалификационным требованиям к медицинским и фармацевтическим работникам со средним медицинским и фармацевтическим образованием по специальности «лабораторная диагностика», или «лабораторное дело», или «бактериология».

Штатную численность микробиологической лаборатории устанавливает руководитель медицинской организации, в структуре которой она создана, исходя из числа биологических проб и исследований в день и рекомендуемых штатных нормативов: одна штатная должность врача - медицинского микробиолога, врача-бактериолога, врача-вирусолога или биолога на 20 000 микробиологических исследований в год, но не менее одной на лабораторию; штатные должности медицинского лабораторного техника (фельдшера-лаборанта) или лаборанта - две должности на каждую должность врача (врача - медицинского микробиолога, врача-бактериолога, врача-вирусолога, врача - лабораторного миколога, врача-паразитолога) или биолога; санитарка - одна должность на три должности врача (врача - медицинского микробиолога, врача-бактериолога, врача-вирусолога, врача - лабораторного миколога, врача-паразитолога) или биолога.

Основными задачами бактериологической лаборатории являются:

  1. проведение микробиологических исследований для всех обслуживаемых ЛПУ;

  2. выявление специфических реакций организма человека на возбудителей, вызывающих и поддерживающих течение инфекционного процесса;

  3. полное обеспечение лечебно-диагностического процесса информацией с использованием методов микробиологии и иммунологии;

  4. проведение фармакокинетических исследований для оценки эффективности проводимых лечебных мероприятий;

  5. изучение микробной загрязненности окружающей больного среды и контроль стерильности лекарственных средств, хирургического инструментария и шовных материалов;

  6. разработка рекомендаций по противоэпидемическим мероприятиям и улучшению противоэпидемического режима в ЛПУ;

  7. оказание консультативной помощи ЛПУ и их структурным подразделениям в разработке и внедрении в практику схем рациональной антибактериальной терапии;

  8. рациональное и эффективное использование лабораторного оборудования, реактивов и биопрепаратов.

Бактериологическая лаборатория осуществляет:

  1. исследование материала от больных и здоровых людей с применением бактериологических и иммунологических методов;

  2. обнаружение, выделение, идентификацию, определение лекарственной чувствительности, биологических свойств и эпидемиологических маркеров микроорганизмов;

  3. взятие и исследование проб для санитарно-бактериологического контроля противоэпидемического режима в ЛПУ;

  4. совместную с лечащими врачами интерпретацию данных микробиологических исследований и их использование в диагностике и лечении больных;

  5. участие в планировании потребностей ЛПУ в антибактериальных химиотерапевтических и иммунобиологических препаратах, эубиотиках, дезинфицирующих средствах;

  6. выполнение лабораторных методов, позволяющих проводить оценку эффективности антибактериальной терапии;

  7. повышение качества лабораторных исследований путем внутри-лабораторного контроля и участия в межлабораторном контроле качества;

  8. повышение квалификации персонала лабораторий и проведение мероприятий по охране труда и технике безопасности.

Бактериологические лаборатории используют следующие методы анализа: микроскопические, паразитологические, культуральные с идентификацией микроорганизмов по фенотипическим и биохимическим показателям, физико-химические (включая масс-спектрометрические), вирусологические, молекулярно-биологические и иммунологические исследования (включая серологические).

Одна из проблем бактериологического анализа - это то, что многие виды бактерий являются условно-патогенными (симбиотами - живут на кожном покрове и слизистых оболочках человека, не вызывая заболеваний). Задача врача-бактериолога состоит в том, чтобы дифференцировать патогенные бактерии (вызывающие болезнь) от симбиотических, которые могут контаминировать (инфицировать) пробу с биологическим материалом во время ее получения. Некоторые жидкости организма человека в норме стерильны. К ним относятся кровь, спинномозговая и суставная жидкости, а также пунктаты из плевральной и перикардиальной полостей. В связи с этим бактерии, выделенные из этого биоматериала, всегда являются патогенными.

После идентификации патогенного вида или штамма микроорганизма необходимо установить его чувствительность к антибактериальным средствам. Эта информация поможет назначить наиболее эффективную терапию, направленную на уничтожение патогена.

Кроме диагностических задач, бактериологические лаборатории ЛПУ выполняют важную функцию инфекционного контроля и предотвращения внутрибольничных инфекций. Не менее значительна роль лаборатории в контроле за состоянием операционных, перевязочных, процедурных кабинетов.

1.2.4. ПЦР-ЛАБОРАТОРИЯ

ПЦР представляет собой процесс многократного увеличения числа копий (амплификации) фрагмента ДНК-мишени (ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота) (кДНК), катализируемый in vitro термостабильной ДНК-полимеразой, и позволяет обнаружить специфичный участок генома биологического агента. ПЦР обладает высокой чувствительностью, специфичностью, обеспечивает возможность работы практически с любым видом биологического материала и объектами окружающей среды, позволяет выполнять анализ в течение 4-8 ч. С помощью ПЦР можно выявить вирусные гепатиты B, C, D, G; урогенитальные инфекции; инфекции, передаваемые половым путем, папиломмавирусные, TORCH и герпес-вирусные инфекции; оппортунистические, гнойно-септические, внутриутробные, кишечные и нейроинфекции; инфекции дыхательных путей. ПЦР-диагностика очень эффективна, поскольку позволяет выявить возбудителя инфекции и диагностировать заболевание еще до его клинических проявлений.

ПЦР-лаборатория может быть создана в составе КДЛ, или на базе бактериологической лаборатории, или как самостоятельное подразделение ЛПУ. Работу с патогенными биологическими агентами (ПБА) III-IV групп патогенности методом ПЦР проводят только при наличии в организации лицензии на деятельность, связанную с использованием возбудителей инфекционных заболеваний человека и санитарно-эпидемиологического заключения о возможности проведения соответствующих работ в лаборатории, выданных в установленном порядке.

В ПЦР-лаборатории работают врачи клинической лабораторной диагностики, врачи-бактериологи и средний медицинский персонал, имеющие соответствующую профессиональную подготовку и прошедшие дополнительное обучение методу ПЦР.

В ПЦР-лаборатории могут использоваться три основных метода:

  1. классическая ПЦР электрофоретической детекцией результатов анализа;

  2. ПЦР в режиме реального времени (Real-time PCR);

  3. ПЦР с флюоресцентной детекцией по конечной точке.

При наличии соответствующего оборудования ПЦР-лаборатория может использовать и другие молекулярно-генетические методы:

  1. секвенирование по Сэнгеру;

  2. высокопроизводительное секвенирование (пиросеквенирование);

  3. гибридизационные микрочипы высокой плотности;

  4. микрофлуидальные чипы;

  5. мультиплексный анализ.

1.2.5. ЦЕНТРАЛИЗОВАННАЯ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКАЯ ЛАБОРАТОРИЯ

Централизацию необходимо рассматривать как многоуровневую и многогранную бизнес-модель производства лабораторных услуг населению.

С позиции органов управления здравоохранением централизация лабораторных исследований - это способ пространственной организации одного из видов медицинской помощи (лабораторных услуг) населению путем концентрации ресурсов, ориентированный на снижение издержек за счет эффектов, связанных с увеличением масштаба производства.

С позиции заказчика (ЛПУ-объекта централизации) централизация лабораторных исследований - это передача выполнения всех или отдельных видов исследований (аутсорсинг) стороннему исполнителю лабораторных услуг (централизованной КДЛ). Правовой основой лабораторной централизации является юридический договор с централизованной КДЛ на оказание лабораторных услуг.

С позиции врача-клинициста централизация лабораторных исследований - это возможность назначать и использовать в диагностике и лечении пациента результатов высокоинформативных лабораторных тестов в соответствии с требованиями клинических руководств и приказов Минздрава России.

С позиции исполнителя лабораторных услуг (централизованной КДЛ) централизация - это способ организации выполнения лабораторных услуг для различных ЛПУ путем концентрации ресурсов и создания крупномасштабного производства анализов на базе централизованной КДЛ. Для централизованной КДЛ централизация - это и процесс взаимодействия с внешним заказчиком на пре- и постаналитических этапах оказания лабораторных услуг.

В отношении населения страны централизация - это единственная возможность обеспечить относительно равноправный доступ любого гражданина к любым видам качественных лабораторных услуг или акт социальной справедливости.

Практическое осуществление централизации затрагивает все уровни оказания медицинской помощи, различные типы ЛПУ, зависит от географических особенностей региона, которые могут вносить существенные коррективы в выбор модели централизации.

Централизация может быть осуществлена между тремя различными уровнями оказания медицинской помощи в любых сочетаниях (амбулаторно-поликлинический - стационарный - реабилитационный; амбулаторно-поликлинический - стационарный; амбулаторно-поликлинический - реабилитационный; стационарный - реабилитационный).

Централизация лабораторных исследований может быть осуществлена как для ЛПУ различных уровней оказания медицинской помощи, так и для ЛПУ одного уровня (на базе КДЛ центральной районной больницы - для поликлиник, родильного дома, женских консультаций, фельдшерско-акушерских пунктов; на базе КДЛ областной клинической больницы - для городских больниц, поликлиник, диспансеров, реабилитационных центров; между несколькими центральными районными больницами региона; между несколькими городскими больницами на базе КДЛ одной из них; на базе КДЛ диагностического центра для амбулаторно-поликлинических учреждений и т.д.).

Создание централизованной КДЛ является практической базой для реализации концепции централизации лабораторных исследований. Амбулаторно-поликлинические ЛПУ, ЛПУ первичного звена оказания медицинской помощи, диспансеры и медсанчасти без стационара, центры реабилитации, санаторно-курортные учреждения, имеющие в своей организационно-штатной структуре КДЛ или не имеющие КДЛ, должны быть основными объектами централизации лабораторных исследований.

КДЛ крупных ведущих многопрофильных ЛПУ региона, оказывающих специализированную и высокотехнологичную медицинскую помощь населению, являются предпочтительной клинической базой для централизации лабораторных исследований.

При разработке модели централизации возникает необходимость в многоуровневости самих централизованных КДЛ, когда в лаборатории I уровня централизуются наиболее массовые гематологические, общеклинические, биохимические, коагулологические, иммуногематологические лабораторные тесты; в лабораториях II уровня - гематологические, общеклинические, цитологические, биохимические, коагулологические, иммуногематологические, иммунологические, серологические, бактериологические и другие лабораторные тесты; в лабораториях III уровня - специализированные, высокотехнологичные и редкие лабораторные анализы. Такая модель централизации предусматривает последовательное взаимодействие между централизованными КДЛ различного уровня: КДЛ I уровня - КДЛ II уровня - КДЛ III уровня. Однако временные ограничения доставки проб биологического материала в централизованную КДЛ могут вносить существенные изменения в последовательность взаимодействия между КДЛ различного уровня, и тогда ЛПУ могут сразу направлять пробы биологического материала в КДЛ II или III уровня, или КДЛ I уровня могут сразу взаимодействовать с КДЛ III уровня, или КДЛ II или III уровня могут получать пробы биологического материала непосредственно из ЛПУ, не имеющих лабораторий, и выполнять функции лаборатории всех трех уровней. Примеры моделей централизации с учетом уровней централизованных КДЛ приведены на рис. 1.3-1.4.

pic 0003
Рис. 1.3. Модель централизации на уровне центральной районной и областной больниц
pic 0004
Рис. 1.4. Модель централизации с учетом уровней централизованных клинико-диагностических лабораторий (КДЛ)

Централизованные КДЛ представляют собой крупномасштабные производства с высоким уровнем автоматизации и информатизации, использующие высокопроизводительные лабораторные анализаторы и выполняющие широкий спектр лабораторных тестов для различных ЛПУ. Они обеспечивают доступность широкого спектра современных высокоинформативных лабораторных тестов высокого качества для врачей и различных социальных слоев населения страны.

Перечень клинических лабораторных исследований, подлежащих централизации, определяется органом управления здравоохранением региона (департаментом, министерством, отделом) в зависимости от целей централизации, ее задач, финансовых возможностей, оснащения централизованной КДЛ и запросов врачей-клиницистов и населения. Централизации подлежат следующие виды лабораторных исследований.

  1. Гематологические.

  2. Иммуногематологические.

  3. Общеклинические.

  4. Цитологические.

  5. Биохимические.

  6. Коагулологические.

  7. Исследование гормонов и онкомаркеров.

  8. Серологические.

  9. Бактериологические.

  10. ПЦР-исследования.

  11. Генетические.

В организационном плане централизованная КДЛ может включать следующие отделы:

  • гематологии;

  • цитологии;

  • иммуногематологии;

  • общеклинических исследований;

  • биохимических исследований;

  • гемостаза;

  • гормональных исследований;

  • иммунологических исследований;

  • серологических исследований;

  • бактериологических исследований;

  • ПЦР-исследований;

  • генетических исследований.

Перечень отделов в централизованной КДЛ определяется соответствующим региональным органом управления здравоохранением и заведующим КДЛ в соответствии с решаемыми задачами.

Организационно-штатная структура централизованной КДЛ определяется из расчета временных затрат для выполнения лабораторных исследований с учетом количества проб (лабораторных исследований), доставляемых из прикрепленных ЛПУ, оснащенностью анализаторами, уровнем автоматизации, требованиями к организации производства анализов и сроками получения результатов анализов. Конкретные нормы нагрузки специалистов централизованной КДЛ определяются комиссией ЛПУ путем реального хронометрирования времени на проведение лабораторных исследований и утверждаются главным врачом.

Врачи клинической лабораторной диагностики, биологи и средний медицинский персонал централизованной КДЛ должны иметь специальную подготовку по разделам клинической лабораторной диагностики.

В централизованной КДЛ рекомендуется создать следующие отделы и ввести дополнительные номенклатурные должности.

  1. Административный отдел, который предназначен для обеспечения сервиса лабораторных услуг, их рекламы и продвижения среди страховых компаний и населения, а также обеспечения деятельности производственных отделов КДЛ и процедурных кабинетов. На данный отдел возлагается задача поддержания информационного взаимодействия с прикрепленными ЛПУ, врачами-клиницистами, страховыми компаниями, частными клиентами и заведующим КДЛ, руководителями отделов и специалистами лаборатории, фирмами - поставщиками реактивов и расходных материалов и отделом логистики, бухгалтерией. В составе отдела необходимо иметь специалиста по поддержке лабораторных информационных систем (ЛИС) и инженера по обслуживанию лабораторного оборудования. Для решения задач информационной поддержки необходимо организовать в рамках отдела справочный центр (кол-центр) с соответствующим для решения этих задач техническим обеспечением.

  2. Должность заместителя заведующего централизованной КДЛ по качеству, который отвечает за организацию процесса производства результатов анализов в лаборатории, обеспечение их качества и своевременности, и выполняет функции заведующего централизованной КДЛ в случае его отсутствия.

  3. Должности регистратора для обеспечения процесса регистрации поступающих из прикрепленных ЛПУ бланков-заявок (направлений) в ЛИС и их штрихкодирования, а также распределения (раскладки) полученных из КДЛ бланков результатов лабораторных анализов по папкам для их последующей отправки в ЛПУ и/или выдачи результатов в электронном виде.

  4. В административную структуру централизованной КДЛ рекомендуется внести от одного до нескольких процедурных кабинетов, подчиненных заведующему лабораторий для взятия и сбора проб биологического материала для амбулаторных пациентов ЛПУ, на базе которого функционирует централизованная КДЛ, а также обслуживания частных пациентов по оказанию платных услуг.

  5. Отдел обеспечения закупок и логистики, который должен своевременно формировать заявки на реактивы и расходные материалы, одноразовые фирменные приспособления для взятия проб крови и сбора других видов биологического материала, лабораторное оборудование, рекламные материалы, бланки-заявки, канцелярские принадлежности, запрашивать коммерческие предложения у фирм-поставщиков, осуществлять текущие закупки небольших партий реактивов, расходного материала и другой продукции, готовить предложения по проведению конкурсов и тендеров на реактивы, расходные материалы и лабораторное оборудование. Помимо руководителя, в отделе может быть введено до нескольких штатных единиц специалистов.

    Рекомендуемая административная структура централизованной КДЛ приведена на рис. 1.5.

    pic 0005
    Рис. 1.5. Рекомендуемая административная структура централизованной клинико-диагностической лаборатории (КДЛ)
    1. Бухгалтерия должна обеспечивать финансовое сопровождение деятельности централизованной КДЛ, включая: своевременное выставление счетов страховым компаниям и контроль их оплаты, проверку и оплату счетов по закупке небольших партий реактивов и расходного материала, получение денег за оказание платных лабораторных услуг (для этого в составе бухгалтерии должна быть создана касса), учет амортизации лабораторного оборудования, оплату труда сотрудников лаборатории, учет и списание реактивов, одноразовых фирменных приспособлений для взятия проб крови и сбора других видов биологического материала, расходных материалов, контроль за использованием и расходованием финансов, обеспечение других аспектов деятельности лаборатории (например, аренда оборудования или помещений, транспортные и командировочные расходы и т.д.).

Возможно введение в организационную структуру централизованной КДЛ и других отделов, кабинетов и штатных единиц в зависимости от конкретных задач, стоящих перед лабораторией.

Централизованная КДЛ должна быть укомплектована специалистами различного уровня квалификации, которые отвечают за проведение исследований поступающих проб биологического материала и обеспечивающих процесс производства в КДЛ.

  1. Централизованную КДЛ должен возглавлять заведующий - высококвалифицированный врач клинической лабораторной диагностики с высшим медицинским образованием, имеющий послевузовское профессиональное и/или дополнительное профессиональное образование, сертификат специалиста и стаж работы по специальности не менее 5 лет. При организации централизованной КДЛ заведующему лабораторией рекомендуется ознакомиться с опытом уже функционирующих централизованных КДЛ путем их посещения или в процессе рабочего прикомандирования.

  2. Заместитель заведующего централизованной КДЛ по качеству - высококвалифицированный врач клинической лабораторной диагностики с высшим медицинским образованием, имеющий послевузовское профессиональное и/или дополнительное профессиональное образование, сертификат специалиста.

  3. Руководитель отдела (отделов) централизованной КДЛ - профессионально подготовленный врач клинической лабораторной диагностики или биолог, имеющий соответствующий уровень профессиональной подготовки и квалификации и практический опыт работы в КДЛ.

  4. Врач клинической лабораторной диагностики - специалист с высшим медицинским образованием, освоивший программу подготовки по клинической лабораторной диагностике и получивший сертификат специалиста.

  5. Биолог - специалист, имеющий высшее профессиональное образование по специальности «биология», «биохимия», «биофизика», «генетика», «микробиология», «фармация» и дополнительное профессиональное образование в соответствии с направлением профессиональной деятельности.

  6. Медицинский технолог - специалист со средним медицинским образованием по специальности «лабораторная диагностика» (квалификация «медицинский технолог»).

  7. Медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант) - специалист со средним медицинским образованием по специальности «лабораторная диагностика».

  8. Медицинская сестра процедурного кабинета - специалист со средним медицинским образованием по специальности «сестринское дело», прошедшая дополнительную профессиональную подготовку и получившая квалификацию «процедурная медицинская сестра».

  9. Руководитель административного отдела централизованной КДЛ - специалист, имеющий высшее медицинское или немедицинское профессиональное образование и соответствующий опыт работы.

  10. Регистратор - специалист со средним медицинским, немедицинским профессиональным образованием или не имеющий профессионального образования.

  11. Санитарка - сотрудник без профессионального образования.

  12. Специалист административного отдела по координации лабораторного сервиса - специалист с высшим немедицинским, средним медицинским или немедицинским образованием.

  13. Специалист административного отдела по поддержке ЛИС - специалист с высшим образованием, соответствующим профилю деятельности, имеющий опыт работы в данной области.

  14. Инженер по обслуживанию лабораторного оборудования - специалист с высшим техническим образованием, прошедший дополнительное обучение по лабораторному оборудованию и имеющий опыт работы в данной области.

  15. Специалист по разработке номенклатуры, стоимости услуг, рекламе - специалист с высшим образованием, соответствующим профилю деятельности, имеющий опыт работы в данной области.

  16. Руководитель отдела обеспечения закупок и логистики - специалист с высшим образованием, соответствующим профилю деятельности, имеющий опыт работы в данной области.

  17. Специалист отдела обеспечения закупок и логистики - специалист с высшим или средним медицинским или немедицинским образованием, имеющий опыт работы в данной области.

  18. Курьер - сотрудник без профессионального образования.

  19. Водитель - сотрудник, имеющий соответствующие документы для управления имеющимся автомобильным транспортом.

1.3. ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К РАЗМЕЩЕНИЮ МЕДИЦИНСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

Все медицинские лаборатории размещаются в специально оборудованных помещениях. Вместе с тем разнообразие материалов исследуемых проб биологического материала, наличие в них ПБА, особенности технологий, используемых для анализа, могут предъявлять особые требования к размещению лабораторий.

1.3.1. ТРЕБОВАНИЯ К РАЗМЕЩЕНИЮ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

КДЛ должна размещаться в специально оборудованных помещениях, полностью соответствующих требованиям правил по устройству, эксплуатации и технике безопасности. Лаборатория экспресс-диагностики выполняет лабораторные исследования, практически аналогичные обычной КДЛ, использует аналогичные технологии анализа, поэтому требования к ее размещению идентичны КДЛ. Основные требования к размещению КДЛ регламентируются следующими документами.

  1. Правила устройства, техники безопасности и производственной санитарии при работе в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений системы Минздрава СССР (Москва, 1970).

  2. Правила устройства, техники безопасности, производственной санитарии, противоэпидемического режима и личной гигиены в лабораториях (отделах, отделениях) санитарно-эпидемиологических учреждениях системы Минздрава СССР (Москва, 1981).

  3. Строительные нормы и правила «Общественные здания и сооружения» СНиП 2.08.02-89. Приложение «Пособие по проектированию учреждений здравоохранения». В 5 т. Т. 1, 3, 5. Госгражданстрой (Москва, 1989).

  4. Санитарные правила «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами» СП 1.2.731-99, утвержденные постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 3 февраля 1999 г. № 4.

  5. СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность».

Общие требования к устройству и содержанию помещений КДЛ, которые не выполняют исследования, связанные с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами, включают следующие основные положения.

  1. Для организации работы лаборатории обеспечивается необходимое количество помещений. Устройство, состав помещений и площади КДЛ следует принимать согласно строительным нормам и правилам, утвержденным в установленном порядке.

  2. Помещения КДЛ можно использовать только по их прямому назначению, проведение в них каких-либо других работ не разрешается.

  3. Размещение КДЛ в подвальных и полуподвальных помещениях запрещается.

  4. Лаборатория должна иметь два входа (служебный и для посетителей).

  5. КДЛ, как правило, должна быть обеспечена водопроводом, горячим водоснабжением, канализацией, центральным отоплением и газом.

  6. Помещения лаборатории должны освещаться непосредственно прямым естественным светом. Отношение площади окон к площади пола должно быть 1:4 или 1:5.

  7. Поверхности стен и потолков должны быть гладкими, допускающими легкую очистку их от пыли или влажную уборку помещений.

  8. В производственных помещениях лаборатории должны быть оборудованы водопроводные раковины с подводкой холодной и горячей воды для мытья рук персонала и раковины, предназначенные для мытья лабораторного инвентаря и посуды.

  9. Все помещения лаборатории должны иметь естественное и искусственное освещение, отвечающее требованиям, предусмотренным строительными нормами и правилами.

  10. Помещения лаборатории должны быть оборудованы приточно-вытяжной вентиляцией с механическим побуждением. Вентиляционные устройства должны размещаться так, чтобы шум от них не мешал работе персонала. Вентиляция во всех помещениях лаборатории должна включаться до начала работы.

  11. Независимо от наличия приточно-вытяжной вентиляции должны быть оборудованы легко открывающиеся фрамуги или форточки во всех помещениях, кроме специальных боксов бактериологической лаборатории. В летнее время окна производственных помещений должны снабжаться сетками от мух.

  12. Стены в лабораторных помещениях должны быть облицованы глазурованной плиткой на высоту 1,5 м или выкрашены масляной краской светлых тонов; в процедурных - белой плиткой или плиткой из гладких синтетических материалов.

  13. В помещениях без облицовки стен облицовку следует предусматривать в местах установки санитарно-технических приборов, а также оборудования, вызывающего увлажнение стен, - на высоту 1,6 м и шириной, равной ширине приборов и оборудования плюс 15 см с каждой боковой стороны.

  14. Ширина основных проходов к рабочим местам или между двумя рядами оборудования должна быть не менее 1,5 м с учетом выступающих конструкций стен.

  15. Помещения лабораторий должны располагаться по ходу производства анализов и обеспечиваться рациональным размещением в отношении основных потоков технологического процесса.

  16. Двери в производственных помещениях лабораторий должны открываться в сторону выхода из помещения.

  17. Полы в лабораторных помещениях покрываются линолеумом или релином, в боксах - гладкой плиткой.

  18. Нагревательные приборы отопления должны иметь гладкую поверхность и быть доступны для легкой очистки.

  19. В помещениях для исследований мочи и кала, биохимических, серологических и гормональных исследований следует устанавливать вытяжные шкафы с механическим побуждением.

  20. Створки (дверцы) вытяжного шкафа во время работы следует держать максимально закрытыми (опущенными с небольшим зазором внизу для тяги). Открывать их можно только во время обслуживания приборов и установок. Приподнятые створки должны прочно укрепляться приспособлениями, исключающими неожиданное падение этих створок.

  21. Скорость движения воздуха в полностью открытых створках вытяжного шкафа должна быть 0,3 м/с, при работе с ртутью - 0,4 м/с, с сероводородом - 0,7 м/с.

  22. Рабочие поверхности столов следует изготавливать из водонепроницаемого, кислото- и щелочеустойчивого, несгораемого материала, не портящегося от обработки дезинфицирующими растворами.

  23. Строительство новых и реконструкция существующих клинико-диагностических лабораторий допускаются только при наличии утвержденного проекта, согласованного в установленном порядке.

  24. Вновь выстроенные или реконструированные КДЛ в установленном порядке принимаются в эксплуатацию специальной комиссией.

Более детальные требования к системам обеспечения КДЛ приведены ниже.

Система вентиляции. КДЛ должна быть оборудована приточно-вытяжной вентиляцией.

  • Система вентиляции помещений КДЛ должна обеспечивать по отношению к окружающим помещениям подпор воздуха.

  • Вентиляция помещений бактериологической лаборатории должна обеспечивать по отношению к окружающим помещениям разряжение воздуха (за исключением боксированного помещения, где должен быть обеспечен подпор воздуха).

  • Воздух подается в верхнюю зону помещения, а удаляется из двух зон: 40% - из верхней зоны (на 10 см от потолка), 60% - из нижней зоны (60 см от пола).

  • Кратность воздухообмена в моечных КДЛ и бактериологической лаборатории составляет: приток - 3, вытяжка - 4.

  • Кратность воздухообмена в других помещениях КДЛ, автоклавной бактериологической лаборатории: активный приток отсутствует, вытяжка - 3.

  • В боксированном помещении бактериологической лаборатории: приток - 3, активной вытяжки нет.

  • В помещениях для серологических исследований, других помещениях «грязной» зоны бактериологической лаборатории: приток - 5, вытяжка - 6.

  • В помещениях для исследования кала и мочи должны быть установлены вытяжные шкафы и подключены к системе вентиляции.

Освещение. Освещенность рабочих поверхностей должна составлять: в помещения для общеклинических, цитологических, биохимических исследований, исследований кала, центрифужной, средоварке, рабочих комнатах «грязной» зоны бактериологической лаборатории - 300 люкс; в помещениях для серологических исследований, боксированном помещении бактериологической лаборатории - 500 люкс; моечных - 200 люкс; в раздевалке и комнате персонала - 100 люкс.

Электроснабжение. Электроснабжение играет существенную роль в обеспечении бесперебойной работы оборудования КДЛ и всего производственного процесса в целом. Именно поэтому очень важно при размещении КДЛ правильно рассчитать общую потребляемую электрическую мощность в максимальной конфигурации лаборатории и обеспечить ее подводку в помещения лаборатории. Это позволит в дальнейшем избежать неоправданных сбоев в работе оборудования и незапланированных остановок в производстве лабораторных анализов.

Наиболее энергоемкими по отношению к электроснабжению в КДЛ являются система вентиляции (может потребовать 40-50 кВА), дистилляторы, автоклавы, сухожаровые шкафы.

Заземление. Не менее важно для обеспечения бесперебойной работы оборудования КДЛ наличие правильного и адекватного заземления.

Более детальные требования к размещению КДЛ можно найти в руководящих документах, приведенных в начале раздела.

1.3.2. ТРЕБОВАНИЯ К РАЗМЕЩЕНИЮ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Бактериологические лаборатории исследуют пробы биологического материала, потенциально содержащие ПБА. ПБА - патогенные для человека микроорганизмы (бактерии, вирусы, хламидии, риккетсии, простейшие, грибы, микоплазмы), генно-инженерно-модифицированные микроорганизмы, яды биологического происхождения (токсины), гельминты, а также любые объекты и материалы (включая полевой, клинический, секционный), подозрительные на содержание перечисленных агентов.

Проведение бактериологического исследования сопряжено с необходимостью обеспечения соблюдения правил биологической безопасности, а также определенных требований к организации и проведению анализа в целях предотвращения контаминации исследуемых проб и получения ложноположительных и ложноотрицательных результатов. Именно поэтому требования к размещению лабораторий, работающих с ПБА (это обычно бактериологические лаборатории, лаборатории, осуществляющие серологическую и молекулярно-генетическую диагностику инфекционных заболеваний), значительно строже, чем для КДЛ. Требования к помещениям бактериологической лаборатории регламентированы санитарно-эпидемиологическими правилами «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней» СП 1.3.2322-08, утвержденными Постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 28 января 2008 г. № 4». Они включают приведенные ниже положения.

Требования к помещениям и оборудованию лабораторий, работающих с ПБА

  1. Лаборатории, работающие с ПБА, должны располагаться в отдельно стоящем здании или изолированной части здания.

  2. Размещение лабораторий микробиологического профиля в жилых зданиях запрещается.

  3. Производственные лаборатории, проводящие работу с ПБА III-IV групп патогенности, должны располагаться в отдельно стоящих зданиях, не связанных с производственными помещениями, или изолированном блоке здания, имеющем отдельный вход, а производственные лаборатории, работающие с ПБА IV группы, могут располагаться в изолированном блоке производственного корпуса.

  4. Диагностические лаборатории, проводящие исследования с ПБА III-IV групп патогенности, должны иметь два входа: один для сотрудников, другой - для доставки материала на исследование. (Допускается получение материала через передаточное окно.)

  5. Лаборатория должна быть обеспечена водопроводом, канализацией, электричеством, отоплением и вентиляцией.

    Все помещения лаборатории должны иметь естественное и искусственное освещение в зависимости от вида работ, в соответствии с требованиями действующих нормативных документов.

  6. Помещения лаборатории должны быть разделены на «заразную» и «чистую» зоны. Планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность продвижения ПБА.

  7. Лаборатории должны иметь набор рабочих комнат и других помещений в соответствии с производственной мощностью и номенклатурой выполняемых исследований.

  8. В лабораториях, проводящих работу с ПБА III-IV групп патогенности, в «чистой» зоне располагаются:

    • комната (гардероб) для верхней одежды;

    • помещения для подготовительных работ (препараторская, моечная, приготовление и разлив питательных сред и др.);

    • стерилизационная;

    • помещение с холодильной камерой или холодильниками для хранения питательных сред и диагностических препаратов;

    • комната отдыха и приема пищи;

    • комната для работы с документацией и литературой;

    • кабинет заведующего;

    • комната для надевания рабочей одежды;

    • подсобные помещения;

    • туалет.

      В «заразной» зоне:

    • помещение для приема и регистрации материала;

    • боксированные помещения или помещения, оснащенные боксами биологической безопасности;

    • комнаты для бактериологических исследований;

    • комнаты для серологических исследований;

    • комната для люминесцентной микроскопии;

    • комната для зооэнтомологических работ;

    • комната для гельминтологических исследований;

    • термостатная комната;

    • автоклавная для обеззараживания.

  9. В лабораториях, проводящих исследования с ПБА IV группы патогенности, в «заразной» зоне располагаются:

    • комната для посевов;

    • комната для исследований с ПБА;

    • комната для обеззараживания и стерилизации.

      В «чистой» зоне лаборатории располагаются необходимые помещения из соответствующего раздела, приведенного в пункте 8.

  10. Во вновь строящихся и реконструируемых лабораториях следует предусмотреть:

    • оборудование душевой;

    • устройство автономной приточно-вытяжной вентиляции с установкой фильтров тонкой очистки воздуха, выбрасываемого из «заразной» зоны (или оборудование этих помещений боксами биологической безопасности).

  11. При размещении в одном блоке нескольких профильных лабораторий общими для них могут быть комната приема пищи, автоклавные, моечные, комнаты для приготовления питательных сред и другие вспомогательные помещения.

  12. При наличии в учреждении на одной территории нескольких лабораторий разрешается организация централизованных автоклавных и стерилизационных.

  13. В лабораториях со штатной численностью не более двух врачей, а также в лабораториях, работающих с ПБА IV группы патогенности, допускается установка в одном помещении автоклавов для обеззараживания и стерилизации. Обязательна маркировка автоклавов, столов, стеллажей и разделение движения инфекционного и чистого материала во времени.

  14. Внутренняя отделка помещений должна быть выполнена в соответствии с их функциональным назначением. Поверхность пола, стен, потолка в лабораторных помещениях «заразной» зоны должна быть гладкой, без щелей, легко обрабатываемой, устойчивой к действию моющих и дезинфицирующих средств, полы не должны быть скользкими.

  15. Окна и двери помещений «заразной» зоны лаборатории должны быть герметичными.

  16. Имеющаяся вытяжная вентиляция из «заразной» зоны лаборатории должна быть изолирована от других вентиляционных систем и оборудована фильтрами тонкой очистки воздуха.

    При использовании боксов биологической безопасности II класса система вытяжной вентиляции может быть использована без установки фильтров.

  17. Эксплуатация вентиляционных устройств проводится в соответствии с «Инструкцией по эксплуатации и контролю за эффективностью вентиляционных устройств на объектах здравоохранения» от 20 марта 1975 г. (Минздрав СССР, 1975).

  18. В условиях жаркого климата разрешается установка кондиционеров в рабочих комнатах и боксах. Во время работы с ПБА кондиционеры должны быть отключены.

  19. Лабораторная мебель в «заразной» зоне должна иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств. Поверхность столов не должна иметь швов и трещин.

  20. Ширина проходов к рабочим местам или между двумя рядами выступающего оборудования должна быть не менее 1,5 м (с учетом выступающих конструкций).

  21. Помещения, где проводится работа с живыми ПБА, должны быть оборудованы бактерицидными лампами в соответствии с «Методическими указаниями по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях» от 28 февраля 1995 г. № 11-16/03-06. (Минздравмедпром России, 1995).

    Лампы включают после влажной уборки. Вход в помещение разрешается только после проветривания не менее 30 мин. (При применении безозоновых бактерицидных ламп проветривания не требуется.) Необходимо вести учет времени работы каждой лампы с отметкой в журнале.

  22. При ориентации окон на юг необходимо предусмотреть защиту рабочих столов от попадания прямого солнечного света путем использования светозащитных пленок, жалюзи из материала, устойчивого к дезинфектантам.

  23. На окна цокольного и первого этажей следует устанавливать металлические решетки, не нарушающие правил пожарной безопасности. Наличие охранной сигнализации не исключает необходимости их установки.

  24. Помещения лабораторий должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых.

  25. Лаборатория должна быть обеспечена средствами пожаротушения.

Ниже приведены требования к размещению лаборатории, выполняющей исследования с использованием метода ПЦР.

1.3.3. ТРЕБОВАНИЯ К РАЗМЕЩЕНИЮ ПЦР-ЛАБОРАТОРИИ

Требования к размещению ПЦР-лаборатории регламентированы санитарно-эпидемиологическими правилами «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней» СП 1.3.2322-08 и методическими указаниями МУ 1.3.1888-04 «Организация работы при исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного патогенными биологическим агентами III-IV групп патогенности».

Требования к помещениям ПЦР-лаборатории

  1. Помещения ПЦР-лаборатории, проводящей работы с ПБА III-IV групп патогенности, должны соответствовать требованиям санитарно-эпидемиологических правил СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней».

  2. Проведение исследований методом ПЦР с ПБА III-IV групп патогенности допускается на базе действующих микробиологических (бактериологических, вирусологических, иммунологических и др.) лабораторий при условии соблюдения требований санитарно-эпидемиологических правил СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней» и организации в лаборатории самостоятельных или выделенных в составе других функциональных помещений рабочих зон, соответствующих этапам ПЦР-анализа.

  3. ПЦР-лаборатория должна включать следующий минимальный набор рабочих зон:

    • приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала;

    • выделения нуклеиновых кислот (НК);

    • приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР;

    • детекции продуктов амплификации методом электрофореза или гибридизационно-ферментного анализа (ГиФА).

  4. В ПЦР-лабораториях необходимо также предусмотреть наличие вспомогательных помещений [комнаты ведения учетных документов или ординаторской (комнаты персонала)[2]; кабинета заведующего лабораторией[2]; раздевалки для сотрудников[3]; комнаты приема пищи[3]; туалета[3]; подсобных (складских) помещений[3]].

  5. Необходимо наличие автоклавной комнаты для обеззараживания исследуемого материала. Она может быть общей с другими подразделениями учреждения при условии соблюдения требований биологической безопасности.

  6. Помещения для выполнения работ на этапах ПЦР-анализа должны быть боксированными (боксы с предбоксами).

  7. В зоне приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала проводят прием ПБА, пробоподготовку (сортировку, маркировку, центрифугирование и др.), хранение и первичную инактивацию остатков биоматериала дезинфицирующими средствами. Зону приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала располагают в комнате приема материала или в отдельном боксированном помещении. Здесь же можно проводить прием и обработку проб для исследования другими методами (бактериологическими, вирусологическими, иммунологическими и т.д.), при условии выделения отдельного оборудованного рабочего места для ПЦР-анализа.

  8. Зону выделения НК размещают в отдельном помещении. При организации ПЦР-лаборатории на базе действующей микробиологической лаборатории допускается выделение НК в помещениях, в которых проводят другие виды исследований, кроме генно-инженерных работ и работ по накоплению ПБА. В этом случае в помещении организуют рабочую зону для выделения НК, в которой располагают ПЦР-бокс или бокс биологической безопасности. В ПЦР-боксе (или боксе биологической безопасности) для выделения НК не допускается проведение других работ.

  9. В зоне приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР проводят приготовление ПЦР-смеси, внесение в пробирку для ПЦР выделенных препаратов ДНК или кДНК, обратную транскрипцию рибонуклеиновой кислоты (РНК) и амплификацию ДНК или кДНК. Помещение для приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР должно быть отдельным. Приготовление реакционных ПЦР-смесей проводят в ПЦР-боксе.

  10. При необходимости этап выделения НК может быть совмещен в одном помещении с этапом приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР при наличии в нем отдельных ПЦР-боксов (боксов биологической безопасности) - для подготовки реакционных ПЦР-смесей и для выделения НК.

  11. Зону детекции продуктов амплификации располагают в отдельном помещении, по возможности оснащенном ПЦР-боксом.

  12. При необходимости одновременного использования для детекции продуктов амплификации методов электрофореза и гибридизационного анализа следует выделить в помещении детекции отдельную рабочую зону для гибридизационного анализа. В этом случае оборудование и принадлежности для каждого вида детекции маркируют применительно к каждой зоне. Не допускается использовать для гибридизационного анализа пипетки и посуду, предназначенные для электрофореза.

  13. Планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность движения исследуемого материала. Следует полностью исключить воздухообмен между помещением детекции продуктов амплификации и другими помещениями.

  14. Лабораторию оборудуют водопроводом, канализацией, электричеством и отоплением в соответствии с санитарно-эпидемиологическими правилами СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней». Все помещения лаборатории обеспечивают достаточным естественным и искусственным освещением.

  15. При строительстве новых или реконструкции имеющихся ПЦР-лабораторий помещения оборудуют приточно-вытяжной или вытяжной вентиляцией. Разница в давлении воздуха в помещениях ПЦР-лаборатории достигается за счет различий в кратности воздухообмена в них. Кратность воздухообмена должна соответствовать значениям, приведенным в табл. 1.4.

    Таблица 1.4. Кратность воздухообмена в помещениях ПЦР-лаборатории

    Помещение

    Кратность воздухообмена, м3

    приток

    вытяжка

    Зона приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала

    5

    6

    Зона выделения НК

    5

    6

    Зона приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР

    5

    5

    Зона детекции продуктов амплификации

    5

    7

    1. При необходимости в ПЦР-лаборатории могут быть установлены кондиционеры в соответствии с СП 1.2.731-99 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами».

    2. Внутреннюю отделку помещений выполняют в соответствии с их функциональным назначением. Поверхности стен, пола и потолка в лабораторных помещениях должны быть гладкими, без щелей, легко обрабатываемыми, устойчивыми к действию моющих и дезинфицирующих средств. Полы не должны быть скользкими.

    3. Лабораторная мебель должна иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств. Поверхность столов не должна иметь трещин и швов.

    4. Помещения на всех этапах ПЦР-анализа оборудуют бактерицидными лампами в соответствии с «Методическими указаниями по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях» от 28 февраля 1995 г. № 11-16/03-06. Бактерицидные лампы в помещениях ПЦР-лаборатории устанавливают из расчета 2,5 Вт/м3.

    5. Помещения лаборатории должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых.

    6. ПЦР-лабораторию обеспечивают средствами пожаротушения.

1.3.4. ТРЕБОВАНИЯ К РАЗМЕЩЕНИЮ ЦЕНТРАЛИЗОВАННОЙ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Централизованная КДЛ должна иметь необходимый набор помещений, обеспечивающий противоэпидемический режим, а также санитарно-эпидемиологическое заключение на деятельность, связанную с возбудителями инфекционных заболеваний III-IV групп патогенности.

Вместе с тем принципы организации производственного процесса в централизованной лаборатории предъявляют совершенно другие требования к размещению. Время получения результата анализа (TurnAround Time - ТАТ) в связи с временными затратами на доставку проб в централизованную лабораторию, большим потоком проб имеет очень важное значение. Перемещение проб из одного помещения в другое, как это происходит в традиционной КДЛ, существенно удлиняет ТАТ. Именно поэтому кабинетно-коридорная модель расположения помещений является препятствием для сокращения ТАТ в централизованной КДЛ. Оптимальным решением является размещение всех анализаторов КДЛ для гематологических, биохимических, коагулологических и иммунохимических исследований в одном помещении. В связи с этим при разработке проекта размещения централизованной КДЛ необходимо планировать использование больших, просторных помещений площадью 300-500 м2 и более. В таких помещениях можно разместить параллельные поточные линии для гематологических, биохимических, коагулологических, иммунохимических, серологических и иммуногематологических анализов, а также станции для исследований мочи. В пространстве между поточными линиями необходимо организовать движение подготовленных к исследованиям проб биологического материала.

Кроме того, одновременное поступление большого количества проб в централизованную лабораторию требует наличие больших площадей для приема, регистрации и сортировки проб биологического материала.

1.4. ОСНАЩЕНИЕ МЕДИЦИНСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

Оснащение медицинских лабораторий является одной из наиболее актуальных и нерешенных проблем. Не существует единого документа, регламентирующего оснащение медицинских лабораторий. Для медицинских лабораторий государственных ЛПУ проблема оснащения решается путем обеспечения лабораторным оборудованием в рамках реализации различных национальных программ или утвержденных приказами Минздрава России стандартов оказания медицинской помощи по различным специальностям.

1.4.1. ОСНАЩЕНИЕ ЛАБОРАТОРИИ ЭКСПРЕСС-ДИАГНОСТИКИ

В настоящее время существует ряд приказов Минздрава России, которые в определенной степени регламентируют оснащение необходимым лабораторным оборудованием ЛПУ для выполнения неотложных и экстренных лабораторных исследований. Важнейшим из них является приказ Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 919н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи взрослому населению по профилю "анестезиология и реаниматология"». В приложении 3 данного приказа «Стандарт оснащения группы анестезиологии-реанимации для взрослого населения» указывается, что бригада должны быть оснащена автоматическим анализатором газового состава крови, кислотно-щелочного состояния, электролитов, уровня глюкозы из расчета один анализатор на палату пробуждения и операционный блок. Приложение 6. Стандарт оснащения отделения анестезиологии и реанимации для взрослого населения, который включает оснащение:

  1. отделения для профилактики и лечения боли и болезненных ощущений у пациентов при операциях, лечебных и диагностических процедурах с преднаркозной палатой и палатой пробуждения автоматическим анализатором газового состава крови, кислотно-щелочного состояния, электролитов, уровня глюкозы из расчета один анализатор на палату пробуждения и операционный блок (при отсутствии палат для реанимации и интенсивной терапии);

  2. отделения анестезиологии-реанимации (отделение реанимации с палатами интенсивной терапии) автоматическим анализатором газового состава крови, кислотно-щелочного состояния, электролитов, уровня глюкозы, осмолярности из расчета один анализатор на отделение, тромбоэластографом и онкометром - по одному на отделение.

Таким образом, перечень оборудования и, соответственно, выполняемых видов анализов для отделения анестезиологии-реанимации ограничен узким спектром лабораторных показателей, среди которых нет таких важных, как уровень гемоглобина, креатинина, билирубина, лактата, тропонина, D-димера, число лейкоцитов, тромбоцитов, величина АЧТВ.

В приложении 3 к Порядку оказания скорой медицинской помощи, утвержденному приказом Минздравсоцразвития России от 1 ноября 2004 г. № 179, приведен «Стандарт оснащения стационарного отделения скорой медицинской помощи лечебно-профилактического учреждения». Этот приказ впоследствии изложен в новой редакции в виде приказа Минздравсоцразвития России от 2 августа 2010 г. № 586н и дополнен приказом Минздравсоцразвития России от 15 марта 2011 г. № 202н, в которых относительно оснащения кабинета клинико-лабораторной диагностики приведен перечень лабораторного оборудования, представленный в табл. 1.5.

Таблица 1.5. Перечень оборудования для оснащения кабинета клинико-лабораторной диагностики

№ п/п

Оборудование

Количество поступающих больных в сутки

50

150

200

1

Анализатор гематологический автоматический

1

1

1

2

Анализатор биохимический автоматический

1

1

1

3

Анализатор кислотно-щелочного и газового состава крови (пункт 70 приказа Минздравсоцразвития России от 15 марта 2011 г. № 202н)

1

1

1

4

Анализатор мочи скрининговый на полосках

1

1

1

5

Устройство для фиксации и окраски мазков (стейнер)

1

1

1

6

Коагулометр автоматический, анализатор свертываемости, анализатор гемостаза

1

1

1

7

Центрифуга лабораторная

1

1

1

8

Микроскоп бинокулярный

1

2

2

9

Осветитель для микроскопов

1

2

2

10

Мебель для лабораторий

1

1

1

11

Термостат воздушный и суховоздушный

1

1

1

12

Контейнер для заготовки, хранения и транспортировки крови и биоматериала

1

2

2

13

Анализатор уровня глюкозы в крови (глюкометр), экспресс-анализатор портативный

1

1

1

14

Счетчик лейкоцитарной формулы

1

1

1

15

Колориметр фотоэлектрический

1

1

1

16

Весы лабораторные

1

1

1

17

Холодильник медицинский

1

1

1

18

Шкаф сушильно-стерилизационный

1

1

1

19

Шкаф медицинский

1

1

1

20

Столик инструментальный

1

1

1

21

Облучатель-рециркулятор воздуха

1

1

1

22

Емкость для сбора отходов

По потребности

По потребности

По потребности

Приказ от 30 декабря 2009 г. № 1044н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи больным с сердечно-сосудистыми заболеваниями, требующими диагностики или лечения с применением хирургических и/или рентгеноэндоваскулярных методов» содержит «Стандарт оснащения организации, оказывающей медицинскую помощь по профилю "сердечно-сосудистая хирургия"». Согласно стандарту, операционная для оказания медицинской помощи детям с врожденными пороками сердца (из расчета 20 коек) должна иметь следующее лабораторное оборудование:

  • анализатор кислотно-основного равновесия;

  • портативный аппарат для измерения активированного времени свертывания;

  • портативный анализатор газового состава крови (газы крови, КОС, электролитный состав) (один на две смежные операционные);

  • аппарат для измерения АСТ.

Операционная кардиохирургического отделения (из расчета 20 коек):

  • портативный аппарат для измерения активированного времени свертывания;

  • портативный анализатор газового состава крови (газы крови, КОС, электролитный состав) (один на две смежные операционные).

Операционная и отделение хирургического лечения сложных нарушений ритма и электрокардиостимуляции (из расчета 20 коек):

  • портативный анализатор газового состава крови (газы крови, КОС, электролитный состав) (один на две смежные операционные).

В приказе Минздравсоцразвития России от 1 июня 2010 г. № 409н «Об утверждении Порядка оказания неонатологической медицинской помощи» представлен «Стандарт оснащения отделения реанимации и интенсивной терапии для новорожденных (из расчета на шесть коек)». Лабораторное оборудование включает:

  • аппарат для определения КОС;

  • аппарат для определения электролитов;

  • аппарат для определения билирубина в капиллярной крови;

  • систему чрескожного мониторирования газового состава крови;

  • тест-полоски для глюкометра, реактивы для аппаратов в целях определения КОС и электролитов в крови.

Приказ Минздравсоцразвития России от 2 августа 2010 г. № 586н «О внесении изменений в Порядок оказания скорой медицинской помощи», утвержденный приказом Минздравсоцразвития России от 11 ноября 2004 г. № 179, содержит «Стандарт оснащения стационарного отделения скорой медицинской помощи». Лабораторное оборудование включает следующие анализаторы:

  • анализатор гематологический автоматический;

  • анализатор для диагностики неотложных состояний;

  • коагулометр автоматический, анализатор свертываемости, анализатор гемостаза;

  • анализатор уровня глюкозы в крови (глюкометр), экспресс-анализатор портативный.

Стандарт дополнительного оснащения операционного отделения для противошоковых мероприятий, определенный приказом Минздравсоцразвития России от 15 декабря 2009 г. № 991н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи пострадавшим с сочетанными, множественными и изолированными травмами, сопровождающимися шоком», предусматривает установку только анализатора кислотно-основного равновесия крови.

Важнейшими недостатками приведенных приказов является отсутствие регламентации того, где должно устанавливаться данное лабораторное оборудование и кто на нем должен работать. Кроме того, совершенно очевидно, что перечень оборудования составлялся без участия специалистов клинической лабораторной диагностики и поэтому имеет целый ряд существенных дефектов.

Лаборатория экспресс-диагностики должна иметь собственные аналитические приборы и системы. При выборе оборудования для оснащения экспресс-лабораторий в многопрофильных лечебных учреждениях с большим спектром нозологических форм необходимо учитывать структуру выполняемых лабораторией исследований, которая включает:

  • гематологические исследования - 23-26%;

  • иммуногематологические исследования - 1,0-1,5%;

  • общеклинические исследования - 5-7%;

  • биохимические исследования - 58-65%, из них 24-32% - исследование КОС и электролитов;

  • коагулологические исследования - 6-8%;

  • лекарственный мониторинг - 0,2-0,4%.

Для исследований необходим следующий перечень лабораторного оборудования:

  1. гематологический анализатор на 22-27 параметров с возможностью дифференциации пяти фракций лейкоцитов (нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты, лимфоциты);

  2. лабораторный микроскоп;

  3. анализатор мочи на тестовых полосках;

  4. биохимический автоматический анализатор производительностью до 200 тестов в час или полуавтоматический фотометр;

  5. анализатор для определения кардиомаркеров (тропонин, миоглобин) и D-димера;

  6. анализатор уровня глюкозы;

  7. анализатор электролитов (калия, натрия, кальция, хлора);

  8. анализатор КОС и газового состава крови;

  9. осмометр;

  10. тромбоэластограф;

  11. полуавтоматический коагулометр;

  12. центрифуга для определения группы крови и резус-фактора с использованием гелевых технологий;

  13. анализатор для лекарственного мониторинга.

Аппаратура в лаборатории экспресс-диагностики, как правило, должна быть дублирована (если один анализатор выходит из строя, можно работать на другом), работать круглосуточно. По возможности гематологические, биохимические, коагулологические анализаторы должны быть аналогичны используемым в плановых лаборатория, что значительно снижает расхождение между данными экспресс-лаборатории и данными других лабораторий. Руководителям экспресс-лабораторий следует много внимания уделять техническому обслуживанию оборудования и подготовке сотрудников лаборатории для работы на нем. Если в лаборатории нет возможности дублировать аппаратуру, но она располагается рядом с другими лабораториями (клинической, биохимической), следует в случае необходимости пользоваться оборудованием этих лабораторий для выполнения исследований.

1.4.2. ОСНАЩЕНИЕ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Существующий в настоящее время перечень оборудования для оснащения КДЛ, приведенный различных приказах Минздрава России, носит весьма противоречивый характер.

В приложении 8 к Положению об организации оказания первичной медико-санитарной помощи взрослому населению, утвержденному приказом Минздравсоцразвития России от 15 мая 2012 г. № 543н «Стандарт оснащения структурных подразделений для проведения диагностических и лечебных мероприятий», КДЛ должна иметь следующее оборудование.

  1. Автоматизированный иммуноферментный анализатор с дополнительным оборудованием и компьютерным обеспечением учета результатов анализов - 1.

  2. Центрифуга настольная лабораторная - 2.

  3. Встряхиватель типа Vortex - 1.

  4. Тест-наборы для определения опухолевых маркеров - по требованию.

  5. Биохимический анализатор - 1.

  6. Гематологический анализатор (для экспресс-лаборатории) - 1.

  7. Анализатор газового состава крови и электролитов - 1.

  8. Термостат водяной - 1.

  9. Микроскоп бинокулярный - 1.

  10. Гематологический счетчик - 1.

  11. Сушильный шкаф (термошкаф) - 1.

  12. Стерилизатор воздушный - 1.

  13. Коагулометр четырехканальный - 1.

  14. Анализатор мочи - 1.

  15. Вытяжной шкаф - 1.

В приложении 6 к Положению об организации оказания первичной медико-санитарной помощи детям, утвержденному приказом Минздрава России от 7 марта 2018 г. № 92н, стандарт оснащения КДЛ включает следующее оборудование.

  1. Рабочее место врача с персональным компьютером и выходом в информационно-коммуникационную сеть Интернет.

  2. Аквадистиллятор.

  3. Анализатор биохимический.

  4. Анализатор фотометрический иммуноферментный (фотометр).

  5. Аппарат для встряхивания колб и пробирок.

  6. Весы лабораторные электронные.

  7. Дозатор лабораторный (комплект).

  8. Микроскоп бинокулярный с иммерсией.

  9. Аппарат для ультразвуковой очистки инструментов.

  10. Бактерицидный облучатель воздуха рециркуляторного типа.

  11. Аппарат для подсчета лейкоцитарной формулы.

  12. Термостат водяной или жидкостный.

  13. Термостат воздушный.

  14. Термостат для планшетов.

  15. Установка электрохимическая для получения моющего, дезинфицирующего и стерилизующего растворов.

  16. Установка для очистки и обеззараживания аэрозольная.

  17. Центрифуга настольная.

  18. Портативная система контроля за уровнем глюкозы многопользовательская.

  19. Экспресс-анализатор мочи.

  20. Емкость для дезинфекции инструментария и расходных материалов.

  21. Емкость для сбора бытовых и медицинских отходов.

  22. Автоматический анализатор клеток крови.

  23. Автоматический анализатор осадка мочи.

  24. Гемокоагулометр автоматический многоканальный.

  25. Автоматическое устройство для промывки планшетов и микропланшетов.

  26. Аппарат для определения гликозилированного гемоглобина.

  27. Аппарат для определения СОЭ.

  28. Холодильник для хранения реагентов.

  29. Холодильник для хранения биоматериала.

Количество оборудования определяется исходя из необходимости соблюдения сроков ожидания медицинской помощи, установленных программой государственных гарантий бесплатного оказания гражданам медицинской помощи на 2018 г. и на плановый период 2019 и 2020 гг.

В приложении к приказу Минздрава России от 12 февраля 2019 г. № 56н «Об утверждении перечня медицинских изделий для переоснащения медицинских организаций, подведомственных органам исполнительной власти субъектов РФ, оказывающих медицинскую помощь больным с онкологическими заболеваниями» приведен следующий перечень оборудования для оснащения КДЛ.

  1. Автоматизированный иммуноферментный анализатор с дополнительным оборудованием и компьютерным обеспечением учета результатов анализов.

  2. Центрифуга настольная лабораторная.

  3. Биохимический анализатор.

  4. Гематологический анализатор (для экспресс-лаборатории).

  5. Анализатор газового состава крови и электролитов.

  6. Термостат водяной.

  7. Коагулометр четырехканальный.

  8. Анализатор мочи.

  9. Набор для срочной цитологической окраски.

  10. Микроскоп сканирующий (сканер микропрепаратов).

В приложении 17 к приказу Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 924н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи населению по профилю "дерматовенерология"» приведен стандарт оснащения КДЛ, который включает.

  1. Микроскоп стандартный лабораторный - не менее 2.

  2. Анализатор гематологический - не менее 1.

  3. Анализатор мочи - не менее 1.

  4. Прибор для определения СОЭ - не менее 1.

  5. Коагулометр - 1.

  6. Анализатор уровня глюкозы - не менее 1.

  7. Ламинарный шкаф - не менее 1.

  8. Горелки спиртовые/газовые - не менее 1.

  9. Набор пипеточных дозаторов - по числу рабочих комнат.

  10. Облучатели бактерицидные настенные - не менее 2.

  11. Бытовые холодильники - не менее 1.

  12. Лабораторная мебель - по числу рабочих мест.

  13. Персональный компьютер с принтером - не менее 1.

Этот перечень приказов по оснащению КДЛ лабораторным оборудованием можно дополнить документами для противотуберкулезных, реабилитационных и других учреждений. Главным недостатком этих приказов является отсутствие связи перечня лабораторного оборудования с числом посещений амбулаторно-поликлинических учреждений, коечной емкостью стационаров, количеством реально выполняемых КДЛ исследований, их структурой, а главное, с запросами врачей-клиницистов в соответствии с требованиями клинических руководств, которые определяют выбор лабораторных тестов для назначения, и потребностью населения в определенных видах лабораторных исследований.

Оснащенность КДЛ в различных регионах страны существенно отличается. Ликвидировать недостатки в оснащении КДЛ в одних регионах и избежать избыточного оснащения в других путем регламентации сложно. Для этого необходимо иметь определенные ориентиры. В табл. 1.6-1.7 приведен примерный перечень оборудования для КДЛ поликлиник и стационаров, который может быть использован для оснащения КДЛ. Перечень оборудования для КДЛ стационаров включает и оборудование для оснащения лаборатории экспресс-диагностики, бактериологической и ПЦР-лабораторий (если они входят в состав КДЛ).

Таблица 1.6. Перечень оборудования для клинико-диагностических лабораторий поликлиник

№ п/п

Медицинская техника

Количество изделий по числу посещений

Примечание

до 250

250-500

свыше 500

1

Аквадистиллятор

1

1

1

2

Анализатор биохимический с проточной фотометрической кюветой

1

-

-

3

Анализатор биохимический с ионоселективным модулем автоматизированный, производительность - 200-400 анализов в час

-

1

-

4

Анализатор биохимический с ионоселективным модулем автоматизированный, производительность - 400-600 анализов в час

-

-

1

5

Анализатор гематологический на 16 параметров с производительностью 40 проб в час

1

-

-

6

Анализатор гематологический на 22 параметра с дифференциацией пяти фракций лейкоцитов, производительностью до 60 проб в час

1

1

7

Анализатор-штатив для СОЭ

2

1

1

8

Анализатор СОЭ автоматический на 20 проб

1

9

Анализатор СОЭ автоматический на 60-100 проб

-

-

1

10

Анализатор гликозилированного гемоглобина

-

1

1

11

Анализатор уровня глюкозы автоматический

1

2

2

12

Анализатор иммуноферментный

-

1

1

13

Иммуноферментный анализатор (ИФА) (или иммунохемилюминесцентный) автоматизированный

-

-

1

14

Анализатор мочи полуавтоматический в комплекте с тест-полосками

1

1

-

15

Анализатор мочи автоматический в комплекте с тест-полосками

-

1

-

16

Автоматическая мочевая станция

-

-

1

17

Весы лабораторные (до 5 г, 0,001 г)

-

1

1

18

Гемоглобинометр фотометрический

1

-

-

19

Деионизатор воды, производительность - 10-14 л/ч

-

1

1

20

Дозатор механический бутылочный

1

1

2

21

Инкубатор-встряхиватель для планшетов

-

1

1

22

Коагулометр автоматический

-

-

1

23

Коагулометр полуавтоматический двухканальный

1

-

-

24

Коагулометр полуавтоматический четырехканальный

-

1

1

25

Комплект пипеточных дозаторов с переменным объемом

1

3

5

26

Машина моечная для лабораторной посуды

-

-

1

27

Мебель для лабораторий

1

1

1

28

Микроскоп бинокулярный с иммерсией, с встроенным осветителем

2

3

5

29

Облучатель бактерицидный (лампа)

1

3

5

30

Оборудование для очистки и обеззараживания воздуха

1

1

1

31

Прибор для электрофореза

-

-

1

32

Счетчик-калькулятор для подсчета форменных элементов крови электронный

2

2

4

33

Термостат твердотельный

-

-

2

34

Термостат электрический

1

1

1

35

Укладка для лаборанта для взятия проб в условиях стационара и на дому

1

2

3

36

Установка электрохимическая для получения моющего, дезинфицирующего и стерилизирующего растворов

1

1

1

37

Устройство для окраски и фиксации мазков крови на предметном стекле ручное

1

2

1

38

Устройство для окраски и фиксации мазков крови на предметном стекле автоматическое

-

-

1

39

Устройство для ИФА промывающее автоматическое

-

-

1

40

Фотометр портативный для количественного определения белка в моче

-

1

1

41

Холодильник

2

8

9

42

Центрифуга для приготовления цитологических препаратов

-

-

1

43

Центрифуга лабораторная многогнездная

1

2

4

44

Центрифуга лабораторная

1

1

2

45

Часы процедурные и песочные

1

1

1

46

Шкаф сушильный стерилизационный с диапазоном температуры от 550 до 2000 °C

-

1

1

Таблица 1.7. Перечень оборудования для клинико-диагностических лабораторий стационаров

№ п/п

Медицинская техника

Количество изделий

Примечание

до 600 коек

600-1200 коек

свыше 1200 коек

1

Автоклав горизонтальный или вертикальный электрический

-

3

3

2

Аквадистиллятор

1

1

1

3

Амплификатор детектирующий в режиме реального времени в комплекте с компьютером

-

-

1

4

Амплификатор многоканальный

-

1

1

5

Анализатор агрегации тромбоцитов

-

1

1

6

Анализатор биохимический с ионоселективным модулем автоматизированный, производительность - выше 600 ан/ч

-

1

1

7

Анализатор биохимический с ионоселективным модулем автоматизированный, производительность - до 600 ан/ч

1

-

1

8

Анализатор биохимический с проточной фотометрической кюветой автоматизированный, производительность - от 100 ан/ч (для экспресс-лаборатории)

1

1

9

Анализатор биохимический селективный автоматизированный с производительностью до 200 ан/ч (для экспресс-лаборатории)

1

10

Анализатор газового состава крови автоматический

1

2

2-3

11

Анализатор гематологический на 22 параметра с дифференциацией пяти фракций лейкоцитов с производительностью до 60 проб в час

2

1

1

12

Анализатор гематологический на 28-32 параметра с производительностью выше 60 проб в час

-

1

1

13

Анализатор-штатив для СОЭ

1

1

1

14

Анализатор СОЭ автоматический на 20 проб

1

-

-

15

Анализатор СОЭ автоматический на 60-100 проб

-

1

1

16

Анализатор гемокультур

-

1

1

17

Анализатор гликозилированного гемоглобина

-

1

1

18

Анализатор уровня глюкозы автоматический

1

2

2

19

Анализатор иммуноферментный

1

1

1

20

Анализатор иммуноферментный автоматизированный на два планшета

1

-

-

21

Анализатор иммуноферментный автоматизированный на 2-4 планшета

1

1

22

Анализатор иммунохемилюминесцентный автоматизированный

-

1

1

23

Анализатор мочи в комплекте с тест-полосками

1

1

1

24

Анализатор мочи автоматический в комплекте с тест-полосками

1

-

-

25

Автоматическая мочевая станция

-

1

1

26

Бокс ламинарный с вертикальным потоком II класса биологической защиты

-

3

3

27

Весы лабораторные (220 г, 0,001 г)

-

1

2

28

Деионизатор воды, производительность - 10-14 л/ч

1

1

1

29

Дозатор механический бутылочный

3

5

2

30

СО2-инкубатор

-

1

2

31

Инкубатор-встряхиватель для планшетов

-

1

1

32

Коагулометр автоматический производительностью 80-120 ан/ч

1

-

-

33

Коагулометр автоматический производительностью выше 120 ан/ч

-

1

1

34

Коагулометр полуавтоматический двуканальный

1

-

-

35

Коагулометр полуавтоматический четырехканальный

-

1

1

36

Комплект пипеточных дозаторов с переменным объемом

-

4

4

37

Ламинарный шкаф

-

2

2

38

Машина моечная для лабораторной посуды

-

-

1

39

Мебель для лабораторий

1

1

1

40

Микроскоп люминесцентный

-

-

1

41

Микроскоп бинокулярный с иммерсией, с встроенным осветителем

3

5

6

42

Микроскоп бинокулярный стереоскопический

-

-

1

43

Микроцентрифуга Vortex

-

3

3

44

Насос с отборным устройством и с колбой-ловушкой

-

2

2

45

Облучатель бактерицидный (лампа)

-

6

7

46

Оборудование для очистки и обеззараживания воздуха

1

1

1

47

Печь СВЧ для приготовления агара

-

1

1

48

Плитка электрическая четырехкомфорочная

-

1

1

49

Прибор для отбора проб воздуха (ПУ-1Б)

-

1

1

50

Прибор для счета колоний бактерий автоматический

-

1

1

51

Прибор для электрофореза

1

1

1

52

рН-метр лабораторный

1

1

1

53

Бактериологический анализатор автоматический (для идентификации видов бактерий и определения чувствительности к антибиотикам) в комплекте с тест-панелями, с одномоментной загрузкой 30-60 панелей

-

1

-

54

Бактериологический анализатор автоматический (для идентификации видов бактерий и определения чувствительности к антибиотикам) в комплекте с тест-панелями, с одномоментной загрузкой более 60 панелей

-

-

1

55

Масс-спектрометр для идентификации микроорганизмов

-

-

1

56

Счетчик-калькулятор для подсчета форменных элементов крови электронный

3

5

6

57

Термостат твердотельный

-

2

2

58

Термостат электрический

2

4

5

59

Укладка для лаборанта для взятия проб в условиях стационара и на дому

3

5

7

60

Установка электрохимическая для получения моющего, дезинфицирующего и стерилизирующего растворов

1

1

1

61

Устройство для перемешивания крови гематологическое

1

1

2

62

Устройство для окраски и фиксации мазков крови на предметном стекле ручное

1

1

1

63

Устройство для окраски и фиксации мазков крови на предметном стекле автоматическое

-

1

2

64

Устройство для ИФА промывающее автоматическое

1

1

1

65

Фотометр биохимический программируемый с термостатируемой проточной и сменной кюветами

1

1

1

66

Фотометр портативный для количественного определения белка в моче

1

1

1

67

Холодильник

4

8

9

68

Центрифуга высокоскоростная для центрифугирования микрообъемов проб (для центрифужных пробирок на 1,52,0 мл) на 13 000 g

-

1

2

69

Центрифуга для приготовления цитологических препаратов

-

1

1

70

Центрифуга лабораторная многогнездная

1

2

4

71

Центрифуга лабораторная

3

5

5

72

Цитометр проточный

-

-

1

73

Часы процедурные и песочные

1

1

1

74

Шкаф сушильный стерилизационный с диапазоном температуры от 550 до 2000 °C

-

1

1

1.4.3. ОСНАЩЕНИЕ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Оснащение бактериологических лабораторий регламентируется целым рядом приказов Минздрава России.

Приложение 10 к приказу Минздрава России от 19 января 1995 г. № 8 «О развитии и совершенствовании деятельности лабораторий клинической микробиологии (бактериологии) лечебно-профилактических учреждений» приводит следующий перечень приборов, оборудования и медицинского инструментария для микробиологических (бактериологических) исследований.

  1. Автоклав электрический горизонтальный или вертикальный.

  2. Агглютиноскоп.

  3. Анаэростат, оснащенный пакетами «Газпак» (пакеты «Газпак» заказываются по потребности).

  4. Аппарат для свертывания и инактивирования сыворотки.

  5. Диспенсер дисков с антибиотиками.

  6. Конденсор темного поля.

  7. Контейнеры для транспортировки биоматериала.

  8. Лупа бинокулярная.

  9. Лупа ручная.

  10. Машина для изготовления ватных пробок.

  11. Микроскоп бинокулярный биологический с иммерсией.

  12. Микроскоп биологический монокулярный.

  13. Насадка бинокулярная к микроскопу.

  14. Микроскоп люминесцентный.

  15. Осветитель к микроскопу.

  16. Облучатель бактерицидный.

  17. Автоматизированные системы для микробиологических исследований (идентификация видов бактерий и определение чувствительности к антибиотикам) в комплекте с тест-системами.

  18. Облучатель бактерицидный переносный.

  19. Прибор для отбора проб воздуха.

  20. Прибор для бактериологического анализа воздуха.

  21. Автоматический прибор для счета колоний бактерий.

  22. Прибор для счета колоний бактерий.

  23. Приставка люминесцентная к микроскопу.

  24. Анализатор колориметрический иммуноферментный.

  25. Приспособление для фиксации и окраски мазков крови.

  26. Промывающее устройство для ИФА.

  27. Термостат для ИФА.

  28. Встряхиватель для ИФА

В приложении 17 к приказу Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 924н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи населению по профилю "дерматовенерология"» приведен стандарт оснащения микробиологического (бактериологического) подразделения КДЛ.

  1. Микроскоп стандартный лабораторный - не менее 1.

  2. Анализатор для видовой идентификации микроорганизмов.

  3. Прибор для определения стандарта мутности по Мак-Фарланду - не менее 1.

  4. СО2-инкубатор - не менее 1.

  5. Система анаэробная для культивирования анаэробных микроорганизмов - не менее 1.

  6. Автоматический анализатор микробиологический для видовой идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам - не менее 1.

  7. Низкотемпературный холодильник (поддерживаемая температура - 70-80 °С) - не менее 1.

  8. Масс-спектрометр для исследований методом времяпролетной масс-спектрометрии, снабженный системой BIO-TYPER для быстрой идентификации микроорганизмов, - не менее 1.

  9. Аппарат для автоматического приготовления питательных сред - не менее 1.

  10. Прибор для автоматического окрашивания клеточных препаратов.

  11. Стереомикроскоп-лупа - не менее 1.

  12. Ламинарный шкаф - не менее 2.

  13. Термостат суховоздушный - не менее 1.

  14. Водяная баня - не менее 1.

  15. Горелки спиртовые/газовые - не менее 2.

  16. Бытовые холодильники - не менее 2.

  17. Облучатели бактерицидные настенные - по числу рабочих комнат.

  18. Набор пипеточных дозаторов - не менее 1.

  19. Лабораторная мебель - по числу рабочих мест.

  20. Персональный компьютер с принтером - 1.

Приложение 3 к Порядку оказания медицинской помощи больным туберкулезом, утвержденному приказом Минздрава России от 15 ноября 2012 г. № 932н, содержит несколько иной перечень оборудования для оснащения бактериологической лаборатории.

  1. Шкафы биологической безопасности II класса защиты - по требованию.

  2. Центрифуги с антиаэрозольной защитой и охлаждением, 4000 об/мин - не менее 2.

  3. Микроскоп люминесцентный - не менее 2.

  4. Микроскоп световой - не менее 2.

  5. Автоматическая система для культивирования микобактерий - 1.

  6. Холодильник фармацевтический - 1.

  7. Морозильная камера - по требованию.

  8. Встряхиватель для пробирки - не менее 2.

  9. Шейкер орбитальный - не менее 2.

  10. Дозаторы переменного объема.

  11. Степпер со шприцами - не менее 2.

  12. Пипетатор механический - не менее 2.

  13. Водяная баня - не менее 2.

  14. Термостаты и/или оборудование для термальной комнаты - по требованию.

  15. Денситометр DEN-1 для определения концентрации клеток по Мак-Фарланду - 1.

  16. Весы электронные - по требованию.

  17. Инкубатор для предметных стекол с электронным контролем термостатирирования - 1.

  18. Стерилизатор сухожаровой - по требованию.

  19. Паровые автоматические (автоклавы) для стерилизации посуды и питательных сред, для обеззараживания отработанного материала - по требованию.

  20. Аппарат для свертывания питательных сред - 1.

  21. Дистиллятор - по требованию.

  22. Мешалка лабораторная верхнеприводная с различными скоростными режимами для приготовления яично-солевых питательных сред - 1.

  23. Передвижные системы для дезинфекции воздуха - по требованию.

  24. Оборудование для программного обеспечения - по числу рабочих мест.

  25. Бокс биологической безопасности II класса биологической безопасности - 1.

  26. Центрифуга для пробирок объемом 50 мл до 4,5 тыс. об/мин с возможностью обработки не менее 12 проб одновременно - 1.

  27. Микроцентрифуга - 3.

  28. Настольная центрифуга для микропробирок типа «Эппендорф» объемом 1,5 мл до 10 000 g - 1.

  29. Твердотельный термостат для пробирок объемом 1,5-2,0 мл с диапазоном рабочих температур 25-100 °С - 1.

  30. Вакуумный аспиратор медицинский с колбой-ловушкой - 1.

  31. Комбинированный холодильник с камерами, поддерживающими температуру от 2 до 8 °С и не выше -16 °С (для хранения исследуемого материала) - 3.

  32. Морозильная камера на -70 °С - 1.

  33. Автоматизированная станция для выделения НК - 1.

  34. Набор автоматических пипеток переменного объема - 10- 100 мкл, 100-200 мкл, 200-1000 мкл - по требованию.

  35. Ламинарный шкаф для защиты продукта с горизонтальным или вертикальным ламинарным потоком воздуха с ультрафиолетовой лампой размером 1200 мм - 1.

  36. Штативы для пипеток, наконечников, микропробирок - по требованию.

  37. Программируемые термоциклеры (персональные, многомодульные, с функцией амплификации в режиме реального времени) - количество определяется используемыми в лаборатории технологиями и методами выделения НК.

  38. Автоматизированные станции - 1.

  39. Оборудование для программного обеспечения - по числу рабочих мест.

  40. Детектор (анализатор) для биологических биочипов - 1.

  41. Термостат - 1.

  42. Прибор для сканирования результатов гибридизации стриповых мембран - 1.

  43. Автоматические приборы для гибридизации - 1.

  44. Компьютеры с соответствующим используемым приборам программным обеспечением - по числу рабочих мест.

  45. Холодильник с камерой, поддерживающей температуру от 2 до 8 °С (для хранения наборов реагентов) - 1.

  46. Бокс биологической безопасности I класса - 1.

Все эти руководящие документы, носят противоречивый характер, приводят устаревший перечень оборудования по целому ряду позиций, не учитывают реальные потребности бактериологических лабораторий в средствах автоматизации и современных технологиях анализа. В качестве ориентира в выборе оборудования для оснащения бактериологической лаборатории можно использовать приведенный ниже список оборудования на современном этапе.

Рекомендуемый перечень основного оборудования для оснащения бактериологической лаборатории.

  1. Автоматический прибор для приготовления питательных сред (выбор объема приготовления питательных сред зависит от потребности лаборатории).

  2. Прибор для автоматического разлива питательных сред в чашки Петри.

  3. Приспособление (помпа) для полуавтоматического разлива питательных сред в пробирки, флаконы, чашки Петри.

  4. Система для автоматической инокуляции и рассева жидких биологических образцов на чашки Петри.

  5. Система для автоматической окраски клинических образцов по Граму на предметных стеклах в комплекте с циторотором (выбор системы определяется количеством предметных стекол для одновременной окраски).

  6. Анализатор бактериологический для ускоренной идентификации микроорганизмов методом MALDI-TOF (матричная лазерная времяпролетная масс-спектрометрия).

  7. Автоматический бактериологический анализатор для идентификации микроорганизмов и определения чувствительности к антибактериальным препаратам (выбор анализатора определяется количеством идентификационных панелей для одновременной загрузки).

  8. Анализатор гемокультур для быстрой идентификации бактериемии и фунгемии в гемокультурах (выбор анализатора определяется количеством флаконов для полной загрузки).

  9. Бактериологический анализатор для экспресс-диагностики инфекций мочевыделительной системы, сепсиса, менингита и других заболеваний со станцией пробоподготовки.

  10. Лабораторный бинокулярный микроскоп прямой, тринокулярный для работы по методам светлого поля и флюоресценции.

  11. Инвертированный микроскоп, предназначенный для скриниговых исследований клеточных культур в светлом поле и фазовом контрасте, включая специальные держатели для работы с клеточными культурами, расположенными в чашках Петри.

  12. Стереомикроскоп.

  13. Автоклав вертикальный.

  14. Автоклав горизонтальный.

  15. Дистиллятор.

  16. Центрифуга настольная с ротором для пробирок.

  17. Сухожаровой стерилизатор с естественной конвекцией.

  18. СО2-инкубатор.

  19. Термостат суховоздушный.

  20. Бокс микробиологической безопасности II класса (тип А).

1.4.4. ОСНАЩЕНИЕ ПЦР-ЛАБОРАТОРИИ

Оснащение ПЦР-лабораторий в настоящее время хорошо регламентировано. В приложении 2 к методическим указаниям МУ 1.3.1888-04 «Организация работы при исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного патогенными биологическим агентами III-IV групп патогенности» рекомендуется следующий перечень оборудования для этапов проведения анализа.

Для обработки материала и выделения НК.

  1. Центрифуга для пробирок объемом 5-100 мл.

  2. Центрифуга-вортекс.

  3. Микроцентрифуга от 12 до 16 000 g для микроцентрифужных пробирок объемом 1,5 мл.

  4. Твердотельный термостат для пробирок объемом 1,5 мл с диапазоном рабочих температур 25-100 °С.

  5. Отдельный набор автоматических пипеток переменного объема.

  6. Одноразовые полипропиленовые микроцентрифужные пробирки с завинчивающимися или плотно закрывающимися крышками объемом 1,5 мл.

  7. Одноразовые наконечники для пипеток переменного объема с аэрозольным барьером до 200 до 1000 мкл.

  8. Одноразовые наконечники для пипеток переменного объема до 200 мкл.

  9. Штативы для наконечников, микропробирок объемом 1,5 мл.

  10. Холодильник с камерами, поддерживающими температуру от 2 до 8 °С, -20 °С.

  11. Емкость с дезинфицирующим раствором.

Для приготовления ПЦР-смеси и проведения амплификации.

  1. Настольный бокс с бактерицидной лампой.

  2. Амплификатор.

  3. Отдельный набор автоматических пипеток переменного объема.

  4. Одноразовые полипропиленовые пробирки для амплификации объемом 0,5 (0,2) мл.

  5. Одноразовые наконечники для пипеток переменного объема с аэрозольным барьером до 100 мкл.

  6. Штативы для наконечников, микропробирок на 0,5 (0,2) мл.

  7. Холодильник с камерами, поддерживающими температуру от 2 до 8 °С, -20 °С.

  8. Емкость для сброса отработанных расходных материалов.

Для электрофоретического анализа продуктов ПЦР.

  1. Камера для горизонтального электрофореза.

  2. Источник постоянного тока с напряжением 150-460 В.

  3. Трансиллюминатор с кабинетом для просмотра гелей.

  4. Видеосистема с цифровой видеокамерой для регистрации результатов.

  5. Компьютер для анализа результатов электрофореза.

  6. Микроволновая печь для плавления агарозы.

  7. Колба коническая из термостойкого стекла для плавления агарозы объемом 250 мл.

  8. Мерный цилиндр объемом 1 л.

  9. Штатив для микропробирок на 0,5 мл.

  10. Отдельная автоматическая пипетка 10-40 мкл.

  11. Одноразовые наконечники для пипеток переменного объема до 200 мкл в штативе.

  12. Холодильник с камерой, поддерживающей температуру от 2 до 8 °С.

  13. Емкость для сброса отработанных расходных материалов.

Для гибридизационно-ферментной детекции продуктов ПЦР.

  1. Термостат планшетный, поддерживающий температуру 37 °С.

  2. Вошер (не обязательно).

  3. Планшетный спектрофотометр.

  4. Компьютер (должен быть связан через компьютерную сеть с компьютером, располагающимся в чистой зоне и предназначенным для анализа результатов гибридизации).

  5. Восьмиканальная пипетка до 200 мкл.

  6. Отдельный набор одноканальных автоматических пипеток переменного объема.

  7. Одноразовые наконечники для пипеток переменного объема.

  8. Мерный цилиндр объемом 1 л.

  9. Холодильник с камерой, поддерживающей температуру от 2 до 8 °С.

  10. Емкость для сброса отработанных расходных материалов.

С современных позиций к приведенному перечню оборудования для оснащения ПЦР-лаборатории можно добавить автоматические станции для обработки проб биологического материала и выделения НК, приготовления и раскапывания реакционной смеси.

1.4.5. ОСНАЩЕНИЕ ЦЕНТРАЛИЗОВАННОЙ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Оснащение централизованной КДЛ необходимым лабораторным оборудованием определяется планируемым к выполнению объемом лабораторных анализов, их структурой и регламентированным временем получения результатов исследований.

Централизованную КДЛ необходимо оснащать современными автоматическими анализаторами для выполнения лабораторных исследований и стремиться минимизировать количество неавтоматизированных методов исследования. При выборе лабораторных анализаторов необходимо руководствоваться оптимальным соотношением цены, надежности и качества.

Централизованная КДЛ выполняет лабораторные исследования для множества ЛПУ, поэтому при выборе лабораторных анализаторов необходимо предъявлять особые требования к надежности автоматических анализаторов. Не следует отдавать предпочтение более дешевым анализаторам, так как это приводит к тому, что закупленное оборудование быстро выходит из строя, затраты на его ремонт значительны, требуют запасных частей и времени, а лабораторные анализы длительно не выполняются.

При оснащении централизованной КДЛ необходимо придерживаться принципа установки однотипного оборудования (одного производителя) для определенного вида лабораторных анализов, что позволит снизить затраты на его приобретение за счет получения дополнительных скидок, облегчит дальнейшее обеспечение анализаторов реактивами и расходным материалом и его сервисное обслуживание.

Для обеспечения качества результатов лабораторных исследований рекомендуется придерживаться правил использования реактивов, контрольных и калибровочных материалов производителя автоматических анализаторов. В целях повышения надежности технологического процесса производства результатов лабораторных анализов при оснащении централизованной КДЛ предпочтение следует отдавать открытым автоматическим анализаторам. Данный подход предоставляет возможность использовать на анализаторах реактивы, контрольные и калибровочные материалы других, в том числе и отечественных, производителей в случае нарушения сроков поставки реактивов производителем анализаторов.

При оснащении централизованной КДЛ закрытыми автоматическими анализаторами предпочтение следует отдавать производителям, имеющим склад реактивов и расходного материала к анализаторам на территории РФ, для обеспечения бесперебойного снабжения КДЛ.

При выборе автоматических анализаторов для оснащения централизованной КДЛ необходимо учитывать, что при выполнении широкого спектра лабораторных тестов их производительность не превышает 60% от заявленной в описании к анализатору. При оснащении централизованной КДЛ автоматическими анализаторами с учетом их производительности и проведении расчетов времени выполнения планируемого количества анализов необходимо исходить из того, что автоматический анализатор должен непосредственно проводить исследование загруженных проб биологического материала не более 60% рабочего времени специалистов КДЛ. Оставшееся рабочее время специалисты КДЛ должны использовать для калибровки анализатора, проведения внутреннего и внешнего контроля качества, технического и сервисного обслуживания анализатора.

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной КДЛ при планируемом поступлении до 1500 проб в день и объеме выполняемых анализов 1 000 000-1 200 000 в год при организации работы в одну смену представлен в табл. 1.8.

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной бактериологической лаборатории (отдела централизованной КДЛ) при планируемом поступлении до 150 проб в день при организации работы в одну смену представлен в табл. 1.9.

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной ПЦР-лаборатории (отдела централизованной КДЛ) при планируемом поступлении до 50 проб в день представлен в табл. 1.10.

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной КДЛ при планируемом поступлении 20003000 проб в день и объеме выполняемых анализов 2 500 000-3 000 000 в год при организации работы в одну смену представлен в табл. 1.11.

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной бактериологической лаборатории (отдела централизованной КДЛ) при планируемом поступлении 300 проб и более в день представлен в табл. 1.12.

Таблица 1.8. Перечень оборудования для оснащения централизованной клинико-диагностической лаборатории при планируемом поступлении до 1500 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Гематологический анализатор на 24-32 параметра с дифференциацией пяти популяций лейкоцитов, автоматической подачей проб и подсчетом ретикулоцитов

2

2

Автоматический анализатор СОЭ

1

3

Микроскоп бинокулярный с осветителем

6

4

Электронный счетчик лейкоцитарной формулы и миелограммы

4

5

Автоматическая мочевая станция (автоматический анализатор на тестовых полосках + автоматический анализатор осадка мочи)

6

Цитоцентрифуга для приготовления и окраски цитологических мазков

7

Автоматический биохимический анализатор с ионоселективным блоком и станцией водоподготовки производительностью 600 тестов в час

8

Автоматический биохимический анализатор с ионоселективным блоком и станцией водоподготовки производительностью 400 тестов в час

9

Анализатор гликозилированного гемоглобина

10

Автоматический анализатор уровня глюкозы

11

Анализатор для определения КОС, электролитов, глюкозы, лактата

12

Анализатор для электрофореза белков, липидов, ферментов, парапротеинов

13

Автоматический коагулометр (клотинговый и фотометрический)

14

Полуавтоматический коагулометр

15

Автоматический анализатор для иммуногематологических исследований

16

Автоматический иммунохемилюминесцентный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций

17

Автоматический иммуноферментный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций

18

Проточный цитофлюориметр

Таблица 1.9. Перечень оборудования для оснащения централизованной бактериологической лаборатории (отдела) при планируемом поступлении до 150 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Автоматический бактериологический анализатор с возможностью идентификации бактерий и определением чувствительности к антибиотикам производительностью до 120 тестов в день

1

2

Анализатор для быстрой идентификации бактериемии и фунгемии в гемокультурах на 60 флаконов

1

3

Система для автоматической окраски мазков по Граму

1

4

Микроскоп биологический бинокулярный широкопольный со встроенным осветителем, штатив с предметным столиком под правую руку. Широкопольные окуляры: 10х/18 мм. 4 ахромат-объектива: 4х/0,1; 10х/0,25; 40х/0,65; 100х/1,25 (масло) со стартовым набором предметных стекол и иммерсионного масла (минимальный набор)

2

5

Стереоскопический микроскоп: увеличение 10х и 40х, а также 12,5х и 50х с насадочной линзой 1,25х

1

6

Автоматизированная система приготовления и разлива стерильных, питательных сред с принтером на 1-9 л среды

1

7

Термостат суховоздушный, объем 70-90 л

4

8

СО2-инкубатор, объем 80-120 л, потребление СО2 - 1 м3/ч с редуктором

1

9

Шкаф ламинарный класса 11А/ВЗ

2

10

рН-метр для измерения рН питательных сред, термоустойчивый

1

11

Весы электронные от 10 г до 1 кг

1

12

Весы аналитические электронные от 1 мг до 10 г

1

13

Система для создания атмосферы для культивирования анаэробных бактерий на 2,5-3,0 л

3

14

Холодильник фармацевтический (медицинский) с прозрачными стеклами, объем 300-400 л, температура - +2-14 °С

3

15

Холодильник с морозильной камерой для хранения реактивов с температурными режимами от 2 до 14 °С, 300-400 л, от -20 до -30 °С, 60-90 л, вертикальный

1

16

Автоклав вертикальный на 70-100 л

2

17

Автоклав горизонтальный на 15-30 л

1

18

Дистиллятор 10 л/ч

1

19

Центрифуга настольная с роторами для пробирок

2

20

Сухожаровой стерилизатор с естественной конвекцией, объем 50-70 л, температура - до 220 °С

1

Таблица 1.10. Перечень оборудования для оснащения централизованной ПЦР-лаборатории (отдела централизованной клинико-диагностической лаборатории) при планируемом поступлении до 50 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Термоциклер для амплификации НК с оптическим модулем для детекции продуктов амплификации в режиме реального времени

2

2

Компьютер или ноутбук со специальным программным обеспечением

1

3

Шкаф биологической безопасности II класса защиты с подставкой для работы патогенными микроорганизмами и обеспечением безопасности персонала, окружающей среды и защиты рабочего материала

2

4

Холодильник с морозильной камерой для хранения реагентов с температурными режимами от 2 до 14 °С, объем 300-400 л, от -20 до -30 °С, 70-90 л, вертикальный

2

5

Лабораторная настольная центрифуга для микропробирок на 24 места

1

6

Вортекс

1

7

Термостат твердотельный

3

8

Насос с колбой-ловушкой

1

9

ПЦР-бокс

1

Таблица 1.11. Перечень оборудования для оснащения централизованной клинико-диагностической лаборатории при планируемом поступлении 2500-3000 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Гематологический анализатор на 24-32 параметра с дифференциацией пяти популяций лейкоцитов, автоматической подачей проб и подсчетом ретикулоцитов

2

2

Автоматический анализатор СОЭ

3

3

Микроскоп бинокулярный с осветителем

6

4

Электронный счетчик лейкоцитарной формулы и миелограммы

4

5

Автоматическая мочевая станция (автоматический анализатор на тестовых полосках + автоматический анализатор осадка мочи)

1

6

Автоматическая станция для приготовления и окраски цитологических мазков

1

7

Автоматический биохимический анализатор с ионоселективным блоком и станцией водоподготовки производительностью 800 тестов в час или установка двух автоматических модулей «биохимия + иммунохимия»

2

8

Анализатор гликозилированного гемоглобина

1

9

Автоматический анализатор уровня глюкозы

1

10

Анализатор для определения КОС, электролитов, глюкозы, лактата

1

11

Автоматическая система капиллярного электрофореза

1

12

Автоматический коагулометр (клотинговый и фотометрический)

2

13

Автоматический анализатор для иммуногематологических исследований

2

14

Автоматический иммунохемилюминесцентный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций (при установке в КДЛ автоматических модулей «биохимия + иммунохимия» вместо двух иммунохемилюминесцентных анализаторов необходим один)

2

15

Автоматический иммуноферментный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций

2

16

Проточный цитофлюориметр со станцией пробоподготовки

1

Таблица 1.12. Перечень оборудования для оснащения централизованной бактериологической лаборатории (отдела) при планируемом поступлении 300 проб и более в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Автоматический бактериологический анализатор с возможностью идентификации бактерий и определением чувствительности к антибиотикам производительностью до 240 тестов в день

1

2

Анализатор для быстрой идентификации бактериемии и фунгемии в гемокультурах на 120 флаконов

1

3

Масс-спектрометр для ускоренной идентификации микроорганизмов

1

4

Бактериологический анализатор для экспресс-диагностики инфекций мочевыделительной системы, сепсиса, менингита и др.

1

5

Система для автоматического рассева проб биологического материала на чашки Петри

1

6

Система для автоматической окраски мазков по Граму

1

7

Микроскоп биологический бинокулярный широкопольный со встроенным осветителем, штатив с предметным столиком под правую руку. Широкопольные окуляры: 10х/20 мм. 4 ахромат-объектива: 4х/0,1; 10х/0,25; 40х/0,65; 100х/1,25 (масло)

2

8

Стереоскопический микроскоп: увеличение 10х и 40х, а также 12,5х и 50х с насадочной линзой 1,25х

1

9

Автоматизированная система приготовления и разлива стерильных, питательных сред с принтером, производительностью на 5-30 л среды

1

10

Термостат суховоздушный, объем 70-90 л

8

11

СО2-инкубатор, объем 80-120 л, потребление СО2- 1 м3/ч с редуктором

2

12

Шкаф ламинарный класса IIA/ВЗ

2

13

рН-метр для измерения рН питательных сред, термоустойчивый

1

14

Весы электронные от 10 г до 1 кг

1

13

Весы аналитические электронные от 1 мг до 10 г

1

15

Система для создания атмосферы для культивирования анаэробных бактерий на 2-3 л

6

16

Холодильник фармацевтический (медицинский) с прозрачными стеклами, объем 300-400 л, температура - +2-14 °С

6

17

Холодильник с морозильной камерой для хранения реактивов, с температурными режимами от 2 до 14 °С, 300-400 л, от -20 °С до -30 °С, 60-90 л, вертикальный

2

18

Автоклав вертикальный на 70-100 л

2

19

Автоклав горизонтальный на 15-30 л

1

20

Дистиллятор 10 л/ч

2

21

Центрифуга настольная с роторами для пробирок

2

22

Сухожаровой стерилизатор с естественной конвекцией, объем 50-70 л, температура - до 220 °С

1

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной ПЦР-лаборатории (отдела централизованной КДЛ) при планируемом поступлении 100-150 проб в день представлен в табл. 1.13.

Таблица 1.13. Перечень оборудования для оснащения централизованной ПЦР-лаборатории (отдела централизованной клинико-диагностической лаборатории) при планируемом поступлении 100-150 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Термоциклер для амплификации НК с оптическим модулем для детекции продуктов амплификации в режиме реального времени

3

2

Компьютер или ноутбук со специальным программным обеспечением

3

3

Автоматическая станция пробоподготовки

1

4

Шкаф биологической безопасности II класса защиты с подставкой для работы патогенными микроорганизмами и обеспечением безопасности персонала, окружающей среды и защиты рабочего материала

3

5

Холодильник с морозильной камерой для хранения реагентов с температурными режимами от 2 до 14 °С, объем 300-400 л, -20 °С ~-30 °С, 70-90 л, вертикальный

6

6

Лабораторная настольная центрифуга для микропробирок на 24 места

3

7

Вортекс

5

8

Термостат твердотельный

5

9

Насос с колбой-ловушкой

4

10

ПЦР-бокс

4

Рекомендуемый перечень лабораторного оборудования для оснащения централизованной КДЛ при планируемом поступлении 4000-6000 проб в день и объеме выполняемых анализов 5 000 000-6 000 000 в год представлен в табл. 1.14.

Таблица 1.14. Перечень оборудования для оснащения централизованной клинико-диагностической лаборатории при планируемом поступлении более 3000 проб в день
№ п/п Оборудование Количество

1

Автоматизированная модульная станция для преаналитической и постаналитической обработки образцов крови и другого биологического материала производительностью 1000 проб в час

1

2

Гематологический анализатор на 24-32 параметра с дифференциацией пяти популяций лейкоцитов, автоматической подачей проб и подсчетом ретикулоцитов

3

3

Автоматический анализатор СОЭ

5

4

Микроскоп бинокулярный с осветителем

8

5

Электронный счетчик лейкоцитарной формулы и миелограммы

6

6

Автоматическая мочевая станция (автоматический анализатор на тестовых полосках + автоматический анализатор осадка мочи)

2

7

Автоматическая цитологическая станция для приготовления, окраски и анализа цитологических мазков

1

8

Автоматический биохимический анализатор с ионоселективным блоком и станцией водоподготовки производительностью 1600-1800 тестов в час или установка двух автоматических модулей «биохимия + иммунохимия»

2

9

Анализатор гликозилированного гемоглобина

1

10

Автоматический анализатор уровня глюкозы

1

11

Анализатор для определения КОС, электролитов, глюкозы, лактата

1

12

Автоматическая система капиллярного электрофореза

1

13

Автоматический коагулометр (клотинговый и фотометрический)

2

14

Автоматический анализатор для иммуногематологических исследований

2

15

Автоматический иммунохемилюминесцентный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций (при установке в КДЛ автоматических модулей «биохимия + иммунохимия» вместо четырех иммунохемилюминесцентных анализаторов необходимо три)

4

16

Автоматический иммуноферментный анализатор для определения гормонов, онкомаркеров, диагностики инфекций

4

17

Проточный цитофлюориметр со станцией пробоподготовки

1

1.5. СПЕЦИАЛИСТЫ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Клиническая лабораторная диагностика - это медицинская специальность, предметом деятельности специалистов которой являются клинические лабораторные исследования, то есть изучение состава образцов биоматериалов пациентов с задачей обнаружения/измерения их эндогенных или экзогенных компонентов, структурно или функционально отражающих состояние и деятельность органов, тканей, систем организма, поражение которых возможно при предполагаемой патологии. Специалисты с высшим медицинским образованием, имеющие подготовку в области клинической лабораторной диагностики, квалифицируются как врачи клинической лабораторной диагностики. Специалисты со средним медицинским образованием получают квалификацию по специальности «лабораторная диагностика» или «лабораторное дело». Термином «клиническая лабораторная диагностика» официально обозначается научная медицинская специальность (код 14.03.10).

Сферой практической деятельности специалистов клинической лабораторной диагностики - выполнения клинических лабораторных исследований выступают подразделения медицинских учреждений, носящие названия КДЛ или отделений клинической лабораторной диагностики, основной задачей которых служит своевременное и полноценное обеспечение аналитически надежной лабораторной информацией потребностей медицинской помощи пациентам при оценке состояния здоровья, диагностике заболеваний, слежении за результатами предпринимаемых лечебных мер, прогнозе исходов заболеваний и качества жизни в последующем.

Служба клинической лабораторной диагностики является совокупностью КДЛ - подразделений учреждений здравоохранения, организованных и действующих в соответствии с едиными научно-методическими принципами. Медицинское предназначение клинических лабораторных исследований определяет возможность разнообразных условий их выполнения - в стационарных и амбулаторных учреждениях здравоохранения различного профиля и мощности, в условиях экстренной помощи, при профилактических осмотрах и диспансеризации, при медико-генетических исследованиях. Независимо от условий и формы организации лабораторного обеспечения результаты клинических лабораторных исследований должны удовлетворять медицинским требованиям по аналитической надежности, клинической информативности и своевременности выполнения.

Комплексный характер научно-методической основы клинической лабораторной диагностики и стремление к углубленному использованию теоретических и аналитических возможностей отдельных субдисциплин лабораторной медицины реализуются выделением в рамках единой специальности клинической лабораторной диагностики ряда специализаций, таких как общеклинические исследования, клиническая биохимия, лабораторная гематология, коагулология, цитология, лабораторная генетика, молекулярная биология, иммунология, изосерология, бактериология, вирусология, микология, паразитология, химико-токсикологические исследования, терапевтический мониторинг лекарственных средств. Объективной основой их объединения в рамках клинической лабораторной специальности является подчинение общей цели - разносторонней оценке состояния обследуемого пациента путем изучения специфических для каждой дисциплины объектов в едином носителе информации и исследовательском поле - биологическом материале пациента.

КДЛ укомплектованы специалистами различного уровня квалификации, которые отвечают за проведение исследований поступающих проб биологического материала (рис. 1.6).

pic 0006
Рис. 1.6. Специалисты клинико-диагностической лаборатории и их функциональные обязанности

Каждую КДЛ возглавляет высококвалифицированный врач клинической лабораторной диагностики - заведующий лабораторией, имеющий соответствующий опыт работы.

Согласно приказу Минздравсоцразвития России от 23 апреля 2009 г. № 210н «О номенклатуре специальностей специалистов с высшим и послевузовским медицинским и фармацевтическим образованием в сфере здравоохранения РФ», на должность врача клинической лабораторной диагностики назначается специалист с высшим медицинским образованием, освоивший программу подготовки по клинической лабораторной диагностике и получивший сертификат специалиста. Врачом клинической лабораторной диагностики может быть специалист, получивший высшее медицинское образование по специальности «лечебное дело», «педиатрия», «медико-профилактическое дело», «стоматология», «медицинская биохимия», «медицинская биофизика», «медицинская кибернетика» и прошедший интернатуру или ординатуру по специальности «клиническая лабораторная диагностика» (табл. 1.15).

Таблица 1.15. Соответствие специальностей: полученной в высшем учебном заведении, основной и требующей дополнительной подготовки
Специальность, полученная в вузе Основная специальность Специальность, требующая дополнительной подготовки

Лечебное дело. Педиатрия

Генетика. Клиническая лабораторная диагностика

Лабораторная генетика. Бактериология. Вирусология. Лабораторная генетика. Лабораторная микология

Медико-профилактическое дело

Клиническая лабораторная диагностика. Эпидемиология

Бактериология. Вирусология. Лабораторная генетика. Лабораторная микология. Бактериология. Вирусология. Паразитология

Стоматология

Клиническая лабораторная диагностика

Бактериология. Вирусология. Лабораторная генетика. Лабораторная микология

Медицинская биохимия

Генетика. Клиническая лабораторная диагностика

Лабораторная генетика. Бактериология. Вирусология. Лабораторная генетика. Лабораторная микология

Медицинская биофизика, медицинская кибернетика

Клиническая лабораторная диагностика

Бактериология. Вирусология. Лабораторная генетика. Лабораторная микология

Специалисты с высшим немедицинским образованием, принятые на врачебные должности в КДЛ в периоды действия приказа Минздрава СССР от 13 июля 1989 г. № 418, могут продолжать замещать должности врачей-лаборантов, проходить повышение квалификации. Нормативный документ, который определял бы порядок получения (продления срока действия) этой группой специалистов сертификатов специалистов, в настоящее время отсутствует. Согласно приказу Минздравсоцразвития России от 23 июля 2010 г. № 541н, наименование должности «врач-лаборант» было сохранено для специалистов с высшим профессиональным (немедицинским) образованием, принятых на работу на эту должность до 1 октября 1999 г. Приказ Минздрава России от 20 декабря 2012 г. № 1183н «Об утверждении номенклатуры должностей медицинских и фармацевтических работников» также это подтвердил.

Одной из самых запутанных проблем современного кадрового состояния лабораторной службы является определение статуса биолога в КДЛ. Проблема обусловлена сложностью интерпретации существующих приказов Минздрава России, определяющих место и роль биолога в КДЛ. Приказ Минздрава России от 20 декабря 2012 г. № 1183н «Об утверждении номенклатуры должностей медицинских и фармацевтических работников» в который включены должности специалистов с высшим профессиональным (немедицинским) образованием, содержит должность биолога.

Прием на работу биолога в КДЛ осуществляется на основании приказа Минздрава России от 23 июля 2010 г. № 541н «Об утверждении Единого квалификационного справочника должностей руководителей, специалистов и служащих», раздел «Квалификационные характеристики должностей работников в сфере здравоохранения», требующий наличие у биолога высшего профессионального образования по специальности «биология», «биохимия», «биофизика», «генетика», «микробиология», «фармация» и дополнительного профессионального образования в соответствии с направлением профессиональной деятельности. Под термином «дополнительное образование» имеется в виду цикл общего усовершенствования, предметно предназначенный для должности биолога.

Вместе с тем формирование штатного расписания медицинской организации, в том числе целесообразность введения должности биолога, сохранения должности врача-лаборанта, находятся в компетенции руководителя учреждения. Руководитель медицинской организации не может обосновать увольнение специалиста-биолога отсутствием сертификата. Сертификата у данного специалиста быть не должно. Также не может быть обоснован отсутствием сертификата отказ в приеме на работу на должность биолога при наличии этой должности в штатном расписании. Однако является обоснованным увольнение по сокращению при соблюдении законных механизмов сокращения штатного расписания и отказ в приеме на работу при отсутствии должности биолога в штатном расписании КДЛ.

Таким образом, в настоящее время в КДЛ работают врачи клинической лабораторной диагностики и специалисты с высшим немедицинским образованием. Они выполняют гематологические, цитологические, сложные общеклинические и иммунологические исследования, ряд биохимических, коагулологических, гормональных и серологических анализов. В их обязанности входит контроль за калибровкой анализаторов и проведением внутрилабораторного контроля качества (ВКК).

Средний медицинский персонал в лаборатории представлен медицинскими технологами, фельдшерами-лаборантами, медицинскими лабораторными техниками, лаборантами, которые осуществляют прием биологического материала в лаборатории, проводят его подготовку к анализу и выполняют исследования.

Приказ Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380 утвердил положения, квалификационные характеристики и аттестационные требования к специалистам со средним медицинским образованием по специальности «лабораторная диагностика». В соответствии с этим приказом:

  • на должность медицинского технолога назначается специалист, имеющий среднее медицинское образование по специальности «лабораторная диагностика» (квалификация по диплому «медицинский технолог») и сертификат специалиста;

  • на должность медицинского лабораторного техника назначается специалист, имеющий среднее медицинское образование по специальности «лабораторная диагностика» и квалификацию «медицинский лабораторный техник» (фельдшер-лаборант) и сертификат специалиста;

  • на должность лаборанта КДЛ назначается специалист, имеющий среднее медицинское образование, или другие специалисты, допускаемые к работе лаборанта, по действующим нормативным документам, прошедшие переподготовку по утвержденной программе и получившие сертификат лаборанта.

В приказе Министерства труда и социальной защиты РФ от 14 марта 2018 г. № 145н «Об утверждении профессионального стандарта "Специалист в области клинической лабораторной диагностики"» определены функции, которые должен выполнять каждый специалист лаборатории.

1.6. СЕРТИФИКАЦИЯ И АККРЕДИТАЦИЯ СПЕЦИАЛИСТОВ ЛАБОРАТОРИИ

До настоящего времени врачи клинической лабораторной диагностики подтверждали соответствие своей профессиональной подготовки государственным образовательным стандартам путем получения сертификата специалиста. Сертификат специалиста выдавался в соответствии с требованиями приказа Минздрава России от 29 ноября 2012 г. № 982н «Об утверждении условий и порядка выдачи сертификата специалиста медицинским и фармацевтическим работникам, формы и технических требований сертификата специалиста» и приказа Минздрава России от 8 октября 2015 г. № 707н «Об утверждении квалификационных требований к медицинским и фармацевтическим работникам с высшим образованием по направлению подготовки "Здравоохранение и медицинские науки"».

В настоящее время на смену сертификации специалистов лаборатории приходит аккредитация, которая призвана постепенно заменить систему сертификации. Аккредитация специалистов КДЛ становится обязательной процедурой - каждый действующий специалист обязан иметь соответствующий допуск для осуществления своей профессиональной деятельности.

Основные руководящие документы при прохождении аккредитации по клинической лабораторной диагностике:

  1. приказ Минздрава России РФ от 2 июня 2016 г. № 334н «Об утверждении Положения об аккредитации специалистов»;

  2. приказ Минздрава России от 6 июня 2016 г. № 352н «Об утверждении Порядка выдачи свидетельства об аккредитации специалиста, формы свидетельства об аккредитации специалиста и технических требований к нему»;

  3. приказ Минздрава России от 22 декабря 2017 г. № 1043н «Об утверждении сроков и этапов аккредитации специалистов, а также категорий лиц, имеющих медицинское, фармацевтическое или иное образование и подлежащих аккредитации специалистов»;

  4. приказ Минздрава России РФ от 26 апреля 2018 г. № 192н «О внесении изменений в Положение об аккредитации специалистов», утвержденное приказом Минздрава России РФ от 2 июня 2016 г. № 334н;

  5. приказ Минздрава России РФ от 24 мая 2019 г. № 326н «О внесении изменений в Положение об аккредитации специалистов», утвержденное приказом Минздрава России РФ от 2 июня 2016 г. № 334н;

  6. приказ Минздрава России РФ от 20 января 2020 г. № 34н «О внесении изменений в Положение об аккредитации специалистов», утвержденное приказом Минздрава России РФ от 2 июня 2016 г. № 334н.

Учитывая, что вышедшие приказы Минздрава России постоянно дополняют предыдущие и смещают сроки введения аккредитации, в ближайшее время следует ожидать выхода нового документа, регламентирующего проведение и сроки аккредитации.

Аккредитация специалиста - процедура определения соответствия лица, получившего медицинское образование, требованиям к осуществлению медицинской деятельности по определенной медицинской специальности. В регламентирующих документах определены следующие виды аккредитации:

  1. первичная;

  2. первичная специализированная;

  3. периодическая (повторная).

Первичную аккредитацию проходят все студенты, которые выпускаются из медицинских и фармацевтических учебных заведений. Она обязательна для студентов, получивших среднее медицинское образование и/или научную степень бакалавра и магистра.

Первичную специализированную аккредитацию проходят студенты, которые имеют медицинское образование и закончили обучаться в ординатуре или освоили новую профессию, пройдя профессиональную переподготовку. Данный этап аккредитации необходим и врачам с зарубежным образованием.

Периодическую (повторную) аккредитацию проходят лица, завершившие освоение программ непрерывного медицинского образования.

Взаимосвязь между различными видами аккредитации приведена на рис.1.7.

pic 0007
Рис. 1.7. Система аккредитации специалиста

Аккредитация специалиста проводится в отношении:

  1. лиц, завершивших освоение основных образовательных программ высшего медицинского образования и высшего фармацевтического образования - программ бакалавриата, магистратуры, специалитета, основных образовательных программ среднего медицинского и фармацевтического образования, имеющих государственную аккредитацию (первичная аккредитация);

  2. лиц, завершивших освоение основных образовательных программ высшего медицинского образования и высшего фармацевтического образования - программ ординатуры, имеющих государственную аккредитацию, дополнительных профессиональных программ - программ профессиональной переподготовки, основных образовательных программ иного высшего образования (немедицинское образование), а также лиц, получивших образование на территории иностранного государства (первичная специализированная аккредитация);

  3. лиц, завершивших освоение дополнительных профессиональных программ медицинского образования и фармацевтического образования - программ повышения квалификации, обеспечивающих непрерывное совершенствование профессиональных знаний и навыков в течение всей жизни, а также постоянное повышение профессионального уровня и расширение квалификации (периодическая, или повторная, аккредитация).

Аккредитация специалиста, имеющего медицинское или фармацевтическое образование, проводится по специальностям, установленным номенклатурой специальностей специалистов, имеющих высшее или среднее медицинское и фармацевтическое образование.

Аккредитация специалиста, имеющего немедицинское образование, проводится по должностям, предусмотренным пунктом 1.3 Номенклатуры должностей медицинских работников и фармацевтических работников, утвержденной приказом Минздрава России РФ от 20 декабря 2012 г. № 1183н. Согласно этому приказу Минздрава России, биологи могут проходить аккредитацию.

Аккредитация специалиста проводится аккредитационной комиссией по окончании освоения лицом профессиональных образовательных программ медицинского образования или фармацевтического образования не реже 1 раза в 5 лет.

Для прохождения первичной или первичной специализированной аккредитации специалисту нужно подготовить определенный набор документов. Список этих документов указан в приказе Минздрава России от 2 июня 2016 г. № 334н «Об утверждении Положения об аккредитации специалистов».

  1. Заявление о допуске к аккредитации.

  2. Документ, удостоверяющий личность.

  3. Отчет о профессиональной деятельности аккредитуемого специалиста за последние 5 лет.

  4. Копия сертификата специалиста или свидетельства об аккредитации специалиста, если такие документы имеются.

  5. Копии документов о высшем образовании и о квалификации (с приложениями), или о среднем профессиональном образовании (с приложениями), или выписка из протокола заседания государственной экзаменационной комиссии.

  6. Копия трудовой книжки.

Аккредитация специалиста проходит в строго последовательном порядке. Первичная аккредитация и первичная специализированная аккредитация включают следующие этапы:

  1. тестирование;

  2. оценку практических навыков (умений) в симулированных условиях;

  3. решение ситуационных задач (для лиц, имеющих высшее медицинское образование).

Периодическая аккредитация включает следующие этапы:

  1. оценку образовательного и профессионального портфолио;

  2. тестирование.

Тестирование проводится с использованием тестовых заданий, комплектуемых для каждого аккредитуемого автоматически с использованием подсистемы «Аккредитация специалистов» информационной системы обеспечения непрерывного медицинского образования, вводимой в эксплуатацию в соответствии с нормативным правовым актом Минздрава России РФ (далее - подсистема «Аккредитация специалистов» ИС НМО), путем случайной выборки заданий с учетом специальности, по которой проводится аккредитация специалиста, из единой базы оценочных средств, формируемой методическим центром.

Оценка практических навыков (умений) в симулированных условиях, в том числе с использованием симуляционного оборудования (тренажеров и/или манекенов) и/или привлечением стандартизированных пациентов, проводится путем оценивания правильности и последовательности выполнения аккредитуемым практических заданий. Комплектование набора практических заданий для каждого аккредитуемого осуществляется с использованием подсистемы «Аккредитация специалистов» ИС НМО из единой базы оценочных средств.

Портфолио формируется аккредитуемым самостоятельно с использованием или без использования подсистемы «Интернет-портал непрерывного медицинского и фармацевтического образования».

Оценка портфолио осуществляется путем начисления баллов за каждый показатель и включает:

  1. оценку индивидуальных профессиональных достижений;

  2. оценку сведений о непрерывном совершенствовании профессиональных навыков и расширении квалификации.

Сведения об индивидуальных профессиональных достижениях заверяются руководителем (заместителем руководителя) медицинской, фармацевтической или иной организации по последнему месту работы аккредитуемого (при наличии) и включают:

  1. отчет о профессиональной деятельности аккредитуемого, содержащий анализ профессиональной деятельности аккредитуемого за последние 5 лет, в том числе описание выполненных работ, сведения о награждении за трудовые заслуги (государственными, ведомственными, региональными наградами) (при наличии), выводы о своей профессиональной деятельности и предложения по ее совершенствованию;

  2. протокол оценки индивидуальных профессиональных достижений;

  3. иные сведения о профессиональных достижениях аккредитуемого, в том числе участие аккредитуемого в качестве члена аккредитационной комиссии (центральной аккредитационной комиссии, аккредитационной подкомиссии), защита в установленном законодательством РФ порядке диссертации на соискание ученой степени кандидата наук, ученой степени доктора наук по медицинской или фармацевтической специальности, наличие опубликованных статей в профильном научном журнале, индексируемом в базе данных Scopus или Web of Science, автором которой является аккредитуемый либо в которой аккредитуемый указан первым в коллективе соавторов или указан наряду с первым соавтором как внесший равный вклад в опубликованную статью. Сведения о непрерывном совершенствовании профессиональных навыков и расширении квалификации включают сведения об обучении по программам дополнительного профессионального образования - программам повышения квалификации в соответствии с требованиями профессиональных стандартов и иную деятельность, направленную на непрерывное совершенствование профессиональных навыков и расширение квалификации (при наличии), включающую обучение в рамках деятельности профессиональных некоммерческих организаций, подтвержденное на ресурсе «Интернет-портал непрерывного медицинского и фармацевтического образования» ИС НМО и индивидуальную познавательную деятельность, подтвержденную на ресурсе «Интернет-портал непрерывного медицинского и фармацевтического образования» ИС НМО.

У медицинского специалиста есть три попытки пройти аккредитацию. Если это не удалось, специальная комиссия признает его не прошедшим аккредитацию и не даст разрешение осуществлять медицинскую деятельность.

В настоящее время внесены изменения в приказ Минздрава России РФ от 14 апреля 2020 г. № 327н «Об особенностях допуска физических лиц к осуществлению медицинской деятельности и/или фармацевтической деятельности без сертификата специалиста или свидетельства об аккредитации специалиста и/или по специальностям, не предусмотренным сертификатом специалиста или свидетельством об аккредитации специалиста», в соответствии с которым установлен мораторий до 1 июня 2021 г. на получение свидетельств об аккредитации специалиста.

1.7. ЛИЦЕНЗИРОВАНИЕ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Клиническая лабораторная диагностика является важнейшим разделом работы учреждений и организаций, осуществляющих медицинскую деятельность. Высокое качество результатов лабораторных исследований позволяет обеспечить высокий уровень диагностики заболеваний, постановку верного диагноза и мониторинг результатов лечения. Ключевая роль лабораторной диагностики в структуре деятельности медицинских учреждений и организаций требует особого внимания к лицензированию этого раздела работы.

Лицензирование - мероприятия, связанные с предоставлением лицензий, переоформлением документов, подтверждающих наличие лицензий, приостановлением и возобновлением действия лицензий, аннулированием лицензий и контролем лицензирующих органов за соблюдением лицензиатами при осуществлении лицензируемых видов деятельности соответствующих лицензионных требований и условий.

Основным условием предоставления лицензии является соблюдение соискателем лицензионных требований и условий, то есть установленных положениями о лицензировании конкретных видов деятельности требований и условий, выполнение которых лицензиатом обязательно при осуществлении лицензируемого вида деятельности.

Лицензируемый вид деятельности - вид деятельности, на осуществление которого на территории РФ требуется получение лицензии в соответствии с федеральным законом.

Лицензия - специальное разрешение на осуществление конкретного вида деятельности при обязательном соблюдении лицензионных требований и условий, выданное лицензирующим органом юридическому лицу или индивидуальному предпринимателю.

В соответствии с Постановлением Правительства РФ от 30 июня 2004 г. № 323 «Об утверждении Положения о Федеральной службе по надзору в сфере здравоохранения и социального развития», лицензирование медицинской деятельности на территории РФ осуществляет Росздравнадзор как непосредственно, так и через свои территориальные органы, которые сформированы и действуют во всех субъектах РФ.

В соответствии с приказом Минздравсоцразвития России от 22 ноября 2004 г. № 205 «Об утверждении Положения о территориальном органе Федеральной службы по надзору в сфере здравоохранения и социального развития по субъекту РФ (Управлении Росздравнадзора по субъекту РФ)», муниципальные учреждения здравоохранения, общества с ограниченной ответственностью, закрытые акционерные общества и другие организации предоставляют пакет документов в территориальные управления Росздравнадзора; областные, краевые, республиканские больницы, учреждения федерального подчинения и ведомственные (центрального подчинения) предоставляют пакет документов для лицензирования в Росздравнадзор.

В настоящее время лицензирование деятельности КДЛ осуществляется в соответствии с Постановлением Правительства РФ от 4 июля 2002 г. № 499 «Об утверждении Положения о лицензировании медицинской деятельности» и приказом Минздрава России от 26 июля 2002 г. № 238 «Об организации лицензирования медицинской деятельности».

Важнейшим этапом в нормативно-правовом регулировании лицензирования стал Федеральный закон от 2 июля 2005 г. № 80-ФЗ «О внесении изменений в Федеральный закон "О лицензировании отдельных видов деятельности", Федеральный закон "О защите прав юридических лиц и индивидуальных предпринимателей при проведении государственного контроля (надзора)» и Кодекс РФ об административных правонарушениях», вступивший в силу 17 июля 2005 г.

Названный закон сократил число лицензируемых видов деятельности с 123 до 86. При этом лицензирование всех видов деятельности в сфере здравоохранения и социального развития (в том числе медицинской деятельности), как нуждающихся в особом государственном контроле, было сохранено. При этом процедура лицензирования была в значительной мере упрощена, а наказание за грубые нарушения лицензионных требований и условий - ужесточены.

Так, срок рассмотрения заявлений соискателей сокращен до 45 дней, плановые мероприятия по контролю могут проводиться не чаще чем 1 раз в 2 года, а для субъектов малого предпринимательства - не ранее чем через 3 года после его государственной регистрации.

Номенклатура работ и услуг утверждена приказом Минздрава России от 26 июля 2002 г. № 238 «Об организации лицензирования медицинской деятельности», лицензию необходимо получать на все виды работ и услуг, осуществляемых медицинским учреждением или организацией.

Одним из лицензионных требований и условий в отношении КДЛ является наличие соответствующего организационно-технического и материально-технического оснащения, включая оборудование, инструменты, транспорт и документацию, обеспечивающих использование медицинских технологий, разрешенных к применению Минздравом России или Росздравнадзором.

В соответствии с Федеральным законом от 8 августа 2001 г. № 128-ФЗ «О лицензировании отдельных видов деятельности», постановлениями Правительства РФ от 4 июля 2002 г. № 499 «Об утверждении Положения о лицензировании медицинской деятельности», для получения лицензии на медицинскую деятельность необходимо предоставить сведения о наличии высшего или среднего медицинского образования, дополнительного образования и специальной подготовки, соответствующих требованиям и характеру выполняемых работ и предоставляемых услуг, и стажа работы по лицензируемой деятельности.

Предоставляются диплом об образовании, свидетельства о профессиональной подготовке врачей-специалистов (первичная специализация не менее 544 ч, интернатура, ординатура) в соответствии с приказом Минздрава России от 27 августа 1999 г. № 337 «О номенклатуре специальностей в учреждениях здравоохранения РФ», письмом Минздрава России от 5 января 2001 г. № 2510/149-01-32, свидетельства о повышении квалификации.

Осуществление медицинской деятельности без оформления права на ее осуществление - лицензии является нарушением действующего законодательства.

В соответствии со статьей 11 Федерального закона от 8 августа 2001 г. № 128-ФЗ «О лицензировании отдельных видов деятельности», переоформление лицензии предусмотрено в случае реорганизации юридического лица в форме преобразования, изменения его наименования или места его нахождения, а также в случае изменения адресов мест осуществления деятельности, в случае реорганизации юридических лиц в форме слияния при наличии на дату государственной регистрации правопреемника реорганизованных юридических лиц у каждого участвующего в слиянии юридического лица лицензии на один и тот же вид деятельности. В соответствии с установленным порядком лицензиат - юридическое лицо либо его правопреемник обязаны подать заявление о переоформлении документа, подтверждающего наличие лицензии.

Заявление о переоформлении документа, подтверждающего наличие лицензии, подается лицензиатом в лицензирующий орган не позднее чем через 15 дней со дня внесения соответствующих изменений в Единый государственный реестр юридических лиц. Превышение этого срока лишает его права на упрощенное 10-дневное переоформление лицензии, а требует нового полноформатного лицензирования.

Переоформление лицензии на медицинскую деятельность требует предоставления следующих документов:

  • заявление о переоформлении лицензии. В заявлении указываются новые сведения о лицензиате или его правопреемнике;

  • распоряжение вышестоящей организации о реорганизации учреждения, новый устав учреждения;

  • документ, подтверждающий факт внесения соответствующих изменений в Единый государственный реестр юридических лиц;

  • копия старой лицензии;

  • документ, подтверждающий уплату лицензионного сбора за переоформление лицензии.

Лицензионный контроль осуществляется в соответствии со статьей 12 Федерального закона от 8 августа 2001 г. № 128-ФЗ «О лицензировании отдельных видов деятельности».

Лицензионный контроль проводится лицензирующим органом в целях проверки полноты и достоверности сведений о соискателе лицензии, содержащихся в предоставленных соискателем лицензии заявлении и документах, возможности выполнения им лицензионных требований и условий, а также проверки сведений о лицензиате и соблюдения им лицензионных требований и условий при осуществлении лицензируемого вида деятельности.

Проверка лицензирующим органом проводится путем сопоставления таких сведений со сведениями из Единого государственного реестра юридических лиц или Единого государственного реестра индивидуальных предпринимателей. Лицензирующий орган получает соответствующую информацию в порядке, установленном Правительством РФ, от федерального органа исполнительной власти, уполномоченного на осуществление государственной регистрации юридических лиц и индивидуальных предпринимателей.

К отношениям, связанным с проведением лицензирующим органом проверки возможности выполнения соискателем лицензии лицензионных требований и условий и проверки соблюдения лицензиатом указанных требований и условий при осуществлении лицензируемого вида деятельности, применяются положения Федерального закона от 8 августа 2001 г. № 134-ФЗ «О защите прав юридических лиц и индивидуальных предпринимателей при проведении государственного контроля (надзора)».

Основанием для внеплановых проверок может стать выявление нарушений в ходе плановой проверки, обращение граждан и организаций с жалобами на нарушения их прав действиями лицензиата, возникновение угрозы жизни и здоровью граждан.

В случае если лицензиат допускает грубые нарушения лицензионных требований и условий (например), комиссия по проверке наряду с актом вправе составить протокол об административном правонарушении для последующего решения суда о назначении штрафа, налагаемого на саму организацию (учреждение) или его руководителя.

Необходимо отметить такие важные аспекты данного закона, как ответственность должностных лиц лицензирующих органов за ненадлежащее исполнение своих обязанностей в соответствии с законодательством, а также обязательность размещения сведений из реестров лицензий в открытых и общедоступных государственных информационных ресурсах. Во исполнение этого решения Росздравнадзор размещает информацию о выданных по всем видам деятельности лицензиях ежемесячно на своем официальном сайте в сети Интернет: http://www.roszdravnadzor.ru.

В соответствии со статьей 13 Федерального закона от 8 августа 2001 г. № 128-ФЗ «О лицензировании отдельных видов деятельности» действие лицензии может быть приостановлено и аннулировано.

Лицензирующие органы вправе обратиться в суд для принятия решения о приостановлении действия лицензии в случае выявления лицензирующими органами неоднократных нарушений или грубого нарушения лицензиатом лицензионных требований и условий. Одним из таких условий является отсутствие соответствующего организационно-технического и материально-технического оснащения, включая оборудование, инструменты, транспорт и документацию, обеспечивающих использование медицинских технологий, разрешенных к применению Минздравом России или Росздравнадзором, в том числе регламентированных действующими приказами Минздрава России.

Лицензия может быть аннулирована решением суда на основании заявления лицензирующего органа в случае, если нарушение лицензиатом лицензионных требований и условий повлекло за собой нанесение ущерба правам, законным интересам, здоровью граждан, обороне и безопасности государства.

Суд обязан установить срок устранения лицензиатом нарушений, повлекших за собой приостановление действия лицензии. Указанный срок не может превышать 90 дней. В случае если в установленный срок лицензиат не устранил указанные нарушения, лицензирующий орган обязан обратиться в суд с заявлением об аннулировании лицензии.

Лицензиат обязан уведомить в письменной форме лицензирующий орган об устранении им нарушений, повлекших за собой приостановление действия лицензии. Лицензирующий орган проводит очную проверку и, в случае если устранение нарушений подтверждается, направляет в суд представление о возобновлении действия лицензии. Суд может принять решение о возобновлении действия лицензии.

Срок действия лицензии на время приостановления ее действия не продлевается.

В случае неуплаты лицензиатом в течение 3 мес государственной пошлины за предоставление лицензии лицензия также может быть аннулирована.

Решение о приостановлении действия и аннулировании лицензии может быть обжаловано в порядке, установленном законодательством РФ. Решение об отказе в предоставлении лицензии принимает Росздравнадзор после рассмотрения на комиссии Федеральной службы по надзору в сфере здравоохранения и социального развития (центральной или субъекта РФ) по лицензированию медицинской деятельности в связи с тем, что:

  • предоставленные документы не соответствуют предъявляемым лицензионным требованиям, определенным пунктами 4 и 5 Постановления Правительства РФ от 4 июля 2002 г. № 499 «Об утверждении Положения о лицензировании медицинской деятельности»;

  • очная проверка соискателя лицензии не подтвердила его возможности по осуществлению заявленных работ и услуг.

Целями лицензирования медицинской деятельности КДЛ в современных условиях являются:

  • создание равных условий для деятельности лабораторий различных форм собственности;

  • обеспечение рыночного развития, модернизации, повышения конкурентоспособности лабораторий;

  • контроль за соблюдением прав граждан на адекватные лабораторные услуги.

Ниже приведены перечень документов, которые должна предоставить КДЛ в лицензирующие органы для получения лицензии, и номенклатура работ и услуг по оказанию соответствующей медицинской помощи.

Перечень документов, предоставляемых в лицензирующие органы

Штамп учреждения В Федеральную службу по надзору в сфере здравоохранения и социального развития

Заявление о предоставлении лицензии на медицинскую деятельность Заявитель

pic 0008

Достоверность предоставленных документов подтверждаю. Обязуюсь в случае преобразования, изменения наименования или адреса (адресов) места осуществления лицензируемого вида деятельности не позднее чем через 15 дней подать заявление о переоформлении лицензии с приложением соответствующих документов, подтверждающих указанные изменения.

pic 0009

Перечень документов, прилагаемых соискателем лицензии к заявлению на предоставление лицензии на медицинскую деятельность (для юридического лица)

  1. Копии учредительных документов (устав, учредительный договор, положение, свидетельство о внесении изменений в учредительные документы, зарегистрированных в установленном порядке) и свидетельства о государственной регистрации соискателя лицензии в качестве юридического лица с указанием его кода по Общероссийскому классификатору предприятий и организаций.

  2. Копия санитарно-эпидемиологического заключения о соответствии санитарным правилам выполняемых работ и предоставляемых услуг, составляющих медицинскую деятельность, при наличии нескольких обособленных объектов, в том числе на них.

  3. Заключение Государственной противопожарной службы РФ о соблюдении на объектах соискателя лицензии требований пожарной безопасности.

  4. Копия свидетельства о постановке соискателя лицензии на учет в налоговом органе.

  5. Копии документов, подтверждающих соответствующую лицензионным требованиям и условиям квалификацию работников юридического лица.

  6. Документ, подтверждающий уплату лицензионного сбора (в размере 300 руб.) за рассмотрение заявления о предоставлении лицензии, документ, подтверждающий уплату лицензионного сбора (в размере 1000 руб.) за предоставление лицензии (предоставляется после получения соискателем лицензии уведомления о принятии лицензирующим органом решения о выдачи лицензии). Номер счета для перечисления указанных сумм платежей узнается в налоговой инспекции по месту регистрации учреждения.

При приеме документов на предоставление лицензии проверяется соблюдение соискателем лицензионных требований и условий, приведенных в пункте 4 Положения о лицензировании медицинской деятельности, утвержденного Постановлением Правительства РФ от 4 июля 2002 г. № 499:

  1. а) наличие у соискателя лицензии (лицензиата) принадлежащих ему на праве собственности или на ином законном основании соответствующих помещений (в виде копий документов, подтверждающих право пользования помещениями, в которых будет осуществляться лицензируемая деятельность);

  2. б) наличие соответствующих организационно-технических условий материально-технического оснащения, включая оборудование, инструменты, транспорт и документацию, обеспечивающих использование медицинских технологий, разрешенных к применению Минздравом России (в виде табеля оснащения медицинским инструментарием, аппаратами, приборами, предметами ухода за больными, медицинской мебелью и оборудованием). На оборудование с закончившимся гарантийным сроком необходимо предоставить акт из организации, имеющей лицензию на осуществление технического обслуживания медицинской техники. Документы, предоставленные для получения лицензии, принимаются по описи, копию которой с указанием даты их приема лицензирующий орган направляет (вручает) соискателю лицензии.

Копии документов, не заверенные нотариусом, предоставляются с предъявлением оригинала.

За предоставление недостоверных или искаженных сведений соискатель лицензии несет ответственность в соответствии с законодательством РФ.

Сведения о квалификации работников юридического лица/ индивидуального предпринимателя в соответствии с работами и услугами по специальностям

(наименование и адрес учреждения)

Наименование работ и услуг по специальностям (с указанием кода)

Ф.И.О. врачей, медицинских сестер

Сведения об образовании(наименование учебного заведения, год окончания, номер документа, специальность; наименование учебного заведения и даты прохождения специализации, номер документа, специальность; усовершенствования за последние 5 лет, наименование учебного заведения, наименование темы, количество часов; сертификат - дата выдачи, специальность)

диплом об образовании

специализация

усовершенствование, сертификат

категория

стаж работы (для руководителей/уполномоченных и ИП)

«_»__г.___

(подпись руководителя учреждения или ИП)

(подпись руководителя отдела кадров)

В Федеральную службу по надзору в сфере здравоохранения и социального развития

Сведения о материально-техническом оснащении

Наименование и адрес учреждения на каждый обособленный объект.

1. *Медицинская техника.*

1.1. *Перечень медицинского оборудования по следующей форме (отдельно по каждому разделу: стоматологическое, рентгенологическое, лабораторное, ультразвуковое, физиотерапевтическое, эндоскопическое и т.д.).*

Оборудование и инструменты Год выпуска Доля физического износа, % Продление ресурса эксплуатации с указанием даты, документов Находится на гарантии (сервисном обслуживании) на срок до

1.2. Наименование и адрес организации, осуществляющей гарантийное или техническое обслуживание. Копия лицензии этой организации.

1.3. Копия акта обследования технического состояния медицинской техники и оборудования, изготовленных более 1 года назад, по вышеуказанным разделам. Обследование проводится организацией, имеющей лицензию на осуществление технического обслуживания медицинской техники.

2. Перечень имеющегося в наличии медицинского белья, перевязочного и вспомогательного материала (с указанием количества)

Медицинское белье, перевязочный и вспомогательный материал Количество

3. Перечень имеющейся в наличии медицинской мебели (с указанием количества).

Медицинская мебель Количество

Примечание. Все вышеперечисленные документы заверяются подписью руководителя и печатью организации соискателя лицензии.

Значительную долю временных затрат на проведение лицензирования у заведующего КДЛ занимает получение санитарно-эпидемиологического заключения о соответствии санитарным правилам выполняемых работ и предоставляемых услуг, составляющих медицинскую деятельность. Ниже приведен перечень документов, необходимых для санитарно-эпидемиологической экспертизы и подготовки заклю чения.

Перечень документов, необходимых для санитарно-эпидемиологической экспертизы и подготовки заключения.

  1. Свидетельство о регистрации.

  2. Свидетельство о внесении в единый реестр.

  3. Свидетельство о постановке на учет в налоговой инспекции.

  4. Копия предыдущей лицензии.

  5. Список заявленных видов медицинской деятельности согласно реестру.

  6. Поэтажный план помещений с их экспликацией.

  7. Юридические основания для использования помещений (договор аренды, субаренды, свидетельство о собственности).

  8. Указать этажность здания, год постройки, когда проводился капитальный ремонт, косметический ремонт (указать перечень работ).

  9. Согласованный план санитарно-противоэпидемиологических мероприятий и план (программа) производственного контроля:

    • договор (2 экземпляра);

    • спецификация (2 экземпляра).

  10. Свидетельство об аттестации специалиста на право осуществления производственного контроля или документ, подтверждающий факт заключения договора на проведение обучения.

  11. Паспорта на вентиляционные системы и акты наладки, документация на кондиционеры (при их наличии).

  12. Договоры:

    • на вывоз твердых бытовых отходов;

    • утилизацию люминесцентных ламп;

    • утилизацию одноразовых шприцев и изделий из пластмассы;

    • на стирку спецодежды;

    • на проведение профессиональных осмотров специалистов лаборатории.

  13. Медицинские книжки сотрудников или списки с отметкой о прохождении флюорографического обследования, прививок против дифтерии и столбняка (АКДС-м), против кори, лицам до 35 лет, а для контингента риска - прививок против вирусного гепатита В и обследования на ВИЧ, сифилис.

  14. Санитарно-эпидемиологическое заключение, лицензия на работу с микроорганизмами III-IV групп патогенности.

  15. Перечень выполняемых исследований (для бактериологической лаборатории - перечень выделяемых микроорганизмов).

  16. Договор на проведение работ по дезинсекции и дератизации.

  17. Журнал расчета дезинфекционных средств.

  18. Наличие дезинфекционных средств, наименование, количество.

  19. Договор на техническое обслуживание стерилизующей аппаратуры.

  20. Договор на бактериологический контроль стерилизующей аппаратуры, наименование стерилизующей аппаратуры, год выпуска, где установлена.

  21. Договор на проведение очистки и дезинфекции системы вентиляции и кондиционирования.

До последнего времени КДЛ при лицензировании своей деятельности руководствовались приведенными выше руководящими документами. В 2007 г. вышло Постановление Правительства РФ от 22 января 2007 г. № 30 «Об утверждении Положения о лицензировании медицинской деятельности». Согласно данному Положению, лицензирование медицинской деятельности теперь осуществляет Федеральная служба по надзору в сфере здравоохранения и социального развития (лицензирующий орган). Вместе с тем порядок получения лицензии и предоставляемые для ее получения документы остались без изменений. В приложении к Положению о лицензировании медицинской деятельности перечень работ (услуг), подлежащих лицензированию в отношении лабораторной практики, остался прежним.

Одновременно с предоставленным документом вышло Постановление Правительства РФ от 22 января 2007 г. № 31 «Об утверждении Положения о лицензировании медицинской деятельности, связанной с использованием возбудителей инфекционных заболеваний». В соответствии с данным Положением лицензированию подлежит деятельность, связанная с использованием возбудителей инфекционных заболеваний, в том числе общих для человека и животных (микроорганизмов, в том числе генетически измененных, бактериальных токсинов, простейших, гельминтов и ядов биологического происхождения I-IV групп патогенности, их производственных, музейных штаммов и санитарно-показательных микроорганизмов, материалов, зараженных или с подозрением на зараженность возбудителями инфекционных заболеваний I-IV групп патогенности). В данном документе указывается, что лицензирование деятельности, связанной с использованием возбудителей инфекционных заболеваний, осуществляется Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (лицензирующий орган).

1.8. ОСНОВНАЯ ДОКУМЕНТАЦИЯ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Каждая КДЛ должна вести установленную руководящими документами нормативную документацию. Ниже приведен перечень основной документации лаборатории.

Первый главный и основополагающий документ, который должна иметь КДЛ, - это «Руководство по качеству исследований в КДЛ» (далее - Руководство). По своей сути он является паспортом КДЛ. Этот документ подробнейшим образом описан в приложении 1 приказа Минздрава России от 7 февраля 2000 г. № 45 «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения РФ».

Руководство должно обязательно включать следующие разделы.

2.1. Общая часть.

Документы, входящие в общую часть Руководства, предоставляют информацию об организационной структуре КДЛ, кадровом обеспечении и условиях ее деятельности.

2.1.1. Информационные данные о КДЛ (форма № 1 к паспорту лаборатории):

  • наименование учреждения, в состав которого входит КДЛ;

  • Ф.И.О. руководителя ЛПУ и его телефон;

  • наименование КДЛ;

  • юридический адрес лаборатории;

  • Ф.И.О. заведующего КДЛ и его телефон;

  • Ф.И.О. должностного лица, ответственного за контроль качества в КДЛ.

2.1.2. Сведения об аккредитации КДЛ и результатах инспекционного контроля.

Приводятся регистрационный номер, дата выдачи и срок действия сертификата аккредитации КДЛ. Перечисляются виды деятельности, включенные в область аккредитации КДЛ. Приводятся даты подписания актов проведения инспекционного контроля и содержание выводов комиссий по инспекционному контролю за период после выдачи действующего сертификата аккредитации КДЛ.

2.1.3. Организационная структура лаборатории.

В данном разделе приводится структурная схема подразделений лаборатории с указанием выполняемых видов исследований и их количества (по отчету за предыдущий год по форме № 30), в том числе отмечается централизованное выполнение исследований для других учреждений.

2.1.4. Кадровое обеспечение КДЛ.

В разделе приводятся данные о персонале лаборатории по форме № 3 к паспорту лаборатории: состав, квалификация, штатное расписание (число занятых должностей, физических лиц). Прилагаются должностные инструкции на каждого сотрудника с указанием методов, которыми он владеет (их необходимо составить в соответствии с приказом Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380 «О состоянии и мерах по совершенствованию лабораторного обеспечения диагностики и лечения пациентов в учреждениях здравоохранения РФ»).

2.1.5. Условия деятельности КДЛ - помещения лаборатории.

Приводятся разрешительные заключения территориальных органов санитарно-эпидемиологической службы, пожарной безопасности и инспекции по технике безопасности о помещениях лаборатории. Указываются данные об основных производственных помещениях КДЛ по форме № 6 к паспорту лаборатории: общая площадь лаборатории с указанием помещений для выполнения анализов, хранения реактивов и оборудования, помещений для нужд персонала; наличие отопления, водоснабжения, вентиляции, канализации и отражается степень соответствия действующим нормативам.

2.1.6. Нормативно-техническая документация (НТД), регламентирующая деятельность КДЛ.

В разделе приводится список нормативных документов, имеющихся в лаборатории. К НТД относятся: приказы Минздрава России и территориальных органов управления здравоохранением, отраслевые стандарты, методические указания и инструкции по применению унифицированных клинических лабораторных методов исследования, утвержденные Минздравом СССР и Минздравом России, фармакопейные статьи, паспорта, технические описания и инструкции по эксплуатации приборов и применению наборов реактивов.

2.2. Система обеспечения качества деятельности КДЛ.

Система обеспечения качества КДЛ строится в соответствии со следующими документами, регламентирующими ее оснащенность и деятельность.

2.2.1. Перечень исследуемых показателей (форма № 2 к паспорту лаборатории).

В разделе приводится полный перечень анализируемых показателей с указанием методов исследования, калибровочных материалов.

2.2.2. Описание преаналитического, долабораторного этапа анализа. В разделе приводится инструкция, утверждаемая главным врачом ЛПУ и согласованная с заведующим лабораторией, содержащая правила подготовки обследуемых и взятия биологического материала с соблюдением правил асептики и антисептики, способов и сроков его транспортировки, обеспечивающих сохранность проб и эпидемиологическую безопасность («Положение о порядке учета, хранения, обращения, отпуска и пересылки культур бактерий, вирусов, риккетсий, грибов, простейших, микоплазм, бактериальных токсинов, ядов биологического происхождения», утвержденное Минздравом СССР 18 мая 1979 г.).

2.2.3. Нормативно-методическое обеспечение преаналитического внутрилабораторного и аналитического этапов.

В разделе приводится описание всех применяемых лабораторией методов исследования: инструкций по применению наборов реактивов, разрешенных Минздравом России к использованию в КДЛ, унифицированных методов (утвержденных приказами Минздрава СССР или Минздрава России) или неунифицированных методов, утвержденных руководством ЛПУ. В описании метода (инструкции) должны быть указаны: принцип аналитического метода и характеристика его надежности, методика приготовления реактивов, сроки и температура хранения биологического материала до исследования, особенности подготовки пробы к исследованию (время и скорость центрифугирования, перемешивание проб непосредственно перед анализом и др.), оборудование, меры предосторожности работы с реактивами, анализируемые пробы, диапазоны нормальных значений определяемого показателя, порядок проведения и длительность анализа, способ расчета результатов исследования, условия и срок хранения реактивов (наборов реактивов).

2.2.4. Перечень оборудования КДЛ.

В разделе приводится перечень основного и вспомогательного оборудования с указанием заводов и фирм-изготовителей, времени изготовления и приобретения по формам № 4 и 5 к паспорту лаборатории. Прилагается журнал метрологической поверки и сервисного обслуживания приборов, в котором указываются сроки поверок и ремонта. Для каждого прибора необходимо наличие инструкций по эксплуатации и технике безопасности и журнала регистрации времени работы приборов, заверенных подписью заведующего лабораторией («Правила техники безопасности при эксплуатации изделий медицинской техники в учреждениях здравоохранения», Минздрав СССР, 1985).

2.2.5. Перечень используемых реактивов.

В перечне указываются производители, дата изготовления, приобретения, срок годности, условия хранения веществ. Для реактивов, изготавливаемых в лаборатории, указываются даты приготовления, сроки хранения и Ф.И.О. лица, ответственного за приготовление. Хранение, учет и использование реактивов должны проводиться в соответствии с нормативными документами Минздрава России («Правила устройства, техники безопасности и производственной санитарии при работе в КДЛ лечебно-профилактических учреждений системы Минздрава СССР», 1971).

Перечень используемых реактивов должен соответствовать состоянию на настоящий момент, в него вносятся все новые приобретения и делаются записи о расходовании ранее приобретенных. Все записи удостоверяются подписью заведующего лабораторией или другого ответственного лица.

2.2.6. Контроль качества результатов лабораторного анализа.

В разделе описывается внутрилабораторный и внешний контроль качества результатов лабораторного анализа в соответствии с формой № 7 паспорта лаборатории и приложением 3 к Положению об аккредитации клинико-диагностических лабораторий.

При характеристике ВКК указываются контролируемые показатели и соответствующие им контрольные материалы, периодичность контрольных измерений, наличие контрольных карт. Указываются данные о внутри- и межсерийной вариации по результатам исследования контрольного материала или проб, взятых от пациентов, и о смещении (систематической погрешности), полученном при анализе аттестованных контрольных материалов. Отмечается проведение контрольных процедур при введении новых методик, исследовании новых компонентов биологических жидкостей, смене оборудования или выходе его из ремонта.

Система ВКК в КДЛ должна действовать в соответствии с нормативными документами Минздрава России (приказ Минздрава СССР от 23 апреля 1985 г. № 545 «О дальнейшем совершенствовании контроля качества клинических лабораторных исследований»), методическими рекомендациями (методические рекомендации «Контроль качества коагулологических исследований», утверждены Минздравом России в 1993 г.) и «Правилами проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований».

Приводятся сведения об участии лаборатории в Федеральной системе внешней оценки качества (ФСВОК) и результаты оценки качества. Указывается перечень контролируемых параметров и число циклов, в которых лаборатория принимала участие, в соответствии с формой № 7 (графа 5) к паспорту лаборатории. Если помимо ФСВОК лаборатория участвует в других системах внешней оценки качества (международной, коммерческой), также приводятся сведения об участии в этих системах.

Деятельность КДЛ по участию во внешней оценке качества результатов лабораторных исследований должна соответствовать нормативным документам Минздрава России.

2.2.7. Уничтожение остатков биоматериалов, реактивов и расходных материалов.

В разделе приводится инструкция, содержащая описание безвредных для окружающей среды способов обезвреживания и уничтожения остатков биологических материалов, реактивов, расходных материалов, которая подписывается главным врачом ЛПУ и заведующим лабораторией. Инструкция должна соответствовать правилам и требованиям, указанным в нормативных документах Минздрава России (Санитарные правила и нормы 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов в лечебно-профилактических учреждениях»).

2.2.8. Постаналитический контроль.

В разделе приводится порядок проведения постаналитического контроля результатов лабораторного анализа: просмотр результатов исследований, оценка их аналитической достоверности по данным исследования контрольных материалов, сравнение полученных результатов с референтными величинами, оценка возможной интерференции лекарственных веществ, подписывание бланков.

2.3. Учетно-отчетная документация.

Унифицированные формы учетно-отчетной документации должны соответствовать нормативным документам Минздрава России (приказ Минздрава СССР от 4 октября 1980 г. № 1030 «Об утверждении форм первичной документации учреждений здравоохранения»).

2.3.1. В разделе приводятся формы регистрации результатов лабораторных исследований: компьютерная или с помощью регистрационных журналов. Указываются ответственные за сохранность архива лаборатории, конфиденциальность сведений. Журналы регистрации анализов по видам исследований, в том числе отдельно журнал регистрации исследований на сифилис, имеют срок хранения не менее 3 лет.

2.3.2. Указываются формы выдачи результатов лабораторного анализа (бланки, электронная почта), порядок и время выдачи результатов пациентам и клиницистам.

2.3.3. Приводятся формы ежемесячных, квартальных, годовых отчетов о результатах лабораторных исследований.

В приказе Минздрава России от 7 февраля 2000 г. № 45 «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения РФ» приводится и перечень основных ведомственных нормативных документов, используемых при разработке Руководства.

Последующие приказы Минздрава и Минздравсоцразвития России потребовали внесения дополнительных пунктов и, соответственно, наличия дополнительных документов, не предусмотренных приказом № 45.

Так, в соответствии с приказом Минздрава России от 26 мая 2003 г. № 220 «Об утверждении отраслевого стандарта "Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов"», раздел 2.2.6 «Контроль качества результатов лабораторного анализа», должны быть составлены еще следующие обязательные документы.

  1. Регистрационная форма «Оценка сходимости результатов измерения» (приложение 2 к отраслевому стандарту).

  2. Регистрационная форма «Результаты установочных серий измерений показателя в контрольных материалах» (приложение 3 к отраслевому стандарту).

  3. Журнал «Регистрация отбракованных результатов внутрилабораторного контроля качества» (приложение 4 к отраслевому стандарту).

  4. Контрольные карты для всех методов клинических лабораторных исследований, которые контролируются в данной КДЛ, соответствующие регистрационным формам 1-2.

  5. Дополнительно должен быть журнал по контролю качества, в котором регистрируются результаты контроля качества выполнения лабораторных исследований, проводимого методами проверки повторных проб, двукратного определения одного материала, исследования случайной пробы и т.п. (приказ Минздрава СССР от 23 апреля 1985 г. № 545 «О дальнейшем совершенствовании контроля качества клинических лабораторных исследований»).

Использование в КДЛ компьютерных программ по ВКК лабораторных исследований позволяет существенно облегчить ведение контроля качества выполнения исследований и уменьшить количество бумажных журналов. Большинство этих программ адаптировано к положениям приказов № 45 и 220 и позволяют получить все необходимые промежуточные результаты контроля и контрольные карты по всем показателям. Обязательным условием надежной работы в этом случае является создание резервных копий, позволяющих минимизировать последствия разного рода сбоев в работе аппаратуры.

Кроме указанных выше, во всех КДЛ должны быть следующие документы.

  1. Режим работы КДЛ, утвержденный руководителем ЛПУ.

  2. Расписание работы КДЛ (для больных).

  3. Информация для больных о правильной подготовке к проведению анализов.

  4. Журнал учета спирта.

  5. Журнал учета перевязочного материала.

  6. Журнал контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава) (срок хранения - не менее 1 года).

  7. Журнал регистрации температурного режима холодильников и термостатов.

  8. Кроме пункта Руководства 2.2.4.2 инструкции по эксплуатации и технике безопасности для каждого прибора, в лаборатории должны быть инструкции по технике безопасности работы в КДЛ и журнал проведения инструктажа сотрудников лаборатории. Инструктаж проводится ответственным по технике безопасности (рекомендуется 4 раза в год).

  9. Журнал регистрации биологических аварий с вложенными подготовленными чистыми бланками актов.

  10. Журнал проведения генеральной уборки.

  11. Рабочая документация лаборатории.

    1. 11.1. Анализ работы КДЛ за последние годы.

    2. 11.2. План мероприятий, проводимых в КДЛ.

    3. 11.3. Журнал регистрации занятий с сотрудниками лабораторий. В КДЛ, оснащаемых современным оборудованием (автоматическими и полуавтоматическими анализаторами, оборудованием для ИФА и ПЦР-анализа), полезен журнал по проверке знаний сотрудниками КДЛ правил работы на новой (дорогостоящей) аппаратуре.

КДЛ, выполняющим паразитологические и бактериологические анализы, необходимо иметь лицензию на проведение соответствующих исследований, которая должна быть приложена к Руководству.

Если при этом лаборатория проводит исследование микобактерий туберкулеза, то в соответствии с приказом Минздрава России от 21 марта 2003 г. № 109 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в РФ» и приказом Минздравсоцразвития России от 2 октября 2006 г. № 690 должны иметься дополнительные формы и журналы в соответствии с рекомендациями приказа.

  1. Направление на микроскопическое исследование на туберкулез (приложение 5).

  2. Направление на бактериоскопическое исследование.

  3. Результаты бактериоскопического исследования (эти бланки могут быть соединены).

  4. Сопроводительный лист доставки диагностического материала для микроскопического исследования на туберкулез (учетная форма № 04-2-ТБ/у, приложение 4).

  5. Журнал регистрации микроскопических исследований на туберкулез в соответствии с предлагаемой в приказе формой (учетная форма № 04-ТБ/у, приложение 2).

  6. Журнал регистрации диагностического материала, собранного для микроскопических исследований на туберкулез (учетная форма № 04-1-ТБ/у, приложение 3)

  7. Журнал контроля качества микроскопических исследований на туберкулез.

Кроме этого, в КДЛ должны быть формы оперативной квартальной отчетности по организации выявления и лечения больных туберкулезом:

  • сведения о микроскопических исследованиях на туберкулез;

  • ежеквартальные отчеты;

  • список пациентов с положительным результатом микроскопии.

КДЛ, выполняющие платные медицинские услуги, должны иметь соответствующий договор и прейскурант цен, утвержденный руководителем ЛПУ.

Ведение документации и ответственных за нее в настоящее время регламентирует приказ Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380 «О состоянии и мерах по совершенствованию лабораторного обеспечения диагностики и лечения пациентов в учреждениях здравоохранения РФ».

В приложении 1 «Положение о КДЛ…​», в пункте 11, указывается: основной задачей КДЛ является ведение учетно-отчетной документации в соответствии с утвержденными формами. Далее в приложении 2 «Положение о заведующем КДЛ»: заведующий КДЛ. осуществляет контроль за работой сотрудников лаборатории, в том числе за правильностью ведения документации. Из «Положения о враче клинической лабораторной диагностики» (приложение 3) следует, что он составляет рекомендации для персонала лечебных отделений ЛПУ по правилам взятия и доставки биологического материала в КДЛ.

В «Положении о медицинском технологе» (приложение 5) указывается, что он ведет необходимую документацию (регистрацию, записи в журналах, бланках результатов анализа, заявки на реактивы, учет своей работы, составление отчета и т.д.). В положениях о медицинском технике (фельдшере-лаборанте) и лаборанте (приложения 6-7) констатируется, что они ведут необходимую документацию (регистрацию, записи в журналах, бланках результатов анализа и т.д.).

Таким образом, основная нагрузка по ведению документации ложится на средний медицинский персонал КДЛ, а контроль и ответственность за правильностью ведения документации возложены на заведующего КДЛ.

Реально часть документации ведет заведующий КДЛ (например, составление большей части «Руководства по качеству в КДЛ»). Часть документов могут вести врачи и биологи КДЛ по поручению заведующего КДЛ, например, документацию, связанную с контролем качества, рекомендации для персонала ЛПУ, информацию для больных о правильной подготовке к проведению анализов и т.п.

Значительную часть документов ведет сотрудник КДЛ, на которого возложена материальная ответственность (медицинский технолог, медицинский техник, так как должность старшего лаборанта в наших КДЛ пока отсутствует): журналы по учету спирта, перевязочного материала, реактивов и т.п.

Регистрацию, записи в журналах, бланках результатов анализа и т.д., как правило, выполняет средний медицинский персонал. Часто это делает и тот сотрудник (врач, биолог, заведующий КДЛ), который данный анализ провел (гематологические, цитологические и другие исследования).

Ведение документации по контролю качества должен осуществлять постоянно заведующий КДЛ.

Заведующий КДЛ должен строго следить за правильностью и аккуратностью ведения журналов регистрации выполненных лабораторных исследований.

КДЛ, проводящие диагностические исследования по выделению ПБА I-IV групп или работающие с ними, должны вести учет движения и хранения ПБА по следующим формам (формы учетных документов представлены в СанПиН «Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности» СП 1.2.03695, приложение 5.1):

  • форма № 512/у - журнал регистрации патогенных биологических агентов, поступающих для исследования (идентификации) и хранения;

  • форма № 513/у - журнал учета выделенных штаммов микроорганизмов;

  • форма № 514/у (514а/у) - журнал учета движения патогенных биологических агентов;

  • форма № 518/у - журнал учета ПБА, находящихся в рабочей коллекции;

  • форма № 520/у - журнал обеззараживания патогенных биологических агентов.

3.2.2. Все коллекции должны вести учет ПБА I-IV групп по следующим формам:

  • форма № 512/у - журнал регистрации патогенных биологических агентов, поступивших для исследования (идентификации) и хранения;

  • форма № 514/у (514а/у) - журнал учета движения патогенных биологических агентов;

  • форма № 515/у - инвентарный журнал коллекционных патогенных биологических агентов;

  • форма № 516/у - журнал выдачи патогенных биологических агентов;

  • форма № 517/у - карта индивидуального учета коллекционного патогенного биологического агента N;

  • форма № 518/у - журнал учета ПБА, находящихся в рабочей коллекции;

  • форма № 519/у - журнал лиофилизации патогенных биологических агентов;

  • форма № 520/у - журнал обеззараживания патогенных биологических агентов.

Движение коллекционных ПБА I-IV групп регистрируют в форме № 514/у (514а/у): для групп - по каждому виду отдельно, а III-IV - суммарно по роду.

Ведение журналов, бесспорно, дело трудоемкое и безрадостное. И потому ЛИС, активно внедряющиеся в практику современных КДЛ, кроме многих других преимуществ, имеют и то, что они существенно облегчают ведение документации или, по крайней мере, большей части документации.

Глава 2. ПРОИЗВОДСТВЕННЫЕ АСПЕКТЫ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

По своей организации процессов выполнения лабораторных исследований и оснащенности средствами автоматизации, роботизации, информационными системами клиническая лабораторная диагностика как ни одна отрасль медицины приближается к индустриальному (промышленному) производству. Современная КДЛ представляет собой сложную производственную систему, в которой непрерывно реализуются сотни технологических процессов. Технологический процесс состоит из специфических действий, которые называются технологическими операциями (первичные элементы любого технологического процесса). Именно поэтому технологический процесс - это специфически упорядоченная, научно обоснованная совокупность действий (технологических операций), заданных во времени и в пространстве (место выполнения), с указанием времени их начала и завершения. Процесс заканчивается созданием продукции - диагностической информации, то есть результатов лабораторных исследований.

Производство результатов клинических лабораторных исследований неоднородно, состоит из многочисленных и разнообразных методов (методик), отличающихся друг от друга организацией их проведения, применяемой техникой и требованиями к квалификации персонала.

Любой технологический процесс, происходящий в КДЛ, состоит из необходимого целесообразного сочетания комплекса специфических частных технологических процессов (например, процесса производства гематологических или иммунологических исследований). Основные отличительные черты технологического процесса:

  1. как правило, происходит в пределах одного рабочего места;

  2. не может обеспечить весь комплекс действий, позволяющих получить результаты исследований;

  3. каждый технологический процесс, в свою очередь, представляет собой комплекс присущих ему технологических операций, составляющих специфическую часть единого технологического процесса производства результатов лабораторных исследований.

Технологическая операция (процедура) - комплекс непрерывно чередующихся действий специалистов, обеспечивающих заданное изучение свойств поступившего на исследование биологического материала или другой диагностической информации, полученной с помощью аналитической (диагностической) аппаратуры. Непрерывность выполнения технологической операции характеризуется строгой последовательностью взаимосвязанных действий.

Деление технологического процесса на операции (процедуры) преследует цель его стандартизации, планирования, учета и контроля.

Обеспечение качества результатов анализов базируется на едином технологическом процессе их производства, начиная от составления обоснованной заявки врачом-клиницистом, взятия биоматериала, его доставки, проведения исследований и кончая получением и использованием результатов для оказания пациенту качественной медицинской помощи. Качество процесса производства анализов обеспечивается совместными усилиями клиницистов и специалистов лаборатории. Результатом общих усилий является оказание качественной медицинской помощи пациенту.

2.1. ОСНОВНЫЕ ЭТАПЫ ВЫПОЛНЕНИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Концепция единого процесса лабораторного тестирования (Total Testing Process - TTP) была впервые сформулирована S.R. Gambino в 1970 г., а позже, в 1981 г., преобразована Дж. Лундбергом в привычный и понятный для клиницистов девятиэтапный цикл «Мозговая петля» (рис. 2.1) (Lundberg G.D., 1981).

pic 0010
Рис. 2.1. Цикл «Мозговая петля», отражающий шаги в процессе назначения, выполнения и использования лабораторных тестов для диагностики

Главное достоинство цикла «Мозговая петля» состоит в том, что он направлен на установление взаимосвязи между возможными последствиями диагностической ошибки и процессом лабораторного тестирования (будь то из лабораторных или нелабораторных источников), исходно концентрируясь на понимании того, что главным источником лабораторных ошибок служит мыслительная (когнитивная) деятельность врача-клинициста и врача клинической лабораторной диагностики. Кроме того, несмотря на то что цикл «Мозговая петля» упрощает сложный процесс проведения лабораторных исследований, он имеет и главное достоинство - позволяет идентифицировать процессы, где могут возникать лабораторные ошибки.

В 1988 г. Э. Трэверс и Ч. Крочмалом в целях правильной организации и стандартизации единого технологического процесса производства результатов лабораторных исследований было предложено разделить его на три этапа: преаналитический, аналитический и постаналитический (рис. 2.2). Для заведующего КДЛ важно понимать, что происходит на каждом этапе, так как все этапы тесно взаимосвязаны и любые отклонения в их проведении могут приводить к задержке результатов анализов и снижению их качества.

pic 0011
Рис. 2.2. Этапы выполнения лабораторных исследований

Преаналитический этап частично проводится вне лаборатории и включает:

  • прием пациента врачом и назначение необходимых лабораторных исследований;

  • заполнение бланка-заявки на анализы;

  • получение пациентом инструкций у медицинской сестры об особенностях подготовки к сдаче анализов или сбору биологического материала;

  • взятие проб биологического материала у больного в процедурном кабинете или коечном отделении;

  • доставка проб биологического материала в лабораторию.

Эта важнейшая часть преаналитического этапа. Она полностью находится в компетенции врача-клинициста, но в еще большей степени - в компетенции медицинской сестры. В следующем разделе все эти составляющие преаналитического этапа, которые проходят вне лаборатории, рассмотрены более детально.

Заканчивается преаналитический этап в лаборатории, где в отношении биоматериала осуществляются следующие процедуры:

  • прием;

  • регистрация;

  • обработка и сортировка;

  • подготовка к проведению исследований.

Аналитический этап проходит непосредственно в лаборатории и состоит из следующих процедур:

  • подготовки анализаторов, реактивов, калибраторов к проведению исследований;

  • калибровки анализаторов;

  • проведения ВКК;

  • проведения различных видов исследований;

  • обработки полученных результатов, их регистрации.

Постаналитический этап частично происходит в лаборатории и включает следующие процедуры:

  • написание заключений по результатам исследований;

  • доставку результатов исследований в отделения или регистратуру;

  • составление статистических отчетов;

  • обслуживание и уход за анализаторами.

Вне лаборатории постаналитический этап включает:

  • получение бланков результатов анализов медицинской сестрой;

  • оценку результатов анализов медицинскими сестрами и врачами;

  • документирование результатов анализов;

  • эффективное использование результатов анализов в лечении больных и уходе за ними.

В общем виде взаимосвязь трех этапов выполнения лабораторных исследований и их составляющих представлена на рис. 2.3. Следствием этих трех этапов является лабораторная информация - результаты лабораторных анализов.

pic 0012
Рис. 2.3. Этапы выполнения клинических лабораторных исследований

Временные затраты на проведение каждого этапа единого технологического процесса производства результатов лабораторных анализов распределяются следующим образом:

  • преаналитический - 57,3%, при этом временные затраты вне лаборатории составляют 20,2%;

  • аналитический - 25,1%;

  • постаналитический - 17,6%.

2.2. НАУЧНО ОБОСНОВАННЫЕ ПРИНЦИПЫ ОРГАНИЗАЦИИ ПРОИЗВОДСТВА РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Главное требование, предъявляемое врачами-клиницистами к лабораторной диагностической информации, - объективно и с высокой надежностью отразить состояние внутренней среды организма и выявить ее изменение, вызванное определенным патологическим процессом, то есть получаемая лабораторная информация должна быть качественной.

Значительные достижения за последние годы в области повышения качества оказания медицинской помощи пациентам и качества результатов лабораторных анализов связаны с внедрением в практическое здравоохранение принципов доказательной медицины.

Доказательная медицина в отношении клинической практики - это новый подход, направление или технология сбора, анализа, получения, обобщения и интерпретации информации о методах обследования и лечения пациента. В клинической лабораторной диагностике относительно непосредственно лабораторных исследований доказательная медицина - это неукоснительное соблюдение требований международных и отечественных стандартов, которые содержат научно обоснованные оптимальные критерии выполнения технологических операций производства результатов анализов.

Главный постулат доказательной медицины состоит в том, что каждое клиническое решение или выполнение определенной технологической операции (процедуры) при производстве результатов лабораторных анализов должно базироваться на строго доказанных научных фактах. Этот постулат получил название evidence-based medicine, в буквальном переводе - «медицина, основанная на фактах» либо, что более точно отражает значение термина, «научно обоснованная медицинская практика» или «научно-доказательная медицина». Доказательная медицина предусматривает добросовестное, объяснимое и основанное на обработке с применением статистических методов использование наилучших современных достижений для обследования и лечения каждого пациента, а также производства результатов лабораторных анализов. Основная цель внедрения принципов доказательной медицины в клиническую практику - оптимизация качества оказания медицинской помощи с точки зрения безопасности, эффективности, стоимости и других значимых факторов. В отношении клинической лабораторной диагностики их применение означает использование объективных, научно обоснованных критериев по всем аспектам ее деятельности:

  1. на преаналитическом этапе - обеспечение оптимального выбора лабораторных тестов, гарантирующих минимально достаточный, но максимально эффективный объем обследования больных; соблюдение технологии взятия крови и сбора биоматериала, а также научно обоснованных сроков и условий их доставки в лабораторию;

  2. на аналитическом этапе - индустриальный подход к повышению качества результатов анализов на основе неукоснительного соблюдения требований международных и отечественных стандартов и рекомендаций для той или иной технологической операции;

  3. на постаналитическом - правильную оценку и эффективное использование результатов исследований для оказания пациенту качественной медицинской помощи.

В настоящее время клинические руководства (рекомендации) по вопросам оказания медицинской помощи по отдельным заболеваниям у нас в стране служат основой для выбора и назначения лабораторных тестов для диагностики различных заболеваний. Клинические руководства разработаны на принципах доказательной медицины и размещены на сайте Минздрава России.

Клинические руководства - это систематически обновляемые положения, созданные для того, чтобы помочь врачу и пациенту в принятии решений относительно врачебной тактики в определенных клинических ситуациях. К клиническим руководствам относится документ, отвечающий следующим требованиям:

  • содержит перечень основных этапов и элементов оказания медицинской помощи;

  • дает характеристику степени эффективности используемых способов диагностики, лечения и профилактики, основанную на результатах оценки их в многоцентровых контролируемых исследованиях;

  • ранжирует применяемые мероприятия при оказании помощи по трем классам:

    • класс I - обязательные (с доказанной эффективностью);

    • класс II - необязательные (при отсутствии убедительных доказательств эффективности в контролируемых исследованиях);

    • класс III - противопоказанные или непоказанные (на основе результатов контролируемых исследований при наличии доказательств ухудшения течения заболевания при их использовании или отсутствии контролируемых исследований и использовании в практике только на основании мнения экспертов);

  • систематически обновляется в соответствии с полученными новыми данными многоцентровых исследований по проверке эффективности новых методов диагностики и лечения;

  • принимается и утверждается авторитетным международным или национальным профессиональным сообществом врачей после обсуждения и согласования на международных форумах и конгрессах.

При выборе методов обследования и лечения пациента из клинических руководств должны браться лишь те элементы, которые относятся к I-II классу по степени доказанности эффективности.

Клинические руководства по обследованию пациентов должны использоваться специалистами лаборатории для внедрения современных методов диагностики и исключения устаревших методик. Именно данные клинических рекомендаций должны служить основой для специалистов лаборатории в убеждении организаторов здравоохранения в необходимости приобретения нового оборудования, реактивов, внедрения ЛИС и современных систем управления объемом лабораторных исследований.

В отношении других технологических операций, связанных непосредственно с производством лабораторных анализов, принципы доказательной медицины получили распространение в форме рекомендаций и стандартов. Например, в США - это национальные стандарты (National Committee for Clinical Laboratory Standards - NCCLS) разработанные National Academy of Clinical Biochemistry Standards of Laboratory Practice США, в Западной Европе - стандарты Международной федерации клинической химии (International Federation of Clinical Chemistry - IFCC), в России - отраслевые стандарты для КДЛ.

Под стандартом понимают образец, нормативный документ, запрещающий отклонение от него. Стандарт - это требование, которое должно неукоснительно выполняться. У нас в стране приняты стандарты в отношении различных технологических операций (процедур), происходящих в лаборатории: взятие биоматериала и его доставка в лабораторию, прием биоматериала, подготовка его к исследованиям, центрифугирование, ВКК, ведение документации и т.д.

Применение принципов доказательной медицины на аналитическом этапе производства результатов лабораторных исследований имеет не менее важное значение с точки зрения клинической практики, чем выбор лабораторных тестов. Специалистам клинической лабораторной диагностики следует учитывать, что этот факт все больше осознается врачами-клиницистами.

На аналитическом этапе выполнения лабораторных исследований с позиций клинической практики необходимо:

  1. обеспечивать качественное выполнение технологических операций (стандартизацию, автоматизацию, контроль качества и средств измерений), следствием которых является результат анализа;

  2. использовать технологии, позволяющие объективно и с высокой степенью надежности отражать состояние внутренней среды организма и ее изменения, вызванные определенным патологическим процессом;

  3. иметь хорошие результаты регулярной проверки деятельности лаборатории внешними независимыми организациями по контролю качества;

  4. предоставлять полученные результаты лабораторных анализов в максимально информативной форме;

  5. обеспечивать безопасность пациента и персонала;

  6. обеспечивать оптимальную себестоимость результатов исследований.

С позиций доказательной медицины основой обеспечения качества результатов анализов является правильная организация технологических процессов и процедур выполнения лабораторных исследований. Для этого их необходимо идентифицировать, документировать (стандартизировать), автоматизировать, определять критерии (индикаторы) качества процессов и процедур, обучать медицинский персонал и осуществлять мониторирование.

Важнейшей составляющей совершенствования процессов производства результатов лабораторных исследований служат индикаторы качества, которые должны быть определены для всех этапов (процедур и процессов) на протяжении всеобщего процесса тестирования. Международным стандартом ISO 15189 (2012) индикаторы качества определяются как «мера степени соответствия набора неотъемлемых характеристик требованиям» и «могут измерять, насколько хорошо организация процессов отвечает потребностям и требованиям пользователей к качеству всех операционных процессов». Вторая составляющая определения подчеркивает, что все операционные процессы, включая пре- и постаналитические этапы, должны иметь индикаторы качества. Стандарт ISO 15189 (2015) определяет, что индикаторы качества могут выражаться:

  • в процентах достигнутого (в пределах установленных требований);

  • процентах дефектов (вне установленных требований);

  • шкале шести сигм (сигмометрия).

2.3. ПРЕАНАЛИТИЧЕСКИЙ ЭТАП ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Если рассмотреть единый процесс проведения лабораторных исследований в целом, легко заметить, что значительная его часть приходится на преаналитический этап, причем 20,2% времени затрачивается на различные процедуры вне лаборатории. Сложность правильной организации преаналитического этапа в любом ЛПУ во многом обусловлена тем, что здесь отсутствуют четко установленные стандарты для различных процедур, преобладает ручной труд, а многочисленный персонал, обслуживающий пациента на этом этапе, имеет разное подчинение и разное по уровню и содержанию образование. Если врачи-клиницисты, медицинские сестры, санитарки работают вне лаборатории, то врачи клинической лаборатории, технологи, лаборанты, регистраторы выполняют процедуры этого этапа внутри лаборатории.

В целом преаналитический этап занимает достаточно много времени в едином процессе выполнения лабораторных исследований. Появление даже незначительных ошибок на преаналитическом этапе неизбежно приводит к искажению качества окончательных результатов лабораторных исследований. Как бы хорошо в дальнейшем лаборатория не выполняла исследования, ошибки на преаналитическом этапе не позволят получить достоверные результаты.

Наиболее частыми причинами неправильного результата лабораторных исследований являются ошибки, допущенные на преаналитическом этапе: неправильное взятие пробы, неправильные манипуляции с полученной пробой и нарушения условий и сроков ее транспортировки. По данным многих ЛПУ, на преаналитический этап приходится от 46 до 75% всех лабораторных ошибок.

Лабораторные ошибки чреваты потерей времени и средств на проведение повторных исследований, а их более серьезным следствием может стать неправильный диагноз. Исследования многих ЛПУ показывают, что вследствие лабораторных ошибок до 6% пациентов могут получать неправильное лечение, которое может привести к ухудшению состояния здоровья, а примерно 19% больным назначают ненужные дополнительные исследования, подразумевающие удлинение сроков лечения и пребывания в стационаре.

Преаналитический этап занимает 57,3% времени выполнения исследований и служит самым большим источником ошибок. Следовательно, чтобы повысить качество результатов лабораторных исследований, в первую очередь необходимо улучшить качество собираемых проб биологического материала. Именно поэтому в мировой клинической практике особое внимание стало уделяться тому, кто, в каких условиях, использованием каких приспособлений и как осуществляет взятие и хранение проб и их доставку в лабораторию.

Самый эффективный путь предотвращения ошибок преаналитического этапа - это организация его выполнения в соответствии с международными и отечественными стандартами для каждой процедуры данного этапа. К документам, регламентирующим процедуры преаналитического этапа, относятся:

  1. ГОСТ Р 53079.4-2008 «Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований». Часть 4 «Правила ведения преаналитического этапа».

  2. ГОСТ Р ИСО 6710-2009 «Контейнеры для сбора образцов венозной крови одноразовые. Технические требования и методы испытаний».

  3. ГОСТ Р ИСО 15189-2009 «Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности».

  4. ГОСТ Р 52623.4-2015 «Технологии выполнения простых медицинских услуг инвазивных вмешательств».

  5. Постановление Правительства РФ от 22 июня 2019 г. № 797 «Об утверждении Правил заготовки, хранения, транспортировки и клинического использования донорской крови и ее компонентов и о признании утратившими силу некоторых актов Правительства Российской Федерации».

  6. ГОСТ Р ИСО 15190-2007 «Лаборатории медицинские. Требования к безопасности».

  7. СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность».

  8. Совместные рекомендации Европейской федерации клинической химии и лабораторной медицины (EFLM) и Конфедерации Латинской Америки по клинической биохимии (COLABIOCLI) по взятию проб венозной крови (2018).

  9. Методические рекомендации «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови» (Кишкун А.А. и др. Одобрены на заседании профильной комиссии Минздрава России по клинической лабораторной диагностике, Москва, 30 мая 2013 г.).

  10. Методические рекомендации «Долабораторная часть преаналитического этапа клинико-лабораторных исследований» (Сквор-цова Р.Г., Мирошниченко И.А., Кузьменко В.В. Утверждены методическим советом ИГИУВа, Иркутск, 2010).

Первым шагом на пути к совершенствованию преаналитического этапа на уровне ЛПУ должно стать создание на основе приведенных стандартов и утверждение внутренних стандартов всех операционных процедур (СОП) этого этапа. С участием специалистов КДЛ в каждом ЛПУ должны быть разработаны следующие подробные СОП:

  1. для врачей и медицинских сестер - по заполнению бланков-заявок на лабораторные исследования;

  2. для пациентов и клинического персонала - по подготовке пациентов к проведению различных видов лабораторных тестов, включая памятки пациентам;

  3. по идентификации пациента при взятии проб;

  4. ведению журнала контроля качества вакуумных систем для взятия крови в процедурном кабинете;

  5. подготовке рабочего места для взятия проб крови в процедурном кабинете;

  6. правилам взятия (сбора) проб биологических материалов;

  7. проведению венепункции;

  8. взятию проб капиллярной крови;

  9. маркировке взятых (собранных) проб и их штрихкодированию;

  10. подготовке проб крови к транспортировке, упаковке и обеспечению условий транспортировки;

  11. приему проб в лаборатории, включая критерии отказа в приеме проб;

  12. регистрации проб в лаборатории;

  13. сортировке проб в лаборатории;

  14. подготовке проб к исследованию.

Технологическая операция составления заявки на лабораторные исследования является первой в едином технологическом процессе производства анализов.

2.3.1. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ СОСТАВЛЕНИЯ ЗАЯВКИ НА ЛАБОРАТОРНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Преаналитический этап, который проводится вне лаборатории, включает прием пациента врачом и назначение необходимых лабораторных исследований, а также заполнение бланка-заявки на анализы.

Врач-клиницист является основным заказчиком лабораторных анализов для лабораторий, а следовательно, и их пользователем. Он инициирует запрос на лабораторные исследования, составляя заявку на желаемые анализы в истории болезни или амбулаторной карте. Эта информация поступает в виде заказа, написанного от руки, или через информационную компьютерную систему медицинской сестре, которая забирает необходимый для исследований биоматериал у пациента. В ряде случаев заявка на анализы поступает в лабораторию, специалисты которой также непосредственно работают с больным, осуществляя взятие крови на анализы.

От того, насколько правильно и рационально будет составлена заявка на исследование каждым врачом-клиницистом, во многом зависит качество результатов лабораторных исследований. Неправильно составленный перечень исследований (избыточный или недостаточный) может привести к ненужным расходам на дорогостоящие лабораторные исследования без пользы для пациента или, наоборот, отсутствие нужного теста, который может сыграть важную роль в постановке правильного диагноза, приводит к ошибочной оценке состояния больного или эффективности проводимого лечения. Избыточное назначение лабораторных тестов - это потеря времени на ожидание результатов исследований, которые не несут полезной информации о состоянии пациента, и дополнительные финансовые расходы. Кроме того, избыточность исследований приводит к перегрузке лаборатории и увеличению числа ошибок при выполнении анализов. Даже заведомо ценный тест никому не приносит пользы, если результат анализа никак не используется. Пациент подвергается болезненной процедуре (венепункции), а общество оплачивает ненужные финансовые затраты на проведение исследований. Именно поэтому заявка на исследование должна включать минимально достаточный перечень лабораторных тестов для обследования пациента в конкретной ситуации.

При составлении заявки на лабораторные исследования выбор тестов клиницистом базируется на наиболее вероятном рабочем диагнозе, который влияет на величину предсказательной ценности теста. Вероятность диагноза определяется врачом-клиницистом путем анализа физикально-анамнестической информации о пациенте и выявления преобладающих нарушений. Именно поэтому сбор анамнеза и физикальное обследование пациента должны предшествовать назначению лабораторных анализов.

При тщательном обследовании больного врач-клиницист обнаруживает некоторые характерные признаки (симптомы) заболевания и понимает, что для перевода их в патогномоничные или специфические необходима дополнительная информация. На основании возникших сомнений он формулирует вопросы, на которые необходимо получить ответы, в том числе с помощью тех или иных лабораторных исследований. Все врачи проходят этот этап, реализация которого в значительной степени зависит от степени их профессиональной подготовки и индивидуальных способностей. Исходя из клинического представления и четко сформулированных вопросов врач рассматривает множество лабораторных тестов, которые можно заказать для получения ответов на возникшие вопросы. Перечень тестов, рассматриваемых при этом, зависит от таких факторов, как способность клинициста связать патогенез с определенными лабораторными показателями, от предыдущего опыта работы врача с подобными клиническими случаями, его способности отличать наличие заболевания от его отсутствия, понимания информационного содержания каждого теста, знания диагностических возможностей лаборатории и алгоритмов или руководящих принципов клинической практики, которым он должен следовать. Однако прежде чем составить заявку на исследование, врач-клиницист должен не только четко сформулировать вопросы, которые помогут разрешить результаты анализов, и дать себе ответ, почему назначается именно этот тест, но должны сопровождать каждый вопрос тщательной оценкой вероятности у пациента предполагаемого заболевания. Эта оценка вероятности, проведенная перед составлением заявки на исследование, называется претестовой (априорной) вероятностью. Она может быть основана на истории болезни пациента, предыдущем опыте клинициста, данных специальной литературы. Позже претестовая вероятность может быть объединена с полученными результатами исследований и рассчитана посттестовая вероятность для данного пациента, но она сильно зависит от точности оценки претестовой вероятности. Используя данный метод, врач может объективно оценивать свои индивидуальные способности для правильного выбора лабораторных тестов. Если полученная лабораторная информация не оказывает влияния на увеличение посттестовой вероятности, то лабораторные тесты заказаны напрасно и не принесли пользы пациенту. Только на основании анализа всей этой информации, с учетом стоимости лабораторных тестов, врач составляет заявку на исследование (рис. 2.4).

pic 0013
Рис. 2.4. Этапы составления заявки на лабораторные исследования

Таким образом, при формировании диагноза врачом-клиницистом можно выделить несколько этапов:

  1. обнаружение патологических отклонений в состоянии организма (симптомов);

  2. трактовку этих отклонений - их значимость, физиологический или патологический характер, возможную связь с определенной нозологической формой;

  3. формирование диагностического предположения (предварительный диагноз);

  4. составление плана диагностического обследования больного для подтверждения диагноза (проверка альтернативных версий).

Безусловно, что использование приведенного подхода при назначении лабораторных исследований придет к врачу-клиницисту не сразу, а только с опытом, через несколько лет практической работы. Именно поэтому начинающему врачу-клиницисту полезно при составлении оптимальной заявки на лабораторные исследования задать самому себе ряд следующих вопросов.

  • Повлияет ли на мой диагноз полученный ответ (в зависимости от того, будет ли результат анализа высоким, низким, соответствующим норме)?

  • Повлияет ли результат анализа на ход лечения больного?

  • Повлияет ли результат анализа на мою оценку прогноза состояния больного?

  • Возможно ли существование патологии, которую я стремлюсь обнаружить, без соответствующих клинических симптомов?

Если после всестороннего обдумывания ответы на все эти вопросы будут однозначно отрицательными, необходимости в назначении тестов нет. В случае если ответ на какой-либо вопрос будет утвердительным, анализы необходимо назначить. В конечном итоге заявка на исследование должна включать минимально достаточный перечень лабораторных тестов для обследования пациента. Достижение этой цели - непростая задача.

Принятие решения при оказании медицинской помощи - сложный процесс для клинициста. Он включает оценку потенциальных рисков и выгоды при возможных медицинских вмешательствах с учетом ограниченных ресурсов и необходимости индивидуального подхода к каждому пациенту.

Традиционно способность врача-клинициста назначать нужные лабораторные тесты для конкретного пациента определяется тем, насколько хорошо он владеет врачебным искусством, которое складывается из знаний, необходимых для понимания причин и патофизиологических механизмов заболеваний, клинического опыта, интуиции и набора качеств, которые в совокупности составляют так называемое клиническое мышление.

Важнейшими составляющими клинического мышления являются четкие представления врача о том, что такое болезнь и что такое клинический диагноз болезни.

2.3.1.1. Болезнь и диагноз болезни

Болезнь (morbus) - состояние организма, характеризующееся повреждением органов и тканей в результате действия патогенных факторов, развертыванием защитных реакций, направленных на ликвидацию повреждений; обычно сопровождается ограничением приспособляемости организма к условиям окружающей среды и снижением или потерей трудоспособности. Общебиологическими признаками болезни являются:

  1. наличие ряда патологических процессов (сочетание явлений повреждения, защитно-приспособительных реакций) с нарушением структуры и функции органа;

  2. нарушение гомеостаза (обмена веществ) хотя бы частично;

  3. нарушение приспособления организма к изменяющимся условиям внешней среды со снижением биологической и социальной активности.

С помощью лабораторных тестов врач может установить наличие болезни путем обнаружения одного или нескольких общебиологических признаков. Результаты лабораторных исследований могут предоставить объективную информацию о наличии и выраженности двух первых признаков болезни у пациента - помочь выявить повреждение и оценить характер защитно-приспособительных реакций на него, а также установить, есть ли нарушение гомеостаза, что само по себе уже немало, на первоначальном этапе диагностического поиска. Выявление повреждения конкретного органа или ткани - важнейший шаг на пути к постановке правильного диагноза. Именно поэтому при составлении заявки на лабораторные исследования в первую очередь необходимо правильно выбрать маркер повреждения органа или ткани. Если выбор маркера повреждения вызывает у врача затруднения, надо включить в заявку те тесты, которые способны выявить наличие и характер нарушений гомеостаза и защитно-приспособительных реакций на повреждение.

В основе любой патологии лежат повреждение и реакция на это повреждение. Клиническая лабораторная диагностика рассматривает повреждение (от лат. alteratio - «изменение») как такие изменения ее структуры, метаболизма, физико-химических свойств и функций, которые ведут к нарушению жизнедеятельности клетки. Другими словами, повреждение клеток - это нарушение их морфологии и анатомической целостности, повлекшее за собой нарушение их функций. Характер нарушения морфологии клеток зависит от этиологического фактора, приводящего к развитию болезни. В клинической практике повреждение при болезни наиболее часто сопровождается нарушением целостности клеток, которое называют цитолизом. В результате повреждения цитоплазматических мембран клеток органов и тканей белки и ферменты, а также продукты метаболизма, локализующиеся в цитоплазме, поступают в кровь больного. Дальнейшее разрушение внутриклеточных структур и деградация связанных с ними белков только увеличивают их уровень в кровеносном русле.

Клиническая лабораторная диагностика с помощью определения уровня маркеров в биологических жидкостях организма больного может предоставить врачу необходимую информацию о повреждении клеток различных органов и тканей. Выраженность цитолиза и, соответственно, степень отклонения в результатах лабораторных анализов - один из основных показателей величины (объема и глубины) повреждения и выраженности (активности) патологического процесса.

О повреждении может свидетельствовать и нарушение функции. Именно поэтому, если нет возможности выявить повреждение с помощью соответствующих лабораторных биомаркеров, о выраженности повреждения можно судить по нарушению функции органа или ткани.

Любой патологический процесс - это сочетание явлений повреждения, защитно-приспособительных и патологических реакций. Защитно-приспособительные, или компенсаторные, реакции возникают в ответ на повреждение. Их значение состоит в способности организма поддерживать динамическое постоянство соответствующих физиологических и структурных параметров - гомеостаз. Эти реакции поддерживают и сохраняют равновесие организма с внешней средой. Компенсаторные реакции направлены на восстановление постоянства внутренней среды организма. Все защитно-компенсаторные реакции: гиперплазия, гипертрофия, а иногда и дистрофия как формы структурной адаптации клеток, тканей и органов - протекают при их структурном обеспечении. Одной из самых распространенных типовых защитно-приспособительных реакций при заболеваниях, с которыми сталкивается врач, является воспаление, а если есть воспаление, то есть и повреждение. Клиническая лабораторная диагностика обладает обширным спектром лабораторных тестов, способных объективно оценивать выраженность воспалительной реакции при заболеваниях у каждого конкретного пациента.

Второй составляющей проявления болезни становится нарушение гомеостаза различной степени выраженности. Поддержание гомеостаза заключается в упорядоченном и координированном обмене веществ, происходящем в комплексе многоклеточных систем, органов и тканей. Именно поэтому синонимом нарушения гомеостаза при болезни служит нарушение обмена веществ. О выраженности этих нарушений врач судит по результатам назначенных лабораторных тестов, отражающих состояние обмена веществ. Нарушение обмена веществ, выявляемое с помощью лабораторных исследований, - это, с одной стороны, характеристика проявлений болезни (одного из общебиологических признаков - нарушения гомеостаза) в неясной клинической ситуации в целях разработки программы дальнейшего поиска для постановки диагноза, а с другой - возможность получить необходимые данные для постановки диагноза сразу же после получения результатов анализов в случае обнаружения в них характерных нарушений обмена веществ. Например, высокие значения уровня глюкозы в крови (М1,1 ммоль/л), отражающие нарушение углеводного обмена, приводят к постановке диагноза сахарного диабета.

В целом врач должен понимать, что в основе выбора тестов для составления заявки на лабораторные исследования должно лежать его представление о болезни как состоянии организма, характеризующемся повреждением органов и тканей в результате действия патогенных факторов, развертыванием защитных реакций, направленных на ликвидацию повреждений и нарушение гомеостаза. Именно поэтому заявка на лабораторные исследования должна включать в первую очередь тесты, способные выявлять повреждения органа или ткани (и/или их функции), характерные для данного заболевания, во вторую - нарушения обмена веществ и защитных реакций, направленных на ликвидацию повреждений, что позволит продолжить диагностический поиск в случае неправильного выбора маркера повреждения или конкретизировать данный поиск.

Такой подход к назначению лабораторных исследований, основанный на знаниях об основах патологии, нарушений гомеостаза, патогенетических механизмах развития заболеваний, синдромах, сопровождающих ту или иную патологию, клинических проявлениях нарушений функций органов и систем и данных о возможностях тех или иных лабораторных тестов предоставить объективную информацию о них, которые врач получает в процессе обучения в высшем медицинской учреждении, в интернатуре или ординатуре (аспирантуре), на циклах усовершенствований, а также на личном клиническом опыте в процессе работы в лечебном учреждении, получил название эмпирического (от греч. empeiria - «опыт») подхода. Сущность эмпирического подхода к назначению лабораторных анализов состоит в том, что результаты назначенных тестов должны помочь клиницисту пройти путь от выявления и характеристики общебиологических признаков болезни к установлению патогенетических механизмов формирования и развития заболеваний (этиологического и морфологического факторов патологии, основного звена и причинно-следственных отношений, общих и местных изменений в реакции целостного организма), к оценке состояния основных систем метаболизма (обмена веществ), к выявлению нарушений функций органов и систем (оценка степени функциональных нарушений), к характеристике неспецифических синдромов (определению ведущего синдрома). В конечном итоге этот путь приведет врача к постановке конкретного диагноза с отражением в нем этиологического, патогенетического, морфологического и функционального компонентов. Эта цепочка не является обязательной или непрерывной для каждой конкретной клинической ситуации. Врач может использовать ее с любого этапа и остановиться на любом этапе. Все зависит от того, в какой момент врач с помощью лабораторных тестов получит необходимую и достаточную информацию для постановки диагноза или его отклонения.

Клинический диагноз - это краткое врачебное заключение о сущности и состоянии больного, выраженное в принятой медицинской терминологии, или название определенной болезни, предусмотренное действующей номенклатурой и классификацией болезни. В основу формулирования клинического диагноза положен нозологический принцип. Сущность нозологического принципа состоит в его клинико-анатомической направленности, то есть установлении органа, где локализуется патологический процесс. Именно поэтому выявление анатомического субстрата болезни - повреждения, то есть его локализации в организме, является важнейшим этапом при выборе (назначении) лабораторных тестов для обследования больного. Клинический диагноз должен не только содержать название определенной болезни, предусмотренное действующей номенклатурой и классификацией болезни, но и по возможности этиологию, патогенез, морфологические и функциональные изменения органов и систем. При формулировке диагноза существенное значение имеет правильное понимание следующих компонентов: 1) этиологического (выявление природы, или происхождения, болезни); 2) патогенетического (механизм развития болезни и специфика ее течения); 3) морфологического (определение локализации процесса, характера и степени морфологических изменений); 4) функционального (установление степени и особенностей функциональных расстройств, которыми болезнь сопровождается). Все перечисленные компоненты в совокупности приводят к развитию специфического симптомокомплекса, свойственного определенной болезни (нозологической единицы). В полном виде клинический диагноз представляет совокупность морфологического, функционального, этиологического, патогенетического, симптоматического, конституционального и социального компонентов болезни, то есть синтез - установление единства различных сторон состояния данного больного, его индивидуальных особенностей и его краткое изложение в виде диагноза.

Лабораторные тесты могут предоставить врачу необходимую информацию обо всех составляющих клинического диагноза. Однако первостепенное значение имеет установление повреждения и его локализации. В дальнейшем клинический диагноз предусматривает установление причинно-следственной связи между повреждением и этиологическим фактором, вызвавшим или приведшим к повреждению. Установление повреждения и его локализации уже само по себе существенно сужает зону поиска или позволяет установить этиологический фактор повреждения. Ниже приведен перечень некоторых лабораторных тестов, изменения в результатах которых указывают на локализацию и возможные этиологические факторы повреждения.

Маркеры повреждения миокарда:

  1. повышение активности общей КК;

  2. повышение активности КК-МВ;

  3. повышение уровня миоглобина;

  4. повышение массовой концентрации КК-МВ;

  5. повышение уровня тропонина Т или I.

Маркеры повреждения печени:

  1. повышение активности АСТ;

  2. повышение активности АЛТ;

  3. повышение активности ЛДГ и изоферментов ЛДГ4 и ЛДГ5;

  4. повышение активности ГГТП;

  5. повышение активности щелочной фосфатазы;

  6. снижение уровня церулоплазмина.

Маркеры повреждения ацинарной ткани поджелудочной железы:

  1. повышение активности а-амилазы;

  2. повышение активности панкреатической а-амилазы;

  3. повышение активности липазы;

  4. повышение уровня панкреатической эластазы-1;

  5. повышение уровня фосфолипазы А2;

  6. снижение уровня панкреатической эластазы-1 в кале.

Маркеры повреждения островков Лангерганса поджелудочной железы:

  1. повышение или понижение уровня глюкозы;

  2. повышение уровня гликозилированного гемоглобина;

  3. изменение (повышение или снижение) уровня инсулина, проинсулина, С-пептида.

Маркеры повреждения мозговой ткани:

  1. изменения в количестве и морфологии клеток спинномозговой жидкости;

  2. изменения в химическом составе спинномозговой жидкости;

  3. повышение уровня белка S-100;

  4. повышение уровня основного белка миелина.

Маркеры повреждения почек и мочевыводящих путей:

  1. снижение скорости клубочковой фильтрации;

  2. повышение уровня липокалина, ассоциированного с желатиназой нейтрофилов;

  3. повышение уровня цистатина С;

  4. повышение уровня креатинина;

  5. повышение уровня мочевины;

  6. изменения в анализе мочи (плотность, протеинурия, цилиндры, эритроциты, лейкоциты, почечный эпителий, мочевые камни).

Маркеры повреждения соединительной ткани:

  1. повышение уровня проколлаген-Ш-пептида;

  2. повышение уровня антинуклеарных антител;

  3. повышение уровня антител к односпиральной ДНК;

  4. повышение уровня антител к двуспиральной ДНК;

  5. повышение уровня антицентрометрических антител.

Маркеры повреждения скелетной мускулатуры:

  1. повышение активности общей КК;

  2. повышение уровня миоглобина.

Маркеры повреждения костной ткани:

  1. повышение уровня костной щелочной фосфатазы;

  2. повышение уровня остеокальцина;

  3. повышение уровня С-терминального телопептида;

  4. повышение уровня пиридинолина и дезоксипиридинолина.

Маркеры повреждения щитовидной железы:

  1. изменение уровня свободного тироксина (сТ4), трийодтиронина (Т3), тиреоглобулина и тиреотропного гормона (ТТГ).

Маркеры повреждения коры надпочечников:

  1. изменение уровня кортизола;

  2. изменение уровня свободного кортизола в моче;

  3. изменение уровня дегидроэпиандростерон-сульфата;

  4. изменение уровня андростендиона;

  5. изменение уровня 17-оксикортикостероидов в моче;

  6. повышение уровня 17a-гидроксипрогестерона;

  7. изменение уровня 17-кетостероидов в моче;

  8. изменение уровня альдостерона.

Если в качестве повреждающего фактора выступает опухолевый процесс, то повреждение характеризуется изменением числа клеток и их абсолютного или относительного соотношения, рядом морфологических признаков, выявляемых при гематологическом (мазок крови, пунктат костного мозга), гистологическом и цитологическом исследованиях клеток биологических жидкостей или тканей. К маркерам злокачественного роста относятся также вещества разной природы: антигены, гормоны, ферменты, гликопротеины, липиды, белки, метаболиты.

Наследственные болезни - это болезни, обусловленные повреждениями наследственного аппарата (генома) клетки, которые могут затрагивать весь геном, отдельные хромосомы и вызывать хромосомные болезни или затрагивать отдельные гены и быть причиной генных болезней. Клиническая лабораторная диагностика имеет целый арсенал диагностических методов, позволяющих выявлять хромосомные и генетические повреждения.

Если врач испытывает трудности при выборе маркеров повреждения, назначении лабораторных тестов, необходимо помнить, что о повреждении можно судить и по присутствию у больного защитно-приспособительных и патологических реакций. Воспаление - самая распространенная реакция при заболеваниях, поэтому врач может назначить тесты для его обнаружения. Лабораторными маркерами воспаления служат:

  1. общеклиническое исследование крови - подсчет количества лейкоцитов и его популяций;

  2. определение СОЭ;

  3. исследование клеточного состава биологических жидкостей: мочи, экссудата, синовиальной и спинномозговой жидкости, отделяемого мочеполовых органов, мокроты;

  4. определение белков острой фазы.

Нарушение обмена веществ (гомеостаз) служит второй составляющей проявления болезни, что позволяет использовать тесты, отражающие его состояние. Для постановки диагноза КДЛ обладает в настоящее время большим спектром современных лабораторных тестов для оценки состояния следующих обменов веществ:

  1. белков;

  2. пуринов;

  3. углеводов;

  4. липидов и липопротеинов;

  5. водно-электролитного обмена;

  6. КОС;

  7. желчных пигментов;

  8. порфиринов;

  9. железа;

  10. витаминов.

В клиническом диагнозе по мере возможности необходимо отразить этиологический, патогенетический, морфологический и функциональный компоненты. Этиологический компонент характеризует причины нозологической формы болезни. Указание в диагнозе природы болезни не только желательно, но в ряде случаев необходимо, так как это дает возможность определить врачебную тактику как в отношении лечебных, так и профилактических мероприятий. Патогенетический компонент - это совокупность процессов, определяющих возникновение, течение и исход болезни.

Каждая отдельная болезнь имеет свою причину возникновения, свой механизм развития, характерные морфологические, функциональные и клинические проявления, симптомы. Соответственно, и причинно-следственная цепочка событий у конкретных заболеваний разная. В одних случаях она достаточно проста, например, при сахарном диабете: повреждение р-клеток поджелудочной железы - недостаток инсулина - гипергликемия - диабетическая нефропатия - почечная недостаточность. Для получения необходимой информации о такой причинно-следственной цепочке спектр назначаемых лабораторных исследований будет включать следующие тесты:

  1. диагностику сахарного диабета и оценку его компенсации (выявление повреждения р-клеток поджелудочной железы) - повышение концентрации глюкозы и гликозилированного гемоглобина в крови, низкий или неопределяемый уровень инсулина или С-пептида в крови;

  2. установление этиологического фактора - высокий уровень специфических антител к антигенам островковых клеток, инсулину, декарбоксилазе глютаминовой кислоты;

  3. критерии компенсации сахарного диабета - уровень общего холестерина, триглицеридов, холестерина липопротеинов низкой и повышение уровня холестерина высокой плотности в крови, уровень D-3-гидроксибутирата в крови и кетоновых тел в моче;

  4. оценку выраженности атеросклеротического процесса - уровень ультрачувствительного СРБ в крови;

  5. скрининг поражения почек и необходимость лечения диабетической нефропатии - уровень альбумина в разовой или суточной моче, уровень креатинина и мочевины в крови.

В клиническом диагнозе должен быть отражен функциональный компонент, который говорит о связанных с болезнью нарушениях важнейших физиологических функций. Лабораторные тесты широко используют для оценки функций органов и систем. Назначение лабораторных исследований для оценки функций органов и систем - это не только запрос на информацию о состоянии органов и систем, но в целом ряде случаев это прямой путь к постановке диагноза (по крайней мере, его функционального компонента, который должен быть отражен в окончательном диагнозе), определению прогноза, выбору метода лечения и оценке его эффективности.

Наиболее часто с помощью лабораторных анализов оценивают функции печени и тем самым ее функциональное состояние. Традиционно для оценки функции печени используют комплекс лабораторных показателей, которые включают исследование уровня билирубина, альбумина, определение активности АЛТ, АСТ, ЛДГ, ГГТП и щелочной фосфатазы. Несмотря на то что эти показатели различаются по своей структуре и функциям, их необходимо рассматривать вместе, так как все они используются для выявления пациентов с заболеваниями печени или желчевыводящих путей. Каждый из этих показателей в отдельности характеризует в большей степени нарушение одной из функций печени, но все вместе эти семь анализов дают достаточно полное представление о состоянии печени в целом, поэтому традиционно называются функциональными пробами печени. С помощью семи биохимических тестов можно выявить следующие нарушения:

  1. наличие цитолиза (повреждения) гепатоцитов - определение активности АЛТ, АСТ, ЛДГ, ГГТП, щелочной фосфатазы;

  2. нарушения белково-синтетической функции печени - исследование уровня альбумина;

  3. нарушение выделительной функции печени - исследование уровня билирубина, активности ГГТП и щелочной фосфатазы;

  4. метаболизма желчных пигментов - исследование уровня билирубина.

Лабораторные тесты, которые используются для оценки функций почек, делятся на три группы:

  1. тесты, которые позволяют выявить нарушение выделительной функции почек;

  2. тесты для оценки концентрационной функции почек;

  3. тесты, которые позволяют оценивать проницаемость мембраны гломерулярного фильтра почечного клубочка.

Для оценки функций легких используются лабораторные исследования, включающие определение напряжения кислорода (рО2) и углекислоты (рСО2) в крови, насыщение гемоглобина кислородом (НЬО2), определение содержания гемоглобина, установление сдвигов со стороны КОС и степени гипоксии тканей.

Современная КДЛ обладает большим спектром тестов для оценки функционального состояния различных органов и систем. Для оценки функционального состояния сократительной способности миокарда в клинической практике используют исследование натрийуретических пептидов в крови. Современным «золотым стандартом» диагностики недостаточности экзокринной функции поджелудочной железы является определение панкреатической эластазы-1 в кале.

Лабораторные исследования широко применяются в клинической эндокринологии для оценки функционального состояния как гипоталамо-гипофизарной системы, так и функций периферических желез внутренней секреции. Для оценки функционального состояния гипоталамо-гипофизарной системы используется определение в крови целого комплекса гормонов, обеспечивающего всю линию функциональной связи: гипоталамус - гипофиз - периферическая железа внутренней секреции - гипоталамус. Например, если исследуется состояние гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной системы, то проводятся исследования тиреотропин-рилизинг-гормона, ТТГ, сТ4. Однако наиболее часто для оценки функционального состояния гормональных систем используют определение парных гормонов - гипофиза и эндокринной железы (например, кортизола и АКТГ, инсулиноподобного фактора роста-1 и соматотропного гормона, сТ4 и ТТГ) или аналогичных пар «гормон - контролируемый параметр» (например, ионизированный кальций и паратиреоидный гормон), что позволяет поставить правильный диагноз.

2.3.1.2. Научно обоснованные подходы к назначению лабораторных исследований

С помощью лабораторных тестов врач может установить наличие болезни путем обнаружения одного или нескольких общебиологических признаков. Основным признаком болезни является повреждение органов или тканей. Лабораторные тесты позволяют достаточно надежно диагностировать повреждение. Однако клинический диагноз - это не просто болезнь, а название определенной болезни, предусмотренное действующей номенклатурой и классификацией болезни. Вместе с тем лабораторные тесты, выявляя основной признак болезни - повреждение, напрямую никак не связаны с клиническим диагнозом. Например, повышенный уровень тропонина указывает на повреждение миокарда, но повреждение миокарда может быть при таких клинических диагнозах, как ИМ, острый миокардит и даже септический эндокардит. Именно поэтому связь лабораторных тестов с конкретным клиническим диагнозом непрямая. В связи с этим, в рамках доказательной медицины, выбор лабораторных тестов для постановки клинического диагноза у каждого пациента должен основываться на диагностических (статистических) вероятностях, в основе которых лежат операционные характеристики лабораторных тестов и данные клинических руководств.

Операционные характеристики лабораторных тестов предоставляют врачу-клиницисту дополнительную информацию о том, насколько точно эти тесты способны выявлять предполагаемое заболевание.

Основными операционными характеристиками диагностического теста выступают диагностическая (не путать с аналитической) чувствительность и специфичность. Вероятность положительного результата диагностического теста в присутствии болезни называется чувствительностью теста, а вероятность отрицательного результата при отсутствии болезни - его специфичностью. Тест с высокой чувствительностью редко «пропускает» пациентов, у которых имеется заболевание. Тест с высокой специфичностью, как правило, «не относит» здоровых людей к категории больных. Практически эти характеристики диагностических тестов определяются на основании статистического анализа массивов результатов исследований и математически характеризуют интегральное влияние патогномоничности диагностического показателя для определенного заболевания. В основу расчетов берут распределение результатов исследований в соответствии с данными, приведенными в табл. 2.1. В большинстве случаев эти характеристики совпадают, будучи истинно положительными (болезнь есть, и тест ее подтверждает) или истинно отрицательными (болезни нет, и тест ее исключает). Однако результаты могут быть и ложноотрицательными (болезнь есть, но тест ее исключает), и ложноположительными (болезни нет, но тест ее подтверждает). Именно поэтому большинство лабораторных тестов не обладают 100% диагностической чувствительностью и специфичностью в отношении конкретного заболевания (клинического диагноза).

Таблица 2.1. Операционные характеристики лабораторных тестов
Критерий Болезнь есть Болезни нет

Тест положительный

a - истинно положительный

b - ложноположительный

Тест отрицательный

с - ложноотрицательный

d - истинно отрицательный

Диагностическая чувствительность

a/(a+c) = доля истинно положительных тестов среди больных

Диагностическая специфичность

d/(b+d) = доля истинно отрицательных тестов среди здоровых

Таким образом, при любом диагностическом исследовании возможны два типа ошибок - ложноотрицательные и ложноположительные. Для того чтобы врачу-клиницисту принять оптимальное клиническое решение, необходимо знать вероятности этих ошибок, поскольку последствия их различны. Операционные характеристики диагностического теста (чувствительность, специфичность и др.) позволяют оценить вероятность ошибок, присущую данному тесту.

Для врача-клинициста чувствительный тест особенно информативен в том случае, когда он дает отрицательный результат (то есть из больных исключает здоровых), а специфический тест наиболее эффективен, когда дает положительный результат (то есть выявляет больных среди здоровых). Именно поэтому чувствительные тесты рекомендуется применять на ранних стадиях диагностического поиска для сужения его рамок, когда возможных вариантов много и диагностические тесты позволяют исключить некоторые из них, то есть сделать вывод, что эти заболевания маловероятны. Тесты с высокой специфичностью нужны для подтверждения (постановки) диагноза, предположенного на основании других данных. Такой тест не должен давать положительного результата при отсутствии заболевания. Такие тесты необходимо применять, если ложноположительный результат может нанести пациенту вред. Например, прежде чем назначать пациенту со злокачественным новообразованием химиотерапию, сопряженную с риском, эмоциональной травмой, требуется морфологическое подтверждение диагноза, так как результаты повышения уровня онкомаркеров и данные других методов исследования недостаточны.

Врач-клиницист должен понимать, что диагностическая чувствительность и специфичность теста зависят от величины референтного диапазона, то есть выбора точки разделения (cutoff), при использовании которой любая величина результата теста выше этой точки рассматривается как патология (рис. 2.5). Клинические цели могут влиять на выбор точки cutoff. Если взять за позицию cutoff точку А, тест будет иметь 100% чувствительность в отношении болезни и очень низкую специфичность. В случае если в качестве точки cutoff будет точка С, тест будет иметь 100% специфичность, но очень низкую чувствительность. Именно поэтому для большинства тестов точка cutoff (точка В) определяется референтным диапазоном, то есть диапазоном результатов теста, которые располагаются в диапазоне плюс-минус два стандартных отклонения при средней величине В. В некоторых случаях величину точки cutoff изменяют в зависимости от целей исследования, что увеличивает или чувствительность, или специфичность.

pic 0014
Рис. 2.5. Гипотетическое распределение результатов теста среди здоровых и больных

Другим научно обоснованным подходом к назначению лабораторных тестов является использование данных клинических руководств (рекомендаций). В настоящее время использование клинических руководств при оказании медицинской помощи регламентировано Федеральным законом «Об основах охраны здоровья граждан в РФ». Профессиональными медицинскими организациями нашей страны разработаны клинические руководства для большинства заболеваний.

В них содержатся критерии качества оказания медицинской помощи, каждый критерий имеет уровень и степень доказательности. Например, в 2020 г. Минздрава России утвердил клинические рекомендации «Дифференцированный рак щитовидной железы». В них приведены критерии оценки качества медицинской помощи пациентам с раком щитовидной железы. Значительную долю среди ключевых индикаторов качества занимают лабораторные исследования (табл. 2.2).

Главное достоинство клинических руководств состоит в том, что они дают четкое вероятностное представление о возможностях лабораторных анализов выявлять определенное заболевание. Однако в клинических руководствах информация в отношении лабораторных тестов и лечебных мероприятий представлена в описательном виде, и нередко последовательность их применения отсутствует. В связи с этим для сжатого представления об оптимальном использовании лабораторных тестов необходимо иметь более эффективный формат предоставления информации и последовательности действий врача.

Рассмотрим пример того, как можно составить диагностическую карту лабораторного исследования у пациента с ИМ на основании клинических руководств.

Таблица 2.2. Критерии оценки качества медицинской помощи
№ п/п Критерий качества Уровень убедительности рекомендаций Уровень достоверности доказательств

1

Выполнено исследование уровня ТТГ в крови (при постановке диагноза)

В

2

2

Выполнено исследование уровня кальцитонина в крови при постановке диагноза

С

2

3

Выполнена оценка клинических и анамнестических факторов принадлежности больного к группе агрессивных форм рака щитовидной железы

В

2

4

Выполнено ультразвуковое исследование щитовидной железы и всех уровней регионарных лимфатических узлов по протоколу EU-TIRADS с оценкой подвижности голосовых складок

В

3

5

Выполнена прицельная (под контролем ультразвукового исследования) тонкоигольная аспирационная биопсия (ТАБ) щитовидной железы с последующим цитологическим исследованием по протоколу Bethesda Thyroid Classification, 2009, 2017

В

3

6

Выполнена компьютерная томография органов шеи и грудной клетки при подозрении на распространенный опухолевый процесс

В

2

7

Выбран и выполнен оптимальный объем оперативного вмешательства на щитовидной железе и регионарных лимфатических узлах шеи

В

3

8

Выполнена заместительная гормональная терапия после хирургического вмешательства

В

2

9

Выполнена видеоларингоскопия на дооперационном этапе

В

3

10

Выполнено исследование уровней ТТГ, ТГ и антител к ТГ в сыворотке крови через 6-12 мес после операции

В

3

За последние два десятилетия были проведены многочисленные рандомизированные исследования с целенаправленностью на оценку эффективности и безопасности обследования и лечения больных ИМ. Результаты исследований были положены в основу международных и отечественных руководств по ведению больных ИМ, которые регулярно обновляются.

Руководства ориентированы на диагностику и лечение пациентов с ИМ. Они основаны на доказательствах, полученных в результате проведенных исследований, значение которых определено тремя уровнями:

  1. уровнем доказательности А - данные получены в результате многочисленных рандомизированных клинических исследований с включением большого числа больных и в результате метаанализа;

  2. уровнем доказательности В - данные получены на основании ограниченного количества рандомизированных исследований на небольшом контингенте больных или тщательного анализа нерандомизированных клинических исследований;

  3. уровнем доказательности С - в основе лежат рекомендации, согласованные опытными экспертами.

Кроме того, руководства содержат общие и частные рекомендации по диагностике, оценке состояния пациента и терапии ИМ, которые основаны на приведенных уровнях доказательности (А и В) и мнении экспертов и ранжируют применяемые мероприятия при оказании помощи по трем классам:

  1. класс I - состояния, для которых имеются доказательства и/или согласованное мнение экспертов о том, что данная процедура исследования или лечения выступает полезной и эффективной;

  2. класс II - состояния, о которых имеются неоднозначные доказательства и/или противоречивые мнения экспертов о пользе/эффективности процедуры/лечения;

    • класс IIа - вес доказательства/мнения склоняется в сторону полезности/эффективности процедуры/лечения;

    • класс IIб - польза/эффективность процедуры/лечения недостаточно доказаны/согласованы;

  3. класс III - состояния, для которых имеются доказательства и/или мнения о том, что процедура/лечение не полезны/неэффективны, а в ряде случаев могут быть вредны.

В приведенных клинических рекомендациях указывается, что кардиальные тропонины Т и I имеют почти абсолютную специфичность для ткани миокарда, а также высокую чувствительность, что позволяет выявлять даже микроскопические участки повреждения миокарда. Исследование тропонинов руководства относят к I классу (имеются доказательства полезности и эффективности данных исследований) и уровню доказательности А.

Кардиальные тропонины должны быть определены при поступлении больного и повторно через 6-9 ч. Дальнейшие повторные исследования проводятся через 12-24 ч, если результаты предыдущих исследований были отрицательными, а клинический индекс подозрения на ИМ высок. В случае рецидива ИМ определение уровня тропонинов возобновляется через 4-6 ч от начала рецидива и далее повторно через 6-9 ч.

При недоступности исследования тропонинов альтернативным выступает определение креатинкиназы (КК-МВ mass, также относится к I классу рекомендаций и уровню доказательности А). Этот показатель менее специфичен, чем кардиальные тропонины, но данные, полученные во многих рандомизированных исследованиях, свидетельствуют о том, что при необратимом повреждении миокарда определение ККМВ mass имеет достаточную клиническую специфичность.

Определение уровня миоглобина в сыворотке крови и/или активности КК-МВ должны проводиться при недавнем (менее 6 ч) появлении клинических симптомов (как ранние маркеры ИМ) и у пациентов с повторной ишемией после недавнего (менее 2 нед) ИМ для выявления рецидива (относится к IIа классу рекомендаций и уровню доказательности С). В случае рецидива ИМ значение исследований миоглобина и КК-МВ возрастает, поскольку содержание тропонина может оставаться еще повышенным от первоначального эпизода некроза миокарда.

Определение активности общей КК (без МВ-фракции), АСТ, ЛДГ и ее изоферментов не рекомендуется для диагностики ИМ из-за широкого распространения этих энзимов в тканях (относятся к III классу рекомендаций и уровню доказательности С).

О некрозе миокарда, характерном для ИМ, говорят следующие отклонения, если:

  1. максимальную концентрацию кардиального тропонина, превышающую 99-й перцентиль контрольных значений (при оптимальной точности, соответствующей менее 10% коэффициента вариации), выявляют по меньшей мере в одном случае в течение первых суток после клинического проявления ОКС;

  2. максимальная концентрация КК-МВ превышает 99-й перцентиль в двух последовательных образцах (результаты определения КК-МВ должны повышаться и/или снижаться).

Рекомендации по использованию биохимических маркеров для стратификации риска включают следующие положения:

  1. больные с подозрением на ОКС должны проходить раннее ранжирование по риску на основании комплексной оценки симптомов, клинического обследования, данных электрокардиографии и результатов измерения биомаркеров;

  2. кардиальный тропонин служит предпочтительным маркером при стратификации риска, и его по возможности следует измерять у всех пациентов с подозрением на ОКС. У пациентов с клинической картиной, характерной для ОКС, максимальную (пиковую) концентрацию, превышающую перцентиль, следует рассматривать как указание на повышенный риск смерти и повторного ишемического события (относится к I классу рекомендаций и уровню доказательности А);

  3. у пациентов с клиническим синдромом, соответствующим ОКС, для оценки риска может быть полезным, в дополнение к определению кардиального тропонина, определение C-реактивного белка (относится к IIа классу рекомендаций и уровню доказательности А);

  4. у пациентов с клиническим синдромом, соответствующим ОКС, для оценки риска может быть полезным, в дополнение к определению кардиального тропонина, определение мозгового натрийуретического пептида или N-терминального промозгового натрийуретического пептида (уровень доказательности А) (относится к IIа классу рекомендаций и уровню доказательности А).

Данные общеклинического исследования крови (гемоглобин, гематокрит, лейкоциты, лейкоцитарная формула, СОЭ, концентрация фибриногена) позволяют оценить интенсивность воспалительно-деструктивной реакции организма, риск использования интенсивных или инвазивных методов лечения.

Результаты биохимических исследований (с обязательным определением электролитов) позволяют оценить состояние основных систем поддержания гомеостаза и внести изменения в проводимое лечение.

Большое значение для выбора адекватной противоишемической терапии имеет исследование газового состава крови. Оно показано всем больным с признаками цианоза или дыхательной недостаточности (относятся к I классу рекомендаций и уровню доказательности С). Насыщение гемоглобина кислородом должно поддерживаться на уровне выше 90%.

При тромболизисе больным показано исследование коагулограммы через 4 ч (3 раза в первые 12 ч), далее через 6 ч 2 раза. Учитывая, что тромболитическая терапия может приводить к развитию внутреннего кровотечения, в первые сутки больным ИМ показано исследование кала на скрытую кровь.

Для успешной терапии ИМ необходимо в первые сутки нахождения больного в стационаре провести исследование липидного профиля для решения вопроса о раннем назначении липидоснижающих препаратов (статинов), полезность которых доказана в целом ряде рандомизированных исследований.

В соответствии с требованиями международных клинических руководств, диагностическая карта обследования больных ИМ включает спектр лабораторных исследований, приведенных в табл. 2.3.

Таблица 2.3. Диагностическая карта для лабораторного исследования у больного с инфарктом миокарда

Место

Отделение реанимации и интенсивной терапии

Продолжительность

30 мин

24 ч

48 ч

Лабораторные исследования

1. Общий анализ крови

+

+

+

2. Биохимическое исследование крови: глюкоза, общий белок, креатинин, мочевина, АСТ, АЛТ, ЛДГ, общий билирубин, калий, натрий, ионизированный кальций

+

3. Миоглобин в сыворотке (при длительности симптомов менее 6 ч)

+

4. Тропонин Т в сыворотке

+

+ Через 6 и 12 ч

5. Коагулограмма: протромбиновое время, АЧТВ, фибриноген, антитромбин III, тромбиновое время, плазминоген

+

+ При тромболизисе - через 4 ч 3 раза в первые 12 ч, далее через 6 ч 2 раза

+ АЧТВ (при антикоагулянтной терапии - 2 раза в сутки)

6. N-терминальный промозговой натрий-уретический пептид и СРБ в сыворотке крови

+

7. Липидный профиль сыворотки: общий холестерин, холестерин липопротеинов высокой плотности (ЛПВП), холестерин липопротеинов низкой плотности (ЛПНП), триглицериды

+

8. КОС (при наличии признаков цианоза или дыхательной недостаточности)

+

9. Исследование крови на сифилис, HBs-антиген, антитела к вирусному гепатиту С и ВИЧ

+

10. Определение группы крови и резус-фактора

+

11. Общеклиническое исследование мочи

+

+

12. Анализ кала на скрытую кровь

+

Не менее важно для врача-клинициста при составлении заявки на лабораторные исследования сопоставлять время назначения тестов с динамикой протекания патологического процесса. Например, бессмысленно назначать исследование миоглобина для диагностики ИМ на 5-е сутки после острого сердечного приступа, так как к этому времени уровень миоглобина в крови будет в норме; или исследовать коагулограмму через 1 ч после введения больному гепарина, когда все показатели свертывающей системы крови вследствие действия гепарина будут существенно отклонены от референтных значений.

Кроме того, врач-клиницист должен учитывать закономерности изменения исследуемого показателя (период полураспада, особенности метаболизма) у пациента при назначении исследований. Например, при назначении исследований опухолевых маркеров необходимо учитывать особенности их метаболизма (их период полураспада) и не назначать эти исследования на 2-3-и сутки после оперативного лечения опухоли. Результаты таких исследований неинформативны, так как уровень опухолевых маркеров в крови вследствие длительного периода полувыведения еще не успел снизиться и не будет объективно отражать радикальность проведенной операции.

Лабораторные тесты являются одними из важнейших диагностических инструментов при оказании экстренной и неотложной медицинской помощи в принятии клинических решений. Лабораторные исследования назначают практически 100% пациентов с экстренными состояниями и более чем 50% пациентов с неотложными заболеваниями. Именно поэтому предоставление врачам-клиницистам оптимальных возможностей для назначения необходимых лабораторных тестов настолько эффективно, насколько это возможно, имеет большое практическое значение.

В практическом плане, при поступлении пациента с экстренным состоянием в отделение реанимации или неотложным состоянием в приемное отделение или отделение неотложной помощи, правильно выбрать необходимые лабораторные тесты с предварительной оценкой всех этих составляющих достаточно сложно. Врачи при оказании неотложной медицинской помощи в первую очередь сосредоточены на качестве и времени (скорости) диагностики. С позиций доказательной медицины можно использовать несколько подходов для правильного выбора лабораторных тестов при неотложных состояниях:

  1. разработать и использовать тестовые панели для определенных экстренных состояний (синдромов) для отделений реанимации и интенсивной терапии;

  2. разработать и использовать тестовые панели для определенных неотложных состояний.

Тестовые панели используются для решения основных диагностических проблем, с которыми ежедневно сталкиваются врачи в отделениях неотложной медицинской помощи и для которых вклад клинической лабораторной диагностики может иметь решающее значение. Тестовые панели улучшают качество диагностики заболеваний и удобны для составления заявки на лабораторные исследования. Кроме того, их применение на практике уменьшает вероятность того, что врач забудет назначить определенный тест, так как все соответствующие тесты присутствуют на панели.

В руководстве, разработанном Австралазийским колледжем по неотложной медицине (a guideline developed by the Australasian College for Emergency Medicine - ACEM) и Королевским колледжем патологоанатомов Австралии (the Royal College of Pathologists of Australasia - RCPA) (2017), представлен пример формата тестовых панелей для диагностики неотложных состояний (табл. 2.4).

Таблица 2.4. Патология у взрослых пациентов, требующая оказания неотложной медицинской помощи, и предлагаемые к назначению лабораторные тесты

Клинические проявления

Лабораторные тесты

ГемК

Коаг.

мкэг

ППеч.

Са/ Ф/А

Мочев. к-та

Тп

Липаза

р-хгч

СРВ

кк

Лека р.

Общ. ан. кр.

АВО, Rh

КОС

Ан. мочи

Доп. ан.

Острая боль в животе (верхняя/эпигастральная)

+/-

+

+ ЛДГ

+/-

+/-

+

+

+

+

+/-лактат

Острая боль внизу живота

+/-

+

+/-

+

+

+ женщины

+

+/-лактат

Боль в спине, не связанная с травмой

+/-

+

+/-

+/-

+

+

+

Целлюлит

+/-

+

+/-

+

+/-М/П/Ч

Боль в груди - подозревается оке

+

+

+

Боль в грудной клетке - подозревается легочная эмболия

+/-ДД

+

+/-

+

+/-СМЖ

Потеря сознания/обморок

+/-

+

+/-

+/-

+/-

+

+

Инсульт

+/-

+

+

+

+

Диабетический кетоацидоз

+/-

+

+

+

+

Лихорадка неясного генеза

+

+

+

+/-

+

+

+/-малярия

Перелом шейки бедра/большой трубчатой кости

+

+

+

+

Переломы костей у лиц >55 лет

+

+

Желудочно-кишечное кровотечение

+/-

+

+

+

+

Желтуха

+

+

+

+/-

+

+

+/-ВГ

Заболевание печени

+

+

+

+/-

+

+/-ВГ

Онкологические пациенты (фебрильная нейтропения)

+

+

+

+/-

+

+/-

+М/ П/Ч

Передозировка лекарственных средств (значительная)

+

+

+/-

+/-

+/-

+/-парацетамол

Вагинальное кровотечения - 1 триместр беременности

+

+/-

+

+

+

+/-Chi., Gon.

Пневмония

+

+

+

+/-и сел. мокроты

Пиелонефрит

+/-

+

+

+

+М/ П/Ч

Почечная колика (1-й эпизод)

+

+

+

+

+

+

Заболевание почек

+

+

+

+

Судороги (1-й эпизод)

+ мониторинг Г

+

+ Мд

+

+/- СМЖ

Судороги (повторяющиеся)

+/-

+/-

+/-

+/-

+/-

Септический сустав - подозрение

+

+

+/-

+

+

+ СЖ М/П/ч

Сепсис

+

+

+

+

+

+

+

+

+ М/П/Ч

+ лактат, + посев из других источников

Укус ядовитой змеи

+

+

+только ЛДГ

+

+ Мазок

+

Затрудненное дыхание - астма

+/-

+/-

+/-

+ М. из зева на рес.В

Одышка - подозревается отек легких

+

+

+

+

+/-

+

Одышка - подозревается ХОБЛ

+

+

+/-

+/-и сел. мок.

Травма (обширная)

+

+

+

+

+

+

+

+

Терапия варфарином

+МНО

+/-

+/-

+/-

+/-

+

Примечания:

Гем. К - посев крови на гемокультуру; Коаг. - стандартное исследование (включает протромбиновое время, АЧТВ, фибриноген); МКЭГ - исследование крови: мочевина, креатинин, электролиты (К+, Na+, СI-), глюкоза; ППеч. - печеночные пробы (включают ACT, АЛТ, щелочную фосфатазу, билирубин, общий белок); + ЛДГ - дополнительно лактатдегидрогеназа; Са/Ф/А - кальций, фосфор, альбумин; Мочев. к-та - мочевая кислота; Тп - тропонин I или Т; β-ХГЧ - β-хорионический гонадотропин; CRP - С-реактивный белок; КК - креатинкиназа; Лекар. - уровень лекарственного препарата в крови; Общ. ан. кр. - общий анализ крови на гематологическом анализаторе с дифференциацией пяти фракций лейкоцитов; ABO, Rh - группа крови, резус-фактор, антитела; КОС - кислотно-основное состояние; MHO - международное нормализованноеотношение: исследовать только протромбиновое время и MHO, развернутую коагулограмму не исследовать; + Mg - добавить магний к тестам; + М/П/Ч - дополнительное исследование: микроскопия, посев и определение чувствительности к антибиотикам, если есть клиническое подозрение на инфекцию мочевыводящих путей; ДД - D-димер; СМЖ - спинномозговая жидкость; ВТ - тесты на вирусные гепатиты; Сhl., Gon. - исследование на хламидии, гонококки; иссл. мок. - исследовать мокроту (М/П/Ч), ПЦР на респираторный вирус и антигены в моче; СЖ М/П/Ч - исследование суставной жидкости: микроскопия, посев, определение чувствительности к антибиотикам; + мониторинг Г - дополнительно мониторинг глюкозы в палате; М. из зева на рес.В - мазок из зева на респираторный вирус; СЫ., Gon - исследование на хламидии и гонококки; ХОБЛ - хроническая обструктивная болезнь легких.

  • + - тест рекомендуется назначить;

  • +/- - тест необходимо рассмотреть и при наличии клинических показаний назначить;

  • отсутствие какого-либо знака в ячейке с тестом указывает на то, что тест не рекомендуется к назначению.

Таковы основные подходы к составлению заявки на лабораторные исследования, которые должен использовать современный врач в своей работе.

Очень важным в улучшении правильного назначения лабораторных тестов и повышении качества медицинской помощи является использование индикаторов качества процедуры составления заявки на лабораторные анализы. Минздрав России издал приказ от 10 мая 2017 г. № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи», в котором определил научно обоснованные (взяты из клинических руководств) критерии качества медицинской помощи. В табл. 2.5-2.8 приведены некоторые выдержки из этого приказа относительно лабораторных исследований.

Приведенные в приказе индикаторы (критерии) в отношении перечня лабораторных тестов необходимо использовать для оценки качества составления заявки на лабораторные анализы.

Таблица 2.5. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым и детям при железодефицитной анемии
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

1

Выполнен общий (клинический) анализ крови с определением количества ретикулоцитов, среднего объема эритроцитов, среднего содержания гемоглобина в эритроците, средней концентрации гемоглобина в эритроците, анизоцитоза эритроцитов

Да/нет

2

Выполнен анализ крови биохимический общетерапевтический (концентрация сывороточного железа, общая железосвязывающая способность сыворотки, насыщение трансферрина железом, концентрация сывороточного ферритина)

Да/нет

3

Выполнено лечение солевыми двухвалентными препаратами железа или гидроксидполимальтозным комплексом трехвалентного железа (в зависимости от медицинских показаний и при отсутствии медицинских противопоказаний)

Да/нет

Таблица 2.6. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым и детям при витамин-В12-дефицитной анемии и фолиево-дефицитной анемии
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

1

Выполнен общий (клинический) анализ крови с определением количества ретикулоцитов, среднего объема эритроцитов, ширины распределения эритроцитов по объему, среднего содержания гемоглобина в эритроцитах, средней концентрации гемоглобина в эритроцитах, анизоцитоза эритроцитов

Да/нет

2

Выполнен анализ крови биохимический общетерапевтический (общий билирубин, свободный и связанный билирубин, ЛДГ, концентрация сывороточного ферритина, концентрация сывороточного железа)

Да/нет

3

Выполнено определение уровня витамина В12 в крови

Да/нет

4

Выполнено определение уровня фолиевой кислоты в крови

Да/нет

5

Выполнено микроскопическое исследование кала на яйца и личинки гельминтов

Да/нет

6

Проведена терапия лекарственными препаратами витамина В12 или фолиевой кислоты (в зависимости от медицинских показаний и при отсутствии медицинских противопоказаний)

7

Выполнен повторный общий (клинический) анализ крови с определением количества ретикулоцитов, среднего объема эритроцитов, ширины распределения эритроцитов по объему, среднего содержания гемоглобина в эритроцитах, средней концентрации гемоглобина в эритроцитах, анизоцитоза эритроцитов

Да/нет

Таблица 2.7. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым при синдроме Иценко-Кушинга
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

1

Выполнено два из следующих исследований: определение уровня кортизола в слюне, малая проба с дексаметазоном, исследование уровня кортизола в моче, исследование уровня кортизола в крови

Да/нет

2

Выполнено исследование уровня глюкозы или гликированного гемоглобина (HbA1c) в крови

Да/нет

3

Выполнено исследование уровня АКТГ в крови

Да/нет

4

Выполнена магнитно-резонансная томография головного мозга (при уровне АКТГ в крови, равном или более 10 пг/мл)

Да/нет

Таблица 2.8. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым при сахарном диабете
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

1

Выполнено измерение гликемии в первые сутки 4 раза, в дальнейшем 1-3 раза в сутки

Да/нет

2

Выполнено исследование уровня HbA1c

Да/нет

3

Выполнен анализ крови биохимический общетерапевтический (белок, общий холестерин, холестерин липопротеинов высокой плотности, холестерин липопротеинов низкой плотности, триглицериды, билирубин, АЛТ, АСТ, мочевина, креатинин, калий, натрий)

Да/нет

4

Выполнен общий анализ мочи

Да/нет

5

Выполнено исследование на микроальбуминурию

Да/нет

6

Выполнен расчет скорости клубочковой фильтрации

Да/нет

11

Выполнен расчет индивидуального целевого уровня HbA1c и определены целевые значения гликемии натощак и через 2 ч после еды и на ночь

Да/нет

19

Выполнено бактериологическое исследование тканей раны с определением чувствительности возбудителя к антибиотикам и другим лекарственным препаратам (при синдроме диабетической стопы)

Да/нет

21

Достигнуты индивидуальные целевые значения гликемии натощак и через 2 ч после еды и на ночь

Да/нет

2.3.1.3. Оформление бланка-заявки на лабораторные исследования

Существует целый ряд технических моментов, связанных с оформлением бланка-заявки на лабораторные исследования, оказывающие существенное влияние на качество лабораторного исследования у пациента.

В большинстве случаев врачу-клиницисту приходится иметь дело с бумажным вариантом заказа лабораторных исследований. Обычно при назначении пациенту лабораторных исследований врач-клиницист или медицинская сестра заполняет бланк-заявку произвольной или установленной формы. В бланке-заявке приводятся необходимые сведения о пациенте, ЛПУ, страховой компании и т.д., а также перечень исследований, которые необходимо выполнить пациенту. При этом в лаборатории может использоваться несколько разных форм (типов) бланков-заявок.

В целях улучшения оформления заявки на анализы, получения всей необходимой информации о биоматериале и пациенте специалисты лаборатории должны разработать оптимальную форму заявки, согласовать ее с врачами-клиницистами и обеспечить бланками-заявками все лечебные подразделения ЛПУ в достаточном количестве. Если специалисты лаборатории не уделяют этой важной проблеме достаточно внимания, из клинических подразделений будут поступать неправильно оформленные бланки-заявки, что потребует еще больших затрат времени для выяснения информации, не указанной в заявках. Примеры бланков-заявок на лабораторные исследования приведены на рис. 2.6-2.11.

pic 0015
Рис. 2.6. Бланк-заявка на основные виды лабораторных исследований (лицевая сторона)
pic 0016
Рис. 2.7. Бланк-заявка на основные виды лабораторных исследований (обратная сторона)
pic 0017
Рис. 2.8. Бланк-заявка на общеклинические и цитологические исследования
pic 0018
Рис. 2.9. Бланк-заявка на серологические исследования
pic 0019
Рис. 2.10. Бланк-заявка на бактериологическое исследование (лицевая сторона)
pic 0020
Рис. 2.11. Бланк-заявка на бактериологическое исследование (обратная сторона)

Медицинская сестра играет важную роль в правильном заполнении бланка-заявки. Ошибки в направлении могут привести к тому, что пациент с опозданием получит сообщение о важных изменениях в результатах исследований, или к тому, что анализы вообще не попадут в амбулаторную карту или историю болезни. Внимание к деталям в сопроводительных документах жизненно важно при направлении проб для определения группы крови и резус-фактора. Большинство случаев трагичных трансфузий крови - результат ошибок в сопроводительной документации. Обучить медицинскую сестру правильному оформлению бланка-заявки на лабораторные тесты - обязанность врача-клинициста.

Согласно требованиям ГОСТ Р 53079.4-2008 и ГОСТ Р ИСО 15189, все бланки-заявки должны включать следующие данные:

  • дату и время назначения;

  • дату и время сбора (взятия) проб;

  • фамилию и инициалы пациента;

  • данные полиса ОМС (серия, номер, номер договора, наименование страховой медицинской организации);

  • отделение, номер истории болезни (амбулаторной карты),

  • возраст, пол;

  • диагноз;

  • фамилию и инициалы врача;

  • время приема последней дозы препаратов, способных повлиять на результат анализа;

  • фамилию и инициалы врача, назначившего исследование; перечень необходимых исследований;

  • подпись специалиста, проводившего взятие крови;

  • перечень тестов, выполняемых лабораторией;

  • примеры заполнения полей бланков-заявок;

  • иметь строго очерченный квадрат, куда будет клеиться штрихкод (при использовании штрихкодирования бланков-заявок).

В ЛПУ должен быть разработан СОП по заполнению бланка-заявки на лабораторные исследования (требование ГОСТ Р ИСО 15189). Бланки-заявки должны иметь все необходимые поля для внесения необходимой информации и содержать примеры заполнения полей бланков. Поля бланков-заявок заполняются шариковой, капиллярной или гелиевой ручкой, черными или темно-синими чернилами, четким, разборчивым почерком.

2.3.1.4. Индикаторы качества составления заявки на лабораторные исследования

Составление заявки на лабораторные исследования - важнейшая часть всего процесса получения результатов лабораторных исследований. Именно поэтому очень важно иметь индикаторы (критерии) качества выполнения этой процедуры.

Для оценки деятельности врача-клинициста по составлению заявки на лабораторные исследования (относительно соответствия выбора тестов требованиям клинических руководств) необходимо использовать данные приказа Минздрава России от 10 мая 2017 г. № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи». Если врач не назначил необходимые лабораторные тесты на основании клинических руководств, то все это будет выявлено при оценке критериев качества (они содержат тот необходимый набор тестов, которые надо назначить больному на основании данных доказательной медицины) и врач вынужден будет изучать клинические руководства и проверять свои знания, используя критерии качества.

Если в ЛПУ применяются тестовые панели для диагностики неотложных состояний, необходимо регулярно осуществлять контроль их использования.

Не меньшее значение имеет использование индикаторов качества для оценки полноты и аккуратности заполнения бланка-заявки на лабораторные исследования.

Количественная оценка составления заявки на лабораторные исследования должна проводиться с использованием индикаторов качества, разработанных рабочей группой по лабораторным ошибкам и безопасности пациентов (Laboratory Errors and Patient Safety - LEPS) Международной федерации клинической химии и лабораторной медицины (International Federation of Clinical Chemistry and laboratory medicine - IFCC) в 2008 г. (Sciacovelli L., Plebani M., 2009). Шкала оценки качества составления заявки на лабораторные исследования приведена в табл. 2.9.

Таблица 2.9. Индикаторы качества составления заявки на лабораторные исследования

Индикатор качества

Уровень выполнения

оптимально

желательно

минимально

неприемлемо

Количество заявок на анализы с клиническим диагнозом, %

>87

58-87

29-57

<29

Количество соответствующих тестов в отношении клинического диагноза, %

>97

65-97

32-64

<32

Количество заявок на анализы без данных врача, %

<5

5-6

6,1-8

>8

Количество непонятных заявок на анализы, %

<0,2

0,20-0,25

0,26-0,30

>0,3

2.3.2. ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС ПОДГОТОВКИ ПАЦИЕНТА К ИССЛЕДОВАНИЯМ, ВЗЯТИЯ, СБОРА И ТРАНСПОРТИРОВКИ БИОМАТЕРИАЛА В ЛАБОРАТОРИЮ

Этот этап единого процесса производства клинических лабораторных исследований является очень важным в обеспечении качества результатов исследований. От правильности подготовки пациента к исследованиям, техники взятия (сбора) проб биологического материала на анализы, своевременной доставки материала в лабораторию во многом зависит качество получаемых результатов исследований.

Обеспечение качества результатов лабораторных исследований начинается до того, как будет браться биологический материал. Для того чтобы получить качественные пробы для исследования, вначале надо подготовить пациента и приспособления (вакуумные пробирки, капилляры, емкости и т.д.) для взятия биоматериала. Несмотря на то что все эти процедуры выполняет медицинская сестра, именно врач-клиницист несет ответственность за качество их проведения.

Для того чтобы этот технологический процесс функционировал правильно, его необходимо строго регламентировать в виде СОП, в которых надо определить последовательность всех технологических операций (процедур), выработать критерии оценки качества каждой технологической операции, проанализировать причины, приводящие к нарушению технологического процесса, и разработать мероприятия по их устранению.

2.3.2.1. Подготовка пациента к лабораторным исследованиям

Подготовка пациента к лабораторным исследованиям имеет важное значение для получения достоверных результатов анализов. Врач-клиницист должен знать и учитывать значение влияния целого ряда факторов на многие лабораторные показатели при их назначении.

Взятие крови у пациента для исследований рекомендуется производить в ранние утренние часы после 12-часового ночного голодания (базовое состояние). Ряд факторов вызывают изменения в базовом состоянии пациента: диета, физические упражнения, эмоциональный стресс, суточные колебания некоторых показателей, положение тела при взятии крови, принимаемые пациентом лекарственные средства. Все эти факторы могут оказать существенное влияние на результаты лабораторных исследований, их необходимо учитывать при анализе результатов исследований и стремиться максимально стандартизировать условия взятия проб крови. Врач-клиницист должен знать особенности подготовки пациента к лабораторным исследованиям.

Рекомендации по диете. Режим питания, состав принимаемой пищи, перерывы в ее приеме оказывают существенное влияние на ряд показателей лабораторных исследований. После 48 ч голодания может увеличиваться концентрация билирубина в крови. Голодание в течение 72 ч снижает уровень глюкозы в крови у здоровых людей до 2,5 ммоль/л (45 мг%), увеличивает концентрацию триглицеридов, свободных жирных кислот без значительных изменений концентрации холестерина.

Употребление жирной пищи может повысить в крови уровень калия, триглицеридов и щелочной фосфатазы. Активность щелочной фосфатазы в таких случаях особенно увеличивается у людей с группой крови 0 или В. Физиологические изменения после приема жирной пищи в виде гиперхиломикронемии могут увеличивать мутность сыворотки (плазмы) и тем самым влиять на величину оптической плотности при измерении результатов анализов в лаборатории. Липемичная сыворотка выявляется после приема больным масла, крема или сыра, что приведет к ложным результатам исследований и потребует повторного анализа.

Определенные виды пищи и режимы питания могут оказать влияние на ряд показателей сыворотки и мочи. Потребление большого количества мяса, то есть пищи с высоким содержанием белка, может увеличить содержание мочевины и аммиака в сыворотке, количество уратов (солей кальция) в моче. Пища с высоким отношением ненасыщенных жирных кислот к насыщенным может вызвать снижение холестерина в сыворотке, в то время как пища, содержащая много мяса, вызывает увеличение концентрации уратов. Бананы, ананасы, томаты, авокадо богаты серотонином. Если они употребляются в пищу за 3 дня до исследования в моче 5-оксииндолуксусной кислоты (продукт метаболизма серотонина, выделяемый с мочой), то в моче даже здорового человека ее содержание может быть повышенным. Напитки, богатые кофеином, увеличивают уровень свободных жирных кислот и вызывают выход в кровь катехоламинов (адреналина, норадреналина) из надпочечников и мозга. Прием алкоголя увеличивает в крови уровень лактата, мочевой кислоты и триглицеридов. Повышенное содержание общего холестерина, а-холестерина, ГГТП, мочевой кислоты и увеличение среднего объема эритроцитов (MCV) может быть связано с хроническим алкоголизмом.

Длительное голодание (2-4 нед) также способно влиять на изменение ряда лабораторных показателей. Концентрация общего белка, холестерина, триглицеридов, мочевины, липопротеинов в крови снижается. Наоборот, выведение креатинина и мочевой кислоты почками с мочой повышается. Длительное голодание тесно связано со снижением расхода энергии и, как следствие, в крови снижается концентрация гормонов щитовидной железы - общего тироксина (Т4) и в еще большей степени Т3.

Для того чтобы исключить влияние принимаемой пациентом пищи, необходимо соблюдать общее правило - 12-часовое голодание перед забором крови. Если нужны какие-то ограничения в питании, то пациент должен быть проинструктирован устно либо письменно в виде памятки. Например, при взятии крови для исследования уровня глюкозы натощак пациента нужно предупредить, что он не должен пить чай или кофе, но пить воду он может. Если запретить пить воду (или не сказать о том, что пить воду можно), то дисциплинированный пациент может довести себя до обезвоживания.

Физические упражнения. Физическая нагрузка может оказывать преходящее влияние или иметь длительное воздействие на различные параметры гомеостаза. Преходящие изменения включают вначале снижение, а затем увеличение концентрации свободных жирных кислот в крови, повышение на 180% содержания аммиака и на 300% лактата, увеличение активности таких ферментов, как КК, АСТ, ЛДГ. Физические упражнения влияют на показатели гемостаза - активируют свертывание крови и функциональную активность тромбоцитов. Эти изменения связаны с активацией метаболизма и обычно возвращаются в исходное (до физической нагрузки) состояние вскоре после прекращения физической деятельности. Однако активность некоторых ферментов (КК, АСТ, ЛДГ) может оставаться повышенной в течение 24 ч после одночасовой интенсивной физической нагрузки. Длительная физическая нагрузка увеличивает в крови уровень половых гормонов, включая тестостерон, андростендион и лютеинизирующий гормон.

Эмоциональный стресс. Степень влияния психического стресса (страх перед взятием крови, предоперационный стресс и т.д.) на результаты лабораторных тестов часто медицинскими сестрами недооценивается. Между тем под его влиянием в крови может наблюдаться преходяще повышение количества лейкоцитов в крови (лейкоцитоз), снижение уровня железа, увеличение уровня катехоламинов, альдостерона, кортизола, пролактина, ренина, соматотропного и тиреотропного гормонов и повышение концентрации альбумина, глюкозы, инсулина, фибриногена и холестерина. Сильное беспокойство, если оно сопровождается гипервентиляцией, вызывает дисбаланс КОС с увеличением концентрации лактата и жирных кислот в крови.

Суточные ритмы гомеостаза. При назначении лабораторных исследований необходимо учитывать и суточные ритмы колебаний некоторых показателей гомеостаза. Уровень некоторых гормонов в крови в послеобеденные часы снижается, в то время как число эозинофилов и уровень железа повышаются. Так, концентрация калия ниже после обеда по сравнению с утренними часами, тогда как концентрация кортизола возрастает в течение дня и снижается ночью. Ритм секреции кортизола может быть причиной недостоверных результатов глюкозотолерантного теста, проводимого во второй половине дня. В ряде случаев при назначении лабораторных исследований необходимо учитывать сезонные колебания уровня ряда показателей. Так, содержание Т3 на 20% ниже летом, чем зимой.

Достоверно значимые изменения ряда показателей могут быть вызваны колебаниями уровней гормонов при менструации. Так, концентрация альдостерона в плазме в 2 раза выше перед овуляцией, чем в фолликулиновой фазе, а содержание холестерина существенно снижается при овуляции. Наоборот, уровни фосфатов и железа снижаются при менструации.

Положение тела пациента при заборе крови также влияет на ряд показателей. Так, смена пациентом положения лежа на положение сидя или стоя приводит к гидростатическому проникновению воды и фильтрующихся веществ из внутрисосудистого пространства в интерстициальное. Вещества, имеющие большую молекулярную массу (белки), и клетки крови со связанными с ними веществами не проходят в ткани, поэтому их уровень в крови повышается (ферменты, общий белок, альбумин, железо, билирубин, холестерин, триглицериды, лекарственные средства, связанные с белками, особенно кальций). Могут увеличиваться концентрация гемоглобина, гематокрит, количество лейкоцитов.

Влияние лекарственных средств. Некоторые лекарственные средства могут оказывать существенное влияние на результаты лабораторных исследований. Например, прием аспиринсодержащих препаратов при определении времени длительности кровотечения по Дуке должен быть отменен за 7-10 дней до исследования. Если этого не сделать, можно получить патологический результат исследования. В случае если принимаемый пациентом лекарственный препарат может повлиять на результат анализа, то при невозможности его отмены, врач лаборатории должен об этом знать. Именно поэтому в заявке на исследование необходимо сообщить о принимаемых пациентом лекарственных средствах.

Другие факторы. Среди других факторов, влияющих на результаты исследований, имеют значение возраст, пол, беременность, географическое положение местности, высота над уровнем моря, температура окружающей среды, курение табака. В связи с этим лабораториям рекомендуется устанавливать свои локальные референтные (нормальные) величины для своей популяции.

У курильщиков табака может быть повышено содержание карбоксигемоглобина, катехоламинов в плазме и кортизола в сыворотке. Изменения концентрации этих гормонов часто приводят к снижению числа эозинофилов, в то время как количество нейтрофилов, моноцитов и свободных жирных кислот увеличивается. Курение приводит к увеличению концентрации гемоглобина, количества эритроцитов и снижению количества лейкоцитов.

Общим правилом для пациентов, у которых будет браться кровь на исследование, должно быть воздержание от физических нагрузок, приема алкоголя и лекарственных средств, изменений в питании в течение 24 ч до взятия крови. Пациент не должен принимать пищу после ужина, ему необходимо лечь спать накануне в обычное для него время и встать не позднее чем за 1 ч до взятия крови.

В 2018 г. были опубликованы совместные рекомендации EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови (Simundic A.M. et al., 2019). В этих рекомендациях с позиций доказательной медицины даны инструкции по всем этапам процедуры взятия венозной крови у пациентов. Шкала оценки силы и качества рекомендаций приведена в табл. 2.10.

Соблюдение требований по подготовке пациента к анализам оценено рекомендациями как 1В - сильная рекомендация, умеренное качество доказательств:

  1. кровь для всех анализов крови следует брать утром (в период с 7 до 9 ч утра) натощак, через 12 ч после последнего приема пищи;

  2. в течение данного периода разрешено потребление воды, но пациенты должны воздерживаться от алкоголя в течение 24 ч до взятия крови;

  3. утром перед взятием крови пациенты не должны пить кофеинсодержащие напитки (кофе, энергетические напитки и чай);

  4. курение утром перед взятием крови запрещено;

  5. в течение 24 ч до взятия крови следует избегать интенсивной физической нагрузки.

С позиций доказательной медицины требование к взятию крови не натощак возможно только в следующих случаях (уровень и сила доказательности 1С):

  1. при оказании неотложной медицинской помощи;

  2. при исследовании показателей, которые не подвержены суточным колебаниям и для которых имеются доказательства того, что состояние натощак не требуется.

Таблица 2.10. Шкала градации силы и качества рекомендаций
Степень рекомендации Польза/риск Качество подтверждающих доказательств Последствия

1A. Сильная рекомендация, высокое качество доказательств

Польза явно перевешивает риски и расходы, или наоборот

Последовательные доказательства из качественно проведенных рандомизированных контролируемых исследований или неоспоримое доказательство из других исследований. Дальнейшие исследования с низкой вероятностью повлияют на оценку соотношения пользы и риска

Сильная рекомендация, можно применять для большинства пациентов, в большинстве случаев без оговорок. Клиницисты должны следовать сильной рекомендации, если нет четкого и убедительного обоснования альтернативного подхода

1B. Сильная рекомендация, умеренное качество доказательств

Польза явно перевешивает риски и расходы, или наоборот

Доказательства из рандомизированных контролируемых исследований со значимыми ограничениями (непоследовательные результаты, методологические недостатки, косвенные или неточные данные) или очень убедительные доказательства из некоторых других исследований. Дальнейшие исследования (если они выполняются) могут повлиять на нашу оценку соотношения пользы и риска

Сильная рекомендация, применяется для большинства пациентов. Клиницисты должны следовать сильной рекомендации, если нет четкого и убедительного обоснования альтернативного подхода

1С. Сильная рекомендация, низкое качество доказательств

Польза, скорее всего, перевешивает риски и расходы, или наоборот

Данные наблюдательных исследований, несистематический клинический опыт или данные рандомизированных контролируемых исследований с серьезными недостатками. Любая оценка эффекта неточная

Сильная рекомендация, применяется для большинства пациентов. Однако некоторые из доказательств, подтверждающих рекомендацию, имеют низкое качество

2A. Слабая рекомендация, высокое качество доказательств

Преимущества уравновешены рисками и расходами

Последовательные доказательства из качественно проведенных рандомизированных контролируемых исследований или неоспоримое доказательство из других исследований. Дальнейшие исследования с низкой вероятностью повлияют на нашу оценку соотношения пользы и риска

Слабая рекомендация, лучшие действия могут различаться в зависимости от обстоятельств, характеристик пациентов или общественных ценностей

2B. Слабая рекомендация, умеренное качество доказательств

Преимущества уравновешены рисками и расходами, некоторая неопределенность в оценке пользы, рисков и расходов

Доказательства из рандомизированных контролируемых исследований со значимыми ограничениями (непоследовательные результаты, методологические недостатки, косвенные или неточные данные) или очень убедительные доказательства из некоторых других исследований. Дальнейшие исследования (если они выполняются) могут повлиять на нашу оценку соотношения пользы и риска

Слабая рекомендация, альтернативные подходы, вероятно, будут лучше для некоторых пациентов в некоторых обстоятельствах

2C. Слабая рекомендация, низкое качество доказательств

Неопределенность в оценках пользы, рисков и расходов; польза может быть уравновешена рисками и расходами

Данные наблюдательных исследований, несистематический клинический опыт или данные рандомизированных контролируемых исследований с серьезными недостатками. Любая оценка эффекта неточная

Очень слабая рекомендация; другие альтернативные варианты могут быть обоснованными в той же степени

2.3.2.1.1. Памятки пациентам по подготовке к лабораторным исследованиям

Для того чтобы пациент принимал активное участие в подготовке к лабораторным исследованиям, очень важно разработать памятки для него. Ниже приведены примеры таких памяток.

Памятка для пациента

Общие положения

Общим правилом для пациента, у которого будет браться кровь на лабораторные исследования (общий анализ крови, определение группы крови и резус-фактора, биохимические анализы, исследование свертывающей системы крови, гормонов, онкомаркеров, серологические анализы на ВИЧ, сифилис, гепатиты), должно быть воздержание от физических нагрузок, приема алкоголя и лекарственных средств (по возможности, в соответствии с рекомендациями лечащего врача), изменений в питании в течение 24 ч до взятия крови.

Вам необходимо:

  1. не принимать пищу после ужина;

  2. лечь спать накануне в обычное для Вас время и встать не позднее чем за 1 ч до взятия крови;

  3. утром после подъема воздержаться от курения.

Если Вы испытываете трудности с отменой лекарственных средств, то обязательно сообщите об этом лечащему врачу. Кровь на анализы сдают утром до приема лекарственных средств.

Кровь следует сдавать до рентгенологического, эндоскопического или ректального исследований или физиотерапевтических процедур.

Непосредственно перед взятием крови на анализы необходимо исключить физическое напряжение (бег, подъем по лестнице) эмоциональное возбуждение. Именно поэтому непосредственно перед процедурой следует отдохнуть 10-15 мин и успокоиться.

Очень важно, чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены ценные результаты исследования крови.

Памятка для пациента

Общий анализ крови

Общий анализ крови назначен Вашим лечащим врачом. Цель исследования - объективно оценить состояние Вашего здоровья.

Вам нужно подготовить себя к этому исследованию следующим образом: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя и лекарственных средств, изменений в питании в течение 24 ч до взятия крови. Вам не следует принимать пищу после ужина, лечь спать нужно накануне в обычное для Вас время и встать не позднее чем за 1 ч до взятия крови. Утром после подъема воздержитесь от курения.

Если Вы испытываете трудности с отменой лекарственных средств, то обязательно сообщите об этом лечащему врачу.

Вечером накануне взятия крови подойдите к процедурной медицинской сестре и уточните, где Вам необходимо находиться утром для его выполнения.

Очень важно, чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены ценные результаты исследования крови.

Памятка для пациента

Глюкозотолерантный тест

Глюкозотолерантный тест назначен Вашим врачом. Цель теста - определить у Вас эффективность работы инсулиновыделительного механизма поджелудочной железы и глюкозораспределительной системы организма.

Вам нужно подготовить себя к этому тесту изменением диеты и режима приема лекарственных средств по меньшей мере за 3 дня до проведения теста. Очень важно, чтобы Вы точно следовали приведенной ниже инструкции, так как только в этом случае будут получены ценные результаты теста.

Вам необходимо следовать трем главным указаниям:

  1. количество углеводов в пище должно быть не менее 125 г/сут в течение 3 дней перед проведением теста;

  2. нельзя ничего есть в течение 12 ч, предшествующих началу теста, но ни в коем случае голодание не должно быть более 16 ч;

  3. не позволять себе физической нагрузки в течение 12 ч перед началом теста.

Подготовка: медикаменты. Если Вы принимаете лекарственные средства помимо тех, что назначил лечащий врач, то Вы должны сообщить ему об этом, так как они могут повлиять на результаты исследования.

Подготовка: диета. Вы принимаете только пищу, выдаваемую в лечебном отделении. Назначенный Вам лечащим врачом рацион содержит не менее 125 г углеводов в сутки, поэтому Вам следует воздержаться от приема дополнительной пищи.

Подготовка: общее состояние. Сообщите врачу о своем самочувствии перед исследованием, обязательно упомянув при этом об имеющейся беременности и/или стрессе.

Если Вы испытываете трудности с изменениями диеты или режима приема лекарственных средств, то обязательно сообщите об этом лечащему врачу.

Накануне вечером перед проведением теста подойдите к процедурной медицинской сестре и уточните, где Вам необходимо находиться утром для его выполнения.

Очень важно, чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены ценные результаты этого исследования.

2.3.2.1.2. Индикаторы качества подготовки пациентов к лабораторным исследованиям

Подготовка пациента к лабораторным исследованиям имеет важное значение для получения достоверных результатов анализов. Индикаторами оценки данной процедуры служат:

  1. наличие СОП по подготовке пациента к различным видам лабораторных исследований (требование ГОСТ Р ИСО 15189);

  2. наличие памяток пациентам по подготовке их к анализам;

  3. соблюдение пациентами и медицинским персоналом требований совместных рекомендаций EFLM и COLABIOCLI по условиям подготовки к взятию проб венозной крови.

Если в ЛПУ имеется утвержденный руководителем СОП по подготовке пациента к различным видам лабораторных исследований, на рабочем месте постовой и процедурными медицинскими сестерами осуществляется устное информирование пациентов и выдаются памятки об особенностях подготовки к взятию анализов и времени их взятия за день до сдачи анализов (лечащим врачом или медицинской сестрой), то эту будет способствовать повышению качества анализов.

2.3.2.2. Взятие проб крови на лабораторные исследования

Венепункция и взятие проб венозной крови являются наиболее распространенными методами получения биологического материала для лабораторных исследований. Вместе с тем процедура взятия проб крови является и основным источником низкого качества проб, результатов лабораторных анализов и лабораторных ошибок. Нарушения при выполнении процедуры взятия проб крови и манипуляциях с ними могут служить причиной заболеваний гемоконтактными инфекциями пациентов и медицинского персонала. Основным направлением снижения количества ошибок является максимальная стандартизация процедуры взятия проб крови на лабораторные исследования и обеспечение выполнения требований противоэпидемического режима для снижения риска возникновения гемоконтактных инфекций при такой массовой манипуляции, как взятие венозной крови.

Все медицинские работники лечебного учреждения заинтересованы в качественном обслуживании пациента, поэтому необходимо тщательно планировать объем предполагаемых исследований. Заявки на анализы должны быть согласованы со всеми врачами-специалистами, участвующими в лечении больного, чтобы при венепункции взять материал для всех необходимых исследований и не повторять процедуру. Медицинская сестра должна собрать все заявки на данного пациента и сделать суммарную заявку на анализы. Если пациент будет переведен в другое отделение, то она также должна предупредить лабораторию об этом, чтобы результаты исследований были направлены в нужное отделение и не утеряны. Сведения, которые должна содержать заявка, приведены выше.

Указание времени взятия крови имеет важное значение практически для всех видов исследований, но особенно для исследования системы гемостаза, лекарственного мониторинга, бактериологического исследования.

Если пациент принимает лекарственное средство, которое может оказать влияние на результат исследования, то при невозможности его отмены в заявке на исследование необходимо сообщить об этом, чтобы в лаборатории приняли это во внимание. Взятие проб крови необходимо проводить до диагностических и лечебных процедур, так как они могут оказать влияние на результаты лабораторных исследований. Оптимальное время для взятия проб крови на анализы - между 7 и 9 ч утра.

Процедура взятия крови на исследование состоит из нескольких последовательных действий, включающих выбор приспособления для взятия крови, подготовку рабочего места, определение места взятия крови и саму процедуру взятия крови.

2.3.2.2.1. Приспособления, используемые для взятия проб крови

Одним из важных моментов при взятии проб крови на лабораторные исследования является выбор приспособлений для выполнения этой процедуры.

Для взятия проб крови на лабораторные исследования предпочтительно использовать вакуумные системы, что регламентировано целым рядом руководящих документов.

  • Национальный стандарт РФ ГОСТ Р 53079.4-2008 «Технологии медицинские лабораторные. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа». Введен в действие с 1 января 2010 г.

  • Правила и методы исследований и правила отбора образцов донорской крови, необходимые для применения и исполнения технического регламента о требованиях безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и технических средств, используемых в трансфузионно-инфузионной терапии, утверждены постановлением Правительства РФ от 31 декабря 2010 г. № 1230.

  • Национальный стандарт РФ ГОСТ Р ИСО 6710-2009 «Контейнеры для сбора образцов венозной крови одноразовые», утвержден и введен в действие приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 3 июля 2009 г. № 232-ст.

Вакуумная система для взятия крови состоит из трех основных элементов, соединяющихся между собой в процессе взятия крови (рис. 2.12):

  1. стерильной одноразовой пробирки с крышкой и дозированным содержанием вакуума;

  2. стерильной одноразовой двусторонней иглы с визуальной камерой (или без камеры), закрытой с обеих сторон защитными колпачками;

  3. одно- или многоразового иглодержателя.

В течение 2-3 сут перед использованием вакуумные системы для взятия крови должны храниться при комнатной температуре. Оптимальной для хранения вакуумных систем является температура 4-25 °С. При хранении вакуумных систем необходимо избегать воздействия прямого солнечного света, особенно при высоких температурах (выше 25 °С).

При транспортировке необходимо избегать температур ниже -15 °С и выше +40 °С. При этом следует отметить, что краткосрочная транспортировка пробирок при температуре от -30 до +4 °С не оказывает какого-либо существенного воздействия на функциональные свойства продукции. Если пробирки хранились ниже 0 °С, то перед использованием их необходимо выдержать при комнатной температуре в течение как минимум 48 ч. При длительном хранении при температуре 40-50 °С может произойти деформация пробирок. Следует иметь в виду, что большие перепады температур могут снизить эффективность пробирок за счет потери вакуума и спровоцировать неверные результаты анализов.

pic 0021
Рис. 2.12. Вакуумная система для взятия крови

Согласно международным рекомендациям EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови, в качестве элементов системы взятия крови следует использовать компоненты одного производителя, только в этом случае обеспечивается полная совместимость между компонентами системы (уровень и сила доказательности 2С). Компоненты различных производителей никогда не должны использоваться вместе, поскольку их сочетания не прошли валидацию в отношении предполагаемого использования и могут поставить под угрозу безопасность пациента и медицинского работника. Если есть необходимость иногда использовать компоненты разных производителей (например, специальные пробирки для взятия крови, которых нет у основного поставщика вакуумных систем), то это требование не является полностью обязательным.

2.3.2.2.1.1. Вакуумные пробирки

Вакуумные пробирки производятся из пластика и стекла. Пластиковые пробирки не бьются, поэтому предпочтительнее для взятия проб крови при централизации лабораторных исследований. В пластиковых пробирках удобнее транспортировать образцы и их легче утилизировать. Недостатком пластиковых пробирок является то, что при длительном хранении некоторые жидкие наполнители в них могут испаряться, поэтому в таких случаях необходимо использовать только стеклянные пробирки.

Все вакуумные пробирки стерильные, предназначены для одноразового использования, выпускаются разных объемов и размеров (от 1,8 до 10 мл). Объем забираемой пробы обеспечивается точно дозированным вакуумом, под действием которого кровь поступает в пробирку в процессе венепункции. В пробирках используются различные химические наполнители для проведения разных видов анализов. В качестве наполнителей в вакуумных пробирках используются активаторы свертывания (тромбин, кремнезем), антикоагулянты (этилендиаминтетра-уксусная кислота - ЭДТА, цитрат натрия, гепарин и т.д.), разделительные гели и др.

Верхний колпачок вакуумной пробирки закодирован цветом, который говорит о том, какой реагент в ней находится и для каких видов исследований она предназначена. В табл. 2.11 приведен список реагентов и цветная кодировка вакуумных пробирок для наиболее распространенных видов лабораторных исследований.

Таблица 2.11. Выбор вакуумных пробирок для разных видов исследований с учетом цветовой кодировки
Цвет головки пробирки Добавка Применение

Красный/белый

Ничего не добавлено

Для получения сыворотки

Желтый

Содержит гель

Для получения сыворотки, разделяет форменные элементы крови и сыворотку

Зеленый/оранжевый

Гепарин

Для получения плазмы и форменных элементов крови

Сиреневый/красный

ЭДТА

Для получения цельной крови (связывается кальций)

Черный/розовато-лиловый

3,13% цитрат натрия

Для определения СОЭ по Вестергрену

Бледно-голубой/ зеленый

3,13% забуференный цитрат натрия

Для исследования системы гемостаза

Крышки вакуумных пробирок производятся из силикона, изобутилена изопрена, бутадиен-стирольного каучука, хлорированного изобутилен-изопренового каучука, сополимера этилена с пропиленом полихлоропрена, бутилкаучука и галобутилкаучуков. Крышки должны обеспечивать поддержание вакуума, быть легкопроницаемыми для иглы и становиться самоуплотняющимися после ее удаления. Компоненты крышки способны вызывать загрязнение проб крови вследствие наличие в них серы, ускорителей вулканизации, жирных кислот и перекисей и приводить к ошибкам анализа. Резиновые крышки могут содержать пластификатор - трис (2-бутоксиэтиловый) фосфат для увеличения мягкости и гибкости крышки, но он может вытеснять некоторые лекарственные средства из участков связывания с белками плазмы (например, с а1-кислым гликопротеином), тем самым увеличивая поглощение лекарственных средств эритроцитами, в результате их уровень в сыворотке или плазме крови снижается.

Для предотвращения загрязнения проб крови резиновые крышки в вакуумных пробирках могут быть покрыты полипропиленом, поливинилхлоридом или полиэтиленом, а также силиконом или глицерол-смазочными материалами (влияют на уровень триглицеридов в пробе).

Согласно требованиям ГОСТ ISO 6710-2011 «Контейнеры для сбора образцов венозной крови одноразовые. Технические требования и методы испытаний», этикетка на вакуумных пробирках должна соответствовать следующим требованиям:

  1. не должна полностью охватывать пробирку;

  2. маркировка и этикетка должны сохраняться прикрепленными на контейнере после пребывания на воздухе при температуре 4±1 °С не менее 48 ч.

Маркировка на внешней стороне каждой первичной упаковки должна содержать следующую информацию:

  1. а) наименование и адрес изготовителя и поставщика;

  2. б) номер партии (лота);

  3. в) срок годности;

  4. г) описание содержимого, которое должно включать:

    • номинальную вместимость;

    • покрытие (например, неконтактная активация) или добавки во всех пробирках;

    • наименования добавок, или их формулы, и/или буквенный/цветовой код.

Наиболее часто встречаемый вариант этикетки приведен на рис. 2.13.

pic 0022
Рис. 2.13. Информация, которую должна содержать этикетка вакуумной пробирки

Существует большой спектр вакуумных пробирок для различных видов лабораторных исследований.

Вакуумные пробирки для гематологических исследований

В качестве антикоагулянта в вакуумных пробирках для гематологических исследований цельной крови используется калиевая соль ЭДТА. В вакуумных пробирках антикоагулянт находится в виде порошка K2 ЭДТА или раствора K3 ЭДТА, концентрация которого достигает 1,8 мг/мл в полностью заполненных кровью пробирках.

Порошок K2 ЭДТА наносится распылением на внутреннюю поверхность пластиковых пробирок. K3 ЭДТА добавляется в стеклянные или пластиковые пробирки в виде 7,5% раствора, если объем пробы менее 3 мл (2,2% разбавление пробы), или в виде 15% раствора, если объем пробы более 3 мл (1,1% разбавление пробы).

Для обеспечения правильного соотношения крови и антикоагулянта пробирка с ЭДТА должна заполняться точно до указанного объема (+10% указанного на этикетке). Недостаток ЭДТА в пробе приводит к ее коагуляции, а избыточная концентрация ведет к сморщиванию клеток крови и искажению таких клинических показателей, как гематокрит, размер клеток и т.д.

Для гематологических исследований предпочтительно использовать вакуумные пробирки с К2 ЭДТА. Сразу после взятия крови в вакуумную пробирку с ЭДТА необходимо тщательно перемешать содержимое, переворачивая пробирку 8-10 раз. Недостаточное перемешивание также может привести к агрегации тромбоцитов, образованию микросгустков или коагуляции.

Вакуумные пробирки для измерения скорости оседания эритроцитов

Для измерения СОЭ используются стерильные стеклянные вакуумные пробирки 120 мм длиной и диаметром 10,25 мм, с черной или розовато-лиловый крышкой. Реагент - раствор цитрата натрия 1,25 мл, концентрация - 0,105 моль/л. При полном заполнении пробирки кровью (5,2 мл) достигается соотношение крови и антикоагулянта, равное 4:1. Измерение СОЭ проводится в закрытой первичной вакуумной пробирке, то есть пробу не нужно переливать и дополнительно разбавлять. В полностью заполненной пробирке высота пробы составляет 100 мм.

Вакуумные пробирки для получения сыворотки

Сыворотка крови - наиболее часто используемый материал в КДЛ. Для получения сыворотки кровь должна полностью свернуться. Полное свертывание крови у пациентов, не принимающих антикоагулянты, происходит в среднем в течение 1 ч. Дальнейшее уплотнение сгустка происходит при центрифугировании. Для получения качественной пробы важно выдержать полное время свертывания крови. Если же кровь свернулась не полностью, то оставшийся после центрифугирования фибрин может изменять оптическую плотность пробы, а также засорять зонды анализаторов. Для ускорения процесса коагуляции используются активаторы свертывания - кремнезем и тромбин. В стеклянных пробирках функцию активатора свертывания выполняет непосредственно сама стеклянная стенка пробирки, так как в состав стекла входит кремний, ускоряющий процесс коагуляции. В пластиковые пробирки добавляются активаторы свертывания: кремнезем и/или тромбин. Внутренние стенки пробирок, как правило, покрыты силиконом для предотвращения адгезии клеток крови к поверхности стенок.

Микронизированный кремнезем - активатор свертывания, действующий на тромбоцитарное звено и плазменный гемостаз. Активатор свертывания используется в сывороточных пластиковых пробирках с гелем и без геля. Кремнезем - порошок, распыленный на внутренние стенки пробирки, который визуально определяется в виде мутного напыления внутри пробирки. Частицы кремнезема нерастворимы. Они наносятся на поверхность пробирки в виде спрея водного раствора с поверхностно-активным веществом. Поверхностно-активное вещество улучшает дисперсию частиц кремнезема, а также способствует снижению адгезии клеток на стенки пробирки. Пробирки с активатором свертывания кремнеземом требуют обязательного перемешивания (5-6 раз). Перемешивание уменьшает время свертывания, усиливает стягивание сгустка и, следовательно, увеличивает объем получаемой сыворотки. Перемешивание также уменьшает концентрацию поверхностно-активного вещества и кремнезема в сыворотке (они остаются внутри сгустка).

Для получения сыворотки используются вакуумные пробирки без геля (имеют красную/белую кодировку крышек) и гелем (имеют желтую кодировку крышек).

Вакуумные пробирки для получения сыворотки без геля

Вакуумные пробирки для получения сыворотки имеют красную/белую кодировку крышек и бывают двух видов - стеклянные и пластиковые. Кремнезем добавляется только в пластиковые пробирки, стеклянные вообще не содержат наполнителя. После взятия пробы крови в пластиковые пробирки, ее следует перемешать путем переворачивания 5-6 раз для лучшего контакта с активатором свертывания. Прежде чем центрифугировать пробирки с сывороткой, необходимо дождаться полного свертывания крови. Минимальное время полного свертывания в пробирках этого типа - 60 мин. Условия центрифугирования: 1300 g в течение 10 мин.

Вакуумные пробирки с гелем для получения и отделения сыворотки

Вакуумные пробирки с гелем производятся только из пластика, их можно отличить по желтой крышке. В целях лучшего отделения сгустка крови от сыворотки в пробирки добавлен гель - специальный материал, предназначенный для образования стойкого барьера между клеточными компонентами крови и сывороткой во время центрифугирования. Гель специально расположен в пробирке таким образом (под наклоном), чтобы во время центрифугирования облегчалось его механическое движение и отделение сгустка крови от сыворотки. Специфический удельный вес геля подобран таким образом (между плотностью форменных элементов крови и плотностью сыворотки), что при центрифугировании гель «всплывает» над эритроцитами и располагается между форменными элементами крови и сывороткой. Гель твердеет, и образуется барьер между форменными элементами крови и сывороткой. Устойчивый барьер образуется через 5 мин после окончания центрифугирования пробы. В пробирку с гелем добавлен кремнезем в количестве, обеспечивающем полное свертывание крови в течение 30 мин. После взятия пробы крови в вакуумные пробирки с гелем ее следует перемешать путем переворачивания пробирки 5-6 раз. Условия центрифугирования: 1500-2000 g в течение 10 мин, пробирки с гелем нельзя центрифугировать повторно во избежание гемолиза пробы. При центрифугировании вакуумных пробирок с гелем нельзя пользоваться центрифугами с угловыми роторами, так как часть эритроцитов может попасть в сыворотку.

Преимущества вакуумных пробирок с гелем в отношении повышения эффективности выполнения анализов:

  • сокращается время проведения анализа (нет необходимости ждать 1 ч для завершения образования сгустка);

  • выход сыворотки при центрифугировании больше (особенно важно это в педиатрии);

  • центрифугировать надо только 1 раз;

  • после центрифугирования пробу можно спокойно транспортировать без отделения от форменных элементов крови;

  • возможно проведение анализа в первичной пробирке;

  • можно переливать сыворотку в другие пробирки без применения пипеток;

  • пробирки можно замораживать до -20 °С.

Преимущества вакуумных пробирок с гелем в отношении повышения стабильности аналитов и чистоты образца:

  • снижается вероятность гемолиза при центрифугировании;

  • снижается вероятность присутствия латентного фибрина в сыворотке;

  • увеличивается срок хранения образца;

  • повышается стабильность аналитов (ферментов, электролитов, гормонов и др.) с 2 ч до 3 дней и более; например, стабильность АСТ, ЛДГ и калия сохраняется в течение 6 сут при температуре 4 °C;

  • возможно использование сыворотки для специальных анализов, особенно для исследования гормонов, таких как эстрадиол и прогестерон;

  • возможно проведение лекарственного мониторинга в отношении целого ряда фармакологических препаратов;

  • отсутствие воздействия на пробу факторов окружающей среды (микроорганизмы, окисление и т.д.);

  • более точное соответствие полученных in vitro результатов исследования состоянию внутренней среды организма пациента (состоянию in vivo).

В силу приведенных преимуществ использование вакуумных пробирок с гелем приводит к значительному снижению числа ошибок на преаналитическом этапе, поэтому их предпочтительно использовать при централизации лабораторных исследований.

Вакуумные пробирки для получения сыворотки с тромбином

Тромбин является природным активатором свертывания и значительно сокращает время образования сгустка до 3-5 мин. Тромбин используется в пробирках с оранжевой крышкой и может применяться для проведения всех исследований сыворотки, но чаще всего используется для экспресс-анализов. В пробирках с тромбином получается более очищенная сыворотка, чем в обычных пробирках. Производятся стеклянные пробирки, в которых содержится только тромбин, и пластиковые пробирки, в которых используется комплексный наполнитель - тромбин с кремнеземом. Также производятся пробирки с тромбином и гелем, время свертывания крови в которых - 3-5 мин. После заполнения пробирки с тромбином кровь следует обязательно перемешать путем переворачивания пробирки 5-6 раз. Полное свертывание крови происходит за 5 мин. Условия центрифугирования: пробирки без геля - 1300 g в течение 10 мин, пробирки с гелем - 1300-1500 g в течение 10 мин.

Пробирки с гелем нельзя повторно центрифугировать. При использовании пробирок с тромбином повышается качество пробы и снижается время, затрачиваемое на проведение теста в лаборатории. Эти пробирки являются идеальным решением для пациентов, находящихся на гемодиализе и получающих терапию гепарином.

Вакуумные пробирки для получения плазмы

В практике КДЛ для получения плазмы используют вакуумные пробирки с гепарином (наиболее часто для исследования биохимических показателей и показателей клеточного иммунитета) и с жидким трехзамещенным цитратом натрия (для исследования показателей гемостаза).

Основное действие гепарина - блокирование активности тромбина и, следовательно, торможение перехода растворимого фибриногена в нерастворимый фибрин. Гепаринизированную плазму обычно используют для биохимического и иммунологического анализа. Основное преимущество использования гепаринизированной плазмы перед сывороткой заключается в сокращении времени на проведение анализа, поскольку в случае плазмы не нужно выжидать время полного свертывания крови. Пробирки с гепарином рекомендуется использовать в лабораториях с большим ежедневным потоком биохимических и/или иммунологических анализов. В вакуумных пробирках используется литиевая или натриевая соль гепарина, распыленная на внутреннюю поверхность пробирки. Гепарин лития используется для клинических анализов крови, гепарин натрия - при подборе дозы и мониторинге терапии препаратами лития. Концентрация гепарина - 17 МЕ на 1 мл пробы.

Крышки в вакуумных пробирках с гепарином имеют цветовую кодировку - зеленый/оранжевый, а пробирки бывают без геля и с гелем.

При взятии образцов крови для исследования системы гемостаза стандартным антикоагулянтом является цитрат натрия, механизм действия которого основан на связывании ионизированного кальция крови, что ведет к обратимому блокированию процесса коагуляции.

Вакуумные пробирки для коагулологических исследований

В вакуумных пробирках для исследования системы гемостаза используется жидкий трехзамещенный цитрат натрия в концентрации:

  • 0,105 моль/л; 3,13% (31,3 г/л);

  • 0,109 моль/л; 3,2% (32 г/л);

  • 0,129 моль/л; 3,8% (38 г/л).

При централизации исследований показателей гемостаза предпочтительнее использовать 0,109 моль/л (3,2%) тринатрийцитрат лимонной кислоты. Дозировка вакуума в пробирках для коагулологических исследований подобрана таким образом, чтобы обеспечивалось смешивание цитрата натрия с образцом в объемных долях 1:9 (одна часть цитрата и девять частей крови). Выпускаются как стеклянные, так и пластиковые пробирки с цитратом натрия и крышкой бледно-голубого/ зеленого цвета.

Для предотвращения испарения цитрата натрия при хранении пластиковые пробирки производятся рядом компаний по особой технологии и имеют двойные стенки. Для проведения некоторых коагулологических анализов также могут использоваться пробирки с комплексным наполнителем (цитрат натрия/теофиллин/аденозин/дипиридамол). Пробирки с этим наполнителем используются для обычных рутинных коагуляционных тестов, мониторинга терапии гепарином, анализе антигепаринового фактора тромбоцитов IV, р-тромбоглобулина. Пробирки с комплексным наполнителем не используются для анализа агрегации тромбоцитов. Соотношение антикоагулянта и крови в этих пробирках остается 1:9 при концентрации раствора цитрата 0,109 М. Пробирки с комплексным наполнителем обеспечивают стабильность гепаринизированных образцов до 4 ч при комнатной температуре и соответствие результатов in vitro концентрациям антикоагулянта in vivo.

При взятии проб крови в несколько пробирок у одного пациента пробирка с цитратом должна заполняться до пробирки с активатором свертывания. Очень важно соблюдать правильное соотношение крови и антикоагулянта в пробе с цитратом. Недостаток цитрата в пробе ведет к образованию микросгустков и/или коагуляции пробы, а избыток цитрата - к искажению результатов анализа за счет связывания кальция из реагентов. Сразу после взятия образца пробирку с цитратом необходимо аккуратного перемешать не менее 5 раз для предотвращения образования микросгустков.

Условия центрифугирования:

  • стеклянные пробирки: 1500 g в течение 15 мин;

  • пластиковые пробирки: 2000-2500 g в течение 10-15 мин.

Вакуумные пробирки с гепарином без геля

Вакуумные пробирки с гепарином без геля производятся как с гепарином лития, так и с гепарином натрия, цвет крышки - зеленый/ оранжевый. Сразу же после заполнения пробирки и извлечения ее из держателя пробу необходимо тщательно перемешать путем переворачивания пробирки 8-10 раз. Центрифугирование следует производить сразу после взятия крови. Условия центрифугирования: 1300 g в течение 10 мин.

Вакуумные пробирки с гепарином и гелем

В пробирках с гелем используется только литиевая соль гепарина, цвет крышки - светло-зеленый. Сразу же после заполнения пробирки и извлечения ее из держателя пробу необходимо тщательно перемешать путем переворачивания пробирки 8-10 раз. Центрифугирование следует производить сразу после взятия крови. Условия центрифугирования: 1500-2000 g в течение 10 мин.

Преимущества использования вакуумных пробирок с гепарином и гелем:

  • гелевый барьер способствует стабилизации большинства аналитов в течение 24 ч при комнатной температуре (кроме углекислого газа и глюкозы);

  • после центрифугирования наблюдается существенное снижение количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в плазме;

  • после центрифугирования наблюдается уменьшение количества видимых невооруженным глазом агрегатов клеток/фибрина в плазме;

  • после центрифугирования плазму можно транспортировать в первичной пробирке без дополнительного аликвотирования пробы.

Вакуумные пробирки для исследования ферментов и гормонов (с апротинином)

Для сохранения нестабильных ферментов и гормонов белковой природы в вакуумных пробирках вместе с антикоагулянтом ЭДТА используется ингибитор протеиназы апротинин. Апротинин ингибирует следующие протеолитические ферменты: каликреин, химотрипсин, плазмин, лизосомальные ферменты. Активность апротинина выражается в каликреинингибирующих единицах (КИЕ). Апротинин содержится в количестве 250 КИЕ в пробирках объемом 5 мл и 500 КИЕ в пробирках объемом 10 мл с розовой крышкой. Апротинин применяется для стабилизации таких гормонов и ферментов, как, например, ренин, АКТГ, глюкагон, соматостатин, кальцитонин, остеокальцин, р-эндорфин, секретин, нейротензин, вазоактивный интестинальный пептид.

Вакуумные пробирки для стабилизации глюкозы

Концентрация глюкозы в пробе цельной крови уменьшается при хранении каждый час на 10%. Если центрифугирование и отделение образца от клеток крови для анализа глюкозы не может быть проведено в течение 2 ч после взятия крови, то необходимо наряду с антикоагулянтом использовать стабилизатор глюкозы, который предотвращает ее утилизацию эритроцитами. Для стабилизации глюкозы используются вакуумные пробирки с серой крышкой и следующими наполнителями:

  • фторид натрия и оксалат калия;

  • йодацетат и лития гепарин;

  • фторид натрия и ЭДТА.

Оксалат калия, гепарин или ЭДТА используются как антикоагулянты. Механизм действия оксалата калия сходен с ЭДТА (связывание кальция). При наличии стабилизатора концентрация глюкозы остается стабильной в пределах 24 ч (фторид натрия) и до 48 ч (йодацетат). Фторид ингибирует гликолиз путем блокирования активности энзима енолазы. Если этот метаболический процесс не подавлять, то он продолжается in vitro вследствие потребления красными кровяными клетками глюкозы плазмы, что приводит к снижению ее концентрации в крови. Пробирки со стабилизатором глюкозы должны заполняться полностью до указанного на них объема, избыток оксалата в пробе может вызвать гемолиз. После взятия пробу следует перемешать, переворачивая пробирку 6-8 раз. Поскольку пробирки с фторидом/оксалатом особенно подвержены гемолизу, их необходимо перемешивать с особой осторожностью. Центрифугирование следует производить сразу после взятия крови. Условия центрифугирования: 1300 g в течение 10 мин.

Вакуумные пробирки для анализа микроэлементов

Микроэлементы находятся в крови в крайне малых количествах, поэтому материалы, используемые для взятия, хранения и транспортировки пробы, должны исключать возможность загрязнения образца инородными примесями. Специальные вакуумные пробирки для определения микроэлементов с крышкой синего цвета снижают вероятность попадания в пробу инородных микроэлементов из внешней среды и расходных материалов. Вакуумные пробирки для анализа микроэлементов крови выпускаются двух видов:

  • пробирки без наполнителя;

  • пробирки с К2 ЭДТА.

Вакуумные пробирки для анализа микроэлементов предназначены:

  • для исследования цинка, железа, меди, кальция, селена в крови;

  • токсикологических исследований свинца, кадмия, мышьяка, сурьмы.

Важно отметить, что при производстве обычных пробирок антикоагулянт ЭДТА обычно загрязняется ионами металлов, которые могут исказить результаты анализа. Технология производства пробирок для определения микроэлементов с ЭДТА не допускает загрязнения антикоагулянта посторонними примесями, что обеспечивает высокое качество исследований. Однако следует помнить, что пробирки не стандартизуются по содержанию алюминия, так как этот элемент содержится в материале, из которого сделана пробирка, а также в пробках и иглах. Загрязнение образца во время взятия крови может также происходить за счет иглы, так как иглы, сделанные из нержавеющей стали, могут содержать примеси хрома и марганца. Использование силиконизированных игл значительно снижает вероятность загрязнения пробы через иглу. При анализе сыворотки на наличие микроэлементов в следовых количествах не рекомендуется использовать стандартные вакуумные пробирки для получения сыворотки с красной/ белой кодировкой крышек, так как они содержат повышенную концентрацию цинка и других микроэлементов. Следует также избегать использования капиллярной крови, так как при ее взятии повышается вероятность загрязнения образца инородными микроэлементами и другими примесями. Взятие образца крови и пробоподготовка производятся в соответствии с используемым наполнителем. При взятии крови у одного пациента сразу в несколько вакуумных пробирок необходимо соблюдать порядок их заполнения: пробирку для микроэлементов следует заполнять последней для снижения вероятности загрязнения пробы через иглу. Центрифугирование следует производить сразу после взятия крови. Условия центрифугирования: 1300 g в течение 10 мин.

Вакуумные пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики

Пластиковые стерильные вакуумные пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики используются для взятия проб крови, пробоподготовки, транспортировки и хранения образца неразбавленной плазмы.

Вакуумные пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики имеют крышку жемчужно-белого цвета и применяются для определения вирусной нагрузки при ВИЧ-инфекции и вирусных гепатитах. Они также используются для проведения анализов методами молекулярной диагностики, например, ПЦР. Такие пробирки идеально подходят в случае необходимости хранения и транспортировки плазмы. Вакуумные пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики содержат антикоагулянт К2 ЭДТА в виде порошка, распыленного на стенки пробирки. Концентрация антикоагулянта в образце - 1,8 мг/мл при полном заполнении кровью объема, указанного на этикетке. В пробирках также содержится полиэстерный гель, позволяющий отделить плазму от клеток крови во время центрифугирования. Супернатант (плазма) практически свободен от эритроцитов и гранулоцитов, концентрация лимфоцитов и моноцитов в нем незначительна. Следует отметить, что в плазме, приготовленной в таких пробирках, концентрация тромбоцитов может быть выше, чем в цельной крови.

Преимущества использования вакуумных пробирок для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики:

  • возможность хранения образца в первичной пробирке;

  • повышается качество образца за счет более полного осаждения клеток крови;

  • повышается воспроизводимость результатов анализов РНК вирусов СПИДа и гепатита;яяя

  • снижается риск контаминации образца в стерильных закрытых пробирках;

  • повышается безопасность медицинских работников за счет исключения контакта с кровью пациента.

Вакуумные пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики считаются «золотым стандартом» при исследовании вирусной нагрузки методами молекулярной диагностики.

Вакуумные пробирки для иммуногематологических исследований

Вакуумные пробирки для иммуногематологических исследований - это пробирки для стабилизации цельной крови. Они содержат комбинированный наполнитель ACD, состоящий из активного антикоагулянта тринатрия цитрата, лимонной кислоты, которая обеспечивает буферный раствор с тринатрия цитратом, и декстрозы, являющейся питательным веществом для эритроцитов. Существуют только стеклянные пробирки с ACD, которые имеют светло-желтую крышку. Пробирки с ACD обычно используются в отделениях иммунной гематологии для анализа поверхностных антигенов лейкоцитов (HLA-типирование, некоторые приложения проточной цитометрии, исследование функций лейкоцитов и специальные иммунологические тесты). В пробирках наполнитель ACD присутствует в виде раствора ACD-А и раствора ACD-В, различающихся концентрацией составляющих наполнителя. В растворе ACD-А используется соотношение консерванта к крови 1:5,67, в растворе ACD-В соотношение консерванта к крови составляет 1:3. Цельная кровь смешивается с образцом в соотношении 1:6 (одна часть ACD обеих концентрации к шести частям образца). Сразу же после заполнения пробирки с ACD пробу необходимо тщательно перемешать путем переворачивания пробирки 8-10 раз. Условия центрифугирования: 1300 g в течение 10 мин.

Вакуумные пробирки для выделения моноцитов и лимфоцитов

Вакуумные пробирки для выделения моноцитов и лимфоцитов - это специальные пробирки, которые позволяют отделить мононуклеарные клетки периферической крови в один прием, за 20 мин центрифугирования, при этом цельная кровь набирается, центрифугируется и обрабатывается в одной первичной пробирке. Внутренние стенки пробирок покрыты силиконом для минимизации неспецифической активации клеток.

Вакуумные пробирки для выделения моноцитов и лимфоцитов содержат:

  • антикоагулянт (натрия цитрат или натрия гепарин);

  • разделительный гель;

  • специальную жидкость - раствор фиколла, создающий градиент плотности, для разделения мононуклеаров.

Вакуумные пробирки для выделения моноцитов и лимфоцитов выпускаются двух видов - с сине-черной пестрой пробкой (пробирки с натрия цитратом) и с красно-зеленой пестрой пробкой (пробирки с натрия гепарином).

В практике КДЛ вакуумные пробирки для выделения моноцитов и лимфоцитов применяют в целях исследования:

  • количественных и функциональных характеристик мононуклеарных клеток;

  • пролиферативной активности мононуклеарных клеток;

  • РНК/ДНК клеток и вирусов;

  • обнаружения злокачественных новообразований;

  • HLA-типирования;

  • генетических маркеров;

  • провирусной ДНК ВИЧ, РНК ВИЧ и других вирусов.

Преимущества использования вакуумных пробирок для выделения моноцитов и лимфоцитов:

  • значительно облегчается процесс отделения мононуклеарных клеток, экономится время лаборанта и повышается эффективность работы лаборатории;

  • гарантируется стандартизация процесса отделения мононуклеарных клеток, повышается точность исследований при использовании образцов, доставленных из различных ЛПУ;

  • снижается вероятность ошибок, которые происходят при отделении мононуклеарных клеток вручную.

2.3.2.2.1.2. Иглы для взятия проб венозной крови

Стерильная одноразовая двусторонняя игла с визуальной камерой (или без камеры), закрытая с обеих сторон защитными колпачками, является важнейшей составляющей вакуумной системы для взятия проб венозной крови. Иглы могут быть покрыты или не покрыты силиконом. Снимаемый колпачок иглы закодирован цветом, который говорит о ее размере. Для взятия проб венозной крови используют следующие иглы:

  • иглы 20 G - желтая маркировка колпачка: диаметр - 0,9 мм, длина - 25 мм (1 дюйм) или 38 мм (1,5 дюйма);

  • иглы 21 G - зеленая маркировка колпачка: диаметр - 0,8 мм, длина - 25 мм (1 дюйм);

  • иглы 22 G - черная маркировка колпачка: диаметр - 0,7 мм, длина - 25 мм (1 дюйм) или 32 мм (1,25 дюйма).

Выбор размера иглы для взятия проб крови определяется состоянием вен у каждого конкретного пациента. Наиболее широко используются иглы 21 G. При необходимости взять у пациента несколько проб крови для анализа предпочтение следует отдавать иглам с большим диаметром (20 G), а в трудных случаях (склерозированные вены, тонкие вены, ожирение), у детей - иглам с меньшим диаметром (22 G).

Для взятия проб венозной крови предпочтительно использовать иглы с визуальной камерой, которые позволяют осуществлять контроль за попаданием в вену при венепункции, и покрытые силиконом, что обеспечивает свободный ток крови по игле в вакуумную пробирку и снижает риск гемолиза.

У детей и в трудных случаях у взрослых (склерозированные вены, тонкие вены, ожирение) для взятия проб венозной крови необходимо использовать одноразовые стерильные иглы-бабочки с гибким катетером. Игла соединена с катетером с помощью луер-адаптера. Иглы-бабочки закодированы цветом, который говорит о ее размере. Для взятия проб венозной крови используют следующие иглы-бабочки с катетером:

  • иглы 21 G - зеленая маркировка бабочки: диаметр - 0,8 мм, длина - 19 мм (0,75 дюйма), длина катетера - 178 мм (7 дюймов) или 305 мм (12 дюймов);

  • иглы 23 G - голубая маркировка бабочки: диаметр - 0,6 мм, длина - 19 мм (0,75 дюйма), длина катетера - 178 мм (7 дюймов) или 305 мм (12 дюймов);

  • иглы 25 G - синяя маркировка бабочки: диаметр - 0,5 мм, длина - 19 мм (0,75 дюйма), длина катетера - 178 мм (7 дюймов) или 305 мм (12 дюймов).

2.3.2.2.1.3. Держатели вакуумных систем для взятия проб венозной крови

Держатели являются неотъемлемой частью вакуумной системы для взятия крови. Они служат для фиксации иглы (двусторонняя игла или луер-адаптер совместно с иглой-бабочкой) и пробирки при вакуумном заборе крови. Держатель обеспечивает жесткое соединение с вакуумной пробиркой в конусе держателя в процессе взятия крови. По кратности использования держатели бывают одноразовыми и многоразовыми. Согласно совместным рекомендациям EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови, для обеспечения безопасности медицинского персонала и пациентов необходимо использовать одноразовые держатели (уровень и сила доказательности 1А).

По типу сброса иглы после взятия проб крови держатели бывают:

  1. с ручным способом снятия иглы с держателя;

  2. с облегченным сбросом иглы после использования;

  3. с защитой от укола, оснащенные специальным щитком, предохраняющим от случайного укола; после окончания венепункции игла закрывается и необратимо блокируется;

  4. с автоматическим механизмом сброса иглы.

Держатели должны быть изготовлены из прозрачного пластика, позволяющего контролировать невооруженным глазом наполнение пробирки. Поверхность держателя для обеспечения надежности его удержания во время взятия проб крови должна иметь продольную ребристость. По диаметру (типоразмеру) держатели подразделяются на универсальные и специальные (для определенного диаметра вакуумных пробирок).

2.3.2.2.1.4. Индикаторы качества вакуумных систем для взятия проб венозной крови

В настоящее время на рынке медицинских изделий представлено множество вакуумных систем отечественных и зарубежных производителей. Для правильного выбора вакуумных систем, которые обеспечили бы качественное взятие проб крови на лабораторные исследования, их сохранность и получение качественных результатов, необходимо иметь объективные критерии их оценки.

Требования к вакуумным пробиркам регламентированы:

  1. ГОСТ ISO 6710-2011 «Контейнеры для сбора образцов венозной крови одноразовые. Технические требования и методы испытаний».

  2. ГОСТ Р 53079.4-2008. «Национальный стандарт РФ. Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа».

  3. Методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови» (А.А. Кишкун и др. Одобрены на заседании профильной комиссии Минздрава России по клинической лабораторной диагностике, Москва, 30 мая 2013 г.).

Индикаторы качества вакуумных пробирок:

  1. материал, из которого изготовлена пробирка, должна позволять ясно рассмотреть ее содержимое при визуальном осмотре;

  2. цветовая кодировка верхнего колпачка (крышки) вакуумной пробирки должна соответствовать международным стандартам;

  3. стенки вакуумной пробирки должны быть изготовлены из стекла или полипропилена;

  4. активаторы свертывания, антикоагулянты (ЭДТА, гепарин) должны в сухом виде покрывать внутренние стенки пробирки;

  5. для обеспечения длительной сохранности проб вакуумные пробирки должны выдерживать замораживание ниже -20 °С;

  6. гель в вакуумной пробирке должен иметь достаточный объем, располагаться единой массой на дне пробирки под углом (иметь скошенность);

  7. плотность сепараторного геля в вакуумных пробирках должна быть между 1,03 и 1,09 г/см3, оптимально - 1,04 г/см3);

  8. контрольная метка заполнения пробирки кровью расположена в виде кольца на стенке пробирки;

  9. объем вакуумных пробирок для взятия проб крови должен соответствовать оптимальному объему проб крови на лабораторные исследования;

  10. удлиненная эластичная часть наружной крышки должна плотно облегать пробирку;

  11. резиновые крышки вакуумных пробирок не должны содержать пластификатор - трис (2-бутоксиэтиловый) фосфат;

  12. крышки вакуумных пробирок должны иметь небольшое углубление (обеспечивает надежную фиксацию иглы в пробирке);

  13. крышки вакуумных пробирок внутри должны быть покрыты полипропиленом, поливинилхлоридом или полиэтиленом (силиконом или глицерол-смазочными материалами);

  14. этикетка на вакуумных пробирках не должна полностью охватывать пробирку;

  15. этикетки должны размещаться на пробирке строго в вертикальной и горизонтальной плоскости и не иметь скошенности;

  16. информация, содержащаяся на этикетках вакуумных пробирок, в полной мере должна соответствовать требованиям стандарта ГОСТ ISO 6710-2011;

  17. этикетки вакуумных пробирок должны содержать все необходимые поля для внесения информации о пациенте, дате и времени взятия крови, номере истории болезни (амбулаторной карты) согласно требованиям ГОСТ Р 53079.4-2008.

Требования к качеству игл для взятия проб крови регламентируются следующими стандартами.

  1. ГОСТ ISO 7864-2011 «Иглы инъекционные однократного применения стерильные».

  2. ГОСТ Р ИСО 6009-2013 «Иглы инъекционные одноразового применения. Цветовое кодирование».

  3. ГОСТ Р ИСО 9626-2013 «Трубки игольные из нержавеющей стали для изготовления медицинских игл».

  4. Совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови.

  5. Методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови» (Кишкун А.А. и др. Одобрены на заседании профильной комиссии Минздрава России по клинической лабораторной диагностике, Москва, 30 мая 2013 г.).

Согласно этим регламентирующим документам, индикаторы качества игл для вакуумных систем следующие:

  1. иглы должны быть стерильными, иметь срок годности, целостность упаковки не должна быть нарушена;

  2. цветовая кодировка используемых игл и их футляров должна соответствовать международным стандартам;

  3. иглы не должны иметь деформаций и повреждений;

  4. срез игл не должен иметь заусениц или металлической стружки;

  5. лучшими иглами являются те, у которых срез иглы имеет тройную копьевидную заточку и двусторонний косоугольный срез или V-образную заточку (обеспечивают быстрый и безболезненный прокол стенки вены);

  6. используемые иглы для взятия крови должны иметь силиконовое покрытие (защищает эритроциты от повреждений и снижает количество проб с гемолизом);

  7. иглы должны иметь визуальную камеру (согласно совместными рекомендациям EFLM и COLABIOCLI - уровень и сила доказательности 1А);

  8. иглы для взятия крови должны иметь защитный колпачок (согласно совместным рекомендациям EFLM и COLABIOCLI - уровень и сила доказательности 1А).

2.3.2.2.2. Оснащенность процедурного кабинета

Процедурный кабинет - одно из важных подразделений ЛПУ (неотъемлемая часть любого лечебного учреждения), представляет собой специально организованный кабинет для различных лечебно-профилактических манипуляций и процедур, необходимых для обеспечения оказания качественной медицинской помощи, таких как взятие крови на лабораторные исследования, внутривенные инъекции, внутримышечные и подкожные инъекции, прививки, медицинские осмотры, оказание первой помощи при неотложных состояниях и целый ряд других процедур (промывания, орошения). В большинстве случаев по работе процедурного кабинета пациент судит о работе ЛПУ. От того, как организована работа процедурных кабинетов, как они оснащены, на каком уровне осуществляется обслуживание пациентов, во многом зависит качество результатов лабораторных анализов.

Площадь помещения для размещения процедурного кабинета должна быть не менее 12 м2. Его необходимо оборудовать умывальником с подводкой горячей и холодной воды. Температура воздуха в процедурном кабинете должна поддерживать в диапазоне 22-25 °С. Свет в процедурном кабинете должен иметь смягченный характер, а общий уровень освещенности - не менее 500 Лк. Кабинет необходимо оборудовать дозатором с жидким (асептическим) мылом.

Оснащение процедурного кабинета регламентировано следующими руководящими документами:

  1. приказом Минздрава России от 1 ноября 2012 г. № 572н «Стандарт оснащения процедурного кабинета»;

  2. приказом Минздрава СО от 1 ноября 2011 г. № 1140п «О правилах инфекционной безопасности при выполнении манипуляций в процедурном кабинете ЛПУ»;

  3. СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»;

  4. методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови»;

  5. совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови (правильное оснащение процедурного кабинета имеет уровень и силу доказательности 2С).

Согласно этим регламентирующим документам, необходимо иметь нижеприведенное оснащение процедурного кабинета.

  1. Стол для проб крови. Возможно использование передвижного столика, бесшумно передвигающегося по любой поверхности.

  2. Подставки (штативы) для пробирок. Подставки должны быть легкими, удобными, с достаточным количеством ячеек для пробирок и легко подвергаться дезинфекции.

  3. Кресло для венепункции. Для проведения венепункции рекомендуется специальное кресло. Пациент во время венепункции должен сидеть с максимальным комфортом и безопасностью для него и быть доступным для медицинского персонала процедурного кабинета. Оба подлокотника кресла должны располагаться так, чтобы можно было найти оптимальную для каждого пациента позицию при венепункции. Подлокотники служат опорой для рук и не позволяют сгибать локти, что предотвращает спадение вен. Кроме того, кресло должно предохранять пациентов от падения в случае обморока.

  4. Кушетка.

  5. Холодильник.

  6. Перчатки одноразовые. Не допускается многократное использование перчаток с обеззараживанием их после приема каждого пациента. При взятии крови из подключичного катетера перчатки должны быть стерильные.

  7. Вакуумные системы для взятия проб венозной крови.

  8. Жгуты. Применяются одно- и многоразовые резиновые или латексные жгуты, специально предназначенные для этих целей, шириной 2,5 см и длиной не менее 50 см. При попадании крови или других биологических жидкостей на многоразовый жгут его следует подвергнуть обеззараживанию. Одноразовые жгуты утилизируются вместе с использованным расходным материалом.

  9. Марлевые салфетки. В наличии должны быть стерильные марлевые салфетки (5x5 или 7,5x7,5 см) или салфетки, пропитанные антисептиками, в заводской упаковке. Ватные шарики использовать не рекомендуется.

  10. Антисептики. Для обработки поверхности инъекционного поля необходимо иметь антисептики, разрешенные в установленном порядке. Антисептики применяются в виде растворов, которые наносятся на стерильную марлевую салфетку или шарик, либо используются салфетки, пропитанные антисептиком, в заводской упаковке.

  11. Халат. Во всех случаях персонал, проводящий венепункцию, должен быть одет в специальную защитную одежду: халат (брюки и куртка или комбинезон, халат поверх брюк или комбинезона), шапочка, маска, защитные очки или щиток, перчатки. Халат нужно менять по мере загрязнения, но не реже 2 раз в неделю. Должна быть предусмотрена немедленная смена спецодежды в случае загрязнения ее кровью.

  12. Стерильный пинцет и лоток.

  13. Подушка для выравнивания локтевого сгиба (при отсутствии специального кресла).

  14. Контейнеры:

    • контейнер специализированный для игл с упором для ее безопасного снятия;

    • контейнер с вложенным пластиковым мешком для сбора отходов классов А и Б.

  15. Лед или хладагент.

  16. Бинт для наложения давящей повязки на место венепункции.

  17. Согревающие принадлежности. Для усиления тока крови можно использовать согревающие принадлежности - теплую (около 40 °С) влажную салфетку, приложенную к месту пункции на 5 мин.

  18. Кожные антисептики для обработки рук.

  19. Дезинфицирующее средство для обеззараживания использованного материала и рабочих поверхностей.

  20. Фломастеры для маркировки проб.

  21. СОП по взятию проб крови и проведению венепункции.

С позиций доказательной медицины важнейшими составляющими в оснащении процедурного кабинета являются:

  1. использование специального кресла для венепункции с двумя подлокотниками (уровень и сила доказательности 2С);

  2. применение одноразовых резиновых или латексных жгутов для взятия крови, специально предназначенных для этих целей, шириной не менее 2,5 см и длиной не менее 50 см (уровень и сила доказательности 1А).

2.3.2.2.3. Технология взятия проб крови на лабораторные исследования

Технология взятия проб крови на лабораторные исследования состоит из нескольких последовательных процедур и действий медицинской сестры, включающих:

  1. изучение СОП по взятию проб крови;

  2. идентификацию пациента;

  3. регистрацию направления на анализы в журнале процедурного кабинета;

  4. подготовку пациента к процедуре взятия крови;

  5. подбор вакуумных пробирок для взятия крови;

  6. подготовку рабочего места;

  7. подготовку к процедуре взятия крови;

  8. выбор процедуры (определение места) взятия крови;

  9. процедуру взятия крови и манипуляции со взятыми пробами;

  10. маркировку взятых проб крови и штрихкодирование.

2.3.2.2.3.1. СОП по взятию проб крови на лабораторные исследования

Стандарт операционной процедуры взятия проб крови на лабораторные исследования является обязательным документом согласно требованиям ГОСТ Р ИСО 15189-2009 «Инструкция по взятию первичной пробы». В СОП должны быть детально прописаны все процедуры и действия медицинской сестры, приведенные выше.

Перед взятием крови на исследование процедурная медицинская сестра еще раз должна посмотреть СОП для каждого вида исследований. Пример такого СОП по видам исследований представлен в табл. 2.12.

Таблица 2.12. ООП по взятию биоматериала на лабораторные исследования
№ п/п Тест Материал для исследования Минимальный объем, мл Приспособление для взятия (сбора) материала Особенности взятия (сбора) и транспортировки материала в лабораторию Дни, когда берется материал Время готовности ответа

1

Общий анализ крови

Венозная кровь

4

Разовый вакутейнер с ЭДТА (фиолетовая маркировка) вместимостью 4 мл

Берут 4 мл крови из вены в вакутейнер с ЭДТА с фиолетовой маркировкой, содержимое вакутейнера тщательно перемешивают и доставляют в лабораторию в обычном контейнере

Ежедневно

6 ч

2

Определение СОЭ

То же

3,5 мл

Вакутейнер на 3,5 мл с цитратом натрия (черная маркировка)

Из вены берут 3,5 мл крови в вакутейнер с черной маркировкой, тщательно перемешивают и доставляют в лабораторию в обычном контейнере

То же

6 ч

3

Общий белок

То же

1 (5 мл достаточно для 10 биохимических тестов

Разовый вакутейнер на 5 мл (красная маркировка)

Из вены берут 5 мл крови в вакутейнер с красной маркировкой и доставляют в лабораторию в обычном контейнере

То же

6 ч

4

Ионизированный кальций

Венозная кровь

2

Разовый вакутейнер на 5 мл (красная маркировка)

Из вены берут 5 мл крови в вакутейнер с красной маркировкой и доставляют в лабораторию в обычном контейнере

Ежедневно

6 ч

5

Газовый состав крови

Артериальная кровь

1

Разовый моноветт вместимостью 2 мл с гепарином (оранжевая маркировка)

Из артерии берут 1 мл крови моноветтом с оранжевой маркировкой, помещают в лед и немедленно доставляют в лабораторию

То же

10 мин

6

Глюкозотолерантный тест

Капиллярная кровь

Берется лаборантом лаборатории в специальные капилляры

Тест начинают в 8 ч утра. Лаборант берет кровь из пальца у пациента натощак. Затем пациент принимает внутрь 75 г декстрозы (Глюкозы*), растворенной в 200 мл воды. В дальнейшем кровь из пальца берут через 120 мин после приема декстрозы (Глюкозы*)

То же

6 ч

7

Кальций общий в моче

Суточная моча

10

Специальный контейнер вместимостью 2,5 л

Перед началом сбора мочи в контейнер наливают 10 мл концентрированной HCl, в лабораторию доставляют не менее 10 мл мочи и указывают суточный объем в специальном контейнере для мочи

Ежедневно

6 ч

8

Калий в эритроцитах

Венозная кровь

1

Разовый вакутейнер с гепарином (зеленая маркировка)

Из вены берут 2 мл крови в вакутейнер с оранжевой маркировкой, тщательно перемешивают и доставляют в лабораторию в обычном контейнере

То же

6 ч

9

Протромбиновое время

Венозная кровь

5 (достаточно для определения пяти показателей коагулограммы)

Разовый вакутейнер на 5 мл (голубая маркировка)

Из вены берут 5 мл крови в вакутейнер с голубой маркировкой, тщательно перемешивают, медленно вращая вакутейнер

То же

6 ч

10

АЧТВ

То же

11

Фибриноген

То же

То же

На самоклеящейся этикетке делают все необходимые записи, приклеивают ее к пробирке и как можно быстрее доставляют в лабораторию в обычном контейнере

То же

6 ч

12

Тромбиновое время

Фибриноген

Разовый вакутейнер на 5 мл (голубая маркировка)

То же

Ежедневно

6 ч

13

Антитромбин III

То же

То же

То же

То же

6 ч

14

Фактор V

То же

5 (достаточно для определения пяти факторов)

Разовый вакутейнер на 5 мл (голубая маркировка)

То же

То же

6 ч

Фактор VII

То же

То же

То же

То же

6 ч

Фактор VIII

То же

То же

То же

То же

6 ч

Фактор IX

То же

То же

То же

То же

6 ч

Фактор X

То же

То же

То же

То же

То же

6 ч

15

Исследование агрегации тромбоцитов с АДФ, коллагеном, адреналином, ристоцетином

Венозная кровь

5 (достаточно для исследования агрегации с одним веществом)

Разовый вакутейнер на 5 мл (голубая маркировка)

То же

То же

6 ч

16

Эластаза-1 в кале

Кал

5 г

Специальная емкость для сбора кала

Ложечкой из емкости берут порцию кала в количестве 5-10 г, помещают в емкость для сбора кала, снабжают емкость этикеткой с необходимыми данными и немедленно направляют в лабораторию в контейнере для доставки мочи, кала и других жидкостей

Вторник, четверг

6 ч

2.3.2.2.3.2. Идентификация пациента

Очень важно убедиться, что взятие крови будет проведено у пациента, указанного в бланке-заявке. Процесс идентификации пациента проводится путем сравнения данных направления на лабораторные анализы с ответами пациента:

  1. фамилия, имя, отчество;

  2. дата рождения;

  3. номер истории болезни или амбулаторной карты;

  4. адрес.

Для идентификации пациента следует предпринять следующие действия:

  1. у амбулаторного пациента спросить его имя и фамилию, домашний адрес и/или дату рождения;

  2. сравнить эту информацию с указанной в направлении;

  3. у стационарного пациента спросить те же данные (если пациент в сознании), сравнить информацию с указанной в направлении;

  4. для неизвестных пациентов (пациентов без сознания или с сумеречным сознанием) в приемном отделении должно быть присвоено какое-либо временное, но четкое обозначение, пока его личность не будет выяснена.

В процедурном кабинете пациент должен быть идентифицирован не менее чем по двум идентификаторам (например, Ф.И.О. и даты рождения; Ф.И.О. и номера истории болезни/амбулаторной карты, Ф.И.О. и адреса проживания) и предпочтительно еще одного дополнительного идентификатора.

Если информация в бланке направления на анализы не совпадает со сведениями, полученными от пациента, необходимо сообщить о нестыковках лечащему/дежурному врачу, старшей/постовой медицинской сестре. Не следует брать кровь на анализы до точной идентификации пациента.

Требования к идентификации пациента регламентированы следующими документами:

  1. ГОСТ Р ИСО 15189-2015 «Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности»;

  2. методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови»;

  3. совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови.

С позиций доказательной медицины правильная идентификация пациента является одной из ключевых процедур при взятии проб крови - имеет уровень и силу доказательности 1С. Чем больше данных пациента используется, тем меньше вероятность ошибок идентификации.

2.3.2.2.3.3. Регистрация направлений на анализы в журнале процедурного кабинета

В процедурном кабинете должен вестись отдельный журнал регистрации проб биологического материала. Регистрация должна осуществляться в полном объеме (данные о пациенте, назначенных анализах, времени взятия) и аккуратно.

2.3.2.2.3.4. Подготовка пациента к процедуре взятия крови медицинской сестрой

Процедурная медицинская сестра или лаборант должны поприветствовать пациента в дружелюбной профессиональной манере. Если пациент пришел в процедурную, необходимо спросить: «Как Вас зовут?» или «Назовите Вашу фамилию, имя, отчество», «Какова дата Вашего рождения?» или «Сколько Вам лет?» Сравните ответ пациента с имеющейся у Вас информацией (надпись на заявке, данные на компьютере или в листе назначения). Если больной находится в палате, постучите в дверь и войдите. Сравните Ваши данные о пациенте с теми, что вы можете получить у самого больного или с указанными в табличке на его койке (обычно на табличке указывают паспортные данные и номер истории болезни). Сообщите пациенту, кто вы и зачем пришли. Если возникли трудности с идентификацией пациента, позовите постовую медицинскую сестру и уточните у нее необходимые данные. Обратите особое внимание на идентификацию детей, которым необходимо взять кровь. Не берите кровь без точной идентификации пациента.

После того как вы правильно идентифицировали пациента, объясните, что именно вы будете делать, и что при этом должен делать пациент. Действуйте уверенно и спокойно. Таким образом, пациент почувствует себя более комфортно, зная, что вы профессионал и компетентный человек.

Скажите пациенту, что вы хотите взять у него кровь из вены, и спросите его согласие на проведение процедуры. Если пациент не согласен - процедуру проводить нельзя. В случае получения согласия необходимо уточнить, как пациент когда-либо ранее переносил взятие крови.

Процедурная медицинская сестра или лаборант должны сообщить пациенту, что венепункция или прокол пальца являются несколько болезненной процедурой. Никогда не следует говорить пациенту: «Это совсем не больно». Пациент может бояться самой процедуры венепункции. Именно поэтому важно спокойно и доверительно, простыми словами объяснить ему, как берется кровь и что дискомфорт и болезненные ощущения обычно исчезают после введения иглы в вену. Если пациенту когда-либо ранее плохо переносил взятие крови, лучше предложить ему лечь во время процедуры.

Если пациент просит подождать и не начинать процедуру, процедурная медицинская сестра может попросить его, например, посчитать в обратном порядке от 10 до 1 или сделать глубокий вдох перед уколом. Если пациент заявляет, что боится взятия крови или если появляется страх во время процедуры, пациенту надо предложить лечь.

С позиций доказательной медицины важно убедиться, что пациент соблюдал инструкции по подготовке к анализам (уровень и сила доказательности 1B). Если были установлены нарушения в подготовке пациента к сдаче анализов, необходимо указать их характер в бланке-заявке.

2.3.2.2.3.5. Подбор вакуумных пробирок и подготовка рабочего места для взятия крови

Перед взятием проб крови процедурная медицинская сестра должна правильно подобрать необходимые типы пробирок для назначенных пациенту видов лабораторных анализов (с нужными добавками и правильного объема), а также других составляющих комплекта вакуумной системы (игла, держатель). Одновременно медицинская сестра проводит визуальную оценку (оценивает срок годности, наличие механических повреждений, состояние крышки, присутствие антикоагулянта в пробирке, наличие осадка или примесей) составляющих вакуумных систем для взятия крови. Выявленные недостатки должны быть занесены в журнал контроля качества вакуумных систем для взятия крови.

Журнал контроля качества вакуумных систем для взятия крови.

pic 0023

Подобранные для взятия проб крови, в соответствии с назначенными видами лабораторных анализов, вакуумные пробирки для конкретного пациента размещаются в отдельном штативе. Необходимо убедиться в сохранности печати на игле, которая гарантирует стерильность. Если она повреждена - иглу не используют.

При подборе вакуумных пробирок процедурная медицинская сестра должна выбрать оптимальные по объему пробирки для взятия проб крови (оценка оптимальности объема пробы крови для взятия на лабораторные анализы). Согласно ГОСТ Р 53079.4-2008 «Национальный стандарт РФ. Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа» и методическим рекомендациям «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови», при использовании для выполнения анализов современных автоматизированных лабораторных анализаторов рекомендуются следующие стандартные объемы проб крови на лабораторные исследования (эти объемы могут быть достаточны в 95% случаев для выполнения назначенных лабораторных анализов):

  • биохимические исследования: 4-5 мл крови (при использовании гепаринизированной плазмы - 3-4 мл);

  • гематологические исследования (общий анализ крови): 2-3 мл крови с ЭДТА;

  • коагулология: 2-3 мл цитратной крови;

  • иммунологические исследования, включая белки, гормоны, он-комаркеры и т.д.: 1 мл цельной крови на 3-4 иммунологических анализа;

  • СОЭ: 2-3 мл цитратной крови;

  • газовый состав крови: капиллярная кровь - 50 мкл, артериальная или венозная кровь - 1 мл гепаринизированной крови;

  • при централизации лабораторных исследований должны использоваться вакуумные пробирки унифицированного объема (например, вакуумные пробирки объемом 4-5 мл для биохимических и серологических исследований и объемом 3-4 мл для исследования гемостаза); при выборе вакуумных пробирок необходимо учитывать, что длина пробирки должна быть по меньшей мере в 4 раза больше диаметра; этим критериям соответствуют стандартные вакуумные пробирки размером 75x13 мм (длина и диаметр соответственно).

Следующим этапом взятия крови на исследование является непосредственная подготовка рабочего места. Процедурная медицинская сестра, осуществляющая венепункцию, должна подготовить все необходимое для этого: перчатки, вакуумные пробирки, иглы, жгут, 70% этиловый (или изопропиловый) спирт, марлевые тампоны, бинты, ватные шарики. Оборудование и принадлежности располагают так, чтобы к ним был легкий доступ, но чтобы они не мешали пациенту и он не мог случайно их задеть, уронить, повредить.

Правильная подготовка рабочего места для взятия проб крови регламентирована следующими документами:

  1. методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови»;

  2. совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови.

Согласно этим руководящим документам требования к подготовке рабочего места для взятия проб крови должны быть изложены в СОП.

С позиций доказательной медицины составляющие процедуры подбора вакуумных пробирок и подготовка рабочего места для взятия крови имеют следующий уровень доказательности:

  1. наличие СОП по подготовке рабочего места (уровень и сила доказательности 2С);

  2. подбор комплекта вакуумной системы (уровень и сила доказательности 2С).

2.3.2.2.3.6. Подготовка медицинской сестры к процедуре взятия крови

Специалист, осуществляющий забор крови, должен строго выполнять следующие требования.

  1. Кровь и другие биологические жидкости больных заведомо должны рассматриваться как инфицированные.

  2. Медицинская сестра или лаборант обязаны работать в перчатках при соприкосновении с кровью или другими жидкостями организма, со слизистыми оболочками или с интактной кожей пациентов, при работе с загрязненными предметами или поверхностями, при венепункции или проколе кожи. Именно поэтому специалист, осуществляющий забор крови, обязан менять перчатки, переходя от одного пациента к другому. Все другие предметы (приспособления), используемые при заборе крови, необходимо проверять (исправность, срок годности, достаточное количество) и располагать на рабочем месте так, чтобы их при необходимости можно было легко взять.

  3. Специалист, берущий кровь, должен быть эмоционально подготовлен к процедуре. Его внешний вид, настроение, поведение, практические навыки, умение общаться с пациентом имеют большое значение для установления рабочего контакта с ним.

Правильная подготовка процедурной медицинской сестры к взятию проб крови регламентирована следующими документами:

  1. СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»;

  2. совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови.

Перед взятием проб крови процедурная медицинская сестра должна:

  1. вымыть и высушить руки;

  2. надеть защитную одежду: халат (брюки и куртка или комбинезон, халат поверх брюк или комбинезона), шапочку;

  3. обработать руки антисептиком (уровень и сила доказательности 1С);

  4. надеть одноразовые перчатки (уровень и сила доказательности 1С).

Халат должен меняться по мере загрязнения, но не реже 2 раз в неделю. Должна быть предусмотрена немедленная смена спецодежды в случае загрязнения ее кровью.

Положение пациента при взятии проб венозной крови имеет важное значение в обеспечении комфорта и безопасности пациента, а также удобства проведения венепункции для процедурной медицинской сестры. Лучше брать кровь, если пациент лежит на кушетке или сидит, откинувшись на наклонную спинку кресла; следует учитывать опасность потери сознания больным.

Положение сидя.

Пациент должен получить рекомендации по размещению от процедурной медицинской сестры, удобно расположиться в кресле, положа руку на подлокотник, рука почти прямая от запястья до плеча и имеет хорошую опору. Процедурная сестра находится перед пациентом (в случае обморока может поддержать его и не дать ему упасть).

Положение лежа.

Пациент удобно располагается на спине. Если нужна дополнительная опора для руки, под нее подкладывают подушку. Рука должна быть почти прямой (чуть согнутой в локте). Пациент не должен испытывать никакого физического напряжения при удержании руки в нужном положении.

2.3.2.2.4. Выбор процедуры взятия крови

Для получения крови для клинических лабораторных исследований используются три процедуры:

  • венепункция;

  • взятие капиллярной крови;

  • пункция артерии.

Лучшим местом взятия крови на анализы является локтевая вена. Венозная кровь - лучший материал не только для определения биохимических, гормональных, серологических, иммунологических показателей, но и для общеклинического исследования крови. Это обусловлено тем, что применяемые в настоящее время гематологические анализаторы, с помощью которых проводят общеклинические исследования крови (подсчет клеток крови, определение гемоглобина, гематокрита и др.), предназначены для работы с венозной кровью, и в большинстве своем в тех странах, где эти анализаторы производятся, они сертифицированы и стандартизированы только для работы с венозной кровью. Выпускаемые фирмами калибровочные и контрольные материалы предназначены для калибровки гематологических анализаторов по венозной крови. Помимо этого, при взятии крови из пальца возможен ряд методических особенностей, которые стандартизировать очень трудно (холодные, цианотичные, отечные пальцы, необходимость в разведении исследуемой крови и др.), что приводит к значительным разбросам в получаемых результатах и, как следствие, к необходимости повторных исследований для уточнения результата. Для общеклинического исследования кровь из пальца рекомендуется брать в следующих случаях:

  • при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;

  • при наличии у пациента очень мелких вен или когда они труднодоступны;

  • при выраженном ожирении пациента;

  • при установленной склонности к венозному тромбозу;

  • у новорожденных.

Пункция артерии для взятия крови на лабораторные исследования используется редко, в основном для исследования газового состава крови.

2.3.2.2.5. Процедура взятия крови из вены

Проведение процедуры взятия крови из вены регламентировано следующими документами:

  1. совместными рекомендациями EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови;

  2. методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови».

С позиции доказательной медицины выбор лучшей вены и наиболее подходящего места для введения иглы в целях взятия венозной крови имеет важное значение, чтобы избежать повреждения нервов и пункции артерии, а также для качества пробы, удовлетворенности пациента, удобства и скорости взятия крови и, в конечном счете, для успешной процедуры венепункции (уровень и сила доказательности 1А).

Процедурная медицинская сестра должна придерживаться следующей последовательности действий.

  1. Выберите наиболее доступную вену (самую наполненную). Проверьте другую руку, возможно, там вены лучше.

  2. Предупредите пациента, что не следует сжимать и разжимать кулак. Сжимание и разжимание кулака может привести к псевдогиперкалиемии и изменениям некоторых других показателей биохимического и общего анализа крови (уровень и сила доказательности 1А).

  3. Место сгиба локтевого сустава является лучшим местом для венепункции. Основные вены в локтевой ямке включают латеральную подкожную вену, медиальную подкожную вену, срединную вену локтя и срединную вену предплечья. Указательным пальцем прощупайте вену, определите направление ее хода. Тромбированные вены неэластичны, похожи на жесткий жгут и очень легко смещаются. Обычно в первую очередь используют медианную (среднюю) кубитальную вену (v. medianacubiti); v. cephalica является второй веной, удобной для пунктирования. В крайнем случае используют v. basilica (уровень и сила доказательности 1А). Вены на кисти, предплечье, на стопе или в районе голеностопного сустава используют, если нет возможности взять кровь из локтевых вен (уровень и сила доказательности 1А). Если не удается найти подходящую вену, поступайте следующим образом:

    • попробуйте найти вену на другой руке;

    • наложите жгут, но помните, что жгут может быть затянут максимально в течение 1 мин;

    • помассируйте руку от запястья к локтю;

    • постарайтесь нащупать своим указательным пальцем вену пациента;

    • подогрейте место венепункции, чтобы усилить кровоток. Для этого полотенце или ткань смачивают теплой водой (42 °С), помещают в полиэтиленовый пакет и прикладывают к поверхности кожи; через 3-10 мин развивается гиперемия;

    • попросите пациента опустить руку пониже.

      Если с первого раза подходящую вену не удалось обнаружить, необходимо снять жгут и попросить пациента 1-2 мин подвигать рукой и вновь наложить жгут. Если вены тонкие, для взятия крови используйте более тонкие иглы.

      Не используйте для взятия крови уплотненные вены, вены рук с парезом (параличом) или рук с нарушениями лимфатического оттока (например, после мастэктомии) (уровень и сила доказательности 1А).

      Если для взятия проб крови был использован альтернативный венозный доступ (вены руки, ноги или др.), это обязательно должно быть отмечено в направлении на анализы (уровень и сила доказательности 1А).

      Использование портативного ручного прибора для просмотра периферических вен значительно облегчает поиск и в большинстве случаев позволяет избежать использования этих процедур (уровень и сила доказательности 1А).

      Портативный ручной прибор для просмотра периферических вен помогает квалифицированному медицинскому персоналу найти определенные периферические вены. В основе функционирования прибора лежит использование инфракрасного излучения для подкожного высвечивания вен и поиска их расположения. Использование прибора:

      1. значительно облегчает поиск вен у проблемных категорий пациентов, таких как новорожденные и дети, ожоговые больные, онкологические больные при прохождении химиотерапии, наркоманы, туберкулезные больные, тучные люди, пациенты, получающие длительный период внутривенные, медикаментозные вливания;

      2. облегчает поиск вен у больных при частых венепункциях;

      3. минимизирует травмирование тканей по сравнению со слепымпоиском вен;

      4. снижает количество осложнений при венепункции.

        На рис. 2.14. представлен портативный ручной прибор для просмотра периферических вен AccuVein AV 300.

        pic 0024
        Рис. 2.14. Портативный ручной прибор для просмотра периферических вен AccuVein AV 300
        1. Выберите участок вены, из которой будете брать кровь. Наложите жгут на руку пациента. У пациентов с хорошо видимыми венами рекомендуется проводить взятие крови без жгута (уровень и сила доказательности 1А). Жгут должен быть наложен выше предполагаемого места пункции примерно на одну ширину ладони (7,5 см). Жгут затягивают туго, но так, чтобы это не вызывало боли (чтобы остановить венозный, но не артериальный кровоток). Лучше всего вместо жгута использовать манжетки от аппарата для измерения давления. В этом случае давление в манжетке должно быть ниже систолического, но выше диастолического. Это идеальный вариант. Накладывать жгут можно не более чем на 1 мин, иначе начнется гемоконцентрация, что приведет к увеличению концентрации белков в крови, количества клеток и факторов коагуляции (уровень и сила доказательности 1А).

        2. Продезинфицируйте место пункции, используя тампон (или салфетку), смоченную 70% раствором этилового спирта (изопропанола). Протрите им поверхность, двигая тампон от центра к периферии по кругу (уровень и сила доказательности 1В). Обработанная поверхность должна высохнуть (уровень и сила доказательности 1В). Ничто нестерильное не должно прикасаться к этой поверхности. Только после дезинфекции перчаток можно начать венепункцию.

        3. Проверьте иглы, держатели и необходимые вакуумные пробирки перед венепункцией. Колпачок с иглы снимают непосредственно перед венепункцией. Если случайно вы дотронулись иглой до чего-то нестерильного, то иглу нужно заменить.

        4. Взять иглу левой рукой за цветной колпачок, правой рукой вывернуть и снять белый защитный колпачок.

        5. Ввернуть в держатель освободившийся конец иглы в резиновом чехле и завинтить до упора.

        6. Снять цветной защитный колпачок с иглы (уровень и сила доказательности 1С).

        7. Одной рукой процедурная медицинская сестра с помощью большого пальца натягивает кожу над веной. Держатель держат так, чтобы игла была расположена срезом вверх и по отношению к коже под углом 5-30° в зависимости от глубины залегания вены. Прокалывают кожу и стенку вены. Движения должны быть плавными, но быстрыми. Иглу не следует погружать глубоко (по меньшей мере игла должна быть введена в сосуд на 0,5 см). Когда игла войдет в вену, вы увидите это по тому, что визуальная камера заполниться кровью, иглу немного вытягивают назад. Необходимо обратить внимание, не находится ли срез иглы под кожей. Если это произошло, то указательным пальцем левой руки определяют вену и направляют иглу вперед, чтобы вновь войти в вену. После этого иглу не двигают.

        8. Фиксируйте держатель в устойчивом положении, опираясь на руку пациента. Убедитесь, что кулак пациента разжат и не сжимается.

        9. Взять держатель левой рукой, а в правую руку взять пробирку и вставить ее крышкой в держатель. Удерживая выступы держателя указательным и средним пальцами правой руки, большим пальцем надеть пробирку на иглу до упора.

        10. Как только кровь начнет поступать в вакуумную пробирку, жгут должен быть ослаблен (уровень и сила доказательности 1А). Никогда не вынимают иглу из вены при затянутом жгуте.

        11. Вакуумная пробирка должна наполниться, при этом произойдет смешивание крови с антикоагулянтом или консервантом в правильном соотношении. Каждая пробирка содержит количество реагента, строго определенное для указанного на ней объема крови. Пробирки должны заполняться полностью, в пределах ±10% указанного объема (то есть пробирка на 4,5 мл должна заполняться в объеме между 4 и 5 мл) (уровень и сила доказательности 1А). Неправильное соотношение крови и реагента в пробе ведет к ошибочным результатам анализа. После заполнения пробирки до необходимого объема извлечь ее из держателя. Аккуратно перемешать содержимое заполненной пробирки, переворачивая ее необходимое число раз (уровень и сила доказательности 1В). Перемешивание проводят осторожно во избежание гемолиза. Никогда нельзя встряхивать вакуумную пробирку! Если есть необходимость в дополнительном количестве проб крови в соответствии с заявкой, то, не вынимая иглы из вены, вставить в держатель следующую пробирку. Набирают кровь во вторую пробирку и, если крови взято достаточно, отсоединяют вторую пробирку от иглы.

          В случае когда у одного пациента кровь берется в несколько пробирок, необходимо соблюдать правильную последовательность их заполнения для предотвращения возможной перекрестной контаминации пробы реагентами из других пробирок. Последовательность заполнения пробирок приведена в табл. 2.13 (уровень и сила доказательности 1В).

          Сразу после заполнения и извлечения вакуумной пробирки из держателя ее нужно аккуратно перевернуть несколько раз (количество раз определяется типом наполнителя) на 180° для смешивания пробы с наполнителем (см. табл. 2.13). В плохо перемешенной пробе образуются микросгустки, ведущие к искажению результатов исследований, а также к поломкам лабораторных анализаторов вследствие закупорки пробозабирающих зондов.

          Таблица 2.13. Последовательность заполнения вакуумных пробирок и число перемешиваний при взятии проб крови
          Цветовой код крышки Число перемешиваний Область применения Химические наполнители

          Красный/ белый

          Исследование сыворотки в клинической биохимии, серологии, иммунологии

          Без реагента

          Желтый

          5-6 раз

          Исследование сыворотки в клинической биохимии, серологии, иммунологии

          Активатор свертывания и разделительный гель

          Бледно-голубой/зеленый

          3-4 раза

          Для исследования системы гемостаза

          3,13% забуференный цитрат натрия

          Черный/розовато-лиловый

          8-10 раз

          Для определения СОЭ

          3,13% цитрат натрия

          Зеленый/ оранжевый

          8-10 раз

          Исследование сыворотки в клинической биохимии, серологии, иммунологии и получение форменных элементов крови

          Гепарин

          Сиреневый/ красный

          Гематологические исследования цельной крови

          ЭДТА

          Серый

          8-10 раз

          Исследование уровня глюкозы

          Фторид натрия/оксалат калия. Йодацетат лития/ гепарин лития

          Синий

          8-10 раз

          Исследование микроэлементов

          Без реагента. Гепарин натрия. ЭДТА

        12. В случае если почему-либо кровь перестает поступать в вакуумную пробирку, иглу надо подвигать взад-вперед. Обычно это действие улучшает ток крови в вакуумную пробирку. Затем иглу следует повернуть наполовину оборота, а жгут, если он был затянут очень туго, ослабить. Повторный прокол этой же вены весьма болезнен, поэтому делать это не рекомендуется. Если ни одна из перечисленных процедур не помогла, то иглу надо вынуть и искать другое место для венепункции.

        13. Когда две попытки венепункции не удались, необходимо позвать на помощь более опытных специалистов для взятия крови; в любом случае обязательно сообщить об этом лечащему врачу и сделать запись в рабочем журнале.

        14. Как только кровь получена, на место пункции над иглой кладут стерильный марлевый тампон и осторожно извлекают иглу вместе с держателем, слегка нажимая тампоном на место пункции во время извлечения иглы. Пациенту накладывается давящая повязка (или осуществляется пальцевое прижатие тампона) и даются рекомендации по предупреждению сгибания руки в локтевом суставе (уровень и сила доказательности 1С).

        15. Вакуумные пробирки с пробами крови размещают вертикально в отдельном штативе.

        16. Иглу вместе с держателем немедленно помещают в специальный непрокалываемый контейнер для использованных игл (уровень и сила доказательности 1А). Процедура надевания защитных колпачков на использованные иглы запрещена. Рекомендуется использовать только безопасные иглы с защитным механизмом для взятия крови, чтобы предотвратить случайные травмы у медицинских работников и пациентов (уровень и сила доказательности 1А).

        17. Использованные для венепункции материалы и предметы разового пользования помещают в соответствующие контейнеры для отходов.

        18. Контейнер для утилизации колющих и режущих предметов должен находиться в шаговой доступности от места венепункции. При использовании контейнера для утилизации персонал не должен вставать или передвигаться (уровень и сила доказательности 1А).

        19. Посоветуйте пациенту отдохнуть в течение 5 мин или подождать, пока кровотечение не прекратится (если оно длится дольше 5 мин), прежде чем пациент покинет процедурный кабинет (уровень и сила доказательности 1В).

        20. Будьте внимательными и спросите пациента, как он себя чувствует, прежде чем он покинет процедурный кабинет. Это может помочь выявить пациентов, которые подвержены риску головокружения или даже обморока (уровень и сила доказательности 1В).

        21. Поблагодарите пациента и заверьте его, что он получит результаты своего лабораторного анализа как можно скорее.

Согласно требованиям СанПиН 2.1.3.2630-10, в процедурном кабинете необходимо вести журнал регистрации случаев травматизма (укола иглой) и осложнений венепункции.

Техника венепункции и взятия проб крови с использованием вакуумных систем представлена на рис. 2.15, а на серии рис. 2.16-2.21 приведена подробная последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови.

Простое и надежное использование системы VACUTAINER® с замком HEMOGARD®

pic 0025
Рис. 2.15. Методика взятия крови с использованием закрытой вакуумной системы
pic 0026
Рис. 2.16. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови
pic 0027
Рис. 2.17. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови
pic 0028
Рис. 2.18. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови
pic 0029
Рис. 2.19. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови
pic 0030
Рис. 2.20. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови
pic 0031
Рис. 2.21. Последовательность действий медицинской сестры при взятии проб венозной крови

2.3.2.2.6. Процедура маркировки взятых проб крови

Все вакуумные пробирки имеют этикетки для внесения необходимой информации. Этикетки никогда не следует заполнять заранее, так как при большом количестве проб их очень легко перепутать. Штрихкодирование пробирок со взятыми пробами крови также нужно осуществлять после забора крови.

Процедуру маркировки проб крови регламентируют следующие документы:

  1. ГОСТ Р 53079-2008;

  2. ГОСТ Р ИСО 15189-2009;

  3. ГОСТ Р ИСО 6710-2009;

  4. совместные рекомендации EFLM и COLABIOCLI по взятию проб венозной крови;

  5. методические рекомендации «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови».

С позиций доказательной медицины необходимо придерживаться следующей последовательности действий при маркировке проб:

  1. маркировка пробирок должна выполняться в присутствии пациента (уровень и сила доказательности 1С);

  2. на этикетке вакуумной пробирки необходимо указать Ф.И.О. пациента, номер истории болезни, дату и время взятия крови, данные процедурной медицинской сестры (уровень и сила доказательности 1С);

  3. в каждом ЛПУ должен быть СОП по маркировке проб (уровень и сила доказательности 1С).

Если в процедурном кабинете проводится штрихкодирование вакуумных пробирок, необходимо использовать следующие рекомендации:

  1. бланки-заявки на лабораторные анализы и вакуумные пробирки с пробами крови кодируются штрихкодами с одной ленты;

  2. на ленте должно быть три штрихкода: один штрихкод (любой из трех) наклеивается на лицевую сторону бланка-заявки в правом верхнем углу, остальные - на вакуумные пробирки, неиспользованный штрихкод (в случае когда вакуумных пробирок меньше двух) выбрасывается;

  3. штрихкоды должны быть наклеены на вакуумные контейнеры вдоль пробирки, а линии штрихкода параллельны нижнему краю крышки пробирки;

  4. расстояние от нижнего края крышки вакуумной пробирки до верхнего края штрихкода должно быть более 1 см, а от нижнего края штрихкода до дна вакуумной пробирки - более 2,5 см (рис. 2.22);

  5. после наклейки на вакуумную пробирку штрихкода должна оставаться открытая зона, на которой нет наклейки, для оценки качества взятой пробы.

После маркировки проб крови процедурная медицинская сестра может снять перчатки. Рекомендуется следующая последовательность действий при снятии перчаток: снимите одну перчатку и выверните ее наизнанку, снимите вторую перчатку, завернув в нее первую перчатку. Утилизируйте перчатки и проведите гигиеническую обработку рук. Рекомендуется использовать новые перчатки для каждого взятия венозной крови (уровень и сила доказательности 1А).

У процедурной медицинской сестры на рабочем месте должна быть краткая инструкция проведения венепункции, в которой отражены основные моменты процедуры и последовательность действий (табл. 2.14).

pic 0032
Рис. 2.22. Правильное размещение штрихкода на вакуумной пробирке
Таблица 2.14. Взятие венозной крови - порядок действий
№ п/п Этап Сила доказательности

1

Идентифицировать пациента

1C

2

Убедиться, что пациент находится в состоянии натощак и правильно подготовлен к анализу

1B

3

Подготовить необходимые материалы для взятия венозной крови

2C

4

Промаркировать/идентифицировать пробирки

1C

5

Надеть перчатки

1C

6

Наложить жгут

1A

7

Выбрать место пункции вены

1B

8

Обработать место пункции

1B

9

Пунктировать вену

1A

10

Заполнить первую пробирку

1A

11

Снять жгут

1A

12

Аккуратно перевернуть пробирки (один полный переворот)

1B

13

Заполнить дополнительные пробирки в рекомендуемом порядке

1B

14

Удалить иглу из вены и активировать защитный механизм

1A

15

Утилизировать иглу

1A

16

Наложить повязку на место пункции

17

Попросить пациента прижать повязку и удерживать в течение 5-10 мин, не сгибая руку

18

Перевернуть все пробирки 4 раза

1B

19

Снять перчатки

1A

20

Посоветовать пациенту отдохнуть в течение 5 мин и убедиться, что кровотечение прекратилось, прежде чем покинуть место взятия венозной крови

1B

2.3.2.2.7. Взятие крови через сосудистый катетер

Если в вене стоит катетер, можно брать кровь через него, чтобы не делать отдельной венепункции. Но делать это рекомендуется не чаще 1 раза в сутки из-за опасности инфицирования катетера. При взятии крови через катетер первые 5-8 мл крови необходимо слить, чтобы предотвратить риск смешивания образцов крови с жидкостями, которые были введены по этому катетеру ранее. Взятие крови должно производиться очень тщательно из-за возможности разбавления крови вливаемыми больному растворами, что может повлечь за собой искажение результатов исследований.

2.3.2.2.8. Взятие капиллярной крови

Прокол кожи является методом выбора для взятия крови в педиатрии, особенно у новорожденных. Большие количества крови, которые берут при венепункции, могут вызвать анемию у детей, особенно у новорожденных или недоношенных. Венепункция глубоких вен у детей может стать причиной (очень редко) остановки сердца, кровотечения, тромбоза, сокращения вен, ведущего к гангрене конечности, повреждению органов или тканей, случайно задетых при венепункции, и инфицирования. Более того, доступные вены могут использоваться для парентеральной терапии. У взрослых прокол кожи используют при сильном ожирении, тяжелых ожогах, склонности к тромбозу, при многократном взятии крови для исследования содержания глюкозы и определения газового состава крови.

В клинической практике прокол кожи используют для взятия крови из пальца, мочки уха и пятки (у детей). Между объемом получаемой крови и глубиной прокола имеется прямая зависимость. В связи с этим скарификатор должен выбираться в соответствии с местом прокола и необходимым количеством крови. Пункция пальца не должна проводиться у младенцев, так как это может привести к повреждению кости, а прокол подошвенной поверхности пятки маленького ребенка глубже 2,4 мм - к повреждению пяточной кости.

Методика взятия крови из пальца. Взятие крови должно производиться в следующей последовательности.

  1. Лаборант должен убедиться в том, что имеются подготовленные перчатки, стерильные ватные шарики или марлевые тампоны для спирта, стерильные ланцеты, пипетки, капилляры (капиллярные пробирки), стеклянные пробирки, разводящие жидкости, фломастеры для надписей, бинты. Он изучает полученную заявку на исследование.

  2. Для манипуляции выбирают неохлажденный, нецианотичный, неотечный палец пациента. Прокол лучше делать у кончика IV пальца левой руки (у правшей). Можно прокалывать II и III пальцы. Если руки у пациента холодные, то перед проколом их нужно обернуть на 10-15 мин довольно горячим полотенцем.

  3. Для того чтобы усилить кровоток, нежно массируют палец от основания к кончику.

  4. Тампоном, смоченным спиртом, тщательно обрабатывают кончик пальца и дают поверхности просохнуть.

  5. Вынимают ланцет из упаковки, не прикасаясь к его острию.

  6. Одной рукой крепко держат палец пациента, а другой рукой выполняют прокол на середине расстояния между центром подушечки пальца и латеральной поверхностью пальца на глубину, достаточную, чтобы получить крупную каплю крови.

  7. Первую каплю удаляют стерильным тампоном.

  8. Массируя палец от основания к кончику, получают нужное количество крови. Нельзя мять и сжимать палец - это приводит к ложным результатам из-за попадания в кровь межтканевой жидкости.

  9. Набирают нужное количество крови в соответствующие микроветты или капилляры в соответствии с полученной заявкой.

  10. Закрывают микроветты с кровью пробками от них.

  11. Наклеивают на микроветты этикетки с данными пациента, указав время и дату взятия крови.

Примечание. На бланке ответа обязательно нужно указывать, что кровь на исследование бралась из пальца, так как результаты исследований уровня глюкозы, калия, кальция и некоторых других показателей могут отличаться от результатов, полученных при работе с венозной кровью.

Методика взятия крови из мочки уха. Кровь для исследования газового состава может быть взята из пальца, но она не годится для определения в ней рО2. Хорошим «заменителем» артерии для исследования газового состава крови может быть мочка уха, так как она хорошо васкуляризована и в то же время метаболизм в ней невелик, что позволяет считать эту кровь близкой по своему газовому составу к артериальной.

Улучшить артериальный кровоток в мочке уха можно, согревая ее бумажным полотенцем, смоченным водой температуры 39-42 °С, или щелчками указательного пальца, или смазав мочку трафурилом.

Мочку уха протирают 70% спиртом и пунктируют ланцетом. Прокол должен быть таким, чтобы кровь текла свободно. Первую каплю удаляют стерильным тампоном. Затем два гепаринизированных капилляра на 100 мкл каждый помещают в центр следующей капли крови и заполняют их без воздушных пузырьков, которые могут изменить рО2. Оба конца капилляров, после того как в них помещают металлические стерженьки для перемешивания крови, закрывают специальными резиновыми колпачками.

После закупорки обоих концов капилляров кровь в них перемешивают с помощью магнита. Капилляры с кровью маркируют этикетками, на которых указывают сведения о пациенте, а также время и дату взятия крови и немедленно доставляют в лабораторию для исследования.

Методика взятия крови из пятки во многом сходна с методикой взятия крови из пальца. Глубокий укол пятки выполняют у дистального края пяточной кости, предварительно подогрев стопу в теплой воде (рис. 2.23). Кровь, взятую из пятки, нельзя использовать для определения газового состава, так как она значительно отличается от артериальной крови по всем параметрам, кроме избытка оснований и стандартных бикарбонатов. Для исследования газового состава крови у новорожденных лучше брать кровь через катетер из пупочной артерии (если она не спалась).

pic 0033
Рис. 2.23. Места для взятия капиллярной крови из пятки

В качестве меры безопасности не следует накладывать лейкопластырь на место прокола у младенцев и детей, так как он может отклеиться и ребенок может его поглотить.

Примечание. Если почему-либо при венепункции или других способах взятия крови получить ее не удалось, это должно быть задокументировано и должны быть указаны причины:

  1. пациента нет на месте;

  2. пациент отказался от взятия крови;

  3. не удалось взять кровь.

2.3.2.2.9. Взятие крови из артерии

Артериальную кровь берут для исследования содержания в ней О2, СО2 и определения рН. Пункция артерии технически более сложна, чем пункция вены. Большое артериальное давление затрудняет остановку кровотечения, создает условия для образования гематомы. Для получения артериальной крови используют пункцию лучевой, плечевой или бедренной артерии. Место пункции не должно иметь раздражения кожи, отека, располагаться вдалеке от имеющейся раны, артериовенозного шунта или фистулы.

Пункция артерии - довольно болезненная процедура. Пациенты могут жаловаться на значительный дискомфорт, связанный с пункцией: боль, чувство набухания или размягчения в области пункции, спазм мышц или судороги.

Предпочитают брать кровь из лучевой или плечевой артерии. Бедренная артерия больше по диаметру и ее легче пунктировать, но нужно помнить, что у пожилых пациентов кровотечение из нее после пункции бывает дольше и интенсивнее, чем из лучевой или плечевой. Кроме того, кровотечение из бедренной артерии можно вовремя не заметить из-за того, что больной накрыт одеялом. Лучевую артерию пунктировать сложнее, но осложнений при этом бывает меньше.

При использовании для пункции лучевой артерии надо проверить способность выбранной конечности к коллатеральному кровообращению. Для этого проводят тест Аллена: пациент поднимает руку до вертикального положения, врач пережимает лучевую и локтевую коллатеральную артерии одновременно, то есть лишает руку кровоснабжения. Рука бледнеет (белеет), после чего ее опускают и снимают давление с локтевой артерии. Если кровоток достаточен (рука розовеет), то можно пунктировать радиальную артерию, то есть если при пункции затромбируется лучевая артерия, то кровоснабжение конечности будет обеспечено по локтевой. При отрицательном тесте Аллена (рука не розовеет) для пункции используют лучевую артерию на другой руке.

В дальнейшем все действия выполняются в следующей последовательности.

  1. Определяют место пунктируемой артерии по ее пульсации. Участок прокола кожи обрабатывают 70% водным раствором изопропанола, а затем раствором йода.

  2. Можно провести местную анестезию, но обычно этого не требуется. Пункция артерии без анестезии дает более точные результаты при определении рСО2 и рН.

  3. Для пункции используют специальную иглу и гепаринизированный моноветт с бесцветной маркировкой и оранжевым колпачком. Колпачок снимают и на моноветт надевают иглу. Игла должна пройти через кожу под углом 45-60° (90° - для бедренной артерии) медленно и осторожно.

  4. Как только игла вошла в артерию, кровь начинает пульсовыми толчками поступать в моноветт, заполняя его полностью (2 мл).

  5. После того как моноветт наполнился, иглу вместе с ним удаляют, отсоединяют иглу, а на ее место надевают оранжевый колпачок, чтобы изолировать кровь от воздуха. Осторожно вращают моноветт для смешивания крови с гепарином. Моноветт помещают в воду со льдом, чтобы сократить потребление кислорода лейкоцитами крови. Иглу выбрасывают в контейнер для отходов.

  6. На место пункции помещают стерильный тампон, придавливая его большим пальцем правой руки минимум 2 мин (лучше 5 мин).

  7. Взятый материал немедленно доставляют в лабораторию.

2.3.2.2.10. Индикаторы оценки качества взятых проб крови

Важным моментом для выявления нарушений в технологической операции взятия крови на лабораторные исследования является определение индикаторов качества полученных проб перед их транспортировкой в лабораторию. Процедурная медицинская сестра должна знать эти критерии и постоянно использовать их в своей работе.

  1. Пациент правильно подготовлен к взятию крови. Лекарственные средства были исключены, если это возможно.

  2. Необходимые для исследования пробы взяты у правильного пациента и правильно промаркированы (этикеткой). Неправильно маркированный или немаркированный материал, доставленный в лабораторию, не принимается (выбрасывается). При перепроверке идентификации пациента возможны новые ошибки, особенно если она проводится через пациента («Брали ли у вас кровь? На какие анализы? Кто брал?»). Это недопустимо, так как наносит пациенту психологическую травму и подрывает его доверие к данному лечебному учреждению.

  3. Правильно ли выбраны антикоагулянт и консервант? Достаточно ли взято крови?

  4. Наличие гемолиза, если возможно.

  5. Взята ли кровь натощак?

  6. Соблюдены ли временные параметры при взятии проб: вовремя ли они взяты, вовремя ли они отправлены в лабораторию?

При взятии крови на исследование важно знать максимальные нормы крови (особенно у детей), которые можно брать у пациента за 1 раз и за все время госпитализации. Незнание таких норм врачами-клиницистами может в конечном счете (при частых и обширных исследованиях) привести к развитию у пациента изменений в показателях крови (снижение гемоглобина, гематокрита, эритроцитов и др.) без влияния патологического процесса. Максимальные нормы взятия крови за 1 раз и за все время госпитализации у детей до 14 лет приведены в табл. 2.15. У взрослых людей рекомендуется брать вдвое больше крови, чем необходимо для выполнения лабораторных анализов.

Для определения нагрузки процедурных медицинских сестер при взятии крови на исследование, установления причин снижения качества лабораторных исследований на этом этапе технологического процесса важно знать затраты рабочего времени на взятие крови, чтобы избежать перегрузки медицинских сестер и лаборантов.

Таблица 2.15. Максимальные нормы взятия крови за 1 раз и за все время госпитализации у детей до 14 лет
Масса тела пациента, кг Максимальная норма взятия крови за 1 раз, мл Максимальная норма взятия крови за весь период госпитализации, мл

2,7-3,6

2,5

23

3,6-4,5

3,5

30

4,5-6,8

5

40

7,3-9,1

10

60

9,5-11,4

10

70

11,8-13,6

10

80

14,1-15,9

10

100

16,4-18,2

10

130

18,6-20,5

20

140

20,9-22,7

20

160

23,2-25,0

20

180

25,5-27,3

20

200

27,7-29,5

25

220

30,0-31,8

30

240

32,3-34,1

30

250

34,5-36,4

30

270

36,8-38,6

30

290

39,1-40,9

30

310

41,4-43,2

30

330

43,6-45,5

30

350

Увеличение нагрузки (количества пациентов) на процедурную медицинскую сестру при взятии крови может привести к снижению качества проб и результатов лабораторных исследований, явиться сигналом к увеличению количества специалистов, работающих на этом этапе технологического процесса, или времени, необходимого для приема материала в лаборатории.

Таблица 2.16. Затраты рабочего времени на взятие крови (данные Корпорации американских врачей-патологов)
Манипуляция Затраты времени, мин

Пункция артерии

12

Подготовка к венепункции

1

Венепункция

4-10

Взятие крови из пальца

8-14

2.3.2.2.11. Осложнения и возможные затруднения при взятии крови

Обморок. Для того чтобы избежать этого осложнения и его последствий, лучше брать кровь, когда пациент находится в положении лежа.

Гематома. Если начинает появляться гематома, необходимо сразу снять жгут и вынуть иглу из вены, после чего наложить давящую повязку на место пункции.

Петехии. Обычно это следствие нарушения свертывающей системы крови, поэтому специалист, производящий венепункцию или взятие крови из пальца, должен быть готов к тому, что кровотечение из прокола будет длительным. Таким пациентам обязательно нужно накладывать давящую повязку.

Отек. Лучше не брать кровь там, где имеются отеки, иначе межтканевая жидкость попадет в кровь и результаты исследования будут искажены.

Ожирение. У людей с ожирением обычно трудно найти вену и произвести ее пункцию. При заборе в кровь может попасть много межтканевой жидкости и активаторов свертывания крови (тканевый тромбопластин).

Поврежденные и склерозированные вены бывают у пациентов после многократных венепункций (внутривенное введение лекарственных средств). При заборе крови на исследование нужно избегать таких вен.

Гемолиз. Причинами гемолиза могут быть слишком тонкая игла для венепункции, очень быстрые движения поршня шприца, неаккуратное (быстрое) переливание крови из одной емкости в другую, очень интенсивное перемешивание (встряхивание), длительное наложение жгута (более 2 мин). Необходимо помнить, что одной из причин гемолиза может быть физиологическая ненормальность эритроцитов, о чем необходимо предупредить лабораторию.

Гемоконцентрация. Причинами этого осложнения являются длительное наложение жгута, массаж и сжимание места взятия крови, склерозированные или окклюзированные вены.

Спавшиеся вены - обычно небольшие вены, из которых хотят слишком быстро забрать («выкачать») кровь шприцем.

Тромбоз вен после пункции обычно возникает у пациентов со склонностью к гиперкоагуляции, а также может появиться при повторных пункциях в одном и том же месте.

Инфекционные осложнения возникают при нарушении правил асептики и антисептики.

2.3.2.2.12. Типичные ошибки при взятии проб крови

Наиболее часто встречающиеся ошибки при взятии проб крови можно разделить на три типа:

  1. ошибки на этапе подготовки к взятию крови;

  2. ошибки при процедуре взятия крови;

  3. ошибки при подготовке отобранных проб к отправке в лабораторию и нарушением температурного, светового режима хранения, условий и времени транспортировки.

Ошибки первого типа могут быть обусловлены факторами, связанными с пациентом (несоблюдение правил подготовки) и действиями медицинской сестры. Типичные ошибки, которые допускают медицинские сестры, связаны с неправильной идентификацией пациента и неверным выбором приспособлений (пробирок) для взятия проб крови.

Ошибки при процедуре взятия крови состоят в том, что медицинские сестры после наложения жгута нередко просят пациента поработать кистью рук. Это грубая ошибка, которая может привести к искажению целого ряда биохимических показателей у больного.

Нередко для взятия проб крови используют шприцы. При быстром вытягивании поршня шприца до упора кровь через узкую иглу с большим ускорением заполняет шприц, при этом эритроциты ударяются в его стенки, что приводит к их повреждению. Именно поэтому использование вакуумных пробирок с дозированным вакуумом предпочтительнее аспирационных методов взятия крови.

Гемолиз может оказать существенное влияние на качество результатов лабораторных анализов. Гемолиз - высвобождение компонентов клеток крови в плазму/сыворотку. Наличие гемолиза нередко можно распознать по появлению красноватого окрашивания плазмы/сыворотки после центрифугирования, связанного с высвобождением гемоглобина из эритроцитов. Однако отсутствие красной окраски не всегда исключает наличие гемолиза, поскольку гемоглобин видим невооруженным глазом при уровне примерно 0,3 г/л и выше. Кровь состоит из клеток и плазмы. Многие компоненты, которые определяют при проведении лабораторных анализов, содержаться в более высокой концентрации в клетках крови. В связи с этим гемолиз может оказывать существенное влияние на многие лабораторные показатели (рис. 2.24). Влияние гемолиза на результаты лабораторных тестов может быть обусловлено следующими механизмами:

  • высвобождением повышенных концентраций внутриклеточных компонентов в плазму/сыворотку;

  • оптической интерференцией, вызванной цветом гемоглобина (может менять окраску в процессе хранения);

  • влиянием внутриклеточных компонентов на механизм реакции проводимого исследования (химическая, биологическая, иммунологическая интерференция; например, высвобождающаяся из клеток крови аденилаткиназа оказывает влияние на стандартные методы определения КК).

pic 0034
Рис. 2.24. Влияние гемолиза на уровень и активность различных лабораторных показателей в зависимости от концентрации гемоглобина в сыворотке

Для получения достоверных результатов лабораторных исследований следует предотвратить возникновение гемолиза. Однако гемолиз может происходить не только в пробирке (in vitro) при нарушении процедуры взятия крови, но и в организме пациента (in vivo) вследствие заболевания. Гемолиз in vivo и in vitro может быть установлен сравнением различных проб одного и того же пациента, или определением чувствительных лабораторных маркеров гемолиза in vivo (например, гаптоглобина), или анализом клинической информации. При подозрении на гемолиз in vivo необходимо проконсультироваться с лечащим врачом. Гемолиз in vitro можно предотвратить путем стандартизации и правильного выполнения процедур преаналитического этапа (стандартные иглы и фирменные приспособления для взятия крови, соблюдение техники взятия и времени доставки проб крови, использование плазмы вместо сыворотки). Источником интерференции также может быть лизис тромбоцитов и гранулоцитов.

В случае установления гемолиза пробы не должны подвергаться исследованию, о чем необходимо сообщить лечащему врачу для решения вопроса о повторном взятии крови. Если новая проба крови не может быть получена, клиницист должен быть проинформирован относительно возможной степени искажения результатов анализа.

Наиболее существенными причинами нарушения качества проб крови и другого биоматериала являются следующие:

  • метаболизм клеток крови;

  • испарение/сублимация;

  • химические реакции;

  • обсеменение микроорганизмами;

  • осмотические процессы;

  • воздействие света;

  • диффузия газов.

Мутность проб крови также нередко встречается в клинической практике. Мутность плазмы и сыворотки в той или иной степени бывает обусловлена в основном повышенным содержанием хиломикронов, липопротеинов особо низкой плотности (ЛПОНП) или тех и других в крови пациента. Поскольку степень гиперлипидемии может оказать существенное влияние на результаты определения липидов и других лабораторных показателей через механизмы интерференции, то мутность необходимо рассматривать как искажающий фактор, влияние которого следует, насколько это возможно, избегать.

Для нивелирования этих последствий необходимо придерживаться следующих полезных рекомендаций:

  • быстрая доставка проб в лабораторию улучшает достоверность результатов лабораторных исследований;

  • пробы сохраняются лучше при более низких температурах хранения (за некоторым исключением; например, цельную кровь не следует хранить в холодильнике);

  • пробы крови всегда должны храниться в закрытом виде даже в холодильнике (испарение);

  • использование одноразовых фирменных приспособлений существенно снижает воздействие неблагоприятных факторов на качество проб;

  • разделительные гели позволяют оставлять сыворотку в первичных пробирках;

  • избегать встряхивания проб при транспортировке, так как это повышает риск гемолиза;

  • всегда хранить пробирки с кровью в вертикальном положении (процесс свертывания ускоряется);

  • избегать хранения проб с цельной кровью;

  • гликолиз оказывает влияние на стабильность в пробах глюкозы, лактата, рН, поэтому используют ингибиторы гликолиза;

  • избегать воздействия света на пробы (снижает уровень билирубина, витамина С, порфиринов, КК и фолиевой кислоты);

  • использование плазмы для биохимических исследований имеет ряд преимуществ перед сывороткой: больший выход материала для исследования, реже возникают гемолиз и тромбоцитолиз, результаты исследований более точно отражают состояние in vivo; однако плазму нельзя подвергать электрофорезу: антикоагулянты могут ингибировать активность ряда ферментов;

  • для исследования определенных аналитов [электрофорез липопротеинов, определение апо А1, апо В, липопротеинов низкой плотности (ЛНПН)] сыворотка не должна замораживаться;

  • после исследований следует хранить пробы в таких условиях, чтобы в случае необходимости можно было подтвердить результаты, проверить идентичность проб или провести дополнительные тесты.

Превышение времени наложения жгута при взятии проб крови - еще одна типичная ошибка. Об этом свидетельствуют данные, приведенные в табл. 2.17 и на рис. 2.25.

Таблица 2.17. Влияние длительности наложения жгута при венепункции на результаты анализов

Показатель

Время наложения жгута, мин

0

2

4

6

Кальций общий, ммоль/л

2,38

2,45

2,52

2,58

Белок общий, г/л

72

74

77

80

Альбумин, г/л

39

40

42

43

Гемоглобин, г/л

147

148

151

155

pic 0035
Рис. 2.25. Изменение концентрации общего белка и активности лактатдегидрогеназы (ЛДГ) в сыворотке при наложении жгута в течение 15 мин

Частой ошибкой этого типа является несоблюдение правильного соотношения крови и антикоагулянта в результате неполного заполнения кровью пробирки с антикоагулянтом. Эта ошибка является критичной при определении показателей, используемых для оценки свертывающей системы крови (например, протромбиновое время, АЧТВ). При взятии проб для общего анализа крови увеличение концентрации ЭДТА, обусловленное частичным заполнением пробирки, приводит к ложным результатам количественных (заниженные количества эритроцитов, лейкоцитов, величины гематокрита) и морфологических (вследствие изменения окраски) характеристик клеток крови.

Нередко грубейшей ошибкой является недостаточно тщательное перемешивание проб крови с антикоагулянтом. Следствия данного нарушения всегда необратимы. Пробы вследствие образования сгустка не подлежат исследованию. Однако, помимо невозможности исследования пробы, в пробирке могут образовываться микросгустки, которые не видны невооруженным глазом и при попытке выполнения анализа могут стать причиной выхода из строя анализатора.

Типичные ошибки третьего типа наиболее часто включают превышение установленного времени доставки проб крови в лабораторию. Основные временные критерии правильного выполнения процедуры доставки проб в лабораторию рассмотрены ниже.

2.3.2.3. Технологическая операция сбора других видов биоматериала на исследование

Медицинским сестрам, помимо взятия проб крови, приходится участвовать в сборе многих других видов биоматериала на лабораторные исследования. Многообразие видов биоматериала и особенностей его сбора требует от медицинской сестры профессиональных знаний в этой области, для того чтобы в простой и ясной форме объяснить их пациенту. Для получения качественных результатов исследования должны быть стандартизированы не только взятие крови, но и сбор других видов биоматериала, несмотря на их многообразие, и изложены в виде утвержденных главным врачом ЛПУ СОП. В табл. 2.18 приведен пример СОП по сбору различных видов биоматериала.

2.3.2.3.1. Пробы мочи

Лабораторное исследование мочи - один из наиболее распространенных видов анализа. Несмотря на кажущуюся простоту сбора проб мочи, эта процедура требует особого внимания со стороны медицинской сестры.

Таблица 2.18. СОП по сбору биоматериала на лабораторные исследования
№ п/п Тест Материал для исследования Минимальный объем, мл Приспособления для взятия (сбора) материала Особенности взятия (сбора) и транспортировки материала в лабораторию Дни, когда берется материал Время готовности ответа

1

Общий анализ мочи

Разовая моча

50

Пластиковый контейнер с завинчивающей крышкой вместимостью 200 мл

Выдают памятку пациенту. Собирают всю первую утреннюю порцию мочи, маркируют и в течение 90 мин доставляют в лабораторию

Ежедневно

2

Исследование мочи по Нечипоренко

Разовая моча

50

Пластиковый контейнер с завинчивающей крышкой вместимостью 200 мл

Выдают памятку пациенту. Собирают среднюю часть мочи при мочеиспускании, маркируют и немедленно доставляют в лабораторию

То же

30 мин

3

Исследование мочи на микроальбуминурию

Суточная моча

50

Контейнер из темного пластика вместимостью 4 л

Выдают памятку пациенту. Утром пациент первую порцию мочи выливает в унитаз. Затем в течение суток мочится в пластиковый контейнер, включая порцию мочи утром следующего дня. В течение всего времени сбора мочи она должна храниться в холодильнике (предупредите об этом пациента).

После сбора всю мочу тщательно перемешивают, в пластиковый контейнер вместимостью 200 мл отливают не менее 50 мл мочи, этот контейнер маркируют с указанием суточного диуреза и доставляют в лабораторию

То же

4

Определение катехоламинов в моче (адреналин, норадреналин, метан ефрины, норметанефрины, ванилил-миндальная кислота)

Суточная моча

50

Контейнер из темного пластика вместимостью 4 л с 30 мл 6N HCI (получите в лаборатории)

Выдают памятку пациенту. Утром пациент первую порцию мочи выливает в унитаз. Затем в течение суток мочится в пластиковый контейнер, включая порцию мочи утром следующего дня. После сбора мочу тщательно перемешивают, отливают не менее 50 мл мочи, маркируют, указывая суточный диурез, и доставляют в лабораторию

Понедельник, среда

72 ч

5

Общеклиническое исследование мокроты

Мокрота

Вся собранная мокрота

Пластиковый контейнер с завинчивающей крышкой вместимостью 70 мл

Выдают памятку пациенту. Собирают мокроту, выделяющуюся при кашле. Емкость с мокротой маркируют и доставляют в лабораторию, если такой возможности нет, мокроту хранят в холодильнике

Ежедневно

6

Общеклиническое исследование жидкости из плевральной, перикардиальной, перитонеальной полостей

Жидкость

10

Стерильный пластиковый контейнер с завинчивающей крышкой вместимостью 70 мл

Жидкость берет врач при проведении операции. Взятый шприцем материал переносят в стерильный пластиковый контейнер, маркируют и немедленно доставляют в лабораторию

То же

7

Общеклиническое исследование спинномозговой жидкости

Ликвор

1

Стерильная пластиковая пробирка с пробкой вместимостью 10 мл

Берет врач при проведении спинномозговой пункции. Жидкость берут в стерильную пластиковую пробирку, маркируют и немедленно доставляют в лабораторию

То же

8

Общеклиническое исследование кала

Кал

Весь кал за одну дефекацию

Пластиковый контейнер вместимостью 1 л с завинчивающейся крышкой

Выдают памятку пациенту. Собирают весь кал за одну дефекацию. Емкость маркируют и доставляют в лабораторию

То же

9

Исследование кала на яйца глист и амебиаз

Кал

50 г

Пластиковый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой

Выдают памятку пациенту. Пациент после дефекации в контейнер вместимостью 1 л берет из разных мест каловых масс ложечкой кусочки кала и переносит их в пластиковый контейнер вместимостью 100 мл с завинчивающейся крышкой. Контейнер маркируют и немедленно доставляют в лабораторию

То же

Сбор и консервирование мочи должны быть строго стандартизованы в виде утвержденной инструкции, в которой излагаются порядок и последовательность процедуры. Для сбора мочи используют пластиковые контейнеры с завинчивающимися крышками и нанесенной градуировкой, стерильные или нестерильные, вместимостью 200 мл, 2,5 и 4 л, из прозрачного и непрозрачного пластика или стекла.

В клинической практике проводят химическое, микроскопическое и бактериологическое исследования мочи. Наиболее часто используют пять способов сбора мочи:

  • сбор мочи в середине мочеиспускания (разовая моча);

  • сбор утренней порции мочи;

  • сбор проб мочи за определенный промежуток времени;

  • сбор суточной мочи, то есть объединение всех порций мочи за 24 ч;

  • взятие проб мочи с помощью катетера.

Характер назначенного пациенту анализа определяет, какой из этих способов сбора мочи необходимо использовать.

Сбор мочи в середине мочеиспускания - это сбор небольшой порции мочи (10-15 мл) в любое время суток (случайные пробы). Сущность сбора мочи в середине мочеиспускания состоит в том, что первую часть мочи при мочеиспускании пациент выливает в унитаз, среднюю порцию собирает в чистый пластиковый контейнер, а оставшуюся мочу выпускает в унитаз. В большинстве случаев сбор мочи в середине мочеиспускания используют для общего анализа мочи, выполнения пробы Нечипоренко, бактериологического исследования в диагностике неотложных состояний.

Для исследования осадка мочи особенно важно использовать све-жевыпущенную мочу без консерванта, так как эритроциты и лейкоциты подвержены быстрому разрушению при хранении при комнатной температуре и при низком осмотическом давлении (удельный вес меньше 1,015). Концентрация билирубина и уробилиногена снижается под действием света, наличие бактерий в моче снижает концентрацию глюкозы и ацетона, могут меняться мутность, цвет мочи. Именно поэтому свежевыпущенная моча для общеклинического исследования должна быть доставлена в лабораторию в пределах 1 ч с момента ее сбора.

При плановом обследовании больных для получения сравнимых результатов исследований лучше собирать первую утреннюю порцию мочи. Первая утренняя порция мочи обычно самая концентрированная и расценивается как лучшая проба для анализа. Для большинства исследований мочи используют утреннюю порцию (например, общий анализ мочи, бактериологический посев мочи). В ней с большей вероятностью можно обнаружить вещества, присутствующие в крови в минимальных количествах. Так, утренняя порция мочи используется для проведения теста на беременность. Этот тест основан на определении хорионического гонадотропина человека - гормона, который обычно не присутствует в моче, но появляется в первые несколько месяцев беременности в нарастающих количествах. На ранних сроках беременности концентрация этого гормона столь мала, что если использовать не утреннюю порцию мочи (концентрированную мочу), то можно получить ложноотрицательный результат.

Мочу собирают в чистые стеклянные или пластиковые емкости. Сбор мочи у детей требует особого внимания из-за возможности загрязнения мочи калом.

Сбор проб мочи за определенный промежуток времени используют в клинической практике не так часто, в основном при проведении пробы по Зимницкому, исследования глюкозурического профиля, а также определения уровня ряда гормонов и их метаболитов (например, определения адреналина и норадреналина в моче для диагностики феохромоцитомы как причины гипертонического криза у больного).

Пробы за определенный промежуток времени собирают начиная с ноля часов (например, проба Зимницкого). Нулевым временем считается окончание первого утреннего мочеиспускания.

Иногда необходимо точно знать, сколько определенного вещества (например, кальция при остеопорозе) теряется ежедневно с мочой. Точное количество теряемого вещества можно определить только в том случае, если собрать суточную мочу.

При сборе мочи за сутки самая главная проблема - неполный сбор мочи. В стационаре эта проблема решается легче, так как пациенты находятся под наблюдением медицинских сестер. Амбулаторным больным надо посоветовать держать мочу в недосягаемом для детей месте, особенно если в качестве консерванта используется концентрированная кислота. Для сбора суточной мочи предпочтительнее использовать пластиковую емкость объемом около 4 л (с добавленным в нее консервантом, если нужно). Следует напомнить пациенту, что первую утреннюю порцию не берут (нулевое время), а собирают все последующие порции точно до этого же времени следующего дня. По окончании сбора суточной мочи контейнер направляют на анализ.

При сборе суточной мочи, сборе мочи за определенный отрезок времени для предупреждения роста бактерий проба должна постоянно находиться в холодильнике или к ней необходимо добавить консервант. Для некоторых исследований добавка консерванта небезразлична, в таких случаях предпочтительнее охлаждение. Консервант добавляют в пустую емкость с предупредительной этикеткой. Предупреждение необходимо, особенно в том случае, если в качестве консерванта используют концентрированную кислоту. Для того чтобы не разлагались вещества, чувствительные к свету, используют емкости из непрозрачного пластика. Сбор мочи у детей требует особого внимания из-за возможности загрязнения мочи калом.

Консервация проб мочи очень важна для сохранения ее исходных свойств. Неконсервированная моча легко подвергается микробному загрязнению и неизбежным химическим изменениям. Ниже приведен перечень изменений, которые возможны в моче при ее разложении (при отсутствии консерванта).

Таблица 2.19. Изменения, которые происходят в моче при ее разложении
Результат Причина

Изменение цвета

Разрушение или изменение хромогенов и других компонентов мочи (гемоглобин, гомогентизиновая кислота)

Изменение запаха

Рост микроорганизмов, разложение мочи

Увеличивающаяся мутность

Рост микроорганизмов, образование кристаллов, преципитация аморфных веществ

Ложнонизкий рН

Превращение глюкозы под действием бактерий и дрожжевых грибков в кислоту и спирты

Ложновысокий рН

Разрушение мочевины микроорганизмами с образованием аммиака

Ложноотрицательная реакция на глюкозу

Потребление глюкозы микроорганизмами

Ложноотрицательная реакция на ацетон

Улетучивание ацетона, разрушение ацетоацетата бактериями

Ложноотрицательная реакция на билирубин

Разрушение билирубина солнечным светом. Окисление билирубина до биливердина

Ложноотрицательная реакция на уробилиноген

Разрушение уробилиногена светом

Ложноположительная реакция на нитриты

Продуцирование нитритов бактериями или грибками

Ложноотрицательная реакция на нитриты

Превращение нитритов в азот, который улетучился

Увеличенная бактериурия

Размножение бактерий при хранении мочи

Распад клеток осадка

Нестабильная окружающая для них среда, особенно когда моча щелочная или гипотоническая (или то и другое)

Для стандартизации определения специфических показателей в моче важно использовать консерванты, представленные в табл. 2.20.

Таблица 2.20. Исследуемые показатели мочи, виды консервантов и характер сбора мочи

Исследуемый показатель

Сбор мочи, ч

Без консерванта

Консервант

Охлаждение

борная кислота (10-15 г)

ледяная уксусная кислота (15 мл)

HCl (15 мл)

Альбумин

24

+

Альдостерон

24

+

Амилаза

2

+

Барбитураты

Разовая

+

Белок Бенс-Джонса

24

+

Кальций

24

+

Катехоламины

24

+

Хлориды

24

+

Хорионический гонадотропин

24

+

Медь

24

+

Порфирины

24

5 г NaCO3

Кортизол

24

+

Креатинин

24

+

8-Аминолевулиновая кислота

24

+

К, Na, Cl

24

+

Эстриол

24

+

Эстрогены

24

+

ФСГ

24

+

Глюкоза

24

+

17-ОН

24

+

5-гидроксииндолуксусная кислота

24

+

Гидроксипролин

24

+

17-кетостероиды (17-КС)

24

+

17-оксикетостероиды (17-ОКС)

24

+

Осмолярность

24

+

Фосфор

24

+

Белок

24

+

Мочевая кислота

24

+

Ванилилминдальная кислота

24

+

Проблемы, связанные с правильным сбором мочи, можно решить, давая подробные письменные или устные инструкции пациенту (или родителям маленьких детей) и предупреждая о том, что в случае нарушения рекомендаций моча будет непригодна для анализа. Ниже приведены примеры памяток для пациента.

Памятка для пациента

Общий анализ мочи

Общий анализ мочи назначен Вашим врачом. Цель исследования - по результатам анализа объективно оценить Ваше состояние.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать накануне в обычное для Вас время. Вы должны собрать первую утреннюю порцию мочи. Именно поэтому утром после подъема Вы должны получить у медицинской сестры отделения емкость для сбора мочи. Убедитесь, что на емкости для мочи указаны Ваши данные: Ф.И.О., отделение, палата. Перед сбором мочи Вам необходимо провести тщательный туалет наружных половых органов, промыв их под душем с мылом, чтобы в мочу не попали выделения из них.

После этой подготовки Вы идете в туалет и полностью собираете всю мочу в емкость. Завинчиваете емкость крышкой и доставляете мочу на место, указанное медицинской сестрой.

Очень важно, чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены ценные результаты.

Памятка для пациента

Исследование мочи по Нечипоренко

Исследование мочи по Нечипоренко назначено Вашим врачом. Цель исследования - по результатам анализа объективно оценить Ваше состояние.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать накануне в обычное для Вас время. Вы должны собрать первую утреннюю порцию мочи. Именно поэтому утром после подъема Вы должны получить у медицинской сестры отделения емкость для сбора мочи. Убедитесь, что на емкости для мочи указаны Ваши данные: Ф.И.О., отделение, палата. Перед сбором мочи Вам необходимо провести тщательный туалет наружных половых органов, промыв их под душем с мылом, чтобы в мочу не попали выделения из них.

После этой подготовки Вы идете в туалет и собираете среднюю порцию мочи в емкость (100-120 мл). Завинчиваете емкость крышкой и доставляете мочу на место, указанное медицинской сестрой отделения.

Памятка для пациента

Исследование мочи по Зимницкому

Исследование мочи по Зимницкому назначено Вашим врачом. Цель исследования - объективно оценить функции почек.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать накануне в обычное для Вас время. Вы будете собирать мочу в течение всего следующего дня. Именно поэтому Вы должны встать утром в 6 ч, получить у медицинской сестры отделения емкости для сбора мочи (восемь емкостей). Убедитесь, что на емкостях указаны Ваши данные: Ф.И.О., отделение, палата.

В 6 ч утра Вы идете в туалет и полностью опорожняете мочевой пузырь в унитаз. Затем через каждые 3 ч собираете всю мочу, которая накопилась у Вас за это время, в отдельную емкость. Вы должны собрать мочу в 9, 12, 15, 18, 21, 24, 3 и 6 ч. Каждую емкость завинчиваете крышкой и доставляете ее на место, указанное медицинской сестрой отделения. Для сбора мочи в ночные часы напомните дежурной медицинской сестре, чтобы она не забыла Вас вовремя разбудить.

Очень важно, чтобы Вы точно следовали указанным рекомендациям, так как только в этом случае будут получены ценные результаты.

Достоверность результатов, полученных при анализе суточной мочи, во многом зависит от аккуратности сбора образца. Должна быть собрана вся моча, выделенная больным за 24 ч. Ниже приведена последовательность действий медицинской сестры для обеспечения правильного сбора суточной мочи.

  1. Получите из лаборатории специальный контейнер для сбора суточной мочи. Для сбора мочи на ряд лабораторных анализов требуется контейнер с консервантом. Убедитесь в правильном выборе консерванта для данного вида анализа (табл. 2.20). Консервант может обладать агрессивными свойствами (например, соляная кислота), поэтому нужно соблюдать меры предосторожности и предупредить об этом пациента.

  2. Наклейте на контейнер этикетку с данными пациента и указанием времени начала сбора мочи.

  3. Объясните пациенту, что он должен собрать всю мочу, выделенную им за 24 ч.

  4. В любое время (обычно это 8 ч утра) пациент должен опорожнить мочевой пузырь, выпустив мочу в унитаз.

  5. Вся моча, выделенная пациентом после этого времени, должна быть собрана в контейнер.

  6. В 8 ч утра следующего дня мочевой пузырь в последний раз снова полностью опорожняют и добавляют эту порцию мочи в контейнер.

  7. Собранная моча, предназначенная для анализа, должна быть отправлена в лабораторию как можно скорее.

Памятка для пациента

Исследование суточной мочи

Исследование суточной мочи назначено Вашим врачом. Цель исследования - по результатам анализа объективно оценить Ваше состояние.

Для получения достоверных результатов Вам необходимо подготовить себя к этому исследованию: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя, лечь спать накануне в обычное для Вас время. Вы должны собрать всю выделенную мочу за 24 ч. Емкость для сбора мочи (на 3 л) Вы должны получить у медицинской сестры заранее, до сбора мочи. Если в емкости содержится жидкость, которую добавляют в качестве консерванта, уточните у медицинской сестры, что это за жидкость и как с ней обращаться.

Предварительно напишите на этикетке на емкости для мочи Ваши данные: Ф.И.О., дату рождения, дату и время сбора материала, запись должна быть сделана разборчивым почерком.

Утром Вы идете в туалет. Обязательно зафиксируйте время (нулевое время). Первую утреннюю порцию не собираете (выпускаете в унитаз), а собираете все последующие порции точно до этого же времени следующего дня (за сутки в емкость 3 л). Если в емкость добавлен консервант, то предварительно каждую порцию мочи собираете в отдельную емкость, а затем переливаете ее в трехлитровую емкость. В перерывах между сбором мочи емкость храните в закрытом виде. По окончании сбора суточной мочи завинчиваете емкость крышкой и доставляете мочу медицинской сестре.

Внимание!

  1. Держите мочу в недосягаемом для детей месте, так как в качестве консерванта при сборе суточной мочи может использоваться концентрированная кислота.

  2. Недопустимо направлять мочу на исследование в емкостях, не предназначенных для этих целей, так как остатки содержащихся в таких емкостях ингредиентов могут существенным образом исказить результаты анализов.

Взятие проб мочи с помощью катетера (специальная методика сбора мочи). Под специальной методикой сбора мочи понимают получение проб с помощью катетеризации мочевого пузыря. Эта процедура выполняется урологами. В настоящее время катетеризацию мочевого пузыря проводят в том случае, если пациент не может мочиться или неспособен контролировать мочеотделение.

Уретральные катетеры вводят через цистоскоп в соответствующий мочеточник. Первоначальную мочу выпускают из мочевого пузыря, затем его промывают и лишь после этого берут пробы мочи. Обычно такая процедура взятия проб мочи используется для дифференциальной диагностики инфекций мочевого пузыря и почек. Пробы мочи могут быть получены из каждого мочеточника отдельно.

В недавние времена была широко распространена практика взятия проб мочи на бактериологическое исследование путем катетеризации мочевого пузыря. Однако в настоящее время она оставлена, так как было установлено, что процедура катетеризации сама по себе связана с риском инфицирования мочевыводящих путей. Нередко этот способ получения проб мочи используют у пациентов с постоянным катетером. Однако следует соблюдать определенные правила получения проб мочи через постоянный катетер. Любые бактерии, присутствующие в моче, будут быстро размножаться, оставаясь в дренажной сумке. Именно поэтому мочу для анализа не следует брать из дренажной сумки: это приведет к неправильной оценке содержания бактерий в мочевом пузыре. Мочу следует собирать из изолированного рукава дренажной трубки, с помощью шприца и иглы, соблюдая правила асептики.

Моча должна быть собрана в стерильный стеклянный или пластиковый контейнер. Для анализа достаточно 5-10 мл мочи.

При пункции мочевого пузыря прокол делают иглой со шприцем в надлобковой области. Игла должна входить в наполненный мочевой пузырь, после чего мочу аспирируют шприцем. Обычно этот метод используется при подозрении на анаэробную инфекцию.

2.3.2.3.2. Получение спинномозговой жидкости (ликвора)

Для получения спинномозговой жидкости производится поясничная пункция. Прежде чем начать собирать жидкость для лабораторных исследований, измеряют ее давление. Оно должно быть в пределах 90-180 мм вод.ст. Задержка дыхания, давление на живот, пороки сердца, воспаление оболочек мозга, закупорка внутричерепных венозных синусов, повреждение мозга, его отек могут вызывать повышение внутричерепного давления до уровня свыше 180 мм вод.ст. Сначала берут 1-2 мл спинномозговой жидкости. Заметное снижение давления в этом случае говорит о наличии мозжечковых грыж или компрессии спинного мозга. В таких случаях сбор жидкости прекращают.

Больные с частичным или полным блоком спинномозгового канала могут иметь низкое ликворное давление (менее 80 мм вод.ст.), которое может упасть до нуля при взятии только 1 мл спинномозговой жидкости. В этом случае ее сбор также прекращают.

Если давление нормальное или заметно не меняется при взятии 1-2 мл жидкости, ее можно брать еще. Обычно жидкость собирают в три отдельные стерильные пластиковые пробирки с пробками: для клинического и бактериологического анализа, биохимических и серологических исследований. Для клинического и биохимического анализа собирают первые 1-2 мл спинномозговой жидкости. Для бактериологического посева используют следующую порцию жидкости в количестве 2-5 мл. При подозрении на туберкулезную или грибковую этиологию менингита следует брать не менее 10 мл спинномозговой жидкости. Пробирки снабжают этикетками с данными о больном (Ф.И.О., отделение, номер истории болезни, время взятия). Обычно после взятия 10-20 мл спинномозговой жидкости давление составляет 40-90 мм вод.ст. Полученные пробы немедленно доставляют в лабораторию. Это особенно важно для бактериологического посева, так как один из ведущих возбудителей менингита - N. meningitidis - чрезвычайно чувствителен к охлаждению.

2.3.2.3.3. Получение синовиальной жидкости

Синовиальная жидкость образуется путем диализа плазмы через синовиальную мембрану и секрецией гиалуронат-протеинового комплекса. Эту жидкость берут для исследования осторожно и с соблюдением всех правил асептики. Синовиальную жидкость не берут при наличии у пациента бактериемии или инфекции в окружающих сустав мягких тканях. Перед взятием синовиальной жидкости (артроцентез) пациент должен голодать в течение 6 ч. Жидкость берут шприцем, содержащим 25 ЕД гепарина на каждый миллилитр синовиальной жидкости. Обычно удается получить не более 2 мл. Полученную жидкость переносят в стерильные пластиковые пробирки с пробками, маркируют и немедленно направляют на клинические, бактериологические, биохимические и серологические исследования.

2.3.2.3.4. Получение плевральной, перикардиальной и перитонеальной жидкости

Для получения плевральной жидкости выполняют хирургическую операцию - торакоцентез. Такого же типа операцию проводят при накоплении жидкости в перикарде или брюшной полости. Полученные с помощью шприца в условиях асептики пробы переносят в стерильные пластиковые пробирки с пробками (или емкости, если жидкости много), маркируют и направляют на общеклиническое, биохимическое, цитологическое и бактериологическое исследования.

2.3.2.3.5. Получение материала из уретры

Правильное получение материала из уретры является первым и самым ответственным этапом при диагностике характера инфекционного процесса мочеполовой системы. Для установления этиологического агента инфекционного процесса у мужчин материал берут из уретры, а у женщин - из цервикального канала. При этом необходимо соблюдать следующие правила:

  • пациент не должен мочиться 1 ч до забора материала;

  • ввести стерильный маленький капроновый тампон в уретру на 2-4 см, повернуть тампон на 360° и вынуть его;

  • сразу же после забора материала поместить тампон на предметное стекло и, вращая тампон по кругу, равномерно распределить материал по поверхности предметного стекла;

  • высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию.

Методика получения материала из цервикального канала с использованием цитощеточки:

  • удалить ватой или тампоном слизь из устья цервикального канала;

  • ввести стерильную щеточку в цервикальный канал и повернуть ее на 360°, вынуть, не касаясь поверхности влагалища;

  • поместить щеточку на предметное стекло и, вращая тампон вдоль предметного стекла, равномерно распределить материал по его поверхности;

  • высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию.

Методика получения материала с конъюнктивы:

  • нанести местный анестетик на поверхность роговицы одного или обоих глаз;

  • используя стерильный малый тампон, осторожно протереть им внутреннюю поверхность нижнего, а затем верхнего века; при заборе материала с обоих глаз вначале протирают менее пораженный глаз;

  • сразу же после забора материала поместить тампон на предметное стекло и, вращая тампон вдоль предметного стекла, равномерно распределить материал по его поверхности;

  • высушить мазок на воздухе и доставить в лабораторию.

2.3.2.3.6. Сбор мокроты

Этот биологический материал используют для общеклинического исследования мокроты и наиболее часто - бактериологического анализа.

Для сбора мокроты используют широкогорлые, стерильные пластиковые контейнеры вместимостью 70 мл с завинчивающейся крышкой. Мокроту лучше собирать утром, до приема пищи. Для того чтобы предотвратить примешивание к мокроте содержимого полости рта, пациент, перед тем как выделить мокроту, должен тщательно почистить зубы и прополоскать рот и глотку кипяченой водой. Полоскание ротовой полости перед сбором мокроты уменьшает риск загрязнения пробы слюной. Пациента нужно предупредить о том, что собирать следует только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании. Емкость с мокротой маркируют и как можно скорее доставляют в лабораторию. Если мокроту получить не представляется возможным, то исследуют содержимое бронхиального или бронхоальвеолярного смыва.

2.3.2.3.7. Получение бронхоальвеолярного смыва

Бронхиальный смыв получают следующим образом: конец фибробронхоскопа вводят в устье сегментарного бронха, окклюзируют его, через биопсийный канал проводят полиэтиленовый катетер на 1,5-2,0 см дистальнее его и через этот катетер в просвет бронха вводят 50 мл изотонического раствора натрия хлорида, который затем полностью аспирируют. Для получения бронхоальвеолярного смыва катетер продвигают на 6-7 см вглубь сегментарного бронха и дробно вводят четыре порции по 50 мл изотонического раствора натрия хлорида, каждую порцию которого поочередно полностью аспирируют. Эти смешанные между собой порции носят название бронхоальвеолярного смыва.

Полученный материал аспирируют в стерильные пластиковые контейнеры, которые маркируют и направляют на клиническое, цитологическое, бактериологическое или иммунологическое исследование.

2.3.2.3.8. Сбор кала

Результаты копрологического исследования зависят от правильной подготовки пациента и от правильного сбора, хранения и доставки материала на исследование. Перед исследованием больному отменяют медикаменты, примеси которых мешают микроскопическому исследованию и влияют на внешний вид каловых масс, а также усиливают перистальтику кишечника. К таким препаратам относятся все слабительные, ваго- и симпатикотропные средства, каолин, бария сульфат, препараты висмута, железа и средства, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе. Если у женщины в назначенное для сбора кала время имеется менструация, то получение биоматериала лучше отложить.

Собирают кал за одну дефекацию в чистую сухую пластиковую банку с завинчивающейся крышкой. Недопустимо направлять кал на исследование в спичечных или картонных коробках, так как при этом меняются свойства и консистенция кала. Кал не должен содержать посторонних примесей (мочи, отделяемого мочеполовых органов). Нельзя собирать фекалии после клизм. Если необходимо знать точное количество испражнений, то пустую емкость перед сбором и после сбора материала взвешивают. Емкость с собранным материалом маркируют и немедленно направляют в лабораторию.

Если целью исследования является диагностика скрытых кровотечений желудочно-кишечного тракта, то в предшествующие анализу 3 дня пациенту запрещают употреблять пищевые продукты, в состав которых входят мясо, рыба и зеленые овощи; он не должен чистить зубы. Для исследования собирают не весь кал, а достаточно 10-15 г, которые берут в специальные пластиковые пробирки с ложечкой.

Для паразитологических исследований кала специальной подготовки не требуется. Собирают ложечкой в специальные пластиковые пробирки 10-15 г теплого кала, взятого из разных мест, и немедленно доставляют в лабораторию.

Только добившись строгого и точного выполнения инструкций по взятию и сбору материала на исследование, можно повысить качество результатов лабораторных исследований. Любое отступление от инструкции является нарушением технологии исследований и приводит к ошибочным результатам. Главные медицинские сестры ЛПУ должны постоянно анализировать, выявлять причины нарушений инструкции по взятию и сбору материала на исследование и разрабатывать меры по их устранению.

В США такие инструкции являются законом, и их нарушение, приведшее к нанесению ущерба пациенту (в том числе морального), преследуется в судебном порядке.

2.3.2.3.9. Взятие и сбор биоматериала на бактериологическое исследование

Правильное взятие и сбор биоматериала на бактериологическое исследование имеет чрезвычайно важное значение. Это обусловлено тем, что получение результатов бактериологического исследования подвержено влиянию многих факторов преаналитического этапа. Важнейшими из них являются:

  • место взятия биоматериала;

  • правильность способа и времени взятия биоматериала;

  • используемые системы для транспортировки проб биоматериала;

  • продолжительность транспортировки проб биоматериала.

При взятии проб для бактериологического исследования медицинские сестры должны уделять особое внимание предотвращению контаминации (попаданию в образец биоматериала бактерий с кожного покрова и слизистых оболочек). Для этого необходимо выполнять следующие основные правила.

  1. Перед взятием пробы из подкожных очагов кожу следует тщательно продезинфицировать. Если возможно, образцы гнойного материала лучше забирать путем аспирации через кожу, так как ее легче дезинфицировать, чем слизистые оболочки. Аспираты доставляют в лабораторию в шприце, предварительно удалив иглу и прочно закупорив канюлю.

  2. При взятии образца с открытой раны следует предварительно механически удалить с помощью стерильного тампона поверхностный секрет, который содержит вторичные микроорганизмы. Затем с краев раны собирают материал для исследования.

  3. Тампон с образцом следует предохранять от высыхания во время транспортировки. Для этого тампон помещают в емкость с жидким бульоном или транспортной средой.

  4. При небольшом количестве микроорганизмов объем пробы должен быть максимально возможным.

  5. При назначении исследования на гемокультуру пробы крови лучше брать в период повышения температуры тела у больного. При подозрении на септический эндокардит следует брать не менее 10 проб крови для гемокультивирования.

  6. При взятии проб биоматериала на бактериологическое исследование важное значение имеет правильный выбор контейнера для сбора и транспортировки образца в лабораторию. Основные требования к контейнерам для транспортировки проб для бактериологического исследования:

    • стерильность;

    • устойчивость к коррозии;

    • достаточные размеры;

    • прочность закупоривания;

    • небьющийся контейнер;

    • наличие транспортной или питательной среды для определенных микроорганизмов.

  7. Быстрая транспортировка проб в лабораторию и соблюдение при этом температурного режима. Эти требования обусловлены целым рядом особенностей самих микроорганизмов:

    • охлаждение и снижение рН биологического материала, а также воздействие кислорода снижает выживаемость таких бактерий, как менингококки, гонококки, пневмококки, холерный вибрион, анаэробные микроорганизмы, гемофильная палочка, сальмонеллы, Helicobacter pylori;

    • слишком длительная транспортировка приводит к тому, что жизнеспособность исходных чувствительных к воздействию окружающей среды микроорганизмов в пробе снижается, но при этом в биоматериале начинают размножаться другие бактерии.

  8. Оптимальным для бактериологического исследования является доставка проб любого биологического материла в течение 1,5 ч после взятия образца. Если соблюдение этого требования не может быть обеспечено, рекомендуется использовать различные приспособления со специальной транспортной средой. Основные требования к транспортировке и хранению проб для бактериологического исследования приведены в табл. 2.21.

    Таблица 2.21. Условия транспортировки и хранения различных проб биоматериала для бактериологического исследования
    Биоматериал Условия взятия и транспортировки Температура хранения

    Кровь

    Два флакона (для аэробов и анаэробов) для гемокультуры

    Комнатная температура или 37 °С

    Гнойный материал. Спинномозговая жидкость.

    Плевральная, перикардиальная, перитонеальная, синовиальная жидкость

    Быстрая транспортировка: оставить образец в шприце (закупоренном) в анаэробных условиях. Отсроченная транспортировка - использовать транспортную среду

    Комнатная температура, не инкубировать, защищать от охлаждения

    Бронхоальвеолярный лаваж.

    Мокрота, другие секреты.

    Кал

    Быстрая транспортировка (1,5-3,0 ч)

    Охлаждать

    Моча

    Быстрая транспортировка в стерильном контейнере

    Комнатная температура или 37 °С

    Тампон с образцом:

    • из глаз;

    • ушей;

    • полости рта;

    • гортани;

    • носа;

    • уретры;

    • шейки матки;

    • прямой кишки;

    • раневой поверхности

    Тампон в транспортной среде (время транспортировки >4 ч)

    Комнатная температура, не инкубировать

    1. Медицинская сестра должна знать, что даже наиболее совершенная транспортная система (среда) не может заменить быструю доставку проб биологического материала в лабораторию для получения достоверных результатов исследования.

    2. При назначении исследований по выявлению вирусов в биологическом материале (крови, отделяемом органов) серологическими методами, решающее значение имеет время взятия проб. Обычно материал собирают немедленно после выявления симптомов заболевания (если возможно, в первые 3 дня). Общим правилом должно быть доставка взятого биоматериала в лабораторию как можно быстрее, при температуре 4 °С в отдельном контейнере. В этих условиях вирусы остаются стабильными в течение 2-3 дней. Для анализа используют кровь, образцы на тампонах (глаза, нос, горло, уретра), смывы из носоглотки, везикулярную жидкость при кожных поражениях, кал, мочу и спинномозговую жидкость.

2.3.2.4. Технологическая операция подготовки и доставки проб крови и собранного биологического материала в лабораторию

Важнейшим моментом в обеспечении качества клинических лабораторных исследований является подготовка и транспортировка проб биологического материала в лабораторию. Для того чтобы быть уверенным в качестве результатов анализов, эта процедура должна быть строго стандартизирована в виде СОП, включающего манипуляции по упаковке, обеспечению условий сохранности и условий транспортировки проб крови. В каждом ЛПУ должен быть назначен ответственный специалист за транспортировку проб крови в КДЛ или другую лабораторию при передаче определенных видов анализов на аутсорсинг или централизованную лабораторию.

После взятия проб крови пробирки необходимо поместить вертикально в штатив и подготовить к транспортировке в КДЛ. Первичная подготовка проб крови к транспортировке включает соблюдение необходимого времени инкубации, обеспечение необходимых условий и времени их хранения и центрифугирования. Перечень процедур по подготовке проб крови к транспортировке зависит от вида лабораторных исследований, используемых вакуумных пробирок, времени и условий транспортировки. Например, проба крови, взятая для исследования на АКТГ, ангиотензин I, II, ренин, альдостерон, гомоцистеин, кальцитонин, остеокальцин, должна быть сразу после взятия помещена в лед и как можно скорее отцентрифугирована. Если взята артериальная кровь для исследования газового состава крови, то емкость с кровью должна быть хорошо закупорена, погружена в ледяную воду и как можно скорее доставлена в лабораторию, так как гликолиз в эритроцитах и лейкоцитах вызывает снижение рН крови, если проба крови будет находиться около 20 мин при комнатной температуре.

Общее правило - доставить материал в лабораторию как можно быстрее. Например, чем раньше сыворотка отделена от эритроцитов, тем меньше влияние гликолиза (значит, будет меньше влияния на содержание глюкозы, фосфора и некоторых ферментов). Уровень билирубина, например, снижается под воздействием света (особенно яркого солнечного). Действие света повышает активность щелочной фосфатазы. Фактор времени является важным и в бактериологии (ряд бактерий гибнет при комнатной температуре).

Если лечебные отделения ЛПУ, где осуществляется взятие и сбор биологического материала, находятся рядом с лабораторией, то время доставки должно укладываться во временные интервалы, представленные ниже. Пробирки с кровью помещают в специальные контейнеры с надписью: «Пробы для диагностических исследований» и хранят вертикально в штативе, избегая встряхивания.

Таблица 2.22. Сроки доставки проб в лабораторию
Параметр Максимально допустимое время с момента взятия материала, мин

Общий анализ мочи

90

Паразитология:

Немедленно

  • кал на амебиаз

Общий анализ крови

60

Биохимия:

  • глюкоза

20

  • ферменты

30

  • К, Na, Cl, НСО3

30

Коагулограмма

45

Микробиология:

  • рутинная бактериологическая культура

90

  • тампоны (мазок) со средой

90

  • тампоны (мазок) без среды

20

  • жидкие образцы (кровь, моча и т.д.)

40

Нормативы времени доставки должны быть в каждом отделении ЛПУ. Если эти сроки нарушаются, то пробу берут заново. Проба, которая поступает в лабораторию слишком поздно, взята напрасно: ее не будут исследовать!

Время доставки биоматериала в лабораторию должно быть четко определено и постоянно контролироваться. Длительность сохранения проб до и после отделения клеток крови для наиболее распространенных биохимических анализов представлена в табл. 2.23.

Таблица 2.23. Длительность сохранения проб до и после отделения клеток для наиболее распространенных биохимических показателей

Биохимический показатель

Цельная кровь

Плазма или сыворотка

25 °С

4-8 °С

25 °С

4-8 °С

Р-Хорионический гонадотропин

2 ч

4 ч

24 ч

2 дня

Мочевая кислота

4 ч

4 ч

3 дня

5 дней

Альбумин

3 дня

7 дней

7 дней

30 дней

Аланиновая трансаминаза

2 ч

3 дня

3 дня

7 дней

Амилаза

4 ч

4 ч

7 дней

30 дней

Аспарагиновая трансаминаза

2 ч

3 дня

3 дня

7 дней

Простатоспецифический антиген (ПСА)

4 ч

4 ч

1 день

1 день

Билирубин общий и связанный

4 ч

4 ч

4 ч

7 дней

Кальций

2 дня

2 дня

7 дней

22 дня

Хлориды

4 ч

4 ч

7 дней

4 нед

Холестерин

48 ч

48 ч

7 дней

7 дней

КК

4 ч

4 ч

4 ч

5 дней

Креатинин

4 ч

4 ч

7 дней

30 дней

Железо и железосвязывающая способность

4 ч

4 ч

4 ч

7 дней

Ферритин

4 ч

4 ч

Избегать

7 дней

Фруктозамин

4 ч

4 ч

7 дней

3 мес

Фолликулостимулирующий гормон

4 ч

4 ч

7 дней

7 дней

ГГТП

4 ч

4 ч

7 дней

7 дней

Глюкоза

2 ч

4 ч

8 ч

3 дня

Гликозилированный гемоглобин

4 ч

4-7 дней

-

-

Холестерин ЛПВП

3 ч

Избегать

Избегать

4 дня

ЛДГ

2 ч

Избегать

2 дня

Избегать

Лютеинизирующий гормон

4 ч

4 ч

14 дней

14 дней

Эстрадиол

2 ч

Избегать

Избегать

Избегать

Щелочная фосфатаза

3 дня

3 дня

4 дня

4 дня

Фосфор неорганический

4 ч

4 ч

3 дня

7 дней

Калий

2 ч

Избегать

6 нед

6 нед

Общий белок

4 ч

4 ч

4 ч

3 дня

Натрий

2 дня

2 дня

4 дня

7 дней

Т3 общий

2 дня

2 дня

1-2 нед

1-2 нед

Т3 свободный

2 дня

2 дня

1-2 нед

2 нед

Т4 общий и свободный

2 дня

2 дня

1-2 нед

1-2 нед

Трансферрин

4 ч

7 дней

8 ч

3 дня

Триглицериды

4 ч

4 ч

3 дня

7 дней

Мочевина

4 ч

4 ч

1 день

5 дней

Витамин В12

4 ч

4 ч

4 ч

3 нед

В общем случае пробы для биохимических исследований могут храниться при комнатной температуре (22-25 °С) не более 2 ч. Пробирки с кровью для получения сыворотки с наполнителем (веществом, ускоряющим образование и ретракцию сгустка) или для получения плазмы с антикоагулянтом помещают в маленькие транспортные холодильники. В течение короткого времени их можно хранить при комнатной температуре, но лучше сразу поставить в холодильник или даже центрифугировать. Надо исключить, в том числе при перевозке в автомобиле, хранение проб в местах с неопределенной температурой, например, около нагревательного прибора, а также действие яркого света. Некоторые виды исследований требуют специальных условий, которые надо заранее обсудить со специалистами лаборатории.

Если между взятием крови на лабораторные исследования, материалом для которых служит сыворотка, и доставкой ее в лабораторию пройдет более 2 ч, то материал следует отцентрифугировать в течение 30 мин после взятия крови до транспортировки, а плазма или сыворотка должны быть перенесены в идентифицированную пробирку без антикоагулянта или наполнителя. Однако лучше использовать вакутейнеры или моноветты с гелем.

При отправке проб мочи в лабораторию медицинская сестра, собирающая материал, должна убедиться, что все собрано правильно, и проставить на заявке время сбора проб мочи.

Моча является хорошей средой для роста бактерий. Любые бактерии, находящиеся в моче в момент ее сбора, будут продолжать размножаться в емкости, где она находится, что даст ложноположительный результат при анализе. Именно поэтому важно, чтобы моча была доставлена в лабораторию и исследована не позднее чем через несколько часов после ее сбора. Если отправка в лабораторию задерживается, мочу следует хранить в холодильнике, так как низкая температура замедляет рост бактерий.

Осадок мочи нужно исследовать в пределах 2 ч после мочеиспускания; пробы должны храниться при комнатной температуре (22-25 °С). Если в течение 2 ч анализ выполнить невозможно, пробу помещают в холодильник на срок не более 6 ч и затем проводят исследование. При этом некоторые компоненты, в частности клетки, могут быть разрушены; кроме того, выпадение уратов в осадок может закрыть все поля зрения при микроскопии. Безусловно, эти факторы повлияют на качество результата общеклинического исследования мочи. Сосуды с мочой должны быть хорошо закрыты и защищены от света.

Время сохранения проб мочи для наиболее распространенных исследований мочи приведено в табл. 2.24.

Таблица 2.24. Максимально допустимое время сохранения проб мочи для наиболее распространенных лабораторных исследований
Исследование 25 °С 4-8 °С

Разовые порции мочи:

  • полное клиническое исследование мочи

2 ч

6 ч

  • микроальбуминурия

4 ч

14 дней

  • проба на беременность

4 ч

3 дня

Суточная моча:

  • мочевая кислота

3 дня

Избегать охлаждения

  • кальций

5 дней

5 нед

  • креатинин

3 дня

5 дней

  • фосфор

4 ч

5 дней

  • калий

4 дня

7 дней

  • белок

4 ч

3 дня

  • натрий

24 ч

7 дней

Образцы кала, собранные в пластиковые контейнеры, перед транспортировкой помещают в полиэтиленовые пакеты и в таком виде доставляют в лабораторию.

Если срок доставки проб превышает 45 мин после их сбора, то они должны перевозиться в портативных холодильниках с надписью: «Пробы для диагностических исследований»; внутри холодильника во все времена года температура должна быть 10-15 °С. Специалисты лечебного учреждения, обеспечивающего транспортировку, должны убедиться, что холодильных элементов достаточно. В лаборатории, принимающей пробы, периодически проверяют температуру в транспортных холодильниках.

При транспортировке инфекционного материала необходимо использовать дополнительный вторичный контейнер для предотвращения любого попадания материала во внешнюю среду при каком-либо механическом повреждении.

При упаковке контейнера с сухим льдом необходимо обеспечить возможность для выхода углекислого газа наружу. В противном случае он будет скапливаться внутри упаковки, что может привести к взрыву.

За организацию доставки проб биоматериала в лабораторию отвечает главная медицинская сестра ЛПУ. Непосредственно взятие крови венепункцией, сбор биоматериала и его доставку в лабораторию осуществляют медицинские сестры лечебных отделений ЛПУ (лучше, если это будет процедурная медицинская сестра).

Требования к подготовке и транспортировке проб биологического материала в лабораторию, а также временные сроки транспортировки регламентируют следующие документы:

  1. ГОСТ Р 53079.4-2008;

  2. ГОСТ Р ИСО 15189-2009;

  3. методические рекомендации «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови».

Ниже приведены основные положения СОП по подготовке и доставке проб биологического материала, которые могут служить основой для разработки более детальных СОП в каждом ЛПУ.

СОП по доставке проб биологического материала в лабораторию

Общие положения

Транспортировка проб биологического материала в лабораторию является важнейшим этапом в обеспечении качества клинических лабораторных исследований.

  1. Общее правило - доставить материал в лабораторию как можно быстрее.

  2. Для транспортировки проб крови и другого биоматериала необходимо использовать специально предназначенные и промаркированные для этого термоконтейнеры отдельно для проб крови, мочи и другого биоматериала, а также бактериологического исследования.

  3. Термоконтейнеры должны обеспечивать соответствующие температурные режимы в зависимости от вида лабораторных исследований. Если для транспортировки в термоконтейнере необходимо поддерживать температуру 2-8 °С, то в них должны быть вложены хладагенты в нужном количестве. Для поддержания температуры при транспортировке в диапазоне 37 °С термоконтейнеры необходимо оборудовать термоэлементами. Температурный режим в термоконтейнерах должен периодически (1 раз в 5 дней) контролироваться на уровне устанавливаемых в него проб с биологическим материалом, необходимо вести журнал по контролю за температурным режимом термоконтейнеров.

  4. Ответственность за соблюдение правил и условий транспортировки проб биологического материала в лабораторию несет медицинская сестра отделения.

  5. Пробирки с кровью на гематологические, биохимические, коагулологические, гормональные и серологические анализы помещают вертикально в штатив, избегая встряхивания, а затем в специальные контейнеры с надписью: «Пробы крови для лабораторных исследований». В термоконтейнере должна поддерживаться температура 2-8 °С. По возможности пробы крови для получения сыворотки должны быть отцентрифугированы.

  6. Пробирки с кровью для определения АКТГ, ангиотензина I, II, ренина, альдостерона, гомоцистеина, кальцитонина, остеокальцина должны быть помещены в контейнер со льдом, который устанавливают в специальный контейнер с надписью: «Пробы крови для лабораторных исследований» с температурой внутри 2-8 °С.

  7. Бланки направлений на лабораторные исследования должны транспортироваться отдельно от проб крови.

  8. Пробы мочи и другого биоматериала на общеклинические, биохимические, гормональные и цитологические анализы помещают вертикально в специальный контейнер с надписью: «Пробы биоматериала на общеклинические, биохимические, гормональные и цитологические анализы». В термоконтейнере должна поддерживаться температура 10-12 °С.

  9. Образцы кала, собранные в пластиковые контейнеры, перед транспортировкой помещают в полиэтиленовые пакеты и в таком виде доставляют в лабораторию.

  10. Пробы для бактериологического исследования помещают в дополнительный вторичный контейнер для предотвращения любого попадания биоматериала во внешнюю среду при каком-либо механическом повреждении и только затем в контейнер с надписью: «Пробы для бактериологического исследования». В термоконтейнере должна поддерживаться температура 2-8 °С. Пробы крови, чашки Петри с посевом на коклюш, биоматериал для посева на N. meningitidis помещают в термоконтейнер с температурой внутри 35-37 °С.

  11. Специалисты лаборатории должны осуществлять регулярный контроль (не реже 1 раза в 5 дней) за температурным режимом в термоконтейнерах, используемых для доставки проб крови в лабораторию.

Условия и время транспортировки

  1. При транспортировке контейнеры с кровью и другим биоматериалом должны быть плотно закрыты, прочно установлены, чтобы предотвратить их опрокидывание.

  2. При транспортировке контейнеры должны быть защищены от воздействия света (особенно яркого солнечного) и установлены вдали от нагревательных элементов.

  3. Пробы крови и другого биоматериала следует как можно скорее доставить в лабораторию. Оптимальные сроки доставки проб биоматериала приведены выше.

  4. Доставленный в лабораторию биологический материал должен быть немедленно передан специалистам лаборатории с указанием в журнале времени доставки проб.

2.3.2.5. Обеспечение безопасности при сборе и транспортировке проб биологического материала

Все ЛПУ должны иметь собственные утвержденные правила техники безопасности при сборе и транспортировке биологического материала, основанные на положении, что все собираемые образцы потенциально опасны для окружающих. Медицинские сестры, участвующие в этих процедурах, должны знать эти правила техники безопасности.

Среди многих опасностей, которые могут таить пробы биологического материала, медицинским сестрам особо следует обращать внимание на ВИЧ и вирусные гепатиты, которые способные передаваться с инфицированной кровью. Туберкулезом можно заразиться при контакте с мокротой больного, инфекцией Helicobacter pylori во время эзофагогастродуоденоскопии, а желудочно-кишечными инфекциями - при контакте с зараженными фекалиями. Ниже приведены общие положения техники безопасности, которые необходимо соблюдать медицинской сестре при сборе и транспортировке биологического материала.

  1. Для снижения риска инфицирования при взятии проб биологического материала необходимо строго выполнять все пункты инструкции.

  2. Для того чтобы снизить риск инфицирования при взятии проб биологического материала, следует использовать одноразовые хирургические перчатки.

  3. Необходимо соблюдать все требования по хранению вакуумных пробирок и игл. Преимущественно через них и контактирует медицинская сестра с потенциально инфицированной кровью больного.

  4. Большую и часто серьезную опасность представляет собой нарушение целостности приспособлений для взятия проб, что можно предотвратить, если использовать одноразовые фирменные приспособления для взятия (сбора) проб. В случае отсутствия таких приспособлений в ЛПУ необходимо выполнять следующие правила: не заполнять пробирку биоматериалом доверху, использовать надежные колпачки (пробки) для их закрытия.

  5. Если известно, что больной инфицирован ВИЧ или вирусами гепатита, при взятии проб используют дополнительные меры защиты (защитные очки, халаты). Пробы от такого пациента должны быть четко маркированы несколькими способами (например, штампом на бланке-заявке «ВИЧ-инфицирован» или надписью красным фломастером на бланке-заявке и этикетке пробирки).

Медицинская сестра должна понимать, что проблема биологической безопасности, помимо собственной безопасности, имеет еще одну составляющую - безопасность пациента. Безопасность пациента является краеугольной составляющей обеспечения качественной медицинской помощи. В связи с этим стандартизация и правильное выполнение процедур взятия и сбора биоматериала, а также соблюдение общих положений техники безопасности обеспечивают и безопасность пациента.

2.3.3. ЛАБОРАТОРНАЯ ЧАСТЬ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА

С момента доставки биоматериала в лабораторию начинается лабораторная часть преаналитического этапа производства результатов лабораторных анализов, который состоит из целого ряда технологических операций.

Если на внелабораторном преаналитическом этапе основное значение имели технологические операции составления заявки на лабораторные исследования, подготовки пациента к исследованиям, взятия (сбора) биоматериала и его транспортировки в лабораторию, то на лабораторном этапе не менее важное значение имеют следующие технологические операции:

  • прием проб биологического материала;

  • регистрация проб;

  • сортировка проб;

  • подготовка проб биологического материала к исследованиям.

2.3.3.1. Прием проб биологического материала

В КДЛ на приеме проб крови и собранного биоматериала обычно работает наиболее опытный фельдшер-лаборант или технолог. Эта процедура в лаборатории должна быть стандартизирована в виде утвержденного у главного врача ЛПУ СОП.

Специалист лаборатории при приеме материала обращает внимание на качество доставленных проб и полноту заполнения заявки на исследование. Специалист лаборатории проводит проверку:

  1. соответствия бланка-заявки на лабораторные анализы взятым пробам;

  2. соответствия бланка-заявки и данных маркировки проб крови на этикетке пробирки;

  3. полноты данных о пациенте, диагнозе, враче, назначившем анализы, времени взятия проб крови;

  4. на выявление поврежденных проб, проб крови, взятых в несоответствующую вакуумную пробирку, с недостаточным объемом крови, с неадекватным соотношением крови и антикоагулянта, проб с гемолизом, проб со сгустками крови в пробирках с антикоагулянтом.

Если в бланке-заявке невозможно разобрать фамилию пациента, не указан диагноз или отделение, из которого доставлен биоматериал, не перечислены тесты, которые необходимо выполнить, нет фамилии врача, назначившего анализы, и медицинской сестры, проводившей взятие крови, и такой биоматериал принят лабораторией, то в дальнейшем специалисты лаборатории тратят много времени на выяснение, чья эта кровь, откуда доставлена, что необходимо выполнить, куда направить результаты. В конечном итоге большинство таких исследований не выполняется или их результаты теряются.

Основным средством избежать таких осложнений является разработка четких критериев отказа в приеме биоматериала на исследование. Такие критерии должны быть обязательно утверждены у руководителя лечебного учреждения, изучены на занятиях с врачами-клиницистами, медицинскими сестрами и специалистами лаборатории и строго выполняться всеми постоянно Их перечень должен постоянно находиться у специалиста лаборатории, принимающего пробы биологического материала. Медицинские сестры ЛПУ несут полную ответственность за правильность взятия биоматериала, его оформление и доставку в лабораторию. Основные критерии для отказа в принятии лабораторией биоматериала на исследование приведены ниже. Все медицинские сестры должны хорошо знать эти критерии и не направлять в лабораторию пробы с биологическим материалом, подпадающие под действие этих критериев.

Критерии отказа в приеме проб регламентированы следующими документами:

  1. ГОСТ Р 53079.4-2008;

  2. ГОСТ Р ИСО 15189-2009;

  3. методическими рекомендациями «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови».

Критерии для отказа в принятии лабораторией биоматериала на исследование

  1. Расхождение между данными заявки и этикетки (инициалы, дата, время и т.д.).

  2. Отсутствие этикетки на шприце или пробирке.

  3. Невозможность прочесть на заявке и/или этикетке паспортные данные пациента, отсутствие названия отделения, номера истории болезни, фамилии лечащего врача, подписи процедурной сестры, четкого перечня необходимых исследований.

  4. Гемолиз (за исключением исследований, на которые наличие гемолиза не влияет).

  5. Взятый материал находится в несоответствующей емкости, то есть материал взят не с тем антикоагулянтом, консервантом и др.

  6. Поврежденный контейнер с биоматериалом.

  7. Наличие сгустков в пробирках с антикоагулянтом.

Медицинская сестра должна понимать важность аккуратно заполненных направлений на анализы, тщательной маркировки образцов биоматериала, полученных своевременно, методически правильно и быстро доставленных в лабораторию. Лечение, основанное на результатах анализов, полученных при использовании ошибочно маркированных или неправильно взятых пробах, может принести огромный вред, особенно если больному оказывается неотложная помощь. Более того, даже если ошибка будет обнаружена, драгоценное время будет упущено, тогда как несколько минут внимания и обдумывания в начале работы могли бы предотвратить эти нежелательные последствия.

После приема проб специалист лаборатории должен подписать акт о приеме проб для анализов, в котором указывается время принятия проб, количество и виды вакуумных пробирок и других контейнеров, количество направлений, со специалистом, осуществляющим доставку проб крови в лабораторию.

2.3.3.2. Регистрация проб биологического материала

Регистрация проб биологического материала в лаборатории предусматривает введение всей информации о пациенте, страховой компании, пробе (виде биоматериала), дате взятия и доставки и т.д., а также перечне лабораторных исследований. Согласно требованиям ГОСТ Р ИСО 15189-2009, в лаборатории должен быть утвержденный у главного врача СОП по регистрации проб.

Регистрация проб в лаборатории может осуществляться несколькими способами:

  1. вручную в журнале приема проб;

  2. в ЛИС.

Регистрация проб в ЛИС может быть организована:

  1. ручным вводом заявок на лабораторные исследования в ЛИС, включая паспортные и другие данные пациента, номер страхового полиса, страховую компанию, перечень лабораторных анализов;

  2. использованием машиночитаемых форм бланков-заявок;

  3. использованием удаленной (в процедурных кабинетах ЛПУ) регистрации и штрихкодирования проб, в лаборатории проводится лишь считывание штрихкодов с доставленных проб;

  4. комбинированный подход (используются три приведенных выше подхода в любом сочетании и пропорции).

При любом способе регистрации проб необходимо указывать время их доставки в лабораторию.

2.3.3.3. Сортировка проб биологического материала

Основной целью сортировки проб биологического материала является их разделение на пробы, не нуждающиеся в дополнительной подготовке к проведению анализов, и пробы, требующие определенных манипуляций по их подготовке к исследованиям.

Согласно требованиям ГОСТ Р ИСО 15189-2009, в лаборатории должен быть утвержденный у главного врача СОП по сортировке проб.

Сортировку проб биологического материала может производить специалист лаборатории, осуществляющий прием проб, другой специалист лаборатории, специально назначенный для проведения этой процедуры; сортировку могут проводить специалисты с каждого технологического процесса или отдельной лаборатории (отдела лаборатории), например, технологического процесса выполнения гематологических, биохимических, коагулологических и других исследований. Лучшим вариантом для лаборатории является тот, при котором сортировку проводит специалист, осуществляющий прием проб. Этот специалист при приемке исходно разделяет пробы на не нуждающиеся в дополнительной подготовке к проведению анализов и требующие дополнительных процедур и размещает их в отдельные штативы и лотки. Например, пробы крови с одинаковым цветом крышек вакуумных пробирок, предназначенные для определенного вида анализов, размещаются в аналогичного цвета штативы.

Специалист лаборатории, осуществивший прием и/или сортировку проб, немедленно должен передать их на соответствующие анализаторы для анализа.

Если процесс сортировки проб не упорядочить, то в лаборатории возникает неуправляемая ситуация, когда пробы самостоятельно забираются специалистами соответствующего технологического процесса (анализатора) в произвольном порядке. Такая неупорядоченная организация сортировки проб и передача их на анализаторы приводит к потере проб, времени, простою анализаторов, невозможности установить ответственного за принятие проб с дефектами.

2.3.3.4. Индикаторы качества преаналитического этапа

В настоящее время все больше внимания уделяется качеству процедур на преаналитическом этапе. Это обусловлено тем, что на преаналитическом этапе лабораторные ошибки встречаются наиболее часто и связаны с нарушением технологии взятия проб биологического материала для исследований, взятие проб в несоответствующие контейнеры и ошибками при заполнении бланков-заявок. Преаналитические ошибки составляют до 70% всех ошибок, допущенных при проведении лабораторных исследований (Plebani М., 2014). Их спектр достаточно широк. Так, Колледж американских патологов провел анализ 114 934 амбулаторных заявок на лабораторные исследования, в 5514 заявках (4,8%) были выявлены ошибки заполнения бланков-заявок и ввода информации в ЛИС (Valenstein P., Meier F., 1999). При этом в 1,4% случаев один или несколько тестов указанных в бланке-заявке не были введены в ЛИС, в 1,1% случаев, по крайней мере, один тест был заказан в ЛИС, но не указан в бланке-заявке, 1,9% случаев содержали одно или несколько несоответствий данных врача-клинициста в бланке-заявке и введенных в ЛИС. M. Khoury и соавт. (1996) показали, что частота ошибок, связанных с ненадлежащим заполнением бланков-заявок на лабораторные тесты, составляла до 39%, а комплекс мероприятий по снижению таких ошибок не позволил добиться безошибочного заполнения бланков-заявок выше 85% (Khoury M. et al., 1996).

Основные усилия для снижения числа ошибок на преаналитическом этапе необходимо сосредоточить на качественном проведении его процедур. Качество процедур преаналитического этапа можно оценить, только имея индикаторы (критерии) их оценки. Рабочая группа по лабораторным ошибкам и безопасности пациентов (Laboratory Errors and Patient Safety - LEPS) Международной федерации клинической химии и лабораторной медицины предлагает приведенные в табл. 2.25 индикаторы качества преаналитического этапа.

Таблица 2.25. Индикаторы качества преаналитического этапа

Индикатор качества

Уровень выполнения

5 баллов - оптимально

4 балла - желательно

2 балла - минимально

0 баллов - неприемлемо

Преаналитический этап

Количество заявок на анализы с клиническим диагнозом (запросом), %

>87

58-87

29-57

<29

Количество заявок на анализы без данных врача, %

<5

5-6

6,1-8,0

>8

Количество непонятных заявок на анализы, %

<0,2

0,20-0,25

0,26-0,30

>0,3

Количество заявок на анализы с ошибочной идентификацией пациента, %

<0,4

0,4-0,5

0,51-0,60

>0,6

Количество заявок на анализы с ошибочной идентификацией врача, %

-

<0,1

-

-

Количество заявок на анализы с ошибками, относящимися к вводу (регистрации) тестов, %

<0,2

0,20-0,25

0,26-0,30

>0,3

Количество потерянных/неполученных проб, %

<0,2

0,2-0,4

0,41-0,60

>0,6

Количество проб, собранных в несоответствующий контейнер, %

<0,07

0,07-1,13

1,14-0,20

>0,2

Количество проб с гемолизом (биохимия), %

<1

1,0-1,5

1,6-2,0

>2

Количество проб с антикоагулянтом со сгустком, %

<0,5

0,5-1,0

1,1-2,0

>2,1

Количество проб с недостаточным объемом, %

<0,4

0,4-0,8

0,81-1,20

>1,2

Количество проб с неадекватным соотношением крови и антикоагулянта, %

<0,2

0,2-0,3

0,31-0,40

>0,4

Количество проб, поврежденных при транспортировке, %

-

<0,1

-

-

Количество неправильно маркированных проб, %

<0,07

0,07-1,15

1,16-0,20

>0,2

Количество проб с нарушением условий транспортировки, %

-

<0,07

-

-

2.3.3.5. Подготовка биологического материала к проведению исследований

Подготовка доставленного биоматериала к исследованиям включает ряд повторяющихся действий, таких как центрифугирование проб, перенос полученного материала в специальные пробирки или емкости, приготовление и окраска мазков, распределение подготовленного материала по технологическим процессам для проведения исследований. Постоянная оценка всех операций, проводимых во время подготовки доставленного биоматериала к исследованиям, является важным компонентом непрерывного повышения качества клинических лабораторных исследований. О важности технологической операции подготовки материала для проведения исследований свидетельствует и то, что от 50 до 70% лабораторного времени уходит на подготовку к исследованиям доставленного биоматериала.

В КДЛ проводится большое количество процедур по подготовке проб крови к исследованию. К таким процедурам относятся приготовление мазков крови, их фиксация и окраска, аликвотирование, выделение определенных типов клеток, получение плазмы с определенными свойствами и, конечно, центрифугирование.

Достижения в технологии привели к появлению и развитию механических лабораторных устройств, управляемых компьютерами на этапе подготовки биоматериала к исследованиям. К таким устройствам относятся сканирующие приспособления, аппараты автоматического сбора проб, для окраски мазков, станции разлива жидкого биоматериала (сыворотка, плазма, моча) во вторичные пробирки, которые непосредственно используются в автоанализаторах (см. главу 5).

2.3.3.5.1. Центрифугирование проб

Центрифугированию подвергается различный материал, поэтому эта процедура должна быть строго стандартизована и изложена в виде СОП, в котором отражают тип центрифуги, температуру центрифугирования, величину центробежной силы, необходимой для разделения пробы, длительность центрифугирования.

Требования к центрифугированию регламентируют:

  1. ГОСТ Р ИСО 15189-2009;

  2. методические рекомендации «Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови».

Общим правилом для всех видов проб является требование как можно быстрее отцентрифугировать доставленный материал. Для биохимических исследований (сыворотка) практически приемлемым является интервал 2 ч между взятием крови и центрифугированием. Более длительный контакт сыворотки с форменными элементами крови (со сгустком) приводит к значительным изменениям таких показателей, как уровень глюкозы, калия, фосфора, креатинина, активности АСТ, АЛТ.

Центрифугирование - одна из самых распространенных процедур подготовки проб крови к проведению анализа. Оно служит для отделения жидкой части крови от клеток. Если центрифугирование выполнено с ошибками, то:

  • осаждение клеток будет неполным, объем плазмы или сыворотки, получаемой для анализа, уменьшится;

  • при использовании пробирок с гелем, если количество оборотов в минуту меньше, чем необходимо, гель не поднимется по стенкам пробирки и не будет выполнять роль разделительного элемента;

  • если количество оборотов больше, чем необходимо, могут повреждаться клетки, что также скажется на результатах анализа.

Центрифугированию подвергаются различные пробы крови, поэтому эта процедура должна быть строго стандартизована и изложена в виде СОП, где отражают тип центрифуги, температуру центрифугирования, величину центробежной силы, необходимой для разделения пробы, длительность центрифугирования.

Перед центрифугированием проверяют, все ли вакуумные пробирки, стаканы для них, вкладыши одинаковы по весу, форме и величине. Это делается для того, чтобы «плечи» ротора центрифуги были уравновешены. Если количество крови (мочи или другого материала) в пробирках разное, то подбирают одинаковые пары пробирок и каждую из них устанавливают в симметричные противоположные гнезда ротора центрифуги. При необходимости соблюдения симметрии можно использовать пробирку с нужным количеством воды в противоположном гнезде.

Объемы, которые можно центрифугировать, варьируют в зависимости от модели центрифуги и конструкции ее головки. Перед центрифугированием необходимо принять во внимание следующие факторы: объем жидкости в одной пробирке, количество пробирок, помещенных одновременно в центрифугу, максимальную центробежную силу, которую может дать центрифуга, продолжительность срока службы.

Для промышленно выпускаемых центрифуг в паспорте дана номограмма, по которой проводится сопоставление оборотов в минуту и величиной центробежной силы для каждого ротора. Общие рекомендации по времени центрифугирования и относительной центробежной силе для различных типов вакуумных пробирок приведены в табл. 2.26.

Таблица 2.26. Условия центрифугирования вакуумных пробирок
Тип пробирки Рекомендуемая величина центробежной силы, g Рекомендуемое время центрифугирования, мин

Пробирки для исследования сыворотки

1300

10

Пробирки для исследования сыворотки с разделительным гелем

1500-2000

10

Пробирки для исследования плазмы с гепарином

1300

10

Пробирки для исследования плазмы с гепарином и разделительным гелем

1500-2000

10

Пробирки c цитратом натрия для получения плазмы стеклянные и пробирки, содержащие комплексный наполнитель CTAD

1500

15

Пробирки c цитратом натрия для получения плазмы пластиковые

2000-2500

10-15

Пробирки с ЭДТА для получения плазмы

1300

10

Пробирки для исследования уровня глюкозы

1300

10

Пробирки для молекулярной диагностики с ЭДТА и разделительным гелем

1100

10

Пробирки для молекулярной диагностики для отделения мононуклеарных клеток

1500-1800

20

Для получения плазмы на исследование АКТГ, ангиотензина I, II, ренина доставленную во льду кровь сразу центрифугируют при 1400 g и 4 °С (рефрижераторная центрифуга), после чего плазму отделяют от форменных элементов и переносят в полипропиленовые контейнеры для хранения при температуре -70 °С. В этих условиях образец стабилен в течение 1 мес.

После центрифугирования фельдшер-лаборант зрительно оценивает качество полученной сыворотки и плазмы, чтобы исключить установку в автоанализатор проб с нитями фибрина, хилезных и проб с гелеобразной консистенцией. Такой дополнительный контроль позволяет избежать засорения пробозаборника автоанализатора.

Для получения осадка мочи (экссудата, транссудата, синовиальной жидкости) на микроскопическое исследование пробирки центрифугируют при 800 g в течение 10 мин. Центрифугирование проводят в обычной центрифуге при комнатной температуре.

При выборе оптимальных условий центрифугирования необходимо ориентироваться на центробежную силу (g), а не на скорость вращения ротора (об/мин). К паспорту центрифуги должна быть приложена таблица, указывающая связь между числом оборотов и величиной центробежной силы. Если ее нет, можно воспользоваться следующей формулой (Kocnig A.S. et al., 1982):

g = 1,118 x 0,000 01 r x n2,

где r - радиус центрифуги (расстояние в сантиметрах между осью ротора и центром пробирки в гнезде центрифуги); n - число оборотов в 1 мин.

Калибровка центрифуги является частью непрерывного процесса совершенствования качества лабораторных исследований. Именно поэтому не реже 1 раза в год необходимо проверять скорость вращения центрифуги. Обычно для таких целей инженер с помощью тахометра и таймера проверяет соответствие заданного числа оборотов центрифуги и времени таймера реальным параметрам.

Критерии оценки качества центрифугирования:

  • соответствие времени и условий центрифугирования изложенным в инструкции для данного вида биоматериала;

  • качество разделения фракций крови или другого материала (полученной сыворотки, плазмы, осадка мочи и т.д.);

  • соответствие заданных параметров центрифугирования (времени центрифугирования, силы ускорения) реальным параметрам.

В ряде случаев после центрифугирования выявляют наличие гемолиза или плазма/сыворотка бывают в той или иной степени мутными. Гемолиз может оказать существенное влияние на качество результатов лабораторных анализов (см. выше).

2.3.3.5.2. Приготовление мазков крови

Необходимой предпосылкой для правильного учета морфологических характеристик клеток крови является правильно приготовленный и хорошо окрашенный мазок. Доставленную в вакуумных пробирках кровь с ЭДТА перемешивают в течение 15 мин на специальных мешалках. На дно пластикового лотка помещают сухое, обезжиренное предметное стекло в горизонтальном положении, после чего на вакуумную пробирку плотно надевают специальную насадку для приготовления мазков таким образом, чтобы игла насадки проколола крышку вакуумной пробирки. Вакуумную пробирку с насадкой прижимают к чистому, обезжиренному предметному стеклу. Легким нажатием указательного пальца на вакуумную пробирку через капилляр в насадке выдавливают каплю крови, которую наносят на предметное стекло на расстоянии 1,5 см от узкого края. Широкое основание насадки на вакуумной пробирке помещают перед каплей крови под углом 45° к предметному стеклу и выполняют движение назад, к капле, с тем, чтобы кровь растеклась равномерно по ребру насадки. Затем быстро и легко, без нажима, ведут вакуумную пробирку с насадкой справа налево, равномерно распределяя кровь по предметному стеклу. Вся капля крови должна быть использована для мазка. Для исследования готовят не менее двух мазков из каждой вакуумной пробирки. После приготовления мазка насадку снимают с вакуумной пробирки, помещают в дезинфицирующий раствор, а затем утилизируют. Пластиковый лоток и поверхность рабочего стола также обеззараживают дезинфицирующим раствором.

Хорошо приготовленный мазок должен отвечать следующим условиям (приложение 1 к приказу Минздрава СССР от 23 апреля 1985 г. № 545):

  • он начинается на 1,0-1,5 см от узкого края предметного стекла и оканчивается в 2-3 см от его противоположного края;

  • мазок должен быть равномерной толщины, а не волнообразным; хороший мазок крови толще всего вначале, постепенно утончается и заканчивается в виде следа, как бы оставленного тонкой щеткой;

  • мазок должен быть «свободным с края», то есть слой крови не должен достигать длинного края стекла, а между ним и краем должно оставаться расстояние в несколько миллиметров;

  • «метелочка» мазка должна быть расположена не ближе 1,5 см от края стекла;

  • на мазке должны быть четко нанесены надписи: номер мазка, фамилия и инициалы пациента.

Эти критерии являются индикаторами оценки качества приготовленных мазков крови. Невыполнение одного из условий ведет к неправильному распределению клеток крови или плохому выявлению их морфологических особенностей, а вместе с тем и к ошибкам при их подсчете.

Мазки, превышающие 3/4 общей длины предметного стекла, очень толсты. Эритроциты в большей части такого мазка прижаты один к другому или ложатся монетными столбиками. Это мешает правильно исследовать морфологию клеток. Мазки короче 1/2 стекла очень тонки. Лейкоциты в них отделены друг от друга, сильно деформированы, неправильно распределяются (неравномерно по мазку).

Отсутствие свободных от крови краев означает, что использованная при приготовлении мазка насадка на вакуумной пробирке касалась края предметного стекла. В таких случаях большие клетки перемещаются к краю мазка, и это вызывает неправильное распределение клеток. В неравномерном (волнообразном) мазке распределение клеток весьма неудовлетворительно. Толстые участки содержат больше лимфоцитов, тонкие - больше моноцитов и сегментоядерных клеток.

Мазки высушивают на воздухе и затем окрашивают.

2.3.3.5.3. Окраска мазков крови

Для доброкачественного исследования морфологии клеток крови не меньшее значение, чем приготовление мазка, имеют правильная его фиксация и окраска. Правильная фиксация мазка придает стойкость форменным элементам крови по отношению к содержащейся в красках воде, которая без фиксации мазка лизирует эритроциты и изменяет строение лейкоцитов. Фиксация мазка, вызывая коагуляцию белков, «прикрепляет» препарат к стеклу.

В качестве фиксаторов используют метиловый спирт, этиловый спирт, фиксатор Мая-Грюнвальда, смесь Никифорова, состоящую из равных частей этилового спирта и серного эфира. Лучшими фиксаторами являются метиловый спирт и фиксатор Мая-Грюнвальда.

Недостаточная фиксация мазка дает слабую окраску нейтрофильной зернистости лейкоцитов и ведет к некачественной окраске клеток. Качественная окраска мазка позволяет правильно дифференцировать клетки крови и их структуру при микроскопическом исследовании.

После фиксации мазок окрашивают. При применении любой методики окрашивания важно точно соблюдать методические правила приготовления растворов красителей и временные промежутки в течение процесса окрашивания. При приготовлении растворов красителей необходимо учитывать рН воды (она должна быть нейтральной). Партии красителей, поступающих в продажу, имеют различную интенсивность окраски. Именно поэтому необходимо опытным путем установить оптимальные концентрации (разведение) и время окрашивания для каждого флакона красителя, которые устанавливают путем окрашивания серии мазков растворами красителя различной концентрации, меняя длительность его воздействия.

В настоящее время для фиксации и окраски мазков в лабораториях используют различные автоматические аппараты. Спектр современных средств для автоматизации фиксации и окраски мазков крови достаточно широк - от компактных устройств для проведения вручную необходимых операций по промывке, фиксации, окрашиванию и дальнейшему высушиванию мазков под контролем встроенных таймеров со звуковой сигнализацией до полностью автоматизированных систем, не требующих вмешательства специалистов лаборатории. Все они позволяют осуществлять широкий спектр методик окраски мазков крови - по Романовскому, Паппенгейму, Лейшману, Маю-Грюнвальду, Нохту, Граму, Папаниколау.

Примером устройства для фиксации и окраски мазков является приспособление ФОМК-2. Приспособление ФОМК-2 предназначено для фиксации, окраски, промывки и сушки мазков крови на предметных стеклах. Стекла с подготовленными мазками крови или другого исследуемого материала помещают в держатель, держатель со стеклами опускают в ванну для фиксации мазков. После фиксации держатели помещают в ванну для промывки проточной водой, затем - в ванну с красителями. Окраска мазков производится по любому методу, принятому в лаборатории (Романовского-Гимзы, Мая-Грюнвальда и др.). Обработка стекол завершается окончательным высушиванием мазков теплым воздухом вентилятора в блоке сушки. Приспособление ФОМК-2 обеспечивает одновременную обработку 80 мазков крови, имеет съемный (магнитный) таймер, позволяющий оператору контролировать установку времени со звуковой сигнализацией окончания процесса не только на рабочем месте, но и за его пределами.

В России наибольшее распространение получил аппарат «Гема-Тек 2000» фирмы «Сименс». Использование аппарата «Гема-Тек 2000» позволяет стандартизовать процесс окраски мазков.

Характеристика аппарата «Гема-Тек 2000» для окрашивания мазков крови:

  • осуществляет автоматизированное равномерное окрашивание мазков, что обеспечивает получение воспроизводимых результатов их подсчета;

  • механически дозируемые растворы позволяют достичь точного химического баланса и оптимальной степени окрашивания каждого мазка крови;

  • обеспечивает наивысшее качество гематологических препаратов, что обусловливает в дальнейшем высокую достоверность результатов подсчета мазков;

  • сокращает время окраски мазков и повышает производительность лаборатории, освобождая специалистов для других работ;

  • повышает безопасность труда персонала.

При работе с аппаратом «Гема-Тек 2000» важно использовать фирменные красители с нормальным сроком годности.

По внешнему виду мазка после окраски в аппарате «Гема-Тек 2000» можно проконтролировать качество его приготовления. Аппарат распределяет краситель по мазку таким образом, что окрашивается только мазок, нанесенный по всем правилам, если же расстояние от него до края стекла менее 1,0-1,5 см, то эта часть не окрашивается. Для оценки качества окрашенных мазков крови первые окрашенные препараты подвергают микроскопированию, оценивая качество окраски клеток (ядро, цитоплазма, зернистость и т.д.) и расположение клеток в препарате, что дополняет оценку качества приготовления мазков.

В настоящее время выпускаются автоматизированные модули приготовления и окрашивания мазков крови, которые могут быть подсоединены к современным высокопроизводительным гематологическим анализаторам, с возможностью осуществления окраски мазков по нескольким методикам. Например, гематологический анализатор LH 755 фирмы «Бекман Культер» комплектуется модулями SlideMaker и SlideStainer, автоматизирующими процесс подготовки и окрашивания мазков. В модуле SlideMaker производится приготовление мазков, после чего роботизированный манипулятор перемещает держатели с предметными стеклами из модуля SlideMaker в модуль SlideStainer. В модуле SlideStainer производится автоматическая фиксация, окрашивание и сушка мазков.

При работе с полностью автоматизированными системами фиксации и окраски лаборант устанавливает в рабочую камеру штативы с приготовленными мазками крови, прибор определяет их наличие (появление) и обрабатывает без вмешательства пользователя. Участие лаборанта заключается в дозагрузке и выгрузке штативов с окрашенными стеклами во время работы автоматической системы.

2.3.3.5.4. Приготовление других препаратов к микроскопированию

Для получения качественных результатов микроскопического исследования различного доставленного биоматериала важным моментом является правильное приготовление препаратов к микроскопированию. Каждый вид доставленного биоматериала имеет свои особенности, которые должны учитываться. Рассмотрим методики приготовления препаратов к наиболее распространенным видам исследований.

Препараты для микроскопии осадка мочи. Сразу после центрифугирования мочи вынимают пробирки из центрифуги и одним быстрым движением сливают надосадочную жидкость. В пробирке остаются осадок и несколько капель жидкости. Пипеткой берут каплю осадка, переносят на чистое, обезжиренное предметное стекло и накрывают ее покровным. Надо переносить осадок с минимальным количеством жидкости, чтобы покровное стекло накрывало его полностью. Большая капля расплывается, колеблется, препарат становится многослойным, что затрудняет микроскопическое исследование. После приготовления препарат необходимо подвергнуть исследованию (в течение 1 ч, так как лейкоциты и клетки эпителия могут распадаться).

Препараты для микроскопии мокроты. Нативный препарат готовят из выбранных элементов мокроты. Препаровальными иглами помещают комочек мокроты на середину чистого, обезжиренного предметного стекла и накрывают покровным стеклом. Чистым концом препаровальной иглы слегка надавливают на покровное стекло, делая препарат более плоским, полупрозрачным. При этом следят, чтобы мокрота не выходила за края покровного стекла. Готовят не менее четырех нативных препаратов из различных участков мокроты.

Препараты для микроскопии кала. Для полного микроскопического исследования кала готовят ряд препаратов. Первый нативный препарат представляет собой суспензию кала. Для ее приготовления на предметное стекло пипеткой наносят 1-2 капли изотонического раствора натрия хлорида и кусочек кала, растирают его с помощью стеклянной палочки до получения равномерной суспензии. Препарат накрывают покровным стеклом. В таких препаратах дифференцируется большинство элементов кала: мышечные волокна, растительная клетчатка, нейтральный жир, жирные кислоты, мыла, лейкоциты, эритроциты, кишечный эпителий, слизь, яйца гельминтов, простейшие, кристаллы.

Для второго препарата кал аналогичным образом растирают на предметном стекле с раствором Люголя двойной крепости. В таких препаратах можно обнаружить крахмал, йодофильную микрофлору, а также дифференцировать цисты простейших.

Третий препарат готовят в виде водной суспензии кала, к которой добавляют каплю раствора судана III. В таком препарате легче обнаружить жир и продукты его расщепления.

Для приготовления четвертого препарата кал растирают с каплей глицерина, который служит для просветления яиц гельминтов.

Помимо приведенных критериев оценки качества выполнения технологической операции подготовки биоматериала к исследованиям, очень важным является фактор времени. От того, сколько времени затрачивается на подготовку биоматериала, во многом зависит качество результатов. Если кровь для исследования системы гемостаза доставлена вовремя (в течение 45 мин после взятия), а подготовка плазмы заняла еще 60 мин, то качество результатов анализов снизится. Осадок мочи, приготовленный через 2 ч после доставки мочи в лабораторию, не будет отражать реальное содержание клеточных элементов вследствие их разрушения. Именно поэтому время подготовки биоматериала к исследованиям должно быть четко определено и строго контролироваться. Технологический процесс выполнения исследований должен быть построен таким образом, чтобы доставленный биоматериал сразу после приема подвергался подготовке и немедленно направлялся на частные технологические процессы непосредственного выполнения назначенных лабораторных тестов.

2.4. АНАЛИТИЧЕСКИЙ ЭТАП ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Аналитический этап начинается с момента готовности пробы биологического материала к проведению исследования и заканчивается проверкой и оценкой результата анализа врачом клинической лабораторной диагностики.

В КДЛ 52% времени тратится на производственные процессы и 48% - на непроизводственные. Сокращение длительности производственных и непроизводственных процессов представляет собой одну из наиболее важных задач организации современного производства результатов лабораторных исследований, от надлежащего решения которой в большой мере зависит эффективная работа КДЛ. Решить эту задачу можно только путем внедрения современных принципов и методов организации производства результатов лабораторных исследований.

Современное производство в КДЛ представляет собой сложный процесс превращения проб биологического материала в готовую продукцию - диагностическую информацию, то есть результаты лабораторных исследований.

Современная КДЛ представляет собой сложную производственную систему, в которой непрерывно реализуются сотни технологических процессов.

Многообразные технологические процессы, в результате которых в КДЛ получают результаты анализов, необходимо соответствующим образом организовать, обеспечив их эффективное функционирование в целях получения конкретных видов результатов анализов высокого качества и в количествах, удовлетворяющих потребности ЛПУ.

Организация технологических процессов состоит в объединении специалистов лаборатории, поступивших проб биологического материала и лабораторного оборудования в единый процесс производства результатов анализов, а также в обеспечении рационального сочетания в пространстве и во времени основных, вспомогательных и обслуживающих процессов.

Пространственное сочетание элементов производственного процесса и всех его разновидностей реализуется на основе формирования производственной структуры КДЛ. В этой связи важнейшими видами деятельности являются выбор и обоснование производственной структуры КДЛ, то есть определение состава и специализации входящих в него подразделений (отделов) и установление рациональных взаимосвязей между ними.

Организация производственных процессов в КДЛ предполагает также сочетание их элементов во времени, что обусловливает определенный порядок выполнения отдельных операций, рациональное совмещение времени выполнения различных видов технологических операций, определение временных нормативов движения проб биологического материла.

Аналитический этап единого технологического процесса производства лабораторных исследований включает следующие технологические процессы (рис. 2.26):

  • подготовку анализаторов, реактивов и другого оборудования к проведению исследований;

  • калибровку анализаторов;

  • ВКК;

  • частные технологические процессы выполнения исследований;

  • обработке и утверждение результатов анализов;

  • передачу бланков с результатами исследований в клинические подразделения;

  • обслуживание и уход за анализаторами после выполнения исследований.

pic 0036
Рис. 2.26. Аналитический этап процесса производства результатов лабораторных исследований

2.4.1. ПРИНЦИПЫ ОРГАНИЗАЦИИ ПРОИЗВОДСТВА В КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Принципы организации производственного процесса представляют собой исходные положения, на основе которых осуществляется построение, функционирование и развитие производственного процесса в КДЛ. На сегодняшний день для эффективного и конкурентоспособного функционирования КДЛ необходимо использовать следующие принципы организации производства.

  1. Принцип дифференциации. Предполагает разделение производственного процесса в КДЛ на отдельные части (процессы, операции) и их закрепление за соответствующими подразделениями лаборатории. Именно поэтому в КДЛ необходимо выделить отделы для производства гематологических, общеклинических, биохимических, иммунохимических, бактериологических и других анализов. При таком разделении дифференциация осуществляется по видам исследований и характеру (типу) используемых для их выполнения анализаторов. Принципу дифференциации противостоит принцип комбинирования, который означает объединение всех или части разнохарактерных процессов в пределах одного отдела. Например, производство биохимических и иммунохимических анализов может быть объединено в рамках одного отдела, так как для исследования используется один и тот же биологический материал (сыворотка), нередко из одной и той же пробирки, и технология проведения исследований на анализаторах очень близка. В практической деятельности по организации производства в КДЛ приоритет в использовании принципов дифференциации или комбинирования должен отдаваться тому принципу, который обеспечит наилучшие экономические характеристики производственного процесса.

  2. Принцип специализации. Основан на ограничении спектра лабораторных исследований. Реализация этого принципа предполагает закрепление за каждым рабочим местом и каждым отделом строго ограниченной номенклатуры исследований. Например, в отделе общеклинических исследований при установке мочевой станции целесообразно выделить отдельное рабочее место для проведения исследований мочи. В противоположность принципу специализации принцип универсализации предполагает такую организацию производства, при которой каждый производственный отдел лаборатории выполняет широкий спектр лабораторных анализов. Например, в рамках отдела биохимии могут выполняться биохимические, иммунохимические и коагулологические исследования, а в рамках гематологического отдела - гематологические и иммуногематологические анализы. Характер специализации отделов, подразделений и рабочих мест КДЛ во многом определяется объемом выполняемых исследований и штатным расписанием специалистов.

    Высокая степень специализации отделов КДЛ и рабочих мест способствует росту производительности труда за счет трудовых навыков специалистов и внедрения средств автоматизации. Вместе с тем узкая специализация не требует высокой квалификации специалистов КДЛ, обусловливает монотонность труда и, как следствие, ведет к быстрой утомляемости, ограничивает их инициативу. Универсализация производства требует высокой квалификации специалистов, умения работать на различных анализаторах. Именно поэтому с позиций экономической эффективности в крупных и централизованных КДЛ, выполняющих огромное число анализов, необходимо придерживаться принципа специализации, а в небольших КДЛ - универсализации производства.

  3. Принцип пропорциональности. Заключается в закономерном сочетании отдельных элементов производственного процесса (штатное расписание, производительность оборудования лаборатории и т.д.), которое выражается в определенном количественном соотношении их друг с другом. Так, количество регистраторов при приеме проб биологического материала должно обеспечить их регистрацию в ЛИС в установленные сроки, потому что, если информация о пробе и заказанных тестах не поступит на анализаторы, то исследования выполняться не будут, даже если пробы установлены на анализатор; производственная мощность анализаторов должна соответствовать количеству заказываемых ЛПУ лабораторных тестов. Отсюда вытекает требование иметь в каждом производственном отделе оборудование, площади, специалистов в таком количестве, которое обеспечивало бы выполнение лабораторных исследований в КДЛ в установленные сроки. Такое же соотношение пропускной способности КДЛ должно существовать и между основным производством, с одной стороны, и обслуживающими подразделениями (отделом обеспечения закупок и логистики) - с другой.

    Нарушение принципа пропорциональности ведет к диспропорциям, появлению узких мест в производстве, вследствие чего ухудшается эффективность работы оборудования и специалистов КДЛ, увеличиваются сроки выполнения анализов.

    Принцип пропорциональности предполагает одновременное выполнение отдельных операций или частей производственного процесса в КДЛ. Он базируется на положении о том, что части расчлененного производственного процесса должны быть совмещены во времени и выполняться одновременно. Этот принцип имеет важнейшее значение при организации производства в централизованной КДЛ.

  4. Принцип параллельности. Производственный процесс получения результатов лабораторных анализов состоит из большого числа операций. Совершенно очевидно, что выполнение их последовательно одна за другой (прием проб - регистрация - подготовка к исследованиям - запуск анализаторов - калибровка - контроль качества - проведение исследований) вызвало бы увеличение времени получения результатов. Именно поэтому отдельные части (операции) процесса должны выполняться параллельно. Соблюдение принципа параллельности ведет к сокращению времени получения результатов анализов. Параллельность достигается одновременным выполнением различных технологических операций на разных рабочих местах. Например, пока идет регистрация проб в ЛИС, параллельно осуществляются запуск, калибровка и ВКК анализаторов.

  5. Принцип прямоточности. Под прямоточностью понимают такой принцип организации производственного процесса, при соблюдении которого все стадии и операции производственного процесса осуществляются в условиях кратчайшего пути движения пробы биологического материала от начала процесса до его конца (получения результатов анализов). Принцип прямоточности требует обеспечения прямолинейного движения проб биологического материала в технологическом процессе, устранения различного рода петель и возвратных движений.

    Достичь полной прямоточности можно путем пространственного расположения мест технологических операций и частей производственного процесса в порядке их проведения. Необходимо также добиваться расположения мест технологических операций и частей производственного процесса на минимальном расстоянии друг от друга (оптимальное расположение оборудования и рабочих мест). Соблюдение требований прямоточности ведет к упорядочению движения проб биологического материала, уменьшению ошибок и росту производительности труда в КДЛ. Принцип прямоточности в большей степени проявляет свои достоинства в условиях поточного производства - выполнения биохимических, иммунохимических, серологических исследований. Его сложнее воплотить при осуществлении бактериологических и гематологических исследований.

  6. Принцип ритмичности. Следует различать ритмичность получения результатов анализов, работы специалистов и производственного процесса. Ритмичностью получения результатов анализов называется производство одинакового или равномерно увеличивающегося (уменьшающегося) количества анализов за равные интервалы времени. Ритмичность работы специалистов - это выполнение равных объемов работ (по количеству и составу) за равные интервалы времени. Ритмичность производственного процесса означает соблюдение ритмичного получения результатов анализов и ритмичности работы специалистов лаборатории.

    Ритмичная работа КДЛ, и особенно централизованной КДЛ, - основа роста производительности труда, оптимальной загрузки оборудования, полной загрузки специалистов и гарантия выпуска результатов анализов высокого качества. Равномерная работа КДЛ зависит от ряда условий. Первостепенное значение имеет равномерное по времени поступление проб биологического материала. Если в КДЛ одновременно поступает большое количество проб, что наиболее часто встречается в централизованных КДЛ, то много времени уходит на их прием, регистрацию и подготовку к исследованиям. Анализаторы в это время не используются или недозагружены. Задача заведующего состоит в обеспечении равномерного поступления проб на анализы. Эту проблему можно решать путем строгой регламентации времени доставки проб в лабораторию для каждого отдельного ЛПУ.

  7. Принцип непрерывности. Реализуется в таких формах организации производственного процесса в КДЛ, при которых все его операции осуществляются непрерывно, без перебоев, и все пробы биологического материала и информация о них в ЛИС непрерывно движутся с операции на операцию. Нарушение принципа непрерывности, как правило, вызывает перебои в работе (незагруженность специалистов и простой оборудования), ведет к увеличению длительности получения результатов анализов.

Полностью принцип непрерывности производственного процесса получения результатов анализов реализуется при использовании в КДЛ автоматических и непрерывно-поточных линий, по которым пробы биологического материала доставляются на анализаторы.

Высокая степень непрерывности процессов производства результатов анализов и сокращение времени их производства имеют большое экономическое значение для централизованных КДЛ (в меньшей степени для традиционных КДЛ): ускоряется оборачиваемость оборотных средств, улучшается использование оборудования и производственных площадей, снижается себестоимость анализов.

Изложенные выше принципы организации производства в КДЛ действуют не изолированно, они тесно переплетаются в каждом производственном процессе.

2.4.2. ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС ИССЛЕДОВАНИЙ

В настоящее время техническая оснащенность лабораторий достигла такого уровня, что большинство исследований выполняется в автоматическом режиме на анализаторах. Успехи клинической лабораторной диагностики за последние 15-20 лет во многом определены внедрением автоматизации технологического процесса производства анализов.

Автоматизация - это замена действий человека или отдельных приспособлений на автоматизированное исполнение всей процедуры единой системой. На самом деле современные автоматические анализаторы не являются полностью автоматизированными системами, поскольку на определенных стадиях процесса по-прежнему необходимо участие человека (оценка внешних характеристик исследуемого биологического материала, управление системой). Однако высокая степень автоматизации при выполнении рутинных клинических исследований все-таки позволяет именовать современные системы автоматическими анализаторами.

Основные преимущества, которые дает использование автоматизированных систем в клинической лаборатории, состоят в следующем:

  • повышении производительности труда;

  • улучшении качества исследований;

  • совершенствовании контроля качества;

  • первичной оценке диагностической информации в сопоставлении со значениями нормы;

  • улучшении экономических показателей (снижении объема реактивов, автоматической калибровке системы);

  • улучшении условий труда и культуры производства.

Повышение производительности труда при использовании автоматических анализаторов достигается за счет:

  1. использования готовых реактивов;

  2. круглосуточного нахождения реактивов в анализаторе;

  3. автоматического дозирования проб и реактивов;

  4. применения быстротекущих химических и других реакций, которые требуют короткого срока преинкубации и инкубации;

  5. компьютерной обработки данных;

  6. распечатки результатов исследования в виде готового бланка с одновременным указанием предварительно введенных данных о каждом пациенте.

Высокая экономичность автоматических анализаторов достигается за счет использования микрообъемов исследуемого материала и реактивов. Автоматические анализаторы в зависимости от метода могут дозировать биологический материал (кровь, сыворотку, спинномозговую жидкость, мочу) в объеме от 1 до 100 мкл. Калибровка анализаторов предельно упрощена, а компьютерная обработка результатов обеспечивает их высокое качество.

2.4.2.1. Пространственно-временное развертывание производственных процессов в клинико-диагностической лаборатории

Организация производственных процессов в КДЛ представляет собой комплекс определенным образом организованных во времени основных, вспомогательных и обслуживающих процессов, необходимых для получения определенного вида результатов лабораторных исследований. Важнейшей характеристикой всего этого производственного цикла является его длительность.

Для характеристики временных параметров производственных лабораторных процессов в иностранной литературе используется термин TurnAround Time (ТАТ) - «время оборота теста» или «время получения результата». Специалисты КДЛ определяют ТАТ как интервал от момента получения пробы биологического материала в лаборатории до времени выдачи результата исследования, то есть лабораторное ТАТ. Лабораторное TAT является показателем эффективности организации рабочих процессов в КДЛ.

Пришло это понятие из индустриального производства, где оно давно получило называние «длительность производственного цикла» - интервал календарного времени от начала до окончания процесса изготовления изделия, или календарный период времени, в течение которого материал, заготовка или другой обрабатываемый предмет проходят все операции производственного процесса и превращаются в готовую продукцию. Длительность производственного цикла многооперационного процесса существенно зависит от способа сочетания во времени отдельных производственных процессов и их частей (операций) и способа передачи деталей с операции на операцию.

В индустриальном производстве существуют три вида (типа) движения предметов труда в процессе их изготовления: последовательный, параллельный и параллельно-последовательный.

При последовательном виде движения вся партия деталей передается на последующую операцию после окончания обработки всех деталей на предыдущей операции. Производственный цикл при такой организации работ является наибольшим, что отрицательно сказывается на технико-экономических показателях деятельности предприятия.

Параллельный тип характеризуется тем, что небольшие партии деталей передаются с предыдущей операции на последующую немедленно после окончания обработки на предыдущей операции. В этом случае обеспечивается наиболее короткий цикл.

При параллельно-последовательном виде движения следующая операция начинается ранее, чем наступает полное окончание обработки всей партии на предыдущей операции. При этом происходит частичное совмещение времени выполнения смежных операций, а вся партия обрабатывается на каждой операции без перерывов. Передача предметов труда с операции на операцию осуществляется партиями или поштучно.

В КДЛ мы сталкиваемся с более сложным производственным циклом многооперационного производственного процесса получения результатов анализов, который включает последовательность операций обработки проб биологического материала, поступившего на исследование, движение потока информации о пробах и действий специалистов лаборатории. Вместе с тем все принципы организации индустриального производства и три вида (типа) движения предметов труда (проб биологического материала) используют и в лаборатории.

Рассмотрим последовательность движения проб крови при выполнении биохимических исследований на анализаторе. В традиционной КДЛ используется последовательно-параллельный принцип выполнения исследований: прием проб → регистрация → центрифугирование → запуск анализаторов → калибровка → контроль качества → проведение исследований → обработка и утверждение результатов анализов, что представлено на рис. 2.4. Примерно аналогичная последовательность реализуется при проведении гематологических исследований на гематологическом анализаторе, коагулологических анализов - на анализаторе гемостаза, иммунохимических и серологических - на иммунохимическом или иммуноферментном анализаторе.

В лаборатории осуществляется прием проб, их регистрация в ЛИС для поступления информации о пробе и назначенных видах тестов на анализаторы и подготовка проб (центрифугирование) для анализа. Для сокращения времени получения результатов анализов параллельно осуществляются запуск, калибровка и ВКК. После центрифугирования пробы устанавливаются в биохимический анализатор и проводятся исследования в соответствии с информацией о каждой пробе, поступившей в ЛИС. По мере готовности результатов осуществляется их анализ и утверждение в ЛИС. В традиционной КДЛ часть специалистов участвует в выполнении операций приема проб, их регистрации, центрифугировании и установке в анализатор и затем - в проведении исследований, контролируя работу анализатора. Другая часть параллельно осуществляет запуск, калибровку и ВКК анализаторов, а в дальнейшем проводит анализ результатов и их утверждение в ЛИС. Движение проб биологического материала и действия специалистов осуществляются последовательно от одной операции к другой, и все пробы передаются на последующую операцию после окончания работ с ними на предыдущей операции. Достоинствами этого метода являются отсутствие перерывов в работе специалистов на каждой операции, возможность их высокой загрузки в течение всего рабочего дня. Но ТАТ при такой организации процесса выполнения анализов является наибольшим.

Для правильного расчета ТАТ необходимо учитывать не только время на проведение самих операций, но и временные затраты на оценку проб после центрифугирования, их установку в штативы анализаторов, доставку проб с операции на операцию и другие непродуктивные потери времени.

Как видно на рис. 2.27, потенциальными точками для сокращения ТАТ являются практически все технологические операции получения результатов анализов.

pic 0037
Рис. 2.27. Способ последовательного выполнения исследований

Продолжительность времени операций приема, регистрации и центрифугирования в традиционной КДЛ зависит от количества, поступавших в КДЛ проб биологического материала и числа специалистов лаборатории, осуществляющих эти операции. Поскольку практически все пробы доставляются утром в период с 8 до 10 ч, это позволяет использовать в лаборатории одних и тех же специалистов при приеме, регистрации и проведении анализов, так как рабочего времени с 10 ч до 16 ч обычно достаточно для выполнения исследований и получения результатов. Тем не менее даже в традиционной КДЛ в случае поступления единичной пробы лабораторное ТАТ минимально. При увеличении количества проб ТАТ возрастает за счет последовательного выполнения операций приема, регистрации, подготовки к исследованиям.

В централизованных КДЛ продолжительность операций приема, регистрации и центрифугирования существенно растягивается во времени, так как пробы могут поступать в период с 8 до 15 ч. Соответственно, использовать одних и тех же специалистов для выполнения этих операций и проведения самих анализов нерационально, так как это приводит к увеличению ТАТ. В централизованной КДЛ на ТАТ влияет количество образцов, поступивших в лабораторию одновременно, и ритмичность их поступления.

Какие подходы можно использовать для сокращения влияния продолжительности операций приема, регистрации, центрифугирования и самого процесса выполнения исследований на анализаторах на ТАТ в централизованной КДЛ?

Рассмотрим операции приема и регистрации проб биологического материла, поступившего в КДЛ. Выбор средств и подходов в сокращении времени выполнения этих операций небольшой и включает:

  1. использование для ввода заявок на лабораторные исследования в ЛИС машиночитаемых форм бланков-заявок;

  2. использование удаленной (в процедурных кабинетах ЛПУ-объектов централизации) регистрации и штрихкодирования проб биологического материала;

  3. на первом этапе осуществлять прием и штрихкодирование проб и сразу же отправлять их на центрифугирование (подготовку к исследованиям), а затем осуществлять регистрацию проб в ЛИС;

  4. постоянное использование для осуществления регистрации заявок на исследование в ЛИС штатных регистраторов КДЛ;

  5. отправлять пробы биологического материала на технологическую операцию центрифугирования партиями по мере регистрации в ЛИС, а не дожидаться регистрации всех проб в ЛИС;

  6. использование всех вышеперечисленных подходов в любом сочетании и пропорции;

  7. обеспечение равномерного по времени поступления проб биологического материала путем строгой регламентации времени доставки проб в лабораторию для каждого отдельного ЛПУ-объекта централизации.

Операции приема и регистрации проб биологического материла являются ключевыми для централизованных КДЛ в плане потенциального сокращения ТАТ. Именно поэтому руководители лабораторий должны сосредоточить все свое внимание на организации проведения данных операций. Использование удаленной (в процедурных кабинетах ЛПУ-объектов централизации) регистрации и штрихкодирования проб биологического материала служит оптимальным решением для централизованных КДЛ. В таких случаях при поступлении проб в лабораторию прием и регистрация проб осуществляются путем простого считывания информации со штрихкодов на пробах и их подтверждения в ЛИС и немедленного направления проб на подготовку биоматериала к исследованиям, а если проба доставлена уже отцентрифугированной (например, на биохимическое исследование) - на анализаторы для проведения анализа.

Использование удаленной регистрации и верификация проб в лаборатории при приеме проб биологического материла с помощью считывания штрихкодов приводит к снижению времени приема и регистрации проб с 77 до 21,5 мин, времени от регистрации теста до получения результата - с 148 до 74 мин (Thompson W. et al., 2004).

В отношении сокращения времени на центрифугирование проб надо понимать, что само время центрифугирования проб для различных видов анализов - стандартизированная процедура, и его изменение ведет к снижению качества проб для исследования. Например, рекомендуемое время для получения сыворотки для биохимических исследований - 10 мин. Однако имеются следующие возможности сокращения влияния технологической операции центрифугирования на ТАТ:

  1. осуществлять центрифугирование в пунктах сбора проб в ЛПУ-объектах централизации;

  2. иметь в КДЛ достаточно центрифуг для центрифугирования всей партии вакуумных пробирок, поступивших в лабораторию, при этом лучше иметь достаточное количество центрифуг меньшей вместимости, чем несколько центрифуг большой вместимости;

  3. отправлять пробы биологического материала после центрифугирования на анализатор для проведения исследований (загрузки в анализаторы) партиями, а не дожидаясь окончания центрифугирования всех проб.

Автоматизированные преаналитические системы для сортировки проб, их центрифугирования, системы транспортировки пробирок (трековые системы), а также системы хранения пробирок также необходимо активно использовать в централизованных КДЛ, наряду с ЛИС, для сокращения ТАТ.

Еще одним аспектом в плане сокращения времени на осуществление приема, регистрации и центрифугирования проб является правильная организация на преаналитическом этапе взятия проб крови. Речь идет о том, что выполнение ряда исследований на разных анализаторах может быть осуществлено из одной пробирки. Например, проведение биохимических тестов, тестов на большинство гормонов, онкомаркеров, серологических маркеров инфекционных заболеваний можно осуществлять из одной пробирки с гелем. Данный подход позволяет не только сократить время приема и регистрации проб, но и приводит к уменьшению числа вакуумных пробирок для взятия проб крови и сокращает затраты на их приобретение. Так, Р. Hobson и Т. Badrick (2013) показали, что в результате обучения врачей и специалистов процедурных кабинетов правильному использованию вакуумных пробирок с разделительным гелем при взятии проб крови от 62 до 85% заказанных тестов стали выполняться в лаборатории из одной пробирки. Экономия пробирок для учреждения составила 91 888 евро в год, около 5000 л крови на анализы не были взяты у пациентов, объем клинических отходов снизился на 10 200 кг (экономия 6423 евро в год), а количество времени, не потраченного на переноску дополнительных проб, эквивалентно рабочему времени пяти штатных сотрудников.

Помимо прямых затрат времени на проведение приема, регистрации и центрифугирования, необходимо обращать внимание и на так называемые непродуктивные потери времени, связанные с расположением и удаленностью помещений, где проводятся эти операции, от анализаторов. Именно поэтому кабинетно-коридорная модель расположения лаборатории и организация проведения различных технологических операций, которая существует в традиционной КДЛ, является препятствием для сокращения ТАТ в централизованной КДЛ.

В своих исследованиях В.С. Берестовская и соавт. (2013) установили, что доставка проб из одного помещения в другое существенно удлиняет ТАТ. Показано, что оптимальным решением было бы размещение всех анализаторов для проведения биохимических и иммунохимических исследований в одном помещении, что возможно только при реконструкции помещений существующей лаборатории.

Оптимальный выбор и использование автоматических анализаторов приводит к сокращению ТАТ. Казалось бы, самым простым расчетом времени выполнения заказанных в централизованную КДЛ тестов на анализаторе служит простой расчет, основанный на делении количества заказанных тестов на производительность анализатора в час. В действительности этого недостаточно; так, производительность анализатора находится в прямой зависимости от вариантов его загрузки (например, установка на анализатор дополнительной пробы для неотложных исследований, перерывы в загрузке), спектра выполняемых тестов в различных комбинациях. Все это способствует снижению производительности анализатора и удлинению ТАТ. Именно поэтому в реальной жизни при выборе анализатора необходимо исходить из того, что действительная его производительность будет на 40-50% ниже заявленной в его описании. В литературе встречаются примеры использования компьютерных симуляторов для определения ТАТ анализатора при моделировании различных вариантов его загрузки и реального ТАТ при различных комбинациях тестов, которое включало интервал от момента размещения образца на анализаторе до момента получения результата исследования (Armbruster D. et al., 2006).

Для крупных традиционных и централизованных КДЛ в плане сокращения ТАТ большое значение имеет не только номинальная производительность отдельных анализаторов, но и их рациональная комбинация. Рациональным решением является использование консолидированных модульных систем (наиболее часто включают блок биохимии и иммунохимии), которые в настоящее время являются одним из оптимальных решений для сокращения ТАТ и повышения производительности КДЛ.

Крупные традиционные и централизованные КДЛ для оптимизации производства анализов должны использовать консолидированные модульные системы для оптимизации управления потоками внутри лаборатории на основе ТАТ. В дальнейшем следует переходить к полной автоматизации процессов производства различных лабораторных анализов, в первую очередь биохимических, иммунохимических, серологических и иммуногематологических. За счет полной автоматизации процессов производства существенно сокращаются непродуктивные потери времени. L.L. Holland и соавт. (2005) показали, что при полной автоматизации выполнения биохимических тестов постороннее влияние на ТАТ при проведении исследования калия снизилось с 18 до 5%.

В целях оптимизации рабочих процессов в КДЛ необходимо использовать принципы бережливого производства (lean production), цель которого состоит в сокращении потерь времени на каждом рабочем месте:

  • времени из-за ожидания (регистрации, поступления проб на анализатор, готовности анализатора и т.д.);

  • ненужной транспортировки;

  • избыточного перемещения проб и специалистов лаборатории в ходе работы.

Использование рациональной организации работ, эргономичное размещение оборудования, высокий уровень автоматизации и информатизации (использование модульных систем, гематологических комплексов, мочевых станций, станций удаленного доступа и т.д.) - основные инструменты в повышении производительности КДЛ.

Производственный процесс получения результатов анализов, помимо операций обработки проб биологического материала, поступившего на исследование, движения потока информации о пробах, включает и действия специалистов лаборатории. Правильная организация взаимодействий специалистов на своих рабочих местах во времени - важное направление работы по сокращению ТАТ в КДЛ. Ключевые точки в данном аспекте деятельности следующие:

  • начало рабочего времени - для разных специалистов лаборатории рабочий день должен начинаться в разное время (подстраиваться под время начала тех производственных операций, в которых они участвуют);

  • продолжительность рабочего дня лаборатории - определяется установленными временными сроками готовности результатов анализов, количеством поступающих проб и производительностью анализаторов, поэтому работа лаборатории может быть организована в одну, две или три смены;

  • уровень профессиональной подготовки специалистов - наличие специалистов с универсальной подготовкой способствует сокращению ТАТ.

Еще одним из современных направлений по оптимизации производственных операций и движения проб в централизованной КДЛ является использование ряда программных продуктов, о которых подбробно рассказано в разделе 4.2.4.

2.4.2.2. Лабораторные анализаторы

Современные аналитические приборы - это сложный технический комплекс, состоящий из систем внесения проб биологического материала и реактивов, регистрирующего устройства, системы промывки, электронной системы управления и обработки данных. Такие сложные аналитические приборы называются лабораторными анализаторами. Они позволяют осуществить калибровку (построение калибровочной кривой) в отношении исследуемого компонента, оценить качество пробы биологического материала, идентифицировать компоненты исследуемого образца, определить их количество и концентрацию, а также физико-химические свойства анализируемого вещества, выполнить необходимые расчеты для получения количественных результатов и провести их клиническую оценку. В зависимости от исполнения лабораторные анализаторы могут изготавливаться в виде единой конструкции и в виде комплекта, состоящего из различных блоков, каждый из которых выполняет определенную функцию: обработки, измерения, нормирования усиления и отображения измеренных физических величин.

По степени автоматизации анализаторы делят на автоматические и полуавтоматические. Полуавтоматический анализатор в своей работе предполагает наличие ручных операций, которые состоят либо во внесении анализируемых проб и реактивов, либо в дополнительной обработке результатов исследований. Однако после введения пробы и реактивов все последующие стадии анализа автоматизированы. В современных полуавтоматических анализаторах расчет результатов автоматизирован, результаты подаются на дисплей в заранее запрограммированных лаборантом единицах, кроме того, некоторые системы способны оценивать адекватность полученных результатов. В них также предусмотрена возможность ведения ВКК путем построения карт Леви-Дженнингса. Большинство полуавтоматических анализаторов имеют встроенный процессор и обладают возможностью подключения к внешним компьютерам. Вывод результатов осуществляется как на дисплей, так и на принтер, который, в свою очередь, также может быть встроенным или внешним.

Автоматический анализатор в своей работе не требует постоянного присутствия специалиста лаборатории. Специалист лаборатории осуществляет программирование тестов и выбор необходимого профиля для того или иного анализа, выбирает последовательность определения необходимых параметров и количество необходимых проб для осуществляемого анализа. В дальнейшем анализатор работает в автоматическом режиме, осуществляет все остальные операции без участия специалиста лаборатории.

Всем автоматическим анализаторам свойственны:

  1. компьютерное и программное обеспечение;

  2. автоматическая пробоподготовка, подача проб и дозирование;

  3. осуществление контрольных функций, обеспечиваемое автоматизированным слежением компьютера с программным обеспечением за работой отдельных блоков анализатора, выполнением программ контроля качества проводимых лабораторных исследований, анализом результатов исследований.

Общими чертами всех автоматических анализаторов являются высокая производительность, невысокий (в сравнении с ручными и полуавтоматическими методами) расход реагентов на один анализ и небольшой объем пробы биологического материала для проведения анализа.

В конструктивном плане автоматические анализаторы в основном используют два принципа действия - поточный и дискретный. Согласно поточному принципу, все анализы выполняются последовательно один за другим. Так устроены гематологические автоматические анализаторы. При дискретном принципе работы автоматического анализатора для каждой аналитической операции используют отдельную группу механических устройств для перемещения проб биологического материала и добавления реагентов. После их смешивания (проб и реагентов) сама химическая реакция протекает в отдельной для каждой пробы кювете. Основными узлами дискретных автоматических анализаторов являются:

  1. карусели (картриджи) с пробами исследуемого биологического материала и реагентами;

  2. дозаторы (пробоотборники) биологического материала и реагентов;

  3. блок измерения концентрации определяемых компонентов (наиболее часто - многоканальные проточные кюветы);

  4. блок измерения концентрации отдельных определяемых компонентов;

  5. регистрирующее устройство;

  6. система управления комплексом перечисленных модулей.

Согласно дискретной технологии, с помощью специального пробоотборника в реакционную кювету вносятся анализируемая проба, разбавитель (при необходимости) и соответствующие реагенты. Смесь термостатируется, после чего измеряется ее оптическая плотность (в видимой, ультрафиолетовой области). Возможно также использование других способов детектирования. Дискретная технология использована в большинстве автоматических биохимических анализаторов.

По видам лабораторных исследований, которые определяются спецификой проб биологического материала, приемов и методов работы, анализаторы разделяют на гематологические, биохимические, коагулологические, гормональные, иммунологические, иммуноферментные, бактериологические, генетические и др. Существуют анализаторы для исследования мочи, газового состава крови, глюкозы, HbA1c. Каждый их этих анализаторов представляет собой сложный, высокотехнологичный прибор. Так, биохимический анализатор использует оптические, роботизированные и компьютерные технологии для определения концентрации различных веществ в исследуемом образце крови. Гематологический анализатор определяет вид, количество и полную характеристику всех форменных элементов крови. Иммуноферментный анализатор используется для обнаружения и определения класса и уровня антител к различным возбудителям инфекционных заболеваний.

При использовании анализаторов могут быть автоматизированы следующие этапы технологического процесса выполнения анализов:

  • идентификация проб пациентов по штрихкоду;

  • дозировка объемов образцов и реагентов;

  • смешивание;

  • инкубация, преинкубация;

  • промывка многоразовых оптических кювет;

  • процедура калибровки;

  • проведение измерений согласно предварительно введенной программе, считывание результатов и их компьютерная обработка;

  • протоколирование исследований, выполненных у пациента, на одном бланке, распечатка результатов;

  • предварительная диагностическая оценка данных;

  • статистическая обработка данных контроля качества;

  • хранение собранной информации.

Идентификация проб по штрихкоду дает следующие преимущества:

  • выигрыш во времени при проведении исследований большого числа проб (более 100 пациентов в день);

  • исключение регистрации данных в лабораторных журналах;

  • объединение на одном бланке результатов анализов, выполненных на разных приборах;

  • улучшение условий производства, что особенно важно, если количество регистрируемой информации относительно велико.

Все современные автоматические анализаторы обеспечивают возможность двусторонней электронной связи, то есть введение информации в анализатор и получение информации из анализатора из внешней информационной системы. Они воспринимают информацию, вводимую специалистом лаборатории, информируют его об ошибках, возникающих в работе отдельных блоков анализатора, о способах устранения возникших неисправностей и о техническом состояния прибора.

Автоматические анализаторы хранят в компьютере большой объем информации, который необходим в течение всего периода работы системы. Длительному хранению подлежат: программы методов, объем реагентов и образцов, временные интервалы проведения реакции, температура инкубации, длины волн фотометрии, частота и периодичность измерения оптической плотности и расчет результатов, распечатка бланка, статистическая обработка контроля качества, методы настройки и/или тестирования системы. Во многих анализаторах имеется автономный блок питания, обеспечивающий работу анализатора при кратковременных отключениях питания, что особенно важно для работы компьютера. По окончании работы многие аналитические системы остаются включенными в течение суток и находятся постоянно в режиме ожидания. Встроенные холодильные установки обеспечивают длительное хранение реактивов непосредственно в анализаторе. Реактивы находятся в контейнерах с маркировкой, которая несет всю необходимую информацию о реактиве. Анализатор информирует оператора о количестве реактивов в сосудах.

Автоматический анализатор может быть связан в единую компьютерную сеть с другими приборами и системами лаборатории в целях сбора всей диагностической информации о пациенте в одном бланке. Он может быть также задействован в единой компьютерной сети медицинского учреждения, при этом информация может быть получена клиницистом без контакта с персоналом лаборатории.

При выборе анализатора необходимо, чтобы он отвечал следующим требованиям:

  • соответствие производительности потоку проб;

  • возможность для помещения срочной пробы без остановки анализатора;

  • возможность эксплуатации 24 ч в сутки и 7 дней в неделю;

  • наличие обширного меню;

  • долговременное хранение калибровки;

  • анализ проб в режиме произвольного доступа;

  • быстрая подготовка анализатора к выполнению исследований;

  • возможность исследования проб из первичных пробирок;

  • поддержка выбранного стандарта штрихкодирования (для проб и реактивов);

  • простота в эксплуатации;

  • наличие автоматической самодиагностики и контекстной помощи;

  • минимальное техническое обслуживание, предпочтительно автоматическое;

  • поддержка двунаправленного интерфейса с вычислительным оборудованием и информационной системой.

Использование автоматических анализаторов в технологическом процессе выполнения лабораторных исследований как ничто другое позволяет строго стандартизовать этот важнейший этап производства анализов, а наличие в анализаторах систем самоконтроля (контроль правильности запуска, калибровки, контроль качества и т.д.) обеспечивает качественное выполнение методик исследования.

Практически все автоматические анализаторы относятся к высокотехнологичному лабораторному оборудованию. Высокотехнологичное лабораторное оборудование - это приборы, аппараты, оборудование для клинических лабораторных исследований, направленных на оценку состояния организма человека, произведенные с использованием современных достижений в области электроники, программного обеспечения, робототехники и других высокотехнологичных областей промышленности.

2.4.2.2.1. Гематологические анализаторы

Гематологические анализаторы - основные инструменты, с помощью которых определяют значительную часть гематологических показателей в современной КДЛ.

Гематологические анализаторы способны подсчитывать число различных клеток и форменных элементов крови, оценивать их размеры, структурные, цитохимические и другие характеристики. В основе автоматического подсчета клеток и форменных элементов крови лежит кондуктометрический, или апертурно-импендансный, метод. Метод был разработан братьями W.H. и J.R. Culter в 1947 г., поэтому получил название «метод Культера». Принцип апертурно-импендансного метода основан на подсчете числа и определении характера электрических импульсов при прохождении клеток крови через апертуру (отверстие малого диаметра), по обе стороны которого расположены два изолированных друг от друга электрода (рис. 2.28). Если апертура погружена в электропроводящий раствор, то электрический ток течет между двумя электродами постоянно. Когда поток клеток крови проходит сквозь апертуру анализатора, увеличивается электрическое сопротивление между электродами. Это и обусловливает изменение напряжения между ними пропорционально изменению величины сопротивления. Объем клетки, проходящей сквозь апертуру, пропорционален этому изменению напряжения. Математическое выражение этого явления вытекает из закона Ома: Е = IxR, где Е - напряжение; I - сила тока; R - сопротивление. Поскольку величина силы тока постоянна, то клетки, проходящие сквозь апертуру, увеличивают сопротивление, так как являются помехой для потока электронов. Следовательно, любое увеличение сопротивления будет приводить к возрастанию напряжения пропорционально величине сопротивления, которое, в свою очередь, пропорционально размеру (объему) клетки. Прохождение каждой клетки через апертуру сопровождается появлением электрического импульса. Возникающее изменение сопротивления электрическому току в апертуре при прохождении клетки незначительно, но оно легко улавливается гематологическим анализатором. Во избежание одновременного прохождения через апертуру нескольких клеток, которые будут регистрироваться как один импульс, проба крови предварительно разводится до нужной концентрации, при которой через апертуру одновременно будет проходить не более одной клетки крови.

pic 0038
Рис. 2.28. Принцип апертурно-импендансного метода подсчета клеток крови

Подсчет числа эритроцитов и тромбоцитов в гематологических анализаторах осуществляется путем измерения амплитуды электрического сигнала при их прохождении через апертуру. Тромбоциты выступают небольшими по размеру клетками, поэтому генерируют электрические импульсы низкой амплитуды, а эритроциты вследствие значительно больших размеров - импульсы высокой амплитуды. Поскольку размеры лейкоцитов близки к размерам эритроцитов, их не удается разделить при простом использовании кондуктометрического метода. При этом лейкоциты неизбежно будут вносить вклад в подсчет количества эритроцитов. Однако, за исключением явных лейкоцитозов, их вклад будет ничтожно мал, так как в норме концентрация эритроцитов в крови на три порядка превышает концентрацию лейкоцитов. Для подсчета числа лейкоцитов присутствующие в пробе крови эритроциты необходимо разрушить. В этих целях используют лизирующий реагент (поверхностно-активное вещество). После добавления лизирующего реагента эритроциты разрушаются и в пробе остаются лейкоциты. Под действием лизирующего реагента эритроциты разрушаются до очень мелких осколков, которые при подсчете лейкоцитов генерируют электрические импульсы очень низкой амплитуды, не влияющие на результат анализа. Проба подсчитывается повторно, что позволяет определить число лейкоцитов. Затем из суммы импульсов высокой амплитуды (эритроциты и лейкоциты), полученных при первом подсчете, вычитаются импульсы высокой амплитуды второго счета (лейкоциты). Разница между числом импульсов высокой амплитуды до и после добавления лизирующего реагента соответствует количеству эритроцитов.

Сумма амплитуд импульсов при подсчете количества эритроцитов в пробе крови отражает общий объем, занимаемый эритроцитами, или гематокрит (Ht - hematocrit). При делении гематокритной величины на количество эритроцитов (RBC) можно получить очень важную характеристику эритроцитов - MCV.

Концентрацию гемоглобина в крови гематологические анализаторы определяют фотометрическим методом после лизиса эритроцитов.

В отличие от эритроцитов и тромбоцитов, неизмененные лейкоциты, несмотря на неоднородность этой популяции, существенно не отличаются по своему объемаму. Именно поэтому для дифференцированного подсчета лейкоцитов апертурно-импендансным методом подбирают такую композицию электропроводящего раствора и лизирующего реагента, которая воздействует таким образом на различные популяции лейкоцитов, что их форма и объем претерпевают изменения размеров в различной степени. В результате с помощью кондуктометрического метода становится возможным разделять лейкоциты на три популяции (рис. 2.29):

  • область малых объемов (35-90 фл) формируется лимфоцитами, которые под действием электропроводящего раствора и лизирующего реагента значительно уменьшаются в объеме (между первым и вторым дискриминаторами);

  • гранулоциты, напротив, подвергаются незначительному уменьшению в объеме и расположены в области больших объемов (120-400 фл) (между 3 и 4 дискриминаторами);

  • между двумя пиками расположена зона так называемых средних лейкоцитов (90-120 фл), в которую попадают моноциты, базофилы, эозинофилы и плазматические клетки (между первым и вторым дискриминаторами).

pic 0039
Рис. 2.29. Схема гистограммы распределения лейкоцитов по объему (пояснения в тексте)

Современные гематологические анализаторы осуществляют дифференцированный подсчет количества лейкоцитов по пяти основным популяциям: нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты и лимфоциты, а также оценивают наличие незрелых гранулоцитов, подсчитывают количество ретикулоцитов и их субпопуляций, проводят оценку стволовых гемопоэтических клеток и субпопуляций лимфоцитов. Для решения этих задач в различных гематологических анализаторах используются разные технологии.

Первый тип технологий основан на использовании трехмерного анализа популяций лейкоцитов, или VCS-технологии (V - volume - «объем»; C - conductivity - «электропроводность»; S - scatter - «рассеяние»). Данная технология включает одновременный компьютерный анализ лейкоцитов по объему, электропроводности и рассеянию лазерного луча. Полученные данные комбинируются и анализируются с помощью компьютерной программы анализатора, в результате осуществляется распределение лейкоцитов на пять основных популяций. Результаты компьютерного анализа отображаются в виде объемного графика на плоскости, который получил название «лейкоцитарная скатерограмма» и на котором каждый тип клеток имеет свою зону распределения (см. рис. 2.29).

Второй тип технологии получил название «технология MAPSS» (Multi Angle Polarized Scatter Separation) - мультипараметрическая система лазерного светорассеяния, в основу которой положены регистрация и компьютерный анализ интенсивности рассеяния различными популяциями лейкоцитов поляризованного лазерного луча под разными углами. Использование MAPSS-технологии позволяет получить важные сведения о следующих характеристиках лейкоцитов:

  • размере (оценивается по прохождению поляризационного лазерного луча под малым углом рассеяния, близким к нулю);

  • структуре (оценивается по анализу рассеяния поляризационного лазерного луча, направленного под углом до 7°);

  • ядерно-цитоплазматическом соотношении (оценивается по анализу рассеяния поляризационного лазерного луча, направленного под углом до 10°);

  • форме клеточного ядра (оценивается по анализу рассеяния поляризационного лазерного луча, направленного под углом 90°);

  • клеточной зернистости (оценивается по анализу рассеяния деполяризованного лазерного луча, направленного под углом 90°).

В основе третьей разновидности технологий дифференцированного подсчета лейкоцитов лежит принцип жидкостной цитохимии (измерение активности пероксидазы в различных популяциях лейкоцитов) в сочетании с кондуктометрическим методом, гидродинамическим фокусированием и оптической абсорбцией. Различные популяции лейкоцитов отличаются по активности фермента пероксидазы в клетках. Нейтрофилы и эозинофилы обладают выраженной пероксидазной активностью, моноциты - слабой, а в лимфоцитах она не обнаруживается. В гематологическом анализаторе после лизиса эритроцитов в лейкоцитах происходит цитохимическая реакция, затем лейкоциты дифференцируются по размеру с использованием рассеяния поляризационного лазерного луча и пероксидазной активности - по поглощению различными популяциями лейкоцитов светового потока. В результате удается разделить лейкоциты на четыре популяции: нейтрофилы, эозинофилы, моноциты и лимфоциты. Дифференцировка базофилов осуществляется на следующем этапоме. Для этого используется специальный лизирующий реагент, который растворяет цитоплазму всех лейкоцитов, за исключением базофилов. Затем осуществляется измерение дисперсии лазерного света под различными углами, что позволяет различать клетки в зависимости от формы ядер. В дальнейшем проводится компьютерный анализ всей информации и разделение лейкоцитов по пяти фракциям.

Четвертый тип технологий - применение метода проточной цитофлюориметрии с использованием флюоресцентного красителя (обычно полиметина). Флюоресцентный краситель связывается с ДНК и РНК клеток крови. Данная технология используется как для дифференциации лейкоцитов по пяти популяциям, так и для подсчета количества ретикулоцитов. После предварительного окрашивания флюоресцентным красителем лейкоциты подвергаются облучению лазером. В результате контакта лазерного луча с окрашенной клеткой происходит рассеяние последнего и возбуждение флюоресцентного красителя. Гематологический анализатор улавливает и регистрирует данные сигналы, преобразуя их в три важных параметра:

  • прямое светорассеяние, которое позволяет оценить размеры (объем) и форму клеток;

  • боковое светорассеяние - позволяет оценить плотность клетки и характеризует сложность внутриклеточных структур;

  • величину специфического флюоресцентного сигнала - позволяет оценить содержание ДНК/РНК в клетках.

В результате анализа этих данных все лейкоциты распределяются по кластерам (зонам) в соответствии с их размером, структурой и количеством ДНК. Технология позволяет разделить лейкоциты на четыре популяции: нейтрофилы вместе с базофилами, эозинофилы, моноциты и лимфоциты. Разделение нейтрофилов и базофилов проводится на следующем этапе с использованием специального лизирующего реагента, который растворяет все лейкоциты, за исключением базофилов. На последнем этапе проводится дискриминантный анализ всех лейкоцитов по размеру, сложности структуры и количеству ДНК.

В практическом плане гематологические анализаторы условно разделяют на несколько классов. Гематологические анализаторы I класса способны отбирать пробу крови из пробирки, подсчитывать количество эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, определять концентрацию гемоглобина и произвести частичное разделение лейкоцитов на три группы по размеру. Именно поэтому такие гематологические анализаторы называют 3-diff. Анализаторы данного класса способны определять 16-20 параметров клеток крови, а их производительность составляет 50-60 проб крови в час.

Гематологические анализаторы II класса представляют собой сложные, высокотехнологичные гематологические анализаторы, способные разделять лейкоциты на пять субпопуляций (5-diff: нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты и лимфоциты), производить дополнительный подсчет ретикулоцитов, сигнализировать о наличии в анализируемых образцах крови патологических клеток (сигналы тревоги, или «красные флаги»). В анализаторах этого класса для дифференциации лейкоцитов могут использоваться методы цитохимии, проточной цитометрии, дисперсии лазерного света. После проведения анализа с использованием гематологических анализаторов II класса и при отсутствии в результатах исследования сигналов тревоги, или красных флагов, в проведении подсчета лейкоцитарной формулы крови под микроскопом нет необходимости.

Недостатком гематологических анализаторов I и II класса является необходимость подносить каждую пробирку для анализа к устройству для взятия пробы крови, поэтому такие анализаторы нельзя называть полностью автоматизированными.

Гематологические анализаторы III класса - это полностью автоматизированные системы, способные самостоятельно осуществлять подачу пробирок с кровью, взятие пробы крови из них для анализа, осуществлять подсчет всех основных видов клеток крови, включая ретикулоциты, разделять лейкоциты на пять субпопуляций, сигнализировать о наличии в крови патологических клеток и оценивать результаты исследований. Анализаторы III класса могут быть оснащены дополнительными блоками для приготовления и окраски мазков крови. Высокая производительность (выше 100 проб крови в час) и возможность полной автоматизации технологического процесса производства результатов гематологических исследований позволяют использовать приборы данного класса в крупных лабораториях с большим потоком проб.

2.4.2.2.2. Анализаторы скорости оседания эритроцитов

Международный комитет по стандартизации в гематологии (International Committee for Standardization in Haematology - ICSH) и Институт клинических лабораторных стандартов (Clinical and Laboratory Standards Institute - CLSI) классифицируют методы определения СОЭ на три группы:

  1. метод Вестергрена - референтный метод («золотой стандарт»);

  2. модифицированные методы Вестергрена - методы, основанные на методологии Вестергрена с некоторыми модификациями, например, более коротким временем анализа, без использования тринатрийцитрата лимонной кислоты в качестве антикоагулянта, с использованием других добавок в качестве антикоагулянта;

  3. альтернативные методы определения СОЭ (основанные не на методе Вестергрена) - анализаторы, использующие новые технологии, такие как центрифугирование или фотометрическое измерение агрегации.

В 2011 г. CLSI опубликовал 5-е издание стандарта (H02-A5) «Процедуры проведения теста на скорость оседания эритроцитов». В качестве «золотого стандарта» утверждена новая методика определения СОЭ (пересмотрен классический метод Вестергрена):

  1. венозная кровь берется в вакуумные пробирки с К2 ЭДТА или К3 ЭДТА;

  2. использование натрия цитрата (4:1) неприемлемо для определения СОЭ;

  3. время хранения пробы крови после взятия - не более 4 ч при комнатной температуре; при хранении крови при температуре +4 °С СОЭ можно исследовать в течение 24 ч, но перед выполнением анализа пробу крови необходимо прогреть до комнатной температуры;

  4. исследование СОЭ должно выполняться при температуре 18-25 °С;

  5. перед анализом проба крови должна быть тщательно перемешана;

  6. капилляр Вестергрена наполняют пробой венозной крови;

  7. время измерения результата - 60±1 мин.

Проба крови с ЭДТА имеет несколько преимуществ:

  1. сохраняет морфологию эритроцитов;

  2. не влияет на механизмы, которые приводят к осаждению эритроцитов;

  3. повышает стабильность пробы крови;

  4. не вызывает проблем, связанных с разведением пробы крови цитратом натрия.

Любой другой метод определения СОЭ перед его использованием в лаборатории в обязательном порядке должен быть подвергнут сравнению с «золотым стандартом» (эталонным методом). Кроме этих требований, любой метод определения СОЭ в лаборатории должен сопровождаться следующими процедурами контроля качества:

  1. проведением трехуровневого контроля качества с использованием контрольных материалов;

  2. или внутренним статистическим контролем качества, основанным на постоянном усреднении результатов измерения проб пациентов;

  3. участием во внешнем контроле качества.

  4. контролем функциональных возможностей считывающих датчиков анализатора во время каждой промывки.

Лаборатория может использовать любой метод определения СОЭ, отвечающий этим требованиям.

На результаты определения СОЭ классическим методом Вестергрена и другими методами могут оказывать существенное влияние ряд факторов преаналитического и аналитического этапов (не связанных с заболеванием пациента) производства лабораторных анализов:

  1. температура в помещении, где проводится анализ (повышение температуры в помещении на 1 °С увеличивает СОЭ на 3%);

  2. время хранения пробы (не более 4 ч при комнатной температуре);

  3. используемый антикоагулянт;

  4. вертикальность установки капилляра;

  5. длина капилляра;

  6. внутренний диаметр капилляра;

  7. степень разведения крови антикоагулянтом;

  8. величина гематокрита [низкие значения гематокрита (менее 35%) могут вносить искажения].

В целях снижения влияния этих факторов на результаты СОЭ были предприняты усилия по автоматизации анализа. Для автоматизации СОЭ используются специальные приборы - анализаторы СОЭ. Технологическими преимуществами автоматизированного измерения СОЭ являются:

  1. быстрота выполнения процедуры;

  2. уменьшение числа ручных манипуляций;

  3. стандартизация условий проведения анализа;

  4. возможность контроля качества.

Вместе с тем принципы работы анализаторов СОЭ различных производителей существенно отличаются. Существуют два подхода к автоматизации СОЭ: первый основан на автоматизации модифицированных методов Вестергрена, второй - автоматизации альтернативных методов определения СОЭ.

Большинство анализаторов СОЭ выполняют исследование из первичных вакуумных пробирок с ЭДТА. Метод, используемый в анализаторе, основан на модифицированной методике Вестергрена. СОЭ определяется с помощью оптической разницы высоты столбика эритроцитов до и после седиментации за 20-60 мин. Результаты корректируются с поправкой на температуру, а также математически преобразуются в значения по Вестергрену. Главным недостатком этой группы анализаторов является отсутствие возможности осуществлять трехуровневый контроль качества.

Анализаторы Test 1 и Roller 20 производства фирмы Alifax (Италия) используют технологию кинетического измерения агрегации эритроцитов, отличную от метода Вестергрена. Теоретическим основанием данного метода определения СОЭ служит агрегационная модель оседания эритроцитов, объясняющая этот процесс образованием агрегатов эритроцитов при адсорбции на них макромолекул, способствующих их адгезии, и оседанием агрегатов в соответствии с законом Стокса. Согласно данному закону, частица, плотность которой превышает плотность среды, оседает под действием силы тяжести с постоянной скоростью. Скорость оседания пропорциональна квадрату радиуса частицы, разнице ее плотности и плотности среды и обратно пропорциональна вязкости среды.

Test 1 - это полностью автоматический анализатор СОЭ производительностью до 180 проб в час. Для анализа используется кровь из вакуумных пробирок с ЭДТА, тех же, которые поступают на гематологические анализаторы. Вакуумные пробирки загружаются в анализатор (в специальные штативы), и все дальнейшие процедуры анализа выполняются в автоматическом режиме. Первоначально штативы с вакуумными пробирками тщательно перемешиваются со скоростью вращения 60 об/мин. Затем образец крови, извлеченный непосредственно из вакуумной пробирки с помощью закрытой аспирационной иглы, поступает в капиллярную трубку, где ускоряется, а затем останавливается (технология остановленного потока). Остановка пробы в капилляре вызывает агрегацию (оседание) эритроцитов. Для регистрации агрегации используется инфракрасный микрофотометр с длиной волны 650 нм. Импульсы, измеренные за единицу времени, затем используются для определения кривой седиментации для каждого образца с помощью математического алгоритма. Среднее уменьшение сигнала за единицу времени, называемое средним сигналом, и квадратный корень интегрального сигнала были преобразованы в сопоставимые значения с данными метода Вестергрена с помощью модели линейной регрессии. Технология остановленного потока позволяет уменьшить время получения результата до 20 с. Важным преимуществом анализатора служит то, что все измерения осуществляются при постоянной температуре 37 °С, которая является «золотым стандартом» для определения большинства аналитов.

Автоматический анализатор Roller 20 позволяет определять СОЭ в капиллярной и венозной крови, так как имеет два аналитических контура. Анализатор может работать как с вакуумными пробирками, так и с первичными микропробирками с ЭДТА для капиллярной крови.

Одновременная загрузка анализатора составляет до 20 проб, производительность - до 75 тестов в час.

Анализаторы компании Alifax измеряют кинетику агрегации эритроцитов, благодаря этому данная методика способна устранить влияние факторов преаналитического и аналитического этапов, присущих классическому методу Вестергрена и модифицированным методам, а также большинству анализаторов СОЭ, основанных на оседании. Корреляция данной технологии с классическим методом Вестергрена составляет 94-99%.

Для калибровки анализаторов компании Alifax и проведения регулярного контроля качества используются специальные латексные частицы. Наборы латексных контролей трех уровней выпускаются готовыми к использованию - низкий (3-6 мм/ч), средний (23-33 мм/ч) и высокий (60-80 мм/ч). На основании исследования контрольных материалов строится карта Леви-Дженнингса, а результаты регулярного внутреннего контроля качества (ВКК) оценивают согласно правилам Westgard.

2.4.2.2.3. Анализаторы мочи на тестовых полосках

Для оценки результатов реакций в реакционных зонах тест-полоски при исследовании мочи используются специальные анализаторы мочи, что позволяет избежать ошибок субъективного восприятия изменений цвета реагентных зон при визуальном анализе.

Приборы для считывания интенсивности цвета тест-полосок представляют собой отражательные фотометры или рефлектометры, которые являются фотометрическими устройствами для количественного измерения потоков света, отраженного поверхностью реакционной зоны тест-полоски. Лучи света, отраженные и рассеянные в разных направлениях, многократно отражаются от внутренней стенки сферы прибора, внутри которого создается равномерная освещенность, интенсивность которой определяется суммой всего отраженного исследуемой поверхностью света. В зависимости от конструкции прибора и цвета зоны измерение интенсивности окраски проводится на одной или нескольких длинах волн.

При определении результата анализа мочи на отражательном фотометре диагностическую полоску после удаления избытка мочи помещают в специальный держатель, транспортер или на место считывания результата (в зависимости от конструкции прибора). Анализатор мочи (отражательный фотометр) проводит полуколичественное измерение параметров в стандартном режиме. При работе на некоторых анализаторах нет необходимости предварительного удаления избытка мочи, так как он удаляется в процессе движения полоски на транспортере к фотометру, в котором происходит детекция результата. Иногда для удаления избытка мочи в анализаторе предусмотрена отдельная функция. После помещения полоски в анализатор происходит измерение и распечатывание результата. Патологические результаты отмечаются особыми пометками (флагами).

Анализаторы мочи разделяют на полуавтоматические и автоматические. В полуавтоматических анализаторах целый ряд процедур (погружение тест-полоски в емкость с мочой и ее последующее помещение на транспортер анализатора) осуществляет специалист лаборатории. Анализатор проводит фотометрическое измерение и распечатку результатов анализа. Полуавтоматические анализаторы мочи широко используются в небольших КДЛ, их производительность составляет 60-150 полосок в час.

В автоматических анализаторах мочи загрузка проб происходит в штативах с пробирками, а тестовые полоски загружаются одновременно в специальный отсек (карусель) в количестве 200 штук и более. После загрузки проб и тестовых полосок анализатор самостоятельно выполняет все аналитические процедуры. Эти автоанализаторы обладают большой производительностью (200-250 полосок и более в час), представляют собой закрытые системы, так как проводить исследование возможно на полосках для мочи только определенного изготовителя.

Использование тест-полосок позволяет сократить количество проб мочи для микроскопического исследования, так как на этапе исследования мочи методом сухой химии происходит отсеивание проб без отклонений при оценке физико-химических свойств мочи, а микроскопическому исследованию подвергается материал только с положительными результатами по одному из параметров тест-полосок. Кроме того, использование тест-полосок позволяет выявить клеточные элементы, подвергшиеся лизису (эритроциты, лейкоциты), что значительно повышает точность исследования и, соответственно, своевременную диагностику патологического процесса. При обнаружении патологического результата какого-либо аналита на тест-полосках в лаборатории проводят определение его концентрации химическими методами (подтверждающие тесты): количественное определение белка в моче с пирогаллоловым красным, сульфосалициловой кислотой или другим химическим методом, глюкозы - глюкозооксидазным или гексокиназным методом (на анализаторе глюкозы или биохимическом анализаторе).

2.4.2.2.4. Анализаторы осадка мочи

Анализаторы осадка мочи - это условное название этих анализаторов, так как для проведения исследования на них не требуется получение осадка мочи, анализ проводится в нецентрифугированной моче.

В автоматизации анализа осадка мочи используются различные аналитические технологии:

  1. совмещение процесса приготовления пробы (центрифугирования) непосредственно с процессом микроскопического анализа осадка в оригинальной центрифуге с центрифужными пробирками;

  2. компьютерное распознавание элементов мочевого осадка на цифровых фотографиях;

  3. проточная цитофлюориметрия элементов мочевого осадка.

Первая технология автоматизирует традиционную визуальную микроскопию с помощью одного расходного материала - специальной кюветы. Кювета - это камера, в которой исследуется образец осадка мочи. Учитывая, что каждый образец исследуется в новой одноразовой кювете, перемешивание и контаминация проб мочи при таком выполнении анализа практически исключены.

Предварительно перемешенная проба мочи вносится в кювету. Кювета имеет в своих стенках зоны, позволяющие осуществлять микроскопию (точки микроскопии). Она помещается в специальную центрифугу. Центрифуга управляется микропроцессором, что обеспечивает полную воспроизводимость условий подготовки проб, необходимую степень концентрации осадка и распределение его по зоне микроскопирования.

После центрифугирования кювета отправляется в микроскоп, где встроенный фотоаппарат делает ряд цифровых снимков. Прибор осуществляет автоматическую фокусировку в разных положениях, сохраняет хорошо сфокусированное изображение каждого поля зрения. Использованная кювета после исследования перемещается в отсек для отходов. Анализ готовых изображений осуществляется автоматически с помощью специального программного обеспечения, которое называется автоматическим модулем для анализа изображений.

Программное обеспечение анализатора способно обработать, распознать и классифицировать следующие элементы осадка: эритроциты, лейкоциты, клетки плоского эпителия, эпителиальные клетки, не являющиеся клетками плоского эпителия, гиалиновые цилиндры, патологические цилиндры, кристаллы и их основные виды, такие как кристаллы моногидрата оксалата кальция, кристаллы дигидрата оксалата кальция, кристаллы мочевой кислоты, кристаллы трипельфосфатов, бактерии, грибки, слизь, сперматозоиды.

Другой подход к автоматизации анализа осадка мочи основан на компьютерном распознавании элементов мочевого осадка на цифровых фотографиях. Принцип действия таких анализаторов основан на тонкослойной проточной микроскопии. При протекании мочи в непрерывном потоке через проточную ячейку микроскопа проводится запись видеоизображений или фотографирование с высокой скоростью (до 500 снимков в секунду) корпускулярных компонентов осадка, которые обрабатываются компьютером, классифицируются и выводятся на экран монитора для окончательного подтверждения специалистом лаборатории.

Ряд анализаторов клеточных элементов и компонентов осадка мочи используют комбинацию технологий - кондуктометрию и флюоресценцию лазерного пучка света. На этой технологии основана работа гематологических анализаторов поколения 5-diff: флюоресцентная проточная цитометрия, гидродинамическая фокусировка и кондуктометрия.

При прохождении через апертуру анализатора в потоке мочи корпускулярных элементов парные электроды отмечают изменение проводимости и регистрируется импедансный сигнал, что позволяет осуществлять подсчет форменных элементов в моче. Форменные элементы, гидродинамически сфокусированные (по принципу «струя в струе»), проходя через апертуру анализатора, пересекают луч аргонового лазера. При этом происходит рассеяние света, что детектируется фотодиодом (прямое светорассеяние), и возникает флюоресцентное свечение, детектируемое фотоумножителем, что позволяет провести дифференцирование элементов осадка. Результат анализа может быть представлен на экране монитора в графической форме в виде гистограмм и скетограмм и в цифровой форме с отметкой данных, выходящих за пределы нормы. Спектр определяемых показателей в осадке моче при использовании технологии проточной флюориметрии несколько меньше, чем при других технологиях, и включает следующие параметры осадка мочи: лейкоциты, эритроциты, эпителиальные клетки, почечные цилиндры, бактерии, малые круглые клетки, дрожжевидные клетки, сперматозоиды, кристаллы, патологические почечные цилиндры, слизь. Главное достоинство анализаторов проточного типа состоит в том, что они позволяют провести количественную оценку содержания лейкоцитов, эритроцитов и эпителиальных клеток в моче. Производительность таких анализаторов составляет до 100 проб мочи в час.

2.4.2.2.5. Мочевые станции

Мочевые станции - это комплексные, полностью автоматизированные аналитические системы, объединяющие в единое целое анализатор для исследования физико-химических свойств мочи и анализатор для исследования мочевого осадка. Они способны без вмешательства специалистов лаборатории выполнять анализ, загруженных в станцию проб мочи. Мочевые станции позволяют определить все показатели, входящие в общий анализ мочи.

Основные преимущества автоматических мочевых станций:

  1. возможность использования для анализа нативной мочи, без предварительной обработки;

  2. единая точка загрузки проб мочи (исследование физико-химических свойств и осадка мочи производится из одной пробирки);

  3. снижение количества ошибок за счет стандартизации аналитического этапа;

  4. освобождение специалистов лаборатории от массы рутинной работы по подготовке проб мочи к исследованию и их анализу;

  5. снижение количества проб для микроскопии осадка мочи. Дополнительная микроскопия или идентификация форменных элементов на экране монитора требуется: при наличии недифференцированных элементов (клеток эпителия, атипичных клеток и др.), несовпадении результатов количества клеток, определенных по тест-полоскам, и при подсчете форменных элементов анализатором;

  6. использование небольшого объема мочи, что удобно при отдаленной транспортировке проб и при сборе проб мочи у детей;

  7. сокращение времени общего анализа мочи до нескольких минут (в среднем общий анализ мочи при выполнении на мочевой станции готов в течение 4 мин).

2.4.2.2.6. Биохимические анализаторы

Биохимические анализаторы - это аналитические системы для биохимических исследований. Они способны определять концентрацию электролитов, белков, ферментов, продуктов метаболизма, гормонов и других веществ в любых видах биологического материала. По степени автоматизации исследований биохимические анализаторы делятся на автоматические фотометры (спектрофотометры), полуавтоматические и автоматические анализаторы.

Автоматические фотометры (спектрофотометры) позволяют регистрировать величину оптической абсорбции и производить элементарные математические расчеты с полученными величинами. Спектрофотометры подразделяют на одно- и многоканальные системы. Между собой они различаются по наличию (или отсутствию) ряда дополнительных возможностей, таких как термостатирование пробы, вывод результатов анализа на дисплей или печатающее устройство и др. В таких фотометрах внесение проб и реагентов в кювету, управление процессом фотометрирования и калибровки производится специалистом лаборатории вручную, и только представление данных анализа бывает автоматизировано. Именно поэтому такие методы анализа называют ручными. Автоматические фотометры предназначены для определения концентрации веществ в жидких биологических пробах по измеренному значению оптической абсорбции в стандартных кварцевых и стеклянных кюветах или в цилиндрических пробирках с длиной оптического пути 10 мм при проведении биохимических анализов кинетическим методом и по конечной точке.

Главной отличительной чертой автоматических фотометров (спектрофотометров) от полуавтоматических биохимических анализаторов является необходимость вручную вносить в измерительную кювету реакционную смесь, состоящую из пробы биологического материала и реактивов.

Полуавтоматические биохимические анализаторы требуют участия в работе с ними специалиста лаборатории, но сводят его функции к минимуму. Так же как и в автоматических фотометрах, специалист лаборатории смешивает реагенты и готовит пробы, но внесение их в кювету осуществляет сам анализатор. Для этого у него имеется специальное устройство с перистальтическим насосом, эластичными трубками и проточной кюветой (рис. 2.30).

pic 0040
Рис. 2.30. Вид и схема проточной кюветы

Проточные кюветы имеют длину оптического пути 10 мм. С помощью перистальтического насоса в оптическую кювету по одному каналу через трубку поступает анализируемая реакционная смесь, а по другому каналу через другую трубку жидкость удаляется из кюветы. Трубка, по которой поступает жидкость в кювету, находится над уровнем жидкости в кювете, а трубка, по которой производится отбор жидкости из кюветы, находится на уровне жидкости дна кюветы. При этом производительность канала для откачки жидкости из кюветы должна быть больше производительности канала подачи жидкости в кювету. Техническим результатом является обеспечение возможности хорошей промывки кюветы при поступлении в нее проб с сильно разнящимися концентрациями определяемого элемента, постоянного уровня жидкости в кювете и удаления пузырьков воздуха, которые всплывают на поверхность жидкости и не перекрывают световой поток при проведении измерений.

Термостатируемый кюветодержатель позволяет задавать необходимый диапазон температур для инкубации реагентов и протекания аналитической реакции.

В полуавтоматических биохимических анализаторах, как правило, имеется программное устройство, содержащее алгоритм фотометрирования по биохимическим методикам. Специалист лаборатории выбирает необходимый алгоритм и устанавливает исследуемый образец в прибор. Программное устройство автоматически выбирает спектральные диапазоны фотометрирования, последовательность измерений, временные интервалы измерений и т.д. При этом алгоритм предусматривает и процедуры калибровки с запоминанием калибровочных данных и автоматическим построением калибровочной кривой. Данные измерений могут предоставляться на устройствах индикации или распечатываться встроенными принтерами.

Полностью автоматизированные биохимические анализаторы требуют минимального участия специалиста лаборатории, который задает алгоритм работы анализатора в соответствии с заявкой на лабораторные тесты. Все остальные действия по подготовке пробы (выбор и смешивание реагентов, расчет результатов и др.) осуществляются в автоматическом режиме. Автоматические биохимические анализаторы выполняют большой спектр операций: отбор материалов и реагентов, их смешивание и нагрев, анализ, обработку и печать полученной информации, автоматическое промывание анализатора, калибровку и контроль качества.

По своим функциональным возможностям все автоматические анализаторы можно условно разделить на три типа:

  1. одноцелевые биохимические анализаторы, предназначенные для определения в анализируемой пробе лишь одного компонента биологической жидкости; к таким анализаторам относятся анализаторы глюкозы, HbAlc, лактата, альбумина и др.;

  2. анализаторы для определения целевой группы компонентов, например, для определения группы показателей для диагностики неотложных состояний: исследования газового состава крови, электролитов;

  3. многоцелевые биохимические анализаторы, предназначенные для определения содержания в биологических жидкостях большого количества различных по химической природе компонентов.

Многоцелевые автоматические биохимические анализаторы - самый распространенный и востребованный в лабораториях тип оборудования. Рассмотрим его устройство.

Любой биохимический автоматический анализатор имеет один блок (или несколько) для размещения реагентов, проб, дозаторы (или один дозатор) для проб и реагентов и реакционный узел (рис. 2.31). Среди разнообразных конструкций блока реагентов чаще всего встречается блок по типу карусели и реже линейный реагентный блок.

pic 0041
Рис. 2.31. Основные узлы автоматического биохимического анализатора
pic 0042
Рис. 2.32. Линейный реагентный блок

Реагентный блок по типу карусели имеет круговое расположение реагентов, как это показано на рис. 2.31. В современных моделях биохимических анализаторов карусель охлаждается до 10-15 °С, что обеспечивает сохранность реагентов на протяжении всего срока годности.

Линейный реагентный блок представляет собой штатив или горизонтальную площадку с гнездами для емкостей с реагентами (рис. 2.32). Чаще всего реагенты хранятся при комнатной температуре.

Конструкция блока проб в ряде анализаторов аналогична конструкции реагентного блока (линейная или карусель). Однако карусельный тип встречается гораздо чаще, так как имеет ряд преимуществ: возможность использовать первичные пробирки с кровью для установки непосредственно в карусель блока проб анализатора, размещения в нем дополнительных калибраторов или проб в процессе работы анализатора.

Реакционный узел представляет собой в простом варианте анализатора проточную кювету, в более сложных - термостатируемую платформу с реакционными кюветами, пробирками или планшетами, которые, в свою очередь, бывают одноразовыми или многоразовыми. В случае использования многоразовых кювет реакционный блок дополнительно оснащен автоматическим моющим узлом. В высокопроизводительных биохимических анализаторах в качестве реакционного блока выступает многоразовый реакционный ротор, состоящий из определенного количества кювет, промывку и просушку которых выполняет сам анализатор.

Фотометрическая система является основой получения информации об определяемом компоненте, из которой компьютер с мощным программным обеспечением собирает необходимые данные. Для получения многопараметрической информации биохимические анализаторы оснащены, как правило, полихроматорами, которые позволяют одновременно регистрировать оптическую плотность исследуемых растворов на нескольких длинах волн.

Источник света (как правило, галогеновая лампа) находится внутри карусели с измерительными кюветами, в которых содержатся пробы для измерения. Карусель через фиксированные промежутки времени, примерно через 20 с, совершает оборот, при котором все кюветы освещаются белым светом, проходящим через входную щель. Таким образом, каждые 20 с все кюветы, находящиеся на карусели, фотометрируются белым светом, причем часть из кювет может быть пустой или моется в этот период, тем не менее данные о них поступают в компьютер. Прошедший через кювету свет разлагается на решетке в спектр и измеряется серией (до 12 штук) детекторов, каждый из которых настроен на определенную длину спектра, включая измерение в ультрафиолете и ближнем инфракрасном диапазоне (полихроматор). Компьютер анализирует результаты измерений всех детекторов, предоставляет результаты в конечном виде, кроме того, компьютер через соответствующие датчики контролирует работу практически всех узлов анализатора. Таким образом, в фотометрах и спектрофотометрах происходит селекция светового сигнала, отражающего концентрацию субстрата или активность фермента в пробе. В биохимических анализаторах измеряются многократно многочисленные кюветы с пробами по нескольким спектральным характеристикам, а компьютер по заданной программе выбирает необходимые сигналы и на основе анализа их изменения рассчитывает концентрацию или активность аналитов. Типичная схема основных узлов фотометрического блока биохимического анализатора приведена на рис. 2.33.

Если объединить все основные блоки автоматического биохимического анализатора и пути прохождения анализируемой пробы, то его функционирование как единой системы можно представить в виде схемы, приведенной на рис. 2.34.

Исследуемая проба загружается в карусель для проб (1). Реагенты, необходимые для определения назначенного врачом аналита, размещаются в карусели блока реагентов (2), откуда с помощью дозатора (4) переносятся в кювету реакционной карусели (5), где происходит ее термостатирование (инкубирование) во встроенном термостате. В эту кювету с помощью дозатора (3) добавляется нужное количество пробы, и происходит ее перемешивание. Если для определения аналита используются два реагента, второй реагент добавляется после внесения пробы.

pic 0043
Рис. 2.33. Схема основных узлов фотометрического блока биохимического анализатора
pic 0044
Рис. 2.34. Схема функционирования биохимического автоматического анализатора

Полученная реакционная смесь термостатируется определенное время (в зависимости от методики определения аналита) и затем подвергается фотометрии. В дальнейшем кювета после мойки и сушки с помощью моющего узла (6) может использоваться для исследования другой пробы. Фотометрический сигнал поступает в регистрирующее устройство (7), а оттуда - в компьютер для анализа и проведения расчетов. Программное обеспечение компьютера осуществляет синхронизацию (<→) работы всех узлов и блоков автоматического анализатора.

Основные преимущества автоматических биохимических анализаторов:

  1. широкий спектр определяемых веществ, таких как метаболиты, ферменты, специфические белки, гормоны, электролиты, факторы свертывания крови, иммуноглобулины (Ig), чужеродные соединения (наркотики, лекарственные вещества и др.);

  2. экономное расходование реагентов; при исследовании с использованием фотоколориметра требуется 3-4 мл реактива, на автоматическом анализаторе - 150-300 мкл (и менее), отсюда 15-20-кратная экономия реагентов;

  3. возможность охлаждать жидкие реагенты «на борту» анализатора, что обеспечивает поддержание их высокого качества;

  4. использование небольшого объема пробы для анализа (3-7 мкл);

  5. возможность автоматического разведения пробы при высоких концентрациях аналита;

  6. возможность внепланово выполнять неотложные исследования;

  7. высокая производительность - от сотен до тысяч анализов в час;

  8. гибкость в работе - возможность использования разных методик анализа: по конечной точке, двух- и многоточечной кинетике, с привлечением технологии турбидиметрии (иммунонефелометрии), ионометрии, поляризационной флюориметрии и др.;

  9. наличие компьютера и программного обеспечения:

    • встроенная программа контроля качества, в том числе: оценка аналитической вариации с расчетом среднеквадратичного отклонения и коэффициента вариации на разных уровнях концентраций контрольных сывороток с иллюстрацией на графике Леви-Дженнингса; определение процента отклонения от линейности в измерениях по кинетике, калибровка по эталону для нелинейных реакций; контроль за пригодностью рабочих растворов реагентов по соответствию их оптической плотности значениям;

    • возможность вносить в компьютерную память анализатора все необходимые параметры биохимической реакции: сведения о длине волны, характере измерения, температурном режиме, значении эталона (или коэффициенте), контроле на реактивы, пробе, продолжительности измерения, времени задержки, инкубационном периоде, объеме пробы и реагента и др.;

    • возможность архивировать данные (результаты анализа, сведения о больных);

    • возможность передачи данных от анализаторов в лабораторную и медицинскую информационные системы.

Помимо выраженных достоинств, каждый автоматический биохимический анализатор характеризуется определенными технико-аналитическими возможностями. По возможности применения для исследований реагентов биохимические анализаторы условно делят на открытого и закрытого типа. Возможность программирования анализатора под реактивы разных фирм-производителей путем введения в программу компьютера всех необходимых параметров биохимической реакции - это так называемый открытый тип биохимического анализатора. Когда конструкция анализатора или программное обеспечение не позволяют использовать в работе анализатора реагенты других производителей, то это анализатор закрытого типа.

Большое значение имеет производительность биохимического анализатора - определяется количеством анализов (тестов), которые способен выполнить анализатор за 1 ч работы (тесты в час). При этом производительность анализаторов оценивается по фотометрическим тестам, а если анализатор оснащен ионоселективной приставкой (метод потенциометрии) для определения электролитов, то производительность ионоселективного блока оценивается отдельно, а затем приводится суммарная производительность анализатора (количество фотометрических тестов за 1 ч работы + количество ионоселективных тестов за 1 ч работы). По производительности биохимические анализаторы разделяют на группы:

  • низкой производительности - до 150 тестов в час;

  • средней производительности - до 400 тестов в час;

  • высокой производительности - 400-1200 тестов в час;

  • высокоавтоматизированные системы наибольшей производительности - более 1200 тестов в час.

Среди других технико-аналитических возможностей биохимических анализаторов следует обратить внимание на следующие:

  1. габариты и массу, по которым анализаторы делят на настольные (малогабаритные) и напольные (крупногабаритные);

  2. систему последовательности выполнения анализов. Различают две системы организации работы анализаторов:

    1. 1) от методики к методике, то есть по тестам, когда для всех проб выполняется один и тот же тест, затем для этих проб другой тест и т.д., пока все тесты для анализируемых проб не будут выполнены;

    2. 2) по пациентам, когда выполняются все тесты для первого пациента, затем для второго и т.д.;

  3. количество позиций для размещения контейнеров с реактивами в реагентном блоке. От их количества зависит, сколько методик, а значит, и количество аналитов может определять анализатор;

  4. потребности в очищенной воде для проведения анализов. Чем выше производительность анализатора, тем большее количество воды он потребляет; потребление воды может составлять 20-40 л/ч, поэтому часто анализаторы подключаются напрямую к станциям водоподготовки;

  5. особенности оптической системы регистрации: источник света (ксеноновая, галогеновая лампа с длительным сроком эксплуатации, лампа накаливания и др.); диапазон длин волн; монохрома-тизация светового потока с помощью дифракционной решетки, набора простых или интерференционных светофильтров; режим фотометрического измерения (монохроматический, бихроматический);

  6. характер измерения оптической абсорбции раствора и оценки результата:

    1. а) по конечной точке;

    2. б) по кинетике;

    3. в) по двум точкам;

    4. г) по фиксированной абсорбции;

    5. д) по калибровочной кривой;

    6. е) оценка результатов по нелинейной калибровке (иммунотурбидиметрия).

2.4.2.2.7. Коагулометры

Коагулометры, или анализаторы гемостаза, представляют собой приборы, предназначенные для исследований свертывающей системы крови в КДЛ. Функция коагулометров состоит в регистрации начала коагуляции после добавления в анализируемую пробу (плазму) реагентов, активирующих свертывание крови.

Основным различием в принципе действия коагулометров является способ регистрации образования сгустка в исследуемой пробе. Момент образования сгустка в коагулометрах может регистрироваться механическим (по остановке вращающегося в пробе стального шарика), оптическим (по резкому изменению оптической плотности реакционной смеси) или оптико-механическим (комбинация оптического и механического способов) способом. На основе этого различия выделяют механические, оптические и оптико-механические типы коагулометров.

1. Механические коагулометры. Принцип работы таких коагулометров основан на механическом действии образующегося сгустка плазмы (крови) на шарик, помещенный в кювету с пробой. Шарик находится в кювете в наклонном положении. Пока в кювету с исследуемой плазмой не добавлен реагент, запускающий коагуляцию, шарик остается на одном месте. После добавления реагента начинается коагуляция, шарик, подхваченный сгустками плазмы, начинает вращаться, уходит от магнитного датчика, который регистрирует изменение магнитного поля как момент начала тромбообразования. Момент образования сгустка регистрируется по остановке вращающегося в пробе стального шарика. При других вариантах устройства коагулометра регистрируется прекращение вращения внутри кюветы магнитной мешалки, захват сгустка опускающимся в кювету крючком или иные схемы, основанные на переходе жидкой плазмы в сгусток. Большинство механических коагулометров шариковые. Неоспоримым преимуществом механических коагулометров является возможность регистрации коагуляции цельной крови, что остается актуальным в педиатрической практике и при скрининге.

Принцип работы измерительной кюветы механического коагулометра приведен на рис. 2.35. Кювета с плазмой расположена под наклоном и вращается, шарик стоит на месте, не вращается. В кювету вносится плазма и добавляется активатор свертывания. Проба прогревается при температуре 37 °С. Затем в кювету добавляется раствор кальция, который запускает свертывание крови. В момент свертывания шарик захватывается сгустком и начинает вращаться; как только шарик уходит от датчика, меняется магнитное поле, прибор регистрирует момент начала свертывания плазмы. При образовании нитей фибрина шарик останавливается, анализатор фиксирует время его остановки.

2. Оптические коагулометры. Оптические коагулометры улавливают момент образования фибринового сгустка по изменению способности плазмы пробы пропускать свет (рис. 2.36). Источник излучения (светодиоды) направляет свет на прозрачную кювету с плазмой. Анализы с цельной (непрозрачной) кровью на таком типе коагулометров не производят. В момент добавления в кювету реагентов начинается образование нитей фибрина, которые изменяют плотность исследуемой плазмы. Выпавшие в кювете нити фибрина меняют световой поток, падающий на фотодиод. Фотоприемник фиксирует изменение оптической абсорбции, передает это изменение на процессор, который начинает отсчет времени коагуляции и анализирует данные. После необходимых расчетов анализатор выдает результат анализа.

pic 0045
Рис. 2.35. Принцип работы механического коагулометра
pic 0046
Рис. 2.36. Принцип оптической регистрации сгустка

Существует несколько типов оптических коагулометров.

Турбидиметрические коагулометры.

Турбидиметрические коагулометры регистрируют момент свертывания крови по приросту оптической абсорбции. При свертывании плазмы происходит резкое изменение светопропускания или рассеивания. В коагулометре программируется, при каком приросте оптической плотности по отношению к исходному уровню регистрируется момент свертывания. Время от внесения в оптическую кювету активатора свертывания до момента достижения заданного прироста оптической плотности определяется как время свертывания плазмы в исследуемом тесте. Турбидиметрический принцип используется при определении показателей свертывания плазмы на многофункциональных фотометрах и биохимических анализаторах. Фотометрический канал при этом программируется на достижение фиксированной величины абсорбции.

Нефелометрические коагулометры.

Нефелометрические коагулометры определяют момент образования сгустка по изменению рассеяния света. Новейшие разработки в этой области технологий используют принцип определения сгустка по боковому рассеиванию света. Метод рассеивания обеспечивает высокое качество анализов - высокую специфичность и чувствительность метода детекции сгустка даже для липемичной или иктеричной плазмы.

3. Оптико-механические коагулометры. Коагулометры этого класса характеризуются способностью регистрировать выпадающие хлопья фибрина даже без формирования плотного сгустка, что бывает при приеме пациентами антикоагулянтов, а также в случаях коагулопатий. В этих анализаторах предусмотрена возможность выбора оптического или механического метода регистрации (то есть в одном приборе совмещены оба описанных ранее способа). Наличие двух способов регистрации фибринового сгустка делает эти приборы универсальными - они могут использоваться при работе с любым видом биопробы (плазмой или цельной кровью, в том числе капиллярной кровью из пальца) в различных разбавлениях и с применением любых реактивов, в том числе непрозрачных.

Таблица 2.27. Различия коагулометров в способах регистрации сгустка

Виды тестов и проб

Механический

Оптический

Оптико-механический

турбидиметрия

нефелометрия

Клотинговые тесты

Да

Да

Да

Да

Хромогенные тесты

Нет

Да

Нет

Нет

Иммунотурбидиметрические тесты (D-димер)

Нет

Да

Нет

Нет

Вид пробы

Плазма, капиллярная кровь

Плазма

Плазма

Плазма, капиллярная кровь

Исследование липемичных, иктеричных, гемолизированных проб

Да

Нет

Нет

Да

Перемешивание реакционной смеси (шарик, стержень)

Да

Да

Нет (отсутствие мешалок)

Да

Адаптация к любым реагентам

Да

Нет

Нет

Да

Автозапуск измерения

Нет (стартовая пипетка или запуск вручную)

Да

Да

Да

Различия коагулометров по способам регистрации сгустка и их возможностям выполнять коагуляционные тесты суммированы в табл. 2.27.

По степени автоматизации процесса подачи исследуемых проб плазмы и реагентов коагулометры делятся на две основные группы: полуавтоматические и автоматические.

Полуавтоматические коагулометры представляют собой программируемые механические, оптические или оптико-механические анализаторы, в которых дозирование плазмы и реагентов осуществляется специалистом лаборатории, а измерение времени образования сгустка и пересчет времени свертывания в единицы теста выполняется прибором автоматически. Полуавтоматические анализаторы позволяют определить результаты при незначительных объемах пробы - 50-100 мкл, что снижает расход реагентов и сводит к минимуму объем забираемой крови. По числу регистрирующих каналов полуавтоматические коагулометры подразделяются на одно-, двух-, четырехканальные.

С помощью полуавтоматических коагулометров можно осуществляют ВКК по всем определяемым показателям, а у двух- и четырех-канальных коагулометров предусмотрена возможность дублирующих определений и вычисления коэффициента вариации (CV, %) между двумя каналами. При измерениях в двух каналах одновременно (парное измерение одной и той же биопробы) осуществляется расчет среднего значения. В коагулометрах реализован автоматический алгоритм контроля качества калибровок: при неверной калибровке анализатор выдает соответствующее сообщение-подсказку и не позволяет проводить дальнейшие измерения. Вместе с тем процедура ВКК осуществляется ручным способом - исследование контрольных образцов плазмы трех уровней.

В автоматических коагулометрах добавление и изменение объемов применяемых реагентов, подача образцов плазмы для исследования происходят автоматически, без участия специалиста лаборатории, также имеется алгоритм, позволяющий одновременно выполнять разные тесты для образцов плазмы, автоматическую регистрацию и запоминание результатов исследования с возможностью последующей обработки этих данных. Другими словами, в автоматических коагулометрах все элементы аналитического процесса выполняются без участия специалиста лаборатории. Автоматические анализаторы гемостаза обладают большим спектром определяемых параметров коагулограммы и имеют высокую производительность.

По числу регистрирующих каналов автоматические коагулометры, так же как и полуавтоматические, подразделяются на одно-, двух-, четырех- и многоканальные. Большинство современных автоматических коагулометров являются четырех- или многоканальными, этим достигается высокая производительность этих анализаторов. Количество каналов, как правило, не бывает более 10.

Конструкция всех имеющихся на современном рынке моделей автоматических коагулометров позволяет автоматизировать процесс от загрузки проб до получения конечного результата, а также производить обработку большого количества (до 40) проб за одну загрузку, что позволяет получить производительность до 360 тестов в час. Несколько приборов могут быть объединены в единую сетевую систему с централизованным управлением. Автоматические коагулометры, как правило, являются открытыми системами. Они могут быть адаптированы к реагентам любых производителей. В коагулометрах реализован автоматический контроль качества.

2.4.2.2.8. Проточные цитофлюориметры

Для исследования субпопуляционного состава клеток периферической крови в практике КДЛ применяется метод проточной цитометрии с использованием флюоресцентно меченных моноклональных антител. Метод позволяет проводить иммунофенотипическую оценку различных клеточных линий и определять соотношение популяций лимфоцитов крови.

В основе метода проточной цитометрии лежит измерение параметров каждой отдельно взятой клетки в проходящем свете лазера. Для количественного определения популяционного состава лейкоцитов используется способность их рецепторов (CD) взаимодействовать со специфическими моноклональными антителами с образованием стабильных комплексов на поверхностной мембране клетки. В качестве метки моноклональных антител применяют флюорохром - флюоресцеина изотиоцианат, фикоэритрин, перидинин-хлорофилл-белковый комплекс и др. Суспензию предварительно окрашенных флюоресцирующими красителями (моноклональные антитела, конъюгированные с флюоресцентной меткой) клеток под давлением пропускают через капилляр цитометра. Клетки образуют поток, состоящий фактически из одного ряда клеток. Когда такой поток пересекает сфокусированный лазерный луч, в точке пересечения потока и луча одновременно оказывается, как правило, только одна клетка. Быстродействующие датчики, расположенные вблизи измерительной ячейки, фиксируют рассеивание под углом от 2 до 19°, которое называется прямым рассеиванием и характеризует размеры клеток, и под углом 90° (боковое рассеивание, характеризующее особенности внутриклеточных структур). Измерение этих двух параметров позволяет выявлять разные типы клеток. Одновременно с этим регистрируется излучение флюоресцентных меток, имеющее строго определенную для каждого флюорохрома длину волны. Свет определенной длины возбуждает молекулы флюоресцирующих красителей, связанных с различными клеточными компонентами, при этом может происходить одновременное возбуждение нескольких разных красителей, что позволяет оценить сразу несколько клеточных параметров. Свет, испускаемый красителями, собирают с помощью системы линз и зеркал и разлагают на компоненты. Прибор снабжен фотодетекторами, позволяющими измерять флюоресценцию различных флюорофоров. Световые сигналы детектируют, преобразуют в электрические импульсы. Клетка, которая обладает необходимой характеристикой, на выходе из капилляра получает либо положительный, либо отрицательный заряд. При прохождении потока между заряженными пластинами исследуемые клетки отклоняются в сторону противоположно заряженной пластины и попадают в соответствующий приемник. В дальнейшем проводится анализ больших массивов данных с помощью программного обеспечения. Принцип проточной цитометрии схематически изображен на рис. 2.37.

Использование нескольких флюоресцентных меток позволяет проводить одновременный двух-, трехцветный анализ и более, так как каждый флюорохром при прохождении через луч лазера испускает свет различной длины волны. Эта методика позволяет не только охарактеризовать каждую субпопуляцию иммунокомпетентных клеток, но и более точно выявить какой-либо их дефект.

Иммуноцитофлюориметрический анализ клеток производится по следующим основным параметрам:

  • FSC (Forward Side Scatter) - показатель прямого светорассеяния, который характеризует размеры клеток;

  • SSC (Side SCatter) - показатель бокового светорассеяния, который отражает оптическую неоднородность цитоплазмы клеток, характер клеточных включений и гранулярность клетки, позволяет судить о соотношении размеров ядра и цитоплазмы;

  • FL1, FL2 - каналы детекции специфического флюоресцентного сигнала красителя на разной длине волны.

pic 0047
Рис. 2.37. Принцип работы проточного цитометра (а, б)

Современные модели приборов могут быть оснащены тремя лазерами или более и четырьмя фотоумножителями и более, что позволяет регистрировать различные флюорохромы на разных длинах волн.

2.4.2.2.9. Иммуногематологические анализаторы

Принципы работы современных иммуногематологических анализаторов определения антигенных систем эритроцитов и антител к эритроцитам основаны на использовании методов с гелевыми картами и твердофазной микроплашечной технологии.

Выявление антигенов эритроцитов в гелевых картах осуществляется методом агглютинации в геле. Гелевые карты представляют собой пластиковые карточки, в которые встроено от пяти до восьми пробирок. На рис. 2.38 приведена гелевая карточка с шестью пробирками. В пяти пробирках содержится смесь геля и антисывороток, шестая пробирка содержит нейтральный гель и служит в качестве контроля.

pic 0048
Рис. 2.38. Гелевая карточка для определения антигенов эритроцитов по системе АВ0

При добавлении исследуемых эритроцитов в пробирку с гелем, содержащую, например, анти-А-антитела, при наличии антигена А на эритроцитах происходит реакция агглютинации, которая усиливается при центрифугировании гелевой карты. Образующиеся агглютинины после центрифугирования остаются в верхней части пробирки, так как не проходят через гель из-за большого размера (положительный результат). При отсутствии антигена в исследуемой пробе крови эритроциты не образуют агглютинатов с антисывороткой, при центрифугировании легко проходят через гель и оседают на дне пробирки (отрицательный результат).

В зависимости от силы реакции агглютинации в гелевой среде принята следующая оценка полученных результатов (рис. 2.39):

  • сильноположительный (++++) - образовавшиеся агглютинаты эритроцитов задержались на поверхности геля;

  • положительный (+++) - агглютинаты располагаются в верхней трети столбика геля;

  • слабоположительный (++) - агглютинаты фиксированы в верхних двух третях геля;

  • очень слабоположительный (+) - агглютинаты располагаются в нижней трети геля;

  • отрицательный (-) - эритроциты формируют на дне микропробирки компактный осадок.

pic 0049
Рис. 2.39. Оценка результатов агглютинации в гелевых карточках

Гелевая технология в настоящее время полностью автоматизирована, а современные иммуногематологические анализаторы осуществляют раскапывание проб крови, инкубирование, центрифугирование гелевых карт, проведение анализа всего спектра антигенных систем эритроцитов и антител к эритроцитам, а также интерпретацию и архивирование результатов исследований.

В твердофазной микроплашечной технологии антитела к эритроцитам предварительно иммобилизованы (прикреплены) к дну лунок полистиреновых микропланшетов. После внесения в лунки микропланшета исследуемых эритроцитов при наличии на них соответствующих антигенов при центрифугировании происходит реакция агглютинации. Таким образом, в случае положительной реакции образуются комплексы «антиген-антитело», посредством которых исследуемые эритроциты фиксируются к подложке (дну лунок). Вследствие этого исследуемые эритроциты покрывают поверхность лунок клеточным слоем.

pic 0050
Рис. 2.40. Твердофазная микроплашечная технология

При отрицательной реакции - отсутствии антигенов - исследуемые эритроциты не фиксируются к подложке. В этом случае при центрифугировании исследуемые эритроциты образуют компактный осадок в виде пуговицы на дне лунки (рис. 2.40).

Для определения антител к антигенам эритроцитов в исследуемой пробе крови используют микропланшеты, в которых на поверхности иммобилизованы мембранные антигены эритроцитов.

Твердофазная микроплашечная технология полностью автоматизирована. Иммуногематологические анализаторы, использующие данную технологию, обладают высокой производительностью и точностью.

2.4.2.2.10. Иммунохимические анализаторы

В своей работе все иммунохимические анализаторы используют методы анализа, основанные на реакции «антиген-антитело» как с применением химических и физических меток и последующим измерением фотометрических величин светового потока при его прохождении через растворы реакционной смеси, так и без меток с последующей визуальной оценкой. Все эти методы можно объединить понятием «иммунологические методы». Эти методы применяют в целях:

  • диагностики инфекционных заболеваний (выявления различных специфических антител к инфекционным агентам и их антигенов);

  • выявления и определения уровня гормонов и лекарственных препаратов в биологических пробах;

  • выявления иммунных комплексов;

  • определения общего IgE и специфических IgE-антител;

  • определения изотипов (IgG, IgM и др.) антител к конкретному антигену;

  • определения специфических белков в сыворотке крови (тропонина, ферритина, фибронектина, D-димера и др.);

  • выявления онкомаркеров;

  • определения антигенов на поверхности или внутри клетки с помощью моноклональных антител (иммуногистохимический анализ);

  • определения цитокинов в биологических жидкостях.

Такая революция стала возможна благодаря методам генной инженерии, которые позволили синтезировать и получать как чистые белки, так и моноклональные антитела к ним, а технологическая возможность присоединения к комплексам «антиген-антитело» различных химических и физических меток сопровождалась небывалым расцветом лабораторных технологий. В практику КДЛ пришли методы иммунотурби-диметрии, иммуноферментного анализа, иммунохемилюминесценции, иммунофлюоресценции, радиоиммунного анализа и др. Основные методы иммунного анализа приведены в табл. 2.28.

Иммунотурбидиметрия - это количественное измерение концентрации специфических белков по изменению мутности раствора при реакции «антиген-антитело». Этот метод характеризуется достаточно высокой чувствительностью, которую можно повысить за счет использования латексных частиц, а также широкой возможностью автоматизации на биохимических анализаторах. Метод широко используется в практике КДЛ для определения уровня Апо А1 и В, α-антитрипсина, α2-макроглобулина, а1-кислого гликопротеина, антитромбина III, це-рулоплазмина, С1-эстеразы, компонентов комплементов С3 и С4, гап-тоглобина, Ig (IgG, IgA, IgM), компонентов Ig к (легкие цепи Ig) и λ (легкие цепи Ig), преальбумина, трансферрина, ферритина.

Методы иммунного анализа

.

Метод Метка Сущность сигнала

Иммунотурбидиметрия

Антитела.

Латекс.

Золото

Агрегация и рассеивание света. Рассеивание света. Абсорбция

Иммуноферментный анализ

Щелочная фосфатаза. Р-Галактозидаза. Пероксидаза хрена. Глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа

Фотометрия

Иммунофлюоресценция

Флюорофор:

  • прямая маркировка;

  • р-галактозидаза;

  • пероксидаза хрена.

Ферменты:

  • щелочная фосфатаза;

  • Р-галактозидаза;

  • пероксидаза хрена

Флюоресценция

Иммунолюминесценция

Щелочная фосфатаза. Р-Галактозидаза. Пероксидаза хрена. Люцифераза

Фотометрия

Иммунохемилюминесценция

Прямая маркировка:

люминол.

Ферменты:

  • щелочная фосфатаза;

  • Р-галактозидаза;

  • пероксидаза хрена;

  • люцифераза;

  • аквеорин;

  • хелат рутения

Фотометрия

Радиоиммунный

14С (β-лучи). 3Н (β-лучи). 125I (у-лучи)

Фотоны. Фотоны. у-Лучи

Иммунотурбидиметрия служит основным методом для исследования гликозилированного гемоглобина (НЬА1с). Этот двухстадийный метод основан на конкурентном связывании общего гемоглобина и HЬА1с со специфическими латексными частицами пропорционально их концентрации. Затем происходит связывание гликогемоглобина и специфических мышиных моноклональных антител, которые, в свою очередь, взаимодействуют с козьими поликлональными антителами к IgG мыши, вызывая агглютинацию латексных частиц. Степень агглютинации зависит от количества связанного с латексными частицами гликогемоглобина НЬА1с. Увеличение мутности смеси измеряется фотометрически.

Метод ИФА основан на высокоспецифической иммунологической реакции антигена с соответствующим антителом с образованием иммунного комплекса. При этом один из компонентов конъюгирован с ферментом. В результате реакции фермента с хромогенным субстратом образуется окрашенный продукт, количество которого можно определить фотометрически. Этот метод наиболее широко используется в практике лабораторий для серологической диагностики вирусных, бактериальных, грибковых и других инфекций, определения гормонов и онкомаркеров, специфических белков. Детально метод ИФА рассмотрен в предыдущей главе.

Хемилюминесценция - это процесс излучения фотонов при переходе электронно-возбужденных продуктов окислительных химических реакций в исходное энергетическое состояние. На этом физико-химическом феномене базируется метод иммунохемилюминесцентного анализа. В иммунохемилюминесцентном анализе, так же как в ИФА, используется иммунологическая реакция с участием ферментов и антител, а в качестве субстрата присоединяются люминофоры - вещества, светящиеся в ультрафиолете (люмогенный субстрат). Уровень свечения измеряется на специальных приборах - люминометрах. Хемилюминесцентные реакции основаны на способности люминола светиться при окислении перекисью водорода. Для усиления сигнала используются различные соединения, например, люциферин, фенолы, и в этом случае интенсивность люминесценции усиливается в 10-100 раз, в отдельных вариантах - в 500 раз (усиленный хемилюминесцентный анализ). Люминесцентный сигнал очень стабилен, его уровень достигает максимума за 30 с (для сравнения: цветная реакция с использованием пероксидазы хрена и О-фенилендиаминдигидрохлорида в качестве индикатора в ИФА полностью развивается лишь за 30 мин).

Методы иммунохемилюминесцентного анализа делят на биолюминесценцию и хемилюминесценцию. Сущность биолюминесцентного иммуноанализа состоит в том, что в реакционную систему входят кофакторы (АТФ или NAD), субстрат (люциферин) и фермент (люциферазы светлячков или бактерий). В хемилюминесцентном иммуноанализе в реакционную систему добавляют субстрат, окислитель, фермент-катализатор. В зависимости от используемой метки выделяют разновидности хемилюминесцентного иммуноанализа:

  1. в одних методах в качестве метки используют фермент-катализатор - пероксидазу, микропероксидазу (фрагмент цитохрома С); в настоящее время наибольшее распространение получил иммунохемилюминесцентный анализ с двумя субстратами (люминол + люциферин) и пероксидазой в качестве метки; чувствительность метода составляет 10-13 М антигена;

  2. в других методах в качестве метки применяют молекулы субстрата (изолюминол, эфиры акридина). Метод обладает высокой чувствительностью (10-12 М, или до 0,2 пг, антигена для изолюмино-ла, до 10-18 М антигена - для эфиров акридина);

  3. в третьих методах в качестве метки для конъюгата антител вместо фермента используется ион металла рутения (Ru), вблизи платинового электрода двухвалентный рутений (Ru+2) окисляется в трехвалентное состояние (Ru+3). В реакции в качестве поддержки используется трипропиламин (ТРА), который окисляется в ТРА+ - радикал, теряя при этом протон. Этот радикал передает электрон Ru+3, создавая электронно-возбужденный Ru+2, который возвращается в базовое состояние, испуская фотон. Данная разновидность хемилюминесцентного иммуноанализа известна под названием «электрохемилюминесцентный анализ» и широко представлена в практике КДЛ в виде иммунохимических анализаторов Elecsys фирмы Roche Diagnostics.

Во всех иммунологических методах реакция «антиген-антитело» происходит на твердой поверхности стенок пробирки, поверхности микропланшетов или сферических бусинках, которые имеют относительно небольшую реакционную поверхность, что ограничивает чувствительность метода. Кроме того, продолжительность диффузии слишком велика для того, чтобы антиген (или антитело) достиг равновесия связывания, что является проблемой, особенно для больших молекул белков-антигенов. Для преодоления этих ограничений стали применять микрочастицы. Данная технология в полной мере воплощена в анализаторах на основе метода биолюминесцентного и хемилюминесцентного анализа. Микрочастицы имеют размеры от 0,8 до 100 нм. Они представляют намного большую поверхность для реакции «антиген-антитело» на единицу массы. В результате длительность диффузии существенно уменьшается и возрастает скорость реакции, соответственно, время получения результата анализа сокращается. Однако дисперсная фаза микрочастиц требует применения устройств для разделения связанной и свободной фракций. В современных иммунохимических анализаторах эта проблема решена за счет использования магнитных частиц, поскольку они могут быть отделены из раствора (свободной фазы) применением магнитов. Магнитные частицы могут быть сферической и неправильной формы. У последних площадь поверхности больше до 10 раз по сравнению со сферическими. Именно поэтому метод иммунохемилюминесцентного анализа обладает большей аналитической специфичностью и чувствительностью по сравнению с традиционным ИФА на планшетах и занимает меньше времени в КДЛ.

Иммунофлюоресцентный анализ основан на связывании антител, меченных флюорохромом (например, флюоресцеином изотиоцианатом), с антигенами. Концентрация вещества оценивается по интенсивности излучения в ультрафиолетовых лучах, возбуждающих свечение флюорохрома. Для измерения результатов иммунофлюоресцентного анализа в лабораториях используют анализаторы (флюориметры) или оценивают визуально с помощью флюоресцентной микроскопии (светящиеся комплексы «антиген-антитело» хорошо видны при микроскопии). Реакцию иммунофлюоресценции используют для изучения клеточных антигенов (наиболее часто при системных заболеваниях соединительной ткани), выявления вируса в зараженных клетках и обнаружения бактерий и риккетсий в мазках.

Во всех этих иммунологических методах, за исключением иммуно-турбидиметрии и радиоиммунного анализа, помимо высокоспецифической иммунологической реакции антигена с соответствующим антителом с образованием иммунного комплекса, происходит химическая реакция с образованием окрашенного продукта, свечения или электронного возбуждения продукта реакции. Именно поэтому анализаторы, используемые для измерения продуктов этих реакций, получили название «иммунохимические анализаторы».

Иммунохимический анализатор - это сложная диагностическая система, включающая программное обеспечение, наборы диагностических реагентов для высокоспецифической иммунологической реакции антигена с соответствующим антителом с образованием иммунного комплекса, блоки автоматизации процедур анализа, регистрирующее устройство для измерения продуктов реакции и расходные материалы. Однако в процессе разных иммунохимических реакций образуются различные продукты, для измерения которых необходим специфический регистратор. В зависимости от типа иммунохимических реакций и методов регистрации продуктов этих реакций выделяют следующие виды иммунохимических анализаторов:

  1. иммуноферментные;

  2. иммунохемилюминесцентные;

  3. иммунолюминесцентные;

  4. иммунофлюоресцентные.

По степени автоматизации исследований иммунохимические анализаторы делятся на автоматические фотометры (спектрофотометры), полуавтоматические и автоматические анализаторы.

В лабораториях наиболее широко применяются все три типа иммуноферментных анализаторов. В автоматических спектрофотометрах (вертикальный фотометр, ридер) внесение проб и реагентов в лунки планшетов (кювет) и управление процессом фотометрирования производится специалистом лаборатории, и только измерение результатов анализа автоматизировано. Спектрофотометры отличаются от фотометров возможностью выбора регистрируемых длин волн. В фотометрах это различные светофильтры с дискретными длинами волн: 230, 340, 405, 414, 415, 450, 492, 505, 545, 595, 600, 620, 630, 650, 655, 690, 700, 750, 980 нм. Спектрофотометры позволяют проводить измерения при любой длине волны - от ультрафиолетового диапазона до видимой области спектра. Между собой спектрофотометры различаются по наличию (или отсутствию) ряда дополнительных возможностей, таких как термостатирование пробы, встряхивание планшета, вывод результатов анализа на дисплей или печатающее устройство и др. Спектрофотометры подразделяют на одно- (встречаются редко) и многоканальные системы измерения результатов. В многоканальных системах измерение результатов проводится одновременно во всех лунках планшета или количество считываемых лунок задается специалистом лаборатории.

Полуавтоматические ИФА-анализаторы представляют собой комплекс оборудования, который обычно включает автоматический спектрофотометр и планшеточный промыватель (вошер). Промывка планшета - самая частая процедура иммуноферментного анализа. Использование планшеточного промывателя позволяет автоматизировать эту процедуру. Планшеточные промыватели могут сильно отличаться друг от друга по своим функциональным возможностям. Одни способны проводить одновременно промывку только одной лунки, другие - 8-12-, третьи - 96- и 384-луночные планшеты.

Автоматические иммуноферментные анализаторы представляют собой роботизированные станции, в которых, кроме измерения оптической абсорбции, проводится предварительное разведение проб, внесение реагентов и проб в лунки планшета, перемешивание, инкубация и промывка планшетов. Автоматические анализаторы иммуноферментных реакций требуют минимального участия специалиста лаборатории. Они отличаются по своей производительности и возможностям одновременной работы с 1, 2, 8, 16 планшетами.

Иммунохемилюминесцентные, иммунолюминесцентные и иммунофлюоресцентные анализаторы в большинстве случаев представлены в лабораториях как полностью автоматизированные системы. Автоматические иммунохимические анализаторы выполняют большой спектр операций: отбор материалов и реагентов, их смешивание и инкубацию, анализ, обработку и печать полученной информации, автоматическое промывание анализатора, калибровку и контроль качества.

Технология иммунохимического исследования, реализуемая в иммунохемилюминесцентном анализаторе, схематично представлена на рис. 2.41.

pic 0051
Рис. 2.41. Последовательность выполнения иммунохимического исследования

В отдельных случаях в лабораториях применяют полуавтоматические иммунохимические анализаторы (люминометры, флюориметры). Полуавтоматические анализаторы требуют участия в работе с ними специалиста лаборатории, но сводят его функции к минимуму. Специалист лаборатории смешивает реагенты и готовит пробы (например, наносит на слайд или тестовую полоску исследуемую сыворотку), но помещение их в измерительное устройство осуществляет сам анализатор.

2.4.2.2.11. Бактериологические анализаторы

Автоматизация бактериологических исследований - одно из недавних достижений современных технологий, позволяющее выявлять и идентифицировать микроорганизмы, а также проводить определение их антибиотикочувствительности всего за несколько часов или минут вопреки классическому микробиологическому анализу, продолжительность которого может достигать нескольких дней. Приборы, которые способны решать перечисленные задачи, получили название «бактериологические анализаторы». В зависимости от предназначения бактериологические анализаторы используют в своей работе иммунофлюоресцентный, турбидиметрический, колориметрический масс-спектрометрический и другие методы анализа.

По своему предназначению бактериологические анализаторы делятся на следующие группы:

  1. анализаторы для исследования крови на стерильность;

  2. анализаторы для идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам;

  3. масс-спектрометры.

2.4.2.2.11.1. Анализаторы для исследования крови на стерильность

Быстрая и точная идентификация бактерий или грибов, вызывающих инфекции кровотока, является жизненно важной для диагностики и лечения сепсиса. Это обусловлено тем, что каждый час задержки назначения антибактериальной терапии увеличивает летальность, например, от сепсиса на 7,6%. Посев крови является одним из самых простых и часто используемых методов исследования, направленных на установление этиологии системных инфекций кровотока. Культура крови - это лабораторный анализ, при котором кровь, взятую у пациента, вносят во флаконы, содержащие питательную среду. Ускоренное получение положительного результата посева крови на гемокультуру значительно улучшает исходы заболевания и повышение эффективности лечения пациента. Для решения этой жизненно важной для больного проблемы используются анализаторы гемокультур.

Принцип работы таких анализаторов состоит в инкубировании при оптимальной температуре (37 °С) и как можно скорейшем выявлении положительных образцов крови, помещенных во флакон со специальной средой. Постоянный мониторинг роста микроорганизмов во флаконе с питательной средой основан на методе флюоресценции или колориметрии и контроля за газообразованием. Для ускорения получения результата используется несколько типов флаконов: флаконы с аэробными и анаэробными средами, флаконы со средами для улучшенной детекции грибов и микобактерий в крови. Все среды в основе своей имеют трипказо-соевый бульон. Флаконы содержат частицы латекса или активированный уголь, адсорбирующие антибиотики из крови, а также способствующие лизису клеток крови и высвобождению внутриклеточных бактерий. Флаконы для выявления дрожжей и грибов заполнены специальной селективной средой, которая содержит хлорамфеникол и тобрамицин для подавления роста сопутствующей бактериальной микрофлоры, лизирующие вещества (сапонин) высвобождают фагоцитированные дрожжи и плесени из лейкоцитов крови.

Флаконы со средой и образцом крови помещают в индивидуальные ячейки анализатора в инкубационном блоке. Далее тестирование выполняется без каких-либо манипуляций со стороны специалиста лаборатории (до того момента, когда флакон признается положительным и извлекается для дальнейшей работы: окраски по Граму и дальнейшего культивирования для выделения чистой культуры и ее идентификации). Каждый флакон с гемокультурой индивидуально считывается регистрационным блоком анализатора каждые 10-15 мин до появления признаков микробного роста. Результаты каждого считывания каждого флакона сохраняются и анализируются компьютерной системой, при этом строится кривая микробного роста на основании алгоритмов, заложенных в программное обеспечение каждого прибора.

В основание каждого флакона введен угольный диоксид (сенсор), отделенный от кровяного бульона флакона мембраной, полупроницаемой для СО2, что позволяет определять количество СО2 во флаконе по изменению цвета сенсора при увеличении концентрации СО2 во флаконе. Кроме того, в основании ячейки для каждого флакона, находящегося на инкубации, расположены светоизлучающий и светопоглощающий диоды. Несмотря на сходное устройство детектирующего блока анализатора, сам принцип регистрации роста гемокультуры может различаться. В одних анализаторах (например, в анализаторах BD BACTECTM компании Becton Dickinson) фотодетекторы прибора измеряют уровень флюоресценции, который зависит от объема выделяемого СО2. Далее эти измерения интерпретируются прибором в соответствии с критериями, заложенными в его программу. При выявлении положительных культур (увеличение концентрации СО2 во флаконе) анализатор немедленно извещает об этом посредством светового и звукового сигналов и выводит данные на монитор. В других анализаторах (например, BacT/ALERT 3D компании bioMerieux) в дно флакона встроен колориметрический сенсор. При росте микроорганизмов во флаконе выделяется углекислый газ, под действием которого сенсор меняет цвет. Изменение цвета регистрируется фотометром анализатора. В третьем типе анализаторов гемокультур используется манометрический метод детекции. Флаконы с гемокультурой помещают в анализатор, где проводится непрерывный мониторинг наличия/отсутствия роста во флаконе по изменению давления в результате потребления и/или выделения газов CO2, N и H.

Анализаторы гемокультур отличаются по количеству одновременно загружаемых флаконов с гемокультурой (от 50 до 320 флаконов одном блоке) и, соответственно, производительности, габариту и массе.

Положительный результат гемокультивирования либо устанавливает, либо подтверждает инфекционную этиологию заболевания пациента. На следующих этапах анализа проводится выделение самого этиологического агента и определение его чувствительности к антибактериальным препаратам, что дает возможность оптимизировать лечение. При использовании автоматических анализаторов гемокультур 94% клинически значимых микроорганизмов выявляются в течение первых 2 дней инкубирования и 98% - в течение первых 3 дней после посева.

2.4.2.2.11.2. Анализаторы для идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам

Современные бактериологические анализаторы разработаны для ускорения получения результатов идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. На основании метода количественного анализа, на котором основано измерение результатов исследования, бактериологические анализаторы можно разделить на две группы:

  1. анализаторы на основе физико-химических методов количественного анализа - различных вариантов оптической спектроскопии; в таких анализаторах идентификация и определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам основана на использовании методов турбидиметрии, колориметрии и флюоресценции для регистрации конечных результатов биохимических («пестрый ряд») тестов;

  2. масс-спектрометры, использующие для регистрации физический метод количественного анализа, основанный на ионизации молекул изучаемого вещества с последующим разделением ионов по величине отношения массы к заряду. К первой группе относятся бактериологические анализаторы, в которых автоматизированы частично или полностью традиционные ручные процедуры идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Для биохимической дифференциации бактерий (исследования сахаролитических, протеолитических, гемолитических и редуцирующих свойств микроорганизмов в полученной чистой культуре) в бактериологических анализаторах используются специальные тест-карты или тест-панели (стрипы). Тест-карты включают различное количество мини-контейнеров или лунок (от 30 до 64 лунок в зависимости от конкретного анализатора), запаянных таким образом, чтобы исключить всякую контаминацию. Каждая лунка заполнена комбинированными субстратами для оценки сахаролитических, протеолитических, гемолитических и редуцирующих свойств микроорганизмов.

Все бактериологические анализаторы первой группы по уровню автоматизации разделяют на две группы:

  1. полуавтоматические;

  2. автоматические.

Для работы на полуавтоматическом бактериологическом анализаторе необходимо получить чистую культуру возбудителя, после чего провести микроскопию и окрашивание по Граму, а также поставить ряд ориентировочных тестов. Эта первичная информация о возбудителе определяет выбор тест-систем (панелей) для дальнейшей работы с культурой уже на приборе. Использование готовых тест-панелей, специально разработанных фирмой-производителем для работы на каждом конкретном приборе, с одной стороны, существенно упрощает и ускоряет схему идентификации возбудителя и определение антибио-тикограммы, с другой стороны, позволяет получить высокоспецифичный стандартизованный результат. Тест-системы для одного прибора не могут быть использованы для прочтения результата на другом. На рис. 2.42 представлена тест-панель, помещенная в полуавтоматический анализатор для считывания результатов.

pic 0052
Рис. 2.42. Тест-панель, помещенная в полуавтоматический анализатор для считывания результатов

Для работы на панелях (стрипах) необходимо приготовить раствор из культуры выращенного возбудителя, что требует высокой точности, так как в определенном объеме жидкости должно быть строго определенное количество микроорганизмов. Для этого пользуются шкалой мутности по Мак-Фарланду. В лунках панелей находятся лиофилизированные биохимические субстраты, которые при добавлении раствора тестируемой живой культуры вступают или не вступают в реакцию с изменением при этом либо цвета, либо мутности, либо с образованием пузырьков воздуха. Результаты реакции можно получить только после периода инкубации (4 или 18-24, иногда до 48 ч в зависимости от используемого протокола работы, в определенных температурных и атмосферных условиях). Для инкубации используют лабораторный термостат, обеспечивающий соответствующий температурный режим.

Панели для определения чувствительности возбудителей к антибиотикам также выпускаются фирмой-производителем и представляют собой стандартный набор антибиотиков, представленных в двух концентрациях. Результаты исследования определяются по наличию роста в лунках панели и сравнению с контролем. Они могут быть представлены в следующем виде: чувствителен, умеренно устойчив и устойчив (S, I, R).

Полуавтоматические бактериологические анализаторы, по сути, являются только считывающим устройством результатов тестов, полученных в каждой лунке, и результатов анализа этих данных для выдачи окончательного ответа либо по идентификации, либо по чувствительности микроорганизма к антибиотикам. В большинстве случаев они представляют собой восьмиканальный вертикальный фотометр со встроенным термостатом (14-40 °С), системой съемных фильтров и встряхивателем, совместимым с компьютером, который работает в зависимости от программного обеспечения как микробиологический или иммуноферментный анализатор. Тест-системы для идентификации выпускаются в формате 96-луночных планшетов.

Автоматические анализаторы отличаются от полуавтоматических тем, что инкубация, считывание результата и его обработка проходят без участия специалиста лаборатории. Бактериологический анализатор состоит из таких блоков, как:

  1. считыватель штрихкода для тест-карт;

  2. устройство для заполнения тест-карт;

  3. устройство для запаивания тест-карт;

  4. инкубатор;

  5. автоматизированное регистрирующее устройство (ридер);

  6. программное обеспечение.

В бактериологических анализаторах используются следующие виды тест-карт:

  1. тест-карты для идентификации грамположительных бактерий - специфичны для грамположительных кокков, стафилококков, стрептококков, энтерококков и подобным им микроорганизмам; время, необходимое для получения результата, - 2-8 ч;

  2. тест-карты для идентификации грамотрицательных бактерий - специфичны для грамотрицательных бацилл, дрожжей и недрожжевых бактерий; время, необходимое для получения результата, - 2-10 ч;

  3. тест-карты для идентификации бацилл - специфичны для грам-положительных и грамотрицательных спорообразующих бацилл; время, необходимое для получения результата, - 14 ч;

  4. тест-карты для идентификации дрожжей - специфичны для дрожжей и дрожжеподобных микроорганизмов; время, необходимое для получения результата, - 18 ч.

  5. тест-карты для определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам:

    1. а) для грамотрицательных микроорганизмов: карты содержат от 18 до 20 антибиотиков в концентрациях, соответствующих 5-7 разведениям; минимальное время для получения результата - 5 ч, максимальное - 15 ч, среднее время - 6,5 ч;

    2. б) для грамположительных микроорганизмов: карты содержат от 19 до 22 антибиотиков в концентрациях, соответствующих 5-7 разведениям, для определения минимальных ингибирующих концентраций.

В большинстве бактериологических анализаторов используется фотометрический метод регистрации результатов реакций в тест-картах. Однако в ряде анализаторов (например, анализаторе Walk Away SI-40) дополнительно могут использоваться тест-панели с флюоресцентной меткой, что позволяет получать результаты идентификации большинства микроорганизмов в течение 2-4 ч.

В бактериологических анализаторах технологический процесс получения результатов анализа значительно упрощен благодаря заполнению реагентами и запечатанным лункам на тест-картах, автоматической загрузке карт в ридер и их сбросу в коллектор для отходов по завершении процесса идентификации. Тест-карты имеют штрихкод для предотвращения ошибок при регистрации результатов.

Программное обеспечение содержит расширенную базу данных о множестве различных штаммов и видов микроорганизмов, которая обеспечивает точность идентификации в пределах 96% для грамположительных бактерий и 95% - для грамотрицательных, 89% - для бацилл и 85% - для дрожжей.

Производительность бактериологического анализатора определяется количеством тест-карт для одновременной загрузки и может колебаться от 30 до 100 тест-панелей и более.

2.4.2.2.11.3. Масс-спектрометры

Масс-спектрометр представляет собой вакуумный прибор, способный определять массу атомов (молекул). Принцип работы анализатора основан на использовании физических законов движения заряженных частиц, обладающих различной молекулярной массой, в электрических и магнитных полях, что позволяет получить масс-спектр изучаемого объекта. При проведении анализа пробы, содержащей микроорганизмы, масс-спектрометр позволяет с высокой точностью определить количественный и качественный состав вещества, его структуру, физико-химические свойства. Масс-спектрометры используются для идентификации микроорганизмов в биологических средах (мицелиальных грибов, дрожжей, грамположительных и грамотрицательных бактерий) для видового типирования бактерий, то есть выявления их родовой и видовой принадлежности, определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам. Использование в масс-спектрометрии технологии времяпролетной матрично активированной лазерной десорбции/ионизации (Matrix-Assisted Lazer Desorption/Ionization Time-of-Flight - MALDI-ToF) позволяет получить данные максимальной точности. MALDI представляет собой «мягкий» способ ионизации. Вспомогательная матрица снижает разрушительные свойства лазерного излучения, что обеспечивает ионизацию крупных биомолекул без деградации. ToF - принцип работы анализатора масс-спектрометра. Он фиксирует время пролета заряженными частицами (белками микроорганизмов) конкретного расстояния и разделяет ионы по этому фактору. Время пролета при этом пропорционально отношению массы частицы к ее заряду.

Современные масс-спектрометры состоят из следующих узлов:

  1. источника ионов, преобразующего составляющие микроорганизмов (нейтральные молекулы и атомы) в заряженные частицы - ионы;

  2. микробиологического анализатора, который разделяет заряженные ионы по времени пролета в масс-спектрометре определенного расстояния;

  3. детектора, фиксирующего сигнал ионов;

  4. программного обеспечения, осуществляющего обработку полученных результатов, их анализ и конечную идентификацию микроорганизмов.

В процессе измерений получают спектр константных белков исследуемых микроорганизмов, который в дальнейшем сравнивают с базой данных, то есть характерным спектром белков для известных микроорганизмов. В результате сравнения спектров определяют родовую и видовую принадлежность бактерий. Помимо идентификации и типирования микроорганизмов, масс-спектрометры позволяют определить их чувствительность к антибиотикам. С помощью этого анализатора можно регистрировать изменения в реакции среды на тот или иной антибактериальный препарат, что позволяет установить ряд наиболее эффективных препаратов для лечения конкретных видов бактерий.

Вся методика идентификации микроорганизмов на масс-спектрометре состоит из двух этапов:

  • первый этап - подготовка образца. На подложке масс-спектрометра смешивают биологический материал из колонии бактерий и специальную матрицу (2',5'-дигидроксибензойная кислота, раствор уже готов к использованию и устойчив к свету), образцом может служить первичная колония;

  • второй этап - идентификация. Подготовленный образец помещают в прибор и подвергают воздействию лазерных импульсов;

при этом молекулы матрицы и материал из бактерий (в частности, белки) переходят в газовую фазу, а протонированные молекулы матрицы взаимодействуют с белками, перенося на них положительный заряд. Под действием электрического поля ионизированные белки движутся от источника ионизации к детектору с ускорениями, обратно пропорциональными их атомным массам. В дальнейшем программное обеспечение анализатора оценивает время пролета частиц и преобразует эту информацию в спектр молекулярных масс (масс-спектр). Масс-спектр сравнивается со спектрами микроорганизмов из базы данных, и на основании сведений о массах характеристических белков происходит идентификация микроорганизмов. Затраты по времени для идентификации составляют всего 2-3 мин.

База данных современного масс-спектрометра состоит из более чем 750 клинически значимых видов микроорганизмов (бактерий, дрожжей, плесневых грибов/дерматофитов, микобактерий) и покрывает большинство видов, встречающихся в ежедневной практике микробиологической лаборатории.

Главные преимущества масс-спектрометра состоят в том, что он обладает гораздо более высокой достоверностью идентификации микроорганизмов по сравнению со стандартными биохимическими методами, позволяет сократить время получения результата до 2-3 мин и имеет очень низкую себестоимость анализа, так как для анализа используется небольшое количество расходных материалов (стоимость одного исследования складывается из стоимости одноразовых планшетов и матрикса).

Для того чтобы результаты исследований были качественными на аналитической стадии единого технологического процесса производства анализов, очень важно правильно подготовить анализаторы к работе, откалибровать их и провести ВКК, то есть проконтролировать операции подготовки реактивов, калибраторов, контрольного материала и профессиональные навыки персонала.

Несмотря на использование, казалось бы, совершенно различных анализаторов в процессе исследований, большинство операций по подготовке их к работе и проведению исследований имеет общий комплекс непрерывно чередующихся действий специалистов лаборатории в конкретных условиях. Для того чтобы можно было контролировать эти действия, оценивать их, необходимо их четко описать и изложить в СОП.

2.4.2.3. Технологическая операция подготовки реактивов и анализаторов к проведению исследований

В соответствии с полученными лабораторией заданиями на анализы (заявки на исследование) бригады сотрудников проводят подготовку рабочих мест (штативы, нужные пипетки и др.), реактивов, осуществляют калибровку анализаторов, измерение контрольного материала. В случае выявления сбоев и ошибок в работе оборудования - устраняют их. Все сбои и ошибки регистрируются в компьютере для последующего анализа и принятия мер для их предотвращения.

Подготовка анализаторов, реактивов, калибраторов и контрольного материала должна проводиться в строгом соответствии с инструкциями к ним. Любое отклонение от инструкции недопустимо. Такие инструкции должны быть на рабочем месте для каждого анализатора, набора реактивов, калибратора, контрольного материала.

Качество результатов лабораторных исследований зависит не только от хорошей работы оборудования, но и от качества используемых реактивов, других материалов (пробирки, вода) и от окружающей среды (напряжение в электрической сети, степень чистоты воды). Понимание и решение этих проблем, охватывающих и используемые реактивы, и сами измерения, очень важны в обеспечении качества на аналитическом этапе производства анализов.

Процедуры подготовки реактивов и анализаторов к проведению исследований должны быть детально описаны в СОП.

2.4.2.3.1. Подготовка реактивов

Для проведения анализов в лабораториях используют различные химические вещества. Вещества, вызывающие химические превращения исследуемых веществ с образованием новых соединений, отличающихся характерными свойствами, называют химическими реактивами. В переводе с латыни activus означает «действие», а приставка re- указывает на цикличность этого действия.

Химические реактивы - это индивидуальные вещества или смеси строго регламентированного состава, которые используются в лабораториях для обнаружения другого вещества, анализа веществ, приготовления растворов, проведения реакций, изготовления красителей, моющих средств и т.д. Химические реактивы рассматривают как системы, которые, помимо основного компонента, включают вещества, влияющие на их функциональные характеристики: растворители, наполнители, носители и др. Часто химические реактивы, используемые в лабораториях для анализа, называют реагентами. Для специалистов лаборатории важно понимать, что термин «химические реагенты» - более узкое понятие, чем «химические реактивы». Реагенты - это вещества, которые входят в состав химических реактивов. Нередко реагентом называют основной химический компонент реактива.

Красители и питательные среды также относятся к химическим реактивам. Вместе с тем они имеют свои особенности при приготовлении и использовании, а также применяются для решения достаточно специализированных задач при проведении лабораторных исследований.

В процессе анализа используют четыре вида материалов: калибраторы, контрольные материалы, реактивы и образцы биологического материала, полученные от пациентов (пробы).

Калибраторы используют в аналитических процессах для определения концентрации вещества путем соотнесения полученных показаний анализаторов и концентраций или других количественных характеристик, то есть они являются основой для расчета результатов исследования опытных проб. Калибраторы должны соответствовать используемому аналитическому методу и анализируемому образцу и иметь информацию об исследуемом показателе. В целом калибраторы должны отвечать следующим условиям:

  • значения каждого показателя в калибраторе должны быть установлены при использовании референтных методов;

  • в качестве калибратора может применяться сыворотка крови человека, обладающая всем перечнем необходимых параметров в оптимальной концентрации;

  • калибратор в случае приготовления в условиях правильной лиофилизации, при длительном хранении и последующем растворении по своим значениям должен быть адекватным нативной сыворотке.

Контрольные материалы служат для контроля качества выполнения лабораторных методов. При этом определяют отклонения результатов анализа, полученных с помощью контрольного материала, от установленной должной величины и оценивают их (разброс данных и их неточность). Контрольный материал позволяет выявить существенные нарушения или убедиться в их отсутствии в аналитическом процессе. Именно поэтому он должен воспроизводить анализируемый материал (пробу) по всем существенным физико-химическим свойствам. Для различных видов лабораторных исследований должны использоваться контрольные материалы, которые имеют матрицы, соответствующие цельной крови, плазме, сыворотке, спинномозговой жидкости или моче. Общими требованиями, предъявляемыми к контрольному материалу, являются следующие. Он должен:

  • вести себя как реальные пробы, то есть быть максимально приближенным по своим свойствам к сыворотке или плазме;

  • быть доступным в течение года;

  • быть стабильным в течение цикла использования;

  • легко делиться на порции;

  • минимально менять концентрацию от порции к порции, от флакона к флакону.

Для контроля надо иметь материал трех концентраций - обычно это низкая, нормальная и высокая концентрация.

При выборе коммерческих контрольных материалов важно, помимо матрицы, обращать внимание на следующие моменты. Стабильность является важнейшей характеристикой контрольного материала. Различные серии контрольного материала имеют разные концентрации веществ, что потребует от лаборатории новой оценки статистических параметров для каждого исследуемого вещества. Контрольные материалы выпускаются с исследованным содержанием веществ. К таким материалам прилагается паспорт с перечнем значений концентраций для каждого вещества с указанием методов, которыми эти показатели получены. Обычно приводят значения показателя при различных температурах проведения анализа.

Использование коммерческих калибровочных стандартов и контрольных материалов в лаборатории значительно снижает число неправильных результатов, то есть улучшает точность и воспроизводимость.

Достижения в химической технологии предоставили возможность иметь готовые к применению наборы реактивов. Набор реактивов - это приготовленный в промышленных условиях комплект реактивов, предназначенных для выполнения определенной аналитической процедуры на автоматическом анализаторе (или вручную). В наборе, как правило, имеются все нужные реагенты, расфасованные так, чтобы обеспечить их стабильность, и в количествах, позволяющих выполнить определенное число исследований. Обычно реактивы или готовы к употреблению, тогда они могут быть сразу поставлены в анализатор, или с ними необходимо произвести простые манипуляции для приготовления рабочих растворов. В настоящее время в КДЛ в основном используются реактивы, готовые к употреблению.

В набор реактивов обязательно входит инструкция, которую следует тщательно изучить, прежде чем начать работу с реактивами. Обязательно обращают внимание на срок годности набора, обычно на нем указана дата, гарантирующая годность набора при соблюдении правил хранения. Далее обращают внимание на номер партии и лота. Некоторые анализаторы запрограммированы так, что им нужно сообщать номер лота.

В инструкции к набору указывают сроки хранения рабочих реактивов (стабильность) при различных условиях. Например, суспензия тромбопластина стабильна 1 день при температуре 15 °С, 5 дней при температуре от 2 до 8 °С. Это нужно знать, чтобы правильно хранить реактивы. Кроме того, в инструкции указывается способ оценки загрязнения или разложения реактивов, то есть реактив в фирменных флаконах должен иметь определенную консистенцию (порошок, «лепешка», «нити») и определенный цвет. По этим характеристикам уже можно оценить качество реактивов. Главное - всегда помнить, что начинать работу с набором реактивов нужно только после тщательного и внимательного изучения инструкции к нему, иначе реактивы можно испортить.

Использование готовых реактивов значительно повышает производительность труда в лаборатории, так как нет затрат времени на их приготовление, уменьшает потери реактивов и повышает качество результатов анализов. Надежность таких наборов реактивов зависит от производителя. Каждая лаборатория должна проводить оценку качества готовых наборов реактивов.

Важнейшими моментами в подготовке реактивов, контрольных материалов и калибраторов к работе являются правильное их хранение и использование для их разведения воды, отвечающей определенным требованиям. Одни химические реактивы можно хранить при комнатной температуре, другие - только в холодильнике, а некоторые должны быть заморожены. Реактивы, чувствительные к свету, хранят в посуде из непрозрачного материала. Специалисты лаборатории должны строго и точно следовать рекомендациям по обращению с ними, изложенным на этикетках и в инструкциях.

Большинство реактивов, калибраторов и контрольных материалов выпускается в лиофилизированном виде. При растворении такого материала необходимо следовать строго установленным правилам, что способствует получению результатов не только воспроизводимых, но и близких к номинальным значениям.

  1. Открывать флакон с лиофилизированным материалом следует очень осторожно. Положить пробку таким образом, чтобы сохранить кусочки лиофилизированного материала, прилипшие к ней. После добавления воды пробку вставить обратно во флакон и наклонить его так, чтобы пробка омылась водой.

  2. Использовать только высококачественную очищенную дистиллированную воду.

  3. Использовать хорошо отмытую стеклянную посуду, отвечающую требованиям для анализа кальция и фосфора. Использовать для растворения каждый день одну и ту же пипетку, чтобы исключить влияние вариации между пипетками.

  4. Перемешать содержимое, вращая флакон. Не встряхивать! Встряхивание приводит к образованию пены, при этом могут изменяться большие молекулы (например, молекулы белка), что ведет к возможности возникновения ошибки, особенно при исследовании ферментов. Хорошо смешивать сыворотку перед каждым исследованием, осторожно вращая флакон вокруг его оси.

  5. Использовать контрольную сыворотку по возможности сразу после растворения. Время хранения сыворотки при комнатной температуре должно быть минимальным.

  6. Если сыворотка не используется, флакон тщательно закрывают и хранят в холодильнике в течение времени, указанного в паспорте.

В настоящее время КДЛ имеют возможность широкого выбора готовых наборов реактивов. Достоверность результатов лабораторных исследований определяется аналитической надежностью метода (воспроизводимостью, правильностью, специфичностью, чувствительностью) и его практичностью (временем исследования, технологическими требованиями, стоимостью). При выборе набора реактивов в первую очередь необходимо учитывать принцип метода, положенный в основу набора, и его надежность. Если критерии аналитической надежности соответствуют требованиям современных руководящих документов (например, приказов Минздрава России или стандартов), то на следующем этапе необходимо оценить практичность набора, особенно с точки зрения сокращения временных затрат и числа этапов анализа. Практичность включает следующие характеристики (Меньшиков В.В., 2002):

  • стоимость;

  • время анализа;

  • необходимость депротеинизации;

  • необходимость нагревания (времени инкубации);

  • необходимость постановки холостой пробы, пробы на сыворотку;

  • зависимость от типа оборудования (автоанализатора);

  • возможность автоматизации;

  • наличие всех необходимых реактивов для анализа, их стабильность;

  • необходимость и наличие калибратора;

  • объем исследуемого биологического материала;

  • безопасность для персонала лаборатории (агрессивность веществ);

  • линейность и диапазон определения;

  • число определений, на которое рассчитан набор;

  • срок и условия хранения набора и рабочих реагентов.

При выборе наборов реактивов нередко надежность и практичность могут вступать в конфликт в отношении стоимости. В таких случаях предпочтение следует отдавать надежности метода.

Важнейшими моментами в подготовке реактивов, контрольных материалов и калибраторов к работе являются правильное их хранение и использование для их разведения воды, отвечающей определенным требованиям. Одни химические реактивы можно хранить при комнатной температуре, другие - только в холодильнике, а некоторые должны быть заморожены. Реактивы, чувствительные к свету, хранят в посуде из непрозрачного материала. Специалисты лаборатории должны строго и точно следовать рекомендациям по обращению с ними, изложенным на этикетках и в инструкциях.

2.4.2.3.2. Вода для лабораторных исследований

В подготовке реактивов к лабораторным исследованиям, а также в процессе анализа широко используется вода. Для обеспечения качественных результатов исследований вода должна быть соответствующей степени чистоты. Требования к воде лабораторного назначения установлены рядом международных и национальных стандартов, подразделяющих воду на типы в зависимости от назначения и качества.

Государственный стандарт ГОСТ Р 58144-2018 «Вода дистиллированная» определяет дистиллированную воду как воду, полученную с помощью установок для очистки водопроводной воды и применяемую в качестве растворителя, в том числе для приготовления растворов веществ. Согласно стандарту по физико-химическим показателям, дистиллированная вода должна соответствовать требованиям и нормам, указанным в табл. 2.29.

Таблица 2.29. Требования и нормы ГОСТ Р 58144-2018 к дистиллированной воде
Показатель Норма

1. Массовая концентрация остатка после выпаривания, мг/дм3, не более

5

2. Массовая концентрация аммиака и аммонийных солей (NH4), мг/дм3, не более

0,02

3. Массовая концентрация нитратов (КО3), мг/дм3, не более

0,2

4. Массовая концентрация сульфатов (SO4), мг/дм3, не более

0,5

5. Массовая концентрация хлоридов (С1), мг/дм3, не более

0,02

6. Массовая концентрация алюминия (А1), мг/дм3, не более

0,05

7. Массовая концентрация железа (Fe), мг/дм3, не более

0,05

8. Массовая концентрация кальция (Са), мг/дм3, не более

0,8

9. Массовая концентрация меди (Си), мг/дм3, не более

0,02

10. Массовая концентрация свинца (РЬ), %, не более

0,05

11. Массовая концентрация цинка (Zn), мг/дм3, не более

0,2

12. Массовая концентрация веществ, восстанавливающих КМпО4 (0), мг/дм3, не более

0,08

13. рН воды

5,4-6,6

14. Удельная электрическая проводимость при температуре 20 °С, мкСм/см, не более

5

В лабораториях может быть использована и бидистиллированная вода. Такую воду получают с помощью специальных очистительных приборов - бидистилляторов, в которых происходит двойная очистка воды, которая в итоге не содержит никаких примесей и посторонних микроэлементов. Бидистиллированная вода очень близка к идеально чистой воде. ГОСТа для данной воды в России нет, а удельная электрическая проводимость такой воды должна быть менее 1 мкСм/см.

Все чаще в лабораториях применяют деионизированную воду, получаемую методами ионного обмена, обратного осмоса или комбинацией этих способов, с помощью современных аппаратов для очистки воды. Этот тип воды эквивалентен бидистиллированной воде и имеет удельную электрическую проводимость не более 1 мкСм/см.

Государственный стандарт ГОСТ Р 52501-2005 «Вода для лабораторного анализа» устанавливает две степени чистоты воды в зависимости от способа очистки исходной питьевой и достаточно чистой воды (табл. 2.30).

Таблица 2.30. Требования к степени чистоты воды для лабораторных исследований
Показатели Степень чистоты I Степень чистоты II

Удельная электропроводность при температуре 25 °С, мкСм/см, не более

0,1

1

Массовая концентрация веществ, восстанавливающих KMnO4 (O), мг/дм3, не более

-

0,08

Оптическая плотность при длине волны 254 нм, в кювете с толщиной поглощающего свет слоя 1 см, единиц оптической плотности, не более

0,001

0,01

Массовая концентрация остатка после выпаривания, мг/дм3, не более

Не определена

1

Массовая концентрация оксида кремния (SiO2), мг/дм3, не более

0,01

0,02

Степень I. Вода, в основном свободная от растворимых или коллоидных ионных и органических примесей и отвечающая жестким аналитическим требованиям, например, таким как для метода высокоэффективной жидкостной хроматографии. Такую воду получают путем дальнейшей очистки воды II степени чистоты (например, обратным осмосом или деионизацией с последующим фильтрованием через мембранный фильтр с размером ячейки 0,2 мкм для удаления частиц или двойной перегонкой с применением аппаратуры из кварцевого стекла).

Степень II. Вода с очень низким содержанием неорганических, органических или коллоидных примесей, используемая для чувствительных аналитических методов, включая метод атомно-абсорбционной спектрометрии и определение компонентов в следовых количествах. Такую воду получают, например, неоднократной перегонкой либо деионизацией или обратным осмосом с последующей перегонкой.

Международные стандарты используют несколько отличные от отечественных стандартов требования к степени чистоты воды. Для того чтобы иметь представление о соотношении этих требований, в табл. 2.31, приведены обобщенные требования к очищенной воде лабораторного назначения. Основным интегральным показателем степени чистоты воды является удельная электропроводность (выражается в микросименсах на сантиметр - мкСм/см) или ее обратная величина - удельное сопротивление (выражается в Омах на метр - Ом х м, или миллиомах на сантиметр - МОм х см). Удельное сопротивление - это сопротивление колонки воды высотой 1 см с поперечным сечением 1 см2, которое зависит от концентрации в воде ионных примесей. Высокие значения удельного электрического сопротивления указывают на то, что в воде отсутствуют ионные примеси, вода является плохо проводящим материалом, то есть вода высокоочищенная, а с низким значением - хорошо проводящим материалом и плохо очищенной водой. При использовании для градации степени очитки воды оценка значений обратная: низкие значения электропроводности указывают на высокую степень очистки воды, а высокие - на низкую.

Таблица 2.31. Обобщенный стандарт на лабораторную воду
Тип воды Удельное сопротивление, МОм х см (25 °С) Применение, лабораторный метод исследования

Сверхчистая. Тип 1

>18

Электротермическая атомно-абсорбционная спектроскопия, масс-спектрометрия с индуктивно-связанной плазмой, детектирование следов металлов, высокоэффективная жидкостная хроматография, газовая хроматография, ПЦР-диагностика, экстракопроральное оплодотворение, генная инженерия

Аналитического качества.

Тип 2 или степень чистоты I по ГОСТ 52501-2005. Степень чистоты II по ГОСТ 52501-2005

>10

Анализ микропримесей в воде, атомно-эмиссионная спектроскопия с индуктивно связанной плазмой, ионная хроматография, ополаскивание посуды для этих исследований

>1

Альтернатива бидистиллированной воде. Использовать в работе клинических лабораторных анализаторов, хроматографов, при радиоиммунном анализе, для приготовления реактивов

Общелабораторного применения. Тип 3

>0,2.

Вода дистиллированная по ГОСТ 6709-97

Аналог дистиллированной воды. Использовать для приготовления воды типа 1, растворов, питания моечных машин, автоклавов, мойки посуды

В соответствии с удельным сопротивлением воду для лабораторного применения разделяют на три типа (табл. 2.31):

  • тип 1 - сверхчистая вода, удельное сопротивление не менее 18 МОмхсм;

  • тип 2 - вода аналитического качества, удельное сопротивление более 1-10 МОмхсм;

  • тип 3 - вода общелабораторного применения, удельная электропроводность менее 5 мкСм/см.

2.4.2.3.3. Выбор метода исследования

Качество результата лабораторного исследования зависит от многих факторов (качества реактивов, анализаторов, квалификации персонала), однако не менее важное значение имеет и качество используемого метода.

При выборе метода исследования определяющим требованием является его соответствие основному клиническому предназначению и целям, для которых лабораторный метод применяется. Такими предназначениями служат:

  • плановое обследование в амбулатории или стационаре;

  • скрининг групп риска;

  • экстренное исследование при критическом состоянии пациента.

В каждом из этих случаев при выборе метода исследования должны сопоставляться его основные свойства:

  • аналитическая надежность;

  • информативность;

  • своевременность;

  • экономичность.

Для объективной оценки аналитических качеств метода важнейшее значение имеет его аналитическая надежность. Оценка аналитической надежности метода - продолжительный процесс, во время которого постепенно накапливается информация об аналитических качествах метода. При оценке надежности метода задача состоит в выявлении погрешностей, зависящих от метода. Основными критериями, по которым оценивается надежность метода, являются точность и воспроизводимость.

Точность (правильность) - это степень близости результата измерений к точно установленному значению концентрации исследуемого вещества. Точность говорит о достоверности метода в определении точного значения величины (концентрации) вещества. Обычно имеется референтный метод, который наиболее точно определяет концентрацию вещества, и такой метод называют «золотым стандартом». Результаты, полученные другим методом, сравнивают с результатами метода «золотого стандарта» и определяют достоверность изучаемого метода. Пределы допустимых отклонений от «золотого стандарта» в какой-то мере произвольны и зависят от вещества, чью концентрацию определяют. Например, систематическая разница между результатами определения натрия в одной пробе более 3 ммоль/л считается неприемлемой. В то же время более значительная разница между концентрациями некоторых гормонов, определяемых иммуноферментным методом с различными антителами, является приемлемой, так как использование различных препаратов антител дает различные матричные эффекты. По этой причине устанавливают различные интервалы референтных величин для различных иммуноферментных методов определения гормонов.

Сравнение нового метода с референтным лучше всего проводить с помощью графика, куда вносят результаты одного и другого методов при исследовании одной и той же пробы (лучше если это будет контрольный материал). Результаты измерений обрабатывают статистически и рассчитывают коэффициент корреляции по формуле:

image

Коэффициенты корреляции могут колебаться от 0 до +1 при положительной и от 0 до -1 - при отрицательной корреляции. Если коэффициент корреляции больше 0,9, то метод признается приемлемым, то есть дает результаты, хорошо согласующиеся с референтным значением.

Воспроизводимость метода оценивают путем измерения концентрации вещества в одной и той же пробе несколько раз в один день и в одной серии проб. На следующий день делают такие же измерения с той же самой пробой. Обычно отклонения при измерениях подчиняются закону Гаусса, что говорит о стабильности метода. Для каждого ряда измерений рассчитывают среднюю величину (ХCP). Затем находят разницу между цифрой каждого измерения и этой средней, рассчитывают среднеквадратичное отклонение (S) и коэффициент вариации (V). Определяют коэффициент вариации в другие дни, и если он не превышает 5%, то метод работает нормально. Для ферментов V может достигать 10%.

На рис. 2.43 приведена взаимосвязь точности и воспроизводимости метода исследования.

pic 0054
Рис. 2.43. Точность и воспроизводимость метода исследования: 1 - хорошая точность и вопроизводимость; 2 - хорошая воспроизводимость и плохая точность; 3 - плохая точность и плохая воспроизводимость

В обязанность каждой лаборатории входит проверка воспроизводимости методов, которая оценивается по величине стандартного отклонения (S). Например, воспроизводимость при определении общего холестерина в сыворотке крови в хорошей лаборатории обычно составляет в среднем ±0,13 ммоль/л. Известно, что 95% доверительный интервал составляет плюс-минус два (±2) стандартных отклонения, то есть ±0,26 ммоль/л. Таким образом, каждый результат считается истинным, если он находится в пределах этих границ. Так, показатель общего холестерина сыворотки 5,18 ммоль/л означает, что истинное значение находится в пределах между 4,92 и 5,44 ммоль/л.

Информативность метода характеризуется его специфичностью и чувствительностью (порогом определения).

Специфичность - способность метода измерять лишь тот компонент, для определения которого он предназначен. Для оценки аналитической специфичности используют примеси, которые, исходя из химической структуры, являются репрезентативными представителями тех групп веществ, которые с физиологической точки зрения имеют практическое значение. В большей степени это относится к лекарственным веществам, которые могут вызывать химическую интерференцию в ходе анализа. Низкая специфичность и влияние интерференции приводят к получению неправильного результата (не путать со специфичностью метода в отношении патологии).

Аналитическая чувствительность метода - наименьшее количество вещества (концентрации), которое можно обнаружить данным методом. Это понятие следует отличать от чувствительности метода в отношении обнаружения определенной патологии.

Своевременность представляет собой суммарные затраты времени на выполнение всей аналитической процедуры включая выдачу результата анализа клиницисту. Параметры этой характеристики метода во многом определяются клиническим предназначением теста, в рамках которого он применяется.

Экономичность метода определяется стоимостью расходных материалов и финансовыми затратами на оплату рабочего времени на исследование.

В соответствии с клинической задачей баланс основных свойств метода и определяет критерии его выбора. В оптимальном варианте лаборатория, выбирая из существующего многообразия методов наиболее приемлемый для нее, должна стремиться к оптимальному сочетанию клинико-информативных, аналитических и экономических параметров метода.

Колебания результатов измерений содержания аналитов в пробах биологических материалов, вызванные факторами случайных и систематических погрешностей в работе аналитической системы при проведении анализа, называют аналитической вариацией метода исследования. Аналитическая система - это совокупность анализаторов (включая программное обеспечение), калибраторов, реагентов и расходных материалов, необходимых для измерения аналита.

Аналитическая вариация, зависящая от применяемых методов, измерительного оборудования и условий их выполнения, расширяет пределы нормальных лабораторных показателей (НЛП) и этим ограничивает возможность лабораторных тестов различать здоровье и болезнь. Именно поэтому специалисты лаборатории должны стремиться уменьшить аналитическую вариацию. Помимо аналитической вариации метода, на результат исследования оказывают влияние и средства измерения (анализаторы). Для оценки их влияния на результаты анализа используют термин «смещение» (неправильность средства измерений) - систематическая погрешность в показании средства измерений, которую обозначают Bias (В).

Качество лабораторных исследований по аналитической точности должно соответствовать требованиям, установленным нормативными документами Минздрава России, что является обязательным условием надежной аналитической работы КДЛ учреждений здравоохранения. Нормы точности для различных видов клинических лабораторных исследований устанавливаются нормативными документами Минздрава России и выполняют функцию отраслевых стандартов аналитической точности. Согласно этим документам, КДЛ должны использовать в своей работе:

  1. предельно допустимые значения (ПДЗ) систематических и случайных погрешностей методов исследований;

  2. биологически обоснованные нормы аналитической точности методов исследований.

ПДЗ смещения и общей вариации результатов клинических лабораторных исследований приведены в табл. 2.32. Рекомендуемые ПДЗ применяются при оценке допустимости погрешностей методов исследования контрольных материалов при ВКК. ПДЗ смещения применяются для оценки допустимости систематической погрешности методов исследований и представляют собой ПДЗ относительного смещения среднеарифметического результатов анализа в первых 10 (±B10, %) и 20 (±B20, %) аналитических сериях от установленных значений исследуемых показателей. ПДЗ общей вариации представляют собой значения коэффициентов вариации результатов, полученных в 10 (CV10, %) и 20 (CV20, %) аналитических сериях, и применяются для оценки допустимости случайных погрешностей.

Таблица 2.32. Предельно допустимые значения смещения (В) и коэффициента общей аналитической вариации (CV), рассчитанные по результатам 10 или 20 измерений определяемого показателя в контрольном материале
Определяемый показатель ±В10, % CV10, % ±В20, % CV20, %

Биохимические исследования сыворотки крови

1. АЛТ

17

18

15

15

2. Альбумин

5

5

4

4

3. а-Амилаза

16

12

15

10

4. АСТ

11

12

10

10

5. Белок общий

5

4

5

3

6. Билирубин общий

17

18

15

15

7. у-Глутамилтрансфераза

16

12

15

10

8. Глюкоза

6

6

5

5

9. Железо

12

19

10

16

10. Калий

5

5

4

4

11. Кальций

3,4

3,6

3,0

3,0

12. Кортизол

18

12

17

10

13. Креатинин

11

8

10

7

14. КК

23

24

20

20

15. ЛДГ

11

12

10

10

16. Магний

7

7

6

6

17. Мочевая кислота

11

8

10

7

18. Мочевина

11

12

10

10

19. Натрий

1,8

2,4

1,5

2,0

Количественный анализ мочи

1. а-Амилаза

26

54

20

45

2. Белок

23

30

20

25

3. Глюкоза

22

18

20

15

4. Калий

18

24

15

20

5. Кальций

21

24

18

20

6. Креатинин

23

24

20

20

7. Мочевая кислота

18

24

15

20

8. Мочевина

17

18

15

15

9. Натрий

17

18

15

15

Гематологические исследования

1. Гемоглобин

5

5

4

4

2. Эритроциты

7

5

6

4

В случае если величины погрешностей в первых 10 и 20 аналитических сериях превышают установленные в табл. 2.32 значения, заведующий лабораторией обязан принять меры по выявлению и устранению источников недопустимо больших погрешностей или заменить метод исследования.

2.4.2.3.4. Биологически обоснованные нормы аналитической точности методов исследований

Биологически обоснованные нормы аналитической точности клинических лабораторных исследований (табл. 2.32) представляют собой ПДЗ смещения и коэффициента общей аналитической вариации, рассчитанные исходя из коэффициентов внутри- и межиндивидуальной биологической вариации. Биологически обоснованные ПДЗ могут быть использованы в качестве перспективных (желательных) нормативов аналитической точности и могут вводиться по мере совершенствования оснащения лабораторий и повышения качества исследований в КДЛ по решению руководителя учреждения здравоохранения на основе рекомендации заведующего лабораторией.

Методика расчета биологически обоснованных норм аналитической точности.

1. Принятые обозначения.

CVI - коэффициент внутрииндивидуальной биологической вариации, %.

СVG - коэффициент межиндивидуальной биологической вариации, %.

В - целевое значение смещения среднеарифметической от установленного значения, %.

СV - целевое значение коэффициента общей аналитической вариации, %.

CVn - предельно допустимое значение коэффициента вариации результатов, полученных в n аналитических сериях, %. n - число аналитических серий.

2. Принципы расчета целевых значений.

Целевыми значениями требований точности анализа являются математические ожидания величин смещения среднеарифметического результатов от установленного значения (В) и коэффициента аналитической вариации (CV), которые могут быть достигнуты в КДЛ при бесконечно большом числе измерений. Расчет целевых значений производится исходя из величин внутрииндивидуальной (CVI) и межиндивидуальной биологической вариации (СV0) соответствующего показателя у здоровых людей. Для тех случаев, когда коэффициент межиндивидуальной вариации неизвестен, его условно принимают равным двум коэффициентам внутрииндивидуальной вариации:

pic 0055

Требования к целевому значению смещения формулируются в виде неравенства:

pic 0056

Целевое значение общего коэффициента аналитической вариации не должно превышать 0,5 коэффициента внутрииндивидуальной вариации:

image

Значения коэффициентов внутри- и межиндивидуальной вариации для различных показателей, взятые за основу для расчетов, приведены в табл. 2.32.

3. Принципы расчета допустимых пределов погрешностей.

Воспроизводимость метода характеризуется коэффициентом вариации. Оценка ее проводится по результатам однократного анализа однородного материала в 10 или 20 аналитических сериях. Предельно допустимое значение коэффициента вариации в n аналитических сериях рассчитывается по следующей формуле:

image

где х2 - критерий Пирсона с уровнем значимости 0,05 и числом степеней свободы (n - 1). Если n=10, х2 =3,33. Если n=20, х2 =10,12.

Правильность метода характеризуется величиной относительного смещения среднего от установленного значения. Оценка ее проводится по результатам однократного анализа однородного аттестованного материала в 10 или 20 аналитических сериях. Предельно допустимое значение величины относительного смещения рассчитывается по формуле:

image

где 1,96 - квантиль стандартного нормального распределения для уровня значимости 0,05.

Биологически обоснованные ПДЗ погрешностей клинических лабораторных исследований приведены в табл. 2.33.

Таблица 2.33. Биологически обоснованные предельно допустимые значения погрешностей клинических лабораторных исследований
Определяемый показатель СУ,% 1 CV,% G ±B,% 20 CV,% 20

АЧТВ

4,4

8,9

3,4

3,0

АЛТ, активность в сыворотке

23,0

41,1

16,8

15,8

Альбумин, концентрация в сыворотке

2,8

4,4

1,9

1,9

Альбумин, концентрация в утренней моче

35,5

36,0

20,4

24,3

Амилаза, активность в сыворотке

8,7

25,8

8,7

6,0

АСТ, активность в сыворотке

11,6

13,6

7,0

7,9

Белок общий, концентрация в сыворотке

2,6

4,8

1,9

1,8

Билирубин общий, концентрация в сыворотке

22,0

42,6

16,8

15,1

Гемоглобин, концентрация в крови

3,4

6,2

2,5

2,3

Глюкоза, концентрация в сыворотке

6,1

7,8

3,8

4,2

Калий, концентрация в суточной моче

28,6

23,2

15,5

19,6

Калий, концентрация в сыворотке

4,6

4,7

2,7

3,2

Кальций, концентрация в сыворотке

1,8

1,9

1,0

1,2

Креатинин, концентрация в сыворотке

4,3

10,4

3,8

2,9

КК, активность в сыворотке

28,2

49,3

20,4

19,3

КК-МВ, активность в сыворотке

18,4

36,8

14,3

12,6

ЛДГ, активность в сыворотке

7,3

14,4

5,6

5,0

Лейкоциты, подсчет в крови

11,2

19,7

8,1

7,7

Магний, концентрация в сыворотке

3,2

5,9

2,4

2,2

Медь, концентрация в сыворотке

4,3

13,4

4,5

2,9

Мочевая кислота, концентрация в сыворотке

7,3

18,8

6,6

5,0

Мочевина, концентрация в сыворотке

11,6

17,4

7,8

7,9

Натрий, концентрация в сыворотке

0,6

0,6

0,3

0,4

Триглицериды, концентрация в сыворотке

22,0

46,4

17,7

15,1

Тромбоциты, подсчет в крови

9,0

23,3

8,2

6,2

Щелочная фосфатаза, активность в сыворотке

5,9

22,3

7,1

4,0

Эритроциты, подсчет в крови

2,1

7,0

2,3

1,4

2.4.2.3.5. Подготовка анализаторов

Подготовка анализаторов к работе включает запуск анализатора, его прогрев, заполнение канистры водой или промывочным раствором, установку реактивов (или проверку наличия реактивов на диске реагентов: их объем, срок годности, соответствие реактива номеру гнезда), калибраторов, проверку работоспособности всех узлов (каруселей), промывку всех систем анализатора, проверку бланка кюветы (если необходимо). После проверки всех узлов анализатора можно приступить к следующей технологической операции.

2.4.2.3.6. Калибровка анализаторов

Важнейшим моментом аналитической части технологического процесса производства анализов является калибровка анализаторов. От того, насколько правильно будет откалиброван анализатор, во многом зависит качество, прежде всего, точность результатов исследований. Большое влияние на качество этой технологической операции оказывает правильность подготовки калибраторов и реактивов на предыдущей технологической операции.

Калибровка - это процесс установки количественного соотношения между физическим сигналом, получаемым анализатором при исследовании калибратора, и концентрацией (активностью) исследуемого показателя, выраженной в принятых единицах измерения концентрации (активности). Такое соотношение называется калибровочным коэффициентом (фактором) и используется для пересчета величины сигнала, полученного от неизвестной пробы, в установленные единицы концентрации (активности). Калибровка - это обычно наиболее дорогостоящая лабораторная процедура. Ее доля в общей стоимости анализов зависит прежде всего от количества исследований, выполняемых данным методом, а также от стабильности применяемых реактивов, цены калибровочного материала и от того, линейной или нелинейной является калибровка данного метода. Проводя технологическую операцию калибровки, преследуют достижение двух целей: 1) убедиться в достоверности получаемых при исследовании биопроб высоких и низких концентраций вещества, 2) установить ту концентрацию вещества в пробе, выше которой необходимо применять меньший объем анализируемого биоматериала или ее разведение. Для каждого аналитического метода оформляют протокол калибровки. Протокол калибровки оформляют при использовании методов, основанных на сопоставлении с единичным калибровочным стандартом, а также при использовании множества калибровочных стандартов и расчета фактора для отдельных участков калибровочной кривой.

2.4.2.3.6.1. Калибровка гематологических анализаторов

Термин «калибровка» в отношении гематологических анализаторов неудачен, поскольку на самом деле речь идет только о проверке правильности счета клеток. Для контролирования правильности счета клеток крови наиболее часто используют стабилизированную кровь, приготовленную методом специального консервирования. Для правильного счета клеток необходимо так настроить гематологический анализатор, чтобы ток счетчика был выбран оптимальным, а уровень дискриминации отсекал все фоновые значения электронного шума и импульсов от частиц меньшего размера, чем установленный порог дискриминации.

Важнейшим моментом калибровки гематологических анализаторов является использование «родных» реактивов (дилюент, лизирующий раствор), то есть реактивов и контрольных суспензий клеток, изготовленных фирмой, производящей данный тип анализаторов. Контрольная суспензия клеток (стабилизированная кровь) должна быть с неистекшим сроком годности.

Если при калибровке гематологического анализатора показатели исследования стабилизированной крови не укладываются в параметры, приведенные в паспорте к ней, то проводят неоднократное обслуживание анализатора (промывку, чистку). После устранения проблемы выполняют повторную калибровку, и если не удается получить нужные параметры, не менее 10 раз проводят исследование контрольной стабилизированной крови, рассчитывают средние показатели и по ним определяют коэффициент поправки, который вводят в гематологический анализатор.

2.4.2.3.6.2. Калибровка биохимических и иммуноферментных анализаторов

При работе с биохимическими и иммуноферментными автоанализаторами могут использоваться различные виды калибровки - линейная и нелинейная. Калибровка может быть выполнена с помощью калибровочного коэффициента (калибровочного фактора) или калибратора. Калибровку проводят теми же методами и в тех же условиях, при которых исследуется биопроба. Для обеспечения качественных результатов исследований применение каждого вида калибровки должно быть строго определено в инструкциях.

При калибровке анализатора по калибратору можно встретить по меньшей мере два варианта линейной калибровки: по одной точке и по линейной регрессии. Если при использовании метода трудно достичь достаточной линейности результатов, можно выбрать участок калибровочной кривой с достаточной линейностью. Нелинейная калибровочная кривая требует математической линеализации (логарифмирования). Вид калибровки можно выбрать в меню анализатора.

При калибровке по одной точке калибровочный коэффициент рассчитывает компьютер анализатора по абсорбции калибратора и его известной концентрации. Компьютер анализатора на основании этого измерения создает калибровочную кривую, которая является линейной и проходит через точку пересечения осей х и у. Нулевым значением считается величина абсорбции при отсутствии оптически активного вещества. Калибровочная кривая может быть направлена и вверх, и вниз в зависимости от того, что происходит с оптически активным веществом, то есть по возрастанию или убыли которого судят о концентрации (активности) исследуемого компонента. Современные анализаторы сами определяют направление реакции. В качестве нулевого калибратора часто используют холостую пробу на реактивы (бланк реактивов).

Калибровка по линейной регрессии используется реже. В этом случае калибровочная кривая не проходит через нулевое значение графика, то есть при х=0 кривая проходит выше (ниже) оси х. При данном виде калибровки нужно использовать минимум два калибратора, один из которых необходим для определения величины у при х =0. В дальнейшем эта постоянная величина будет использоваться для расчета окончательного результата. При калибровке по линейной регрессии может использоваться до шести калибраторов. Такое большое количество калибраторов требуется для того, чтобы уловить возможные изменения прямолинейной зависимости, что часто бывает при турбидиметрических измерениях.

Если калибровочная кривая носит нелинейный характер, то в этом случае используются минимум пять калибраторов и холостая проба.

Важное значение для обеспечения качества результатов анализов имеет частота калибровки. В настоящее время выбор интервалов повторной калибровки анализатора остается не в полной мере решенной проблемой. В ряде случаев частота повторных калибровок определяется сроком сохранности реактивов в анализаторе, определенным фирмой-производителем реактивов. В закрытых аналитических системах эти сроки внесены в программу анализатора. Любое вмешательство в аналитическую систему анализатора (замена лампы, воды, ремонт) должно заканчиваться повторной калибровкой. Более частое ее выполнение необходимо либо в связи с указаниями фирмы-производителя, либо при неудовлетворительных результатах контроля качества. Следует подчеркнуть, что отступление от инструкций производителя, например, использование старых растворов, калибраторов или контрольных материалов, несоответствующая частота калибровок, или сокращение количества калибровочных точек, или замена парных проб на одиночные, недопустимо. Даже если мы предполагаем или уверены, что частота калибровки неоправданно завышена ради увеличения прибыли производителя, отступать от инструкций фирмы нельзя.

Стоимость калибровки накладывается на прямую стоимость расходных материалов для анализов в зависимости от частоты калибровок и количества исследований в промежутке между калибровками. Например, при частоте калибровок дважды в месяц, частоте использования метода 1 раз в неделю и средней величине серии нелинейного метода пять анализов расход реактивов на калибровку повышает стоимость прямого расхода материалов на 60%. Расход реактивов на контрольные анализы дает прирост 20%, а стоимость контрольных материалов и стандартов - примерно 6%. Если частота анализов данным методом возрастает до 20 в день, а другие условия выполнения контроля качества остаются теми же, то стоимость реактивов для калибровки составит 3% общей прямой стоимости, а с контрольными анализами не превысит 9% общих прямых расходов.

2.4.2.3.6.3. Калибровка коагулометра

Калибровка автоматических коагулометров существенно не отличается от калибровки биохимических анализаторов. Для калибровки коагулометров используются следующие виды калибраторов (калибровочная, контрольная плазма):

  1. калибровочная плазма для установления активности протромбина, факторов протромбинового комплекса (протромбин-калибратор);

  2. калибровочная плазма для установления активности всех факторов свертывания;

  3. калибровочная плазма для установления концентрации фибриногена;

  4. калибровочная плазма для установления МНО (плазма получена от пациентов, принимающих оральные антикоагулянты).

В большинстве случаев для определения рутинных показателей гемостаза проводится калибровка по первой точке, в дальнейшем анализатор в автоматическом режиме может осуществлять повторные калибровки каждые 30/60 мин.

При определении отдельных факторов свертывания (VII, VIII, IX), антикоагулянтов (например, антитромбина III) автоматические коагулометры могут проводить калибровку по 1-8 точкам, осуществляя автоматическое разведение калибратора в соотношении от 1:1 до 1:1000 и выводя на экран рабочего компьютера графическое представление результатов калибровки.

Особенности калибровки автоматических коагулометров зависят от способа регистрации образования сгустка в исследуемой пробе.

2.4.2.3.6.4. Калибровка проточного цитофлюориметра

Для калибровки проточного цитофлюориметра используют калибратор, представляющий собой суспензию латексных частиц, меченных флюоресцеинизоцианатом и фитоэритином. Если после исследования суспензии полученные данные укладываются в рабочий протокол ци-тофлюориметра, который хранится в памяти компьютера, то калибровка принимается. В противном случае калибровку повторяют и, если необходимо, изменяют рабочий протокол цитофлюориметра.

При калибровке и исследованиях необходимо использовать реактивы фирмы-производителя цитофлюориметра.

2.4.2.4. Технологическая операция внутрилабораторного контроля качества

После проведенной калибровки автоанализаторы готовы к проведению исследований. Однако для суждения о достоверности информации, которую можно получить при исследовании, должен систематически изо дня в день осуществляться ВКК, который позволяет проверить воспроизводимость и правильность результатов. Для ВКК используется специальный контрольный материал - взвесь клеток, сыворотка, плазма, другая биологическая жидкость (моча), изготовленная промышленным путем. Контрольные материалы должны содержать величины ана-лита, декларированные производителем.

Проведенный внутри одного учреждения контроль качества называется ВКК независимо от того, состоит ли это учреждение из одной или нескольких лабораторий. ВОЗ определила ВКК как набор процедур, предпринимаемых персоналом лаборатории, для постоянной оценки качества лабораторной работы и получаемых результатов, чтобы решить вопрос, являются ли они надежными для того, чтобы выдать их лечащему врачу. ВКК в широком плане - это один из важнейших инструментов управления качеством на аналитическом этапе производства лабораторных анализов, а в более узком - выявление погрешностей в работе лаборатории. Контроль качества включает такие процедуры, которые предусматривают непрерывную оценку всей аналитической части единого технологического процесса производства анализов (оценку работы сотрудников лаборатории и результатов тестов). Контроль качества в лаборатории решает две задачи: с одной стороны, контроль четко показывает ту точность, с которой специалисты лаборатории выполняют данное исследование, а с другой стороны, контроль помогает устранять выявленные нарушения в технологическом процессе, то есть управлять качеством.

ВКК представляет собой систему строго унифицированных тестов оценки результатов анализов, которые показывают, в какой мере они близки к истинным величинам определяемых параметров. Контроль качества применяется отдельно для каждого лабораторного теста. У нас в стране технологическая операция ВКК регламентируется:

  1. приказом Минздрава России от 7 февраля 2000 г. № 45 «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения РФ»;

  2. отраслевым стандартом (ОСТ 91500.13.0001-2003) «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов»;

  3. ГОСТ Р 15333 2-2008 «Контроль качества клинических лабораторных исследований. Часть 2. Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов».

Основными требованиями к организации ВКК являются следующие:

  • анализ контрольного материала должен включаться в обычный ход работы лаборатории;

  • анализ контрольного материала должен проводиться тем же персоналом, который выполняет лабораторные исследования, ежедневно;

  • при исследовании контрольного материала должны использоваться те же методы исследования, которые лаборатория применяет ежедневно;

  • для объективной оценки выполнения качества анализов необходимо использовать шифрованное контрольное определение, когда непосредственный исполнитель не знает, что исследуемый материал - контрольный;

  • должны ежедневно использоваться контрольные материалы двух уровней, желательно в норме и при патологии.

Методы ВКК, разработанные и используемые в настоящее время в лабораториях различных стран, можно разделить на два класса: методы, использующие контрольные материалы, и методы, использующие данные пациентов (рис. 2.44).

ВКК включает контроль сходимости (воспроизводимости) и правильности (точности). Ежедневно специалисты лаборатории при проведении большинства видов лабораторных анализов, наряду с опытными пробами, исследуют контрольный материал. Контроль практически должен охватывать каждый лабораторный параметр. Определение каждого компонента в контрольном материале проводят по методу, применяемому в лаборатории.

Прежде чем перейти к изложению используемых в лабораториях методов ВКК, необходимо ознакомиться с основными принципами статистического анализа, которые являются основой всей системы контроля качества лабораторных исследований.

pic 0060
Рис. 2.44. Методы внутрилабораторного контроля качества

Имеется определенная степень ненадежности в каждом лабораторном исследовании. Повторное исследование пробы в идентичных условиях (тот же лаборант, использующий то же оборудование и те же реактивы) дает неидентичные результаты вследствие влияния случайной погрешности, которая присуща всем измерительным процессам. Ввиду многочисленности отдельных случайных погрешностей и ничтожных значений каждой из них специалист лаборатории сознательно отказывается от выяснения их причин и оценки значений. Взамен этого отказа он получает право изучать и описывать общую случайную погрешность и оценивать результаты анализа методами математической статистики, рассматривая их как случайные величины.

Результаты лабораторных исследований одного параметра в одной пробе образуют вариационный ряд с характерным для него расположением большинства величин вблизи его центральной части и рассеиванием к краям ряда, создавая определенное распределение. Многие распределения такого типа, отражающие самые разнообразные явления случайного характера, протекающие в природе, называют нормальными распределениями, а закон распределения - нормальным законом распределения случайных величин Гаусса. Результаты случайных погрешностей измерений лабораторных параметров количественно также распределяются по закону Гаусса.

Кривая нормального распределения имеет колоколообразную форму и характеризуется двумя параметрами: среднеарифметической (Х) и среднеквадратичным отклонением (S). На рис. 2.45 показана гистограмма результатов исследования глюкозы в контрольной сыворотке; в центре гистограммы наблюдается намного больше результатов, чем с краев: распределение результатов нормальное, а величина в центре гистограммы представляет собой среднеарифметическую всех результатов. Средняя рассчитывается делением суммы всех результатов на их число:

pic 0061

где Хср - средняя всех результатов; n - число результатов; Х. - величина отдельного результата; 2Х. - сумма всех результатов.

Дисперсию результатов средней при распределении Гаусса можно выразить среднеквадратичным отклонением (S), которое рассчитывают с помощью уравнения:

pic 0062
Рис. 2.45. Распределение Гаусса. S - среднеквадратичное отклонение
image

На рис. 2.45 показано, как распределение данных вокруг средней может быть описано среднеквадратичным отклонением. Приблизительно 2/3 результатов (68,3%) локализуются внутри интервала, ограниченного прямыми 1S, 95,5% - внутри 2S и 99,7% - внутри 3S.

Причины, из-за которых возможны отклонения от распределения Гаусса, представляют собой «выскакивающие» значения, смещение, неслучайные вариации и нестабильность аналитического метода.

Среднеквадратичное отклонение (характеризует воспроизводимость лабораторного исследования) иногда выражают в виде процента относительно средней, или коэффициента вариации (V):

image

Использование коэффициента вариации (V) значительно упрощает сравнение среднеквадратичных отклонений результатов исследований, выраженных в различных концентрациях или в разных единицах.

Для оценки качества измерений используют ряд критериев. Наиболее общее понятие - «точность измерений», то есть качество измерений, отражающее близость их результатов к истинному значению измеряемой величины. Высокая точность измерений соответствует малым погрешностям всех видов, как систематических, так и случайных.

Воспроизводимость измерений - качество измерений, отражающее близость друг к другу результатов измерений, выполняемых в различных условиях (в различное время, в различных местах). Различают воспроизводимость в серии, во времени (день ото дня) и межлабораторную воспроизводимость. Хорошая воспроизводимость еще не отражает правильности результатов. По одной воспроизводимости еще нельзя судить о точности измерений.

Сходимость измерений - качество измерений, отражающее близость друг к другу результатов измерений, выполненных в одинаковых условиях (за один день, одним методом, одними руками) из одного и того же материала (воспроизводимость в серии).

Основная цель контроля за воспроизводимостью и правильностью - выявление аналитических ошибок в целях их предупреждения и устранения.

Различают три основных вида аналитических ошибок - грубые, случайные и систематические.

Грубая ошибка - это одиночное значение исследуемого компонента, выходящее за пределы установленной для данного компонента области отклонений (за допустимые пределы погрешности Хср ±2S). Причиной грубых ошибок является недостаточная тщательность в работе специалистов лаборатории, например, неправильная дозировка, ошибки в подсчете, небрежность в проведении методики исследования и т.д. Данные с грубыми ошибками обязательно исключают из статистического анализа, так как представляют грубое нарушение методик проведения тестов.

Случайная ошибка - одиночное значение, не выходящее за пределы установленной для данного исследуемого компонента области, стремящееся к выходу за эти пределы (находится в области между Хср ±S и Хср ±2S). Случайными называются неопределенные по величине и знаку ошибки, в появлении каждой из которых не наблюдается какой-либо закономерности. Случайные ошибки происходят при всяком измерении, в том числе при любом аналитическом определении, как бы тщательно оно ни проводилось. Наличие их сказывается в том, что повторные определения того или иного показателя в данном контрольном материале, выполненные одним и тем же методом, дают, как правило, не одинаковые, а несколько различающиеся между собой результаты. Они обусловлены:

  • свойствами самого контрольного материала (негомогенностью, неравномерностью перемешивания);

  • некачественным инструментарием (неточностью пипеток, мерной посуды - объемная ошибка, термоизмерительной аппаратуры - температурная ошибка, нестабильность фотометрических анализаторов);

  • неточностью работы специалистов лаборатории (неточное пипетирование - ошибка пипетирования, неправильное взвешивание, неправильное считывание результатов исследования - ошибка утомления и т.д.). Чаще случайные ошибки вызываются субъективными факторами, их величина (разброс данных) является мерилом воспроизводимости лабораторных результатов. Чем меньше величина случайных ошибок и меньше разброс, тем лучше воспроизводимость данных лабораторных исследований.

Систематическими ошибками называют погрешности, одинаковые по знаку, происходящие от определенных причин, влияющих на результаты либо в сторону их увеличения, либо в сторону уменьшения (то есть Хр ±28), другими словами - это систематическое (неслучайное, однонаправленное) отклонение результатов от истинных значений (Murphy E.A., 1976). Систематические ошибки обычно можно предупредить и устранить или же ввести соответствующие поправки. Наиболее характерными являются следующие виды систематических ошибок.

  1. Ошибки методические. Они зависят от особенностей применяемого метода исследования, например, от не вполне количественного протекания реакции, на которой основано определение, от частичной растворимости осадка, осаждения вместе с ним различных посторонних примесей, частичного разложения или улетучивания осадка, течения наряду с основной реакцией каких-либо побочных реакций, искажающих результаты исследования, и т.д. Методические ошибки составляют наиболее серьезную причину искажения результатов количественных определений, и устранить их трудно. Вместе с тем при использовании наборов реактивов хорошего качества методические ошибки встречаются очень редко.

  2. Ошибки, зависящие от применяемых приборов и реактивов. Это ошибки, связанные с недостаточной точностью весов, применением непроверенных разновесов или мерной посуды для точного определения объема; ошибки, происходящие в результате загрязнения раствора продуктами разрушения стекла или фарфора, из которых изготовлена применяемая при анализе посуда.

  3. Ошибки оперативные. Они возникают вследствие неправильного или недостаточно тщательного выполнения аналитической операции.

  4. Ошибки индивидуальные, зависящие от индивидуальных особенностей самого специалиста лаборатории, например, от его неспособности точно улавливать момент перемены окраски при титровании и т.д.

Последние три вида систематических ошибок могут быть выявлены и сведены до минимальных величин.

Систематические ошибки повторяются при каждом измерении, так как они вызываются постоянными причинами. Именно поэтому они влияют на всю серию определений.

Величина систематической ошибки характеризует правильность результатов анализа.

Когда результаты исследований отклоняются от истинного значения на постоянную величину, такая систематическая ошибка называется постоянной. Она может вызываться неправильной холостой пробой, а также химической или спектральной интерференцией.

Для проверки на грубые ошибки используют критерий Т. Его рассчитывают для наиболее сомнительных отдельных значений ряда анализов по формуле:

image

Для наименьшего отдельного значения Xi ряда анализов критерий Т рассчитывают по формуле:

image

Граница надежности Т зависит от установленной вероятности ошибки (а) и от числа отдельных значений (я). Для а=5% и n=10 она составляет 2,29, для я=20 при а=5% она равна 2,62.

Прямой контроль качества в лаборатории невозможен, так как истинная величина исследуемого компонента в пробе больного неизвестна. Однако точность и правильность техники анализа можно контролировать, исследуя пробы контрольного материала или пациентов. Рассмотрим методы ВКК, нашедшие наиболее широкое применение в клинической лабораторной диагностике.

2.4.2.4.1. Метод контрольных карт

Из всех методов ВКК наибольшее распространение получил метод контрольных карт, который впервые был предложен W.A. Shewhart (1931) и использовался в промышленности, а позднее был модифицирован для лабораторных целей и в 1950-х гг. S. Levey и E.K. Jennings (1950) введен в клиническую химию.

При работе с картами Леви-Дженнингса нужно иметь критерии решения (доверительные пределы) для оценки результатов, когда надо решить вопрос, можно или нельзя выдавать полученные в данном цикле результаты. Доверительные пределы, используемые для контрольных материалов в рутинных исследованиях, называются контрольными пределами. Для определения контрольных пределов контрольный материал многократно исследуют в течение периода, когда аналитический метод стабилен. Из полученных контрольных исследований (не менее 20 результатов) рассчитывают среднеарифметическую и среднеквадратичное отклонение, из которых вычисляют контрольные пределы по приведенным выше формулам. Затем строят карту контроля качества (рис. 2.46), где на оси абсцисс откладывают дни исследования, а на оси ординат - концентрацию компонента в соответствующих единицах. Через середину оси ординат проводят прямую, соответствующую средней, и выше и ниже средней проводят параллельные прямые, соответствующие контрольным пределам. Результаты, получаемые от последующих исследований контрольного материала той же серии, отмечают на карте в виде точки и интерпретируются путем соотнесения с этими контрольными пределами, характеризующими стабильность аналитического процесса.

pic 0067
Рис. 2.46. Карта Леви-Дженнингса

Когда метод исследования стабилен, то контрольные результаты редко выпадают за пределы ±3S (из 1000 результатов выпадает только три результата), поэтому указанный предел используют как контрольный. Если результаты исследования контрольного материала выходят за пределы ±3S, это свидетельствует о том, что аналитический процесс проходит не так, как в период получения исходных контрольных данных, и, следовательно, указывает на большую вероятность увеличения аналитической ошибки. Если используется контрольный материал с известным содержанием контролируемого параметра, то метод контрольных карт позволяет одновременно оценивать воспроизводимость и правильность.

Таким образом, внимание фокусируется на немедленном принятии решения, как только аппарат выдаст контрольные данные, а не на ретроспективном обзоре большого количества данных, например, за месяц.

2.4.2.4.2. Контрольные правила Westgard

После построения контрольной карты с контрольными пределами Х±2S или Х±3S в зависимости от того, куда попадает результат контрольной пробы, принимается решение: в «контроле» данная серия или нет. Однако, руководствуясь только одним этим правилом, можно ошибочно отбросить серию с хорошими результатами. Установлено, что при одном контрольном результате и контрольных пределах Х±2S коэффициент ошибочного отброса составляет 5%. В связи с этим были разработаны альтернативные контрольные правила, которые общеизвестны как правила Westgard. Контрольные правила используют для оценки правильности и воспроизводимости получаемых контрольных материалов. Для краткости и удобства использования контрольные правила обозначаются символами. Например, широко используемое правило, при котором исследуются одна контрольная проба и контрольные пределы Х±2S, обозначается как 12S.

Правило 12S (рис. 2.47). Это предупредительное правило, оно требует проверки контрольных данных по другим дополнительным правилам контроля для принятия решения о приеме результатов исследований данной серии или отбрасывании ее. Необходимо искать ошибки в текущей и в предыдущей сериях.

Правило 13S. Все результаты исследований данной серии отбрасывают, когда один контрольный результат превышает контрольные пределы Х±3S на любой стороне от средней (рис. 2.48). Показатель случайной ошибки может указывать на начало большой систематической ошибки, и его применяют только внутри серии.

pic 0068
Рис. 2.48. Правило 13S

Правило 22S (внутри серии). Аналитическая серия отбрасывается, когда два последовательных контрольных результата попадают на одной стороне от средней и превышают контрольные пределы X+2S или X-2S (рис. 2.49). Показатель систематической ошибки.

pic 0069
Рис. 2.50. Правило 22S (между сериями)

Правило 22S (между сериями). Аналитическая серия отбрасывается, когда два последовательных контрольных результата, полученные от разных серий, попадают на одной и той же стороне от средней и превышают контрольные пределы X+2S или X-2S (рис. 2.50). Показатель систематической ошибки.

Правило R4S (рис. 2.51). Аналитическая серия отбрасывается, если разница между максимальными и минимальными контрольными результатами превышает 4S (внутри одной серии). Показатель случайной ошибки. Имеется двусмысленность в интерпретации случая, когда одна точка оказывается между 2S и 3S.

pic 0070
Рис. 2.52. Правило 41S (внутри серии)

*Правило 41S * (внутри серии). Аналитическая серия отбрасывается, когда четыре последовательных контрольных результата попадают на одной стороне от средней и превышают контрольные пределы X+1S или X-1S (рис. 2.52). Показатель систематической ошибки. Однако смещение чаще всего не является клинически значимым. Не всегда требует исключения серии.

Правило 41S (между сериями). Аналитическая серия отбрасывается, когда четыре последовательных контрольных результата с разным уровнем контроля (две серии контрольного материала) попадают на одной стороне от средней и превышают контрольные пределы X+1S или X-1S (рис. 2.53). Показатель систематической ошибки. Смещение чаще всего не является клинически значимым. Не всегда требует исключения серии.

pic 0071
Рис. 2.54. Правило 10х (внутри серии)

Правило 10х (внутри серии). Аналитическая серия отбрасывается, когда 10 последовательных результатов попадают на одной стороне от средней (рис. 2.54). Показатель систематической ошибки. Смещение чаще всего не является клинически значимым. Не всегда требует исключения серии.

Правило 10х (между сериями). Аналитическая серия отбрасывается, когда 10 последовательных контрольных величин для разных уровней контроля (две серии контрольного материала) попадают на одной стороне от средней (рис. 2.55). Смещение чаще всего не является клинически значимым. Не всегда требует исключения серии.

pic 0072
Рис. 2.55. Правило 10х (между сериями)

Для оценки контрольных результатов Westgard предложил использовать комбинацию контрольных правил. Вероятность ошибочного отброса серий можно поддерживать низкой путем отбора только таких правил, которые имеют очень низкую индивидуальную вероятность ошибочного отбора (не более 0,01). Вероятность обнаружения ошибки можно улучшить путем выбора таких правил, которые особенно чувствительны к случайным и систематическим ошибкам.

Практическое использование этого сочетания контрольных правил показано на рис. 2.56. Правило 12S используется как предупреждающее, и требуется более детальное исследование данных с применением остальных контрольных правил. Если ни один контрольный результат не превышает предела 2S, аналитическая серия находится под контролем. Если один из результатов превышает пределы 2S, контрольные данные проверяют с помощью правил 12S, 22S, R4S и 10х, и если ни одно из них не нарушено, серия находится под контролем.

pic 0073
Рис. 2.56. Логическая диаграмма применения серии контрольных правил по методу Шухарта со многими правилами

Если любое из правил нарушено, это является сигналом для отбрасывания серии полученных результатов. Каждое нарушенное правило свидетельствует об определенном типе аналитической ошибки.

Если аналитическая серия вне контроля, то выполняют следующие действия:

  1. определяют тип ошибки (случайная, систематическая или обе), базируясь на том, какие именно правила контроля были нарушены; при использовании правил Westgard случайная ошибка чаще всего обнаруживается правилами 1 и R4S, систематическая ошибка - правилами 22S, 41S и 10х, а если она очень велика, то и правилом 13S;

  2. изучают инструкции к прибору и реактивам, чтобы найти возможный источник ошибок, то есть обнаружить компоненты, которые могли оказать свое влияние на результаты контроля и результаты тестов;

  3. устраняют причину ошибки, затем вновь исследуют пробы от больных и контрольные, проводят статистический анализ вновь полученных данных; при этом анализе не включают контрольные данные, полученные в предыдущем цикле, то есть в цикле, где была обнаружена ошибка и данные которого были отброшены;

  4. консультируются с руководителем данного технологического процесса для принятия решения, если есть какие-то отклонения в статистическом контроле (нарушено какое-то правило).

Руководитель данного технологического процесса может принять решение о выдаче в отделения результатов исследований данных пациентов при нарушении какого-то статистического правила в следующих ситуациях:

  • проблема заключалась в самих контрольных материалах (следует помнить, что данные о контрольных материалах даже у самых надежных фирм, могут быть ошибочными, то есть содержание анализируемых компонентов может не соответствовать паспортным данным, прилагаемым к контрольным материалам);

  • проблема оказалась случайной и не повлияла на остальные результаты серии (перепутали контроли, ошиблись в записях и т.д.);

  • проблема выявлена в диапазоне концентраций, которые нетипичны для концентраций, характерных для пациентов; метод оказался под контролем в диапазоне концентраций, характерных для пациентов;

  • величина аналитической ошибки расценивается как небольшая с точки зрения медицинских запросов.

2.4.2.4.3. Метод параллельных проб

Данный метод позволяет проводить контроль качества без использования специальных контрольных материалов, то есть статистический анализ проводят на результатах проб пациентов. Такой контроль качества может быть одномоментным, за один рабочий день (контроль сходимости), или ежедневным в течение длительного времени (контроль за воспроизводимостью).

При использовании метода параллельных проб отбирают 10 случайных проб пациентов и каждую пробу исследуют дважды. Результаты таких дублированных анализов заносят в статистическую таблицу результатов (табл. 2.34).

Таблица 2.34. Статистическая таблица результатов для метода параллельных определений проб пациентов
Номер определения Дата определения А В (А-В) (А-В)2

Примечания:

А и В - параллельные определения одной и той же пробы пациента; число проб пациентов - N=10, общее число определений - n=20.

Далее рассчитывают Х с учетом всех определений по формуле:

image

S рассчитывают с помощью уравнения для дублированных анализов:

image

Затем рассчитывают коэффициент вариации V, допустимый предел ошибки и анализируют, как обычно.

Анализ результатов метода параллельных проб можно проводить с помощью контрольной карты Леви-Дженнингса. Для этого строят контрольную карту по результатам одного или двух дней параллельных определений, накапливая статистику (N=20, n=40), аналогичную описанной выше, для контрольных материалов. Контрольные пределы карты - ±2S.

В дальнейшем набирают по 1-2 точки для нанесения на карту - каждый день проводят 4-5 параллельных определения в любой случайно выбранной пробе (одной или двух) от пациентов текущего дня и разницу между двумя анализами наносят на карту. За один рабочий день - это одна точка, допускается две точки. Когда на карту будет нанесено 6-8 точек (за неделю или 10 дней), анализируют ситуацию на карте и делают вывод о воспроизводимости результатов по данному виду анализа на основании правил Westgard.

2.4.2.4.4. Контроль воспроизводимости методом средней нормальных величин пациентов

Метод основан на статистическом анализе результатов проб пациентов. Предполагается, что средняя величина, полученная по данной методике за один день при большом объеме работы лаборатории (не менее 30 определений), приблизительно постоянна изо дня в день. Если в выполнение анализа вкрадывается систематическая ошибка, то это выразится в сдвиге средней величины результатов. Данный метод может использоваться без построения и с построением контрольной карты.

Когда используется контроль за воспроизводимостью без построения контрольной карты, в течение 10 дней ежедневно рассчитывают среднюю нормальных величин проб пациентов по данному виду анализа. Пациентов в день должно быть не менее 30, а с нормальными показателями из них - не менее 16. Если ежедневно такой выборки не бывает, данные собирают в дни большого объема работы.

Средние значения нормальных проб пациентов за день заносят в статистическую таблицу (табл. 2.35).

Таблица 2.35. Статистическая таблица результатов на пробах пациентов методом средней нормальной величины пациентов
image

Затем рассчитывают по полученному ряду все статистические параметры (Хcp, S, V) и допустимый предел ошибки. Окончательный вывод делают путем сравнения V, рассчитанного с 1/4 частью допустимого предела ошибки.

При использовании контрольной карты необходимо в течение 20 дней ежедневно рассчитывать среднюю нормальных величин проб пациентов с теми же условиями. Затем заполняют таблицу, проводят все расчеты, строят карту.

После построения контрольной карты ежедневно находят среднюю нормальных результатов данного компонента и откладывают на карте. В дальнейшем анализ получаемых результатов проводят на основании правил Westgard.

2.4.2.4.5. Метод шести сигм

Сущность сигмометрии состоит в том, что значения сигмы идентифицируют размер аналитической ошибки и позволяют достичь желаемого аналитического качества (аналитической вариации) для того или другого теста с помощью простых процедур ВКК.

Для осуществления сигмометрии в отношении аналитического процесса тестирования в лаборатории необходима следующая информация:

  • критерии допустимой ошибки определения конкретного показателя (например, из приказов по качеству);

  • величина невоспроизводимости метода, то есть величина стандартного отклонения или коэффициента вариации, рассчитанных на основании данных повторных измерений или данных рутинного ВКК;

  • величина неправильности метода, то есть величина аналитического смещения, которую можно получить на основании сравнительного анализа данных референтного метода и валидируемого метода или при расчете разницы между средними данными группы сравнения и данными в тестируемой группе.

Поясним на примере метода определения концентрации холестерина в крови, для которого величина допустимой ошибки определения в соответствии с отраслевым стандартом (ОСТ 91500.13.0001-2003) «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов» составляет 10%:

  • метод, имеющий величину CV 2% и аналитическое смещение (bias) 2%, на сигмометрии процесса дал бы величину 4 сигмы;

  • метод с CV 3% и аналитическим смещением 1% на сигмометрии дал бы величину 3 сигмы;

  • метод с величиной CV 2% и без аналитического смещения на сигмометрии дал бы величину 5 сигм;

  • метод с величиной CV 1,7% и без аналитического смещения на сигмометрии процесса дал бы величину 6 сигм.

Приведенные данные показывают, что при увеличении сигм в отношении процесса тестирования возрастает и надежность статистического ВКК. Если же количество сигм процесса тестирования уменьшается, возрастает потребность в его аналитической поддержке, статистический ВКК становиться более сложным, требующим применения нескольких контрольных правил, а также все большего и большего количества контрольных измерений на одну аналитическую серию.

В статистике и теории вероятности греческой буквой «сигма» (о) обозначают среднеквадратичное (стандартное) отклонение от среднего значения. Под методологией «6 сигм» понимают меру качества, применяемую для уменьшения количества дефектов в процессе производства результатов лабораторных анализов, а ее целью является сокращение отклонений в ходе производственного процесса и его совершенствование. Чем больше цифра, используемая в комбинации с сигмой, тем меньше отклонение, а значит, тем меньше брака в производственных процессах в лаборатории. Показатель 6 сигм - это 99,99966% результатов анализов без дефектов (3,4 дефекта на 1 млн результатов), или эталонная «кучность» результатов, которую можно достигнуть только в условиях современного производства. В рамках методологии 6 сигм суть управления процессами производства в лаборатории для повышения качества результатов анализов - это снижение значения среднеквадратичного отклонения. Как правило, в лабораториях уровень дефектов в рамках сигма-анализа находится между 3 и 4 сигмами. Это значит, что выход качественных результатов анализов лежит между 93,32% и 99,38%. Другими словами, если в лаборатории для контроля качества используют 3 сигмы, то удается выявить 93,32% ошибочных результатов анализа, 4 сигмы - 99,38%, 6 сигм - 99,999%.

Высокие значения сигмы позволяют выявлять ошибки малой величины процессов аналитического тестирования, которые необходимо мониторировать с помощью правил ВКК для предупреждения снижения качества (табл. 2.36). Все лаборатории должны стремиться к использованию в своей практике аналитических методов, отвечающих 6 сигмам, что позволяет снизить количество аналитических ошибок до 3,4 на 1 млн анализов (табл. 2.37).

Таблица 2.36. Рекомендации по мониторированию качества аналитического этапа

Аналитическая эффективность процесса тестирования (количество сигм) Рекомендации по проведению ВКК

6 сигм

Можно мониторировать с помощью любых правил ВКК, но наименее дорогостоящей будет процедура с контрольным правилом 135s и двумя либо тремя контрольными измерениями на одну аналитическую серию

5 сигм

Можно мониторировать с помощью контрольного правила 13s или с несколькими контрольными правилами с двумя или тремя контрольными измерениями на одну аналитическую серию

4 сигмы

Необходимо мониторировать с помощью ВКК с несколькими контрольными правилами и, по крайней мере, с четырьмя контрольными измерениями на одну аналитическую серию

3 сигмы

Необходимо мониторировать с помощью ВКК с несколькими контрольными правилами и, по крайней мере, с четырьмя контрольными измерениями на одну аналитическую серию

Таблица 2.37. Количество аналитических ошибок в зависимости от значений сигм
Количество сигм Ошибки на 1 млн Ошибки, % Эффективность, %

6 сигм

3,4

0,00034

99,9997

5,5 сигм

32

0,0032

99,9968

5 сигм

233

0,0233

99,9767

4,5 сигмы

1350

0,135

99,865

4 сигмы

6210

0,621

99,379

3,5 сигмы

22 750

2,27

97,37

3 сигмы

66 807

6,68

93,32

Значение 3 сигмы в настоящее время считается приемлемым в отношении аналитического метода, используемого в лаборатории, но необходимо улучшать качество аналитического этапа, стремясь к значению 6 сигм.

В практическом плане быструю и приблизительную оценку ожидаемой аналитической эффективности процессов тестирования можно осуществить на основании уровня его автоматизации и компьютеризации. Ручное выполнение исследований и полуавтоматические анализаторы способны обеспечить аналитическую эффективность, соответствующую 3 сигмам или ниже, небольшие гематологические и биохимические анализаторы, анализаторы глюкозы - приблизительно 4 сигмам.

Современные большие биохимические и гематологические анализаторы обеспечивают аналитическую эффективность процесса тестирования на уровне 5 сигм или выше. Это значит, что эти процессы можно очень эффективно мониторировать с помощью простых статистических правил ВКК. Чаще всего иммунохимические системы попадают в категорию средней автоматизации и требуют выполнения большего количества контрольных измерений и более сложной процедуры ВКК с применением нескольких контрольных правил. Высокоспециализированные исследования (например, исследования методом ПЦР), как правило, выполняются в ручном режиме или находятся на начальных стадиях автоматизации и поэтому требуют наиболее сложной процедуры ВКК.

Выше были приведены общие подходы к контролю качества лабораторных исследований.

Теперь рассмотрим более подробно системы контроля качества для различных видов исследований.

2.4.2.4.6. Контроль качества гематологических исследований

Гематологические исследования составляют значительную часть общего числа лабораторных исследований. Использование в практике лабораторий автоматизированных систем для анализа проб крови требует создания эффективной программы контроля качества для получения правильных и точных результатов анализа.

ВОЗ разработала рекомендации по проведению контроля качества гематологических исследований (Lewis S.M., 1992). Эта рекомендации включают многокомпонентный контроль качества и состоят из следующих видов контроля.

  1. Контроль качества в любое время. Этот вид контроля включает:

    • динамический контроль за изменением гематологических показателей у пациента;

    • корреляцию между результатами исследования мазка крови и результатами, получаемыми с помощью гематологических анализаторов;

    • корреляцию между изменением результатов, полученных с помощью гематологических анализаторов, и клинической картиной заболевания.

  2. Контроль, проводимый ежедневно. Этот вид контроля включает:

    • исследование контрольного материала (стабилизированную кровь), построение и анализ контрольных карт по критериям Westgard; в дальнейшем контрольный образец исследуют через 20 проб пациентов;

    • дублированные исследования 4-5 образцов (метод параллельных проб);

    • контрольные исследования 4-5 образцов пациентов из предыдущей серии;

    • статистический анализ среднего содержания гемоглобина в эритроците (МСН) - контроль за воспроизводимостью методом средней нормальных величин пациентов.

  3. Контроль, проводимый еженедельно, включает контроль морфологии мазков крови и костного мозга.

  4. Контроль, проводимый ежеквартально, включает:

    • участие в федеральной системе внешней оценки качества;

    • калибровку пипеток и автоматических дозаторов.

Контроль качества в любое время. Виды контроля качества в любое время подразумевают использование метода корреляционного контроля. Использование этого метода подразумевает, что любой неожиданный результат, полученный с помощью гематологического анализатора, должен быть проверен для того, чтобы видеть, можно ли его объяснить клинической картиной и коррелирует ли он с другими тестами. Например, неожиданно высокий или низкий уровень гемоглобина по сравнению с предыдущим исследованием можно объяснить переливанием крови или геморрагией соответственно. Низкая величина МСНС (средняя концентрация гемоглобина в эритроците) должна быть подтверждена демонстрацией гипохромии эритроцитов при исследовании окрашенного мазка крови, а высокая величина MCV должна коррелировать с макроцитозом.

Ориентировочно явные ошибки при подсчете форменных элементов крови на гематологическом анализаторе могут быть обнаружены при использовании правила трех чисел: число гемоглобина (г/дл), умноженное на 3, дает величину гематокрита; число эритроцитов, умноженное на 3, дает ориентировочную величину гемоглобина (г/дл) (берется только число эритроцитов, например, если число эритроцитов 4,12х1012/л, то на 3 умножается 4,12); число эритроцитов, умноженное на 9, соответствует величине гематокрита (расчет аналогичен предыдущему).

Если в исследуемой крови получены очень высокие показатели счета лейкоцитов и содержания гемоглобина, необходимо проверить качество гемолитика. Если гемолиз эритроцитов происходит не полностью, можно получить ложные результаты. Если при счете фона - дилюента получается высокое количество импульсов, можно завысить, например, число лейкоцитов в условиях лейкопении.

Очень важным является наблюдение за динамикой изменения гематологических показателей. Это особенно полезно для выявления случайных ошибок на преаналитическом этапе технологического процесса (неправильнное кодирование или маркировка проб, частичное свертывание крови в моноветте).

Для оценки качества гематологического исследования, особенно в условиях выраженной патологии, необходимо сопоставить полученные результаты с ранее полученными у этого пациента. Если исследования ранее выполнялись на другом гематологическом анализаторе, необходимо знать, что, согласно рекомендациям ВОЗ, разница для гематологических анализаторов не должна превышать 10% для гемоглобина и эритроцитов и 20% - для лейкоцитов и тромбоцитов при условии, что клинический статус пациента значительно не изменяется (Lewis S.M., 1992). Для уточнения возможных причин патологических отклонений в результатах анализов полезно проконсультироваться с лечащим врачом относительно состояния пациента и обсудить возможные причины изменения показателей.

В своей повседневной деятельности для обеспечения качества гематологических исследований необходимо активно использовать корреляцию между результатами исследования мазка крови и результатами, получаемыми с помощью гематологических анализаторов (Stiene-Martin E.A. et al., 1998). Сущность этого метода состоит в следующем.

Предварительно подсчитывают количество тромбоцитов - PLT (лейкоцитов - WBC) в 30 пробах крови пациентов на гематологическом анализаторе (должны быть хорошие результаты контроля качества). Результаты подсчета заносят в табл. 2.38. Из каждой пробы крови готовят и окрашивают мазки, которые исследуют с иммерсией. В мазке находят место, где 50% эритроцитов перекрывают друг друга или расположены группами по 2-3, и подсчитывают тромбоциты (лейкоциты) в 10 соседних полях зрения. Результаты подсчета каждого мазка крови (10 полей зрения) суммируют и делят на 10, то есть рассчитывают среднее количество тромбоцитов (лейкоцитов) в одном поле зрения, которые заносят в табл. 2.38. В дальнейшем рассчитывают отношение результата каждой пробы, полученного при подсчете тромбоцитов (лейкоцитов) на гематологическом анализаторе, к среднему числу тромбоцитов (лейкоцитов) при подсчете под микроскопом. Все отношения 30 проб суммируют и делят на 30, в результате получают коэффициент пересчета для данного микроскопа. Необходимо округлить полученный коэффициент до целой величины. Этот коэффициент пересчета показывает, какое количество тромбоцитов (лейкоцитов) периферической крови приходится на один тромбоцит (лейкоцит) в поле зрения.

Таблица 2.38. Расчет фактора пересчета лейкоцитов и тромбоцитов для микроскопа №_

Номер пробы крови

Подсчет лейкоцитов и тромбоцитов на анализаторе (А) х 109

Подсчет лейкоцитов и тромбоцитов с иммерсией (B) (среднее из 10 полей зрения)

Соотношение лейкоцитов и тромбоцитов (А/В)

WBC

PLT

WBC

PLT

WBC

PLT

1

7,8

247

0,3

12,1

26

20,4

2

5,8

208

0,3

9,1

19

22,8

3

9,3

220

0,4

8,6

23

25,6

4

6,6

243

0,3

10,8

22

22,5

5

7,5

211

0,3

9,0

25

23,4

6

5,5

167

0,2

8,3

27,5

20

7

7,9

280

0,3

13,1

26

21,3

8

6,6

207

0,2

9,6

33

21,6

9

5,3

213

0,2

7,9

26,5

26,9

10

5,7

142

0,2

6,8

28,5

20,9

11

8,4

336

0,5

16,6

16,8

21,5

12

6,3

229

0,3

11,2

21

20,4

13

6,5

185

0,3

8,0

21,6

23

14

7,1

262

0,3

12,2

23,6

21,5

15

7,7

263

0,4

10,3

19

25,5

16

6,1

188

0,3

7,6

20

24,7

17

6,0

240

0,2

11,0

30

21,8

18

4,9

151

0,1

6,1

49

24,7

19

6,4

266

0,3

10,7

21

24,8

20

5,1

251

0,2

12,4

25,5

20,2

21

5,2

249

0,1

9,8

52

25,4

22

6,9

206

0,3

8,9

23

23,1

23

6,1

165

0,3

6,8

20

24,3

24

7,7

214

0,3

8,9

25,6

24

25

6,3

286

0,4

12,8

15,7

22,3

26

4,7

187

0,2

10,2

23,5

18,3

27

8,6

252

0,4

11,6

21,5

21,7

28

5,2

225

0,2

11,4

26

19,7

29

6,4

264

0,2

12,2

32

21,6

30

6,1

163

0,3

5,3

20

36,7

Сумма:

763,3

684,6

Примечание. Коэффициент пересчета для лейкоцитов = 25 х 109/л. Коэффициент пересчета для тромбоцитов = 23 х 109

Определение коэффициента пересчета для тромбоцитов (лейкоцитов) проводят 1 раз для каждого микроскопа, в случае крупного ремонта микроскопа с заменой оптики определение коэффициентов повторяют. Полученный коэффициент пересчета используют для постоянного ориентировочного контроля за работой гематологического анализатора. Например, при подсчете количества тромбоцитов на гематологическом анализаторе результат составил 204х109/л. При просмотре пяти полей зрения мазка крови этого пациента в среднем в одном поле зрения насчитывалось девять тромбоцитов. Коэффициент пересчета тромбоцитов для данного микроскопа составляет 23. Умножив 9 на 23, получаем 207х109/л тромбоцитов, что сопоставимо с данными гематологического анализатора.

Если подсчитанное в мазке количество тромбоцитов (лейкоцитов) расходится с данными гематологического анализатора, то при условии правильного взятия крови, приготовления мазка и подсчета в нем тромбоцитов (лейкоцитов) можно предположить неточный результат подсчета тромбоцитов (лейкоцитов) на анализаторе. В таких случаях, если полученные данные вызывают сомнение в результатах автоматического подсчета тромбоцитов или лейкоцитов, необходимо:

  • проверить идентификацию пробы;

  • повторить подсчет на анализаторе;

  • приготовить новый мазок из той же пробы крови, окрасить его и провести подсчет тромбоцитов (лейкоцитов);

  • в случае если все предыдущие действия при хороших результатах контроля качества на гематологическом анализаторе не приводят к близким результатам исследований, необходимо повторно взять кровь пациента и повторить все этапы анализа с тщательным соблюдением правил.

Контроль гематологических исследований, проводимый ежедневно. Этот вид контроля включает исследование коммерческих контрольных образцов (стабилизированной крови). Проводят исследование контрольного материала, с каждой серией контрольных образцов (низким содержанием показателей, нормальным и повышенным содержанием) строят и анализируют контрольные карты Леви-Дженнингса для гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов - по критериям Westgard.

Использование стабилизированной крови носит характер контроля за правильностью положения дискриминатора гематологического анализатора. Коммерческие взвеси клеток (стабилизированная кровь) не являются идеальным материалом, поскольку они содержат консервированные клетки, измененные по размеру, форме поверхности, реологическим свойствам, а также специфической электропроводности. Тем не менее этот контрольный материал остается относительно стабильным в течение 30-60 дней. К тому же использование коммерческих взвесей клеток позволяет одновременно проводить контроль качества нескольких гематологических параметров, включая содержание гемоглобина, число эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, средний объем клеток. Все взвеси клеточных элементов имеют доверительные интервалы, в которые необходимо уложиться. Использование контрольной стабилизированной крови позволяет произвести проверку воспроизводимости гематологического анализатора, но никак не точности.

Постановка через каждые 20 проб пациентов пробы с контрольным материалом позволяет выявить отклонения в результатах исследований еще до того, как они станут клинически значимыми.

Использование в качестве стандартного образца аттестованного раствора цианметгемоглобина для контроля качества фотометрического блока гематологического анализатора не рекомендуется, так как такая процедура позволяет провести оценку работы фотометрического блока без учета этапов разбавления и качества используемого в гематологическом анализаторе гемолитика.

Ежедневно при гематологических исследованиях проводят дублированные исследования 4-5 образцов пациентов. Результаты анализа заносят в контрольную карту и анализируют по правилам Westgard. Этот метод предназначен для идентификации случайных ошибок. Если гематологический анализатор работает неудовлетворительно, то среднеквадратичное отклонение (S) будет большое и не будет чувствительно к индивидуальным ошибкам. Метод дает представление о воспроизводимости измерений, но не о правильности.

Контрольные исследования 4-5 образцов пациентов из предыдущей серии подобен предыдущему методу параллельных проб, но при этом исследуют образцы, которые были уже предварительно исследованы. Результаты повторных исследований должны быть в пределах ±2S. Метод позволяет выявлять нарушения в калибровке гематологического анализатора и реактивах (например, плохое качество гемолизирующего раствора), которые могут произойти между исследованиями, при условии, что образцы не испортились во время хранения. Данный метод используется для оценки качества определения гемоглобина, в меньшей степени - для эритроцитов и лейкоцитов и не рекомендуется для тромбоцитов, если задержка во времени между исследованиями превышает 6 ч. Если среднеквадратичное отклонение (S) при контрольных исследованиях образцов пациентов из предыдущей серии оказывается выше S параллельных проб, то это указывает на нарушения в работе гематологического анализатора или реактивов к нему при условии, что образцы не изменились.

Статистический метод анализа МСН основан на предположении, что среднее содержание гемоглобина в эритроците для группы пациентов попадает в узкую область, которая остается постоянной день ото дня и которую можно использовать как критерий контроля качества. МСН находится в узких пределах у здоровых взрослых людей (27-34 пг), а также у пациентов с нормальной концентрацией гемоглобина в крови. Изменение среднего значения МСН будет указывать на наличие постоянной ошибки в исследованиях, а большая вариация в результатах или патологически широкое стандартное отклонение укажет на случайную ошибку в подсчете показателей крови на гематологическом анализаторе. Поскольку современные гематологические анализаторы имеют компьютерную программу, в которую поступают результаты исследований, то анализ отклонений МСН можно проводить постоянно. Таким способом анализируют результаты в последующих сериях из 20 образцов (проб) пациентов. Метод можно использовать только при условии, что группы пациентов, от которых получены пробы, не очень отличаются день ото дня.

Контроль гематологических исследований, проводимый еженедельно. Контроль, проводимый еженедельно, включает оценку морфологии клеток крови и костного мозга при микроскопии мазков.

Подсчет лейкоцитарной формулы в мазке крови является не очень точным методом и может быть источником ошибок, которые не могут быть полностью устранены (включая ошибки при взятии крови, приготовлении и окраске мазка, человеческую субъективность при идентификации клеток). Некоторые типы клеток, особенно моноциты, эозинофилы и базофилы, распределяются в мазке совершенно незакономерно. Высокое процентное содержание этих клеток, особенно в ограниченной зоне мазка, должно быть обязательно перепроверено, прежде чем будет выдан результат. При количестве лейкоцитов в крови более 35х109/л рекомендуется для большей точности подсчитывать не менее 200 клеток. Количество исследуемых лейкоцитов должно увеличиваться пропорционально увеличению лейкоцитоза, чтобы оценивать большую зону мазка. Если количество лейкоцитов в крови менее 2х109/л, то некоторые лаборатории производят подсчет менее 100 клеток. Однако при этом резко снижается точность, поэтому такой подсчет не рекомендуется. В случае если не удается найти в мазке 100 клеток, предлагается делать лейкоконцентрат, однако следует помнить, что при приготовлении лейкоконцентрата происходят морфологические изменения лейкоцитов и неравномерное распределение типов клеток. Если было подсчитано менее 100 или более 100 клеток, то об этом сообщают руководителю лаборатории и делают запись в бланке результата.

Подтверждением того, что метод подсчета лейкоцитарной формулы в мазке крови является не очень точным, служат приведенные в табл. 2.39 данные 95% доверительного интервала при подсчете лей-коформулы, полученные на основании статистического анализа. Из табл. 2.39 видно, что чем меньше клеток подсчитывается при исследовании мазка крови, тем чаще может быть получен разброс результатов по процентному содержанию различных видов клеток. Например, если при подсчете 100 клеток лейкоформулы выявлено 50% сегментоядерных нейтрофилов, то в 95% предел доверительности могут входить результаты по данному виду клеток от 39 до 61%, и результаты, полученные в этих пределах, не считаются ошибкой подсчета.

Приведенный в табл. 2.39 95% предел доверительности дает представление о вероятности выявления бластных клеток при подсчете лейкоформулы в мазках крови. Согласно данным C.L. Rumke (1995), заключение о наличии патологически измененных клеток среди лейкоцитов при дифференциации 100 клеток с достоверностью 95% можно только в том случае, если их количество составит 5% и более.

Таблица 2.39. 95% предел доверительности при подсчете лейкоформулы в мазке крови (Stiene-Martin А.Б. et al., 1998)

Тип клеток, %

Общее количество сосчитанных клеток

100

200

500

1000

0

0-4

0-2

0-1

0-1

1

0-6

0-4

0-3

0-2

2

0-8

0-6

0-4

1-4

3

0-9

1-7

1-5

2-5

4

1-10

1-8

2-7

2-6

5

1-12

2-10

3-8

3-7

6

2-13

3-11

4-9

4-8

7

2-14

3-12

4-10

5-9

8

3-16

4-13

5-11

6-10

9

4-17

5-14

6-12

7-11

10

4-18

6-16

7-13

8-13

15

8-24

10-21

11-19

12-18

20

12-30

14-27

16-24

17-23

25

16-35

19-32

21-30

22-28

30

21-40

23-37

26-35

27-33

35

25-46

28-43

30-40

32-39

40

30-51

33-48

35-45

36-44

45

35-56

38-53

40-50

41-49

50

39-61

42-58

45-55

46-54

Надежность метода микроскопического исследования контролируется еженедельно руководителем технологической операции производства гематологических исследований. Для этого используют контрольные мазки со сложной патологией, которые включают в серию обычных исследований. Предварительно контрольные мазки многократно просчитываются (не менее 20 раз) по 200 клеток квалифицированными специалистами (не менее пяти человек). Из полученных данных статистически рассчитывают Хср, S и V. Эти значения служат контрольными критериями для оценки правильности подсчета мазков. В дальнейшем результаты исследований контрольных мазков анализируют, обсуждают и вырабатывают меры по устранению обнаруженных ошибок. Подсчет лейкоцитарной формулы считается правильным, если результаты подсчета клеток входят в ранее рассчитанные контрольные пределы (Хср ±2S - 95% доверительный интервал) для каждого вида клеток. Контроль за воспроизводимостью и правильностью подсчета мазков крови может быть отражен на карте Леви-Дженнингса. В случае затруднений в интерпретации сотрудники лаборатории, работающие на технологической операции выполнения гематологических исследований, должны показывать руководителю все мазки со сложной патологией, такой как незрелые лейкоциты, тромбоцитопения или большие изменения лейкоцитов. Лаборатория должна иметь перечень патологических отклонений, обнаруживаемых в мазке, на которые должен обращать внимание врач клинической лабораторной диагностики.

Контроль гематологических исследований, проводимый ежеквартально. Контроль гематологических исследований, проводимый ежеквартально, состоит из участия в федеральной системе внешней оценки качества и включает проведение исследований контрольного материала (стабилизированная кровь) с низкими, нормальными и высокими показателями периферической крови (гемоглобин, эритроциты, МСН, лейкоциты, тромбоциты).

2.4.2.4.7. Контроль качества исследований мочи

В исследовании мочи используют биохимические и морфологические методы. Для контроля за воспроизводимостью и правильностью результатов исследования мочи применяют различные контрольные материалы, близкие по составу к анализируемым образцам мочи пациентов, и контрольные мазки для контроля качества микроскопических исследований осадка мочи.

Для контроля качества используемых диагностических полосок готовят контрольный раствор № 3 согласно методике приготовления контрольных материалов, изложенной в приказе Минздрава СССР № 545 от 23 апреля 1985 г.

В мерную колбу вместимостью 500 мл с 200 мл дистиллированной воды добавляют 5 мл декстрозы (Глюкозы*) (5% раствор для внутривенных инъекций), 2 мл ацетона, 25 мл сливной человеческой сыворотки и 0,1 мл лизированной крови (к 0,1 мл цельной крови добавляют 0,1 мл дистиллированной воды). Тщательно перемешивают и доводят объем до метки изотоническим раствором натрия хлорида. Используя раствор HCl (0,1 моль/л), рН доводят до 6,0.

Оценка качества работы диагностических полосок проводится чисто ориентировочно. Если с помощью полоски удается обнаружить в контрольном растворе № 3 глюкозу, кетоновые тела, белок, гемоглобин, кислую реакцию мочи, то работа полосок признается качественной. Контроль качества работы диагностических полосок проводят ежедневно.

Если количественное определение глюкозы, белка, мочевины, креатинина, электролитов (калий, натрий, кальций) в моче проводится на биохимическом анализаторе, то контроль качества определения этих параметров осуществляется согласно требованиям к контролю качества биохимических анализов (см. ниже «Контроль качества биохимических и иммуноферментных исследований») с использованием контрольных материалов промышленного изготовления.

Контрольные препараты для микроскопии осадков мочи должны содержать встречающиеся в моче соли, эпителиальные клетки, различные виды цилиндров, лейкоциты, эритроциты, бактерии, грибы, паразиты. Для осуществления контроля качества микроскопических исследований осадка мочи готовят контрольный раствор № 2 (приказ Минздрава СССР от 23 апреля 1985 г. № 545). В мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 12,2 мл КН2 РО4 (0,37 моль/л), 11,6 мл Na2 РО4 ■ 7Н2 О (0,19 моль/л), 5 мл сыворотки крови с нормальным содержанием белка, 1 г декстрозы (Глюкозы*), 0,5 мл ацетона, 0,1 мл гемолизата (к 0,1 мл цельной крови добавляют 0,1 мл дистиллированной воды) и доводят до метки дистиллированной водой.

Для получения осадка в контрольный раствор добавляют следующие компоненты, которые предварительно фиксируют: эритроциты, лейкоциты, непатогенные E. coli, клетки дрожжей, сперматозоиды, а также кристаллы цистина, трипельфосфатов, оксалата кальция. Каждый клеточный компонент, добавляемый для образования осадка, промывают в холодном изотоническом растворе натрия хлорида и смешивают с раствором водного формалина с изотоническим раствором натрия хлорида (10 мл формалина + 0,85 г NaCl и доводят дистиллированной водой до 100 мл). Фиксацию проводят в течение 12 ч.

В контрольный раствор добавляют от 1 до 5 мл фиксированного материала. Готовый контрольный раствор разливают по 1 мл и хранят при температуре -20 °С до 3 мес.

Из приготовленного контрольного материала путем центрифугирования получают осадок и готовят препараты для микроскопического исследования. Препараты исследуются всеми специалистами лаборатории; на основании этих результатов получают средние значения для эритроцитов, лейкоцитов, E. coli, дрожжей, сперматозоидов, а также кристаллов цистина, трипельфосфатов, оксалата кальция. В дальнейшем ежедневно препараты, приготовленные из контрольного раствора № 2, исследуются специалистами лаборатории в общей серии исследований осадков мочи. Результаты исследований контрольного раствора регулярно анализируются и обсуждаются.

2.4.2.4.8. Контроль качества биохимических и иммуноферментных исследований

Контроль качества биохимических и иммуноферментных исследований включает контроль за воспроизводимостью и правильностью. Основные критерии оценки этих показателей приведены выше, а в данном разделе рассматриваются только некоторые приемы контроля качества.

В качестве контрольного материала для биохимических и иммуно-ферментных исследований лаборатории наиболее часто используют контрольные сыворотки. Лучше использовать контрольные материалы тех же фирм-изготовителей, что и наборы реактивов.

Для контроля качества иммуноферментного анализа используется контрольная сыворотка на основе человеческой сыворотки для оценки нормальных и патологических значений онкомаркеров, гормонов щитовидной железы, гонадотропинов.

Контроль качества может проводиться через разное количество проб (например, 100-200). Если контроль качества проводится через каждые 20 проб, это позволяет достичь хороших результатов и уменьшить количество образцов для отброса серии в случае нарушения контрольных критериев, однако приводит к дополнительным и значительным финансовым расходам на приобретение контрольного материала. Использование современных анализаторов позволяет снизить частоту контроля за правильностью и воспроизводимостью. Можно придерживаться тех же стандартов, однако по экономическим причинам лучше использовать более свободные критерии, соответствующие следующим правилам:

  • применять ту закрытую аналитическую систему, производитель которой допускает меньшую частоту контроля качества;

  • использовать контроль качества по меньшей мере на двух уровнях концентрации;

  • используя статистически значимую группу, следить за средней величиной всех тестов на данный аналит у пациентов или среднюю контроля качества после исключения результатов, выходящих за пределы ±3S;

  • придерживаться пяти правил Westgard.

Соблюдение западных правил контроля качества может привести к такому увеличению стоимости контроля, который отразится на росте стоимости прямых материальных расходов от 5 до 200%. Наиболее дорогостоящая схема: одно контрольное исследование и одна холостая проба на один анализ. Кроме того, соблюдение западных правил контроля качества требует значительных затрат времени на его проведение.

Расход контрольного материала обычно не очень высок, однако это зависит от частоты его употребления как на собственно контрольные пробы, подвергаемые анализу, так и на «мертвый» объем материала при его отборе из пробирки анализатором, на потери при использовании части содержимого из сосуда. Помимо этого, необходим некоторый резерв для заполнения автоматическим устройством требуемого объема контрольного материала. Например, при реальном употреблении 20 мкл «мертвый» объем составляет 50 мкл, потери - 20 мкл, резерв - 10 мкл, а общий расход контрольного материала достигает 100 мкл. Доля неэффективного употребления сокращается при повторном отборе из одной и той же пробирки или сосуда.

В зависимости от частоты контроля качества стоимость общего расхода контрольного материала умножают на коэффициент от 0,05 (минимальная потребность) до 1,00 (максимальная потребность).

ВКК исследований ферментов имеет свои особенности. Основная проблема, связанная с контролем качества исследований активности ферментов, - это допустимая ошибка результатов. Наиболее обоснованным для решения этой проблемы представляется определение величины допустимой аналитической вариации (Sан) как определенной доли биологической вариации (Sбиол), так как практически важна не абсолютная величина аналитической вариации, а ее соотношение с биологической вариацией (Collove E. et al., 1970). Установлено, что если Sан/Sбиол менее 0,4, то такая величина аналитической вариации является приемлемой. Более подробно влияние аналитической вариации на результаты исследования рассмотрено ниже.

Расход реактивов для контроля за правильностью отражается в расчете на один анализ в росте стоимости от 2,5 до 50%. Цены на специальные контрольные материалы могут различаться на порядок.

В то время как для рутинных анализов доля стоимости контрольных материалов на один анализ может составлять менее 1%, для редко выполняемых анализов общая стоимость прямых материальных затрат в расчете на один анализ может возрастать более чем на треть. В крайних же случаях, как, например, недорогое определение ревматоидного фактора при очень дорогом калибраторе, стоимость общих материальных затрат может возрастать в несколько раз. Именно поэтому разумно не пытаться экономить деньги на контрольных материалах. Для выполнения контроля качества надо стремиться использовать материалы очень хорошего или высшего качества для более строгого контроля.

Компетентный врач клинической лабораторной диагностики может работать очень надежно даже с набором реактивов низкого качества, если он применяет очень хорошие калибровочные и контрольные материалы. И наоборот, даже высококачественный набор реактивов не гарантирует удовлетворительные результаты, если используются ненадежные калибровочные и контрольные материалы.

Контроль качества при выполнении неотложных исследований имеет свои особенности. Особенности контроля качества в неотложной лабораторной диагностике зависят от типа анализатора, его готовности к работе в течение суток, особенности применяемых методов, от профессионального опыта специалистов экспресс-лаборатории. В неотложной лабораторной диагностике применяют следующие подходы к контролю качества:

  • более частое, чем при проведении плановых исследований, применение контрольных сывороток, лучше всего, при каждом определении, особенно в ночное время;

  • контрольные пробы, анализированные в плановом порядке, передают для повторного исследования в экспресс-лабораторию;

  • пробы, анализированные в ночное время, оставляют для проверки в плановой лаборатории;

  • методы исследования, применяемые в экспресс-лаборатории, по возможности должны быть идентичны используемым в плановой лаборатории.

2.4.2.4.9. Контроль качества коагулологических исследований

Для исследования свертывающей системы крови в лабораториях используют автоматические или полуавтоматические коагулометры. Программа контроля качества коагулологических исследований включает:

  • контроль температуры инкубатора;

  • построение карты контроля качества Леви-Дженнингса по результатам с контрольными плазмами;

  • статистическую обработку карты контроля качества (расчет среднеквадратичного отклонения, коэффициента вариации, общее число наблюдений).

В идеале ежедневный ВКК коагулологических исследований должен проводиться с использованием нормальной и патологической контрольной плазмы с удлиненным протромбиновым временем и АЧТВ. Однако стабильность калибровочной и контрольной плазмы после разведения при комнатной температуре составляет только 4 ч, а при замораживании - 24 ч. Именно поэтому для калибровки коагулометра и проведения контроля качества необходимо ежедневно разводить один флакон калибровочной и один флакон контрольной плазмы, а это очень дорого. Для того чтобы сократить расходы на проведение ВКК коагулологических исследований, контрольным материалом для этих целей может служить нормальная калибровочная плазма. В связи с тем что калибровка коагулометра для всех исследуемых показателей коагулолограммы проводится ежедневно, результаты калибровки отражаются на карте Леви-Дженнингса, которая ведется для каждого определяемого в лаборатории показателя отдельно. Анализ контрольной карты для каждого коагулологического показателя проводится с учетом пяти правил Westgard. В случае отклонений результатов исследований калибровочной плазмы за пределы критериев Westgard для решения вопроса об исключении результатов серии исследований проводят исследование контрольной плазмы с низким и нормальным содержанием исследуемого параметра (например, с удлиненным протромбиновым временем, АЧТВ или сниженным фибриногеном). По результатам исследования контрольной плазмы принимают решение об исключении или принятии результатов в серии исследований. Такой подход к ВКК коагулологических исследований позволяет значительно сократить расходы на выполнение этой операции.

Важное практическое значение в клинической лабораторной практике имеет стандартизация тромбопластина, который используется для определения протромбинового времени.

Определению протромбинового времени отводится ведущая роль в контроле за пероральной антикоагулянтной терапией. Если исследования протромбинового времени выполняются в различных лабораториях с различными тромбопластинами, то протромбиновое время может различаться, что затрудняет контроль за антикоагулянтной терапией. Именно поэтому достижение сравнимости результатов исследований с использованием различных тромбопластинов является важной задачей практической медицины. Разные тромбопластины различают по международному индексу чувствительности (International Sensitivity Index ISI), который прилагается в описании каждого набора реактивов. В 1983 г. ВОЗ и Международное общество тромбоза и гемостаза приняли в качестве референтного тромбопластина из мозга человека и установили, что ISI этого тромбопластина равен 1,0 (международный референтный препарат ВОЗ). Все другие коммерческие тромбопластины калибруются по нему, и для каждого определяется своя чувствительность (ISI). Для сравнения результатов исследования протромбинового времени у больных, получающих пероральную антикоагулянтную терапию, необходимо рассчитать INR (International Normalized Ratio). INR - международное нормализованное отношение (МНО).

image

INR - это попытка математически скорректировать разницу при использовании тромбопластина с различной чувствительностью, то есть привести результаты к данным, полученным с референтным тромбопластином (табл. 2.40).

Лабораториям рекомендуется работать с тромбопластином, имеющим ISI меньше 1,5. Кроличьи тромбопластины имеют ISI = 2,0-3,0. В США все лаборатории перешли на плацентарный человеческий тромбопластин с ISI= 1,0 (Mammen E.F., 1996).

Для удобства расчетов INR приводим шкалу, на которой представлена зависимость INR от ISI и PTR (табл. 2.41). На вертикальной шкале слева приведены величины PTR (отношение протромбинового времени пациента к протромбиновому времени контрольной плазмы), а на горизонтальной шкале вверху - значения ISI (для различных тромбопластинов). На пересечении линий этих двух параметров находится INR для данного пациента.

Таблица 2.40. Нормализация протромбинового времени при использовании четырех различных тромбопластинов по расчету международного нормализованного отношения
Тромбопластин Протромбиновое время, с Рассчитанные величины

№ п/п

ISI

пациент

контроль

PTR

INR

1

1,2

24

11

2,2

2,6

2

3,2

16

12

1,3

2,6

3

2,0

21

13

1,6

2,6

4

1,0

38

14,5

2,6

2,6

Таблица 2.41. Шкала для определения международного нормализованного отношения
image

image

2.4.2.5. Поверка средств измерений

При выполнении лабораторных анализов в лаборатории проводится большое количество измерений: объемно-весовые, оптические, температурные и др. Метрологическая поверка измерительной аппаратуры является обязательной частью ВКК, поскольку не только технические характеристики, но и состояние приборов влияют на качество результатов. Так, калибровочная кривая имеет наклон относительно оси абсцисс на 45° только в том случае, если полоса пропускания интерференционного светофильтра не превышает 8 нм или является еще меньше при использовании монохроматора. При применении светофильтра с широкими полосами пропускания калибровочная кривая будет отстоять от оси абсцисс на 30-25°, что, естественно, приведет к систематическому занижению результатов и снижению чувствительности метода (Титов В.Н., 1994).

Для того чтобы результаты исследований были достоверными, они должны быть выполнены в строгом соответствии с метрологическими правилами и нормами, а метрологическое обеспечение является необходимым условием высокого качества клинических лабораторных методов исследования. В соответствии с Федеральным законом от 26 июня 2008 г. № 102-ФЗ «Об обеспечении единства измерений», принятый Государственной думой 11 июня 2008 г., средства измерений (в том числе используемые в лабораториях) подлежат поверке.

Средства измерений, предназначенные для применения в сфере государственного регулирования обеспечения единства измерений, до ввода в эксплуатацию, а также после ремонта подлежат первичной поверке, а в процессе эксплуатации - периодической поверке. Применяющие средства измерений в сфере государственного регулирования обеспечения единства измерений юридические лица и индивидуальные предприниматели обязаны своевременно предоставлять эти средства измерений на поверку.

Поверка средств измерений - совокупность операций, выполняемых органами государственной метрологической службы или другими аккредитованными органами в целях определения и подтверждения соответствия средств измерений установленным техническим требованиям.

Главное отличие поверки от проверки - степень применимости каждого из терминов. Первое понятие может использоваться только в контексте метрологических измерений. Проверка - более емкий термин. Он может касаться технической, правовой, научной сфер.

Федеральным законом № 102-ФЗ «Об обеспечении единства измерений» (далее - закон № 102-ФЗ) регулируются отношения, возникающие при выполнении измерений, установлении и соблюдении требований к измерениям, единицам величин, эталонам единиц величин, стандартным образцам, средствам измерений; при применении стандартных образцов, средств измерений, методик (методов) измерений, а также при осуществлении деятельности по обеспечению единства измерений, предусмотренной законодательством РФ об обеспечении единства измерений, в том числе при выполнении работ и оказании услуг по обеспечению единства измерений

Согласно статье 2 закона № 102-ФЗ, существуют понятия «средство измерений» - техническое средство, предназначенное для измерений (пункт 21), и «технические системы и устройства с измерительными функциями» - технические системы и устройства, которые наряду с их основными функциями выполняют измерительные функции (пункт 23). Именно поэтому не каждое техническое средство, обладающее измерительными функциями, является средством измерения, и закон № 102-ФЗ не содержит указаний о необходимости признания каждого технического устройства с измерительными функциями средством измерения.

Если измерение не является основной функцией устройства, то данное устройство не является средством измерения, а подпадает под определение технических систем и устройств с измерительной функцией.

Требования к средствам измерений установлены в статье 9 закона № 102-ФЗ, согласно которой в сфере государственного регулирования обеспечения единства измерений к применению допускаются средства измерений утвержденного типа, прошедшие поверку в соответствии с положениями настоящего Федерального закона, а также обеспечивающие соблюдение установленных законодательством РФ об обеспечении единства измерений обязательных требований, включая обязательные метрологические требования к измерениям, обязательные метрологические и технические требования к средствам измерений, и установленных законодательством РФ о техническом регулировании обязательных требований. В состав обязательных требований к средствам измерений в необходимых случаях включаются также требования к их составным частям, программному обеспечению и условиям эксплуатации средств измерений. При применении средств измерений должны соблюдаться обязательные требования к условиям их эксплуатации.

Пунктом 3 статьи 9 закона № 102-ФЗ предусмотрено, что порядок отнесения технических средств к средствам измерений устанавливается федеральным органом исполнительной власти, осуществляющим функции по выработке государственной политики и нормативно-правовому регулированию в области обеспечения единства измерений.

Приказом Минпромторга РФ от 15 февраля 2010 г. № 122 (зарегистрирован в Минюсте РФ 22 марта 2010 г. № 16674) утвержден Административный регламент исполнения Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии государственной функции по отнесению технических средств к средствам измерений (далее - Регламент). Данным Регламентом установлена процедура отнесения технических средств к средствам измерений.

В соответствии с пунктом 4 указанного Регламента результатами исполнения государственной функции являются:

  1. принятие решения (в форме приказа) Федеральным агентством об отнесении технического средства к средствам измерений либо заключение об отсутствии оснований для отнесения его к средствам измерений;

  2. размещение результатов исполнения государственной функции по отнесению технических средств к средствам измерений в соответствующей информационной базе данных Федерального агентства.

По результатам проведенной экспертизы Федеральным агентством в обязательном порядке должны быть подготовлены приказ об отнесении технического средства к средствам измерений либо заключение об отсутствии оснований для отнесения его к средствам измерений, которые размещаются на интернет-сайте Федерального агентства.

В соответствии с пунктом 16 Административного регламента по отнесению технических средств к средствам измерений, предметом экспертизы по отнесению технического средства к средству измерений является комплект документов, включающий:

  • описание технического средства и эксплуатационную документацию;

  • описание области применения, конкретного назначения и способа использования средства;

  • пояснительную записку с изложением причин возникновения необходимости рассмотрения вопроса об отнесении технического средства к средствам измерений.

Любой лабораторный анализатор предназначен для автоматизации лабораторных исследований. Он выполняет целый ряд функций: внесение в измерительную кювету анализатора крови (сыворотки), мочи или другого биологического материала, различных реактивов, их перемешивание, инкубацию и затем определение (измерение) светового сигнала. Именно поэтому лабораторный анализатор - это не средство измерения, а техническое устройство с измерительными функциями, и поверке оно не подлежит.

Теоретически возможно проведение поверки лабораторных анализаторов, однако для каждого типа лабораторных анализаторов (гематологических, биохимических, иммунохимических и др.) необходимо было бы иметь эталонный образец с характеристиками в световых или других единицах. Эталонный образец должен показывать одинаковые значения на всех анализаторах определенного типа, например, на иммунохимических анализаторах разных фирм-производителей. Такого эталона нет, поэтому даже в тех странах, где производятся современные лабораторные анализаторы (США, Германия и Япония), процедура метрологической поверки лабораторных анализаторов отсутствует.

В приложении 2 к приказу Минздравсоцразвития России от 25 августа 2012 № 89н «Порядок проведения испытаний в целях утверждения типа средств измерений медицинских изделий, относящихся к средствам измерений в сфере государственного регулирования обеспечения единства измерений» четко определен перечень медицинских изделий, относящихся к средствам измерения (табл. 2.42)

Таблица 2.42. Перечень медицинских изделий, относящихся к средствам измерений в сфере государственного регулирования обеспечения единства измерений
Медицинские изделия Медицинские характеристики и величины, определяемые с использованием измерений Измеряемые величины (единицы)

1

Термометры медицинские

Температура тела человека

Температура (°C)

2

Весы медицинские

Масса тела человека

Масса (кг)

3

Ростомеры медицинские

Рост человека

Линейный размер (см)

4

Динамометры медицинские

Сила, развиваемая какой-либо группой мышц

Сила (даН)

5

Эргометры медицинские

Дозированная по мощности физическая нагрузка

Мощность механическая (Вт)

6

Тонометры медицинские

Значения систолического и диастолического артериального давления

Давление газа в воздушной манжете с регистрацией интенсивности микропульсаций давления (мм рт.ст.)

7

Медицинские изделия для исследований параметров внешнего дыхания (спирографы, пневмотахографы и др.)

Объем и скорость потока вдыхаемого (выдыхаемого) воздуха

Объем газа (мл). Скорость потока газа (л/с)

8

Медицинские изделия для исследований состава вдыхаемого и выдыхаемого воздуха (оксиметры, капнометры, алкометры)

Концентрации:

  • кислорода (оксиметрия);

  • углекислого газа (капнометрия);

  • паров этанола (алкометрия)

Процентное или количественное содержание кислорода, углекислого газа, паров этанола во вдыхаемом и/или выдыхаемом воздухе

9

Наборы пробных очковых линз

Отклонения характеристик зрительного аппарата (близорукость, дальнозоркость, косоглазие, астигматизм и др.)

Оптическая сила (дптр) и иные оптико-физические величины

10

Аудиометры медицинские

Характеристики слухового анализатора

Интенсивность тестовых тональных звуковых сигналов (дБ) различной частоты при воздушном и костном звукопроведении

11

Дозиметры клинические универсальные для лучевой терапии

Дозовые характеристики фотонного и электронного излучения при лучевой терапии

Поглощенная доза (Гр), мощность дозы (Гр/с), энергия (МэВ) излучения

12

Дозиметры рентгеновского излучения клинические

Дозовые характеристики излучения при рентгенодиагностических исследованиях

Поглощенная доза (Гр), мощность дозы (Гр/с), произведение поглощенной дозы на площадь пучка излучения (сГр х см2)

13

Дозиметры фотонного излучения для радиационного контроля на рабочих местах персонала

Дозовые характеристики фотонного излучения на рабочих местах персонала

Поглощенная доза (мкЗв), мощность дозы (мкЗв/ч) фотонного излучения

14

Радиометры клинические

Активность радиоактивных препаратов, применяемых для медико-биологических исследований, диагностики и лечения заболеваний

Радиоактивность у-излучающих радионуклидов (Бк, Ки)

15

Фотометры, спектрофотометры, фотоколориметры медицинские лабораторные

Концентрация веществ и активность ферментов в жидких биологических пробах

Оптическая плотность растворов исследуемых веществ (ед. ОП)

2.4.2.6. Внешняя оценка качества лабораторных исследований

ВОЗ определяет внешний контроль качества лабораторных исследований как систему объективной проверки результатов лабораторных исследований, осуществляемой внешней организацией. Для оценки качества лабораторных исследований внешняя организация высылает в лабораторию различные контрольные материалы (стабилизированную кровь, образцы мочи, контрольную сыворотку, плазму) с неизвестным содержанием аналитов в них. Лаборатория проводит исследование содержания аналитов в контрольном материале и отсылает результаты в Центр внешнего контроля качества, где эти результаты анализируются, статистически обрабатываются, сравниваются с данными других лабораторий. Обработанные статистически результаты исследований передаются в лабораторию - участницу внешнего контроля качества для анализа и принятия мер в случае выявления расхождений в результатах исследований с другими лабораториями. Эта проверка носит ретроспективный характер, и итоги сравнения результатов, полученных в определенный день в данной лаборатории, с результатами, полученными в других лабораториях, могут быть сообщены в первую лабораторию лишь по истечении некоторого времени. Вместе с тем участие в программе внешней оценки качества лабораторных исследований позволяет лаборатории-участнице оценить следующие аспекты своей деятельности:

  • качество аналитического исследования;

  • мастерство персонала в лаборатории-участнице;

  • внутрилабораторную воспроизводимость;

  • межлабораторную воспроизводимость;

  • корреляцию между калибровочной процедурой и аналитическими результатами;

  • корреляцию между аналитическими методами и аналитическими результатами;

  • корреляцию между коммерческими реактивами и аналитическими результатами;

  • корреляцию между аналитическими приборами и аналитическими результатами;

  • систематические отклонения результатов лаборатории от аттестованных значений контрольного материала.

Конечная цель внешней оценки качества - повышение качества результатов исследований и, следовательно, улучшение обслуживания пациентов.

На рис. 2.57 показано место внешней оценки качества (А) в непрерывном процессе совершенствования качества лабораторных исследований.

pic 0080
Рис. 2.57. Место внешнего контроля качества в концепции непрерывного повышения качества лабораторных исследований

Программа внешней оценки качества позволяет получить информацию о возможных проблемах качества в лаборатории. Соответствующим образом спланированная и внедренная в лаборатории система внутреннего контроля качества (В) позволяет выявить проблемы (Г), достичь лучшего понимания причин лабораторных ошибок (Д) и должна быть частью единого процесса непрерывного совершенствования качества, включающей и другие аспекты, в том числе обучение персонала лаборатории и правильное использование возможностей лаборатории клиницистами. Только после того как проблема нарушения качества осознана и приняты положительные меры к ее решению, улучшится уровень работы лаборатории (Е) и, следовательно, повысится качество оказания медицинской помощи (Ж). После этого должны проводиться регулярные внешние оценки качества в целях поддержания качества результатов исследований на высоком уровне.

Соблюдение всех условий контроля качества гарантирует точность анализов, несоблюдение этих правил приводит к неправильным результатам и не позволяет удовлетворить внешнюю оценку качества. Контроль качества аналитического процесса продолжает оставаться наиболее важным компонентом лабораторной деятельности, и, поскольку надежность и чувствительность лабораторной техники растет, должны быть предусмотрены более жесткие критерии оценки результатов, достигаемых в лабораторной практике.

В последние годы, наряду с участием в Федеральной системе внешней оценки качества лабораторных исследований, КДЛ получили возможность участвовать в международных программах ВОК.

2.4.2.7. Частные технологические процессы выполнения исследований

Технологический процесс выполнения лабораторных исследований для повышения производительности лабораторий и качества результатов исследований разбивается на ряд частных технологических процессов производства гематологических, биохимических, гормональных и других исследований. Выделение частных технологических процессов выполнения исследований позволяет лучше осуществлять контроль за их проведением, учитывать особенности и вырабатывать конкретные меры по улучшению качества результатов каждого такого процесса.

После того как специалисты лаборатории провели калибровку анализаторов, проконтролировали качество, они принимают решение о проведении исследований.

2.4.2.7.1. Роль и значение анализаторов при проведении исследований

Большинство лабораторных исследований выполняют на анализаторах, имеющих различное программное обеспечение. Стоимость анализатора во многом определена ценой его программного обеспечения. Программное обеспечение анализатора позволяет оператору работать в режиме конечной точки с учетом холостой пробы на реагенты и в режиме кинетического измерения при определении как активности ферментов, так и концентрации субстратов. Анализаторы в ряде случаев исключают контакт персонала с биологическим материалом на многих этапах его исследования. Они позволяют связать все аналитические системы лаборатории в единую сеть и подключить к общему компьютеру лечебного учреждения. Бланки с результатами исследования дают возможность клиницисту получить диагностическую информацию, поскольку в них указаны интервалы нормы для каждого теста с учетом пола и возраста. В бланке автоматически отмечены результаты, которые оказались вне предела нормальных значений. Автоматизированное выполнение контроля качества позволяет добиться высокой точности и воспроизводимости результатов на протяжении длительного времени. Современные анализаторы составляют карты контроля качества без участия оператора. Кроме того, с их помощью можно вести учет динамики параметров пациентов, находящихся в лечебном учреждении длительное время или страдающих хроническими заболеваниями. В таких случаях результаты каждого исследования могут быть легко сопоставлены с результатами исследований, выполненных ранее. Автоматизированное выполнение контроля качества крайне необходимо при длительных динамических исследованиях в целях оценки эффективности терапии пациентов, например, с хронической почечной недостаточностью, гепатитом, сахарным диабетом.

При использовании анализаторов могут быть автоматизированы следующие этапы технологического процесса выполнения анализов:

  • идентификация проб пациентов по штрихкоду;

  • дозировка объемов образцов и реагентов;

  • смешивание;

  • инкубация, преинкубация;

  • промывка многоразовых оптических кювет;

  • процедура калибровки;

  • проведение измерений согласно предварительно введенной программе, считывание результатов и их компьютерная обработка;

  • протоколирование исследований, выполненных у пациента, на одном бланке, распечатка результатов;

  • предварительная диагностическая оценка данных;

  • статистическая обработка данных контроля качества;

  • хранение собранной информации.

Идентификация проб по штрихкоду дает следующие преимущества:

  • выигрыш во времени при проведении исследований большого числа проб (более 100 пациентов в день);

  • исключение регистрации данных в лабораторных журналах;

  • объединение на одном бланке результатов анализов, выполненных на разных приборах;

  • улучшение условий производства, что особенно важно, если количество регистрируемой информации относительно велико.

Все современные анализаторы обеспечивают возможность двусторонней связи. Они воспринимают информацию, вводимую оператором, информируют оператора об ошибках, возникающих в работе отдельных блоков анализатора, о способах устранения возникших неисправностей и о техническом состояния прибора.

Анализаторы хранят в компьютере большой объем информации, который необходим в течение всего периода работы системы. Длительному хранению подлежат программы методов, объем реагентов и образцов, временные интервалы проведения реакции, температура инкубации, длины волн фотометрии, частота и периодичность измерения оптической плотности и расчет результатов, распечатка бланка, статистическая обработка контроля качества, методы настройки и/или тестирования системы. Во многих анализаторах имеется автономный блок питания, обеспечивающий работу анализатора при кратковременных отключениях питания, что особенно важно для работы компьютера. По окончании работы многие аналитические системы остаются включенными в течение суток и находятся постоянно в режиме ожидания. Встроенные холодильные установки обеспечивают длительное хранение реактивов непосредственно в анализаторе. Реактивы находятся в контейнерах с маркировкой, которая несет всю необходимую информацию о реактиве. Анализатор информирует оператора о количестве реактивов в сосудах. В ходе эксплуатации анализатора оператор имеет возможность использовать новую версию программного обеспечения. Это позволяет повысить производительность анализатора, использовать новые методы и приемы исследования.

Анализатор может быть связан в единую компьютерную сеть с другими приборами и системами лаборатории в целях сбора всей диагностической информации о пациенте в одном бланке. Он может быть также задействован в единой компьютерной сети медицинского учреждения, при этом информация может быть получена клиницистом без контакта с персоналом лаборатории. Это важно при создании компьютерной системы обоснования диагноза, когда объединение результатов разных методов исследования (гематологические, биохимические, функциональные, рентгенологические, радионуклидные) позволяет приблизиться к автоматизированному построению диагноза.

Анализаторы выдают непрерывный поток данных по мере того, как в порядке очереди тестируется каждый образец биоматериала. Большинство биохимических и гематологических исследований выполняют автоматические анализаторы, которые выдают числовые результаты. Встроенный интерфейс преобразует напряжение, измеренное инструментом, в цифровые значения, которые могут быть обработаны компьютером (аналого-цифровое преобразование). Результаты должны быть связаны с индивидуальными образцами биоматериала; если анализатор способен считывать штрихкод, то эта операция становится автоматической. Когда такой возможности нет, то специалисту лаборатории приходится вводить в компьютер список номеров образцов и загружать образцы в инструмент в том же порядке. Таким образом, осуществляется соответствие между номером образца и результатами, полученными для этого номера.

Использование анализаторов на технологическом процессе выполнения лабораторных исследований как ничто другое позволяет строго стандартизовать этот важнейший этап производства анализов, а наличие в анализаторах систем самоконтроля (контроль правильности запуска, калибровки, контроль качества и т.д.) обеспечивает качественное выполнение методик исследования.

2.4.2.7.2. Стандартизация ручных методов исследования

Ручные методы исследования должны быть строго стандартизованы и изложены в виде СОП для того, чтобы обеспечить высокое качество результатов анализов и иметь возможность сравнивать их при исследовании в динамике. Стандарты в клинической лабораторной диагностике - это требование, которое должно строго выполняться, так как доказано, что его невыполнение снижает уровень безопасности и качества. Примером могут служить СОП для врача клинической лабораторной диагностики, выполняющего подсчет лейкоцитарной формулы в мазке крови и исследование пунктата костного мозга.

2.4.2.7.2.1. Методика подсчета лейкоцитарной формулы в мазке крови

Готовят мазок из венозной крови, взятой с ЭДТА. При хранении пробы крови, взятой с ЭДТА, необходимо помнить, что в течение 4 ч после взятия крови лейкоциты сохраняют свою морфологию, но при более длительном хранении могут наступить изменения (в первую очередь, вакуолизация и кариорексис). Окраску мазков необходимо произвести в пределах 1 ч после их приготовления.

Правила приготовления мазка крови и критерии оценки его качества, а также порядок окраски мазков на аппарате «Гема-Тек 2000» описаны выше.

В дальнейшем, после получения окрашенного мазка и бланка результата исследования крови на гематологическом анализаторе, врач клинической лабораторной диагностики должен придерживаться следующей последовательности действий.

  1. Идентифицировать мазок крови (проверить соответствие паспортных данных пациента на бланке и мазке).

  2. Внимательно изучить сообщение автоанализатора относительно данного пациента (обязательно: WBC - лейкоциты; RBC - эритроциты; PLT - тромбоциты; Hb - гемоглобин; MCV - средний объем эритроцита; MCHC - средняя концентрация гемоглобина в эритроците; RDW - показатель распределения эритроцитов по объему) для сравнения с данными, полученными при изучении мазка. При подсчете форменных элементов в мазке обязательно нужно учитывать показатель гематокрита. При повышенном гематокрите количество лейкоцитов и тромбоцитов ложно снижается, при пониженном гематокрите - ложно увеличивается.

  3. Просмотреть мазок под малым увеличением микроскопа (контроль качества приготовления и окраски мазка):

    • проверить наличие фибриновых нитей в концевом крае (метелки) мазка, так как фибриновые нити могут обнаруживаться даже при приготовлении мазка из пробы крови, не имеющей видимых сгустков, и способны сгруппировать лейкоциты и склеить тромбоциты. Подсчет форменных элементов и дифференцировка лейкоцитов в мазках с наличием фибриновых нитей не производятся;

    • проверить боковые края мазка на избыток лейкоцитов: даже в прекрасно приготовленном мазке его края аккумулируют гранулоциты и моноциты, в очень тонких мазках большинство крупных клеток будут сдвинуты к их боковым краям, в центре расположено больше лимфоцитов. В правильно приготовленном мазке, пригодном для подсчета лейкоформулы, в краях мазка количество лейкоцитов в поле зрения должно в 2-4 раза превышать их количество в центре мазка;

    • проверить качество окраски: при хорошей окраске должна быть видна четкая разница между темно-фиолетовым ядром лейкоцитов и ярко-красно-оранжевыми эритроцитами;

    • оценить распределение эритроцитов и их форму, выбрать зону исследования мазка с иммерсией: эритроциты должны располагаться равномерно, отдельно друг от друга (хотя бы в самом тонком месте мазка), не должно быть раздавленных эритроцитов (погрешность приготовления мазка, не позволяющая оценить форму эритроцитов). Присутствие патологических глобулинов может способствовать образованию монетных столбиков, наличие антител к поверхностным антигенам эритроцитов (холодовые агглютинины) приводит к склеиванию и агглютинации эритроцитов; при обнаружении монетных столбиков и агглютинатов эритроцитов это должно быть отмечено в бланке результата. Легко определяется под малым увеличением наличие патологических форм эритроцитов (анизоцитоз, пойкилоцитоз, серповидность, мишеневидность и др.), что обязательно регистрируется в бланке. Ширина полосы мазка для исследования с иммерсией обычно составляет диаметр поля зрения под малым увеличением;

    • если мазок не соответствует перечисленным критериям, исследование не проводится. Необходимо указать лаборанту, готовившему мазок, на выявленные нарушения технологии и дать указания переделать мазок.

  4. Исследовать мазок с иммерсией, для чего:

    • равномерно нанести тонкий слой иммерсионного масла на область исследования по направлению к концу мазка;

    • сравнить количество тромбоцитов (лейкоцитов), полученное на гематологическом анализаторе, с их количеством в поле зрения микроскопа путем умножения на фактор пересчета вашего микроскопа.

  5. Подсчитать лейкоцитарную формулу:

    • Считают не менее 100 лейкоцитов. При подсчете большего количества результат будет более точным. Одновременно производят идентификацию и оценку морфологии лейкоцитов. Лейкоциты в области подсчета должны быть равномерно распределены. Подсчет производится по линии меандра (рис. 2.58). Применяют также продольный метод подсчета лейкоцитов в рядах или полосах от концевого края мазка к его началу. Лейкоцитарную формулу подсчитывают в тех областях мазка, где эритроциты расположены равномерно, отдельно друг от друга, допускается их небольшое перекрытие. Каждый обнаруженный лейкоцит должен быть классифицирован, включая поврежденные клетки, если их можно идентифицировать (довольно часто встречаются хрупкие эозинофилы). Пропускание клеток не допускается, в случае обнаружения каких-то непонятных клеток они должны быть классифицированы как неидентифицированные клетки.

      pic 0081
      Рис. 2.58. Исследование мазка крови (схема)
    • Результат выражается в процентах и расценивается как относительный (сумма должна составить обязательно 100%).

    • Отмечают патологию в морфологии лейкоцитов (макроцитоз, полисегментарность, токсогенную зернистость, тельца Деле, вакуолизацию, патологические включения и др.). Если обнаружено склеивание лейкоцитов или присутствие эндотелиальных и эпителиальных клеток, это необходимо отметить в бланке результата.

    • Отмечают патологию в морфологии эритроцитов (обычно отмечается под малым увеличением микроскопа, но при иммерсии проверяется и уточняется, особенно наличие плазмодиев малярии, базофильная пунктация, тельца Жолли, кольца Кебота).

    • При обнаружении прочих клеток их идентифицируют, указывая в комментарии к результату; в состав клеток лейкоформулы они не входят (эндотелий, эпителий, нормобласты).

    • Подсчет ядросодержащих эритроцитов (нормобластов) ведут отдельно и выражают их количеством на 100 лейкоцитов. Нормобласты считаются автоанализатором как мелкие лейкоциты, поэтому если в мазке обнаружено более пяти нормобластов на 100 лейкоцитов, результат автоматического подсчета лейкоцитов корректируется по формуле:

      image

      где НБ - количество нормобластов на 100 лейкоцитов.

    • При обнаружении в мазке групп склеившихся тромбоцитов необходимо проверить пробу крови на наличие сгустков. В случае отсутствия сгустков, вероятно, склеивание произошло под действием ЭДТА. О присутствии групп тромбоцитов в мазке необходимо указать на бланке результата.

    • Строго должна соблюдаться общепринятая терминология (особенно наименования редко встречающихся клеток), для чего персонал должен быть обучен, а регламентирующими документами лаборатории должна быть определена стандартизация технологических операций и выражения результатов.

ICSH в 2015 г. разработал рекомендации по описанию морфологии клеток, встречающихся при онкогематологических заболеваниях (Palmer L. et al., 2015). Распознавание различных клеток крови и грамотное описание их морфологических особенностей является важным этапом лабораторной диагностики онкогематологических заболеваний. В целях стандартизации результатов исследований мазка крови необходимо придерживаться следующих рекомендаций при описании клеток крови.

Описание особенностей морфологии миелоидных клеток

  1. Описание особенностей зернистости и патологических включений в цитоплазме:

    • наличие палочек Ауэра. Палочки Ауэра - четко очерченные красные палочки или похожие на иглы включения, образующиеся из первичной азурофильной зернистости, встречаются в лейкозных миелобластах или атипичных промиелоцитах;

    • тельца Князькова-Деле - включения в нейтрофилах бледно- или серо-голубого цвета, серого цвета, единичные или множественные, которые обнаруживаются ближе к цитоплазматической мембране (на периферии) нейтрофилов. Наличие телец Князькова-Деле в случае их обнаружения в бланке результата исследования выражают следующим образом: если тельца Князькова-Деле обнаруживаются в 2-4% нейтрофилов, то их количество умеренное (++), если же более чем в 4% нейтрофилов - значительное количество (+++);

    • гипергранулярность нейтрофилов (токсическая зернистость) - грубая, пурпурного (фиолетового) цвета первичная (азурофильная) зернистость в нейтрофилах. Токсическая зернистость - это результат неправильного созревания гранул первичной (азурофильной) зернистости, что проявляется в виде нарушения окрашивания азурофильных гранул. Их появление обычно сопровождает инфекционно-воспалительных заболевания. Гипергранулярность, выявленная в 4-8% нейтрофилов, - умеренно выраженная токсическая зернистость (++), более чем в 8% нейтрофилов - резко выраженная (+++);

    • гипогранулярность нейтрофилов - снижение количества гранул нейтрофильной зернистости в клетках вплоть до полного отсутствия специфической зернистости, при этом цвет цитоплазмы зрелого нейтрофила может быть голубого или серо-голубого цвета. Такие нейтрофилы появляются обычно при миелопролиферативных заболеваниях. Гипогранулярность оценивают по следующей шкале: гипогранулярность присутствует в 4-8% нейтрофилах - умеренно выраженная (++),более чем в 8% нейтрофилов - резко выраженная (+++);

    • вакуолизация цитоплазмы нейтрофилов. Цитоплазма может выглядеть в виде мелких проколов от булавки, реже образуются довольно крупные вакуоли. Основная причина появления вакуолизации нейтрофилов - это следствие выполнения основной функции нейтрофилов - фагоцитоза микроорганизмов и продуктов распада. Если вакуолизация присутствует в 4-8% нейтрофилах - это умеренно выраженная вакуолизация (++), более чем в 8% - резко выраженная вакуолизация (+++).

      1. Нарушение сегментации нейтрофилов может проявляться гипер- и гипосегментацией нейтрофилов; в норме число сегментов в ядре зрелых нейтрофилов колеблется от двух до пяти, наиболее часто встречаются формы с тремя и четырьмя сегментами:

    • гиперсегментация - появление в крови нейтрофилов в любом количестве с числом сегментов в ядре более или более 3% нейтрофилов имеет пять сегментов (при исследовании 100 нейтрофилов). Выделяют наследственную и приобретенную формы гиперсегментации нейтрофилов, наследственная форма передается аутосомно-доминантно, функция нейтрофилов при этом не нарушена. Приобретенная форма наблюдается при лечении цитостатиками и преднизолоном, а также характерна для больных мегалобластной анемией. Наличие гиперсегментированных нейтрофилов в случае их обнаружения отмечается в бланке результата исследования;

    • гипосегментация нейтрофилов - нарушение нормального формирования ядра (отсутствие сегментации) в ходе конечного этапа дифференцировки нейтрофилов. Гипосегментация нейтрофилов - морфологический признак наличия у пациента наследственной аномалии Пельгера-Хьюта. В крови носителей (гетерозигот) аномалии определяются характерные нейтрофилы с ядром в виде пенсне, гири, палочки, число сегментов не превышает двух. У гомозигот ядра такие же по форме, как в миелоцитах, - круглые; хроматин в ядрах имеет грубоглыбчатую, пикнотическую структуру, цитоплазма в нейтрофилах обычная, свойственная зрелым клеткам. Пельгеризация, или псевдопельгеровская аномалия, может наблюдаться при миелопролиферативных и инфекционных заболеваниях, приеме некоторых лекарственных препаратов (сульфаниламидов). Гипосегментированные нейтрофилы подсчитывают как зрелые клетки, а их морфологические особенности отмечают в виде комментария в бланке результата исследования крови.

Патологические клетки миелоидного ряда. К патологическим клеткам миелоидного ряда относятся миелобласты, атипичные промиелоциты, монобласты и аномальные/атипичные (с признаками атипии) моноциты:

  • миелобласты: строение хроматина нежно-петлистое, мелкосетчатое, наблюдаются равномерный калибр и окраска нитей хроматина, «сетка капронового чулка»; характерно высокое ядерно-цитоплазматическое отношение; цитоплазма базофильная. При исследовании мазка крови необходимо описать морфологические особенности миелобластов в виде комментария в бланке результата исследования;

  • атипичные промиелоциты: клетки часто крупных размеров, ядра варьируют по форме и размеру, часто лопастные, двудольчатые, нередко почкообразной формы. Цитоплазма бластов содержит крупную розово-пурпурную зернистость, часто встречаются палочки Ауэра, как единичные, так и в большом количестве в виде вязанок и пучков. В нетипичных случаях зернистость не выявляется, видны только единичные гранулы или они отсутствуют вовсе. Атипичные промиелоциты необходимо считать эквивалентом миелобластов при подсчете лейкоцитарной формулы и очень важно описать их морфологические особенности в виде комментария в бланке результата исследования;

  • монобласты обычно крупнее миелобластов, их размер 20-30 мкм, ядро овальной или округлой формы, с нежно-сетчатым строением хроматина и одной или двумя нуклеолами; цвет цитоплазмы базофильный, гранулы обычно отсутствуют в цитоплазме. Монобласты необходимо относить к бластным клеткам и описать их морфологические особенности в виде комментария в бланке результата исследования;

  • аномальные/атипичные (с признаками атипии) моноциты - клетки с увеличенным ядерно-цитоплазматическим отношением, с более нежным (но зрелым) рисунком хроматина ядра, часто с обильной вакуолизацией цитоплазмы, более яркой азурофильной зернистостью и усиленной базофилией цитоплазмы. Такие моноциты появляются при стимуляции моноцитарного ростка костного мозга лекарственными препаратами, при инфекционно-воспалительных процессах и других реактивных состояниях, а также лейкозах. При исследовании мазка крови необходимо относить данные клетки к моноцитам и описать их морфологические особенности в виде комментария в бланке результата исследования.

Описание особенностей морфологии лимфоцитов

Для описания лимфоцитов при реактивных состояниях используют различные термины (например, «атипичные мононуклеары» - самый распространенный), общепринятым обозначением таких лимфоцитов служит термин «реактивные лимфоциты». В бланке результата подсчета лейкоцитарной формулы указывается число (%) лимфоцитов, а в дополнительной графе или рядом - доля реактивных лимфоцитов от общего числа лейкоцитов (%). Диагностически значимым является 10% и более реактивных лимфоцитов от всех лейкоцитов. Реактивные лимфоциты повышаются в крови при инфекционном мононуклеозе и многих других вирусных инфекциях, онкологических и аутоиммунных заболеваниях.

2.4.2.7.2.2. Методика исследования пунктата костного мозга

Для получения качественной и сравнимой информации о состоянии костного мозга у пациента большое значение имеет стандартизация методики исследования миелограммы. Последовательность действий специалистов лабораторной диагностики от момента взятия материала до выдачи результата и строгая последовательность отражения результатов исследования в бланке играют при этом важнейшую роль.

Материал забирает врач, выполняющий костно-мозговую пункцию. Для подсчета миелокариоцитов (цитоза) и мегакариоцитов часть пунктата помещают в одноразовую микроветту с ЭДТА К, предназначенную для взятия крови из пальца, и немедленно тщательно перемешивают для растворения антикоагулянта. Мазки на 10 предметных стеклах готовит лаборант из другой порции полученного материала непосредственно около больного; мазки маркируют и доставляют в лабораторию.

В дальнейшем работа врача клинической лабораторной диагностики проводится в следующей последовательности.

  1. Идентифицируют доставленный материал и мазки (проверяют соответствие паспортных данных пациента на бланке и мазке).

  2. Для получения достоверных результатов исследования миелограммы важное значение имеет оценка качества полученного костномозгового пунктата. При аспирации костного мозга всегда происходит насасывание крови - тем больше, чем больше получено аспирата. Обычно разведение пунктата периферической кровью не выше чем в 2,5 раза. Критериями большой степени разведения костного мозга периферической кровью служат следующие показатели:

    • бедность пунктата клеточными элементами;

    • отсутствие мегакариоцитов;

    • резкое увеличение лейкоэритробластического соотношения (при соотношении 20:1 и выше исследование пунктата не проводится);

    • снижение индекса созревания нейтрофилов до 0,4-0,2;

    • приближение процентного содержания сегментоядерных нейтрофилов и/или лимфоцитов к их числу в периферической крови.

Приведенные критерии необходимо учитывать при подсчете миелограммы. Правила приготовления мазков костного мозга и критерии оценки их качества аналогичны приведенным для мазков крови.

Дальнейшая работа проводится в лаборатории по следующим этапам.

Подсчет миелокариоцитов и мегакариоцитов. Подсчет миелокариоцитов производят в камере Горяева после разведения пунктата в 20 раз в 3-5% растворе уксусной кислоты или с помощью гематологического анализатора. Мегакариоциты подсчитывают в камере Фукса-Розенталя.

Окраска высушенных мазков. После высыхания на воздухе мазки окрашивают принятым в лаборатории методом. Для более четкого выявления особенностей микроструктуры ядер и зернистости цитоплазмы используют окраску по Лейшману.

Микроскопия препарата под малым увеличением. Мазки просматривают под малым увеличением (X100) с переводом при необходимости на микроскопию с иммерсией. Этим достигаются следующие цели:

  • поиск места для детального изучения клеток и подсчета миелограммы при большом увеличении (тонкая зона мазка с расположением эритроцитов в один слой отдельно друг от друга и большим количеством исследуемых клеток);

  • поиск и ориентировочная оценка количества мегакариоцитов в пунктате (в норме - 6-8-10 в препарате);

  • обнаружение метастазов злокачественных опухолей (комплексов полиморфных клеток).

Подсчет миелограммы с иммерсией. Под большим увеличением микроскопа (х1000) с иммерсией производят оценку клеточности (умеренная, скудная, незначительная, гиперклеточность) и дифференцированный подсчет 400-500 ядросодержащих клеток. В результаты подсчета миелограммы должны входить следующие виды клеток по росткам кроветворения в процентном выражении, а также костномозговые индексы.

Недифференцируемые властные клетки

Миелоидный росток: миелобласты, нейтрофильные промиелоциты, миелоциты, метамиелоциты, палочкоядерные и сегментоядерные нейтрофилы. Сумма всех нейтрофильных элементов. Индекс созревания нейтрофилов (отношение процентного содержания молодых элементов зернистого ряда - промиелоцитов, миелоцитов и метамиелоцитов к процентному содержанию зрелых гранулоцитов - палочкоядерных и сегментоядерных).

Эозинофилы: промиелоциты, миелоциты, метамиелоциты, палочкоядерные и сегментоядерные эозинофилы. Сумма всех эозинофилов.

Базофилы: промиелоциты, миелоциты, метамиелоциты, палочкоядерные и сегментоядерные базофилы. Сумма всех базофилов.

Моноцитарный росток: монобласты, промоноциты, моноциты. Сумма всех моноцитов.

Лимфоидный росток: лимфобласты, пролимфоциты, лимфоциты, лимфоидные клетки, плазматические клетки. Сумма всех клеток этого ростка.

Сумма всех клеток лейкоцитарного ряда

Эритроидный росток: эритробласты, пронормобласты, нормобласты базофильные, полихроматофильные и оксифильные. Сумма всех эритроидных элементов. Индекс созревания эритрокариоцитов (отношение суммы процентного содержания полихроматофильных и оксифильных нормобластов к общему процентному содержанию всех нормобластов).

Лейкоэритробластическое отношение - отношение суммы процентного содержания всех элементов лейкоцитарного ряда к сумме процентного содержания всех элементов эритроидного ряда.

Мегакариоцитарный росток: мегакариобласты, промегакариоциты, мегакариоциты.

Количество макрофагов (пигментофагов, липофагов и др.), тучных клеток на 100 ядросодержащих клеток.

Результаты подсчета клеток костного мозга составляют цифровую часть бланка миелограммы.

При микроскопическом исследовании мазка одновременно с подсчетом миелограммы изучают пунктат и микроструктуры клеток, оценка которых входит в описательную часть.

Описательная часть. В описательной части результата исследования последовательно описываются следующие характеристики пунктата костного мозга и содержащихся в нем клеток по росткам кроветворения.

Клеточность костномозгового пунктата (скудная, незначительная, умеренная, гиперклеточность), очаговость расположения клеток, клеточный состав (полиморфный или мономорфный); если мономорфный, то какими клетками в основном представлен (бластными, лимфоцитами, лимфоидными, плазматическими и др.) или имеется тотальная метаплазия такими-то клетками.

Миелоидный росток:

  • размеры ростка (в пределах нормы, сужен, редуцирован, представлен единичными клетками, незначительно гиперплазирован, гиперплазирован, раздражен и т.д.);

  • признаки дизгранулоцитопоэза (есть или нет);

  • особенности созревания (без особенностей созревания, с задержкой созревания на молодых формах, с асинхронным созреванием ядра и цитоплазмы, с преобладанием зрелых форм нейтрофилов);

  • наличие гигантских форм палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов, количество митозов на 100 клеток;

  • наличие морфологических и дегенеративных изменений гранулоцитов (анизоцитоз, токсогенная зернистость, вакуолизация, гиперсегментация, цитолиз, кариорексис, хроматинолиз, клазматоз, пикноз и др.).

Эритроидный росток:

  • размеры ростка (в пределах нормы, сужен, редуцирован, представлен единичными ядерными клетками, гиперплазирован, резко гиперплазирован и т.д.);

  • признаки дизэритропоэза (есть или нет);

  • особенности созревания клеточных элементов (с нормальным созреванием, с незначительной задержкой созревания, с умеренно выраженной задержкой созревания, с резкой задержкой созревания);

  • наличие двух- и многоядерных клеток (есть или нет);

  • тип кроветворения (нормобластический, мегалобластический, смешанный);

  • количество мегалобластов и количество митозов на 100 клеток.

Мегакариоцитарный росток:

  • количество мегакариоцитов при просмотре препаратов (не обнаружены, единичные, в небольшом количестве, умеренном количестве, значительном количестве, большом количестве);

  • признаки дизмегакариоцитопоэза (есть или нет);

  • цвет цитоплазмы и наличие в ней зернистости;

  • степень отшнуровки тромбоцитов и созревания клеток (умеренная, сниженная, высокая);

  • количество и характер свободнолежащих тромбоцитов (отсутствуют, единичные, небольшое количество, умеренное количество, значительное количество, большое количество, расположены группами или скоплениями).

Метастазы злокачественных опухолей - наличие комплексов полиморфных клеток (обнаружены или не обнаружены).

При обнаружении в костномозговом пунктате вида клеток, которые невозможно идентифицировать, необходимо произвести описание морфологии этих клеток по следующим признакам:

  • тип генерации (мезогенерации, микрогенерации, макрогенерации, смешанные типы - макро- и мезогенерации, микро- и мезогенерации и т.п.);

  • ядерно-цитоплазматический индекс (умеренный, высокий, низкий);

  • расположение ядра (центральное или эксцентричное);

  • форма ядра (округлое, овальное, бобовидное или другие формы);

  • полиморфизм ядер по величине, окраске, форме и др. (умеренный, выраженный);

  • структура хроматина (нежнопетлистая, тонкодисперсная, сглаженная, гомогенная, грубопетлистая, конденсированная глыбчатая и др.);

  • наличие гиперхромии (выраженная, умеренно выраженная);

  • среднее количество нуклеол, их контурированность (четкая или нечеткая), окраска (сероватая, серовато-голубая, синяя и др.);

  • контуры цитоплазмы (ровные или фестончатые);

  • окраска цитоплазмы (розовая, умеренно базофильная, резко базофильная, различной степени базофилии);

  • вакуолизация цитоплазмы (без вакуолизации, с различной степенью вакуолизации);

  • зернистость цитоплазмы, ее отсутствие или наличие, обильность (скудная, обильная, покрывающая ядро и т.п.), величина (мелкая, крупная, полиморфная по величине), окраска (преимущественно оксифильная или базофильная, полиморфная по окраске), наличие и количество палочек Ауэра и их расположение (не обнаружены, обнаружены единичные, в небольшом, значительном, большом количестве, пучками и т.д.);

  • митозы (не обнаружены или их количество на 100 клеток).

При увеличенном содержании в пунктате плазматических клеток следует указать их размеры (преимущественно крупные, средние или мелкие, полиморфные), расположение ядра (центральное, эксцентричное), структуру хроматина (мелко- или крупногранулированная, глыбчатая и т.п.), контуры цитоплазмы (ровные, фестончатые), окраску цитоплазмы (слабо-, умеренно или резко базофильная), наличие клеток со скудной или обильной зернистостью, пламенеющих клеток, многоядерных клеток, скоплений плазмоцитов.

Заключение. На основании полученных морфологических данных формулируют заключение об обнаруженных особенностях состава и морфологии клеток пунктата костного мозга по росткам кроветворения. В случае сомнительных результатов заключение дают в предположительной форме. На основании полученных несомненных морфологических данных ставят лабораторный диагноз. При наличии данных, свидетельствующих об остром лейкозе, необходимо указать его форму по франко-американо-британской (ФАБ) классификации (М1, М2, М3, М4, ЭО, М5, М6, М7, М0, L1, L2, L3). При остром миелобластном лейкозе отмечают тип бластов - I, II, III.

В случае необходимости дифференцировки вида гемобластоза проводят цитохимические исследования в необходимом объеме.

Бланк результата подписывают врач лаборатории, проводивший исследование, и заведующий КДЛ.

Исследованные мазки маркируют (номер препарата, Ф.И.О. пациента, номер истории болезни, отделение, дата исследования) и хранят в архиве.

При стандартизации методики исследования мазков крови, костного мозга и других ручных методов результаты исследований всегда можно сравнить в динамике для оценки эффективности лечения, динамики течения заболевания, определения прогноза.

В качестве примера приводим результаты исследования костного мозга у пациентки, поступившей на стационарное лечение с диагнозом «анемия», которые получил лечащий врач при исследовании костного мозга по изложенной выше методике (табл. 2.43).

Таблица 2.43. Результаты исследования пунктата костного мозга
pic 0083

pic 0084

Описание костномозгового пунктата. Пунктат костного мозга умеренной клеточности, полиморфный.

Миелоидныйросток сужен (44,6%), с задержкой созревания на молодых формах, признаками дизгранулоцитопоэза: наличием гигантских форм зрелых нейтрофилов, пельгеризацией, вакуолизацией ядра и цитоплазмы. Отмечается увеличение эозинофилов и базофилов разной степени зрелости. Митозы - 1 на 100 клеток.

Эритроидный росток гиперплазирован (36,6%), лейкоэритробластическое соотношение - 1:2, с умеренно выраженной задержкой созревания, значительным омоложением, выраженной мегалобластоидностью, с признаками дизэритропоэза: наличием двух- и трехъядерных форм, вакуолизацией ядра и цитоплазмы, базофильной пунктацией, тельцами Жолли. Митозы - 2 на 100 клеток.

Мегакариоцитарный росток увеличен (0,4х109/л). При просмотре препаратов обнаружены мегакариоциты в большом количестве, преимущественно микроформы с дистрофическими изменениями ядер, со сниженной степенью отшнуровки тромбоцитов, часто представленных гигантскими формами и синими пластинками. Свободнолежащие тромбоциты - в небольшом количестве.

Бластные клетки (18,8%) - макро- и мезогенерации, с умеренным ядерно-цитоплазматическим соотношением. Ядра округлые, с нежно-сетчатой структурой хроматина, содержащие по 2-3 четко контурированные нуклеолы голубовато-сероватого цвета. Встречаются двух- и трехъядерные бласты. Цитоплазма преимущественно с ровными контурами, различной степени базофилии, с вакуолизацией разной степени, содержит в большинстве клеток зернистость, полиморфную по обильности, величине и окраске. Встречаются беззернистые бласты. Палочки Ауэра не обнаружены. Митозы - 1 на 100 клеток.

Метастазы злокачественных опухолей не обнаружены.

Цитохимическое исследование пунктата костного мозга. Активность щелочной фосфатазы в нейтрофилах - 65 ЕД; 40% бластных клеток дают положительную реакцию на наличие миелопероксидазы. Сидеробласты - 73%, кольцевидные сидеробласты - 13%.

При исследовании периферической крови в этот же день: гемоглобин - 66 г/л, эритроциты - 1,71х1012/л, MCV - 103 фл, МСН - 35 пг; лейкоциты - 1,7х109/л, тромбоциты - 22,0х109/л, ретикулоциты - 7%; лейкоцитарная формула: бласты - 4%, миелоциты - 2%, палочкоядерные - 4%, сегментоядерные - 11%, эозинофилы - 5%, базофилы - 4%, лимфоциты - 67%, моноциты - 3%, плазматические клетки - 1 на 100 клеток; макроцитоз, базофильная пунктация эритроцитов.

Заключение. Учитывая данные клинического анализа крови (цитопения, бласты менее 5%) и морфологического исследования пунктата костного мозга (бласты - 18,8%, эритроцитарный росток - 36,6%, качественные изменения гранулоцитарного, эритроцитарного и мегакариоцитарного ростков), можно предположить у пациентки наличие миелодиспластического синдрома, согласно франко-американо-британской классификации относящегося к варианту РАИБ (рефрактерная анемия с избытком бластов) или РАИБт (рефрактерная анемия с избытком бластов, трансформирующаяся в острый лейкоз). Показано исследование костного мозга в динамике.

Положительная реакция на миелопероксидазу в 40% бластов дает основание отнести бластные клетки к миелоидному ростку кроветворения.

В настоящее время имеется целый ряд методических указаний, регламентирующих выполнение различных видов лабораторных исследований. Примерами таких документов являются методические указания «Паразитологическая диагностика малярии» МУК 3.2.987-00, «Серологические методы лабораторной диагностики паразитарных заболеваний» (утверждены 14 ноября 2002 г.). В данных методических указаниях методика выполнения исследований строго регламентирована и является стандартом.

2.4.2.7.3. Фактор времени при выполнении исследований

Всегда нужно помнить, что большое влияние на качество результатов анализов оказывает время, прошедшее с момента подготовки биоматериала к исследованиям до их непосредственного выполнения. Об этом часто забывают специалисты лаборатории, в связи с чем данный показатель должен четко контролироваться. Если биоматериал (например, кровь для исследования концентрации глюкозы) взят вовремя, подготовлен к анализу в оптимальные сроки, но 1,5-2,0 ч ждал своей очереди для выполнения, это может привести к значительному снижению концентрации глюкозы в исследуемой крови и тем самым исказить ее реальное содержание у пациента.

Среди целевых временных индикаторов в лаборатории можно использовать следующие:

  1. время от доставки проб в лаборатории до постановки их в анализаторы не должно превышать 45 мин для не менее 70% проб;

  2. время от доставки проб в лаборатории до постановки их в анализаторы не должно превышать 70 мин для 100% проб.

Сроки выполнения лабораторных тестов оказывают особенно значительное влияние и на качество оказания медицинской помощи пациентам, если они проводятся по неотложным или жизненным показаниям. Для неотложных исследований в настоящее время общепринято, что время от доставки биоматериала в лабораторию до получения результатов не должно превышать 50 мин, а для исследований по жизненным показаниям (гемоглобин, гематокрит, глюкоза, КОС, электролиты, лактат) - не более 5 мин. Лабораторная информация, полученная клиницистом в приведенные сроки, позволяет оказывать качественную медицинскую помощь пациентам при неотложных состояниях. Именно поэтому фактор времени необходимо постоянно учитывать и контролировать на этапе технологической операции выполнения анализов.

2.4.2.7.4. Индикаторы качества технологических операций подготовки анализаторов и реактивов к исследованиям, калибровки анализаторов, контроля качества и технологического процесса выполнения исследований

Определение индикаторов качества изложенных технологических операций и всего процесса выполнения лабораторных исследований имеет важнейшее значение для управления качеством на аналитической стадии единого технологического процесса производства анализов. В повседневной деятельности можно использовать следующие индикаторы:

  1. учет всех неплановых калибровок по лабораторным показателям с выяснением их причин;

  2. учет сбоев в работе лабораторного оборудования (анализаторов) и анализ их причин;

  3. критерии пяти контрольных правил Westgard;

  4. наличие регулярного метрологического контроля средств измерений;

  5. участие в национальной системе ВОК (результаты внешнего контроля качества);

  6. чувствительность и специфичность аналитического метода;

  7. время, прошедшее с момента подготовки биоматериала к исследованиям до непосредственного выполнения анализов.

Рабочая группа по лабораторным ошибкам и безопасности пациентов (Laboratory Errors and Patient Safety - LEPS) Международной федерации клинической химии и лабораторной медицины предлагает для оценки качества аналитического этапа тестирования в качестве индикаторов использовать следующие:

  1. процент дефектов, обнаруженных в системах ВОК: количество тестов с неприемлемыми отклонениями /общее количество тестов в схемах ВОК в год;

  2. процент дефектов, обнаруженных в системах ВОК, после проведенных мероприятий: количество тестов с неприемлемыми отклонениями, возникающими в результате ранее исправленной причины /общее количество неприемлемых характеристик в схемах ВОК в год;

  3. процент тестов с ненадлежащей эффективностью ВКК: количество тестов с аналитической вариацией (CV%) выше контрольных значений в год/общее количество тестов с оптимальной CV%, по крайней мере, в отношении глюкозы, креатинина, калия, С-реактивного белка, ТТГ, тропонина, раково-эмбрионального антигена, протромбинового времени, гемоглобина;

  4. процент тестов с задержкой результатов: количество тестов с задержкой результатов вследствие сбоев прибора в год/общее количество тестов;

  5. сигмометрия (кратковременная, допускает отклонения в пределах 1,5 сигм).

Таблица 2.44. Индикаторы качества аналитического этапа

Индикатор качества

Уровень выполнения

оптимально

желательно

минимально

неприемлемо

Аналитический этап

Количество дефектов, обнаруженных в ВОК, %

Количество дефектов, обнаруженных в системах ВОК после проведенных мероприятий, %

Количество тестов с ненадлежащей эффективностью ВКК, %

Количество тестов с задержкой результатов, %

<1,5

<0,07

Нет

Нет

Нет

3,1-5,0

>5,0

Анализ приведенных критериев необходимо использовать для управления качеством результатов лабораторных исследований.

Для количественной оценки качества аналитического этапа можно использовать, приведенные в табл. 2.44 индикаторы, разработанные рабочей группой.

2.5. ПОСТАНАЛИТИЧЕСКИЙ ЭТАП ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Постаналитический этап технологического процесса производства клинических лабораторных исследований состоит из двух частей - лабораторной и внелабораторной. Лабораторная часть включает следующие технологические операции:

  1. обработку результатов анализов и написания заключений:

    • определение референтных величин;

    • оценку биологической и аналитической вариации;

    • обнаружение критических величин результатов лабораторных исследований, требующее немедленных действий по оказанию медицинской помощи и сообщение их лечащему врачу;

    • форматирование бланков результатов лабораторных исследований;

    • составление заключений по комплексам результатов лабораторных исследований;

  2. передачу результатов исследований в отделения стационара и поликлиники;

  3. составление статистических отчетов о затратах времени, проведенных исследованиях, расходе реактивов, анализ результатов исследований по отделениям и т.д.;

  4. техническое обслуживание и уход за анализаторами и другим лабораторным оборудованием;

  5. сбор, хранение и удаление отходов.

Внелабораторная часть постаналитического этапа, которая начинается с момента доставки или сообщения результата анализа, находится в компетенции врача-клинициста. Главная задача врача-клинициста состоит в клинической интерпретации полученных результатов анализов и их правильном использовании для оказания пациенту качественной медицинской помощи.

Прежде чем отправить полученные на анализаторах или ручными методами результаты лабораторных анализов врачу-клиницисту, они должны быть оценены и обработаны врачом лаборатории.

2.5.1. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ ОБРАБОТКИ РЕЗУЛЬТАТОВ АНАЛИЗОВ И НАПИСАНИЯ ЗАКЛЮЧЕНИЙ

Результаты лабораторных исследований (информация) - это первичный, а в ряде случаев и единственный продукт единого лабораторного технологического процесса. Работа с информацией в лаборатории включает получение, сбор дополнительной информации, ее организацию, утверждение, движение, хранение, интегральную оценку, интерпретацию, предоставление в доступной форме и передачу ее лечащему врачу.

Прежде чем распечатать результаты исследований, врачи лаборатории проводят целый ряд оценочных проверок. Результаты исследований сравнивают с референтными величинами, специфическими для пола и возраста пациента, и с предыдущими результатами этого пациента, чтобы оценить степень отклонения; специальным образом помечают те значения, которые выходят за пределы нормы. Одни результаты проходят через установленные в лаборатории расчеты или алгоритмы, чтобы сделать определенное заключение по ним, другие - требуют необходимости выполнения других анализов. Если необходимо, проводят дополнительный контроль качества для конкретного метода исследования и при получении неудовлетворительных результатов исследование повторяют. Критические результаты исследований немедленно сообщают клиницисту. Только после этого врач лаборатории может распечатать бланки результатов анализов, подписать их и отправить лечащему врачу.

Основной задачей при оценке результатов клинических лабораторных исследований в КДЛ является установление с их помощью степени точности разграничения исследуемых и сопоставляемых состояний организма пациента от здоровых людей (здоровый - больной; реакция на лечение - отсутствие реакции на лечение; благоприятный прогноз - неблагоприятный прогноз и т.п.). Кроме того, при оценке результатов лабораторных исследований следует иметь в виду, что их значения отражают содержание искомых компонентов с некоторой степенью неопределенности, то есть с дисперсией этих значений, обусловленной несколькими видами вариации. Другими словами, при оценке результатов анализов необходимо оценить, значимы ли обнаруженные отклонения величин исследуемых параметров от нормальных показателей (референтных величин), имеют ли эти отклонения физиологический характер или они являются патологическими (то есть нет ли оснований объяснить их какими-либо физиологическими или иными, не связанными с болезнью причинами), насколько надежно эти отклонения или их сочетание позволяют подтвердить диагноз определенной болезни. Именно поэтому для выявления патологических отклонений (патологической вариации) они должны быть дифференцированы от колебаний результатов, вызванных другими причинами.

В оценке результатов анализов принимают участие как клиницисты, так и врачи клинической лабораторной диагностики. Для того чтобы понять, какова роль врача лаборатории в оценке результатов исследований, этот единый процесс при изложении условно разделен на две части:

  1. технический и биологический уровень оценки результатов лабораторных исследований, где ведущая роль принадлежит врачу клинической лабораторной диагностики;

  2. нозологический уровень оценки, где основную роль играет клиницист.

Рассмотрим все эти этапы оценки результатов лабораторных исследований. Однако, учитывая, что в настоящее время практически все врачи начинают оценку результатов анализов со сравнения их с референтными (нормальными) значениями, то первоначально следует дать представление о самом понятии «референтная величина».

2.5.1.1. Понятие референтной величины

Важнейшим этапом оценки результатов лабораторных исследований является установление отличия нормы от патологии. Это нетрудно сделать при явном отклонении показателей от нормы. Однако большинство результатов лабораторных анализов, встречающихся в клинической практике, непросто разделить на норму и патологию, поскольку эти результаты по природе своей не дихотомические и не имеют отчетливых разрывов или двух различных пиков, из которых один соответствовал бы нормальному результату, а другой - патологическому. Для этого имеется несколько причин.

Во-первых, разделение биологической популяции людей по многим лабораторным показателям на больных и здоровых невозможно даже с теоретической точки зрения. Заболевание может развиваться незаметно, проявляясь постепенным переходом от небольших отклонений показателя к высоким по мере нарастания дисфункции.

Во-вторых, здоровые и больные фактически принадлежат к двум различным популяциям, но когда эти две популяции перемешаны, распознать каждую из них в общей массе практически невозможно, поскольку у различных больных один и тот же показатель может принимать различные значения, перекрывая значения этого показателя у здоровых; кроме того, число больных в общей популяции невелико.

Для того чтобы трактовать данные лабораторных исследований, надо сравнивать их с нормальными величинами, поэтому необходимо определить, что такое нормальный показатель.

Нормальные показатели - это такие показатели, которые выявляют у здоровых людей. Однако в группах здоровых людей они могут иметь различные цифровые значения. Это обусловлено индивидуальными особенностями обмена веществ, гемопоэза, функционирования тех или иных органов. НЛП определяют путем выборочного обследования здоровой популяции людей (по крайней мере, никаких заболеваний у них не было диагностировано), например, специально отобранных призывников или студентов, группируемых по возрасту и полу. При проведении исследований некоторые факторы должны быть стандартизованы. Если на исследование берется кровь, то она должна быть взята натощак, способ взятия крови у всех должен быть одинаковым и, наконец, метод определения значений лабораторного показателя не должен отличаться. Математический анализ результатов, полученных при таких исследованиях, привел к выделению двух классов параметров биоматериалов здоровых людей. Одни из них подчиняются математическому закону гауссова распределения, другие - биноминальному распределению и поддаются математической обработке с помощью непараметрических методов.

Например, у всех здоровых людей определяют уровень глюкозы в крови и строят кривую распределения. Среднее значение концентрации глюкозы у обследованной группы здорового населения рассчитывается делением суммы всех результатов на их число:

image

где Хср - средняя всех результатов; n - число результатов; Хi. - величина отдельного результата; ∑Хi - сумма всех результатов.

Дисперсию результатов средней при распределении Гаусса можно выразить среднеквадратичным отклонением (SD), которое рассчитывается с помощью уравнения:

image

Как правило, распределение биологических объектов по степени выраженности одного из признаков описывается кривой Гаусса (рис. 2.59), а это значит, что в интервале, где величина признака колеблется в пределах M±2SD (3,9-6,38 ммоль/л), лежит более 95% биологических объектов, а почти у 5% лиц здоровой популяции показатель глюкозы выпадет из интервала M±2SD, характеризующего ее нормальную величину. Именно поэтому критерием диагностики сахарного диабета является уровень глюкозы в крови 7 ммоль/л и выше, а пациентов с результатами в пределах 6,38-6,90 ммоль/л относят к группе риска по данному заболеванию.

pic 0087
Рис. 2.59. Гауссово распределение

Таким образом, при использовании закона гауссова распределения НЛП - это средние показатели для здоровой популяции плюс-минус два стандартных отклонения (±2SD). Вместе с тем 5% всех здоровых людей могут иметь анормальные показатели уровня глюкозы в крови. Этой математической закономерности подчиняются результаты значительной части лабораторных показателей химического и клеточного состава крови.

Ко второй группе лабораторных показателей относятся те результаты, нормальные параметры которых крайне близки к нулевому порогу, и расчет среднеквадратичного отклонения для них может оказаться невозможным. Именно поэтому для таких показателей вместо наиболее часто встречающейся нормальной величины определяют и указывают пределы нормальных колебаний данного показателя. Можно просто взять все полученные результаты у контрольной группы и дать диапазон от самой малой до самой большой. Чаще всего отсекают 3% первых величин (снизу) и 3% последних величин (сверху).

Вместе с тем НЛП различных аналитов, которыми нередко пользуются в лабораторной диагностике, включают только общую биологическую вариацию для этих аналитов без учета отдельных факторов, что снижает диагностическую ценность лабораторных тестов. Именно поэтому на смену термину «нормальные лабораторные показатели» приходит концепция референтных интервалов или величин. Референтный интервал представляет собой ограниченный референтными пределами и статистически охарактеризованный диапазон значений результатов лабораторных исследований определенного аналита, полученных при обследовании одного индивидуума или группы лиц, отобранных по специальным критериям.

Референтные величины дают представление о диапазоне, в котором располагаются нормальные величины. Смысл этого введения состоит в том, что результаты лабораторного исследования сравнивают с референтными величинами, полученными в четко определенных условиях, с учетом отдельных факторов, влияющих на биологическую вариацию. Референтные величины в настоящее время установлены для ограниченного числа компонентов (порядка 150). Установление референтных интервалов колебаний для каждого лабораторного параметра имеет существенное значение для всей проблемы надежности лабораторной информации, так как сравнение с ними служит основанием для принятия диагностических и лечебных решений.

При оценке результатов лабораторных исследований необходимо помнить, что референтные величины являются статистическими данными 95% популяции, и отклонения за пределы диапазона необязательно свидетельствуют о наличии патологии.

В стандартном наборе биохимических исследований, применяемых в обычных лечебных учреждениях, имеется минимум 10-12 лабораторных тестов. Вероятность того что найдется человек, у которого все 12 показателей окажутся нормальными, невелика. Данные статистического анализа показывают, что при исследовании восьми показателей 25% здоровых лиц имеют один патологический результат, а когда назначается 20 тестов, то 55% здоровых будут иметь одно отклонение от нормы или более (Statland B.E. et al., 1977). Приведенные данные подтверждают мысль о том, что каждый лабораторный тест должен назначаться обдуманно, по строгим показаниям, а перечень тестов, которые могут использоваться в качестве скрининга, должен быть ограничен. В противном случае можно запутаться при обследовании большого контингента здоровых людей.

Таким образом, 5% здоровых людей имеют ненормальные лабораторные показатели, поэтому не все значения, выходящие за пределы нормы, следует расценивать как патологические. И наоборот, не всегда показатель, лежащий в интервале M±2SD, говорит о том, что он непатологический, так как диапазон многих параметров достаточно широк. К примеру, в норме гематокрит у мужчин колеблется от 42 до 52%. Массивная кровопотеря может привести к падению гематокрита от 52 до 42%. Но цифра 42% не вызовет тревоги у врачей, так как является нормальной, хотя для конкретного пациента такое снижение является значительным. Именно поэтому каждый врач должен быть знаком с понятием изменчивости нормы. Она обусловлена внутри- и межиндивидуальными особенностями.

Кроме того, в отношении ряда результатов лабораторных тестов, получаемых с использованием самых современных лабораторных технологий, в качестве референтных величин используется не 95% статистические данные популяции, а 99%. Например, при определении уровня высокочувствительных тропонинов в качестве референтной величины служит 99-й перцентиль - уровень аналита, при котором 99 из 100 лиц здоровой популяции будут иметь отрицательный результат тестирования (только один из 100 может иметь ложноположительный результат). Традиционные тесты на кардиальный тропонин из-за низкой чувствительности не улавливают в крови тропонины ниже 99-го перцентиля. В итоге кардиальные тропонины высокочувствительными тестами обнаруживаются почти у 100% здоровых людей, поэтому тропонин-отрицательных пациентов теперь нет (Apple F.S., 2009). Примерно аналогичная ситуация и в отношении ультрачувствительного (сверхчувствительного) СРБ. Длительное время считали, что клинически значимым является повышение уровня СРБ выше 5 мг/л, при значениях ниже этой величины констатировалось отсутствие системного воспалительного ответа. В дальнейшем было показано, что значения концентрации СРБ, превышающие 3 мг/л, являются неблагоприятным прогностическим признаком, связанным с риском сосудистых осложнений у практически здоровых людей и больных сердечно-сосудистыми заболеваниями. В связи с этим были разработаны ультрачувствительные тест-системы и наборы реактивов для определения уровня СРБ. Эти методы обладают примерно в 10 раз большей аналитической чувствительностью по сравнению с традиционными методами и позволяют регистрировать минимальные колебания концентрации СРБ в крови. В связи с этим в клиническую практику было введено понятие базовой концентрации СРБ - этот тот уровень СРБ, который стабильно выявляется у практически здоровых лиц, а также у пациентов при отсутствии острого воспалительного процесса или вне обострения заболевания. Для определения базовых уровней СРБ и используются ультрачувствительные тест-системы. Определение ультрачувствительного СРБ имеет важное практическое значение для определения риска развития тяжелых сердечно-сосудистых заболеваний и осложнений - ИМ и инсульта. При значениях СРБ ниже 1 мг/л риск развития сосудистых осложнений минимальный, при концентрации 1,1-1,9 мг/л - низкий, 2,0-2,9 мг/л - умеренный, выше 3 мг/л - высокий. Именно поэтому лучшими референтными величинами для пациента являются стабильные результаты лабораторных исследований самого больного, которые получают в течение ряда лет.

В настоящее время специалисты во всем мире склоняются к мнению, что необходимо снизить значимость использования референтных интервалов и уйти от их трактовки как некоего абсолютного критерия оценки лабораторного результата. Это ни в коей мере не снижает значимость и необходимость лабораторных исследований, однако ориентирует врача на более осторожное использование референтных интервалов при оценке результата, на необходимость аналитического подхода к трактовке результата с учетом возможности биологической вариации, данных клинической картины, других исследований.

Кроме того, необходимо напомнить о том, что, в отличие от других лабораторных тестов, концепция нормы не вполне применима для определения уровня холестерина и холестерина в составе различных фракций липопротеинов в сыворотке крови. Именно поэтому для оценки результатов исследования уровня холестерина в сыворотке крови используют оптимальные, или целевые (то есть те, которые желательно иметь или достичь в результате лечения), а не референтные значения.

2.5.1.2. Факторы, оказывающие влияние на результаты исследований

На результаты лабораторных исследований оказывает влияние целый комплекс факторов как на аналитическом, так и на пре- и постаналитическом этапе (рис. 2.60). Часть из них способны вызывать реальные отклонения лабораторных результатов от референтных значений вне связи с патологическими. К числу таких факторов, оказывающих влияние на качество лабораторных исследований, относятся следующие:

  1. физиологические закономерности (влияние расы, пола, возраста, типа сложения, характера и объема привычной активности, питания);

  2. влияние окружающей среды (климат, геомагнитные факторы влияния, время года и суток, состав воды и почвы в зоне обитания, социально-бытовая среда);

  3. воздействие профессиональных и бытовых токсичных средств (этанола, никотина, наркотиков) и ятрогенные влияния (диагностические и лечебные процедуры, лекарственные средства);

  4. условия взятия пробы (прием пищи, физическая нагрузка, положение тела, стресс во время взятия пробы и др.);

  5. методика взятия крови (выбор способа взятия, средств и посуды, консерванта и т.д.);

  6. неправильный (по времени) сбор материала;

  7. условия (температура, встряхивание, влияние света) и время транспортировки биоматериала на исследование в лабораторию;

  8. процессы подготовки доставленного в лабораторию материала для исследований;

  9. время от доставки материала в лабораторию до проведения анализа;

  10. факторы аналитической вариации (реактивы, калибраторы, контроли, оборудование, уровень профессиональной подготовки специалистов и др.);

  11. постаналитические факторы (форма выдачи результатов, своевременность получения результатов лечащим врачом, правильная оценка результатов).

pic 0088
Рис. 2.60. Факторы, влияющие на результаты лабораторных исследований
2.5.1.3. Виологическая вариация

Результаты лабораторных исследований подвержены влиянию биологической и аналитической вариации. Если аналитическая вариация зависит от условий выполнения теста, то величина биологической вариации - от целого комплекса факторов, которые необходимо учитывать при оценке результатов тестов. Общая биологическая вариация исследуемых веществ обусловлена внутрииндивидуальной вариацией, наблюдаемой у одного и того же человека в результате влияния биологических ритмов (разное время дня, года), и межиндивидуальной вариацией, вызванной как эндогенными, так и экзогенными факторами, главные из которых представлены на рис. 2.61.

pic 0089
Рис. 2.61. Факторы, влияющие на биологическую вариацию

Влияние части факторов биологической вариации (физиологические факторы, факторы среды, условия взятия пробы, токсичные и терапевтические факторы) на результаты лабораторных исследований были рассмотрены в описании преаналитической части (технологическая операция подготовки пациента к исследованиям) единого технологического процесса производства анализов. Коротко остановимся на других факторах.

Биологические ритмы гомеостаза. При оценке результатов лабораторных исследований необходимо учитывать и суточные ритмы колебаний некоторых показателей гомеостаза. Уровень некоторых гормонов в крови в послеобеденные часы снижается, в то время как число эозинофилов и уровень железа повышаются. Так, концентрация калия ниже после обеда по сравнению с утренними часами, тогда как концентрация кортизола возрастает в течение дня и снижается ночью. Ритм секреции кортизола может быть причиной недостоверных результатов глюкозотолерантного теста, проводимого во второй половине дня. В ряде случаев при назначении лабораторных исследований необходимо учитывать сезонные колебания уровня ряда показателей. Так, содержание Т3 на 20% ниже летом, чем зимой.

Достоверно значимые изменения ряда показателей могут быть вызваны колебаниями уровней гормонов при менструации. Так, концентрация альдостерона в плазме в 2 раза выше перед овуляцией, чем в фолликулиновой фазе, а содержание холестерина существенно снижается при овуляции. Наоборот, уровни фосфатов и железа снижаются при менструации. Изменения, обусловленные биологическими ритмами, приведены в табл. 2.45.

Таблица 2.45. Биологическая вариация: изменения, обусловленные биологическими ритмами
Тип биоритма Периодичность Примеры

Циркадный

1 раз в день

Гормоны (кортизол, СТГ)

Ультрадианный

>1 раза в день

Гормоны гипофиза и гипоталамуса

Инфрадианный

Более чем 1 день

Менструальный цикл (ФСГ, лютеинизирующий гормон)

Цирканнуальный (годичный)

Ежегодный, сезонный

Витамин D, холестерин, ЛДГ

Лечебные и диагностические процедуры. Взятие проб после массажа или пункции предстательной железы может вести к повышенным значениям простатоспецифического антигена и кислой фосфатазы. Внутримышечные инъекции с определенными веществами (бензодиазепинами, хлорпромазинами, лидокаином, фенобарбиталом) могут повышать активность КК. Контаминация лабораторных проб растворами для внутривенных инъекций является наиболее часто распространенным видом преаналитической интерференции. Именно поэтому взятие проб крови никогда не должно проводиться вблизи от места перфузии, и рекомендуется информировать лабораторию о виде назначенных веществ и времени, когда проводился отбор проб. Особое внимание должно уделяться взятию проб из внутривенных и внутриартериальных катетеров. Канюля катетера должна быть предварительно промыта изотоническим раствором натрия хлорида, а первые 5 мл крови должны быть удалены до фактического взятия пробы крови. Отбор проб из загрязненных гепарином катетеров для исследования системы гемостаза является особо критичным, поэтому для определения активированного частично тромбопластинового времени (АЧТВ) и тромбинового времени рекомендуется, чтобы количество крови, равное двойному объему катетера, было удалено до взятия пробы на анализ.

Беременность. Физиологически протекающая беременность может оказывать значительное влияние на результаты лабораторных исследований, что необходимо учитывать при их оценке (табл. 2.46).

Таблица 2.46. Изменения лабораторных показателей при беременности
pic 0090

pic 0091

В табл. 2.47 представлено влияние биологических факторов на результаты лабораторных исследований.

Таблица 2.47. Влияние биологических факторов на результаты лабораторных исследований
pic 0092

Влияние лекарственных препаратов. Некоторые лекарственные препараты могут оказывать существенное влияние на результаты исследований. Например, прием аспиринсодержащих препаратов при определении времени длительности кровотечения по Дуке должен быть отменен за 7-10 дней до исследования, в противном случае можно получить патологический результат. В случае если принимаемый пациентом лекарственный препарат может повлиять на результат анализа и при невозможности его отмены необходимо информировать лабораторию о принимаемых пациентом препаратах.

Влияние лекарственных средств бывает двух типов:

  • физиологическое влияние in vivo (в организме пациента) лекарственных средств и их метаболитов;

  • влияние in vitro (на химическую реакцию, используемую для определения показателя) благодаря химическим и физическим свойствам лекарственных средств (интерференция).

Нарушения при процедуре взятия крови. Ошибки при процедуре взятия крови состоят в том, что медицинские сестры после наложения жгута нередко просят пациента поработать кистью рук. Это грубая ошибка, которая может привести к искажению целого ряда биохимических показателей у больного. Переливание крови из шприца в пробирку под давлением поршня тоже является типичной ошибкой, результатом которой бывает гемолизированная проба.

Частой ошибкой является несоблюдение правильного соотношения крови и антикоагулянта в результате неполного заполнения кровью пробирки с антикоагулянтом. Эта ошибка является критичной при определении показателей, используемых для оценки свертывающей системы крови (например, протромбиновое время, АЧТВ). При взятии проб для общего анализа крови увеличение концентрации ЭДТА, обусловленное частичным заполнением пробирки, приводит к ложным результатам количественных (заниженные количества эритроцитов, лейкоцитов, величины гематокрита) и морфологических (вследствие изменения окраски) характеристик клеток крови.

Нередко грубейшей ошибкой является недостаточно тщательное перемешивание проб крови с антикоагулянтом. Следствия данного нарушения всегда необратимы. Пробы вследствие образования сгустка не подлежат исследованию. Однако, помимо невозможности исследования пробы, в пробирке могут образовываться микросгустки, которые не видны невооруженным глазом и при попытке выполнения анализа могут стать причиной выхода из строя автоанализатора и невозможности получить результаты анализа.

Влияние условий подготовки пациента к лабораторным исследованиям и взятия проб суммированы в табл. 2.48.

Таблица 2.48. Влияние условий подготовки пациента к лабораторным исследованиям и взятия проб
Источник вариации Влияние на лабораторный результат

Введение жидкости

Ложное увеличение соответствующих аналитов, разведение других аналитов

Сыворотка по сравнению с плазмой

Фибриноген: вызывает различия в уровне общего белка, образование сгустка, выход К+ из тромбоцитов; чрезвычайно высокий лейкоцитоз - увеличение K+ в результате выхода из клеток

Порядок взятия проб крови

Загрязнение последующих проб крови антикоагулянтами, консервантами или другими добавками

Неправильный антикоагулянт

ЭДТА: увеличение K+, снижение Ca2+, Mg2+, фосфора. Цитрат натрия: повышение Na+, анионного интервала.

Гепарин: ингибирует ПЦР.

Прочие: увеличение преобладающим компонентом антикоагулянта

Длительное время наложения жгута при венепункции

Концентрация аналита, ложное увеличение K+, аммиака, молочной кислоты

Рентгеноконтрастные вещества

Некоторые агенты гадолиния: ложное снижение Ca2+

Вакутейнеры и пробирки с сепараторами (гель)

Сепаратор из геля может поглощать из сыворотки небольшие молекулы, такие как наркотики, лекарственные препараты

Для взятия проб крови используются вакуумные пробирки, представляющие собой сложные устройства, стенки которых сделаны из стекла или пластика и могут содержать различные реагенты. Материал, из которого сделаны стенки пробирок, и реагенты оказывают влияние на формирование сгустка, взаимодействие компонентов крови с поверхностью пробирок, могут выделять вещества в пробу или адсорбировать из нее аналиты.

Резиновые крышки также являются важной составляющей вакуумных пробирок. Компоненты, из которых состоят резиновые крышки, способны вызывать загрязнение проб крови и приводить к ошибкам анализа. Многочисленные исследования продемонстрировали интерферирующее воздействие резиновых крышек, содержащих трис (2-бутоксиэтиловый) фосфат на результаты лекарственного мониторинга.

Для облегчения получения сыворотки в вакуумных пробирках используют разделительные гранулы и гели, которые при центрифугировании свернувшейся крови образуют барьер между сывороткой и сгустком крови. В силу своей химической и структурной сложности гели могут оказывать многогранное влияние как на качество проб крови, поступающих в КДЛ, и их подготовку к исследованию, так и на результаты лабораторных анализов вследствие способности вызывать интерференцию. Установлено смещение результатов исследования биохимических показателей, гормонов, онкомаркеров и инфекционных маркеров вследствие воздействия материалов стенок вакуумных пробирок и их наполнителей. Особенно часто такое влияние описано в отношении иммунохимических исследований. Ниже приведены причины, объясняющие механизмы влияния геля и добавок на результаты анализов, особенно иммунохимических:

  • поверхностно-активные вещества, которые используются для покрытия внутренней поверхности вакуумных пробирок, связываются с микрочастицами и/или антителами на поверхности частиц и тем самым вмешиваются в протекание иммунохимической реакции;

  • сополимеры полидиметилсилоксана, из которых состоит гель, могут присоединяться и индуцировать конформационные изменения в антителах, используемых в иммунохимической реакции;

  • поверхностно-активные вещества оказывают прямое воздействие на связывание авидина и биотина в радиоиммунном анализе;

  • химические компоненты поверхностно-активных веществ и геля могут проникать в исследуемую сыворотку и оказывать воздействие на связь аналитов с белками сыворотки;

  • показано значительное снижение концентрации различных лекарственных средств вследствие сорбции их гелем из сыворотки крови при ее хранении.

В табл. 2.49 суммированы основные интерферирующие влияния различных составляющих вакуумных систем на результаты лабораторных тестов.

Таблица 2.49. Интерференция различных компонентов вакуумных систем на качество лабораторных тестов
Компонент вакуумной системы Характер интерференции/вид исследования

Дезинфектанты

этиловый спирт

Гемолиз

повидон-йод

Повышение фосфора, мочевой кислоты, калия Гваяковая проба

Иглы

внутренний диаметр

Гемолиз

материал металла

Повышение хрома, железа, марганца, никеля

материал покрытия иглы

Иммунохимический анализ (снижение показате-

(смазка)

лей)

Катетеры

малый внутренний диаметр

Гемолиз

Вакуумные пробирки

материал пластика

Абсорбция лекарственных средств

проницаемый пластик

Снижение уровня рО2

поверхностно-активные

Иммунохимический анализ (снижение

вещества

показателей)

крышка (колпачок)

Взаимодействие с пробой

смазка крышки

Триглицериды, глицерин (повышение)

Газожидкостная хроматография

гель

Исследование металлов

Абсорбция лекарственных средств

активатор свертывания крови

Свертывание фибрина

Повышение лития, магния

Интерференция (повышение) тестостерона,

металлопротеиназ

Антикоагулянты

ЭДТА

Иммунохимический анализ (снижение показателей)

Железосвязывающая способность

Гепарин

Ошибки разведения

Снижение альбумина

Иммунохимический анализ (снижение показателей)

Железосвязывающая способность

Фтор

Ингибирование ферментов

Йодацетат

Электролиты, глюкоза, ЛДГ

Подготовка проб в КДЛ также может оказывать влияние на результаты лабораторных исследований:

  • задержка разделения форменных элементов и жидкой части крови влияет на уровень глюкозы, K+, ЛДГ, аммиака, фосфатов (должно осуществляться в течение 2 ч);

  • укороченное время центрифугирования может оставить клеточные элементы в сыворотке крови, что приведет к повышению уровня K+, ряда ферментов;

  • чрезмерно длительное время центрифугирования может вызвать гемолиз в результате повреждения мембран эритроцитов.

2.5.1.4. Влияние интерференции

Интерференция - это вмешательство постороннего фактора в результаты анализа. Интерференция может быть вызвана наличием в пробе биоматериала как эндогенного, так и экзогенного вещества. Среди эндогенных интерферирующих факторов основными являются:

  1. гемолиз, то есть разрушение эритроцитов с выходом в жидкую часть крови ряда внутриклеточных компонентов - гемоглобина, ЛДГ, калия, магния, которые изменяют истинные результаты определения содержания или активности таких компонентов в крови, как билирубин, липаза, КК, ЛДГ, калий, магний;

  2. липемия, извращающая результаты ряда колориметрических и нефелометрических методов исследования (особенно при исследовании фосфора, общего билирубина, мочевой кислоты, общего белка, электролитов);

  3. иктеричность;

  4. присутствие в крови эндогенных антител; например, парапротеинемия вызывает изменения результатов определения некоторыми методами фосфатов, мочевины, КК, ЛДГ, амилазы.

Среди экзогенных интерферирующих факторов наиболее частыми являются медикаменты или их метаболиты, которые способны сами интерферировать химически, то есть в процессе самого химического анализа в пробирке. Так, при определении катехоламинов флюориметрическим методом в моче интенсивную флюоресценцию могут вызывать принимаемые пациентом препараты тетрациклина; метаболит пропранолола 4-гидроксипропранолол интерферирует при определении билирубина методами Йендрассика-Графа и Эвелина-Меллоя.

Уловить интерференцию лекарственного средства - одна из задач врача клинической лабораторной диагностики. Важным шагом для решения этой проблемы должен быть контакт с клиницистом для выяснения характера принимаемых пациентом препаратов. В связи с огромным разнообразием лекарственных препаратов, предлагаемых современным фармацевтическим рынком, а также в силу возможных разнообразных путей метаболизма лекарственных средств с появлением метаболитов, интерферирующих даже более активно, чем исходный медикамент, клиницисту и врачу клинической лабораторной диагностики необходимо постоянно информировать друг друга о возможной интерференции и ее влиянии на результаты анализов.

Гемолиз. Причинами гемолиза могут быть слишком тонкая игла для венепункции, очень быстрые движения поршня шприца, неаккуратное (быстрое) переливание крови из одной емкости в другую, очень интенсивное перемешивание (встряхивание), длительное наложение жгута (более 1 мин). Гемолиз может оказывать существенное влияние на результаты анализа. Влияние гемолиза на уровень общего билирубина при определении различными методами в зависимости от концентрации гемоглобина в сыворотке представлено на рис. 2.62 (van der Woerd-de Lange J.A. et al., 1983), а на рис. 2.63 - данные N.A. Baumann из Mayo Clinic (2013) о влиянии гемолиза на уровень кардиального тропонина. Измерение индекса гемолиза (HI) на анализаторах выполняется автоматически. При количественном измерении индекса гемолиза результат отражает содержание свободного гемоглобина в сыворотке или плазме, выраженное в мг/дл. Обычно в анализаторах значение 10 HI соответствует концентрации гемоглобина 10 мг/дл. Индекс гемолиза выше 50 мг/дл относится к гемолизу, видимому глазом. Минимальное значение гемолиза, способное потенциально повлиять на результаты исследований у пациента (в частности, КК-МВ), составляет 10 мг/дл.

pic 0093
Рис. 2.62. Влияние гемолиза на уровень общего билирубина при определении различными методами в зависимости от концентрации гемоглобина в сыворотке: 1 - 2,5-хлорфенилдиазолин, детергент; 2 - метод прямого определения; 3 - метод Йендрассика-Графа; 4 - 2,5-хлорфенилдиазолин, детергент; 5 - 2,4-дихлоранилин; 6 - 2,5-хлорфенилдиазолин; 7 - нитрофенилдиазолин
pic 0094
Рис. 2.63. Влияние гемолиза на уровень тропонина при определении различными методами в зависимости от индекса гемолиза

Для учета влияния индекса гемолиза на результаты лабораторных тестов полезно оценивать его значения совместно с данными определения активности АСТ. Зависимость между индексом гемолиза и активностью АСТ приведена в табл. 2.50.

Таблица 2.50. Зависимость между индексом гемолиза и активностью аспартатаминотрансферазы
Активность A0T, МЕ/л Индекс гемолиза Действие

40-<100

50

Взять пробу повторно

100-<200

100

Взять пробу повторно

200-<300

200

Взять пробу повторно

>300

500

Взять пробу повторно

При назначении коагулологических тестов гемолизированные пробы в КДЛ обычно не исследуются. Возможность выполнения иммуно-химических тестов в КДЛ оценивают в соответствии с инструкциями к наборам реагентов. Нередко в них указывается лимит сывороточного гемоглобина, превышение уровня которого приводит к интерференции и искажению результатов анализов.

Липемия. Пробы сыворотки и плазмы иногда могут быть хилезными (мутными) за счет повышения уровня липопротеинов. В большинстве случаев мутность вызвана повышением уровня триглицеридов из-за повышения количества хиломикронов как за счет ЛПОНП, так и за счет ЛПНП. Опалесценцию, или мутность, липидемической плазмы/ сыворотки легко заметить невооруженным глазом. С другой стороны, определить мутность пробы можно путем измерения оптической плотности на фотометре при длине волны 660-700 нм. Степень влияния интерференции на результат каждого аналита можно определить количественным образом путем добавления определенного количества гиперлипидемической сыворотки в прозрачную пробу, анализируя затем отдельно концентрацию обеих проб. Зная, что на некоторые тесты оказывает влияние липидемическая сыворотка/плазма, триглицериды из пробы могут быть устранены с помощью ультрацентрифугирования или преципитирования, затем проба повторно исследуется после элиминации жиров.

Причинами неправильных результатов анализов мутных проб могут быть:

  • негомогенность плазмы и сыворотки (высокая концентрация липидов в верхнем слое, которая в результате вытеснения воды может привести к мнимо низкой концентрации электролитов и метаболитов);

  • вытеснение воды липидами до 10% объема (причина более высокой концентрации натрия и калия при определении на ионоселективных анализаторах);

  • интерференция за счет мутности (ведет к поглощению света на всех длинах волн при фотометрировании);

  • физико-химическая интерференция (повышенный уровень липопротеинов снижает доступность для антител, используемых в различных методиках исследования, искажает результаты электрофоретических и хроматографических методов).

Умеренная степень липидемии может оказать влияние на уровень общего билирубина и мочевой кислоты в исследуемой пробе, поэтому результаты этих аналитов при наличии липидемии следует оценивать с осторожностью. В случае умеренной липидемии в пробе при исследовании магния в КДЛ используют разведение пробы и затем интерпретируют полученный результат. При выраженной липидемии первоначально достоверными следует считать только результаты определения триглицеридов, общего холестерина и холестерина ЛПВП. В отношении других видов аналитов используют разведение пробы и затем интерпретируют полученный результат.

В каждом случае сведения о степени мутности проб должны быть отражены в бланке результата анализа.

Иктеричность (желтуха). Сыворотка крови легкой или умеренной степени иктеричности обычно не оказывает влияния на результаты анализов. Выраженная степень иктеричности сыворотки может сопровождаться снижением активности АЛТ, АСТ, ГГТП, уровня общего холестерина, креатинина, триглицеридов, и повышением уровня общего билирубина, магния. В таких случаях исследование триглицеридов, общего холестерина, магния и креатинина необходимо повторить и не использовать полученные данные. В отношении показателей АЛТ, АСТ, ГГТП, общего билирубина оценка должна быть осторожной, так как они могут быть подвержены изменениям вследствие иктеричности пробы.

Интерференции, вызванные присутствием эндогенных антител. Результаты гематологических, биохимических и иммуногематологических исследований могут быть искажены наличием эндогенных антител.

Повышенные титры агглютинина к эритроцитам при хранении или доставке проб на холоде приводят к их агглютинации и влияют на электронный подсчет клеток следующим образом:

  • количество эритроцитов снижается при нормальной концентрации гемоглобина;

  • значительно повышается СОЭ;

  • число лейкоцитов и тромбоцитов ложно повышено.

В КДЛ агглютинацию эритроцитов выявляют при исследовании мазка крови. Подсчет клеток повторяется после инкубации пробы при температуре 37 °С в течение 30 мин. Холодовые агглютинины могут вызывать интерференцию при определении группы крови.

Криоглобулины кристаллизуются в исследуемой пробе при комнатной температуре, в результате чего образуются частицы различной формы, которые могут имитировать лейкоциты и способствуют ложному повышению количества лейкоцитов при их подсчете на гематологическом анализаторе. Кроме того, повышенные концентрации криоглобулинов могут повлиять на подсчет количества эритроцитов, определение гемоглобина (феномен флокуляции) и подсчет тромбоцитов (псевдотромбоцитоз). Исследование мазка крови выявляет кристаллы флокуляции, окрашенные в синий цвет, в присутствии нормального количества лейкоцитов.

Холодовые агглютинины или другие активные антитела в присутствии ЭДТА (ЭДТА-зависимые антитела) могут вызвать ложное снижение количества тромбоцитов (псевдотромбоцитопению). Чем позже проводится подсчет количества тромбоцитов после взятия проб крови, тем более выраженной будет тромбоцитопения. В зависимости от размера и формы, степени агрегации тромбоциты могут быть подсчитаны как лейкоциты, что приводит к ложному увеличению числа лейкоцитов. Мазок крови позволяет выявить агрегаты тромбоцитов и повторить исследование или учесть влияние ЭДТА-зависимых антител на число тромбоцитов.

Наличие у пациента повышенного уровня каких-либо эндогенных антител (Ig) может сопровождаться образованием in vivo комплексов с ферментами (макроэнзимы) и рядом биологически активных пептидов. В результате этого происходит увеличение периода полураспада этих ферментов и повышение их активности в сыворотке крови. Этот феномен встречается обычно у пожилых пациентов и является показателем наличия хронических заболеваний. Наиболее часто в клинической практике врача встречаются следующие ситуации:

  • ложно завышенные значения активности КК-MB (макро-КК-МВ) при нормальных значениях активности общей КК; ее обнаруживают у 3-4% госпитализированных пациентов пожилого возраста, у женщин чаще, чем у мужчин. Этот тип КК может присутствовать в крови пациентов годами и не связан с каким-либо заболеванием. Наличие макроКК 1-го типа можно заподозрить без электрофоретического исследования при нормальных значениях активности общей КК в сыворотке, и на этом фоне выявляется повышенная активность КК-МВ (более 24 МЕ/л). МакроКК 1-го типа - это митохондриальная КК - олигомер митохондриальной КК; макроКК 2-го типа свидетельствует о серьезном повреждении клетки, наблюдается при тяжелых заболеваниях (ИМ, шоке, злокачественных опухолях, гепатите, циррозе печени, тяжелой сердечной недостаточности) и является прогностически неблагоприятным признаком;

  • ложно завышенные значения уровня тропонина (макротропонин). Макротропонин состоит из комплекса IgG и фрагмента тропонина;

  • ложно завышенные значения активности а-амилазы (макроамилаза) в сыворотке крови при отсутствии повышения ее активности в моче. Макроамилаза представляет собой S-тип (слюнная) а-амилазы, связанной с Ig: наличие макроамилазы можно выявить путем дополнительного исследования панкреатической а-амилазы или липазы; их нормальные значения будут указывать на наличие в крови макроамилазы;

  • ложно завышенные значения уровня пролактина (макропролактинемия - комплекс «пролактин-IgG»). До 25% проб содержат макропролактин, то есть каждому четвертому пациенту с повышенным уровнем пролактина может быть поставлен неправильный диагноз. Наличие макропролактина определяют путем предварительной обработки пробы сыворотки 25% раствором полиэтиленгликоля и последующим анализом супернатанта на пролактин. Расхождение показателей пролактина в обработанной и нативной пробах указывает на присутствие макропролактина. Наличие в исследуемой пробе парапротеинов ведет к увеличению мутности сыворотки крови и росту очевидных причин увеличения абсорбции света в большом диапазоне длин волны. В результате этого могут возникать как ложно завышенные результаты, так и ложно заниженные по некоторым параметрам, таким как билирубин, креатинин, фосфор, сидеремия, мочевина, мочевая кислота. Повышение концентрации общего белка при парапротеинемии может сопровождаться псевдогипонатриемией, а патологические Ig могут вмешиваться в реакции иммунохимических тестов.

Циркулирующие в крови пациента аутоантитела, особенно к гормонам щитовидной железы, могут стать важным фактором искажения результатов определения гормонов Т3 и Т4.

Гетерофильные антитела являются антителами, которые могут взаимодействовать с Ig различных видов животных. Если в иммунохимических тестах используются реактивы, содержащие, например, мышиные антитела, результаты тестов могут быть искажены.

Ревматоидный фактор представляет собой группу аутоантител класса IgM к фрагментам IgG. Эти антитела могут вызывать интерференцию в иммунохимических тестах по аналогии с гетерофильными антителами и вызывать изменения в результатах анализов.

Кроме того, величина биологической вариации зависит от той физиологической функции, которую выполняет в организме анализируемое вещество. Наименьшая биологическая вариация обнаружена у веществ с наилучшей регуляцией их уровня в организме человека и наиболее важных для стабильности состава и объема внеклеточных жидкостей и крови. К ним относятся натрий, хлориды, кальций, магний, альбумин, общий белок, углекислый газ. Вариация средней степени характерна для веществ, участвующих в процессах анаболизма: глюкозы, холестерина, фосфора. Наибольшая биологическая вариация обнаружена для компонентов сыворотки, являющихся конечными продуктами катаболизма (мочевой кислоты, мочевины, креатинина), и для выделяемых из тканей веществ и ферментов (ЛДГ, АСТ, АЛТ и др.).

2.5.1.5. Аналитическая вариация

Аналитическая вариация, зависящая от применяемых методов и условий их выполнения, расширяет пределы НЛП и этим ограничивает возможность лабораторных тестов различать здоровье и болезнь. Именно поэтому специалисты лаборатории должны стремиться уменьшить аналитическую вариацию, но, как правило, это связано с дополнительными финансовыми затратами. В связи с этим для лаборатории существенным является вопрос о том, как и до каких пределов целесообразно уменьшать аналитическую погрешность и на какие критерии следует при этом ориентироваться. Во всех случаях при расчете допустимых пределов погрешности метода, который является индивидуальным для каждого вещества, устанавливают необходимую точность и допустимые пределы ошибок. В табл. 2.51 приведены максимально допустимые пределы аналитической вариации (разброса) анализируемых компонентов.

Таблица 2.51. Максимально допустимые пределы аналитической вариации (разброса) для различных компонентов
Анализируемый компонент V, %

Гематология

Гемоглобин

2

Гематокрит

3

Лейкоциты

10

Эритроциты

10

Клиническая биохимия

Адреналин

7

АЛТ

7

Альбумин

3

а-Амилаза

10

Аммиак

5

АСТ

7

Белок общий

3

Белковые фракции

8

Билирубин

10

Глюкоза

5

Глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа

8

γ-Глутамилтранспептидаза

10

Железо

5

Ig

7

Калий

2

Кальций

2

Кортизол

7

Креатинин

5

КК

7

ЛДГ

7

Лейцинаминопептидаза

10

Липиды общие

5

Магний

2

Медь

5

Мочевая кислота

7

Мочевина

7

Натрий

2

Норадреналин

7

Триглицериды

7

Фосфор

5

Фосфатаза щелочная

7

Хлор

3

Холинэстераза

7

Холестерин

7

Приведенные в табл. 2.51 значения допустимой аналитической вариации (V, %) рассматриваются как средние ориентировочные величины. Данные вариации, приведенные для лейкоцитов и эритроцитов, относятся к подсчету клеточных элементов ручными методами в камере Горяева, при использовании гематологических анализаторов коэффициент аналитической вариации для лейкоцитов составляет 1-3%, для эритроцитов - 1-2% и тромбоцитов - 2-4% (Elevitch F.R. et al., 1987; Koepke J.A., 1993).

Таким образом, при оценке результатов лабораторных исследований врачу лаборатории необходимо учитывать все многообразие факторов, влияющих на результаты, знать аналитическую надежность лабораторных методов исследования, то есть быть уверенным в точности получаемой с их помощью информации о соответствующих компонентах биоматериала. Знание степени вариабельности результатов исследований важно и для сопоставления их с биологической вариабельностью, а также для сопоставления с клинически значимыми сдвигами лабораторных показателей. Эти критерии определяются при разработке методов, указываются в их описании, и в случае необходимости врач лаборатории должен информировать об этом клинициста.

2.5.1.6. Инструменты валидации результатов лабораторных исследований

Как правило, валидация результатов в КДЛ занимает определенное, а в отдельных случаях значительное количество времени. Следует отметить, что КДЛ имеют в своем распоряжении несколько инструментов для обнаружения влияния ряда факторов биологической вариации, связанных с преаналитическим этапом. К ним относятся:

  1. «флаги» ошибочных результатов, которые автоматически выводят на экран и бланк результата современные анализаторы; например, концентрации аналита, которые не имеют физиологического смысла, такие как уровень калия в сыворотке 20 ммоль/л и общего кальция 0,25 моль/л, что является типичной закономерностью, наблюдаемой, когда кровь взята в пробирку с ЭДТА, а результат относится к исследованию сыворотки;

  2. «флаги» критического результата указывают на результаты, находящиеся в опасном для жизни пациента диапазоне, таком как значения уровня калия в сыворотке 6,5 ммоль/л или концентрации глюкозы в крови 1,66 ммоль/л, что нередко обусловлено значительной задержкой доставки пробы или превышении времени выполнения исследований;

  3. противоречия в результатах анализов:

    • уровень прямого билирубина больше уровня общего билирубина в крови;

    • уровень альбумина больше уровня общего белка;

    • морфология эритроцитов при исследовании мазка крови не коррелирует с измеренными показателями, полученными на гематологическом анализаторе;

    • существенно повышен только один из ферментов печени (АСТ, АЛТ);

    • высокий уровень креатинина при нормальном уровне мочевины;

    • концентрация глюкозы в крови более 44,4 ммоль/л, а уровень креатинина менее 0,6 мг% (указывает на проблему с пробой крови, взятой неправильно через внутривенный катетер и разведенной инфузионным раствором).

  4. дельта-проверка - предел допускаемой разности результатов анализов для одного пациента, выполненных в последовательные дни, с доверительной вероятностью 95 или 99%. Параметр дельта определяет максимально возможное различие в результатах анализа для одного пациента в разные дни за счет только биологической и допустимой аналитической вариации. Дельта-проверки выявляют 85,5% ошибок идентификации пациента и проб;

  5. индексы сыворотки представляют собой спектрофотометрическую оценку уровня интерференции от гемоглобина (индекс гемолиза), билирубина (индекс желтухи), липидов и хиломикронов (индекс липемии), относятся к наиболее распространенному типу помех при выполнении биохимических и других типов анализов и могут служить индикаторами преаналитических ошибок, связанных с продолжительным голоданием пациента перед сдачей проб крови, взятием и обработкой проб, транспортировкой и хранением.

Современные биохимические анализаторы способны автоматически оценивать индексы сыворотки, включая индекс гемолиза. Визуальное обнаружение гемолиза в лабораториях должно быть прекращено из-за низкой чувствительности и низкой воспроизводимости. При обнаружении гемолиза специалисты лаборатории должны запросить новые пробы. Если новая проба не может быть получена, об этом необходимо проинформировать клинициста. Данные, полученные из индексов сыворотки, могут использоваться для контроля качества процесса взятия проб крови.

Значительную помощь врачу в оценке повторных результатов лабораторных анализов может оказать подход на основе использования дельта-проверки.

Дельта (А) - обозначение конечной разности при изменении какого-то параметра. Дельта-проверки играют ключевую роль в оценке повторных результатов лабораторных исследований путем сравнения текущих результатов лаборатории с предыдущими результатами у одного пациента. Если есть расхождение между результатами, это может быть связано либо с ошибками идентификации проб, аналитическими ошибками или изменениями в состоянии самого пациента. В любом случае дельта-проверка является важным инструментом в определении дальнейших действий по принятию клинических решений. Рассмотрим, в чем заключается суть дельта-проверок.

Многие отклонения в лабораторных анализах в КДЛ не могут быть предварительно правильно оценены с помощью традиционных методов контроля качества, что может привести к выдаче ошибочных результатов. Дельта-проверки преследуют две основные цели:

  1. выявить пробу и оценить ее качество, исключить неправильную идентификацию пациентов (исключить возможность влияния низкого качества пробы биологического материала или неправильной идентификации пациента на результаты лабораторных анализов);

  2. оценить изменения в клиническом состоянии пациента и их возможное влияние на результаты лабораторных анализов.

В практическом плане дельта-проверки позволяют выявлять ошибки в результатах лабораторных анализов, обусловленные следующими видами вариации:

  1. преаналитическая:

    • неправильная идентификация пациентов (проба взята у одного больного, а маркирована как взятая у другого; этикетки на пробах не соответствуют бумажной или электронной заявке на анализы);

    • неправильное взятие или сбор проб;

    • нарушения времени и условий доставки проб в лабораторию и ошибки при подготовке проб к исследованиям;

  2. аналитическая:

    • нарушения в работе лабораторного анализатора;

    • возможное влияние метода исследования;

  3. биологическая:

    • влияние ритмических изменений (биологические ритмы);

    • влияние возраста;

    • влияние лечения.

Большинство ошибок, связанных с неправильной идентификацией пациента, возникают на этапе взятия проб венозной крови и их маркировки. Вместе с тем исследования показали, что большинство отклонений в результатах лабораторных анализов, выявляемых с помощью дельта-проверки (более 75%), можно отнести к истинным изменениям в клиническом состоянии пациента, то есть отклонения в результатах тестов связаны с изменениями в клинической картине заболевания. Однако 25% изменений (то есть каждый четвертый результат) в результатах анализов обусловлены влиянием на результат ошибок на преаналитическом и аналитическом этапе или связаны с неучетом факторов биологической вариации при их оценке. Прогностическое значение дельта-проверки для выявления истинной ошибки, связанной с ошибочной пробой биологического материала, составляет от 0,4 до 6,0%. Своевременное выявление ошибок в результатах лабораторных анализов с помощью дельта-проверки могут иметь существенные последствия для определения правильной тактики ведения больного и обеспечения его безопасности. Врачи должны быть своевременно предупреждены специалистами лаборатории о выявлении большой биологической вариации в результатах анализов своих пациентов и изменениях в значениях дельта-проверки; если это не будет сделано, может повлечь за собой принятие ошибочных врачебных решений.

Именно поэтому дельта-проверка - это метод оценки противоречивых результатов лабораторных анализов, который позволяет выявлять такие результаты и оказывает помощь клиницистам в диагностике заболеваний.

Дельта-проверка - предел допускаемой разности результатов анализов для одного пациента, выполненных в последовательные дни, с доверительной вероятностью 95 или 99%. Параметр дельта определяет максимально возможное различие в результатах анализа для одного пациента в разные дни за счет только биологической и допустимой аналитической вариации.

Предел дельты для конкретного теста - это значение, на которое может отличаться самый последний результат от предыдущего результата. При превышении этого значения необходимо предпринять действия для подтверждения полученного результата. Дельта рассчитывается для каждого метода исследования в КДЛ по следующей формуле:

image

где CVбиол. - биологическая вариация в отношении данного аналита; CVаналит. - аналитическая вариация метода при определении данного аналита.

Пределы дельты должны быть установлены каждой лабораторией, принимая во внимание физиологические особенности организма и характеристики используемого метода.

В практическом плане для расчета Δ наиболее часто используют значения референтного интервала (RCV), так этот интервал исходно учитывает аналитическую и биологическую вариацию. Расчет проводят по следующей формуле:

image

где Z=1,96 при 95% вероятности (p =0,05) и Z=2,58 при 99% вероятности (p=0,01); CVбиол. - индивидуальная вариация (данные можно взять из литературы или Интернета, например, с сайта http://www.westgard.com/biodatabase1.htm); CV - аналитическая вариация (от данных ВКК 1SD).

Рассмотрим расчет значений дельта-проверки в отношении оценки результатов определения активности щелочной фосфатазы.

Щелочная фосфатаза имеет 1SD 0,56 МЕ/л из данных ВКК в КДЛ от нижних значений референтного интервала 40 МЕ/л. Тогда аналитическая вариация (CVаналит. ) = 0,56/40x100=1,4%. В отношении щелочной фосфатазы индивидуальная биологическая вариация равна 6,4% (взята из Интернета). Тогда значения дельта-проверки:

Δ для 95% доверительного интервала = 1,414x1,96x(1,42 + 6,42)1/2 = 18%;

Δ для 99% доверительного интервала = 1,414 x 2,58x(1,42 + 6,42)1/2 = 24%.

Таким образом, если лаборатория в основном заинтересована в выявлении больших изменений в результатах определения активности щелочной фосфатазы (p <0,01), интервал дельта-проверки должен быть установлен в пределах 24% для повторных результатов (или выше) или в абсолютных значениях 9,6 МЕ/л при нижних значениях референтного интервала 40 МЕ/л.

В качестве ориентира в табл. 2.52 приведены значения дельты, которые могут быть использованы в клинической практике для оценки результатов повторных исследований.

Таблица 2.52. Ориентировочные пределы значений дельты при оценке повторных результатов анализов
pic 0097

Если значения дельты между данными последнего и предпоследнего результата не превышают установленную величину, влияние неправильной идентификации проб и аналитические ошибки можно исключить. Однако, когда значения дельты между данными последнего и предпоследнего результата превышают установленную величину, необходимо обратить на этот результат особое внимание и поэтапно исключить возможное влияние на него факторов, не связанных с изменениями клинического состояния больного. Именно поэтому дельта-проверка должна применяться всегда у пациентов со значительными изменениями в результатах повторных тестов для обнаружения клинически значимых изменений концентраций аналита.

Дельта-проверка должна быть рутинным методом оценки результатов повторных исследований у пациентов.

2.5.1.7. Последовательность оценки результатов лабораторных исследований

Понимание и даже знание множества факторов, которые могут оказывать влияние на результаты анализов, отнюдь не облегчают их интерпретацию. Для того чтобы не упустить и учесть всю совокупность факторов, необходимо иметь четкое представление о последовательности оценки результатов лабораторных исследований.

На рис. 2.64 представлена последовательность оценки результатов лабораторных исследований, которая может оказать значительную помощь врачу лаборатории. На первоначальном этапе оценка результатов лабораторных исследований включает их анализ на чисто техническом и аналитическом уровне, то есть не связаны ли отклонения в результатах тестов непосредственно с проведением анализа на лабораторных анализаторах в лаборатории. К этому же этапу относится и анализ биологической вариабельности, то есть оценки возможного влияния на результаты лабораторных анализов физиологических особенностей организма пациента, нарушений со стороны медицинского персонала при взятии (сборе) проб биологического материала, нарушений условий и времени транспортировки проб в лабораторию, а также целого ряда других факторов, для того чтобы результаты исследований были максимально информативными и надежными в диагностическом, лечебном и прогностическом смысле.

Важнейшими составляющими этого первого этапа оценки результатов анализов является правильное представление о референтных (нормальных) величинах, биологической и аналитической вариации как основы для первоначальной оценки. Знание степени аналитической вариабельности результатов исследований важно и для сопоставления их с биологической вариабельностью, а также для сопоставления с клинически значимыми сдвигами лабораторных показателей. Эти критерии определяются при разработке методов, указываются в их описании к набору реактивов, и в случае необходимости врач клинической лабораторной диагностики должен информировать об этом клинициста. На втором этапе врачу предстоит перейти к нозологическому уровню оценки результатов тестов, то есть попытаться связать отклонения в результатах с определенной патологией.

pic 0098
Рис. 2.64. Последовательность оценки результатов лабораторных исследований

Врачу клинической лабораторной диагностики при обработке результатов исследований необходимо провести комплексную критическую оценку факторов, способных оказать влияние на результаты анализов:

  • сопоставление результата анализа с референтным диапазоном соответствующих величин указывает только на вероятность соответствия или несоответствия этого результата норме;

  • существуют физиологические различия нормальных величин и физиологические вариации день ото дня (биологическая вариация);

  • существуют небольшие, обусловленные техническими причинами различия в результатах анализов, полученных в разные дни (аналитическая вариация метода);

  • референтные диапазоны могут изменяться при использовании разных лабораторных методик;

  • изменения содержания исследуемого компонента могут быть неспецифичными и не связанными с первичным нарушением метаболизма этого компонента (интерференция, гемолиз, липемия, прием лекарственных препаратов и др.);

  • существуют случайные вариации, причины которых в настоящее время не выяснены, но их следует учитывать при интерпретации результатов повторных анализов; например, ежедневные вариации уровня железа в плазме крови очень велики и могут затруднять выявление закономерностей изменений этого компонента;

  • при исследовании плазмы или сыворотки крови получают сведения о внеклеточных концентрациях исследуемых компонентов; эти концентрации зависят от количества воды во внеклеточном пространстве по отношению к количеству измеряемого компонента и не всегда могут отражать внутриклеточный уровень исследуемых веществ;

  • в случае затруднения в выявлении и оценке перечисленных выше причин, оказывающих влияние на результаты анализов, необходимо проконсультироваться у лечащего врача, прежде чем утверждать результаты анализов.

2.5.1.8. Критические величины результатов лабораторных исследований, требующие немедленных действий по оказанию медицинской помощи

Термин «критические (панические) значения результатов лабораторных исследований» был введен в клиническую практику

Дж. Лундбергом, который определил их как отражающие патофизиологическое состояние, отличное от нормального настолько, что представляет угрозу для жизни пациента, если не предпринять немедленные корректирующие действия.

Согласно ГОСТ Р ИСО 15189-2015 «Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности», критические значения - это значения, результаты исследований которых указывают на непосредственный риск возникновения тяжелых повреждений или смерти пациента.

Критические значения составляют менее 2% результатов лабораторных исследований.

Критические величины результатов лабораторных исследований, требующие немедленных действий по оказанию медицинской помощи, определяются в результате рандомизированных исследований. Примером, откуда берутся эти значения, могут служить результаты Бруклинского исследования значений уровней общего кальция в сыворотке крови за трехмесячный период (Howanitz J., Howanitz P., 2006). В этом исследовании изучалось влияние критических величин гипо- или гиперкальциемии на летальность у реанимационных пациентов. В качестве критических величин гипо- или гиперкальциемии были установлены уровни точки cutoff концентрации общего кальция в сыворотке крови менее 7 и более 12 мг% (менее 1,75 и более 3 ммоль/л). Основанием для определения данных значений концентрации общего кальция в качестве критических послужили полученные результаты исследования. Оказалось, что у пациентов с гипо- или гиперкальциемией, имевших уровень кальция в сыворотке крови на 0,5 мг% (0,125 ммоль/л) выше/ниже точки cutoff, летальность была на 25% выше.

В табл. 2.53 приведены критические величины результатов лабораторных исследований, требующие немедленных действий у взрослых пациентов, а в табл. 2.54 - у новорожденных.

В большей части случаев приведенные в таблице величины отражают нарушения гомеостаза, опасные для жизни больного. Для строго физиологически контролируемых параметров гомеостаза в организме (калий, натрий, и др.) критические величины тесно связаны с референтными интервалами. Величины исследуемого параметра выше или ниже референтного предела и являются порогом клинического решения.

Таблица 2.53. Критические величины результатов лабораторных исследований, требующие немедленных действий при оказании медицинской помощи
Показатель Критическая величина Комментарий

Гематология

Гематокрит

<18%. >61%

При таком гематокрите концентрация гемоглобина <60 г/л, миокард плохо снабжается кислородом. Резко повышается вязкость крови и сопротивление кровотоку, что грозит развитием сердечной недостаточности

Гемоглобин

<66 г/л. >199 г/л

Резкое нарушение оксигенации миокарда.

Соответствует гематокриту >61%, приводит к резкому повышению вязкости крови и нарушению кровотока

Лейкоциты

<2x109/л у нового пациента или разница в 1x109/л по сравнению с предыдущим анализом при уровне ≤4х109/л. >50x109/л у нового пациента

Высокий риск получить инфекционное осложнение, так как число гранулоцитов при таком количестве лейкоцитов <0,5x109/л.

Указывает на наличие лейкемоидной реакции, лейкемии или сепсиса

Тромбоциты

<20x109/л.

Очень высокий риск развития кровотечения.

Очень высокий риск развития тромбоза

Ретикулоциты

>20%

Указывает на наличие кровопотери или гемолитической анемии

Мазок крови

Наличие лейкемических клеток (програнулоцитов или бластов)

Указывает на наличие лейкемии

Биохимия

Альбумин

<15 г/л

Высокий риск развития отека легких и асцита

Аминотрансферазы (АЛТ, АСТ)

>2000 МЕ/л

Указывает на тяжелое повреждение миокарда, печени, мышц или клеток крови. Окончательная оценка результата зависит от состояния пациента и диагноза

Аммиак

≥59 мкмоль/л

Указывает на возможное наличие печеночной энцефалопатии. Кома развивается при концентрации >176 мкмоль/л

Алкоголь (этиловый спирт)

≥3,5 г/л (76 ммоль/л)

Возможно нарушение сознания и развитие комы

Анионный интервал = Na+ - (Сl- + НСО3-)

≥20 ммоль/л

Указывает на наличие кето- или лактатацидоза, уремии, отравлении алкоголем, салицилатами, метанолом или этиленгликолем

Билирубин

≥257 мкмоль/л

Указывает на наличие гепатобилиарного заболевания, в основном вызванного гепатотропными вирусами (высокий риск заражения персонала) или закупоркой желчевыводящих путей

Глюкоза

≤2,5 ммоль/л. ≥27,8 ммоль/л

Указывает на опасность развития гипогликемической комы. Указывает на опасность развития гипергликемической комы

Дигоксин

>2,7 нмоль/л

Опасность токсического действия дигоксина

Калий

<2,8 ммоль/л. >6,5 ммоль/л

Возможно нарушение и ослабление возбудимости и проводимости миокарда, нарушение сердечного ритма. Возможно развитие аритмии, помрачения сознания брадикардии, коллапса

Кальций общий

≤1,65 ммоль/л. ≥3,5 ммоль/л

Гипокальциемия может вызывать повышенную возбудимость, тонические судороги, спутанность сознания, сердечную недостаточность.

Гиперкальциемия может сопровождаться тошнотой, рвотой, слабостью, утомляемостью, спутанностью сознания, развитием ступора и комы

Кальций ионизированный

≤0,78 ммоль/л. ≥1,6 ммоль/л

Гипокальциемия. Гиперкальциемия

Креатинин

>653 мкмоль/л

Указывает на острое повреждение почек

КК

>2000 МЕ/л

Указывает на серьезное повреждение миокарда или скелетных мышц

Мочевая кислота

≥773 мкмоль/л

Опасность развития острой гиперурикемической нефропатии вследствие канальциевой блокады солями мочевой кислоты и развитие почечной недостаточности

Мочевина

≥35,6 ммоль/л

Указывает на острое повреждение почек

Лактат

≥5,0 ммоль/л

Указывает на выраженное нарушение обмена О2 в тканях

ЛДГ

>2000 МЕ/л

Указывает на выраженное повреждение сердца, печени легких или клеток крови. Окончательная оценка результата зависит от состояния пациента и диагноза

Липаза

>1000 МЕ/л

Указывает на выраженное повреждение поджелудочной железы

Магний

≤0,41 ммоль/л. ≥2,0 ммоль/л

Возможно развитие сонливости, спутанности сознания, тремора, непроизвольных мышечных сокращений, атаксии, нистагма, тетании и судорожных припадков.

Нарушения включают арефлексию, сонливость, слабость, параличи и дыхательную недостаточность, артериальную гипотензию, брадикардию, полную атриовентрикулярную блокаду и асистолию

Миоглобин

≥110 мкг/л

Указывает на повреждение миокарда при инфаркте или скелетных мышц

Натрий

≤120 ммоль/л. ≥160 ммоль/л

Возможно падение артериального давления и развитие отека мозга. Гипернатриемия может приводить к развитию атаксии и мышечных подергиваний, спутанности сознания,эпилептическим припадкам и коме

Осмолярность

≤240 мосм/кг. ≥330 мосм/кг

Указывает на опасность развития отека легких и мозга.

Указывает на опасность развития гиперосмолярной комы

Тропонин

>0,1 мкг/л

Указывает на повреждение миокарда при ОКС

Тропонин высокочувствительный

>0,014 нг/мл

Превышение значения 99-го перцентиля контрольных значений у пациентов с нормальным базовым уровнем тропонина указывает на повреждение миокарда при ОКС

Фосфор неорганический

≤0,32 ммоль/л

Возможно развитие рабдомиолиза (некроз клеток мышечной ткани), дыхательной и сердечной недостаточности, судорог и комы

Хлор

≤75 ммоль/л. ≥125 ммоль/л

Гипохлоремия сопровождается слабостью, расстройствами сознания, затрудненным дыханием, рвотой. Возможно развитие судорог, нарушений сердечного ритма

В артериальной или капиллярной крови

рН

≤7,2.

≥7,6

Указывает на наличие декомпенсированного ацидоза.

Указывает на наличие декомпенсированного алкалоза

рСО2

<20 мм рт.ст. >70 мм рт.ст.

Указывает на наличие гипервентиляции. Указывает на наличие гиповентиляции

<40 мм рт.ст.

Такие значения соответствуют менее чем 80% насыщению гемоглобина кислородом и считаются опасными для жизни

Коагулология

АЧТВ

>75 с

Указывает на выраженный недостаток VIII, IX, XI, XII факторов свертывания крови и опасность развития кровотечения

Антитромбин

≤50%

Указывает на высокий риск развития тромбоэмболии

D-димер

Превышение верхней границы референтного интервала в 5 раз и более

Указывает на развитие тромбоза и тромболизиса

Протромбиновое время

>40 с

Указывает на высокий риск развития кровотечения

Фибриноген

<0,8 г/л

Указывает на высокий риск развития кровотечения

Микробиология

Культура крови

Положительный результат посева

Указывает на возможное развитие сепсиса или септического эндокардита

Окраска по Граму препарата из ликвора и других жидкостей (плевральной, синовиальной)

Положительный результат микроскопии

Указывает на возможное развитие гнойно-воспалительного заболевания

Таблица 2.54. Критические величины результатов лабораторных исследований у новорожденных, требующие немедленных действий при оказании медицинской помощи
Показатель Критическая величина Комментарий

Гематология

Гематокрит

≤33%. ≥71%

Указывает на наличие анемии с недостаточным снабжением тканей кислородом. Резко повышается вязкость крови и сопротивление кровотоку, что грозит развитием сердечной недостаточности

Гемоглобин

≤85 г/л. ≥230 г/л

Резкое нарушение оксигенации миокарда.

Сопровождается резким повышением вязкости крови и нарушением кровотока

Лейкоциты

≤8,0х109/л. ≥30,0х109

Значения ниже или выше этих пределов могут указывать на неонатальный сепсис

Тромбоциты

<80,0х109

Значения ниже этой величины должны служить поводом для проведения анализа причин риска развития кровотечения. При массе новорожденного <2500 г критические значения составляют <50х109

Биохимия

Билирубин

≥239 мкмоль/л

В первый день жизни необходимо исключить гемолитическую болезнь новорожденных и билирубинэнцефалопатию

Глюкоза

≤1,7 ммоль/л. ≥18,0 ммоль/л

Гипогликемия может быть следствием врожденного нарушения обмена веществ или гиперинсулинизма при наличии сахарного диабета у матери. При значениях ≤1,3 ммоль/л показано парентеральное введение препаратов глюкозы внутривенно.

Гипергликемия требует немедленного анализа возможных причин развития

Калий

<2,6 ммоль/л. >7,7 ммоль/л

Возможно появление нервно-мышечной симптоматики с гипорефлексией и параличом дыхательных мышц. Возможно развитие кардиальной аритмии, слабости скелетных мышц и угнетение дыхания

Кальций общий

≤1,65 ммоль/л. ≥3,5 ммоль/л

Гипокальциемия может вызывать повышенную возбудимость, тонические судороги, спутанность сознания, сердечную недостаточность.

Гиперкальциемия может сопровождаться тошнотой, рвотой, слабостью, утомляемостью, спутанностью сознания, развитием ступора и комы

≥0,2 г/л

Концентрация IgM в пуповинной крови выше данного предела может указывать на наличие внутриутробной инфекции

С-реактивный белок

≥50,0 мг/л

Указывает на неонатальный сепсис

<37 мм рт.ст.

Такие значения соответствуют менее чем 85% насыщению гемоглобина кислородом и считаются опасными для жизни

Критические величины результатов лабораторных исследований, требующие немедленных действий по оказанию медицинской помощи, обязан знать не только клиницист, но и медицинские сестры, и каждый врач клинической лабораторной диагностики. При получении таких результатов исследований он должен немедленно связаться с клиницистом и проинформировать его об этом. По возможности критические величины результатов лабораторных исследований специалисты должны сообщать непосредственно лечащему врачу. Сообщение критических значений результатов лабораторных исследований согласно требованиям ГОСТ Р ИСО 15189 «Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности» (2015 г.) является обязательным для практики КДЛ. Данные ВОЗ свидетельствуют, что врачебные действия, основанные на критических величинах результатов лабораторных исследований, в 65% случаев приводят к коренному изменению проводимой терапии, что позволяет спасти жизни пациентов.

2.5.1.9. Форматирование бланков результатов лабораторных исследований

После получения результатов исследований они проверяются и анализируются врачами клинической лабораторной диагностики. В случае значительного отклонения в результатах жизненно важных параметров их немедленно обсуждают с врачами-клиницистами. При необходимости исследования повторяют. Аналогично поступают и в отношении других результатов, вызывающих сомнение.

Форматирование отпечатанных бланков с результатами заслуживают большого внимания врачей клинической лабораторной диагностики и других сотрудников лаборатории. Клиницист должен быть в состоянии, быстро взглянув на бланк, получить наиболее важную информацию, не отвлекаясь на референтные величины, единицы или лишние графики. Результаты исследований должны быть сгруппированы на бланке на основании синдромного подхода. Синдромный подход к группированию результатов лабораторных исследований - это подход, основанный на использовании сочетания или комбинации лабораторных показателей, связанных общей патобиохимической основой и совместно отражающих состояние функционирования органа или системы. Например, у пациента с железодефицитной анемией ферритин должен быть рядом с количеством эритроцитов, MCV, железом, витамином В12, а не с иммунологическими данными (табл. 2.55).

Таблица 2.55. Результаты исследований у больного железодефицитной анемией
Показатель Референтные величины Результат Изменения в результатах Аналитическая вариация метода, %

Гемоглобин, г/л

140-160

92

2

Эритроциты, х1012

4,0-6,0

3,45

2

Гематокрит, об.%

42-48

30

3

MCV, фл

81-98

79

-

МСН, пг

27-34

26

-

МСНС, г/дл

32,6-35,8

30

-

Ретикулоциты, %

0,2-1

0,5

Н

-

Железо в сыворотке, мкг/дл

50-160

40

5

Ферритин в сыворотке, мкг/л

85-130

9

1

8

Примечание. Н - норма.

2.5.1.10. Составление заключений по комплексам результатов лабораторных исследований

Одна из наиболее важных функций врача клинической лабораторной диагностики - интерпретация патологических лабораторных результатов исследований. Часто клиницисты, назначающие целую серию лабораторных исследований своим пациентам, сталкиваются с огромным, приводящим в замешательство набором цифр, которые трудно оценить. Врач клинической лабораторной диагностики должен не только объяснить патологические результаты, но и подсказать, какие еще исследования необходимо провести, чтобы подтвердить или опровергнуть диагноз у пациента.

Врач клинической лабораторной диагностики должен сам выявлять патологические результаты и приложить силы и знания к их объяснению даже без запроса о консультации. Если необходимо объяснить некоторые патологические результаты, могут быть выполнены какие-то дополнительные исследования по инициативе врача лаборатории, чтобы оценить состояние пациента. Обычно необходимо обращать внимание на результаты, которые не вписываются в общую картину предполагаемого заболевания, а также не коррелируют друг с другом. Подходы к оценке патологических результатов будут рассмотрены при изложении постаналитического этапа производства лабораторных исследований. Врач клинической лабораторной диагностики должен учитывать эти подходы при написании заключения по результатам анализов.

Следует заметить, что участие в интерпретации результатов лабораторных исследований является одной из обязанностей врача клинической лабораторной диагностики, утвержденных приказом Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380 (в функции биолога КДЛ интерпретация результатов не входит).

Клиническая лабораторная диагностика предоставляет клиницисту информацию о клеточном, химическом, иммунном, гормональном составе проб биологических материалов, полученных от больного, о наличии в них микроорганизмов. Оценка такой информации должна проводиться комплексно с учетом и объяснением всех выявленных отклонений, тогда она будет использована в интересах больного более эффективно.

По комплексам лабораторных анализов врачами клинической лабораторной диагностики делаются заключения, которые вносятся в компьютерную сеть и в последующем уходят в отделения вместе с результатами исследований. Для этого врачи лаборатории, работающие на различных частных технологических процессах выполнения исследований, совместно анализируют полученные результаты и делают заключения. Например, для оценки иммунного статуса необходимо комплексно проанализировать данные общеклинического исследования крови (количество лейкоцитов, лимфоцитов), результаты которого получают на частном технологическом процессе гематологических исследований, с результатами оценки клеточного, гуморального иммунитета и систем неспецифической резистентности организма, которые получают на частном технологическом процессе иммунологических исследований, а также с результатами исследования Ig, системы комплемента, острофазовых белков, которые определяются на частном технологическом процессе биохимических исследований, и только после этого сделать заключение об иммунном статусе.

Для анализа результатов исследований и выдачи заключений врачи клинической лабораторной диагностики запрашивают данные из истории болезни пациента и консультируются с лечащими врачами.

Приводим примеры составления заключений врачами клинической лабораторной диагностики по результатам исследований.

Большие затруднения клиницисты испытывают при оценке результатов комплексного исследования иммунного статуса у пациентов. В табл. 2.56 приведены результаты исследования иммунного статуса больного, находившегося в реанимационном отделении с диагнозом «сепсис».

Таблица 2.56. Результаты исследования иммунного статуса пациента с диагнозом «сепсис»

pic 0099

pic 0100

Заключение. Отмечается выраженное снижение показателей клеточного иммунитета. Нарушено соотношение клеточных популяций в сторону усиления супрессорной активности Т-лимфоцитов, вследствие чего индекс Т-хелперы/Т-супрессоры - 0,6. Из 18% Т-хелперов только 2,4% - хелперы 1-го типа и 0,6% - Т-хелперы 2-го типа, остальные относятся к нулевым хелперам (неактивным). Резко снижено количество В-лимфоцитов на фоне высокого содержания IgG и IgA, что свидетельствует о дисбалансе гуморального иммунитета. Высокие показатели С-реактивного белка, супероксид-анионобразующей функции фагоцитов и количества натуральных киллеров характерны для разлитого воспалительного процесса с выраженной деструкцией тканей. Показатель индекса интоксикации характерен для вялотекущего воспалительного процесса.

В целом показатели иммунного статуса соответствуют иммунодефициту III степени. Целесообразно рассмотреть возможность иммунозаместительной терапии с последующей повторной оценкой иммунного статуса через 8-10 дней.

В табл. 2.57 представлены результаты исследований активности ферментов у пациента кардиологического отделения, поступившего в стационар на 5-е сутки после остро возникших болей за грудиной.

Таблица 2.57. Результаты исследования ферментов у больного кардиологического отделения

pic 0101

Заключение. Повышение активности ЛДГ и концентрации тропонина Т свидетельствует об имеющемся у пациента повреждении миокарда (диагностическая чувствительность тропонина Т в отношении ИМ - более 98%, специфичность - 80%). Отсутствие при этом повышения активности других ферментов, возможно, обусловлено значительным временем (более 3-5 сут), прошедшим после повреждения миокарда.

На основании клинической картины, анамнеза, данных электрокардиографии и результатов анализов у больного был диагностирован ИМ.

В табл. 2.58 приведены результаты исследования системы гемостаза у пациента, поступившего по неотложным показаниям с жалобами на остро возникшие боли в области грудной клетки справа, одышку, кашель.

Таблица 2.58. Результаты исследования системы гемостаза больного, поступившего по неотложным показаниям

pic 0102

Заключение. Изменения в показателях коагулограммы носят разнонаправленный характер, что совместно со снижением количества тромбоцитов, повышением концентрации продуктов деградации фибриногена (ПДФ), D-димера, свидетельствует о развитии у пациента синдрома диссеминированного внутрисосудистого свертывания. Повышение концентрации D-димера говорит о том, что возможно развитие синдрома диссеминированного внутрисосудистого свертывания обусловлено наличием у пациента выраженного тромбоза глубоких вен или развитием тромбоэмболии легочной артерии (диагностическая чувствительность теста в отношении тромбоэмболии легочной артерии - 80-85%, специфичность - 65-70%). Пациенту показан контроль за показателями гемостаза каждые 4 ч в течение первых суток нахождения в стационаре.

В дальнейшем у больного была диагностирована тромбоэмболия легочной артерии.

Следует подчеркнуть, что проблему формы и содержания заключений врачей клинической лабораторной диагностики по комплексам результатов лабораторных исследований необходимо решать совместно с клиницистами. Заключения должны отражать истину, быть полезными и понятными для клинициста.

Очень важно указать на бланках результатов анализов время их отправки клиницистам. Этот критерий обязательно необходимо учитывать в процессе производства исследований, особенно если анализы выполнялись по неотложным показаниям, так как задержка лабораторией результатов может оказать выраженное влияние на качество оказания помощи пациенту и нередко служит одной из причин объяснения клиницистами несвоевременного вмешательства в лечение пациента.

Только после выполнения анализа и выдачи заключений результаты распечатывают в виде бланков, их подписывают врачи клинической лабораторной диагностики, проводившие исследования, и затем их доставляют в отделения или отправляют в единую компьютерную сеть, где они становятся доступными клиницистам.

2.5.2. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ ПЕРЕДАЧИ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОТДЕЛЕНИЯ СТАЦИОНАРА И ПОЛИКЛИНИКИ

Существует несколько способов передачи бланков результатов исследований в отделения стационара и поликлиники. Наиболее простой - доставка бланков в отделения стационара и кабинеты поликлиники сотрудниками лаборатории. При использовании такого способа доставки значительно снижается частота потерь бланков исследований на этом этапе и появляется возможность контролировать данную операцию. С сотрудника лаборатории всегда можно спросить и потребовать правильной и своевременной доставки бланков, отмечать выполнение этой операции в рабочем журнале и указывать время доставки результатов.

Использование ЛИС в клинической лабораторной диагностике в настоящее время позволяет поставлять результаты исследований клиницистам в электронной форме, что значительно снижает частоту ошибок на данном этапе производства анализов.

2.5.3. ИНДИКАТОРЫ КАЧЕСТВА ЛАБОРАТОРНОЙ ЧАСТИ ПОСТАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА

После передачи бланков результатов лабораторных исследований в клинические отделения стационара или поликлиники заканчивается лабораторная часть постаналитического этапа процесса производства. Несвоевременная передача или утеря бланков результатов анализов, неинформирование врача о критических результатах исследования, невыявленная аналитическая интерференция и, как следствие, ложноположительные и ложноотрицательные результаты тестов, пропущенные или неправильно интерпретированные данные при оценке результатов врачом лаборатории - наиболее распространенные проблемы лабораторной части постаналитического этапа.

Индикаторами качества лабораторной части постаналитического этапа могут быть следующие отклонения:

  1. процент анализов с отсутствием референтной величины в бланке результатов исследований;

  2. процент бланков анализов с расположением результатов по патофизиологическому принципу;

  3. процент бланков анализов с отсутствием заключений по комплексу результатов лабораторных исследований;

  4. процент бланков анализов с отсутствием указания времени передачи результатов анализов из лаборатории в отделения;

  5. отсутствие в рабочем журнале лаборатории указания времени доставки результатов в отделения и поликлиники;

  6. процент ошибок в доставке результатов (доставлены не в то отделение, не доставлены, кто делает ошибки, ошибки лаборатории при указании отделения, куда необходимо доставить бланк).

Рабочая группа по лабораторным ошибкам и безопасности пациентов (Laboratory Errors and Patient Safety - LEPS) Международной федерации клинической химии и лабораторной медицины предлагает для оценки качества постаналитического этапа тестирования использовать индикаторы, приведенные в табл. 2.59.

Таблица 2.59. Индикаторы качества постаналитического этапа

Индикатор качества

Уровень выполнения

оптимальный

желательный

минимальный

неприемлемый

Постаналитический этап

Результаты анализов, полученные с превышением времени/общее количество результатов, %

<0,4

0,4-0,5

0,6-0,7

>0,7

Критические значения, переданные/общее количество критических значений, %

>96

77-96

58-76

<58

Среднее время для передачи критических значений, мин.

Количество комментариев в результатах анализов, которые положительно повлияли на исход/общее количество комментариев к результатам анализов, %. Число рекомендаций, разработанных совместно с клиницистами, в год

<50

Нет

Нет

50-100

>1,5

1-4

101-160

>160

2.5.4. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ СОСТАВЛЕНИЯ СТАТИСТИЧЕСКИХ ОТЧЕТОВ О ЗАТРАТАХ ВРЕМЕНИ, ПРОВЕДЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЯХ, РАСХОДЕ РЕАКТИВОВ

Технологическая операция составления статистических отчетов имеет очень важное значение для управления технологическим процессом производства анализов. На основании статистического учета затрат времени на выполнение той или иной технологической операции, нагрузки на специалистов может быть изменена расстановка кадров лаборатории, определяться потребность в автоматизации технологической операции.

Не менее важное значение имеет статистический анализ данных о выполненных исследованиях, проценте выявления патологии. Анализируются результаты исследований по отделениям стационара и поликлиники (частота исследований у данного пациента, процент выявления патологических результатов, необходимость данных исследований у пациента). Особое внимание необходимо обращать на расхождение статистических показателей в работе однотипных отделений стационара или кабинетов поликлиники. Совместно с лечащим врачом обсуждается необходимость использования тех или иных лабораторных тестов для оказания качественной медицинской помощи пациентам. На основании анализа и обсуждения полученных результатов со всеми участниками технологического процесса производства анализов вносятся изменения в его организацию. Статистические отчеты могут быть самыми различными в зависимости от того, какие цели ставят перед собой лаборатория или клиницисты. Данные статистических отчетов необходимо использовать для управления качеством результатов анализов и их себестоимостью.

Анализируют и учитывают расход реактивов, делают выводы о правильности их расходования и определяют мероприятия для сокращения их расхода. После этого данные о расходе реактивов передают в письменном виде или по компьютерной сети старшему лаборанту КДЛ для списания. На основании расхода реактивов составляют заявку на их приобретение. Если расход реактивов не контролируется, то это может привести к ситуации, когда тесты назначены клиницистом, а выполнить их нечем.

В настоящее время для составления статистических отчетов, учета расходования и списания реактивов необходимо активно использовать возможности компьютерных информационных систем. Без их помощи оперативно проводить статистический анализ очень трудно, так как эта технологическая операция требует значительных затрат времени.

Критериями оценки качества технологической операции составления статистических отчетов могут быть следующие:

  1. наличие статистических отчетов, которые могут использованы для управления технологическим процессом производства анализов;

  2. учет расходования и списания реактивов и другого материала.

2.5.5. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ ПО ТЕХНИЧЕСКОМУ ОБСЛУЖИВАНИЮ И УХОДУ ЗА АНАЛИЗАТОРАМИ И ДРУГИМ ЛАБОРАТОРНЫМ ОБОРУДОВАНИЕМ

Специалисты лаборатории всегда должны помнить, что после передачи результатов исследований клиницистам единый технологический процесс их производства закончен только на сегодняшний день, а завтра он повторится вновь. Именно поэтому необходимо подготовить анализаторы и все лабораторное оборудование к работе. После проведения исследований неиспользованные реактивы убирают в холодильники (если их нельзя хранить в анализаторе), частично передают в лабораторию экспресс-диагностики для использования в течение суток (если срок их хранения ограничен).

Производят технический уход и обслуживание анализаторов и другого лабораторного оборудования согласно инструкциям, которые заложены в компьютерную программу или имеются на рабочем месте в письменном виде. Практический опыт показывает, что если уход за оборудованием не проводится, то оно значительно чаще выходит из строя, снижается качество анализов, учащаются повторные калибровки, при проведении контроля качества результаты чаще выходят за пределы пяти контрольных правил Westgard.

Только после проведения этих мероприятий компьютер анализатора дает команду перевести его в режим ожидания.

Для того чтобы контролировать технологическую операцию по техническому обслуживанию и уходу за анализаторами и другим лабораторным оборудованием, необходимо завести журнал проведения и учета данной операции. В журнале специалист, проводивший обслуживание лабораторного оборудования, указывает, что выполнено в отношении того или иного анализатора, когда и кем. Администратор каждого технологического процесса или операции должен проверять полноту и качество проведенного обслуживания лабораторного оборудования.

2.5.6. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ОПЕРАЦИЯ СБОРА, ХРАНЕНИЯ И УДАЛЕНИЯ ОТХОДОВ

В процессе лабораторных исследований в КДЛ накапливаются различные виды отходов. Действия специалистов лаборатории по сбору, хранению и удалению отходов регламентируют санитарные правила и нормы «Правила сбора, хранения и удаления отходов в лечебно-профилактических учреждениях» СанПиН 2.1.7.728-99 и санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами». Согласно данным документам, под отходами КДЛ понимаются все виды отходов, образующиеся в лаборатории.

Все отходы КДЛ разделяются по степени их эпидемиологической, токсикологической и радиационной опасности на пять классов опасности, которые приведены в табл. 2.60.

Таблица 2.60. Классификация отходов клинико-диагностической лаборатории
Категория опасности Класс А. Неопасные Класс Б. Опасные (рискованные) Класс В. Чрезвычайно опасные Класс Г. Отходы, по составу близкие к промышленным Класс Д. Радиоактивные отходы

Характеристика морфологического состава

Отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными, нетоксичные отходы. Пищевые отходы всех подразделений КДЛ. Мебель, инвентарь, неисправное диагностическое оборудование, не содержащие токсичных элементов. Неинфицирован ная бумага, смет, строительный мусор и т.д.

Потенциально инфицированные отходы. Материалы и инструменты, загрязненные выделениями, в том числе кровью. Выделения пациентов. Патолого-анатомические отходы. Отходы из микробиологических лабораторий, работающих с микроорганизмами III-IV групп патогенности

Материалы, контактирующие с больными особо опасными инфекциями. Отходы из лабораторий, работающих с микроорганизмами I-IV групп патогенности. Отходы фтизиатрических, микологических больниц

Просроченные лекарственные средства, отходы от лекарственных и диагностических препаратов, дезинфицирующие средства, не подлежащие использованию, с истекшим сроком годности. Цитостатики и другие химические препараты. Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование

Все виды отходов, содержащие радиоактивные компоненты

К работам, связанным со сбором, временным хранением и транспортированием отходов, не допускается привлечение лиц, не прошедших предварительного обучения. Обучение персонала правилам безопасного обращения с отходами осуществляется ответственным специалистом за сбор отходов в данном медицинском учреждении.

Местами образования отходов класса Б в лабораториях являются:

  • процедурные;

  • лаборатории, работающие с микроорганизмами III-IV групп патогенности.

Все отходы, образующиеся в этих подразделениях, после дезинфекции собирают в одноразовую герметичную упаковку.

Мягкая упаковка (одноразовые пакеты) закрепляется на специальных стойках (тележках).

После заполнения пакета примерно на 3/4 из него удаляется воздух, и сотрудник, ответственный за сбор отходов в КДЛ, осуществляет его герметизацию. Удаление воздуха и герметизацию одноразового пакета проводят в марлевой повязке и резиновых перчатках.

Органические отходы, образующиеся в лабораториях, микробиологические культуры и штаммы, вирусологически опасный материал после дезинфекции собирают в одноразовую твердую герметичную упаковку.

Сбор острого инструментария (иглы, перья), прошедшего дезинфекцию, осуществляют отдельно от других видов отходов в одноразовую твердую упаковку.

Транспортирование всех видов отходов класса Б вне пределов КДЛ осуществляется только в одноразовой упаковке после ее герметизации.

В установленных местах загерметизированные одноразовые емкости (баки, пакеты) помещаются в межкорпусные/корпусные контейнеры, предназначенные для сбора отходов класса Б.

Одноразовые емкости (пакеты, баки) с отходами класса Б маркируют надписью: «Опасные отходы. Класс Б» с нанесением кода подразделения ЛПУ, названия учреждения, даты и фамилии ответственного за сбор отходов лица.

Местами образования отходов класса В являются:

  • лаборатории, работающие с микроорганизмами I-II групп патогенности.

Все отходы, образующиеся в данных лабораториях, подлежат дезинфекции в соответствии с действующими нормативными документами.

Сбор отходов данного класса осуществляется в одноразовую упаковку. Мягкая упаковка (одноразовые пакеты) должна быть закреплена на специальных стойках (тележках).

После заполнения пакета примерно на 3/4 из него удаляется воздух, и сотрудник, ответственный за сбор отходов в данной лаборатории, осуществляет его герметизацию с соблюдением требований техники безопасности с возбудителями I-II групп патогенности.

Микробиологические культуры и штаммы следует собирать в одноразовую твердую герметичную упаковку.

Транспортирование всех видов отходов класса В вне пределов лаборатории осуществляется только в одноразовой упаковке после ее герметизации.

В установленных местах загерметизированные одноразовые емкости (баки, пакеты) помещают в межкорпусные/корпусные контейнеры, предназначенные для сбора отходов класса В.

Одноразовые емкости (пакеты, баки) с отходами класса В маркируют надписью: «Чрезвычайно опасные отходы. Класс В» с нанесением кода подразделения ЛПУ, названия учреждения, даты и фамилии ответственного за сбор отходов лица.

Местами образования отходов класса Г являются:

  • КДЛ;

  • химико-токсикологические лаборатории.

Степень токсичности каждого вида отходов данного класса определяется согласно классификатору токсичных промышленных отходов и методическим рекомендациям по определению класса токсичности промышленных отходов.

Использованные люминесцентные лампы, ртутьсодержащие приборы и оборудование собирают в закрытые герметичные емкости. После заполнения емкости герметизируют и хранят во вспомогательных помещениях. Вывозятся специализированными предприятиями на договорных условиях.

Отходы класса Г, относящиеся к II и III классу токсичности в соответствии с классификатором токсичных промышленных отходов, собирают и упаковывают в твердую упаковку, IV класса - в мягкую.

Местами образования отходов класса Д являются:

  • радиоизотопные лаборатории.

Сбор, хранение, удаление отходов данного класса осуществляется в соответствии с требованиями правил работы с радиоактивными веществами и другими источниками ионизирующих излучений, нормами радиационной безопасности и других действующих нормативных документов, которые регламентируют обращение с радиоактивными веществами.

В соответствии с требованиями Федерального закона от 30 марта 1999 № 52-ФЗ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии» не допускается:

  • пересыпать отходы классов Б и В из одной емкости в другую;

  • устанавливать одно- и многоразовые емкости около электронагревательных приборов;

  • утрамбовывать любые отходы руками;

  • осуществлять сбор отходов без перчаток.

Общий порядок дезинфекции отходов и многоразового инвентаря

Отходы классов Б и В должны быть подвергнуты обязательной дезинфекции перед сбором в одноразовую упаковку непосредственно на местах первичного сбора отходов методом погружения в дезинфицирующий раствор, подготовленный в специально выделенной для этой цели емкости.

Дезинфекция отходов классов Б и В производится в соответствии с действующими нормативными документами.

Для дезинфекции следует использовать зарегистрированные Минздравом России и рекомендуемые к применению в медицинских учреждениях дезинфицирующие средства в концентрациях и времени экспозиции, указанных в соответствующих рекомендациях по их использованию. Дезинфекция производится в пределах медицинского подразделения, где образуются отходы данного класса.

Дезинфекция многоразовых сборников для отходов класса А производится ежедневно силами лечебно-профилактического учреждения.

Дезинфекцию межкорпусных/корпусных контейнеров для сбора отходов классов Б и В, кузовов автомашин производит автотранспортная организация, вывозящая отходы, 1 раз в неделю в местах разгрузки.

Одноразовые пакеты, используемые для сбора отходов классов Б и В, должны обеспечивать герметизацию и возможность безопасного сбора в них до 15 кг отходов. Пакеты для сбора отходов класса Б должны иметь желтую окраску, класса В - красную, класса А - белую.

Конструкция одноразовых баков для сбора отходов классов Б и В должна обеспечивать их герметизацию в процессе сбора и невозможность их вскрытия при транспортировке отходов вне пределов медицинского отделения (лаборатории).

Конструкция тележек (стоек) для транспортирования одноразовых пакетов должна обеспечивать возможность их закрепления и быть удобной в эксплуатации.

Конструкция многоразовых баков для сбора отходов класса А и установки одноразовых пакетов должна предусматривать крышку, а также колеса и ручки для удобного транспортирования.

Сбор отходов разных классов производится в различные контейнеры. Контейнеры для сбора отходов разных классов должны обладать легкоразличимыми отличиями. Контейнеры для сбора отходов одного класса должны быть полностью идентичными.

Используемые межкорпусные/корпусные контейнеры должны обладать герметичными, плотно закрывающимися крышками. Конструкция контейнеров должна быть полностью герметична и влагонепроницаема, не допускать возможность контакта посторонних лиц с их содержимым, недоступна животным.

Контейнеры для сбора отходов классов А, Б, Г располагаются на открытой площадке или в изолированном помещении медицинского корпуса.

Контейнеры для сбора отходов класса В располагаются только в изолированном помещении медицинского корпуса.

Хранение контейнеров с отходами класса В совместно с контейнерами отходов классов А, Б, Г недопустимо.

Открытая площадка для установки контейнеров должна иметь асфальтированную поверхность и быть удобной для подъезда автотранспорта и проведения погрузочно-разгрузочных работ. Открытые площадки для установки контейнеров располагаются не менее чем в 25 м от лечебных корпусов и не менее 100 м от пищеблоков.

Допускается расположение контейнеров для сбора отходов различных классов на одной открытой площадке. На открытой площадке допускается расположение не более пяти контейнеров.

2.6. ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС ОЦЕНКИ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ, ЭФФЕКТИВНОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ИХ В ЛЕЧЕБНО-ДИАГНОСТИЧЕСКОМ ПРОЦЕССЕ И ВЛИЯНИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ АНАЛИЗОВ НА УЛУЧШЕНИЕ КАЧЕСТВА ОКАЗАНИЯ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ ПАЦИЕНТАМ

Результаты исследований вместе с заключениями специалистов лаборатории поступают клиницисту, который должен клинически интерпретировать полученную лабораторную информацию и использовать ее для оказания пациенту качественной медицинской помощи.

Влияние на результаты лабораторных исследований условий взятия, хранения, транспортировки проб биоматериала, биологической, аналитической и ятрогенной вариации было рассмотрено в предыдущем разделе. Клиницист должен знать, понимать и учитывать влияние этих факторов на результаты анализов. Однако его важнейшей обязанностью является учет влияния патологических факторов, определяющих отклонение результатов лабораторных исследований за пределы нормальных величин или референтных интервалов, то есть собственно анализ патологической вариации на нозологическом уровне оценки лабораторного результата. Для того чтобы делать выводы по данным патологических результатов лабораторных исследований на нозологическом уровне, клиницисту необходимо иметь дополнительную информацию об особенностях этих тестов у пациентов различных групп. В частности, необходимо иметь данные о степени патогномоничности изменения величины лабораторного показателя для той или иной патологии, о чувствительности, специфичности и прогностической ценности лабораторного теста. Кроме того, необходимо знать критические величины результатов лабораторных тестов, требующие немедленных действий врача.

2.6.1. НОЗОЛОГИЧЕСКИЙ УРОВЕНЬ ОЦЕНКИ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Клиницист должен знать, понимать и учитывать влияние условий подготовки пациента к исследованиям, взятия, хранения, транспортировки проб биологического материала в лабораторию, биологической, а также аналитической и ятрогенной вариации на результаты лабораторных исследований. Однако его важнейшей обязанностью является учет влияния патологических факторов, определяющих отклонение результатов лабораторных исследований за пределы нормальных величин или референтных интервалов, то есть собственно анализ патологической вариации или нозологическая оценка лабораторного результата. Для того чтобы делать выводы по данным патологических результатов лабораторных исследований на нозологическом уровне, клиницисту необходимо иметь дополнительную информацию об особенностях этих тестов у пациентов различных групп. В частности, необходимо иметь данные о степени патогномоничности изменения величины лабораторного показателя для той или иной патологии, о чувствительности, специфичности и прогностической ценности лабораторного теста. Кроме того, необходимо знать критические величины результатов лабораторных тестов, требующие немедленных действий врача.

В практической медицине в настоящее время, для того чтобы принять оптимальное клиническое решение в отношении наличия связи выявленных отклонений в результатах анализов с определенной патологией, используют два подхода:

  1. традиционный эмпирический подход, основанный на личном опыте врача и его знаниях о взаимосвязи изменений в результатах лабораторных тестов с определенной патологией;

  2. количественную оценку вероятности изменений в результатах того или иного лабораторного теста при определенной болезни, основанную на статистических методах (посттестовая вероятность).

Врач должен уметь использовать оба этих подхода для нивелирования возможных ошибочных решений. В дальнейшем нам предстоит лишь убедиться в том, что эти два подхода практически не отличаются друг от друга по своей сути. В отличие от эмпирической оценки, когда вероятность оценивается весьма относительно в терминах «исключается», «весьма вероятно» или «возможно», статистические методы позволяют количественно оценить и выразить вероятность взаимосвязи изменений в результатах лабораторных тестов с определенной патологией. Однако в целом статистические методы подтверждают выработанные десятилетиями клинической практикой эмпирические правила оценки такой вероятности.

Нозологический уровень оценки результатов лабораторных исследований подразумевает установление связи выявленных отклонений в анализах с определенной патологией, правильнее, с клиническим диагнозом. Однако результаты лабораторных тестов напрямую связаны с повреждением определенного органа или ткани, а не с клиническим диагнозом.

Степень патогномоничности лабораторных отклонений весьма вариабельна, так как формы и выраженность самого патологического процесса существенно различны от одного случая заболевания к другому. Некоторые лабораторные тесты, тесно связанные с повреждением определенной анатомической структуры, клетки, ткани - отражают изменение функций органов или функциональных систем организма, нарушенных патологическим процессом.

Обнаружение в крови повышенной активности панкреатической а-амилазы свидетельствует о повреждении поджелудочной железы, поскольку этот изофермент может синтезироваться только в ней. Однако, когда выполняется анализ общей а-амилазы, повышение ее активности у пациента не всегда может быть обусловлено повреждением поджелудочной железы, а может быть связано с патологическим процессом в слюнных железах или кишечнике. В таких случаях для преодоления возникшей неопределенности врач может дополнить исследование а-амилазы определением еще одного фермента поджелудочной железы - активности липазы. Если изменения активности обоих ферментов имеют одинаковую направленность, вероятность связи повышения активности ферментов с повреждением поджелудочной железы возрастает.

Очень высока вероятность связи повышенной концентрации тропонинов Т и I в крови с развитием ИМ, поскольку эти белки играют важнейшую роль в функционировании сократительной системы кардиомиоцитов и поступают в кровь в повышенных количествах только при их повреждении. При использовании для диагностики ИМ определение активности КК, уровня миоглобина вероятность установления повреждения существенно снижается, так как изменение этих показателей может быть обусловлено целым рядом других патологических процессов (например, повреждением мышц, мышечной дистрофией Дюшенна/Беккера, миокардитом) или даже лечебных процедур (внутримышечными инъекциями).

Патогномоничность отклонений результатов лабораторных анализов весьма показательна при генетически обусловленных расстройствах метаболизма, таких как фенилкетонурия, галактоземия и др. Например, при фенилкетонурии вследствие дефекта гена фенилаланингидроксилазы развивается недостаточность фермента и, как следствие, наступает блок в нормальном превращении фенилаланина в аминокислоту тирозин. Количество фенилаланина в организме накапливается, и концентрация его в крови увеличивается в 10-100 раз. Никакие другие патологические процессы не могут вызвать столь значительные отклонения в результате лабораторного теста, поэтому вероятность взаимосвязи высокого уровня фенилаланина в крови с дефектом гена фенилаланингидроксилазы практически 100%.

Установлению вероятности взаимосвязи выявленных отклонений в результатах лабораторных анализов с определенной патологией в значительной степени способствует понимание врачом-клиницистом той информации, которую несут маркеры повреждения органов и тканей, так как в большинстве случаев правильная оценка результатов исследования этих маркеров приводит к постановке правильного диагноза.

Напомним, что лабораторные маркеры повреждения условно делятся на две группы - прямые и непрямые. Прямые маркеры повреждения тесно связаны с определенными анатомическими структурами клеток и тканей, поэтому определение их повышенного уровня в крови прямо указывает на патогномоничную связь с повреждением клеток определенного органа или ткани. Степень возрастания уровня этих маркеров в крови обычно тесно коррелирует с тяжестью и распространенностью поражения клеток органа или ткани, а также определяется внутриклеточной локализацией (цитоплазма, митохондрии и др.) соответствующих субстанций. Однако даже в тех клинических ситуациях, когда прямые маркеры указывают на повреждение конкретного органа, это еще не значит установление конкретного диагноза, так как причины повреждения (этиология заболевания) могут быть разными или повышение маркера в крови может свидетельствовать не о повреждении органа, а о факторах, способствующих замедлению его катаболизма и выведению из организма больного (например, повышение уровня тропонина в крови при острой почечной недостаточности).

Непрямые маркеры могут присутствовать во многих органах и тканях. Например, повышение активности КК может встречаться не только при повреждении миокарда, но и отражать повреждение мышц, головного мозга. В таких случаях целесообразнее использовать результаты нескольких лабораторных маркеров повреждения или различные косвенные показатели повреждения, свидетельствующие о снижении функций органа, то есть позволяющие оценивать выраженность повреждения по степени нарушения функции органа. Вероятностная связь отклонений в результатах непрямых маркеров с определенной нозологией существенно ниже.

Для врача-клинициста установление связи выявленных отклонений в анализах с определенной патологией - это процесс сопоставления клинической и лабораторной информации о больном. При этом может выявляться достаточно большой процент несовпадений клинических и лабораторных данных, который может трактоваться односторонне: как правильность данных клинической диагностики и ошибку при проведении лабораторных исследований либо, наоборот, правильность лабораторных данных и неспецифичность клинических. Одной из причин этого явления может быть недостаточно ясное понимание врачом-клиницистом места лабораторных методов исследования и их возможностей в конкретной клинической ситуации. В таком случае врач-клиницист должен еще раз проанализировать ситуацию на предмет возможности выявить предполагаемое заболевание с помощью назначенных лабораторных тестов. Второй причиной, о которой должен задуматься врач, является то, что отклонения в результатах лабораторных анализов могут не иметь отношения к предполагаемой болезни, по поводу которой пациент обратился к врачу.

Таким образом, процесс постановки диагноза несовершенен, то есть при использовании эмпирического подхода к оценке вероятности взаимосвязи изменений в результатах лабораторных тестов с определенной патологией клиницист может лишь предполагать, что диагноз верен, нежели утверждать это со всей определенностью. Именно поэтому степень уверенности в клиническом диагнозе клиницисты выражают, предваряя его формулировку словами «исключается…​» или «возможно…​».

Тем не менее за многие десятилетия использования результатов лабораторных исследований для постановки диагноза клиническая практика сформулировала целый ряд эмпирических правил, которыми должен владеть каждый врач при оценке вероятности между изменениями в результатах лабораторных тестов и наличием заболевания. К таким правилам относятся следующие:

  1. необходимо всегда помнить, что диапазоны референтных величин являются статистическими величинами 95% популяции, и отклонения за пределы диапазона не обязательно говорят о наличии патологии. Результаты исследований могут уложиться в пределы референтных величин, но они будут выше или ниже базовых показателей (нормальных величин) для данного пациента, поэтому в некоторых случаях надо проводить серию исследований, чтобы получить представление относительно имеющихся результатов;

  2. диагноз никогда не ставится по одному результату исследования, необходимо установить тенденцию изменения полученных результатов. Отклонения сразу в нескольких показателях всегда более достоверны и значимы, чем отклонения только одного показателя. Если отклонения в двух или трех тестах характерны для данной патологии, то это с большей вероятностью подтверждает диагноз, чем если имеется отклонение только одного показателя;

  3. чем больше степень отклонения результата от референтной величины, тем выше достоверность патологии, или это свидетельствует о том, что имеющаяся патология весьма значительна;

  4. правило У. Ослера (канадский врач, терапевт, патолог): если больной моложе 60 лет, то постарайтесь объяснить патологические результаты одной причиной, если этого не удается, то ищите вторую причину;

  5. патологические результаты должны быть повторены, чтобы подтвердить их и определить тенденцию их изменений;

  6. результаты лабораторных исследований, полученные даже в самых лучших лабораториях, не являются абсолютными (то есть не обладают 100% чувствительностью, специфичностью, предсказательной ценностью), в любом конкретном случае они могут ввести клинициста в заблуждение.

Несмотря на то что эти правила характеризуются как эмпирические, тем не менее они нашли широкое подтверждение в современных международных клинических рекомендациях, в основу которых положены принципы доказательной медицины. Например, в третьем универсальном определении ИМ, принятом Американской коллегией кардиологов и Американской кардиологической ассоциацией в 2012 г., дано следующее определение ИМ: «Выявление повышения и/или снижения значений концентрации кардиомаркера (предпочтительно кардиального тропонина), по крайней мере, на одно значение, характерное для 99-го процентиля, соответствующего верхнему референтному значению», то есть «≥2 х 99-й процентиль при CV <10%». Как видно из данного определения, для постановки диагноза ИМ необходимо повторное определение уровня кардиального тропонина, одного недостаточно, то есть нужна динамика изменений уровня тропонина. Это обусловлено тем, что некоронарогенные заболевания сердечной мышцы (миокардиты, травма сердца, кардиоверсия) также могут сопровождаться повышением уровня тропонина в крови, однако динамика изменения, характерная для ИМ при этих заболеваниях, отсутствует. Кроме того, для оценки результатов определения тропонина в качестве референтной величины необходимо использовать не статистические величины 95% популяции, а статистические значения 99% популяции, а отклонения в результатах маркера должны в 2 раза превышать значение референтного интервала. Таким образом, в данном определении ИМ подтверждаются первые три эмпирических правила использования результатов анализов для постановки диагноза.

Еще одним примером научной доказательности эмпирических правил служат критерии диагностики антифосфолипидного синдрома, которые были сформулированы в октябре 1998 г. на VIII Международном симпозиуме по антифосфолипидным антителам в Саппоро (Япония). Согласно этим международным рекомендациям, лабораторными критериями антифосфолипидного синдрома являются изменения результатов двух тестов наряду с клиническими проявлениями заболевания:

  1. умеренный или высокий уровень антикардиолипиновых антител класса IgG и/или IgM в крови в двух исследованиях или более, полученных с интервалом не менее 6 нед, измеренных путем стандартного ИФА для р2-гликопротеин-1-зависимых антикардиолипиновых антител;

  2. позитивный волчаночный антикоагулянт в плазме в двух исследованиях или более, полученных с интервалом не менее 6 нед. Пациенты с антифосфолипидным синдромом должны иметь не менее одного клинического и одного лабораторного критерия.

Еще раз необходимо подчеркнуть, что при использовании эмпирического подхода для нозологической оценки результатов лабораторных исследований первостепенное значение имеют знания врача о клинической информативности лабораторных тестов и умение установить наличие связи выявленных отклонений в анализах с определенной патологией.

Основным недостатком эмпирического подхода является отсутствие возможности количественной оценки вероятности связи изменений в результатах тестов и наличием патологии. Статистические методы позволяют преодолеть этот недостаток и количественно оценить вероятность связи изменений в результатах того или иного лабораторного теста с наличием определенного заболевания. Именно поэтому в настоящее время уверенность в диагнозе все чаще выражается через вероятности. В связи с этим врач должен понимать статистическую суть диагностической ценности лабораторных тестов в различных клинических ситуациях. Как правило, это помогает врачу уменьшить степень неопределенности диагноза с помощью того или иного результата лабораторного теста, в ряде случаев убедиться в его неопределенности, а иногда - лишь осознать степень своей неуверенности в диагнозе.

Соотношение между результатом лабораторного теста и точным диагнозом схематически представлено на рис. 2.65. Результат теста может быть либо положительным (патология), либо отрицательным (норма), а заболевание может либо быть, либо отсутствовать. Возможны четыре варианта толкования результатов теста - два истинных и два ложных. Правильный ответ - это положительный результат при наличии заболевания или отрицательный - при его отсутствии. Напротив, ответ ошибочный, если результат теста положительный (ложноположительный), хотя человек здоров, или отрицательный (ложноотрицательный), хотя человек болен.

Напомним, что основными характеристиками лабораторного теста являются их диагностическая чувствительность и специфичность.

pic 0103
Рис. 2.65. Соотношение между результатами лабораторного теста и наличием заболевания

Вероятность положительного результата диагностического теста в присутствии болезни называется чувствительностью метода, а вероятность отрицательного результата при отсутствии болезни - его специфичностью.

Чувствительность и специфичность - это характеристики лабораторного теста, которые необходимо учитывать при решении вопроса о том, следует ли назначать данный тест. Но если тест назначен и получены результаты его исследования (положительные или отрицательные), понятия чувствительности и специфичности теряют смысл. Для клинициста теперь важнейшее значение имеет проблема - как велика вероятность того, что болезнь имеется на самом деле, если результат теста положительный, или с какой надежностью можно исключить ее, если тест отрицательный. На эти вопросы можно ответить, используя предсказательную ценность (ПЦ) положительного (ПЦ+) и отрицательного (ПЦ-) теста.

ПЦ+ - это вероятность заболевания при положительном (патологическом) результате теста. ПЦ- - вероятность отсутствия заболевания при отрицательном (нормальном) результате теста. Знание предсказательной ценности теста позволяет врачу ответить на вопрос: «Какова вероятность того, что данный пациент страдает (не страдает) определенным заболеванием, если у него результат теста положителен (отрицателен)?»

ПЦ теста по отношению к определенной болезни (посттестовая вероятность) зависит не только от его специфичности и чувствительности, но и от распространенности самой болезни. Предсказательную ценность положительного результата (ПЦ+) теста по отношению к определенному заболеванию можно рассчитать по формуле:

image

Распространенность заболевания называется также претестовой вероятностью, то есть это вероятность выявления болезни до того, как стали известны результаты теста. Как оценить претестовую вероятность заболевания у пациента, чтобы вычислить ПЦ того или иного результата теста? Существует несколько источников информации: медицинская литература, архивы медицинских учреждений, личный опыт каждого врача.

ПЦ связана с референтной величиной и зависит от процента истинных тестов, как положительных, так и отрицательных, по отношению к ложным. Чем чувствительнее тест, тем выше ПЦ его отрицательного результата (то есть возрастает уверенность врача, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Наоборот, чем специфичнее тест, тем выше ПЦ его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз). Поскольку распространенность заболевания влияет на ПЦ теста, последняя неизбежно зависит от условий его применения. Если положительные результаты даже высокоспецифичного лабораторного теста получены в популяции с низкой вероятностью заболевания, то они окажутся преимущественно ложноположительными. Аналогично отрицательные результаты высокоспецифического теста, полученные в популяции с высокими шансами наличия заболевания, скорее всего, будут ложно-отрицательными. Таким образом, интерпретация ПЦ положительного () или отрицательного (-) результата лабораторного теста меняется в зависимости от распространенности заболевания. Тест с высокой ПЦ эффективен при обследовании контингента с высокой распространенностью патологии, например, больных в специализированном отделении стационара, тогда как при обследовании амбулаторных пациентов более полезен тест с высокой ПЦ-. Точно так же влияет на предсказательную ценность теста степень вероятности диагноза: если вероятность диагноза низка, возрастает ценность теста с ПЦ-, если велика - более ценен тест с ПЦ+.

pic 0105
Рис. 2.66. Взаимоотношения чувствительности, специфичности и предсказательной ценности лабораторных тестов в матрице решения

Взаимоотношения чувствительности, специфичности и предсказательной ценности лабораторных тестов представлены на рис. 2.66.

Если представить себе популяцию, в которой ни у кого нет рассматриваемого заболевания, то все положительные результаты в такой группе, даже при очень специфичном тесте, будут ложноположительными. Следовательно, когда распространенность заболевания стремится к нулю, предсказательная ценность положительного результата теста также стремится к нулю. Наоборот, если данная болезнь есть у каждого в исследуемой популяции, все отрицательные результаты даже высокочувствительного теста окажутся ложноотрицательными. Когда распространенность стремится к 100%, предсказательная ценность отрицательного результата теста стремится к нулю.

Так, если назначать тесты для поиска феохромоцитомы у всех пациентов с артериальной гипертонией, то предсказательная ценность теста с высоким уровнем ПЦ+ результатов окажется ниже, чем в случае назначения того же теста пациентам с артериальной гипертонией, протекающей преимущественно пароксизмально и сопровождающейся некоторыми другими характерными проявлениями гиперкатехоламинемии. Проиллюстрируем приведенные рассуждения расчетами предсказательной ценности положительного результата в отношении диагностики феохромоцитомы для метода определения в моче повышенной концентрации свободного норметанефрина.

Феохромоцитома обнаруживается примерно у 0,3-0,7% (претестовая вероятность) больных артериальной гипертензией, а среди злокачественно текущих форм - у 10-15% (Дедов И.И., 1995). Чувствительность метода определения свободного норметанефрина в суточной моче для диагностики феохромоцитомы составляет 89-100%, специфичность - 98% (Wallach J.M.D., 1996). Первоначально рассчитаем ПЦ+ результата для этого метода, если бы он был назначен для всех больных артериальной гипертензией. За чувствительность теста возьмем 90% (0,9 усл.ед.), за распространенность - 0,5% (0,005 усл.ед.).

image

Приведенный пример показывает, что претестовая вероятность заболевания оказывает большое влияние на посттестовую вероятность (ПЦ). Из приведенных ниже данных следует, что при использовании теста с 90% чувствительностью и специфичностью посттестовая вероятность может варьировать от 8 до 99% в зависимости от претестовой вероятности. Более того, как только претестовая вероятность болезни снижается, то становится менее вероятным (посттестовая вероятность) то, что пациент с положительным тестом болен, и становится более вероятным, что результат теста является ложноположительным.

Влияние претестовой вероятности на посттестовую вероятность заболевания приведено в табл. 2.61.

Таблица 2.61. Влияние претестовой вероятности на посттестовую вероятность заболевания, когда используется тест с 90% чувствительностью и 90% специфичностью
Претестовая вероятность Посттестовая вероятность

0,01

0,08

0,5

0,9

0,99

0,999

В своих исследованиях Р. Флетчер и соавт. (1998) показали, что, если назначить исследование простатоспецифического антигена (ПСА) для диагностики рака предстательной железы всем пожилым мужчинам, у которых отсутствуют какие-либо симптомы, а распространенность рака предстательной железы составляет 6-12% (претестовая вероятность), то посттестовая вероятность составит только 15% при уровне ПСА 4 нг/мл (чувствительность - 90%, специфичность - 60%). При исследовании уровня ПСА в группе более высокого риска (с симптомами или вызывающими подозрение результатами пальцевого ректального исследования), где претестовая вероятность составляла 26%, посттестовая вероятность составит 40% при уровне ПСА 4 нг/мл и более. Наконец, при определении ПСА у пациентов с обнаруженным узлом в предстательной железе при ректальном исследовании, наличием болей в костях, разрежением в костях при рентгенологическом исследовании претестовая вероятность составляет 98%, а посттестовая - 99%.

Этот пример показывает, что претестовая вероятность оказывает огромное влияние на посттестовую вероятность и что тесты дают больше информации, когда диагноз действительно неопределенный (претестовая вероятность - около 26%), чем при маловероятном (претестовая вероятность - 6-12%) или почти несомненном (претестовая вероятность - 98%) диагнозе.

Приведенные рассуждения показывают, что оценка претестовой вероятности является такой же важной частью процесса постановки диагноза, как чувствительность и специфичность лабораторного теста. В связи с этим в клинической практике очень важно выбрать оптимальный тест, так как тест с более низкой чувствительностью и специфичностью у опытного врача-хирурга (на основании личного опыта у него высокая претестовая вероятность) на основании клинической картины заболевания может дать ту же самую посттестовую вероятность, что и тест с большей чувствительностью и специфичностью у менее опытного клинициста.

Продемонстрируем это на примере диагностики острого панкреатита. В табл. 2.62 приведены чувствительность и специфичность основных тестов, используемых для диагностики острого панкреатита.

Таблица 2.62. Диагностическая чувствительность и специфичность лабораторных тестов для острого панкреатита
Лабораторный тест Чувствительность, % Специфичность, %

Общая а-амилаза в сыворотке

83-95

88

Панкреатическая а-амилаза в сыворотке

92-95

85-93

Липаза в сыворотке

86-94

96-99

Трипсиноген в сыворотке

92-100

75-87

Эластаза-1 в сыворотке

92-100

84-96

Трипсин-антитрипсиновый комплекс в сыворотке

97-100

87-98

Фосфолипаза в сыворотке

34-57

75-80

Трипсиноген II в моче

88-98

93-97

У клинициста на основании анамнеза, клинической картины заболевания, данных объективного осмотра претестовая вероятность у больного острого панкреатита может варьировать очень широко - от 7 до 59%, составляя в среднем 21% (Buchler M.W. et al., 1999). Это значит, что если врач будет оценивать вероятность острого панкреатита у больного на основании только данных клинического обследования, то один из пяти пациентов с подозрением на острый панкреатит будет иметь острый панкреатит. Начиная от этой 21% претестовой вероятности заболевания или его отсутствия (79%) и принимая во внимание чувствительность и специфичность тестов, представленных в табл. 2.62, посттестовая вероятность острого панкреатита будет 65%, если она базируется только на положительном результате исследования общей амилазы в сыворотке крови (табл. 2.63). Такая посттестовая вероятность не является достаточной для подтверждения диагноза острого панкреатита. В случае если активность амилазы будет в норме, посттестовая вероятность составит только 6%. Эти показатели лучше для панкреатической амилазы и значительно лучше для липазы (табл. 2.63). Если активность липазы в сыворотке крови выше нормы, вероятность острого панкреатита достигает 86%, то есть вероятность острого панкреатита у больного увеличивается с 21 до 86% и, соответственно, эта вероятность будет 1,6% при нормальной активности липазы.

Таблица 2.63. Диагностическая чувствительность, специфичность, предсказательная ценность положительного и отрицательного результатов лабораторных тестов для острого панкреатита при претестовой вероятности 21% (Buchler M.W. et al., 1999)
Лабораторный тест Чувствительность, % Специфичность, % ПЦ+, % ПЦ-, %

Общая а-амилаза в сыворотке

83

88

65

6

Панкреатическая а-амилаза в сыворотке

95

93

78

1,4

Липаза в сыворотке

94

96

86

1,6

Активность липазы в крови остается повышенной более длительное время, чем общей амилазы и панкреатической амилазы, в связи с этим диагностическая эффективность исследования липазы значительно выше при остром панкреатите, чем любой из амилаз, начиная со вторых суток заболевания.

При претестовой вероятности 50% и положительном результате исследования общей амилазы в сыворотке крови (чувствительность - 83%) посттестовая вероятность острого панкреатита составит уже 87%.

В табл. 2.64 и 2.65 приведены диагностические критерии у больных ИМ для различных тестов.

Приведенные примеры показывают, что претестовая вероятность заболевания оказывает большое влияние на посттестовую вероятность. Несколько тестов, проведенных параллельно, обеспечивают, как правило, более высокую чувствительность, а следовательно, и большую ПЦ - при данной патологии, чем каждый тест в отдельности.

Таким образом, ПЦ лабораторного теста (посттестовая вероятность) - наиболее адекватная характеристика для интерпретации его результатов. Она определяется не только чувствительностью и специфичностью теста, но и претестовой вероятностью. Обычно, для того чтобы получить достаточно надежный диагноз, приходится использовать несколько лабораторных тестов параллельно или последовательно.

Использование приведенных подходов к оценке результатов лабораторных исследований существенно усиливает методический уровень клинической практики, помогая точнее оценить вероятность наличия или отсутствия острого панкреатита у больного.

Таблица 2.64. Диагностические критерии у больных инфарктом миокарда для различных тестов

Критерий

ИМ

Всего обследовано

без ИМ = 131, ИМ = 177

без ИМ = 73, ИМ = 28

КК

КК-МВ

тропонин Т

КК

КК-МВ

тропонин Т

Диагностическая чувствительность, %

99

98

100

100

100

100

Диагностическая специфичность, %

71

95

97

0

49

95

ПЦ+, %

83

97

98

28

43

82

ПЦ-, %

99

98

100

100

100

100

Диагностическая эффективность, %

87

97

99

28

63

94

Таблица 2.65. Диагностические критерии у больных инфарктом миокарда для различных тестов
Критерий Клиническая картина Электрокардиография АСТ/АЛТ КК КК-МВ Миоглобин

Диагностическая чувствительность, %

85

74-96

64

94

74

97

Диагностическая специфичность, %

79

59-100

92

57

92

57

ПЦ+, %

0,58

-

0,72

0,41

0,83

0,64

ПЦ-, %

0,95

-

0,88

0,97

0,95

0,98

Другой путь оценки эффективности диагностического теста - использование отношений правдоподобия (ОП), которые обобщают ту же информацию, что и показатели чувствительности и специфичности, и могут использоваться для вычисления вероятности болезни (посттестовой вероятности) на основании положительного или отрицательного результата теста.

ОП для конкретного результата диагностического теста называется отношение вероятности данного результата у лиц с заболеванием к вероятности этого же результата у лиц без заболевания. ОП показывает, во сколько раз выше (или ниже) вероятность получить данный результат теста у больных, чем у здоровых. Если оценка теста проводится дихотомически (положительный-отрицательный), то его способность различать больных и здоровых соответствует двум типам: один тип связан с положительным результатом теста, другой - с отрицательным.

Отношения правдоподобия положительного ОП+ или отрицательного результата ОП- рассчитывают следующим образом:

image

Величины ОП можно найти в некоторых учебниках, медицинских журналах и компьютерных программах (табл. 2.66) или рассчитать по приведенным формулам.

Наиболее простым способом расчета посттестовой вероятности, зная претестовую вероятность (распространенность заболевания) и ОП, является использование номограммы (рис. 2.67). Клиницист помещает линейку так, чтобы ее край прошел через точки, которые представляют собой претестовую вероятность, и ОП, и отмечает точку пересечения линии посттестовой вероятности.

Таблица 2.66. Примеры отношений правдоподобия для некоторых тестов
Тест Заболевание ОП(+) ОП(-)

Карциоэмбриональный антиген

Рак толстой кишки (стадия А по Dukes)

1,6

0,87

КК-МВ

ИМ

32

0,05

Индекс сТ4

Гипертиреоз

6,8

0,06

Ферритин

Железодефицитная анемия

85

0,15

Антинуклеарные антитела

Системная красная волчанка

4,5

0,13

pic 0108
Рис. 2.67. Номограмма для определения посттестовой вероятности заболевания исходя из претестовой вероятности и отношения правдоподобия

Другим способом оценки посттестовой вероятности с использованием ОП является расчет по следующей формуле:

претестовые шансы х ОП = посттестовые шансы.

Для того чтобы использовать приведенную формулу, вероятности должны быть превращены в шансы. Шансы и вероятность (претестовая или посттестовая) содержат одну и ту же информацию, но по-разному выражают ее:

image

В дальнейшем, зная претестовые шансы и ОП положительного (отрицательного) результата теста, путем их перемножения можно получить посттестовые шансы или шансы того, что у пациента есть болезнь, если тест положительный или отрицательный.

Например, клиницист полагает, что пациент имеет вероятность 60% за то, что у него есть ИМ (претестовые шансы 3:2), а результат исследования КК-МВ повышен (положительный). В табл. 2.64 находим ОП положительного результата исследования КК-М - 32 и отрицательного результата исследования КК-МВ - 0,05. Тогда посттестовые шансы наличия ИМ будут:

image

Главное преимущество ОП состоит в том, что они помогают выйти за рамки грубой оценки результатов лабораторного теста (либо норма, либо патология), с которой сталкивается клиницист, если оценивает точность диагностического теста, используя только понятия чувствительности и специфичности при единственной точке разделения. Однако для большинства лабораторных тестов достичь этого не удается. В подобных ситуациях положение точки разделения (cutoff) на непрерывном переходе между нормой и патологией устанавливается произвольно. ОП можно определять для любого количества результатов теста по всему диапазону допустимых значений. Очевидно, что наличие заболевания более вероятно при крайнем отклонении результата теста от нормы, чем в случае результата, близкого к границе нормы. При таком подходе клиницист получает информацию о степени отклонения от нормы, а не только о факте наличия или отсутствия болезни. При вычислении ОП внутри некоторого диапазона значений результатов теста под чувствительностью понимается уверенность врача при использовании конкретного результата теста для идентификации лиц с заболеванием, а не с той или иной степенью отклонения от нормы. То же относится и к специфичности. Обычно ОП() больше 10 или ОП(-) меньше 0,1 дает для диагностики почти окончательное решение. ОП() от 5 до 10 и ОП(-) от 0,1 до 0,2 дает умеренные основания для диагностического решения. ОП() от 2 до 5 и ОП(-) от 0,5 до 0,2 мало дает для изменения оценки вероятности болезни у пациента. ОП() и ОП(-) от 0,5 до 2,0 почти не изменяет вероятности (шансы) болезни у пациента. Проиллюстрируем данные рассуждения примером определения уровня Т4 в крови пациентов для диагностики гипотиреоза (табл. 2.67).

Таблица 2.67. Распределение концентраций тироксина в сыворотке у пациентов с гипотиреозом и без него (Флетчер Р. и др., 1998)

pic 0111

Величины ОП для гипотиреоза наибольшие при низких концентрациях Т4 и наименьшие - при высоких концентрациях. Наименьшие значения концентрации Т4 (менее 4,0 мкг/дл) обнаружены только у больных гипотиреозом, то есть наверняка подтверждают диагноз. Самые высокие концентрации Т4 (более 8 мкг/дл) у больных гипотиреозом вообще не наблюдаются, то есть они отвергают диагноз.

Таким образом, показатель ОП отвечает разумной клинической практике, когда при оценке вероятности заболевания больший вес придается крайне высоким (или низким) результатам теста, а не пограничным между нормой и патологией. ОП особенно удобно использовать для определения вероятности заболевания, когда применяется несколько диагностических тестов последовательно.

Поскольку в клинической практике применяются лабораторные тесты, чувствительность и специфичность которых ниже 100%, вероятность заболевания при использовании только одного теста часто определяется как не очень высокая и не очень низкая, где-то между 10 и 90%. Как правило, получив такой результат, врач не может прекращать диагностический поиск. В подобных ситуациях он старается значительно повысить или понизить вероятность обнаружения заболевания (посттестовую вероятность) и продолжает обследование пациента, применяя дополнительные тесты.

Когда использовано несколько тестов и все они положительные (патологические) или все отрицательные (нормальные), их смысл очевиден. Гораздо чаще бывает так, что результаты одних тестов положительные, а других - отрицательные. Тогда их клиническая оценка усложняется.

Существует два способа применения нескольких тестов: параллельный (несколько тестов одновременно, причем положительный результат любого из них рассматривается в пользу наличия болезни) и последовательный с учетом результатов предыдущего теста. При последовательном подходе для постановки диагноза все тесты должны дать положительный результат, поскольку в случае отрицательного результата диагностический поиск прекращается.

Несколько тестов назначают параллельно, когда необходима быстрая оценка состояния, например у госпитализированных больных при неотложных состояниях или же у амбулаторных пациентов, прибывших для обследования на короткое время.

Несколько тестов, проведенных параллельно, обеспечивают, как правило, более высокую чувствительность, а следовательно, и большую ПЦ- при данной патологии, чем каждый тест в отдельности. В то же время снижаются специфичность и ПЦ положительного результата теста. Таким образом уменьшается вероятность того, что заболевание будет пропущено, но одновременно возрастает вероятность ложноположительных диагнозов.

Параллельное использование нескольких тестов особенно полезно в ситуации, когда нужен очень чувствительный тест, но реально имеется несколько относительно малочувствительных тестов. Благодаря параллельному использованию нескольких тестов повышается общая чувствительность диагностического процесса. Платой за такое повышение чувствительности является обследование или лечение некоторого числа пациентов, у которых изучаемое заболевание отсутствует.

Последовательное применение нескольких диагностических тестов предпочтительнее в клинических ситуациях, не требующих быстрой оценки состояния больного, например, в амбулаторной практике. Кроме того, последовательное применение диагностических тестов целесообразно, если встает вопрос о дорогостоящем или рискованном исследовании (например, инвазивном). Такой метод исследования обычно назначают только после положительных результатов применения неинвазивных методов. Например, при высоком риске рождения ребенка с синдромом Дауна сначала проводят исследование крови матери на а-фетопротеин, хорионический гонадотропин, свободный эстриол, ингибин А, что повышает вероятность диагностики синдрома у плода до 76%, и лишь затем беременным предлагается амниоцентез (Wald N.J. et al., 1997). Последовательное применение тестов по сравнению с параллельным уменьшает объем лабораторных исследований, так как каждый последующий тест учитывает результаты предыдущего. Вместе с тем последовательное применение тестов требует большего времени, так как очередной лабораторный тест назначается только после получения результатов предыдущего.

При последовательном применении тестов повышаются специфичность и ПЦ+ (посттестовая вероятность), но снижаются чувствительность и ПЦ-. В итоге возрастает уверенность клинициста в том, что положительный результат теста подтверждает наличие предполагаемой болезни, но одновременно возрастает риск пропустить заболевание. Последовательное применение тестов особенно полезно, когда ни один из имеющихся в распоряжении методов диагностики не обладает высокой специфичностью. Если врач собирается применить два теста последовательно, то эффективнее назначить сначала тест с большей специфичностью.

При последовательном применении тестов (А, В, С) ОП позволяют рассчитывать посттестовую вероятность заболевания с использованием результатов всех тестов:

претестовые шансы х ОП теста А х ОП теста В х ОП теста С = посттестовые шансы.

Таким образом, предсказательная ценность лабораторного теста (посттестовая вероятность) - наиболее адекватная характеристика для интерпретации его результатов. Она определяется не только чувствительностью и специфичностью теста, но и распространенностью заболевания в популяции. Обычно, для того чтобы получить достаточно надежный диагноз, приходится использовать несколько лабораторных тестов параллельно или последовательно.

В заключении данного раздела необходимо еще раз подчеркнуть, что приведенные статистические методы оценки посттестовой вероятности подтверждают выработанные десятилетиями клинической практикой эмпирические правила нозологической оценки результатов лабораторных исследований (взаимосвязи изменений в результатах лабораторных тестов с определенной патологией) и позволяют количественно выражать эту вероятность. Сравнительная характеристика эмпирических правил и статистических методов в оценке вероятности взаимосвязи изменений в результатах лабораторных тестов с определенной патологией приведена в табл. 2.68.

Таблица 2.68. Сравнение эмпирических правил и статистических методов
Эмпирическое правило Статистическая оценка

Диагноз никогда не ставится по одному результату исследования, необходимо установить тенденцию изменения полученных результатов. Отклонения сразу в нескольких показателях всегда более достоверны и значимы, чем отклонения только одного показателя

Несколько тестов, проведенных параллельно, обеспечивают, как правило, более высокую чувствительность, а следовательно, и большую ПЦ- при данной патологии, чем каждый тест в отдельности

Чем больше степень отклонения результата от референтной величины, тем выше достоверность наличия патологии, или это свидетельствует о том, что имеющаяся патология весьма значительна

ОП+ больше 10 или ОП- меньше 0,1 дает для диагностики почти окончательное решение.

ОП+ от 5 до 10 и ОП- от 0,1 до 0,2 дает умеренные основания для диагностического решения.

ОП+ от 2 до 5 и ОП- от 0,5 до 0,2 мало дает для оценки вероятности болезни

Результаты лабораторных исследований, не обладают 100% чувствительностью, специфичностью, ПЦ

Посттестовая вероятность острого панкреатита - 65%, если она базируется только на результате исследования общей амилазы и 86%, если активность липазы в сыворотке крови выше нормальных величин

2.6.2. ЭФФЕКТИВНОЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ЛЕЧЕБНО-ДИАГНОСТИЧЕСКОМ ПРОЦЕССЕ

Для того чтобы принять правильное решение о лечении пациента, что является ключевым моментом всей деятельности врача-клинициста, доказать научную обоснованность принятого решения, ему необходимо овладеть всеми доступными методическими подходами оценки и эффективного использования результатов лабораторных анализов. От того, насколько хорошо врач-клиницист умеет использовать лабораторную информацию, во многом зависит качество оказания медицинской помощи пациенту. Неумелое использование этой информации может во многом обесценить самые точные и своевременно полученные результаты, а в ряде случаев нанести вред больному. Следует подчеркнуть, что эффективное использование результатов анализов клиницистом во многом определяется осознанным пониманием целей назначения каждого теста при составлении заявки на исследование.

Учитывая, что для результатов подавляющего числа лабораторных анализов можно получить количественное выражение, которое предоставляет огромные диагностические возможности, врач-клиницист должен уметь их эффективно использовать. Одно и то же количественное выражение результата анализа может быть использовано как для постановки диагноза, так и для обоснования правильного лечения, выбора адекватного метода лечения или профилактики заболевания, объективного подтверждения достижения целей лечения, определения прогноза, принятия решения о прекращении лечения. Например, количественное выражение скорости клубочковой фильтрации определяет стадию хронической болезни почек, может быть использовано в качестве самостоятельного критерия диагностики болезни (значения ниже 60 мл/мин/1,73 м2), дифференциальной диагностики с заболеваниями, при которых могут вторично нарушаться функции почек, определения ближайшего и отдаленного прогноза [почечного (риска развития терминальной почечной недостаточности) - снижение скорости клубочковой фильтрации на не менее 2,5 мл/мин/1,73 м2 в год и общего - в первую очередь сердечно-сосудистого], так как существует тесная корреляция снижения значений скорости клубочковой фильтрации с выживаемостью и риском развития сердечно-сосудистых осложнений (значения скорости клубочковой фильтрации ниже 60 мл/ мин/1,73 м2 и альбуминурия не менее 30 мг/л), мониторинга и оценки темпов прогрессирования заболевания, оценки эффективности иммуносупрессивной и нефропротективной терапии, прогноза ответа на лечение, определения показаний к началу гемодиализа (значения ниже 15 мл/мин/1,73 м2).

Рассмотрим эти многогранные возможности использования лабораторной информации.

2.6.2.1. Использование результатов лабораторных исследований для постановки диагноза

Постановка диагноза - это процесс синтеза результатов проведенного клинического обследования и дифференциально-диагностического анализа. По степени достоверности диагнозы делят на предварительный, клинический и заключительный. При постановке каждого из них применяется дифференциально-диагностический анализ, который позволяет на каждом определенном этапе исключить возможные заболевания и обосновать диагноз у данного больного. Заключением диагностического процесса является переход от абстрактно-формального диагноза болезни к конкретному диагнозу (диагнозу больного), который в полном виде представляет совокупность морфологического, функционального, этиологического, патогенетического, симптоматического, конституционального и социального распознавания, то есть синтез - установление единства различных сторон состояния данного больного, его индивидуальности и его краткое изложение в виде диагноза. Диагноз больного служит обоснованием индивидуализации лечения и проведения профилактических мероприятий.

За последние годы мировым врачебным профессиональным сообществом разработаны критерии диагностики многих заболеваний, основанные на принципах доказательной медицины. В отношении постановки диагноза многих заболеваний результаты лабораторных анализов выступают в качестве таких критериев.

В настоящее время результаты лабораторных исследований оказывают большое влияние на правильную постановку диагноза, а целый ряд заболеваний (вирусные гепатиты А, В, С, Е, СПИД) вообще не могут быть диагностированы без лабораторных данных.

Свой вклад в установление нозологической принадлежности болезни результаты лабораторных тестов осуществляют двумя путями. Один из них заключается в практическом соотношении результатов анализов, обладающих практически 100% специфичностью, с соответствующим заболеванием. Второй путь состоит в синдромной оценке всей совокупности получаемых при обследовании больного данных, в котором результаты тестов являются одним из составляющих этой совокупности. Другими словами, данный подход предусматривает использование главных и дополнительных клинических симптомов и отклонений в результатах лабораторных исследований, наличие совокупности которых необходимо для подтверждения диагноза. Второй путь обеспечивает надежность диагностики за счет четкого определения каждой категории в диагностической системе. Он предусматривает выделение дискриминирующих, а не просто характерных симптомов (включая лабораторные), которые, как правило, наблюдаются при данном заболевании, но редко встречаются при других болезнях. Рассмотрим несколько примеров, использования результатов лабораторных исследований в качестве критериев постановки диагноза.

Сахарный диабет по частоте встречаемости среди населения занимает третье место в мире после сердечно-сосудистых и онкологических заболеваний. Распространенность болезни в нашей стране составляет 3-4% от всего населения. Число известных больных - примерно 1/2 от фактического количества. По данным ВОЗ, прогнозируется двукратное увеличение числа больных сахарным диабетом каждые 15 лет. В 2010 г. Американская диабетическая ассоциация приняла новые критерии диагностики сахарного диабета:

  1. HbA1c >6,5%;

  2. или клинические симптомы сахарного диабета и случайно выявленное повышение концентрации глюкозы в плазме крови ≥11,1 ммоль/л (≥200 мг%);

  3. или уровень глюкозы в плазме крови натощак - ≥7,1 ммоль/л (≥126 мг%);

  4. или через 2 ч после пероральной нагрузки глюкозой [75 г декстрозы (Глюкозы*)] - >11,1 ммоль/л (>200 мг%).

Задачей лабораторного исследования при подозрении на наличие сахарного диабета является выявление или подтверждение наличия у пациента абсолютной или относительной недостаточности инсулина. Основные биохимические признаки недостаточности инсулина: гипергликемия натощак или выходящее за пределы нормы повышение уровня глюкозы после еды, глюкозурия и кетонурия. При наличии клинических симптомов сахарного диабета лабораторные исследования необходимы, прежде всего, для подтверждения клинического диагноза. При отсутствии симптомов результаты лабораторных исследований сами по себе позволяют поставить точный диагноз.

В настоящее время синдром Х чаще называют метаболическим синдромом. Он включает абдоминальное ожирение (отложение жира в области живота), нарушение толерантности к глюкозе, артериальную гипертензию и дислипидемию (повышение содержания триглицеридов и снижение уровня холестерина ЛПВП в крови). В основе метаболического синдрома лежит инсулинорезистентность - пониженная чувствительность тканей (мышечной, мозга, печени и т.д.) организма человека к действию инсулина. Эти незаметные нарушения в обмене веществ в организме молодых людей первоначально не вызывают беспокойства. Однако в дальнейшем они ведут к формированию тяжелых хронических заболеваний. Критерии диагностики метаболического синдрома приведены в табл. 2.69.

Для постановки диагноза метаболического синдрома необходимо наличие трех факторов, при этом из шести диагностических критериев четыре приходятся на данные результатов лабораторных исследований, то есть лабораторные данные играют ключевую роль в постановке диагноза.

Таблица 2.69. Критерии диагностики метаболического синдрома
Проявления Диагностический критерий

Абдоминальное ожирение

Индекс массы тела >30 кг/м2 и/или отношение окружности талии к окружности бедер у мужчин >0,9, у женщин >0,85

Гиперглицеридемия

Уровень триглицеридов >1,7 ммоль/л (>150 мг/дл)

Гипоальфахолестеринемия

Уровень холестерина ЛПВП <1 ммоль/л (<40 мг/дл) у мужчин и <1,28 ммоль/л (<50 мг/дл) у женщин

Нарушение толерантности к глюкозе или сахарный диабет 2-го типа

Уровень глюкозы натощак <6,7 ммоль/л, а через 2 ч после перорального теста толерантности к глюкозе - 7,8-11,1 ммоль/л.

Уровень глюкозы натощак >6,7 ммоль/л и/или через 2 ч после перорального теста толерантности к глюкозе >11,1 ммоль/л

Артериальная гипертензия

Уровень артериального давления >130/85 мм рт.ст.

Микроальбуминурия

Экскреция альбумина с мочой >20 мг/сут или соотношение альбумина и креатинина >20 мг/г

Подагра (от греч. poclos - «нога», agra - «захват», дословно «нога в капкане») - обменное заболевание, в основе возникновения которого лежит повышение концентрации мочевой кислоты в крови (гиперурикемия), характеризующееся отложением в различных тканях кристаллов уратов в форме моноурата натрия или мочевой кислоты. Натрий урат, который присутствует во внеклеточной жидкости, обладает низкой растворимостью, и при концентрациях чуть выше нормы происходит образование кристаллов натрия урата. При подагре кристаллы мочевой кислоты начинают откладываться в хрящах, синовиальной оболочке и жидкости суставов. Они фагоцитируются нейтрофилами, что сопровождается образованием свободных супероксидных радикалов, и повреждают мембраны лизосом с выходом лизосомальных ферментов, которые разрушают клетки. Свободные радикалы и лизосомальные ферменты вызывают острую воспалительную реакцию в суставе, а синтез цитокинов моноцитами и тканевыми макрофагами поддерживает этот процесс. Клинически это проявляется сильной болью в суставах и их воспалением (острый артрит). Другими проявлениями подагры являются камни в почках с приступами почечной колики и образование тофусов (скопление солей мочевой кислоты в мягких тканях).

Критерии постановки диагноза подагры:

  • уровень мочевой кислоты в сыворотке крови у мужчин выше 0,48 ммоль/л, у женщин - выше 0,36 ммоль/л;

  • наличие подагрических узелков (тофусов);

  • обнаружение кристаллов уратов в синовиальной жидкости или тканях в поляризационном микроскопе уратов (игольчатые кристаллы с двойным отрицательным преломлением, светятся желтым светом, обнаруживаются как в синовиальной жидкости, так и в нейтрофилах);

  • наличие в анамнезе острого артрита, сопровождающегося сильной болью, начавшегося внезапно и стихнувшего в течение 1-2 дней.

Диагноз подагры считается достоверным, если обнаруживают, по крайней мере, два любых признака.

Определение содержания в крови мочевой кислоты имеет особенно большое значение в диагностике бессимптомной гиперурикемии (мочевая кислота в крови у мужчин выше 0,48 ммоль/л, у женщин выше 0,38 ммоль/л) и скрытого развития подагрической почки (у 5% мужчин).

Еще один пример использования результатов лабораторных исследований в качестве критериев для постановки диагноза с позиций доказательной медицины.

Инфекционный эндокардит (ИЭ) - заболевание инфекционной природы с первичной локализацией возбудителя на клапанах сердца, пристеночном эндокарде, протекающее с проявлениями системной инфекции, сосудистыми осложнениями, иммунной реакцией и с высоким уровнем летальности.

С 1994 г. при постановке диагноза ИЭ используются критерии Duke, разработанные научно-исследовательской группой Duke Endocarditis Service из Даремского университета (Университета Дьюка, США). В 2000 г. критерии Duke были пересмотрены и модифицированы Европейским обществом кардиологов (ЕОК) и изложены в виде рекомендаций Европейского общества кардиологов по профилактике, диагностике и лечению ИЭ (2000). Рекомендации обобщили и оценили все имеющиеся доказательства по проблемам ИЭ в целях оказания помощи практическим врачам при принятии клинических решений с учетом влияние на исход, а также соотношение риска и пользы диагностических или терапевтических процедур. В дальнейшем критерии Duke пересматривались и модифицировались ЕОК в 2004 и 2009 гг. В октябре 2015 г. ЕОК выпустило новые рекомендации по ведению ИЭ. Эти рекомендации были разработаны путем консенсуса экспертов после тщательного изучения научных публикаций по проблемам ИЭ. Модифицированные критерии Duke для диагностики ИЭ приведены ниже.

Модифицированные критерии Duke для диагностики ИЭ.

Большие критерии ИЭ.

  1. Положительный посев крови, характерный для ИЭ:

    1. а) типичные микроорганизмы, выделенные в двух отдельных культурах крови:

      • Viridans streptococci, Streptococcus gallolyticus (Streptococcus bovis), HACEK group, Staphylococcus aureus;

      • или Community-acquired (внебольничные) enterococci при отсутствии первичных очагов;

    2. б) или микроорганизмы, ассоциирующиеся с ИЭ, в постоянно положительной гемокультуре:

      • не менее двух положительных гемокультур, взятых с интервалом более 12 ч;

      • или все три или более четырех раздельно взятых культур крови (взятые с интервалом не менее 1 ч);

    3. в) или один положительный посев крови на Coxiella burnetii, или выявление антител IgG в первой фазе в титре более 1:800.

  2. Данные методов визуализации позитивные для ИЭ:

    1. а) эхокардиограмма положительная для ИЭ:

      • вегетации;

      • абсцесс, псевдоаневризма, внутрисердечная фистула;

      • клапанная перфорация или аневризма;

      • новая частичная несостоятельность протезированного клапана;

    2. б) аномальная активность вокруг места имплантации протезированного клапана, обнаруженная с использованием меченной 18F деоксиглюкозой (флюородеоксиглюкозой) позитронно-эмиссионной томографией/компьютерной томографией (только если протез был имплантирован в течение более 3 мес) или с использованием меченных радиоизотопами (111In-oxine или 99mTc-hexamethylpropyleneamine oxime) лейкоцитов однофотонной эмиссионной компьютерной томографией;

    3. в) несомненные признаки параваскулярного поражения сердца при компьютерной томографии.

Малые критерии.

  1. Предрасположенность: предрасполагающие болезни сердца или инъекции наркотиков.

  2. Лихорадка: температура тела более 38 °С.

  3. Сосудистые явления (в том числе обнаруженных изображений только): большие артериальные эмболии, септические легочные инфаркты, инфекционные (грибковые) аневризмы, внутричерепные кровоизлияния, конъюнктивальные кровоизлияния, поражения Джейнуэя.

  4. Иммунологические проявления: гломерулонефрит, узлы Ослера, пятна Рота и ревматоидный фактор.

  5. Микробиологические признаки: положительная культура крови, но нет большого критерия или серологического признака активной инфекции с возбудителем, соответствующим ИЭ.

Согласно рекомендациям по ведению ИЭ ЕОК (2015) диагноз этого заболевания может быть несомненным, вероятным или отвергнут при наличии альтернативного.

Диагноз ИЭ является несомненным при наличии патологических и клинических критериев.

Патологические критерии:

  • микроорганизмы продемонстрировали культуру, или при гистологическом исследовании выявлены вегетации, вегетации эмболизированы, или выявлен типичный внутрисердечный абсцесс;

  • или патологические очаги, вегетации или внутрисердечный абсцесс (подвижные вегетации на клапанах сердца, абсцессы в области протеза клапана), выявленные при гистологическом исследовании, указывают на активный эндокардит.

Клинические критерии:

  • два больших критерия;

  • или один большой критерий и три малых критерия;

  • или пять малых критериев.

Диагноз вероятного ИЭ ставится при наличии признаков, которые не соответствуют ни наличию, ни отсутствию ИЭ:

  • один большой и один малый критерий;

  • или три малых критерия.

Диагноз ИЭ исключается:

  1. при наличии твердого альтернативного диагноза;

  2. разрешении проявлений ИЭ на фоне кратковременной (менее 4 дней) терапии антибиотиками;

  3. отсутствии морфологических доказательств ИЭ во время операции или аутопсии после кратковременной (менее 4 дней) терапии антибиотиками;

  4. не отвечает критериям вероятного ИЭ, приведенным выше.

В большинстве случаев критерии постановки диагноза включают (содержат) морфологический, функциональный, этиологический, патогенетический и симптоматический компоненты, объективной характеристикой которых служат результаты лабораторных анализов. Роль результатов лабораторных тестов в постановке диагноза различна и зависит от нозологической формы. Однако достоинством результатов лабораторных тестов является их числовое выражение, которое отражает и придает индивидуальность диагнозу конкретного больного. Кроме того, не все результаты тестов используются врачом-клиницистом для постановки диагноза, а отражают морфологическое и функциональное состояние других органов, тканей и систем, что в совокупности с основными компонентами диагноза создает у врача объемный и многогранный образ состояния пациента (единство различных сторон состояния данного больного) и его динамического изменения. Анализ и синтез всей этой информации о состоянии пациента и индивидуальность диагноза служат обоснованием индивидуализации лечения и проведения профилактических мероприятий.

2.6.2.2. Использование результатов лабораторных исследований для определения прогноза

Прогноз заболевания (от греч. prognosis - «предсказание») - врачебное суждение о предполагаемом течении и исходе болезни. Определение прогноза основывается на знании этиологии и патогенеза, статистических данных и анализе индивидуальных особенностей больного.

Основные виды прогноза:

  1. в отношении жизни - не угрожает ли заболевание жизни больного;

  2. полностью ли выздоровеет больной;

  3. как будет протекать болезнь;

  4. сохранится ли трудоспособность при неполном выздоровлении - полностью или частично.

Прогноз течения и исхода болезни имеет существенное значение для определения терапевтической тактики. Самая важная его часть - прогноз сохранения жизни, или витальный прогноз. Кроме того, выделяют прогноз болезни (нозологической формы), или общий прогноз, и прогноз больного, или индивидуальный прогноз, учитывающий особенности больного. Прогноз течения и исхода болезни определяется достоверностью клинического диагноза, возможностями современной терапии, индивидуальными особенностями организма больного.

Длительное время в практической медицине единственным методом оценки прогноза, который используется и поныне, был эмпирический, в соответствии с которым оценка общего состояния с точки зрения прогноза выражается обычно такими формулировками, как prognosis bona (хороший), dubia, (сомнительный), mala (плохой), pessima (очень плохой). В его основе лежат знания врача о степени обратимости изменений в органах при данной болезни, средней продолжительности жизни при ней, частоты летальных исходов, частоты и характера наблюдаемых осложнений. Для предсказания течения и исхода болезни у конкретного больного врач использует все доступные ему знания о больном, почерпнутые из анамнеза жизни и болезни, результатов обследования, учитывает возраст, пол, конституцию больного, затем сравнивает возможность совпадения общего прогноза в отношении данного заболевания с индивидуальным прогнозом конкретного больного или оценивает отклонения последнего от общего прогноза.

В настоящее время прогноз все более часто определяется на основании статистических данных, полученных в результате множества рандомизированных исследований в отношении конкретной болезни. Данные доказательной медицины позволяют научно обосновать ожидаемый исход заболевания, а также частоту и характер осложнений.

Результаты лабораторных исследований во многом способствуют правильной оценке прогноза. В практической медицине широкое распространение получили два подхода к использованию результатов анализов для оценки прогноза заболеваний:

  1. подход, основанный на использовании результатов одного лабораторного теста (например, уровень повышения тропонина у пациентов с ИМ или прокальцитонина у больных сепсисом);

  2. применение различных шкал, основой которых служат отклонения в результатах лабораторных тестов [например, шкалы SAPS II (Simplified Acute Physiology Score - упрощенная шкала острых физиологических изменений), SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assesment) у пациентов с сепсисом или APACHE II у больных острым панкреатитом].

Применение результатов одного лабораторного теста для оценки прогноза предпочтительнее для врача-клинициста, чем использование различных шкал, так как не требует проведения целого комплекса как лабораторных, так и других видов исследований и выполнения достаточно сложных расчетов. Однако, несмотря на простоту оценки прогноза по результату одного лабораторного теста, клиническое применение данного подхода имеет ограниченное значение из-за значительных колебаний уровня маркеров в крови в зависимости от течения заболевания (например, боль, лечебные процедуры приводят к увеличению уровня маркеров в крови без повреждений в органе).

Наиболее часто в клинической практике оценивают прогноз сохранения жизни, или витальный прогноз. Правильная оценка прогноза исхода заболевания позволяет исходно принять адекватное решение в отношении тактики и выбора метода лечения конкретного больного. Кроме того, правильное определение прогноза сохранения жизни позволяет в целом ряде случаев рационально использовать имеющиеся экономические ресурсы лечебного учреждения или отделения. Например, для большинства больных сепсисом с полиорганной недостаточностью лечение отвергается, когда превышает приемлемый порог затрат на годы жизни с поправкой на качество жизни (один из методов оценки экономической эффективности лечения путем анализа клинических выгод и необходимых затрат - анализ полезности стоимости). В качестве эмпирического правила этот порог доходит до величины троекратного годового валового внутреннего продукта на душу населения в стране. Превышение этого порога считается нерациональным использованием финансовых ресурсов и подвергает других пациентов повышенному риску осложнений или смертности.

Рассмотрим несколько примеров использования результатов лабораторных тестов для оценки прогноза.

До внедрения в клиническую практику метода тромболитической терапии общая внутригоспитальная смертность при ИМ составляла 12-15% и дополнительно 3-5% смертельных исходов в течение первого года после выписки. Широкое использование тромболитических препаратов позволило снизить не только внутригоспитальную смертность до 6-10%, но и показатели смертности в течение 1-2 лет после выписки. После выписки у пациентов с передними инфарктами вероятность летального исхода в течение 1 года выше (10%), чем у пациентов с нижними инфарктами (6%). Наличие ИМ правого желудочка и атриовентрикулярной блокады высокой степени увеличивает внутригоспитальную смертность при нижнем инфаркте, но не влияет на отдаленный прогноз.

Внутригоспитальная смертность при ИМ без зубца Q на электрокардиограмме - менее 5%, но двухгодичная смертность приближается к таковой при трансмуральных инфарктах. Выравнивание показателей двухгодичной смертности обусловлено, прежде всего, высокой частотой повторных инфарктов у больных после мелкоочагового инфаркта.

На протяжении длительного времени предпринимаются попытки определения вероятности прогнозирования летального исхода у больных, перенесших ИМ. В последние годы большое количество исследований связано с изучением возможностей использования для этих целей результатов определения тропонина Т (I).

Положительные результаты серийных уровней КК-МВ mass и/или тропонина Т в первые 12 ч после поступления больного в стационар предвещают троекратное увеличение риска ранних осложнений ОКС в госпитальный период (McErlean E.S. et al., 2000). При этом КК-МВ mass и тропонин Т дополняют друг друга в идентификации пациентов с риском ранних осложнений - около 20% пациентов положительны только по одному маркеру. Пациенты с результатом количественного определения тропонина Т в диапазоне 0,1-0,2 нг/мл имеют особенно высокую степень риска ранних осложнений, и в их лечении должны использоваться активные методы терапии и тщательное наблюдение в динамике.

Зависимость смертности от ИМ и концентрации тропонина Т в сыворотке крови в ранние сроки у пациентов с нестабильной стенокардией и ИМ представлены на рис. 2.68 (Alexander R.W. et al., 1998).

pic 0112
Рис. 2.68. Смертность больных от инфаркта миокарда (ИМ) в зависимости от концентрации тропонина Т

Приблизительно у 30-40% пациентов с нестабильной стенокардией повышен уровень тропонина I. Его повышение меньше, чем при крупноочаговом ИМ, но сопоставимо у пациентов с нестабильной стенокардией и мелкоочаговым инфарктом.

Для оценки прогноза лечения сепсиса и оценки тяжести состояния больных в клинической практике применяют два подхода. Первый основан на использовании различных комплексных шкал, второй - отдельных лабораторных показателей. Наиболее привлекательными являются шкала SAPS II, предложенная J.L. Vincent (1994), шкалы SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assesment) и APACHE II.

Система SAPS II основана на результатах Европейского-СевероАмериканского многоцентрового исследования и состоит из пяти частей:

  • оценки физиологических функций - осуществляется на основании 11 показателей, полученных в первые 24 ч пребывания больного в отделении интенсивной терапии. Наихудшее значение каждого показателя, выраженное в баллах, суммируют для получения балльной оценки тяжести состояния пациента (табл. 2.70);

  • оценки тяжести по шкале Глазго (табл. 2.71);

  • типа поступления больного в отделение интенсивной терапии (табл. 2.72);

  • сопутствующей хронической патологии (табл. 2.73);

  • возрастных показателей больного (табл. 2.74).

Таблица 2.70. Оценка физиологических функций по шкале SAPS II
Показатель Результат

Частота сердечных сокращений, в минуту

<40

40-69

70-119

120-159

>160

Баллы

11

2

0

4

7

Систолическое давление, мм рт.ст.

<70

70-99

100-199

>200

Баллы

13

5

0

2

Температура тела, °С

<39

>39

Баллы

0

3

Количество лейкоцитов, х109

<1,0

1,019,9

>19,9

Баллы

12

0

3

Содержание мочевины в сыворотке крови, ммоль/л

<10

10,0-29,9

>30

Баллы

0

6

10

Содержание К+ в сыворотке, ммоль/л

<3,0

3,04,9

>5,0

Баллы

3

0

3

Содержание Na+ в сыворотке, ммоль/л

<125

125-144

>145

Баллы

5

0

1

Содержание НСО3- в сыворотке, ммоль/л

<15

15-19

>20

Баллы

6

3

0

Содержание билирубина в сыворотке, мкмоль/л

<68,4

68,4-102,5

>102,6

Баллы

0

4

9

Суточный диурез, мл/сут

<500

500-900

>1000

Баллы

11

4

0

Таблица 2.71. Соотношение баллов по шкале Глазго и SAPS II
Шкала Баллы

Глазго

<6

6-8

9-10

11-13

14-15

SAPS II

26

13

7

5

0

Общая сумма баллов

Таблица 2.72. Тип поступления (SAPS II)
Тип поступления Баллы

В хирургическое отделение в плановом порядке

0

В терапевтическое отделение

6

По экстренным показаниям для оперативного вмешательства

8

Таблица 2.73. Наличие сопутствующей хронической патологии (SAPS II)
Тип патологии Баллы

Рак с метастазами, определяемыми при дополнительных методах исследования

9

Злокачественные заболевания крови (лимфома, острый лейкоз, миеломная болезнь)

10

ВИЧ-позитивный СПИД с клинической картиной следующих заболеваний: пневмоцистная пневмония, саркома Капоши, лимфома головного мозга, туберкулез, токсоплазмоз

17

Таблица 2.74. Оценка возрастных показателей (SAPS II)
Возраст, годы Баллы

<40

0

40-59

7

60-69

12

70-74

15

75-79

16

>80

18

Конечный результат оценки состояния больного по шкале SAPS II проводят на основании суммы баллов, полученных из слагаемых по всем перечисленным разделам системы (табл. 2.75).

Таблица 2.75. Общая сумма баллов по шкале SAPS II
Часть системы SAPS II Баллы

Оценка физиологических функций

Шкала Глазго

Тип поступления

Сопутствующая хроническая патология

Возрастной показатель

Общая сумма баллов

При использовании данной оценочной системы была выявлена практически линейная зависимость между количеством баллов и уровнем летальности - каждому десятибалльному увеличению соответствует повышение летальности около 10% (Castella X. et al., 1995). Прогностически неблагоприятными являются значения системы SAPS II более 50 баллов; максимальный уровень летальности наблюдают при 90 баллах и выше.

В настоящее время многие авторы признают, что система оценки тяжести состояния больных сепсисом SAPS II может считаться достоверной мерой раннего прогнозирования исхода у этой категории больных. Сумма баллов более 50 по системе SAPS II в первые сутки от начала заболевания позволяет говорить о высокой вероятности неблагоприятного исхода у пациентов с септическим шоком. На рис. 2.69 представлено соотношение летальности (%) и оценки состояния больных (в баллах) по системе SAPS II (Castella X. et al., 1995).

Повышение концентрации лактата указывает на неадекватность терапии и является неплохим предсказателем исхода заболевания. Увеличение же показателя более 8 ммоль/л в течение продолжительного времени у пациентов, находящихся в отделении интенсивной терапии, указывает на высокую вероятность летального исхода. На рис. 2.70 представлена вероятность летального исхода в зависимости от концентрации лактата в артериальной крови (Dancer D.R., 1991).

Таким образом, использование результатов лабораторных исследований для оценки прогноза течения заболевания позволяет врачу расширить свое представление об особенностях течения болезни у конкретного пациента, определить тактику ведения и лечения, а в дальнейшем - оценить эффективность проводимого лечения.

pic 0113
Рис. 2.69. Соотношение летальности и оценки состояния больных по системе SAPS II (в светло-серых столбиках представлена реальная летальность, в темно-серых - рассчитанная)
pic 0114
Рис. 2.70. Зависимость летальности от концентрации лактата в крови у больных в критическом состоянии
2.6.2.3. Использование результатов лабораторных исследований для обоснования целей лечения и выбора метода лечения

Анализ всей информации о пациенте для принятия решения о его лечении приводит в конечном итоге клинициста к обоснованию основного компонента своей деятельности - целей лечения больного. Именно этот компонент решающим образом определяет содержание оказываемой пациенту медицинской помощи и служит критерием ее эффективности. Определение целей лечения - это, по сути, целевой прогноз эффективности отдельных способов лечения, который состоит в предсказании оптимальных путей достижения желательного состояния больного. Наблюдая эффект от проводимого лечения, врач проверяет правильность своего решения, что необходимо, так как прогноз в медицине всегда носит вероятностный характер. Наиболее закономерные варианты целевого прогноза находят отражение в формулируемых для определенных типичных ситуаций показаниях и противопоказаниях к отдельным видам терапии. По существу, выработанные медицинской практикой показания к разным средствам и способам лечения выражают достаточно высокую степень вероятности получения положительного лечебного эффекта, а в противопоказаниях выражена вероятность нежелательного эффекта.

Лечение любого заболевания преследует определенные цели. Именно поэтому клиницист перед началом лечения должен определить их и стремиться достигнуть. Результаты лабораторных исследований, как ни одни другие данные диагностики, могут служить в качестве объективных критериев достижения таких целей лечения. Чем яснее определены цели, тем проще врачу и пациенту совместно определить рациональную стратегию проведения лечебных мероприятий.

Применение клиницистом в своей деятельности понятия «цели лечения» и умелое использование для этого лабораторной информации освобождает клинициста от большой свободы выбора методов лечения и настойчиво подводит его к назначению адекватного конкретной клинической ситуации и научно обоснованного метода лечения.

Для того чтобы добиться максимальной пользы для пациента, клиницист должен систематически контролировать, корректировать или даже менять лечение. Результаты лабораторных исследований предоставляют врачу объективную информацию для принятия решения в данном направлении его работы. Если результаты анализов в процессе лечения имеют тенденцию к большему сдвигу в патологическую сторону, это может означать неправильный выбор тактики лечения или неверный диагноз.

Количественные лабораторные характеристики показателей гомеостаза являются лучшими маркерами достижения цели. Вместе с тем клиницистам следует понимать, что, с одной стороны, достижение величины того или иного лабораторного параметра (например, снижение уровня холестерина в крови ниже 5,17 ммоль/л) может представлять собой задачу или стратегию достижения конкретной цели - снижения риска возникновения ишемической болезни сердца или частоты приступов стенокардии. С другой стороны, если нормализация повышенного уровня холестерина в крови понимается как цель, то у пациента появляется конкретная мотивация, и он может чувствовать себя обязанным достичь ее в попытке восстановить здоровье.

Рассмотрим несколько примеров, чтобы продемонстрировать важную роль результатов лабораторных исследований в определении целей лечения. Данные лабораторных тестов особенно эффективны в качестве критериев достижения целей лечения у пациентов с обменными и эндокринными заболеваниями.

Целью лечения сахарного диабета является достижение и поддержание такого состояния, при котором проявления болезни и вероятность возникновения осложнений минимальны, а качество жизни максимально высокое. При лечении сахарного диабета необходимо стремиться достичь целевых показателей. Целевые показатели - это показатели, при которых проявления симптомов сахарного диабета и вероятность возникновения осложнений минимальны. Согласно требованиям экспертов ВОЗ, целью лечения больных сахарным диабетом является достижение показателей, приведенных в табл. 2.76.

Таблица 2.76. Цели лечения больных сахарным диабетом
Лабораторный показатель Цель

Гликемия натощак, ммоль/л

4,4-6,7

Гликемия после еды, ммоль/л

4,4-8,9

Глюкоза в моче, %

Нет

Гликозилированный гемоглобин, %

<6,0

Общий холестерин, ммоль/л

<5,2

ЛПВП, ммоль/л

>1,1

Триглицериды, ммоль/л

<1,7

Наглядной демонстрацией возможностей использования результатов лабораторных анализов как критериев, способных объективно формулировать цели лечения, могут служить клинические подходы к лечению больных первичным гипотиреозом.

Целью лечения больных первичным гипотиреозом является нормализация уровней ТТГ и сТ4 в крови. Определение концентрации этих гормонов в динамике позволяет не только определить, достигнута ли цель лечения или нет, но и индивидуально подходить к лечению каждого пациента.

При подборе дозы левотироксина натрия (L-Тироксина*) необходимо помнить, что его прием в дозе 100 мкг снижает уровень ТТГ на 90%, при дозе 75 мкг ТТГ снижается примерно на 50%. Обычно молодым, здоровым в прочих отношениях лицам лечение начинают с полных замещающих доз левотироксина натрия (L-Тироксина*) (1,6 мкг/кг). Уровень ТТГ, как правило, нормализуется медленно, особенно при длительно существующем гипотиреозе, поэтому если состояние больного улучшилось и уровень сТ4 в пределах нормы, то повышать дозу тиреоидного препарата только для достижения нормального уровня ТТГ не нужно. Восстановление эутиреоидного состояния у больных гипотиреозом иногда сопровождается увеличением клиренса сТ4, его уровень при этом снижается, а ТТГ - возрастает. В таких случаях дозу левотироксина натрия (L-Тироксина*) следует повысить. После подбора оптимальной дозы гормонального препарата у больного необходимо ежеквартально определять уровень ТТГ в крови. С возрастом потребность в гормонах щитовидной железы падает, и дозу левотироксина натрия (L-Тироксина*) уменьшают в соответствии с уровнем ТТГ в крови. Больным пожилого возраста и больным с установленным или предполагаемым заболеванием сердца лечение начинают с низких доз левотироксина натрия (L-Тироксина*) (25 мкг/ сут), которые постепенно повышают на 25 мкг/сут каждые 2-3 мес до нормализации уровня ТТГ. Пониженный уровень ТТГ в крови свидетельствует о передозировке тиреоидных гормонов, которые могут оказывать побочное действие на сердце и печень, а также приводит к уменьшению костной массы. Именно поэтому, если даже больной лучше себя чувствует, принимая более высокую дозу препарата, нельзя допускать малейшей его передозировки. Период полувыведения Т4 длительный, вследствие чего определять уровень ТТГ в крови следует не ранее чем через 4 нед после изменения дозы левотироксина натрия (L-Тироксина*).

Одновременное определение содержания мочевой кислоты в крови и моче имеет важное значение не только для диагностики подагры, но и выбора схемы лечения и достижения его целей. Это позволяет во многих случаях установить патологический механизм, лежащий в основе подагры у больного (избыточная продукция мочевой кислоты в организме или нарушение ее выведения). Признаком гиперпродукции мочевой кислоты в организме считается ее выведение с мочой более 800 мг за сутки в случае проведения исследования без ограничения в диете или 600 мг после предварительного применения мало-пуриновой диеты. При нарушении выделительной функции почек высокий уровень мочевой кислоты в крови не сопровождается увеличением концентрации мочевой кислоты в моче. Перед проведением этого исследования следует убедиться в нормальных функциях почек (в случае снижения клиренса креатинина уменьшение экскреции мочевой кислоты не исключает ее гиперпродукции), а также исключить возможные влияния лекарственных препаратов на выведение уратов. Установление механизма развития подагры помогает выбрать правильную схему лечения больного. При повышенной продукции мочевой кислоты назначают ингибиторы ксантиноксидазы (аллопуринол) - фермент, играющий ключевую роль в образовании мочевой кислоты в организме. Контроль уровня мочевой кислоты в крови и коррекцию дозы препарата осуществляют каждые 2 нед. Изначально пациенту назначают 50-100 мг/сут аллопуринола с последующим титрованием дозы. Дозу препарата следует подбирать таким образом, чтобы снижение урикемии составляло не более 35,7-47,6 мкмоль/л.

При нарушении выделения мочевой кислоты назначают или увеличивают дозу урикозурических средств (сульфинпиразона, бензбромарона), блокирующих канальцевую реабсорбцию мочевой кислоты в почках, или применяют эти лекарственные препараты в сочетании с диетотерапией. Возможна комбинация аллопуринола с сульфинпиразоном или бензбромароном. При назначении урикозурических средств следует помнить, что усиление экскреции мочевой кислоты повышает риск образования уратных камней, который можно уменьшить назначением обильного питья.

В первые месяцы (1-4 мес) терапии подагры основным критерием эффективности считается достижение уровня мочевой кислоты в сыворотке крови у мужчин ниже 0,36 ммоль/л (в идеале - 0,24- 0,30 ммоль/л), у женщин - ниже 0,30 ммоль/л. Если концентрация мочевой кислоты не падает ниже 0,40 ммоль/л, растворения уратов во внеклеточной жидкости и тканях не происходит и сохраняется опасность прогрессирования подагры.

Не менее важную роль результаты лабораторных анализов играют и в достижении целей лечения инфекционных заболеваний, при которых патогенетическая терапия направлена на ликвидацию инфекционных агентов в организме пациента.

Представленный анализ роли лабораторных методов исследования при лечении больных хроническим вегетососудистым синдромом наиболее ярко высвечивает возможности лабораторной диагностики в отношении клинической практики.

Выше было приведено достаточно доказательств роли результатов лабораторных исследований в определении целей лечения и их значения в выборе метода лечения.

Таким образом, главной задачей врача-клинициста является формулировка целей профилактических и терапевтических мероприятий, а также разработка адекватной и конкретной программы этих мероприятий. Результаты лабораторных анализов являются объективными критериями целей лечения, позволяют индивидуально подходить к их достижению, обеспечить безопасность пациента, а в ряде случаев служат показаниями к пересмотру диагноза, изменению или прекращению лечения. Кроме того, результаты исследований, полученные при первоначальном обследовании пациента, в дальнейшем будут служить теми исходными ориентирами, по изменению которых клиницист сможет оценивать эффективность проводимого лечения и более ясно прогнозировать исход заболевания.

2.6.2.4. Использование результатов лабораторных исследований для мониторинга эффективности лечения заболеваний

В процессе лечения врач осуществляет динамическое наблюдение за состоянием пациента, оценивает эффективность лечения и достижение целей лечения, выявляет возникающие осложнения. Некоторый субъективизм в оценках результативности лечения практическими врачами неизбежен. Результаты лабораторных исследований, выполненные в динамике, позволяют врачу более объективно оценивать состояние больного и эффективность лечения, а благодаря количественному выражению - давать абсолютное и относительное выражение этой эффективности.

Во многих клинических ситуациях результаты анализов играют важную роль в установлении ремиссии заболевания или отсутствия эффекта от проводимой терапии.

Основная цель лечения непрямыми антикоагулянтами - это предупреждение развития тромбозов, а также снижение риска кровотечений. Регулярное определение протромбинового времени у таких пациентов, расчет международного нормализованного отношения (МНО) позволяют объективно оценить достижение целей лечения. До последнего времени рекомендовали поддерживать протромбиновое время при лечении непрямыми антикоагулянтами в 2,0-2,5 раза длиннее нормы (кроличий тромбопластин). Однако это время оказалось слишком большим, что часто приводило к кровотечениям. В настоящее время имеется тенденция к переходу на более короткое время. ВОЗ разработаны рекомендации для контроля за уровнем антикоагулянтов, выраженные в МНО, которые служат объективными критериями достижения целей лечения (табл. 2.77).

Таблица 2.77. Рекомендуемые уровни антикоагулянтов в МНО
Клиническое состояние Рекомендуемое МНО

Профилактика тромбоза глубоких вен

2,0-3,0

Лечение тромбоза глубоких вен и легочной тромбоэмболии

2,0-3,0

Возвратный тромбоз глубоких вен, легочной тромбоэмболии

2,0-3,0

Протезы сердечных клапанов из собственной ткани

2,0-3,0

Механические протезы сердечных клапанов

2,5-3,5

Рекуррентный тромбоз глубоких вен и легочная эмболия

3,0-4,5

Сосудистые заболевания, включая ИМ

3,0-4,5

Рекуррентная системная эмболия

3,0-4,5

Ниже приведены лабораторные критерии оценки эффективности заболеваний щитовидной железы.

Лабораторные критерии оценки эффективности лечения диффузного токсического зоба. Определение уровня сТ44, Т3) и ТТГ является важным для контроля за лечением заболевания антитиреоидными препаратами. При правильном подборе дозы антитиреоидных препаратов концентрация сТ44, Т3) в крови должна поддерживаться на нормальном уровне. Чрезмерная блокада синтеза тиреоидных гормонов (уровень сТ4 в крови ниже нормы) может привести к выбросу ТТГ. Повышение уровня ТТГ в крови более 6 мМЕ/л свидетельствует о передозировке препарата и приводит к увеличению зоба. При лечении определение концентрации сТ4 и ТТГ в крови необходимо выполнять регулярно каждые 4-6 нед до достижения эутиреоидного состояния. Уровень ТТГ в крови иногда остается пониженным в течение нескольких месяцев после достижения эутиреоидного состояния, а в ряде случаев во время исчезновения симптомов тиреотоксикоза повышается, в связи с чем не следует ориентироваться на результаты однократного исследования уровня сТ4 и ТТГ. Достижение эутиреоидного состояния и уменьшение симптомов тиреотоксикоза служит показанием к переходу на поддерживающие дозы антитиреоидных препаратов. Необходимо помнить, что серьезным осложнением при терапии тиреостатическими препаратами является развитие агранулоцитоза, который возникает у 0,4-0,7% больных, и нарушение функции печени, в связи с чем необходимо проводить не реже 1 раза в 2 нед общеклиническое и биохимическое исследование крови. Стойкое сохранение эутиреоидного состояния и клинической ремиссии в течение 4-6 мес служит показанием к отмене антитиреоидных препаратов.

Достаточно непросто решать проблему частоты лабораторных исследований для наблюдения за динамикой развития заболевания при оказании плановой медицинской помощи. Безусловно, необходимо руководствоваться тем, насколько быстро могут развиться достоверные количественные изменения исследуемых лабораторных параметров, и сопоставлять их с клиническим течением заболевания. Если по клиническим признакам врач отмечает эффективность проводимого лечения, то лабораторные показатели достаточно мониторировать 1 раз в 7-10 дней. Большую помощь врачу в таких ситуациях могут оказать утвержденные стандарты и клинические протоколы ведения пациентов с определенной нозологией, где опытными экспертами определено количество повторных исследований для мониторинга эффективности лечения. Вместе с тем необъяснимые изменения и отклонения в клинической картине заболевания и состоянии больного, отсутствие эффективности проводимой терапии являются показаниями к повторному назначению необходимых лабораторных тестов.

Научное обоснование частоты повторного проведения лабораторных исследований при мониторировании состояния больного можно найти в клинических рекомендациях профессиональных врачебных ассоциаций. В табл. 2.78 приведены рекомендуемые интервалы для повторного определения ряда лабораторных показателей с позиции доказательной медицины.

Таблица 2.78. Рекомендуемый интервал для повторного тестирования
Тест (группа тестов) Интервал, дни

Гормоны щитовидной железы (ТТГ, сТ4)

28

С-реактивный белок

2

HbA1c

60

Опухолевые маркеры

21

Ферритин

28

Липидный профиль

28

Пробы печени (АЛТ, альбумин, щелочная фосфатаза, билирубин, ГГТП)

1

Самое главное - врач всегда должен помнить о том, что при возникновении осложнений результаты лабораторных тестов изменяются раньше, чем у пациента появятся их клинические признаки. Именно поэтому необъяснимые и неожиданные изменения в клиническом состоянии больного - наиболее верный ориентир для повторного назначения лабораторных исследований.

2.6.2.5. Использование результатов лабораторных исследований для профилактики заболеваний

Профилактика заболеваний занимает важнейшее место в клинической практике. Первичная профилактика направлена на предупреждение самого возникновения болезни, устранение ее причины. Назначение препаратов железа при низкой концентрации ферритина в крови, вакцинация против многих инфекционных заболеваний или обучение пациента здоровому образу жизни (прекращение курения, рекомендации по диете) при высоком уровне холестерина в крови - все это примеры первичной профилактики. Следует учитывать, что некоторые мероприятия по первичной профилактике способны нанести вред пациенту при необоснованном их назначении, поэтому клиницисты должны располагать определенными критериями как для проведения профилактических мероприятий, так и для оценки их эффективности. Данные лабораторных анализов помогают клиницисту решать многие практические вопросы и в этом направлении его деятельности.

Например, определение антител к HBs-антигену (анти-HBsAg) играет важную роль в определении контингента для вакцинации против гепатита В. Согласно рекомендациям ВОЗ, если уровень анти-HBsAg составляет менее 10 мМЕ/л, то таким лицам показана вакцинация против гепатита В, при уровне 10-100 мМЕ/л вакцинация должна быть отложена на 1 год, при уровне более 100 мМЕ/л вакцинация показана через 5-7 лет. Определив уровень антител к HBs-антигену в крови, через определенный период времени можно оценить эффективность вакцинации для каждого конкретного пациента.

Меры вторичной профилактики позволяют обнаруживать болезнь на ранних стадиях, когда она протекает бессимптомно и своевременное лечение может остановить ее развитие.

Примерами могут служить ежегодные исследование уровня ПСА в крови у мужчин старше 40 лет, кольпоцитодиагностика у женщин, анализ кала на скрытую кровь и другие тесты для скрининга злокачественных новообразований. Рассмотрим эффективность использования результатов лабораторных исследований для профилактики заболеваний на примере скрининга рака шейки матки.

В настоящее время рак шейки матки - наиболее распространенное злокачественное заболевание у женщин после рака молочной железы. Ежегодно в странах Европейского союза диагностируется более 25 000 случаев возникновения рака шейки матки и около 12 000 смертельных исходов от этого заболевания, что превышает число смертей от СПИДа и гепатита В. В России рак шейки матки встречается с частотой примерно 11 на 100 000 женщин каждый год. Рак шейки матки возникает в основном у женщин среднего возраста (35-55 лет). При этом обращает на себя особое внимание рост числа больных раком шейки матки среди женщин моложе 50 лет в среднем на 3% в год.

Рак шейки матки - одна из ведущих причин смерти женщин от онкологических заболеваний. Общая пятилетняя выживаемость больных при раке шейки матки in situ (0 стадия) и 1а стадии достигает 98%, при 1б стадии - 78,4-94,9%, при 11а и 11б стадии - 54,5-68,0%, при III стадии - 18,4-53,5%, при IV стадии - 6,3-22,9%. Несмотря на то что злокачественные опухоли шейки матки доступны для диагностики на ранних стадиях (0-I), примерно 70% больных поступают в стационары со II и с III стадией опухолевого процесса.

Выбор метода лечения рака шейки матки зависит главным образом от распространенности заболевания. При раке in situ (0 стадия) основным методом лечения является хирургический, объем которого зависит от возраста пациентки. У молодых женщин конизация или ампутация шейки позволяет сохранить детородную функцию. У пациенток с более распространенными стадиями рака шейки матки обычно выполняют расширенную гистерэктомию (удаление матки вместе с лимфатическими узлами) в сочетании с одним из видов лучевой терапии и иногда химиотерапией.

Ранние этапы развития рака шейки матки не сопровождаются никакими жалобами. Именно поэтому для борьбы с раковыми поражениями шейки матки в развитых странах мира разработаны так называемые скрининговые программы. Это позволяет выделять женщин с предраковыми изменениями на шейке матки и успешно реализовывать программы профилактики развития рака шейки матки.

Основным методом скрининга рака шейки матки является цитологическая диагностика. Цитологическое исследование - это диагностика с использованием микроскопа, когда изучаются отдельные клеточные элементы в мазках, которые получают путем нанесения на стекло тонкого слоя материала, полученного в результате нежного соскабливания клеток с поверхности шейки матки.

При микроскопическом исследовании в лаборатории примерно в 80-90% правильно взятых мазков не выявляют патологических изменений. Такие женщины не требуют дополнительных диагностических мероприятий. Повторный вызов пациенток для взятия мазка в этих случаях необходим через 1-3 года (в зависимости от местных методических указаний). У нас в стране у женщин репродуктивного возраста мазки из шейки матки рекомендуется брать для исследования не реже чем 1 раз в год. В оставшихся 10-20% мазков обнаруживают изменения строения клеток шейки матки различной степени выраженности - от доброкачественных до дисплазии и инвазивного рака. Рак выявляют примерно в одном случае из 1000 мазков.

Исследование мазков из шейки матки - это скрининговый тест. Он позволяет исключить из дальнейшего исследования 80-90% женщин с отрицательным результатом. В этом заключается его основная ценность. У остальных 10-20% женщин тяжесть изменений в мазках определяет последующие шаги. Большинство мазков с патологическими изменениями имеют слабую степень дисплазии. Вероятность того, что эти изменения подвергнутся обратному развитию, достаточно велика, но имеется небольшая доля риска, что со временем разовьются предраковые изменения. Именно поэтому таким пациенткам показано активное наблюдение (например, проходить повторные обследования через 3 или 6 мес), пока атипия не разрешится. Женщин, в мазках которых обнаружена дисплазия II и III степени в двух последовательных наблюдениях, обычно направляют на кольпоскопию (диагностическая процедура, во время которой шейка матки исследуется через специально модифицированный микроскоп) с проведением биопсии подозрительных участков. Результаты кольпоскопии и биопсии определяют лечение, которое может быть предложено пациентке.

Благодаря широкому внедрению цитологического скрининга за последние 30 лет во многих странах удалось снизить смертность от рака шейки матки на 70%.

Третичная профилактика относится к действиям, направленным на предотвращение ухудшения или осложнений заболеваний после того, как болезнь проявилась. Например, для больных сахарным диабетом третичная профилактика выходит за рамки простого контроля уровня глюкозы в крови. Требуется регулярное определение концентрации альбумина в моче (микроальбуминурия) для своевременного применения ингибиторов ангиотензинпревращающего фермента в целях предупреждения развития почечной недостаточности.

Приведенные методические подходы к оценке и использованию клиницистом результатов лабораторных исследований показывают, насколько многогранную информацию они несут. При этом одно и то же числовое значение результата анализа может быть использовано для обоснования диагноза, принятия решения о лечении пациента, выбора адекватного метода лечения, наблюдения за течением заболевания, принятия решения о прекращении лечения, оценки эффективности мер профилактики, как критерий достижения целей лечения, для решения экспертных вопросов и обеспечения безопасности пациента.

Основным критерием оценки эффективного использования клиницистами результатов лабораторных анализов является наличие записи в истории болезни или амбулаторной карте о том, для каких целей были использованы те или иные результаты исследований.

С выходом приказа Минздрава России от 10 мая 2017 г. № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи», в котором приведены научно обоснованные (взяты из клинических руководств) критерии качества медицинской помощи, появился новый инструмент, позволяющий эффективно оценивать использование результатов лабораторных анализов врачом-клиницистом. Среди критериев оценки качества оказания медицинской помощи приведены величины отклонений в лабораторных анализах, которые требуют принятие решений по лечению пациентов, служат в качестве значений в достижении целей лечения, отмены лекарственных препаратов, выписки из отделения, то есть оценивают, использовал ли клиницист результаты тестов или нет.

2.6.2.6. Оценка влияния результатов анализов на улучшение качества оказания медицинской помощи

Клиническая интерпретация результатов лабораторных исследований и их эффективное использование для решения множества задач, стоящих перед клиницистом, еще не завершают единый технологический процесс производства анализов.

Клиническая интерпретация результатов лабораторных исследований и их эффективное использование для решения множества задач, стоящих перед клиницистом, достаточно понятно и легко воспринимаемо врачом любой специальности, ведь процесс диагностики и лечения тесно взаимосвязаны друг с другом.

Индикаторами влияния результатов лабораторных исследований на качество оказания медицинской помощи пациентам могут быть:

  • наличие интерпретации результатов лабораторных исследований в истории болезни;

  • использование результатов анализов для обоснования диагноза;

  • использование результатов анализов для обоснования целей лечения;

  • использование результатов анализов для оценки эффективности лечения;

  • выполнение критериев качества медицинской помощи согласно приказу Минздрава России от 10 мая 2017 г. № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи»;

  • оценка влияния результатов анализов на качество оказания помощи пациентам.

Возможности и всесторонний анализ информации, которую несут результаты лабораторных исследований, а также научно обоснованные подходы к ее клиническому использованию с позиций доказательной медицины, несомненно, будут полезны и востребованы врачами любой клинической специальности.

Таковы основные клинические и производственные аспекты деятельности КДЛ. Производство лабораторных анализов - это единый процесс - от составления заявки на исследование, взятия биоматериала, выполнения исследований до их оценки и использования в целях оказания пациенту качественной медицинской помощи. При отношении к производству и использованию лабораторных анализов как единому технологическому процессу появляется возможность обнаруживать нарушения в нем и устранять их, предвидеть возможные ошибки и проводить мероприятия по их предотвращению, то есть появляется возможность управлять этим процессом целенаправленно и рационально, сосредоточив усилия на повышении качества лабораторных исследований, являющихся одним из важных компонентов оказания качественной медицинской помощи пациенту.

2.7. ДОКУМЕНТИРОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Основой для повышения качества результатов лабораторных исследований служит постоянный сбор информации о правильности выполнения технологических процессов и операций при производстве анализов. В связи с этим ключевые процессы или операции получения результатов анализов, профессиональные действия специалистов лаборатории и их результаты на критическом пути должны быть документированы с помощью различных графиков и диаграмм. Документирование этапов производства результатов анализов позволяет получить ответ на вопросы: что выполнено? как? имеются ли отклонения и почему? могло бы это быть выполнено проще или более быстрым способом? почему это не было сделано?

В связи с этим врачами-специалистами КДЛ должны быть разработаны собственные форматы документирования технологического процесса получения результатов лабораторных исследований. Такой документ получил название технологической карты. Технологическая карта - это документ, разработанный специалистами КДЛ и клинических отделений, в котором отражен проект технологического процесса проведения конкретного вида исследований с учетом технических и кадровых ресурсов, утвержденный администрацией и служащий методическим пособием для врачей, среднего медицинского персонала лаборатории и клинических отделений (в части, их касающейся). Основные элементы технологической карты (табл. 2.79):

  • карта должна содержать перечень основного комплекса непрерывно чередующихся действий оборудования и специалистов для конкретного технологического процесса или операции;

  • карта должна содержать индикаторы (критерии) оценки качества технологических процессов и операций;

  • основой для выбора индикаторов оценки качества должны служить практические (клинические, диагностические) руководства международных врачебных ассоциаций, отраслевые российские стандарты, приказы Минздрава России, инструкции к приборам, наборам реактивов;

  • карта должна быть краткой;

  • в карте должно быть указано место выполнения технологической операции и кто выполняет;

  • технологические карты приготовления реактивов, другого расходного имущества, подготовки анализаторов к исследованиям, калибровку анализаторов необходимо отразить в приложениях;

  • в карте должны быть указаны основные технологические нарушения и предложения по совершенствованию технологических процессов.

Таблица 2.79. Технологическая карта лабораторных исследований (название вида исследования) для отделения (название отделения) в лаборатории
Технологический процесс, операция Место Продолжительность Кто выполняет Индикаторы качества

I. Преаналитический этап

1. Подготовка пациента к исследованию

2. Взятие крови

3. Доставка крови в лабораторию

Типичные технологические нарушения

II. Аналитический этап

1. Прием биоматериала

2. Подготовка биоматериала к исследованию

3. Подготовка реактивов, анализаторов и калибраторов

4. Калибровка анализатора

5. ВКК

6. Проведение исследований

7. Обработка результатов и их регистрация

8. Написание заключений

9. Доставка результатов исследования в отделения

10. Технический уход и обслуживание оборудования

11. Составление статистических отчетов

Типичные технологические нарушения

Если заполнить технологическую карту лабораторных исследований, введя изложенные выше временные критерии для каждой технологической операции, и указать, кто ее выполняет и где, то будут внесены критерии оценки качества, а если в процессе выполнения анализов указать типичные технологические нарушения и предложения по совершенствованию операций, то в результате получится классическое описание всего технологического процесса производства результатов лабораторных анализов (табл. 2.80).

Таблица 2.80. Технологическая карта биохимических исследований для отделения кардиологии в биохимической лаборатории
Технологический процесс, операция Место Продолжительность Кто выполняет Индикаторы качества

I. Преаналитический этап

1. Подготовка пациента к исследованию

Отделение кардиологии

5 мин

Дежурная медицинская сестра

  1. Инструктирование больного.

  2. Выдача памятки

2. Взятие крови

Процедурный кабинет

8 мин на одного пациента

Процедурная медицинская сестра

  1. Наличие инструкции для взятия.

  2. Готовность больного к исследованию.

  3. Правильная идентификация пациента.

  4. Правильный выбор приспособления для взятия.

  5. Правильное выполнение методики взятия (наложение жгута <1 мин).

  6. Правильное заполнение направления на исследование.

  7. Время на взятие - 8 мин

3. Доставка крови в лабораторию

Отделение кардиологии

10 мин

Младшая медицинская сестра

  1. Транспортировка в спецконтейнере.

  2. Время доставки - 10 мин

Типичные технологические нарушения

  1. Превышение времени транспортировки.

  2. Несоответствие маркировки биоматериала данным заявки.

  3. Наличие гемолиза в вакуумных пробирках.

  4. Отсутствие времени взятия крови на заявке

II. Аналитический этап

1. Прием биоматериала

Комната приема биоматериала в лаборатории

30 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Расхождение между данными заявки и этикетки (инициалы, дата, время и т.д.).

  2. Отсутствие этикетки на вакуумной пробирке или другой емкости.

  3. Невозможность прочесть на заявке и/или этикетке паспортные данные пациента, отсутствие названия отделения, номера истории болезни, фамилии лечащего врача, подписи процедурной сестры, перечня анализов.

  4. Гемолиз в пробе.

  5. Взятый материал находится в несоответствующей емкости.

  6. Наличие сгустков в пробирках с антикоагулянтом.

  7. Превышение сроков доставки крови или другого биоматериала в лабораторию

2. Подготовка биоматериала к исследованию

Излагаются в приложении для каждого вида биоматериала

3. Подготовка реактивов, анализаторов и калибраторов для исследования

Лаборатория

30 мин

Фельдшер-лаборант

Согласно технологической карте подготовки каждого вида реактивов

4. Калибровка анализатора

Лаборатория

5-30 мин

Врач, фельдшер-лаборант

  1. Учет всех неплановых калибровок по лабораторным показателям с указанием их причин.

  2. Учет сбоев в работе анализаторов с указанием их причин

5. ВКК

Лаборатория

30-60 мин

Врач

  1. Пять контрольных правил Westgard.

  2. Данные метрологического контроля средств измерений.

  3. Результаты участия в ВОК

6. Проведение исследований

Лаборатория

30-240 мин

Врач, фельдшер-лаборант

  1. Время, прошедшее с момента подготовки биоматериала к исследованиям до выполнения анализов.

  2. Учет повторных исследований по показателям.

  3. Выявление результатов, требующих немедленных действий

7. Обработка результатов и их регистрация

Лаборатория

30 мин

Врач, фельдшер-лаборант

  1. Отражение в бланке референтной величины для каждого исследуемого параметра.

  2. Отражение в бланке результатов исследований аналитической вариации метода.

  3. Расположение результатов анализов на бланке по патофизиологическому принципу

8. Написание заключений

Лаборатория

30 мин

Врач

  1. Наличие заключения

9. Доставка результатов исследования в отделения

Отделения стационара

30 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Время доставки результатов в отделения.

  2. Учет ошибок в доставке

10. Технический уход и обслуживание оборудования

Лаборатория

20 мин

Врач, фельдшер-лаборант

  1. Отметка в журнале о проведенных мероприятиях по обслуживанию и уходу за анализаторами.

  2. Наличие записей инженера о профилактических мероприятиях

11. Составление статистических отчетов об исследованиях, расходе реактивов, анализ назначаемости

Лаборатория

30 мин

Руководитель лаборатории, врач

  1. Наличие статистических отчетов.

  2. Наличие актов списания расходного имущества.

  3. Наличие анализа назначений

Типичные технологические нарушения

  1. Нарушение технологии подготовки биоматериала к исследованию.

  2. Нарушение технологии подготовки контрольного материала.

  3. Отсутствие референтных величин в бланке исследований.

  4. Превышение количества исследований для данной нозологии

Предложения по совершенствованию технологических процессов

  1. Изучить и обсудить с процедурными медицинскими сестрами отделения причины нарушения технологии взятия, оформления и доставки биоматериала в лабораторию.

  2. Выяснить причину нарушения технологии подготовки биоматериала и контрольного материала к исследованиям.

  3. Обязать врача-лаборанта ввести референтные величины в базу данных компьютера.

  4. Обсудить с руководителем клинического отделения причины превышения спектра анализов при данной нозологии

В отношении каждого анализатора или методики проведения исследований должна быть разработана своя технологическая карта. Пример технологической карты для работы на анализаторе «Конелаб 60i» приведен в табл. 2.81. Такие технологические карты служат прекрасной инструкцией по работе на оборудовании на определенном рабочем месте и позволяют избежать нарушений в эксплуатации приборов.

Таблица 2.81. Технологическая карта проведения биохимических исследований на анализаторе «Конелаб 60i»
Технологический процесс, операция, действия Место Продолжительность Кто выполняет Индикаторы качества

I. Подготовка анализатора к работе

1. Загрузка кювет в анализатор

Лаборатория

5 мин

Фельдшер-лаборант

1. Красный сигнал на экране компьютера (кювет достаточно)

2. Наполнение канистры водой

Лаборатория

5 мин

Фельдшер-лаборант

1. Исчезновение на экране компьютера сообщения о недостатке воды

3. Проверка наличия референтного раствора для ионо-селективного блока

Лаборатория

1 мин

Фельдшер-лаборант

1. Зрительная оценка достаточности растворов в пакетах

4. Проверка наличия референтного раствора 1 для ионоселективного блока

Лаборатория

1 мин

Фельдшер-лаборант

1. Зрительная оценка достаточности растворов в пакетах

5. Установка ка либраторов, контрольных материалов и других растворов на диск проб, указанных на экране компьютера

Лаборатория

15 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Калибраторы и контрольные материалы не должны быть просрочены.

  2. Должны быть приготовлены согласно инструкциям.

  3. Отсутствие пузырьков воздуха на поверхности растворов

6. Проверка наличия реактивов на диске реагентов: их объем, срок годности, соответствие реактива номеру гнезда

Лаборатория

15 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Срок годности реактивов.

  2. Цвет, консистенция, прозрачность должны соответствовать описанию реактива.

  3. Флакон с реактивом должен соответствовать указанию анализатора

II. Калибровка анализатора

1. Подача команды анализатору о проведении калибровки для исследуемых показателей

Лаборатория

15 мин

Врач

  1. Калибровка прошла без замечаний.

  2. Отсутствие дополнительных сообщений со стороны компьютера/анализатора

III. Внутрилабораторный контроль качества

1. Подача команды анализатору о проведении исследования контрольного материала

Лаборатория

60 мин

Врач

  1. Отсутствие нарушений пяти правил Westgard.

  2. Отсутствие отклонений по результатам участия в ВОК

IV. Подготовка биоматериала к исследованию

1. Оценка качества подготовленного для исследования биоматериала

Лаборатория

15 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Идентичность данных заявки этикетке на вакутейнере.

  2. Отсутствие признаков гемолиза, желе, необычной мутности и окраски

2. Маркировка вакутейнеров и заявок в соответствии с идентификационными номерами, указанными в ЛИС

Лаборатория

40 мин

Фельдшер-лаборант

1. Соответствие номеров на вакутейнере и в ЛИС

3. Ввод задания для анализатора в ЛИС в соответствии с заявкой

Лаборатория

60-120 мин

Фельдшер-лаборант

1. Соответствие задания полученным заявкам

4. Расстановка проб с биоматериалом в сегменты и загрузка их в анализатор

Лаборатория

5 мин

Фельдшер-лаборант

1. Проверка по экрану компьютера правильности расстановки проб в сегментах

V. Проведение исследований

1. Подача команды анализатору о проведении исследований и их выполнение

Лаборатория

30-240 мин

Врач

1. Отсутствие сообщений анализатора об ошибках во время исследований

2. Оценка выдаваемых на экран компьютера/ анализатора результатов, их анализ, обработка и прием для распечатки

Лаборатория

30-240 мин

Врач

  1. Обнаружение и анализ величин, выходящих за пределы референтных.

  2. Принятие решения о проведении уточняющих анализов

3. Распечатка бланков с результатами исследований, проверка полноты выполнения задания, распечатка бланков и их подписание врачом

Лаборатория

30-240 мин

Врач

  1. Соответствие заявке на исследование.

  2. Отсутствие исправлений и небрежностей.

  3. Наличие подписи врача-лаборанта

4. Распределение бланков с результатами по пакетам, соответствующим заказчикам исследований

Лаборатория

15 мин

Фельдшер-лаборант

1. Соответствие распределения бланков в соответствии с названием заказчика

VI. Технический уход и обслуживание анализатора

1. Удаление всех использованных проб из анализатора

Лаборатория

10 мин

Фельдшер-лаборант

1. Отсутствие проб в анализаторе по данным компьютера

2. Установка промывочного раствора и промывка всех систем анализатора

Лаборатория

10 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Сообщение анализатора об окончании процесса.

  2. Наличие записи в рабочем журнале и подписи о выполнении промывки

3. Перевод анализатора в режим ожидания

Лаборатория

10 мин

Фельдшер-лаборант

  1. Отсутствие сообщений об ошибках на экране компьютера/анализатора.

  2. Сообщение на экране о выходе в режим «Ожидание»

VII. Составление статистических отчетов о проведенных исследованиях, расходе реактивов

1. Составление отчета о проведенных исследованиях

Лаборатория

10 мин

Врач

1. Наличие отчета

2. Составление актов на списание реактивов

Лаборатория

10 мин

Врач

1. Наличие акта

3. Анализ назначаемости

Лаборатория

10 мин

Врач

1. Наличие отчета с конкретным указанием отклонений

Типичные технологические нарушения

  1. Нарушение технологии подготовки биоматериала к исследованию.

  2. Нарушение технологии подготовки контрольного материала.

  3. Увеличение количества внеплановых калибровок.

  4. Отсутствие референтных величин в бланке исследований

Предложения по совершенствованию технологических процессов

  1. Выяснить причину нарушения технологии подготовки биоматериала и контрольного материала к исследованиям.

  2. Проанализировать причины внеплановых калибровок.

  3. Обязать врача лаборатории ввести референтные величины в базу данных компьютера

Таким образом, технологическая карта позволяет не только четко структурировать последовательные этапы получения результатов лабораторных исследований, визуализировать их, определить ответственных лиц за ту или иную технологическую операцию, но выявлять нарушения и оперативно вырабатывать мероприятия по их устранению.

Для регистрации таких нарушений и сбора информации об отклонениях от технологической карты необходимо разработать специальные формы. Одной из таких форм является контрольный листок - бумажный бланк, на котором заранее напечатаны контролируемые параметры, с тем чтобы можно было легко и точно записать данные измерений. Его главное назначение:

  • облегчить процесс сбора данных;

  • автоматически упорядочить данные для облегчения их дальнейшего использования.

Контрольный листок, на который можно заносить данные с помощью пометок или простых символов и который позволяет автоматически упорядочить данные без их последующего переписывания, - хорошее средство регистрации данных. В табл. 2.82 приведен пример контрольного листка. Контрольный листок необходимо разработать для всех технологических операций.

Таблица 2.82. Контрольный листок для регистрации нарушений технологических операций

Этап производства: преаналитический. Биологический материал: кровь на общеклиническое исследование.

Технологическая операция: прием на исследование. Общее число проконтролированных проб крови: 78. Отделение, откуда поступила кровь: общая хирургия. Примечания

Дата: 12 апреля 2003 г. Ф.И.О. проводившего контроль:

Тип дефекта

Результат контроля

Всего по типам дефектов

Расхождение между данными заявки и этикетки

I I I I I I

6

Отсутствие этикетки на вакутейнере

I I

2

Невозможность прочесть на заявке и/или этикетке паспортные данные пациента, отсутствие названия отделения, номера истории болезни, фамилии лечащего врача, подписи процедурной сестры, перечня анализов

I I I I I I I I

8

Гемолиз в пробе

I

1

Кровь взята не в тот вакутейнер

II

2

Наличие сгустков в пробе с антикоагулянтом

I

1

Превышение времени доставки проб крови

-

-

Итого

-

20

Практическое использование контрольного листка дает важную информацию для совершенствования технологических операций, поскольку он показывает, какие виды дефектов встречаются чаще, а какие нет.

При использовании контрольного листка важно не только выявить, какие дефекты превалируют, но и установить их причину. Выявленную проблему необходимо решать в следующей последовательности:

  1. распределить дефекты по видам и определить, какой из них представляет наибольшую трудность;

  2. составить список возможных причин дефектов;

  3. сгруппировать данные таким образом, чтобы выделить по отдельности последствия каждого вида дефекта;

  4. данные необходимо проанализировать с помощью основных инструментов всеобщего управления качеством (ВУК) (см. главу 6);

  5. когда причина возникновения дефекта очевидна, следует разработать меры по ее устранению и внимательно проследить за последующими результатами.

Технологические карты и контрольные листки имеют важное практическое значение для повышения качества лабораторных анализов.

Глава 3. ЭКОНОМИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

До недавнего времени КДЛ рассматривалась как специализированное производство в составе ЛПУ - поликлиники или стационара. Функции лаборатории состояли в обеспечении потребности лечебно-диагностического процесса ЛПУ в лабораторной информации (результатах лабораторных анализов) по номенклатуре, качеству и объему (количеству). В настоящее время КДЛ должна демонстрировать приемлемую эффективность технологического процесса производства анализов путем подбора оборудования, сочетания автоматизированных и ручных методик исследования, разделения труда, управления качеством, учетом и рациональным использованием материальных ресурсов и т.д. В связи с этим на первый план выходит экономическая эффективность деятельности КДЛ. Сам факт существования КДЛ в составе ЛПУ все больше определяется экономическим расчетом. Номенклатура и объем исследований становятся предметом принятия управленческого решения. Источником обновления основных фондов становится деятельность самой лаборатории. Полностью изменяется контекст работы заведующего КДЛ. Из руководителя производства заведующий КДЛ становится управляющим предприятием, область ответственности которого несравненно шире. Новые условия деятельности КДЛ - экономически целесообразное существование и развитие на рынке лабораторных услуг. Задачи руководителя - укрепление позиций лаборатории на рынке за счет эффективного использования имеющихся ресурсов.

Коренное изменение условий деятельности КДЛ, необходимость выживания в рыночных условиях и достижения коммерческого успеха требуют понимания и практического использования современных подходов к оценке экономической эффективности деятельности лабораторий.

3.1. СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ОЦЕНКЕ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ЛАБОРАТОРИИ

Оценка экономической эффективности деятельности КДЛ - это расчет, интерпретация и оценка комплекса экономических показателей, характеризующих различные стороны ее деятельности. Методология экономической оценки эффективности деятельности лаборатории в настоящее время является одним из важных направлений научно-практических исследований во многих странах мира.

В отношении экономических оценок эффективности деятельности КДЛ необходимо понимать, что такие оценки включают три уровня:

  • 1-й уровень связан непосредственно с производственными затратами на проведение лабораторных тестов;

  • 2-й уровень сосредоточен на экономической оценке затрат, связанных с вкладом лаборатории в лечение пациента, и позволяет ответить на вопрос: клинически эффективны ли лабораторные тесты с точки зрения улучшения качества медицинской помощи пациенту и стоимости, то есть оправдывают ли они свою стоимость?

  • 3-й уровень связан с количественной оценкой стоимости лабораторных ошибок и их влияния на лабораторию, лечебное учреждение и лечение пациентов.

Основными экономическими показателями, которые характеризуют 1-й уровень, являются:

  1. себестоимость (стоимость) анализа - суммарные затраты на производство и реализацию результатов анализов;

  2. прибыль от реализации - разность между выручкой от реализации лабораторных анализов и себестоимостью анализов;

  3. рентабельность продукции, то есть результатов лабораторных анализов, - отношение прибыли от реализации результатов анализов к их себестоимости.

Расчет себестоимости лабораторных анализов и издержек на их производство является инструментом получения и анализа информации об экономической эффективности деятельности лаборатории. В идеале следует научиться рассчитывать затраты на каждый тест или на выдаваемый результат.

3.1.1. РАСЧЕТ СЕБЕСТОИМОСТИ ЛАБОРАТОРНЫХ АНАЛИЗОВ

Определение себестоимости лабораторных анализов - классическая задача, которую необходимо решать каждой КДЛ. У нас в стране еще не накоплено достаточно опыта по решению данной задачи, поэтому рассмотрим, как рассчитывают себестоимость продукции на любом промышленном предприятии, тем более что получение результатов лабораторных исследований и есть производство по своей сути. Для этого нам предстоит разобраться в сложившейся системе понятий затрат, связанных с производством продукции, а применительно к КДЛ - с производством результатов лабораторных исследований.

Для начала напомним о некоторых базовых принципах учета затрат, указав на принципиальные отличия, которые имеют управленческие и сложившиеся в отечественной практике подходы в этих вопросах. Классическая система учета затрат состоит обычно из следующих разделов:

  • учет затрат по видам;

  • учет по центрам затрат (местам их возникновения - детализация затрат);

  • учет затрат по объектам учета (в том числе определение себестоимости).

Объект учета затрат в КДЛ - это лабораторная услуга (вид лабораторного анализа), отдел лаборатории, контракт, проект или другой объект, для которого выполняется учет, измерение или оценка затрат.

Учет затрат по видам показывает, какие затраты возникли по классификационным группам, относимым к КДЛ, в процессе производства результатов лабораторных анализов в отчетном периоде (месяц, квартал, год). Типичные виды затрат: основные расходные материалы, заработная плата основных производственных специалистов лаборатории, вспомогательные материалы, электроэнергия, аренда, налоги (по видам) и т.д. Учет затрат по видам в КДЛ показывает раздельно, сколько денег тратит лаборатория на заработную плату специалистов, администрации, аренду помещений, расходные материалы, электроэнергию, канцелярские принадлежности, ремонт оборудования и т.д.

В рамках учета затрат по центрам различные виды затрат относятся к тем подразделениям КДЛ (гематологический, биохимический, гормональный и другие отделы лаборатории), в которых они были осуществлены. Учет затрат по центрам позволяет оценить, сколько денег в КДЛ уходит на производство гематологических, биохимических, гормональных, бактериологических и тому подобных анализов.

В процессе фиксации затрат по объектам учета, в качестве которых в КДЛ выступают лабораторные услуги (лабораторные анализы), учитывают все затраты, связанные с выполнением определенного вида лабораторных исследований. Учет затрат по лабораторным услугам (лабораторным анализам) служит основой для установления цен на лабораторные анализы, является базой для исчисления налогов, а также для текущей оценки результатов деятельности КДЛ. Этот вид учета позволяет иметь четкое представление о том, каковы затраты на производство каждого вид анализа, который выполняет лаборатория, или, другими словами, какова себестоимость каждого анализа.

Для определения себестоимости лабораторных анализов используется метод отнесения затрат, в основе которого лежит деление затрат на прямые и косвенные.

Элемент затрат относится к прямым затратам, если можно экономически обосновать его однозначную (причинно-следственную) связь с конкретным видом лабораторного анализа. Прямые затраты, таким образом, непосредственно относятся к конкретному объекту учета затрат (лабораторный анализ). В налоговом учете под прямыми расходами понимаются расходы, связанные с производством определенной продукции (работ, услуг), которые могут быть отнесены непосредственно к себестоимости. К таким расходам относятся:

  • материальные затраты;

  • оплата труда основных производственных работников, занятых непосредственно в производстве продукции, а также суммы единого социального налога, начисленные на указанные суммы расходов на оплату труда (за минусом взносов на обязательное пенсионное страхование);

  • суммы начисленной амортизации по основным средствам, используемым при производстве товаров (работ, услуг).

Элемент затрат относится к косвенным затратам, если его нельзя экономически обоснованно отнести к какому-то одному объекту учета затрат (виду лабораторного анализа). Например, невозможно на исследование глюкозы в сыворотке крови отнести все затраты на приобретение вакуумных систем, в которые взята кровь еще на 10 биохимических показателей. При расчете себестоимости анализа затраты должны относится к тому или иному виду анализа в соответствии с тем, насколько эти затраты связаны с производством того или иного вида анализа.

Таким образом, расчет себестоимости лабораторных анализов целесообразно производить в следующем порядке:

  • 1-й шаг - определение реальных прямых затрат на производство одного лабораторного анализа каждого вида. В состав прямых затрат необходимо включить налоги с выручки от реализации лабораторных анализов (если таковые есть).

  • 2-й шаг - выделение в составе косвенных издержек тех затрат, которые могут быть отнесены напрямую к конкретному виду лабораторного анализа (связанных с производством конкретного вида анализа). Определение затрат на один анализ производится путем деления их абсолютной величины на количество исследований данного вида.

  • 3-й шаг - суммирование не относящихся к данному конкретному виду исследований затрат за определенный период и деление их на общее количество анализов за этот период.

  • 4-й шаг - суммирование прямых, косвенных и всех прочих расходов для получения полных затрат (полная стоимость; total cost).

Таковы теоретические подходы к расчету себестоимости лабораторных анализов. Теперь рассмотрим, как они реализуются в реальной жизни.

В настоящее время существует несколько практических подходов к расчету себестоимости лабораторных анализов. Несмотря на общие составляющие для расчета себестоимости анализов, подходы, которые используются у нас в стране и за рубежом, несколько отличаются. Главное отличие состоит в том, что в развитых странах КДЛ - это самостоятельное коммерческое предприятие. У нас в стране по сущности своей основной деятельности (производство результатов лабораторных анализов) КДЛ - самостоятельная часть ЛПУ, а в отношении экономической деятельности достаточно прибыльная, но несамостоятельная коммерческая составляющая.

Методика расчета стоимости лабораторного исследования определяет особенности формирования тарифов, включающих выполнение лабораторных исследований в рамках программы государственных гарантий бесплатного оказания медицинской помощи, в объеме, определенном территориальной программой обязательного медицинского страхования.

В соответствии с Федеральным законом РФ от 29 ноября 2010 г. № 326-ФЗ «Об обязательном медицинском страховании в РФ» (в ред. Федеральных законов от 14 июня 2011 г. № 136-ФЗ, от 30 ноября 2011 г. № 369-ФЗ, от 3 декабря 2011 г. № 379-ФЗ, от 28 июля 2012 г. № 133-ФЗ, от 1 декабря 2012 г. № 213-ФЗ, от 11 февраля 2013 г. № 5-ФЗ, от 2 июля 2013 г. № 185-ФЗ, от 23 июля 2013 г. № 251-ФЗ, от 27 сентября 2013 г. № 253-ФЗ, от 25 ноября 2013 г. № 317-ФЗ, от 28 декабря 2013 г. № 390-ФЗ, от 12 марта 2014 г. № 33-ФЗ, от 10 июля 2014 г. № 204-ФЗ, от 21 июля 2014 г. № 268-ФЗ, от 1 декабря 2014 г. № 418-ФЗ), приказом Минздравсоцразвития России от 28 февраля 2011 г. № 158н «Об утверждении Правил обязательного медицинского страхования (в ред. приказов Минздравсоцразвития России от 10 августа 2011 г. № 897н, от 9 сентября 2011 г. № 1036н, приказов Минздрава России от 22 марта 2013 г. № 160н, от 21 июня 2013 г. № 396н, от 20 ноября 2013 г. № 859ан) стоимость лабораторного исследования включает:

  1. расходы на заработную плату, начисления на оплату труда, прочие выплаты, приобретение лекарственных средств, расходных материалов, продуктов питания, мягкого инвентаря, медицинского инструментария, реактивов и химикатов, прочих материальных запасов; расходы на оплату стоимости лабораторных и инструментальных исследований, проводимых в других учреждениях (при отсутствии в медицинской организации лаборатории и диагностического оборудования), организацию питания (при отсутствии организованного питания в медицинской организации); расходы на оплату услуг связи, транспортных, коммунальных услуг, работ и услуг по содержанию имущества; расходы на арендную плату за пользование имуществом, оплату программного обеспечения и прочих услуг, социальное обеспечение работников медицинских организаций, установленное законодательством РФ, прочие расходы; расходы на приобретение оборудования стоимостью до 100 000 руб. за единицу в соответствии с частью 7 статьи 35 Федерального закона;

  2. дополнительные элементы структуры тарифа на оплату медицинской помощи, определенные программой государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи, утвержденной Правительством РФ в соответствии с частью 8 статьи 35 Федерального закона;

  3. расходы, определенные территориальной программой обязательного медицинского страхования в случае установления дополнительного объема страхового обеспечения по страховым случаям, установленным базовой программой обязательного медицинского страхования за счет средств субвенций из бюджета Федерального фонда и межбюджетных трансфертов из бюджетов субъектов РФ в бюджет территориального фонда.

Расчет стоимости лабораторных исследований для целей данного приказа осуществляется нормативным методом определения затрат.

  1. При расчете стоимости лабораторных исследований для целей данного приказа единицей медицинской услуги является проведение одного исследования в соответствии с приказом Минздравсоцразвития России от 27 декабря 2011 г. № 1664н «Об утверждении номенклатуры медицинских услуг» (с изменениями и дополнениями).

  2. В расчет стоимости лабораторных исследований включаются затраты медицинской организации, непосредственно связанные с проведением лабораторных исследований и потребляемые в процессе ее предоставления, и затраты, необходимые для обеспечения деятельности медицинской организации в целом, но не потребляемые непосредственно в процессе выполнения лабораторных исследований.

  3. Затраты, необходимые для обеспечения деятельности медицинской организации в целом, но не потребляемые непосредственно в процессе выполнения лабораторных исследований, рассчитываются согласно положениям приказа Минздравсоцразвития России от 28 февраля 2011 г. № 158н «Об утверждении Правил обязательного медицинского страхования (в ред. приказов Минздравсоцразвития России от 10 августа 2011 г. № 897н, от 9 сентября 2011 г. № 1036н, приказов Минздрава России от 22 марта 2013 г. № 160н, от 21 июня 2013 г. № 396н, от 20 ноября 2013 г. № 859ан). При этом такие затраты распределяются пропорционально объему лабораторных исследований и затратам, непосредственно связанным с проведением лабораторных исследований и потребляемым в процессе ее предоставления, согласно формуле полных затрат на одно исследование, в соответствии с вышеуказанной номенклатурой медицинских услуг:

    pic 0115

    где Z - совокупный объем затрат медицинской организации по затратам, необходимым для обеспечения деятельности медицинской организации в целом, но не потребляемые непосредственно в процессе выполнения лабораторных исследований;
    Xi - объем затрат, непосредственно связанных с проведением лабораторных исследований и потребляемых в процессе ее предоставления, в расчете на одно исследование в соответствии с номенклатурой клинических лабораторных исследований;
    Yi - планируемый объем проведения одного вида лабораторных исследований в соответствии с номенклатурой клинических лабораторных исследований согласно государственному заданию на срок расчета тарифа;
    I - количество различных видов лабораторных исследований в соответствии с номенклатурой клинических лабораторных исследований согласно государственному заданию на срок расчета тарифа;

    image
    1. В составе детализированных затрат, непосредственно связанных с проведением лабораторных исследований, учитываются следующие группы затрат:

      • затраты на оплату труда и начисления на выплаты по оплате труда персонала, принимающего непосредственное участие в проведении лабораторных исследований;

      • затраты на приобретение материальных запасов, потребляемых в процессе проведения лабораторных исследований, а именно реагентов, контрольных материалов, калибраторов, лабораторной посуды, контейнеров для получения хранения и перевозки различных видов биоматериалов, расходных материалов для получения биоматериалов и других видов материалов, используемых при проведении лабораторных исследований;

      • затраты на амортизацию оборудования, используемого при проведении лабораторных исследований;

      • затраты на проведение внутреннего контроля качества лабораторных исследований, оплаты участия в системах внешней оценки качества, реализацию программы менеджмента качества и проведения внутреннего и внешнего инспекционного контроля качества проведения лабораторных исследований;

      • затраты на амортизацию и эксплуатацию информационных систем, используемых для выполнения лабораторных исследований;

      • затраты на проведение регулярного профилактического технического обслуживания оборудования, используемого при лабораторных исследованиях;

      • затраты на обучение, повышение квалификации персонала, принимающего непосредственное участие в проведении лабораторных исследований;

      • затраты на доставку в централизованную лабораторию биологических образцов.

    2. Затраты на приобретение материальных запасов рассчитываются путем составления формуляров, определяющих нормы расходов материальных запасов на производство одного лабораторного исследования. При расчете норм расходов в формуляре учитываются затраты, относимые на все лабораторные исследования, проводимые на одном лабораторном анализаторе, и на конкретный вид лабораторных исследований. В формуляре указываются перечень расходных материалов, реагентов, контролей и калибраторов с указанием базы отнесения; нормы расхода с учетом необходимых повторов выполнения тестов, ожидаемых потерь от истечения срока годности, ожидаемых расходов, связанных с проведением контроля качества исследований, ожидаемой стоимости закупки материальных запасов в период действия стоимости лабораторных исследований. При составлении формуляров учитываются режим выполнения лабораторных исследований и прогнозируемые объемы выполнения лабораторных исследований.

    3. Затраты на оплату труда и начисления на выплаты по оплате труда определяются исходя из потребности в количестве персонала, принимающего непосредственное участие в проведении лабораторных исследований, в соответствии с нормами трудозатрат, предусмотренными пунктом 1 настоящего приложения.

  4. Затраты на амортизацию оборудования, используемого при проведении лабораторных исследований, определяются исходя из балансовой стоимости оборудования, годовой нормы его износа и времени работы оборудования в процессе выполнения лабораторных исследований. Затраты на амортизацию оборудования стоимостью свыше 100 000 руб. за единицу определяются в случае, если указанные расходы включены в территориальную программу обязательного медицинского страхования.

Значительную помощь в расчете себестоимости лабораторных анализов может оказать и приказ Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380 с использованием следующих расчетов:

S = V + AM + Э + М + П,

где S - себестоимость исследования; V - оплата труда; AM - амортизационные отчисления на оборудование; Э - эксплуатационные расходы на содержание оборудования и инвентаря; М - материальные затраты (затраты на реактивы, лабораторное стекло, пластмассовые изделия, термобумагу, моющие средства и т.д.); П - прочие расходы.

Для расчета составляющей себестоимости исследования по оплате труда необходимо использовать нормы затрат времени на проведение каждого вида лабораторных анализов (приказ Минздрава России от 25 декабря 1997 г. № 380, приложение 11), годовой фонд заработной платы медицинского персонала и годовой бюджет рабочего времени сотрудников лаборатории, выполняющих исследования (для различных категорий специалистов лаборатории он разный).

При определении годового фонда заработной платы весь медицинский персонал делится на три следующие группы:

  • занятые непосредственно проведением лабораторных исследований (врачи и сотрудники со средним медицинским образованием);

  • принимающие участие в обеспечении деятельности лаборатории, но не участвующие непосредственно в проведении исследований;

  • обеспечивающие деятельность ЛПУ.

При этом должностной оклад заведующего КДЛ суммируется с окладом врачей в том случае, если он выполняет все функции врача. Если заведующий КДЛ освобожден от выполнения функциональных обязанностей врача и занимается только административной работой, его должностной оклад суммируется с окладом санитарок, регистраторов и так далее как группы персонала, не принимающего непосредственного участия в выполнении лабораторных исследований.

Оплата труда рассчитывается по следующей формуле:

V = (А х na + В х nb)(I + C)(I + d)(I + f),

где V - оплата труда медицинского персонала; А - годовой фонд заработной платы врачебных должностей (в среднем по лаборатории); В - годовой фонд заработной платы должностей со средним медицинским образованием (в среднем по лаборатории); I - количество различных видов лабораторных исследований; na, nb - отношение затрат времени на выполнение исследования к годовому бюджету рабочего времени соответствующей должности; C - отношение годового фонда заработной платы всех работников лаборатории, не участвующих непосредственно в проведении исследований, к годовому фонду заработной платы работников, выполняющих исследования; d - коэффициент отчислений на социальные нужды (определяется действующими нормативами отчислений в фонды социального и обязательного медицинского страхования, в пенсионный фонд, фонд занятости населения; при изменении этих нормативов величина коэффициента должна быть изменена); f - коэффициент накладных расходов, рассчитывается по формуле:

image

где Е - заработная плата административно-хозяйственного персонала учреждения с отчислениями на социальные нужды; Q - сумма расходов по статьям сметы доходов и расходов учреждения (канцелярские и хозяйственные расходы, расходы на командировки и служебные разъезды, ремонт зданий и сооружений, приобретение книг и т.д.); З - заработная плата всего персонала учреждения, включая премии, выплаты стимулирующего характера по системным положениям.

Амортизационные отчисления на оборудование рассчитываются по формуле:

image

где io - амортизационные отчисления на основное оборудование; IB - амортизационные отчисления на вспомогательное оборудование; N - число исследований данного вида; N1 - число исследований, выполненных на основном оборудовании.

Эксплуатационные расходы на содержание оборудования и инвентаря рассчитываются по формуле:

image

где Э - эксплуатационные расходы как составляющая стоимости анализа; О - затраты на содержание оборудования (техническое обслуживание, метрологическое обеспечение и т.д.); N - число исследований, выполненных на оборудовании.

Материальные затраты складываются из затрат на расходные материалы (p) и реактивы ®:

image

Затраты на расходные материалы рассчитываются по формуле:

image

где р - затраты на расходные материалы как составляющая стоимости анализа; Д - затраты на лабораторное стекло, пластмассовые изделия, термобумагу и т.д.; N - число исследований данного вида.

Затраты на реактивы зависят от методик исследований; при работе с готовыми наборами реактивов, предназначенными для выполнения определенного количества исследований (10, 50, 100 и т.д.), необходимо учитывать все исследования, включая повторные, параллельные, калибровочные, контрольные и т.д. Применительно к унифицированным методам можно использовать расчеты потребности реактивов на 100 определений. В остальных случаях следует исходить из фактических затрат реактивов на данный вид исследований. Кроме того, для обеспечения ВКК требуются расходы на приобретение контрольных материалов, стоимость которых должна быть включена в себестоимость анализа.

Затраты на реактивы как составляющая стоимости лабораторного анализа рассчитывается по формуле:

image

где R - затраты на реактивы; W - стоимость набора реактивов; N - число исследований, выполненных данным набором; m - расходы на контрольные материалы; n - число исследований, при которых используются данные контрольные материалы.

Прочие расходы. В себестоимость лабораторного исследования должны быть включены и другие компоненты, например, участие в федеральной системе внешней оценки качества, внедрение новых методов исследования, новой аппаратуры и тест-систем и др.

Безусловно, приведенные подходы являются правильными и учитывают практически все затраты, связанные с производством лабораторных анализов. Вместе с тем для всех специалистов, кто в настоящее время работает в КДЛ, понятно, что они трудновыполнимы. В первую очередь это связано с тем, что значительную часть информации для расчета себестоимости анализов должна предоставить бухгалтерия ЛПУ. В практической жизни получить такую информацию от бухгалтерии заведующему КДЛ невозможно. Это обусловлено не только нежеланием бухгалтерии выполнять дополнительную работу, но и с тем, что бухгалтерия физически не может ее выполнить. Как бухгалтерии предоставить для КДЛ отдельно от других подразделений ЛПУ данные по затратам на хозяйственные нужды, эксплуатационные расходы, амортизационные отчисления на каждый прибор и отдельную единицу вспомогательного оборудования? Какова доля, приходящаяся на КДЛ, заработной платы административно-хозяйственного персонала учреждения с отчислениями на социальные нужды или заработной платы всего персонала учреждения, включая премии, выплаты стимулирующего характера по системным положениям? Перечень таких вопросов, на которые невозможно получить ответ, можно продолжить. Безусловно, эти проблемы постепенно решаются. Например, имеются разъяснительные письма, как рассчитывать распределение затрат по подразделениям ЛПУ на содержание помещений, административно-хозяйственный аппарат и т.д. Однако они не решают проблему в целом.

Кроме того, часть руководителей ЛПУ запрещает доступ заведующему КДЛ к информации о затратах на приобретение реактивов, контрольных материалов, расходного имущества и т.д. В ряде регионов страны закупка реактивов, контрольных материалов и оборудования осуществляется централизованно унитарными предприятиями, и получить информацию о стоимости закупок еще сложнее.

Именно поэтому заведующие КДЛ используют простой метод расчета себестоимости одного исследования, а именно рассчитывают только стоимость реактивов для его выполнения и добавляют к ней некое эмпирическое значение, которое якобы включает вклад всех остальных затрат в себестоимость. Примерно аналогичным образом поступают и в различных страховых компаниях. В связи с этим себестоимость исследований у нас в стране не является величиной объективной.

Представляется, что выходов из существующей ситуации может быть несколько:

  1. формирование в каждом ЛПУ отдельного бюджета для КДЛ;

  2. ведение в ЛПУ отдельного учета всех затрат по содержанию КДЛ.

При практической реализации любого из представленных вариантов КДЛ смогла бы реально рассчитывать себестоимость исследований, используя возможности ЛИС. Кроме того, появилась бы возможность для расчета себестоимости анализов и оценки экономической эффективности деятельности КДЛ использовать наработки коммерческих лабораторий нашей страны и зарубежный опыт.

Зарубежные коммерческие лаборатории уже давно осознали, что основным вопросом, влияющим на все остальные аспекты деятельности КДЛ, является вопрос себестоимости одного анализа. Для расчета себестоимости анализа используются следующие подходы (William O.U., 1996):

себестоимость анализа = прямые расходы + косвенные расходы + накладные расходы;

прямые расходы = лабораторные трудовые затраты + реагенты;

косвенные расходы = косвенные материалы (1) + косвенные трудовые затраты (2) + другие косвенные расходы (3);

накладные расходы = расходы на сбор/отчеты (4) + административные расходы (5),

где 1 - лабораторные материалы, отходы;

2 - контроль, обучение, исследования и развитие;

3 - амортизация, содержание, обработка данных;

4 - сбор образцов, отчеты о тестах, интерпретация результатов, маркетинг;

5 - заработная плата административному и медицинскому персоналу, коммуникации, обучение, безопасность, проверка качества, продолжающееся образование, транспортировка.

В зарубежных КДЛ к непрямым расходам (косвенные + накладные) относятся следующие:

  • лизинг, аренда оборудования;

  • сервис и обслуживание оборудования;

  • амортизационные отчисления;

  • заработная плата (менеджмент, служба поддержки и сервиса);

  • расходные материалы, используемые не для анализов (контроль качества и др.);

  • лабораторная информационная система;

  • лицензии, гонорары;

  • профессиональные расходы (конференции и др.);

  • тренинги;

  • обслуживание инженерных систем;

  • коммунальные платежи;

  • подготовка помещений для инсталляции оборудования и перепланировка помещения.

Нередко специалисты КДЛ задают вопрос о том, действительно ли лаборатории за рубежом при расчете себестоимости анализа учитывают все затраты. В этой связи необходимо понимать, что в реальности используются два метода отнесения затрат - полного и частичного их учета. При отнесении затрат в полном объеме по объектам учета распределяются все полные затраты на проведение анализа независимо от их принадлежности к прямым и косвенным. Затраты, которые не могут быть отнесены на конкретный вид анализа непосредственно, сначала учитываются по центрам затрат, а затем с помощью коэффициентов распределения переносятся на себестоимость всех анализов. Согласно второму методу, в расчет берется только часть совокупных затрат на проведение исследования, как правило, прямых. Она распределяется непосредственно на один анализ. Оставшуюся часть затрат в калькуляцию не включают и учитывают при расчете прибылей и убытков за отчетный период.

Таким образом, данный метод позволяет определить величину выручки для покрытия суммы прямых и косвенных затрат производства анализов. Она представляет собой разность между выручкой от продажи одного анализа и прямыми затратами на его выполнение. Эта доля покрывает не учитываемые в рамках данного метода косвенные и накладные затраты. Оба метода имеют свои особенности применения, свои достоинства и недостатки, поэтому на практике часто используются параллельно.

Опыт коммерческих КДЛ показывает, что если КДЛ является самостоятельным юридическим или хозяйствующим лицом, получить все необходимые данные для расчета не представляет большой сложности. Вместе с тем и в зарубежных коммерческих лабораториях существуют трудности при расчете себестоимости анализов. В первую очередь они обусловлены тем, что всегда сложно определить реальный вклад косвенных и накладных расходов в себестоимость отдельного вида исследований. Обычно проблема решается согласно приведенным выше подходам. В результате вклад каждого вида затрат на один анализ можно детализировать, а в дальнейшем использовать для работы по снижению себестоимости исследования (рис. 3.1).

Детализация вклада каждого вида затрат (учет по центрам затрат) позволяет иметь объективную картину о себестоимости одного анализа при различных условиях работы лаборатории. На рис. 3.2 представлена себестоимость одного исследования мочевой кислоты при рутинном анализе и определении ее концентрации лабораторией экспресс-диагностики в ночное время.

pic 0123
Рис. 3.1. Составляющие себестоимости одного анализа
pic 0124
Рис. 3.2. Составляющие себестоимости одного анализа мочевой кислоты при рутинном анализе и определении ее концентрации лабораторией экспресс-диагностики в ночное время

Распределение составляющих себестоимости анализов по центрам затрат может служить основанием для выбора стратегии выполнения лабораторных исследований. Например, T.M. Bailey (1999) сравнил расходы по выполнению панели тестов (натрий, калий, ионизированный кальций, глюкоза, гематокрит, рН, рСО2 и рО2) в лаборатории экспресс-диагностики и при проведении этих тестов персоналом реанимационного отделения с применением средств «анализа по месту лечения» в крупном госпитале на 1000 коек (табл. 3.1).

Таблица 3.1. Расходы по выполнению панели тестов (натрий, калий, ионизированный кальций, глюкоза, гематокрит, рН, рСО2 и рО2) в лаборатории экспресс-диагностики и при проведении этих тестов персоналом реанимационного отделения
Центр затрат Расходы при выполнении в лаборатории, $ Расходы при выполнении персоналом реанимационного отделения,$ Различия

Отделение

1,77

0,71

1,06

Лаборатория

10,89

1,69

9,20

Расходные материалы

1,90

5,32

-3,42

Обслуживание оборудования

0,45

0,07

0,38

Амортизационные отчисления

0,32

0,24

0,08

Итого

15,33

8,03

7,50

Как видно из табл. 3.1, при выполнении исследований персоналом реанимационного отделения отмечается значительное снижение затрат на производство лабораторных исследований. Это послужило основанием для перестройки структуры лабораторного обеспечения пациентов госпиталя: лаборатория экспресс-диагностики была ликвидирована как штатная единица вместе с оборудованием, исключены расходы на используемые ею расходные материалы и обслуживание оборудования, сокращены 15 сотрудников. Все исследования стали проводить сотрудники реанимационного отделения. В результате произошла экономия средств для госпиталя на 392,4 тыс. долларов США. Этот пример показывает, как распределение составляющих себестоимости анализов может быть использовано для экономического обоснования изменения структуры лабораторного обеспечения в ЛПУ.

Детализация себестоимости одного анализа имеет важное значение и при решении вопроса о том, что делать с лабораторными исследованиями, убыточными по себестоимости. Логичным выводом представляется отказ от их выполнения. Однако первоначально необходимо рассмотреть возможность повышения цены реализации анализа либо искать пути наращивания объемов его продаж (что позволит снизить себестоимость анализа).

Вместе с тем необходимо понимать, что себестоимость анализа объединяет в себе не только затраты, напрямую связанные с его производством, но и косвенные затраты. Отказ от выполнения данного вида исследования, убыточного по себестоимости, приведет к сокращению только тех затрат, которые имеют прямую связь с его проведением. Прочие затраты, которые могут присутствовать в составе себестоимости, но не имеют прямой связи с его производством, могут остаться без изменения. Например, входящие в состав себестоимости анализа затраты на содержание оборудования, зданий, арендная плата, заработная плата административно-хозяйственного аппарата могут не претерпеть никаких изменений в связи с отказом от выполнения данного анализа.

В связи с этим оптимизация прибыли КДЛ за счет отказа от выполнения убыточного анализа возможна, если при этом сократятся все затраты, определяющие себестоимость анализа. Конечно, в реальной практике такой случай (сокращение всех затрат, входящих в себестоимость анализа) является больше исключением, чем правилом. В подавляющем большинстве случаев отказ от выполнения убыточного анализа приведет к сокращению только части расходов КДЛ.

Если выручка, получаемая от реализации убыточного по себестоимости анализа, превышает прямые расходы на его производство, то данный анализ вносит определенный вклад на покрытие прочих расходов, напрямую не связанных с его производством, то есть приносит КДЛ доход. Если при этом наблюдается убыток по себестоимости анализа, то это свидетельствует о том, что приносимый данным видом анализа вклад на покрытие всех затрат (то есть цена или объем продаж анализа) недостаточен для покрытия полных затрат на его производство, но вклад все-таки есть. В такой ситуации простой отказ от производства данного вида анализа лишит КДЛ пусть небольшого, но все же вклада на покрытие общих накладных расходов и тем самым снизит получаемую прибыль. В отношении анализов, для которых наблюдается представленная выше ситуация, можно выбрать следующее решение:

  1. повысить цены реализации и/или объемы продаж;

  2. если в целом продажи анализов прибыльны, оставить все как есть на данный момент;

  3. заменить метод и/или оборудование для выполнения исследования.

Расходные материалы и реактивы вносят существенный вклад в конечную себестоимость исследования. В основном именно затраты на расходные материалы и реактивы используются в нашей стране в настоящее время для расчета себестоимости анализа и оценки экономической эффективности деятельности КДЛ. Объективные причины такого подхода рассмотрены выше. Однако и при таком подходе руководители ЛПУ и заведующие КДЛ должны понимать и учитывать при расчете себестоимости целый ряд технологических особенностей производства лабораторных анализов.

Во-первых, для корректного подсчета стоимости реактивов необходимо правильно учитывать количество самих тестов, поскольку в процессе выполнения анализа (вручную или на анализаторе) реактив расходуется как на непосредственное исследование образца пациента, так и на повторное и параллельное тестирование, проведение калибровок и ежедневного контроля качества. Именно поэтому подсчет затрат реактивов на основе перевода количества проведенных исследований в количество упаковок производителя и их стоимость, который нередко используется на практике заведующими КДЛ без учета дополнительного потребления реактивов, может служить источником существенных ошибок при расчете себестоимости анализов. В ряде исследований изучен вклад расхода реактивов на калибровку в себестоимость анализа в зависимости от частоты калибровок и количества исследований в промежутке между ними. Показано повышение вклада стоимости реактивов на 60% при частоте калибровки 2 раза в месяц, частоте использования метода 1 раз в неделю и средней величине серии нелинейного метода пять анализов (Штерн П. и др., 1997). Именно поэтому необходимо перейти от использования средних расчетных цифр к детальному определению расхода реактивов для каждого вида исследования и подсчета реальной себестоимости теста в случае каждой конкретной лаборатории с определенными объемами исследований.

В табл. 3.2 отражены итоги расчета дополнительного потребления реактивов для крупной лаборатории «А», выполняющей 877 000 биохимических тестов в год (Евгина С.А., 2006).

Таблица 3.2. Дополнительные затраты реактивов при проведении лабораторных исследований
Тестируемые вещества Заказанные тесты Выполненные тесты Дополнительное потребление по количеству тестов, %

Амилаза

22 000

23 512

7

Альбумин

10 000

11 537

15

Щелочная фосфатаза

13 000

14 512

12

Билирубин прямой

22 000

23 537

7

Билирубин общий

95 000

96 537

1,6

Кальций

5000

6537

31

Холестерин

18 000

19 537

9

КК

2000

3512

76

Железо

3000

4537

51

у-Глутатионтрансфераза

8000

9512

19

Общий белок

100 000

101 537

1,5

Глюкоза

210 000

211 537

0,7

АЛТ

100 000

101 512

1,5

АСТ

100 000

101 512

1,5

Мочевая кислота

7000

8537

22

Мочевина

100 000

101 537

1,5

Креатинин

35 000

37 268

6,5

ЛДГ

6000

7512

25

Магний

160

5214

5114

Фосфор

3000

6089

102

Триглицериды

11 000

12 537

14

С-реактивный белок

7000

8680

24

Холестерин ЛПВП

700

2237

220

Расчеты показывают, что для того чтобы лаборатория смогла сообщить 22 000 результатов по амилазе (табл. 3.2), реально необходимо выполнить 23 512 тестов, то есть на 7% больше. Для таких рутинных позиций, как билирубин, общий белок, мочевина, глюкоза, расход реактива увеличивается незначительно, в пределах 1-2%. В то же время даже в такой крупной лаборатории есть более редко назначаемые тесты, например КК, железо, магний, фосфор, холестерин ЛПВП, где процент дополнительного потребления очень высок. В целом по лаборатории «А» получается низкий уровень дополнительного потребления реактивов - 5% количества заказанных тестов. Для лаборатории «Б», выполняющей 233 000 биохимических тестов в год, дополнительное потребление реактивов, связанное с проведением калибровок, контроля качества и учета стабильности реактивов на борту, составит уже 23% общего количества заказанных тестов.

На следующем этапе необходимо дополнительный расход реактива по количеству тестов перевести в итоговую стоимость реактива для этого вида исследований и определить реальную стоимость отчетного теста (вклад стоимости реактива в себестоимость теста):

Ст. итог = ст. дост. теста х кол. итог. = (ст. упак / кол. заяв.) х (кол. отчетн. тестов + кол. доп. потр.);

ст. отчетн. тест = ст. итог / кол. отчет. тестов,

где

ст. дост. теста - стоимость доставляемого теста;

кол. итог. - итоговое количество доставляемых тестов;

ст. упак. - стоимость упаковки реактива;

кол. заяв. - заявленное производителем количество тестов в упаковке;

кол. отчетн. тестов - количество отчетных тестов;

кол. доп. потр. - дополнительное количество тестов для проведения калибровок, контроля качества и учета стабильности реактива на борту.

Получившееся значение показывает, во сколько действительно обходится стоимость реактива для проведения заявленного лабораторией объема тестов. Чем выше процент дополнительного потребления по конкретному тесту, тем существенней разница между стоимостью доставляемого теста и итоговой стоимостью отчетного теста. В зависимости от того, по каким тестам уровень дополнительного потребления наиболее высокий, процент превышения суммарной стоимости всех отчетных тестов над суммарной стоимостью исследований, рассчитываемой без учета дополнительного потребления, может быть больше, чем процент среднего дополнительного потребления лаборатории по количеству тестов. Другими словами, если для проведения всего объема исследований в лаборатории «А» необходимо доставить тестов в количестве на 5% больше, то суммарная стоимость всех отчетных результатов в лаборатории «А» уже отличается от стоимости исследований, рассчитываемой без учета дополнительного потребления, на 11%. Для лаборатории «Б» при дополнительном потреблении по количеству тестов 23% суммарная стоимость отчетных тестов отличается на 29%. В этих случаях в лабораториях самое высокое дополнительное потребление возникает по наиболее дорогим тестам.

Детальные расчеты расхода и стоимости реактивов могут служить базой для анализа о целесообразности проведения тех или иных тестов в небольших лабораториях, обоснованием для централизации исследований.

Важно понимать и такую простую истину: существующие в настоящее время тарифы на оплату лабораторных исследований фонда обязательного медицинского страхования, по своей сути, включают только примерную стоимость реактивов на один анализ, при этом не самых качественных.

Безусловно, реальная стоимость реактивов на выполнение одного теста имеет важное значение для расчета себестоимости одного анализа. Зная ее, рассчитать экономические затраты на выполнение простых анализов, выполняемых вручную (например, анализа мочи), значительно легче. Но экономические затраты на исследования, выполняемые с применением автоматических анализаторов, определить сложнее, поскольку необходимо вычислить косвенные затраты на обеспечение работы анализатора и прямые затраты, необходимые для проведения одного анализа. Прямые затраты, помимо реактивов, включают расход промывочного раствора, стоимость калибраторов, контрольных материалов, кювет и т.д.

В большинстве КДЛ имеется несколько основных анализаторов, которые выполняют большую часть анализов. Опыт крупных зарубежных коммерческих лабораторий показывает, что детализированные затраты необходимо рассчитывать только для них, а для остальных видов исследований используют усредненные данные, то есть затраты на расходный материал, калибраторы, контрольные материалы и так далее равномерно распределяют из расчета на один анализ.

Однако, несмотря на то что затраты на каждый автоматический анализатор могут составлять до нескольких сотен тысяч усл.ед., материалы для проведения анализа, например, реактивы, стоят в пределах от одной до нескольких усл.ед. на один анализ.

Себестоимость анализа во многом зависит от количества (объема) анализов, выполняемых лабораторией. Установлено, что увеличение объема лабораторных исследований приводит к снижению себестоимости анализов для количества примерно до 1 100 000 тестов в год. Для лабораторий, выполняющих от 1 100 000 до 1 800 000 тестов в год, себестоимость одного теста может существенно колебаться с тенденцией к снижению, но эта тенденция не является статистически достоверной.

Руководствуясь этими простыми истинами, P.N. Valenstein в 1981 г. провел исследование и опубликовал отчет по экономическим затратам анализаторов на выполнение анализов. P.N. Valenstein предложил кривую средней стоимости для постоянных и переменных затрат. В соответствии с этой работой, вне зависимости от числа анализов, выполняемых по каждому запросу на одного пациента, если число произведенных анализов в год превышает 2 000 000, то средняя стоимость одного анализа всегда минимальна. Если КДЛ выполняет в среднем 56 000 анализов в год, средняя стоимость одного анализа может быть уменьшена в 2 раза только при выполнении более 300 000 анализов в год.

С.А. Евгина (2006) приводит данные, подтверждающие это правило. Расчет средней итоговой стоимости биохимического теста проводился для двух уже упомянутых лабораторий («А» и «Б»), при этом учитывались амортизация и сервисное обслуживание анализаторов. В лаборатории «Б» с годовым количеством биохимических исследований 233 000 выполнялись только рутинные тесты и использовался анализатор производительностью 800 тестов в час. Несмотря на то что в лаборатории «А» с годовым количеством биохимических исследований 877 000 эксплуатировался анализатор стоимостью в 1,5 раза больше и производительностью 1200 тестов в час и, помимо рутинных, проводились более дорогостоящие исследования, итоговая средняя стоимость теста для лаборатории «А» оказалась в 2 раза ниже.

Другими словами, чем больше тестов выполняет лаборатория, тем ниже негативное влияние затрат на реактивы, оборудование, контрольные материалы, обслуживание оборудования, расходный материал на себестоимость лабораторных исследований. В определенной степени подтверждают этот постулат данные рис. 3.3, на котором представлена зависимость себестоимости анализа от количества выполняемых тестов и степени автоматизации производства.

pic 0125
Рис. 3.3. Сравнительная экономическая эффективность выполнения биохимических тестов ручным, частично и полностью автоматизированным способом: 1 - ручная работа; 2 - частичная автоматизация; 3 - полная автоматизация

Следует понимать, что себестоимость лабораторных исследований определяется:

  • в высокопроизводительной автоматизированной лаборатории - затратами на обеспечение работы анализаторов и реагенты, то есть переменными издержками;

  • в низкопроизводительной - общими издержками и фондом оплаты труда, то есть постоянными издержками.

Таким образом, мы видим, что принципы распределения затрат в управленческом учете являются инструментом управления и выбираются исходя из принципов управления себестоимостью, ценообразованием или оценкой деятельности центров финансовой ответственности КДЛ. Для каждой из этих целей, возможно, придется подобрать свой, самый подходящий принцип распределения затрат, наиболее точно отражающий целевую задачу распределения и эффективный с точки зрения принятия управленческих решений.

Вместе с тем практическое осуществление расчета себестоимости одного анализа - это трудное дело даже для коммерческих лабораторий, требующие много времени и глубокого понимания самих методик выполнения исследований. При расчете себестоимости исследования необходимо детально разложить каждый анализ на его составляющие, учесть количество реактивов, контрольных материалов, калибраторов, кювет, моющего раствора, другого расходного материала и т.д., которые используются при выполнении исследования. Особенно трудоемок этот процесс для бактериологических анализов. Тем не менее другого пути нет. Без определения себестоимости одного исследования в рыночных условиях лаборатория не сможет существовать достаточно долго. Эту работу необходимо проводить и начинать с самых простых видов исследований, например, с общеклинического анализа крови, который выполняют на гематологическом анализаторе. Затем можно переходить к гормональным, серологическим и биохимическим анализам. За это время должен накопиться опыт, а также появится понимание проблем, что позволит приступить и к расчету себестоимости бактериологических исследований.

В дальнейшем себестоимость исследований будет служить основополагающей величиной для анализа экономических аспектов деятельности лаборатории, расчете прибыли и рентабельности лабораторных исследований.

Понятие рентабельности продукции, то есть результатов лабораторных анализов, - отношение прибыли от реализации результатов анализов к их себестоимости имеет непосредственное отношение к коммерческому успеху лаборатории на современном рынке. Оно имеет две составляющие - себестоимость анализа, которая рассмотрена выше, и реализацию лабораторных услуг на рынке. Реализация лабораторных услуг во многом, конечно, зависит от их себестоимости, но и определяется целым рядом факторов, которые частично рассмотрены ниже.

Таким образом, выше рассмотрены современные подходы к экономической оценке эффективности деятельности КДЛ, связанные с 1-м уровнем - непосредственно с производственными затратами на проведение лабораторных тестов. Однако для оценки эффективности деятельности КДЛ не менее важны 2-й и 3-й уровни - экономическая оценка затрат, связанных с вкладом лаборатории в лечение пациента, и стоимость лабораторных ошибок.

Проблема клинической лабораторной диагностики состоит в том, что для практики КДЛ эти оба уровня тесно взаимосвязаны, и необходимо овладеть ими, для того чтобы выжить в современной высококонкурентной медицине. Кроме того, важно понимать, что в связи с централизацией лабораторных исследований специалисты клинической лабораторной диагностики будут все больше и больше утрачивать взаимосвязь с проблемами клиники и замыкаться на проблемах лаборатории, а это значит, что главным для них станет только 1-й уровень экономических оценок эффективности, а 2-й и 3-й уровни станут основной проблемой администрации клиник.

Вместе с тем у нас в стране сохраняться большие клиники и будут созданы новые коммерческие медицинские центры, для лабораторий которых 2-й и 3-й уровни экономической оценки эффективности деятельности лабораторий будут иметь важнейшее значение. Да и централизованные лаборатории для получения бюджетных денег будут вынуждены овладеть 2-м и 3-м уровнями экономических оценок, чтобы доказать свою социальную значимость. Кроме того, понимание данного подхода имеет важное практическое значение для КДЛ на современном этапе реформирования системы здравоохранения у нас в стране. Дело в том, что при оплате лечения пациента страховыми компаниями по законченному случаю КДЛ должна будет суметь доказать свой вклад в лечение больного и тем самым претендовать на часть денег за это лечение.

3.1.2. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЗАТРАТ, СВЯЗАННЫХ С ВКЛАДОМ ЛАБОРАТОРИИ В ЛЕЧЕНИЕ ПАЦИЕНТА

Экономическая оценка деятельности КДЛ, связанной с вкладом в лечение больных ЛПУ (2-й уровень экономических оценок), особенно спорна из-за сложности и иерархического характера диагностики и последующего процесса лечения. Однако в настоящее время эта проблема жизненно актуальна для КДЛ нашей страны. В первую очередь это обусловлено тем, что одним из основных направлений реформирования деятельности ЛПУ рассматривается перевод их на финансирование по конечному результату. Как при этом будет оцениваться конечный результат деятельности КДЛ, в периодической и профессиональной печати не обсуждается. Вместе с тем проблема экономической оценки вклада КДЛ в лечение больных ЛПУ, наряду с переводом деятельности КДЛ в рамках бюджета, является важной и требует понимания. Рассмотрим это на примере определения сердечного тропонина I.

В клинической практике исследование сердечного тропонина I применяют для стратификации риска у пациентов с болью в груди, чтобы улучшить раннее выявление больных, у которых возможно прогрессирование заболевания. С точки зрения лаборатории введение дополнительного исследования (определение тропонина I) может значительно увеличить расходы лаборатории без обеспечения какого-либо дохода для нее. В отношении исследования тропонина I это приведет к увеличению расходов в среднем на 50 долларов США на пациента (Anderson F.P. et al., 1998). Заведующему КДЛ это может и не показаться хорошей инвестицией, если лаборатория осуществляет свою деятельность исключительно на основе управления в рамках фиксированного бюджета. Однако если рассматривать вопрос в масштабах больницы, то заведующий КДЛ вполне может решить внедрить исследование тропонина I, потому что в целом для больницы это приводит к уменьшению сроков пребывания больного в стационаре и сокращению общих затрат больницы на лечение пациента. Более того, с социальной точки зрения внедрение исследования тропонина в практику лаборатории повышает эффективность лечения для пациентов с низким уровнем риска, которые быстрее возвращаются домой и у них снижаются трудопотери. Все это наглядно подтверждают данные C.P. Price и R.H. Christenson (2003), которые проанализировали результаты многих рандомизированных исследований, где изучалось влияние определения тропонина на продолжительность пребывания пациента в клинике, а также затраты на их лечение (табл. 3.3).

Таблица 3.3. Экономическая эффективность определения тропонина для диагностики инфаркта миокарда
Диагноз Показатели Контрольная группа Группа, в которой определяли тропонин Р

ОКС исключен (n=654)

Продолжительность госпитализации, сут.

1,6±3,4

1,2±2,9

0,03

Затраты на лечение, $

6187±11,256

4487±73,96

0,17

ОКС (n=202)

Продолжительность госпитализации, сут.

Затраты на лечение, $

4,6±3,8

19202±15,933

3,7±3,2

15004±15,2

0,01

0,02

Приведенные данные показывают, что лабораторные исследования и медицинское вмешательство, то есть лечение пациента, неразрывно связаны. Однако достижение результата, то есть целей лечения, имеет тенденцию быть приписанной только медицинскому вмешательству, несмотря на то, что надлежащее лечение может быть проведено только на основании правильного диагноза, поставленного с помощью лабораторных анализов.

Заведующим КДЛ необходимо научиться соединять многочисленные клинические и стоимостные аспекты лабораторных тестов, чтобы освоить экономическую оценку эффективности лабораторных технологий.

В рамках клинических аспектов оценка влияния результатов анализов на качество оказания медицинской помощи позволяет реально оценить вклад лаборатории в лечение пациента. Наиболее простыми критериями такой оценки являются показатели влияния лабораторных анализов:

  • на уменьшение числа осложнений при лечении пациента;

  • сокращение срока пребывания пациента в отделении интенсивной терапии или реанимации;

  • сокращение длительности пребывания пациента в стационаре;

  • сокращение койко-дня для группы пациентов, которым проводились те или иные лабораторные тесты;

  • снижение использованных средств лечения пациента;

  • снижение количества дополнительных исследований;

  • снижение числа повторных поступлений в больницу;

  • снижение числа неотложных госпитализаций;

  • сокращение смертности;

  • увеличение продолжительности жизни.

К более сложным экономическим критериям оценки вклада лаборатории в лечение пациента относятся:

  • стоимость диагностики и лечения на один случай заболевания;

  • стоимость одного дня пребывания в больнице и необходимая длительность стационарного лечения;

  • стоимость лечения пациента в зависимости от ритма и клинической своевременности лабораторного исследования;

  • стоимость рабочего времени лечащего врача и врачей-консультантов, затраченного на обследование пациента, в зависимости от сроков лабораторного исследования.

Например, в табл. 3.4 приведены данные об экономической эффективности мониторинга концентрации аминогликозидов в крови пациентов с гнойными инфекциями, которые показывают, насколько важно использовать данные подходы (Binder l., Schiel X., Binder C. et al., 1998).

Таблица 3.4. Экономическая эффективность мониторинга концентрации аминогликозидов в крови пациентов с гнойными инфекциями

Процедура

Пик концентрации аминогликозидов в крови

Разность

<4,8 мг/л

>4,8 мг/л

Лечение

Антибиотикотерапия

1965 $

1215 $

750 $

Все лечение

2576 $

1429 $

1147 $

Диагностика

2871 $

1790 $

1081 $

Консультации

3271 $

1701 $

1570 $

Всего

8718 $

4920 $

3797 $

В настоящее время в практике зарубежных клиник используются и более сложные методологические подходы в рамках клинических аспектов к экономической оценке эффективности лабораторных технологий.

Методология экономических оценок эффективности лабораторных технологий 2-го уровня должна включать, во-первых, сравнение двух или более альтернатив и, во-вторых, учитывать и затраты, и результаты. Это ведет к оптимальному использованию информации для экономических оценок относительно лабораторных технологий. Полная экономическая оценка требует идентификации, измерения и оценки как клинических выгод от лабораторных тестов, так и необходимых затрат.

Не менее важное значение для оценки вклада лаборатории в лечение пациента имеет определение критериев такой оценки. Для экономики здравоохранения последствия использования результатов лабораторных тестов для выбора средств и методов ведения и лечения пациентов наиболее полезны, если они переведены в долгосрочные результаты типа «дополнительные годы жизни» или «качественно сохраненные годы жизни». Затраты должны включать все расходы, связанные с последующими лабораторными анализами, лечением пациента и уходом за ним и осложнениями. Демонстрация ценности лабораторных тестов путем соединения промежуточных звеньев в заключительные результаты у пациента почти всегда требует аналитического моделирования решения. Этот подход приобретает все большее признание и популярность для предсказания долгосрочных клинических и экономических результатов, где соединены многочисленные клинические и стоимостные характеристики.

В настоящее время с методологических позиций, которые позволяют правильно оценить многочисленные клинические и стоимостные характеристики лабораторных тестов, применяют три основных подхода к оценке экономической эффективности лабораторных технологий:

  1. анализ выгоды стоимости;

  2. анализ рентабельности;

  3. анализ полезности стоимости.

Все три подхода требуют оценки и стоимости, и выгоды. Они отличаются по тому, как измеряется эффективность и оценивается ли эффективность с точки зрения денежных затрат.

  1. Цель анализа выгоды стоимости состоит в том, чтобы определить, превышают ли выгоды от проведения лабораторных анализов затраты на него. Анализ выгоды стоимости дает ответ на вопрос: «Действительно ли данный лабораторный тест полезен?»

  2. Анализ рентабельности и анализ полезности стоимости нацелены на поиск ответа на вопрос: «Если есть определенный бюджет, то на какие лабораторные тесты наиболее эффективно его потратить (максимизировать эффективность)?»

В табл. 3.5 представлены подходы к экономической оценке эффективности лабораторных исследований и критерии оценки.

Таблица 3.5. Подходы к экономической оценке
Подход Затраты Выгода (критерии оценки)

Анализ выгоды стоимости

Деньги (например, рубли или доллары)

Деньги (например, рубли или доллары)

Анализ рентабельности

Деньги (например, рубли или доллары)

Естественные единицы (например, годы жизни, койко-день)

Анализ полезности стоимости

Деньги (например, рубли или доллары)

Комбинированные: количество и качество жизни (например, качественно сохраненные годы жизни

Пример анализа выгоды стоимости. A.M. Fendrick и соавт. (1995) при изучении в целях оценки альтернативных стратегий ведения пациентов с подозрением на язвенную болезнь желудка учитывали затраты на лечение пациента и уход за ним. При этом оценивались два метода: прямой эндоскопии и неинвазивное серологическое исследование крови на Helicobacter pylori. На основе оценки обоих подходов оказалось, что серологическое исследование было привлекательно по стоимости лечения язвенной болезни желудка и стоимости ухода за пациентом. Разница между двумя подходами составила 4541 доллар США. Пример анализа рентабельности - работа, изданная группой по исследованию эффективности стоимости лечения сахарного диабета Центром изучения рентабельности заболеваний США, которая исследовала затраты за период жизни и выгоды от скрининга диабета по сравнению с текущей клинической практикой (CDC, 1998). Скрининг был выполнен в течение обычного посещения врача и включало определение уровня глюкозы в плазме натощак, сопровождаемое подтверждающим глюкозото-лерантным тестом для тех пациентов, у которых уровень глюкозы был повышен. При оценке эффективности учитывали сохраненные годы жизни (табл. 3.6).

Таблица 3.6. Эффективность стоимости скрининга для сахарного диабета 2-го типа
Возрастная группа 25-34 года Стоимость продолжительности жизни одного обследованного человека, $ Выгоды, годы жизни

Без скрининга

97 360

20,99

Со скринингом

102 018

21,11

Возрастающее различие

4658

-0,13

Возрастающая эффективность стоимости

4658/0,13=35 768 $
на год жизни

В качестве примера анализа полезности стоимости рассмотрим эффективность различных стратегий скрининга рака толстой кишки.

Рак толстой кишки - одна из основных причин смертности от онкологических заболеваний. Затраты, связанные с лечением пациентов с раком толстой кишки и уходом за ними, весьма существенны. Для скрининга рака толстой кишки используют лабораторное исследование - обнаружение скрытой крови в кале. Регулярный скрининг кала на скрытую кровь приводит к снижению случаев обнаружения рака толстой кишки на последней стадии развития на 50% и смертности на 25-33%. Однако тесты, используемые для выявления скрытой крови в кале, обладают различной чувствительностью.

Наиболее распространенным тестом для выявления скрытой крови в кале в клинической практике является гваяковая проба. Обычно при проведении этого теста каловые массы наносят на фильтровальную бумагу, а затем к ним добавляют гваяковый реагент, уксусную кислоту и перекись водорода (жидкая гваяковая проба). В такой постановке метод очень чувствителен для выявления пероксидазной активности, но плохо стандартизирован и часто дает ложноположительные результаты. В связи с этим были разработаны тесты, в которых гваяковый реагент заранее нанесен на пластмассовую полоску (слайдовая гваяковая проба), что позволило стандартизировать проведение исследований и диагностировать даже мелкие кровотечения.

A.L. Frazier и соавт. (2000) изучили различные технологии скрининга рака толстой кишки, а также их комбинации. В дальнейшем результаты этих стратегий мониторинга были обработаны и суммированы в табл. 3.7.

Таблица 3.7. Эффективность стоимости методов скрининга рака толстой кишки
Стратегия тестирования Стоимость продолжительности жизни одного обследованного человека, $ Ожидаемая продолжительность жизни, годы

Жидкая гваяковая проба + сигмоскопия каждые 5 лет Слайдовая гваяковая проба + сигмоскопия каждые 5 лет Различие между 1-й и 2-й стратегией

Возрастающая эффективность стоимости

2034 2448 410

410/0,004 4 = 92 900 на сохраненный год жизни

17,406 6 17,411 0 -0,004 4

Для заведующего КДЛ важно понимать, что основным показателем, позволяющим реально оценить дополнительные затраты на внедрение нового метода исследования, по сравнению с его клиническим эффектом, а также старым тестом и его клинической эффективностью, служит возрастающий индекс рентабельности (Gost-Effectiveness Ratio - CER):

image

Индекс рентабельности позволяет сравнивать два (или больше) лабораторных теста, которые сравниваются как разница в затратах между вариантами, разделенная на разницу в результатах между вариантами.

pic 0127
Рис. 3.4. Проекция рентабельности

Результаты экономической оценки можно отнести к одной из трех групп в зависимости от того, является ли новый тест более дорогостоящим, менее дорогостоящим или эквивалентным по стоимости по сравнению с альтернативным вариантом и является ли он более эффективным, менее эффективным или равнозначным по эффективности. Это можно проиллюстрировать графически на диаграмме с четырьмя секторами (рис. 3.4), известной как проекция рентабельности (Black W.C., 1990).

Горизонтальная ось представляет различие в эффекте между новым тестом и альтернативным. Вертикальная ось представляет различие в стоимости между новым тестом и альтернативным. Считается, что альтернатива находится на пересечении обеих осей.

Если новый тест находится в секторе B или D, то выбор между тестами ясен. В секторе B новый тест является менее эффективным и более дорогостоящим, чем альтернативный (он подавляется альтернативным). В секторе D новый тест является и более эффективным, и менее дорогостоящим, чем альтернативный (он доминирует над альтернативным), поэтому его следует ввести в практику КДЛ. Если эффективность одинакова, но затраты меньше, то новый тест также необходимо внедрять в КДЛ. Для секторов А и C нет никакого определенного решения. Необходимо провести анализ других причин, почему было бы выгодно внедрить новую технологию. Если новый тест менее эффективен и менее дорогостоящий, чем альтернативный вариант, то необходимо решить, приемлема ли потеря в результатах. Если новый тест и альтернативный вариант одинаковы по эффективности и затратам, то необходимо рассмотреть другие причины для его внедрения. Новая технология, которая более эффективна, но и более дорогостояща, требует решения относительно того, действительно ли дополнительный эффект оправдывает добавочную стоимость. Большинство новых технологий попадают в эту категорию, потому что они лучше предыдущих технологий, однако их использование более дорогостояще. Выбор зависит от суммы, которую администрация клиники и заведующий КДЛ готовы платить за новую технологию.

У нас в стране постоянно дискутируется вопрос об экономической целесообразности использования вакуумных систем для взятия крови в практике ЛПУ и КДЛ. Рассмотрим эту проблему с позиции двухуровневой оценки экономической эффективности деятельности лаборатории.

Ошибки, допущенные на преаналитическом этапе (неправильное взятие пробы, неправильные манипуляции с полученной пробой и нарушения условий и сроков ее транспортировки), являются наиболее частыми причинами неправильных результатов лабораторных исследований. По данным литературы, на преаналитический этап приходится от 46 до 68% всех лабораторных ошибок (Boon D.J., 1993; Plebani M., Carraro P., 1997).

Широко используемые в настоящее время способы взятия проб венозной крови являются основным источником низкого качества проб, результатов лабораторных анализов и лабораторных ошибок, не могут быть стандартизированы и не обеспечивают безопасность пациента и медицинского персонала.

При взятии проб венозной крови с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови пациента на руки медицинского персонала. В этом случае руки медицинской сестры могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому пациенту путем контаминации кровью инъекционной ранки. Медицинский работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует избегать из-за его недостаточной безопасности для медицинского персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Именно поэтому для взятия проб крови наиболее предпочтительно использовать вакуумные системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт медицинского персонала с кровью пациента.

Использование одноразовых фирменных приспособлений для взятия крови и сбора биоматериала является обязательным стандартом для КДЛ многих стран. К сожалению, в нашей стране использование таких приспособлений в повседневной практике по-прежнему не находит широкого применения. Одной из главных причин, на которую ссылаются многие руководители ЛПУ, служит якобы высокая стоимость фирменных приспособлений.

Нами на собственном опыте и на основании анализа данных других исследователей изучен широкий спектр факторов, определяющих коммерческую обоснованность использования одноразовых фирменных приспособлений для взятия крови. Рассмотрим стандартную ситуацию: пациенту необходимо взять кровь на общеклиническое исследование (гематологические показатели и СОЭ) и биохимический анализ.

При традиционном методе для взятия крови используют одноразовый медицинский шприц с иглой и тремя стеклянными центрифужными пробирками (одна пробирка градуированная - для определения гематологических показателей с ЭДТА, одна градуированная - для определения СОЭ с цитратом натрия и одна неградуированная - для биохимических показателей). Из градуированной пробирки для определения гематологических показателей с ЭДТА кровь должна быть отобрана с использованием пипетки и одноразового наконечника. Для определения СОЭ кровь из первичной пробирки с цитратом натрия в дальнейшем берется в капилляр Панченкова. Кровь в неградуирован-ной пробирке для биохимических показателей должна быть обведена стеклянной палочкой, подвергнута центрифугированию, а сыворотка с помощью пипетки и одноразового наконечника отобрана во вторичную стеклянную пробирку. В дальнейшем пробирки для повторного использования должны подвергаться дезинфекции и стерилизации. Опыт работы КДЛ показывает, что стеклянные пробирки могут быть повторно использованы не более 20 раз, при этом бой стеклянной посуды составляет до 20% в день (в среднем 12-15%) (Липагина А.А., Гитель Е.П., 2004; Кишкун А.А., 2005).

При использовании вакуумных систем для взятия крови в аналогичной ситуации необходимы держатель, игла и три типа Vacutainer® (один с ЭДТА для определения гематологических показателей, второй - для определения СОЭ с цитратом натрия и третий - для биохимических показателей). Никаких других приспособлений при проведении исследований не требуется, так как все современные гематологические и биохимические анализаторы работают с первичной пробиркой, а для определения СОЭ первичная пробирка с цитратом натрия просто помещается в штатив со шкалой на 1 ч и по шкале в дальнейшем регистрируется величина СОЭ. Затраты при традиционном методе взятия крови и при использовании вакуумных систем приведены в табл. 3.8.

Данные табл. 3.8 показывают, что если бы при традиционном способе взятия крови на общеклиническое и биохимическое исследование стеклянные пробирки использовались одноразово, то затраты были на 29,8% больше, чем при применении вакуумных систем. Однако, когда учитывается использование стеклянной посуды (пробирки, палочки) 20 раз при бое 20% (затраты приведены в скобках), то стоимость вакуумных систем в 2 раза выше традиционного метода. Вместе с тем в исследованиях А.А. Липагиной и Е.П. Гителя (2004) показано, что в обычной практике КДЛ при взятии десятков тысяч проб крови на анализы различия между традиционным методом и при использовании вакуумных систем составляют только 30-50% (в зависимости от вида исследования). Казалось бы, бытующая точка зрения о значительно меньшей стоимости традиционных методов взятия крови на лабораторные анализы полностью подтверждается, и обычно заведующие КДЛ или руководители ЛПУ на этом все расчеты заканчивают, тем более что приведенные расчеты просты, доступны, не требуют больших интеллектуальных усилий и достаточно убедительны.

Таблица 3.8. Затраты на взятие крови для лабораторных исследований
Традиционный метод Вакуумная система BD Vacutainer®

расходный материал

стоимость, руб.

расходный материал

стоимость, руб.

Шприц

1,51

Держатель

1,7

Игла

0,57

Игла

5,20

Первичная пробирка стеклянная градуированная - 2 шт.

6,32 x 2 шт. = 12,64 (3,15)

Vacutainer® с ЭДТА

5,53

Первичная пробирка стеклянная неградуированная - 1 шт.

5,22 (1,70)

Vacutainer® с цитратом натрия

6,92

Реактивы

0,21 - ЭДТА, 0,12 - цитрат натрия

Vacutainer® для определения биохимических показателей

5,23

Стеклянная палочка - 1 шт.

2,60 (0,65)

-

-

Вторичные пробирки стеклянные неградуированные - 1 шт.

5,22 (1,70)

-

-

Наконечники для пипеток - 2 шт.

0,6 x 2 шт. = 1,2

-

-

Капилляр Панченкова - 1 шт.

5,5 (1,38)

-

-

Дезинфекционные средства

0,12

-

-

Стерилизация

0,1

-

-

Всего

35,01 (12,41)

-

24,58

В действительности это поверхностный взгляд на проблему экономической оценки использования вакуумных систем в практике ЛПУ. Есть здесь и объективные причины, не связанные со сложностью таких оценок. Главная из них состоит в том, что технологические процессы подготовки пациента к исследованиям, взятие крови на анализы, ее транспортировка в лабораторию и непосредственно проведение самих анализов и получение результатов иерархически не связаны. За взятие крови на исследование отвечают руководители ЛПУ, заведующие отделениями, главные и старшие медицинские сестры. В функции заведующего КДЛ входит организация проведения лабораторных исследований. Соответственно, экономическая оценка использования вакуумных систем руководителями ЛПУ проводится только с учетом затрат, непосредственно относящихся к самой процедуре взятия крови, а все проблемы, которые возникают в лаборатории при применении традиционного метода, а затем, как следствие, неправильных результатов анализов, в лечебных отделениях идут как бы по другой статье расходов (непосредственно на лабораторию, лечебные отделения и т.д.). Вместе эти расходы никто не рассматривает.

Проведенные исследования по данной проблеме в развитых странах Запада давно показали, что применение вакуумных систем для взятия крови имеет несопоставимую экономическую выгоду по сравнению с традиционными методами. Важнейшими аргументами являются следующие (Гудер В.Г. и др., 2003; Липагина А.А., Гитель Е.П., 2004; Кишкун А.А., 2005):

  • при заборе крови в обычные пробирки взятый объем крови у пациента в среднем в 45 раз превышает необходимый для анализов; при взятии крови в вакуумные пробирки - только в 7 раз;

  • у 47% пациентов, которым требуется переливание крови, отмечается связанная с проведением лабораторных анализов потеря эритроцитов объемом более 180 мл (равноценно 1 ЕД эритроцитарной массы);

  • основным приоритетом на ближайшие годы в отношении лабораторной диагностики является централизация лабораторных исследований, что предъявляет совершенно другие требования к сохранности и времени доставки проб крови;

  • при доставке проб крови, взятых в обычные стеклянные пробирки, на биохимические исследования, превышающей 2 ч, у 12-25% пациентов в лабораторных анализах ложно повышены активность АСТ, АЛТ, уровень билирубина и/или калия (вследствие гемолиза) и ложно снижена концентрация глюкозы;

  • при доставке проб крови, взятых в обычные стеклянные пробирки, на биохимические исследования в течение 1 ч ложно повышенные значения АСТ, АЛТ, билирубина или калия выявляются у 4-10% пациентов;

  • при доставке проб крови, взятых в вакуумные пробирки, на биохимические исследования в течение 1 ч ложно повышенные значения АСТ, АЛТ, билирубина или калия выявляются у 0,5-1,0% пациентов (в 10 раз ниже).

Для получения достоверных значений всем пациентам с ложно измененными результатами анализов необходимо повторное взятие крови и проведение исследований. Доля повторных исследований вследствие некачественных проб крови при взятии ее в стеклянные пробирки в КДЛ составляет до 7,4% (Кишкун А.А., 2005). Кроме того, ряду пациентов вследствие избыточного взятия биоматериала показано переливание крови. Все это дополнительные финансовые расходы учреждения. Реальные расчеты показывают, что средняя себестоимость одного банального биохимического анализа составляет, даже по расценкам фонда обязательного медицинского страхования, 6-10 руб., то есть разницу между стоимостью традиционного метода взятия крови и вакуумными системами. Если КДЛ выполняет несколько тысяч биохимических тестов в день и 7,4% из них делаются повторно, то дополнительные расходы могут выражаться тысячами рублей в день только по биохимическим анализам.

В своих исследованиях M. Plebani и P. Carraro (1997) показали, что в результате лабораторных ошибок, связанных с неправильным взятием крови на анализы, 6% пациентов получили неправильное лечение, 19% назначены ненужные дополнительные исследования, а ущерб клиники на 500 коек вследствие этого составил 125 717 долларов в год.

Часть финансовых потерь ЛПУ, связанных с ненадлежащим обеспечением безопасности пациентов и медицинского персонала, трудно подсчитать. Например, инфицированность вирусными гепатитами В и С медицинского персонала вследствие контакта с венозной кровью пациента как причина искусственного заражения в нашей стране чрезвычайно высока. В своих исследованиях В.Г. Акимкин и соавт. (2001) установили, что инфицированность сотрудников гемодиализных и гематологических отделений составляет 22,7%, КДЛ, реанимационных и хирургических отделений - 14,5%. Работы по оценке финансовых потерь ЛПУ, связанных с проведением мероприятий по предупреждению инфицирования медицинских сестер и сотрудников КДЛ вследствие укола иглой, порезов при работе со стеклянными пробирками, в нашей стране отсутствуют. В связи с этим можно сослаться на опыт учреждений здравоохранения США, где ведется строгий учет всех случаев заражения медицинского персонала. В случае укола иглой сотрудника затраты медицинского учреждения на комплекс мер по предупреждению инфицирования составляют 3000-5000 долларов США. При заражении ВИЧ, гепатитом В и другими инфекциями они могут доходить до 1 000 000 долларов США (Pugliese G., Salahuddin M., 1999).

Приведенные аргументы убедительно показывают экономическое преимущество вакуумных систем перед традиционным методом взятия крови на лабораторные анализы. Однако, помимо экономических аргументов, необходимо учитывать и еще целый ряд преимуществ вакуумных систем:

  • стандартизация условий взятия крови;

  • минимум операций по подготовке образца крови к отправке в лабораторию;

  • возможность прямого использования в качестве первичной пробирки в целом ряде автоматических анализаторов (экономия на приобретение вторичных пластиковых пробирок);

  • герметичная упаковка проб крови и небьющиеся пробирки упрощают и делают безопасным процесс транспортировки и центрифугирования;

  • четкая идентификация пробирок, используемых для различных типов анализов, за счет цветной кодировки;

  • сокращение затрат на приобретение центрифужных пробирок, на мойку, дезинфекцию и стерилизацию пробирок;

  • простая методика обучения персонала;

  • уменьшение риска профессионального инфицирования;

  • невозможность повторного применения вакуумных систем;

  • экономия времени на процесс взятия крови;

  • простота конструкции вакуумных систем и их надежность.

Приведенный экономический анализ показывает, что затраты, связанные с неучитываемыми факторами при взятии крови без использования фирменных приспособлений, значительно превышают стоимость таких приспособлений, и применение одноразовых вакуумных систем для взятия крови является обоснованным и экономически выгодным для ЛПУ и КДЛ.

Необходимо подчеркнуть, что использование методологии экономической оценки эффективности КДЛ в практической жизни определяет целый ряд задач и путей их решения:

  1. чтобы доказать ценность лабораторных технологий в рамках конкурирующего спроса на «деньги здравоохранения», необходимо заставить изменить точку зрения как практикующих специалистов, так и организаторов здравоохранения относительно данного теста; экономическая оценка является эффективным инструментом для этого;

  2. полная экономическая оценка требует идентификации, измерения и оценки как клинических выгод от нового теста, так и необходимых затрат. Рассмотрение и стоимости, и эффектов позволяет расширить базу показателей при оценке эффективности, чтобы она была более актуальна для администраторов, ответственных за оптимизацию использования ограниченных ресурсов;

  3. разработаны общепринятые критерии для анализа экономических оценок (анализ выгоды стоимости, рентабельности и полезности стоимости), и необходимо научиться их использовать в своей работе;

  4. демонстрация низкой или высокой ценности лабораторной технологии почти всегда требует некоторого аналитического моделирования решения, которым необходимо овладеть;

  5. экономические методы, которые позволяют оценивать риск пациента (риск неправильного диагноза) вследствие использования устаревших методик и технологий и готовности платить за диагностическую точность, применялись в лабораторной диагностике, но не получили широкого распространения - это область для дальнейших исследований.

Приведенные подходы к оценке участия КДЛ в лечении пациента сложны и требуют дополнительных исследований этой проблемы. В настоящее время они не могут быть применены для практического использования в виде стройной системы при оценке работы ЛПУ и его финансировании по конечному результату. Для КДЛ это значит, что если стратегия развития и финансирования ЛПУ в отечественном здравоохранении пойдет по пути финансирования по конечному результату, то лаборатории в ЛПУ по-прежнему будут финансироваться по остаточному принципу (зависеть от главного врача ЛПУ) и никаких изменений в деятельности КДЛ не произойдет.

Выше рассмотрены практические подходы к оценке экономической эффективности деятельности лаборатории. Они, безусловно, имеют важное значение для обоснования полезности существования самих лабораторий. Однако с практических позиций не менее важно научиться использовать эти подходы для управления экономической эффективностью предприятия - КДЛ.

3.1.3. РАСЧЕТ СТОИМОСТИ ЛАБОРАТОРНЫХ ОШИБОК

Быстрое и активное внедрение в клиническую практику новых диагностических и терапевтических технологий, лекарственных средств на фоне усиления административного регулирования здравоохранения, активного вмешательства общества и самих больных в процесс лечения привели к увеличению возможности врачебных ошибок. Статистические данные, предоставленные Институтом медицины США, показали, что врачебные ошибки являются причиной более 1 млн травм и примерно 44 000-98 000 смертей в больницах ежегодно (Wagar E.A. et al., 2006).

Лабораторные исследования предоставляют важную информацию, используемую врачами при принятии клинических решений, причем примерно 60-70% таких решений основываются на результатах лабораторных тестов (Da Rin G., 2009). Однако процесс производства результатов лабораторных анализов также является источником ошибок, которые могут повлиять на безопасность пациентов и финансовые затраты на его лечение. Под лабораторной ошибкой понимается любой дефект, который возникает в течение всего процесса тестирования - от назначения лабораторных тестов до представления результатов и их использования в лечебно-диагностическом процессе (Goldschmidt H.M.J., Lent R.W., 1995). Более того, эти ошибки могут возникать на любом этапе процесса их производства - преаналитическом, аналитическом и постаналитическом.

Ошибки преаналитического этапа составляют до 75% всех лабораторных ошибок. Большинство из них происходит за пределами лаборатории. Наиболее часто встречающимися причинами преаналитических ошибок являются гемолиз, неправильная идентификация пациента, недостаточный объем пробы и наличие сгустков в пробах крови. Каждая из этих причин может отрицательно повлиять на качество результатов лабораторных тестов. Один небольшой сбой в процессе взятия проб крови может повлиять на лечение пациента (в 26% случаев могут привести к ненужным дополнительным обследованиям или неправильному лечению) и привести к значительным расходам для больницы (Plebani M., 2006). Именно поэтому расчет стоимости низкого качества проб крови на лабораторные анализы имеет важное практическое значение для КДЛ и лечебных учреждений.

Для расчета стоимости ошибок преаналитического этапа можно использовать следующие модели:

  1. модель влияния стоимости конкретных причин ошибок преаналитического этапа на затраты лаборатории;

  2. модель влияния стоимости ошибок преаналитического этапа на качество оказания медицинской помощи.

Рассмотрим первую модель более детально на примере увеличения числа преаналитических ошибок, обусловленных гемолизом, вследствие замены используемых ранее вакуумных систем для взятия проб крови на более дешевые системы. Простой расчет стоимости составляющих «старых» и новых вакуумных систем (табл. 3.9) указывает лишь на то, что новые вакуумные системы значительно дешевле. Однако такой расчет не позволяет оценить влияние роста случаев гемолиза на увеличение затрат лаборатории.

Для оценки влияния гемолиза на затраты лаборатории необходимо провести мониторинг частоты проб с гемолизом для которых выполнялись повторные исследования. На рис. 3.5 представлен процент проб крови, для которых проводились повторные исследования из-за гемолиза, при использовании «старых» и новых вакуумных систем.

Таблица 3.9. Стоимость составляющих вакуумной системы
Составляющие вакуумной системы Старая система, стоимость, руб Новая система, стоимость, руб Различие в стоимости, руб

Одноразовый держатель

6,2

3,5

-2,7

Игла

8,0

3,5

-4,5

Вакуумная пробирка для определения биохимических показателей

Всего

12,6

26,8

6,4

13,5

-6,2

-13,2

pic 0128
Рис. 3.5. Процент результатов, для которых проводились повторные исследования из-за гемолиза

Как видно из рис. 3.5, при переходе на новые вакуумные системы частота повторного взятия проб крови и повторных исследований существенно увеличилась. Оценка стоимости ошибки преаналитического этапа, вследствие гемолиза, и затрат лаборатории требует проведения следующих расчетов:

  1. расчет стоимости вакуумных систем для повторного взятия крови при использовании старых вакуумных систем;

  2. расчет стоимости повторных исследований при использовании старых вакуумных систем;

  3. расчет общих затрат за пробы с гемолизом при использовании старых вакуумных систем (пункт 1 + пункт 2);

  4. расчет себестоимости пробы с гемолизом при использовании старых вакуумных систем: общие затраты за пробы с гемолизом при использовании старых вакуумных систем/количество проб с гемолизом;

  5. расчет стоимости новых вакуумных систем для повторного взятия крови;

  6. расчет стоимости повторных исследований при использовании новых вакуумных систем;

  7. расчет общих затрат за пробы с гемолизом при использовании новых вакуумных систем (пункт 5 + пункт 6);

  8. расчет себестоимости пробы с гемолизом при использовании новых вакуумных систем: общие затраты за пробы с гемолизом при использовании новых вакуумных систем/количество проб с гемолизом;

  9. расчет разности между стоимостью пробы с гемолизом при использовании старых и новых вакуумных систем.

Аналогичным образом можно рассчитать стоимость преаналитических ошибок, обусловленных наличием сгустков в пробах крови.

Для построения второй модели расчета стоимости ошибок преаналитического этапа необходимо собрать три категории данных: финансовые, лабораторные и клинические.

Финансовые данные включают затраты на выполнение других видов обследования, приобретение лекарственных препаратов, лечение пациентов за год.

Лабораторные данные включают стоимость одноразовых приспособлений для взятия проб крови, общее количество лабораторных тестов, общее время, затрачиваемое на выполнение тестов, общее количество часов/недель рабочих часов лаборатории, время простоя анализатора (часы/недели), общее количество отклоненных результатов анализов крови, общее количество лабораторных анализов крови, отмеченных как ненормальные или безрезультатные, количество проб крови с ошибками преаналитического этапа и количество повторных тестов.

Данные клинической практики получают на основе анализа историй болезней, которые включают выявление случаев получения клиницистами ошибочных результатов лабораторных анализов, назначение пациентам на основании этих результатов дополнительных обследований, внесений изменений в лечение пациентов и отрицательного влияния этих действий на состояние больного.

Последовательность расчета финансовых затрат на ошибки преаналитического этапа приведены на рис. 3.6.

pic 0129
Рис. 3.6. Методика расчета стоимости проб крови низкого качества

В самом простом случае затраты на ошибку преаналитического этапа можно рассчитать путем деления общей стоимости расходных материалов для взятия проб крови (вакуумных систем и других расходных материалов) на количество проб низкого качества. Такой расчет затрат необходимо проводить в отношении проб крови, которые в дальнейшем не исследовались и было назначено повторное тестирование (повторные затраты на взятие проб крови). Расчет может быть детализирован в отношении различных типов ошибок преаналитического этапа (гемолиз, наличие сгустков в пробах с антикоагулянтом и др.). Для таких расчетов очень важно вести учет ошибок преаналитического этапа при приеме проб в лаборатории.

В случае если пробы крови были приняты лабораторией и проведены исследования, то затраты включают не только расходы на повторное взятие проб крови, но и связанные с проведением анализов (реактивы, калибраторы, контрольные материалы, трудозатраты персонала, амортизация оборудования).

Для расчета затрат вследствие ошибок взятия проб крови на дополнительные исследования и лечение пациентов необходимо иметь целых ряд данных клинической практики. В этих случаях необходимо составить различные сценарии влияния низкого качества проб крови на пациента. Примеры таких сценариев приведены в табл. 3.10.

Таблица 3.10. Сценарии оценки влияния низкого качества проб крови на пациента

Сценарий

Возможное влияние на клиническую практику

низкое

среднее

критическое

Госпитализированный пациент с неотложным состоянием. Пациент 55 лет поступил в отделение неотложной помощи с жалобами на боли в груди и одышку. Больной имел избыточную массу тела, в анамнезе - повышенный холестерин и сердечные заболевания. Преаналитическая ошибка (гемолиз в пробе) не была обнаружена, в лаборатории были получены ложноположительные результаты тропонина, характерные для острого ИМ

Лаборатория обнаружила ошибку, и были приняты меры по ее устранению. Тест на тропонин повторили через 1 ч. Затем был поставлен правильный диагноз, что позволило свести к минимуму продолжительность пребывания пациента в больнице

Лаборатория не обнаружила ошибки,и результат был сообщен. Однако ошибку обнаружил врач пациента. Пациент прошел повторное тестирование, что привело к повторной пункции вены для пациента и дополнительному лабораторному времени для повторного анализа. Может потребоваться еще одно повторное исследование (в течение <24 ч), особенно если первый результат был положительным, а второй - отрицательным

Ошибка не была обнаружена, и пациент был переведен в кардиологическое отделение. После дополнительной оценки кардиологическое отделение пришло к выводу, что первоначальный результат лабораторного исследования был ошибочным. Это увеличило продолжительность пребывания пациента в больнице на несколько дней, привело к использованию интенсивных методов лечения и повышенным расходам больницы

Плановое амбулаторное обследование. Женщина 40 лет, страдающая диабетом 1-го типа (инсулинозависимый), обратилась в поликлинику, где был назначен ряд стандартных анализов, включая калий. Проба крови была с гемолизом

Лаборатория обнаружила ошибку, отклонила пробу и потребовала повторного взятия крови. Пациент уже ушел и должен был вернуться еще через день для повторного тестирования

Лаборатория не обнаружила ошибку. Врач отреагировал на полученный результат повышения калия. Больного госпитализировали в реанимацию, пролечили и выписали

Лаборатория отклонила пробу, и исследование не было выполнено. Пациенту никто не сообщил о необходимости повторного взятия пробы. Состояние пациента ухудшилось, и он обратился в отделение неотложной помощи для обследования

Госпитализированный пациент после плановой операции. Пациенту 55 лет назначили неотложное лабораторное исследование после операции на щитовидной железе по поводу раковой опухоли. Лаборатория отклонила пробу, что потребовало ее повторного взятия

Лаборатория отклонила пробу, был взят новый образец крови, и были получены правильные результаты

Лаборатория отклонила пробу, и был взят новый образец крови, однако результаты были получены поздно (лечащий врач закончил рабочий день). В результате продолжительность пребывания пациента в больнице увеличилась

Лаборатория отклонила пробу. Без результата теста врач не мог принять немедленное решение относительно лечения пациента. Состояние больного ухудшилось, потребовалось перевести его в реанимацию

В большинстве сценариев при возникновении ошибки на преаналитическом этапе необходимо повторно назначить те тесты, которые имели неправильный результат. Если результат отличается от первоначального, может быть назначен третий тест, что может привести к увеличению времени пребывания пациента в больнице. Получение критического результата лабораторного теста может потребовать перевода пациента в отделение интенсивной терапии. Пребывание больного в отделении интенсивной терапии связано с более высокими расходами как финансовых средств, так и ресурсов (Welton J. et al., 2002).

Для учета затрат модели разделяют всех пациентов на три категории: госпитализированные пациенты с неотложным состоянием, обычные амбулаторные пациенты и пациенты после плановой хирургии, поскольку стоимость ошибки сильно различается между тремя категориями. Используя финансовые, лабораторные и клинические данные, рассчитывается взвешенная доля затрат в зависимости от типа и степени тяжести пациента для оценки общего финансового воздействия ошибочных результатов теста.

В настоящее время эта модель используется для оценки стоимости низкого качества проб крови в четырех странах (США, Канада, Германия и Ирландия).

Использование данных моделей позволило получить средние затраты на преаналитическую ошибку. Согласно данным S.F. Green (2013), в лечебных учреждениях Северной Америки и Европы средние затраты на преаналитическую ошибку составили 208 долларов США и 157 евро соответственно. Средние затраты на преаналитические ошибки по типу пациентов в больницах Северной Америки составили 162,18 доллара США для стационарных (неотложных), 357,15 доллара США - для стационарных (прочих) и 337,05 доллара США - для амбулаторных пациентов. В Европе средние затраты на преаналитическую ошибку в зависимости от типа пациента составили 177,98 евро для стационарных (неотложных), 245,37 евро для стационарных (прочих) и 107,62 евро для амбулаторных пациентов. В среднем затраты на преаналитическую ошибку при взятии проб крови составляют от 0,23 до 1,20% общих операционных расходов больницы. Для больницы в США примерно на 650 коек эта стоимость экстраполируется примерно до 1 199 122 доллара в год (Green S.F., 2013).

Стоимость преаналитических ошибок и их влияние на эффективность также можно оценить по часам, потерянным в результате необходимых повторных исследований и отсроченного лечения. Всего за один год больница на 850 коек в США потеряла 24 027 пациенто-часов (повторное обследование и лечение). Из этих часов 2507 (10%) было потеряно из-за повторного лабораторного исследования (временные затраты на их проведение) и еще 21 519 (90%) часов было потеряно из-за дополнительного лечения пациентов. В европейской больнице на 850 коек было потеряно около 16 047 пациенто-часов; 730 (4%) - из-за повторного лабораторного исследования (временные затраты на их проведение) и 16 047 (96%) - из-за дополнительного лечения пациентов.

Общая стоимость отбраковки взятых проб крови также может быть определена количественно по стоимостной категории (рис. 3.7). В большинстве медицинских учреждений затраты на лечение пациентов составляют самую большую категорию затрат (примерно 72%), затраты на лабораторные исследования и их повторение - 26%, стоимость простоя лабораторного оборудования - 2%, расходные материалы для взятия проб крови - менее 0,5%.

pic 0130
Рис. 3.7. Категории стоимости проб крови низкого качества

Приведенные данные показывают, что преаналитические ошибки вносят значительный вклад в общие операционные расходы лечебных учреждений. Преаналитические ошибки не только увеличивают затраты на повторное проведение лабораторных исследований, но оказывают влияние на продолжительность лечения пациента и ресурсы, необходимые для последующего наблюдения и лечения в результате задержек в оказании медицинской помощи пациенту. Финансовые последствия преаналитических ошибок могут варьировать в зависимости от степени тяжести пациента.

Ошибки аналитического и постаналитического этапов встречаются значительно реже, на их долю приходится 7-13 и 25,0-45,5% соответственно. Для расчета их стоимости может использоваться методология, аналогичная приведенной для преаналитического этапа.

3.1.4. ТАРИФЫ НА ЛАБОРАТОРНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И ОПРЕДЕЛЕНИЕ РЫНОЧНОЙ СТОИМОСТИ ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛУГ

Если себестоимость теста определена, казалось бы, цену реализации лабораторных услуг легко определить путем процентного повышения стоимости, например, на 10%. Однако в реальной жизни все значительно сложнее: цены реализации лабораторных анализов зачастую основаны не на себестоимости тестов, а на ценах конкурентов или тарифах страховых компаний или регулирующих органов.

Для большинства КДЛ система оплаты за лабораторные анализы реализуется через тарифы на медицинские услуги, действующие в этой системе. В системе здравоохранения одновременно действует, как правило, несколько видов тарифов на одни и те же лабораторные услуги.

Наиболее широкое распространение получили тарифы в рамках фонда обязательного медицинского страхования.

Тарифы на медицинскую помощь являются главным инструментом экономического управления здравоохранением. В современных социально-экономических условиях медицинская услуга становится товаром. Расчет тарифов всегда представлял собой довольно сложную проблему не только в силу недостаточной методологической проработанности вопроса, но и из-за многообразия медицинских служб и соответствующих видов услуг, требующих большого объема расчетной работы. Вместе с тем даже для такой социально-ориентированной отрасли, как здравоохранение, в условиях дефицита финансовых средств правильно примененный механизм ценообразования дает возможность проводить структурные преобразования в отрасли.

Основой для расчета тарифов на медицинские услуги в системе ОМС являются «Методические рекомендации по расчетам тарифов на медицинские услуги в системе обязательного медицинского страхования» (приложение к приказу Федерального фонда обязательного медицинского страхования от 14 апреля 1994 г. № 16).

В рекомендациях указывается, что они применяются для расчетов и проведения мероприятий по согласованию и использованию тарифов на медицинские и иные услуги в системе обязательного медицинского страхования. Тарифы на медицинские и иные услуги в системе обязательного медицинского страхования представляют отдельную группу ценовых показателей, отличающуюся от расчетной стоимости медицинских услуг в новых условиях хозяйствования, цен на платные услуги населению, цен на медицинские услуги по договорам с предприятиями и организациями. Тарифы являются денежными суммами, определяющими уровень возмещения и состав компенсируемых расходов медицинского учреждения по выполнению территориальной программы обязательного медицинского страхования граждан.

Под объектом установления тарифа понимается медицинская помощь, выраженная в определенных комиссией по согласованию тарифов объемных показателях деятельности медицинских учреждений по обязательному медицинскому страхованию (например, годовая программа амбулаторного ведения пациента, пролеченный больной в стационаре, консультация, конкретная манипуляция и др.).

Тарифы разрабатываются, согласовываются и используются для оплаты медицинской помощи (медицинских и иных услуг), оказываемой по территориальной программе и финансируемой за счет фондов обязательного медицинского страхования в соответствии с выбранным способом оплаты.

В состав тарифа включаются расходы медицинского учреждения на выполнение территориальной программы обязательного медицинского страхования в соответствии с бюджетной классификацией расходов без выделения себестоимости и прибыли. Финансирование медицинского учреждения в форме оплаты медицинской помощи по выполнению территориальной программы обязательного медицинского страхования обеспечивает рентабельность этого вида деятельности, поскольку состав расходов бюджетной классификации включает возмещение текущих затрат и финансирование развития деятельности (расширенное воспроизводство).

В соответствии с планом счетов бухгалтерского учета по обязательному медицинскому страхованию и классификацией расходов медицинских учреждений в составе тарифа не предусмотрены расходы на амортизацию основных фондов медицинского учреждения. Полное восстановление активной части основных фондов медицинского учреждения осуществляется по статье расходов «Приобретение оборудования и инвентаря».

Правила расчетов предусматривают исключение из состава тарифа статей и групп расходов, финансируемых или возмещаемых из других источников, например, из бюджетов разных уровней, из доходов от предпринимательской деятельности и др.

В состав тарифа также не включаются расходы, которые по решению комиссии по согласованию тарифов финансируются целевым назначением на календарный период (помесячно, поквартально) из средств обязательного медицинского страхования.

Подготовка, рассмотрение и согласование тарифов осуществляются представителями участников системы обязательного медицинского страхования в соответствии с Законом РФ «О медицинском страховании граждан в РФ» и Временным порядком финансового взаимодействия и расходования средств в системе обязательного медицинского страхования граждан.

Тарифы являются контролируемыми ценами, подлежащими регулированию через тарифное соглашение, заключенное членами комиссии по согласованию тарифов.

Для разработки методики и проведения расчетов тарифов на медицинские и иные услуги в системе обязательного медицинского страхования рекомендуется в качестве основной использовать методику, изложенную в параграфе 2 «Методических рекомендаций по расчету тарифов на медицинские услуги» (письмо Минздрава России от 1 сентября 1992 г. № 19-15/03), в соответствии с выбранным способом оплаты медицинской помощи. В табл. 3.11 приведено приложение 10 по Тарифному соглашению по оплате медицинской помощи по обязательному медицинскому страхованию на территории Кировской области на 2015 г. от 30 января 2015 г.

Таблица 3.11. Приложение 10 по Тарифному соглашению по оплате медицинской помощи по обязательному медицинскому страхованию на территории Кировской области на 2015 г. Предельная стоимость диагностических услуг при осуществлении расчетов между медицинскими организациями в сфере ОМС
№ п/п Код номенклатуры медицинской услуги Исследования Стоимость исследования, руб.

I. Лабораторные исследования

1

A08.05.001

Миелограмма. Цитологическое исследование мазка костного мозга (подсчет формулы костного мозга)

500,00

2

A09.05.004

Исследование уровня а-липопротеинов (высокой плотности) в крови. Холестерин ЛПВП

75,07

3

A09.05.006

Исследование уровня миоглобина в крови

219,35

4

A09.05.007

Исследование уровня железа в сыворотке крови

10,50

5

A09.05.008

Исследование уровня трансферрина в сыворотке крови

77,58

6

A09.05.009

Определение концентрации C-реактивного белка в сыворотке крови

56,18

7

A09.05.010

Исследование уровня общего белка в крови

9,50

8

A09.05.011

Исследование уровня альбумина в крови

13,26

9

A09.05.014

Исследование уровня глобулиновых фракций в крови. Белковые фракции

66,88

10

A09.05.014

Определение концентрации Р2-микроглобулина

249,85

11

A09.05.017

Исследование уровня мочевины в крови

10,00

12

A09.05.018

Исследование уровня мочевой кислоты в крови

11,24

13

A09.05.020

Исследование уровня креатинина в крови

9,50

14

A09.05.021

Исследование уровня общего билирубина в крови

10,50

15

A09.05.022

Исследование уровня свободного и связанного билирубина в крови

10,50

16

A09.05.023

Исследование уровня глюкозы в крови

10,50

17

A09.05.025

Исследование уровня триглицеридов в крови

11,24

18

A09.05.026

Исследование уровня холестерина в крови

10,00

19

A09.05.027

Исследование уровня липопротеинов в крови. Апо А1

74,90

20

A09.05.027

Исследование уровня липопротеинов в крови. Апо В

74,90

21

A09.05.027

Исследование уровня липопротеинов в крови. Липопротеин(а)

214,00

22

A09.05.028

Исследование уровня липопротеинов низкой плотности. Холестерин ЛПНП

66,88

23

А09.05.030

Исследование уровня натрия в крови

82,00

24

А09.05.031

Исследование уровня калия в крови

82,00

25

A09.05.032

Исследование уровня общего кальция в крови

10,50

26

A09.05.033

Исследование уровня неорганического фосфора в крови

10,50

27

A09.05.035

Исследование уровня лекарственных препаратов в крови. Такролимус

800,00

28

A09.05.035

Исследование уровня лекарственных препаратов в крови. Циклоспорин

800,00

29

A09.05.037

Исследование концентрации водородных ионов (pH) крови. Кислотно-щелочной состав

497,55

30

A09.05.038

Исследование уровня осмолярности (осмоляльности) крови

53,50

31

A09.05.039

Исследование уровня лактатдегидрогеназы в крови

14,50

32

A09.05.039.001

Исследование фракций лактатдегидрогеназы. Гидроскибутиратдегидрогеназа (ЛДГ1)

15,00

33

A09.05.041

Исследование уровня аспартаттрансаминазы в крови

9,00

34

A09.05.042

Исследование уровня аланинтрансаминазы в крови

9,00

35

A09.05.043

Исследование уровня креатинкиназы общей в крови

28,36

36

A09.05.044

Исследование уровня у-глютамилтрансферазы в крови

10,50

37

A09.05.045

Исследование уровня амилазы в крови

18,73

38

A09.05.046

Исследование уровня щелочной фосфатазы в крови

9,50

39

A09.05.047

Исследование уровня антитромбина III в крови

98,56

40

A09.05.048

Исследование уровня плазминогена в крови

209,84

41

A09.05.050

Исследование уровня фибриногена в крови

50,41

42

A09.05.051

Исследование уровня продуктов паракоагуляции в крови. Продукты деградации фибрина, фибриногена

244,08

43

A09.05.051

Исследование уровня продуктов паракоагуляции в крови

178,81

44

A09.05.054.001

Исследование уровня сывороточного иммуноглобулина E в крови

238,25

45

A09.05.056

Исследование уровня инсулина плазмы крови

144,45

46

A09.05.058

Исследование уровня паратиреоидного гормона в крови

133,75

47

A09.05.060

Исследование уровня общего трийодтиронина (T3) в крови

95,00

48

A09.05.062

Исследование уровня свободного трийодтиронина (T3) в сыворотке крови

95,00

49

A09.05.063

Исследование уровня свободного тироксина (T4) в сыворотке крови

80,00

50

A09.05.064

Исследование уровня общего тироксина (T4) в сыворотке крови

80,00

51

A09.05.065

Исследование тиреотропина в сыворотке крови. ТТГ

80,00

52

A09.05.066

Исследование уровня соматотропного гормона в крови

267,50

53

A09.05.067

Исследование уровня АКТГ в крови

347,00

54

A09.05.069

Исследование уровня альдостерона в крови

142,87

55

A09.05.074

Исследование уровня циркулирующих иммунных комплексов в крови

104,67

56

A09.05.075

Исследование уровня комплемента и его фракций в крови. Компонент комплемента C3

96,47

57

A09.05.075

Исследование уровня комплемента и его фракций в крови. Компонент комплемента C4

96,47

58

A09.05.076

Исследование уровня ферритина в крови

152,48

59

A09.05.077

Церулоплазмин (феррокиназа)

146,06

60

A09.05.078

Исследование уровня общего тестостерона в крови

105,00

61

A09.05.079

Исследование уровня гаптоглобина в крови

163,18

62

A09.05.080

Исследование уровня фолиевой кислоты в сыворотке крови

315,65

63

A09.05.082

Исследование уровня эритропоэтина в крови

267,50

64

A09.05.083

Исследование уровня гликированного гемоглобина в крови

152,48

65

A09.05.087

Исследование уровня пролактина в крови

80,00

66

A09.05.089

Исследование уровня а-фетопротеина в сыворотке крови

107,00

67

A09.05.090

Исследование уровня хорионического гонадотропина в крови

130,00

68

А09.05.101

Исследование уровня криоглобулинов в сыворотке крови

91,47

69

A09.05.102

Фруктозамин. Исследование уровня гликированных белков в крови

24,08

70

A09.05.118

Исследование уровня антител к антигенам растительного, животного и химического происхождения в крови. Иммуноглобулин E специфический (к одному аллергену)

214,00

71

A09.05.118

Исследование уровня антител к антигенам растительного, животного и химического происхождения в крови. Иммуноглобулин E специфический (микст-панель, 8)

1706,65

72

A09.05.122

Исследование уровня ангиотензиногена, его производных и ангиотензинпревращающего фермента в крови. Ангиотензин I (ренин)

428,00

73

A09.05.126

Исследование протеина S в крови

332,89

74

A09.05.126

Исследование протеина S в крови

414.21

75

A09.05.127

Исследование уровня общего магния в сыворотке крови

10,50

76

A09.05.130

Исследование уровня простатоспецифического антигена в крови

160,50

77

A09.05.130

Исследование уровня простатоспецифического антигена в крови (ПСА) (свободный)

171,20

78

A09.05.131

Исследование уровня лютеинизирующего гормона в сыворотке крови

80,00

79

A09.05.132

Исследование уровня фолликулостимулирующего гормона в сыворотке крови

80,00

80

A09.05.135

Исследование уровня общего кортизола в крови

101,65

81

A09.05.139

Исследование уровня 17-гидроксипрогестерона в крови

174,37

82

A09.05.146

Исследование уровня андростендиона в крови

214,00

83

A09.05.149

Исследование уровня дегидроэпиандростерона-сульфата в крови

123,05

84

A09.05.153

Исследование уровня прогестерона в крови

95,00

85

A09.05.154

Исследование уровня общего эстрадиола в крови

95,00

86

A09.05.160

Исследование уровня глобулина, связывающего половые гормоны, в крови. Секс-стероид-связывающий глобулин

182,40

87

A09.05.173

Исследование уровня липазы в сыворотке крови

42,27

88

A09.05.174

Исследование уровня холинэстеразы в сыворотке крови

52,43

89

A09.05.177

Исследование уровня (концентрации) изоферментов КК в крови. Креатинкиназа-МВ

37,50

90

A09.05.179

Исследование уровня костного изофермента щелочной фосфатазы в крови

376,34

91

A09.05.180

Исследование уровня изоферментов а-амилазы в сыворотке/плазме крови. а-Амилаза панкреатическая

39,06

92

A09.05.181

Исследование уровня меди в крови

40,13

93

A09.05.187

Определение активности фактора IX в сыворотке крови

535,00

94

A09.05.188

Определение активности фактора VIII в сыворотке крови

535,00

95

A09.05.193

Определение уровня тропонина в крови

387,34

96

A09.05.195

Исследование уровня ракового эмбрионального антигена в крови

107,00

97

A09.05.196

Исследование уровня антигена плоскоклеточных раков в крови

460,60

98

A09.05.199

Исследование уровня опухоль-ассоциированных антигенов в сыворотке крови. Белок HE 4 (белок рака яичников)

291,04

99

A09.05.199

Исследование уровня опухоль-ассоциированных антигенов в сыворотке крови. CA 242 (карбоантиген)

269,07

100

A09.05.199

Исследование уровня опухоль-ассоциированных антигенов в сыворотке крови. CA 15-3 (карбоантиген)

139,01

101

A09.05.199

Исследование уровня опухоль-ассоциированных антигенов в сыворотке крови. CYFRA-21-1 (цитокератины)

342,90

102

A09.05.199

Исследование уровня опухоль-ассоциированных антигенов в сыворотке крови. NSE (нейронспецифическая енолаза)

250,47

103

A09.05.200

Исследование уровня антигена аденогенных раков Ca 72-4 в крови

207,01

104

A09.05.201

Исследование уровня антигена аденогенных раков CA 19-9 в крови

128,40

105

A09.05.202

Исследование уровня антигена аденогенных раков Ca 125 в крови

144,45

106

A09.05.204

Исследование уровня инсулиноподобного фактора роста-1 в крови

430,64

107

A09.05.205

Исследование уровня C-пептида в крови

155,15

108

A09.05.206

Исследование уровня ионизированного кальция в крови

25,50

109

A09.05.207

Исследование уровня молочной кислоты в крови

41,20

110

A09.05.207

Исследование уровня молочной кислоты в крови

41,20

111

A09.05.209

Исследование уровня прокальцитонина в крови

593,05

112

A09.05.210

Исследование фракций пролактина в крови (макро-пролактин)

112,35

113

A09.05.214

Исследование уровня гомоцистеина в крови

500,00

114

A09.05.219

Исследование уровня белка S-100 в сыворотке крови

706,70

115

A09.05.221

Определение витамина D3 в крови

535,00

116

A09.05.222

Определение C-концевого телопептида в крови. в-CrossLaps (карбокситерминальный телопептид)

321,00

117

A09.09.001

Микроскопическое исследование нативного и окрашенного препарата мокроты

92,26

118

A09.16.006

Исследование физических свойств дуоденального содержимого

97,87

119

A09.19.001

Исследование кала на скрытую кровь

155,15

120

A09.19.009

Исследование кала на яйца гельминтов

51,32

121

A09.19.010

Исследование уровня панкреатической эластазы в кале

800,00

122

A09.20.003

Определение D-димера

276,18

123

A09.20.005

Определение белка в суточной моче

64,18

124

A09.21.001

Микроскопическое исследование спермы. Спермограмма

169,76

125

A09.21.003

Микроскопическое исследование уретрального отделяемого и сока простаты

118,51

126

A09.23.006

Исследование спинномозговой жидкости (ликвора)

120,29

127

A09.28.003.001

Исследование на микроальбуминурию

162,11

128

A09.28.006

Исследование уровня креатинина в моче (проба Реберга)

192,60

129

A09.28.008

Исследование уровня порфиринов и их производных в моче. Уропорфирины

107,00

130

A09.28.015.001

Обнаружение кетоновых тел (ацетона) в моче с помощью тест-полоски

44,31

131

A09.28.022

Исследование концентрационной функции почек. Проба Зимницкого

134,18

132

A09.28.027

Определение а-амилазы в моче (суточная, порционная)

18,73

133

A09.28.028

Исследование мочи на белок Бенс-Джонса

56,88

134

A09.28.034

Исследование уровня катехоламинов в моче. Метанефрины

481,50

135

A09.30.010

Определение международного нормализованного отношения (МНО). Протромбиновое время

27,94

136

A12.05.001

Исследование скорости оседания эритроцитов

16,05

137

A12.05.005

Определение основных групп крови (AB0) и резус-фактора

209,72

138

A12.05.007

Определение подгруппы и других групп крови меньшего значения A-1, A-2

301,74

139

A12.05.007

Фенотипирование эритроцитов по антигенам (D, d, E, e, C, c, Cw, К, к)

749,00

140

A12.05.008

Непрямой антиглобулиновый тест (тест Кумбса)

281,70

141

A12.05.009

Прямой антиглобулиновый тест (прямая проба Кумбса)

168,19

142

A12.05.010

Определение HLA-антигенов. Гистотипирующая панель (полная) - HLA-АЗ

1140,16

143

A12.05.010

Определение HLA-антигенов. Гистотипирующая панель (укороченная) - HLA -В 27

459,79

144

A12.05.011

Исследование железосвязывающей способности сыворотки (ЖСС или НЖСС)

53,50

145

A12.05.014

Время свертывания крови

15,00

146

A12.05.015

Длительность кровотечения

15,00

147

A12.05.028

Определение тромбинового времени в крови

30,08

148

A12.05.035

Исследование активности и свойств фактора Виллебранда в крови

203,42

149

A12.05.039

Определение времени свертывания плазмы крови, активированного каолином и/или кефалином. АПТВ - активированное парциальное тромбопла-стиновое время

33,29

150

A12.05.045

Исследование уровня антиплазмина в крови

198,07

151

A12.06.009

Исследование антител к антигенам тканей почек. Антитела к базальной мембране клубочков (анти-GBM)

262,15

152

A12.06.009

Исследование антител к антигенам тканей почек. Антитела к микросомам печени и почки (AKL-LKM1)

428,00

153

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антиядерные антитела к 26 антигенам (ANA к 26 АГ) (IgG)

182,40

154

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антиядерные антитела к 9 антигенам (ANA к 9 АГ: SS-A 52, SS-A 60, SS-B, RNP, Sm, центромера В, Jo-1, Scl-70 и рибосомальный белок)

683,48

155

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антиядерные антитела к 9 антигенам (Nucleo к 9 АГ: ds DNA, нуклеосома, SS-A, SS-B, RNP, Sm, центромера В, Jo-1, Scl-70)

683,48

156

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антитела к двуспиральной ДНК (IgG)

182,40

157

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антитела к гистонам (IgG)

182,40

158

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антитела к нуклеосоме (Le-клеточный фактор) (IgG)

182,40

159

A12.06.010

Исследование антител к антигенам ядра клетки и ДНК. Антитела класса IgG к ядерным к антигенам склеродермии (Scl-70)

262,15

160

A12.06.015

Определение антистрептолизина О в сыворотке крови

73,30

161

A12.06.017

Исследование антител к тиреоглобулину в сыворотке крови

307,09

162

A12.06.019

Исследование ревматоидных факторов в крови

112,52

163

A12.06.019

Исследование ревматоидных факторов в крови. Антитела к цитруллинированному пептиду - COR (IgG)

589,00

164

A12.06.019

Исследование ревматоидных факторов в крови. Антитела к модифицированному цитруллинированному виментину - MCV (IgG)

214,50

165

A12.06.024

Исследование антител к антигенам печеночной ткани в крови. Антитела к растворимому антигену печени, поджелудочной железы (SLA/LP)

428,50

166

A12.06.026

Исследование антител к антигенам желудка в крови. Определение аутоантител к внутреннему фактору, париетальным клеткам, трансглутаминазе, ASCA, глиадину (Gastro-к 5 АГ)

803,00

167

A12.06.026

Исследование антител к антигенам желудка в крови. Антитела к глиадину (IgA)

246,60

168

A12.06.026

Исследование антител к антигенам желудка в крови. Антитела к глиадину (IgG)

246,60

169

A12.06.026

Исследование антител к антигенам желудка в крови. Антитела к париетальным клеткам желудка (ПК) (IgA, IgG)

535,00

170

A12.06.026

Исследование уровня антител к внутреннему фактору (IF)

535,00

171

A12.06.028

Исследование антител к антигенам спермальной жидкости в плазме крови

535,00

172

A12.06.029

Исследование антител овариальных

535,00

173

A12.06.029

Исследование антител к кардиолипину в крови. Антитела к кардиолипину (IgG)

262,15

174

A12.06.029

Исследование антител к кардиолипину в крови. Антитела к кардиолипину (IgM)

262,15

175

A12.06.029

Исследование антител к кардиолипину в крови. Антитела к кардиолипину (IgM, IgG)

267,50

176

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Антитела к Р2-гликопротеину I (IgG)

262,15

177

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Антитела к Р2-гликопротеину I (IgM, IgG)

267,50

178

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Антитела к Р2-гликопротеину I (IgM)

262,15

179

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Антитела к протромбину (IgG)

262,15

180

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Антитела к протромбину (IgM)

262,15

181

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. АФС. Антитела к фосфолипидам (IgM/IgG) (кардио-липину, фосфатидилинозитолу, фосфатидилсерину, фосфатидиловой кислоте и Р2Ь2-гликопротеину)

166,35

182

A12.06.030

Исследование антител к фосфолипидам в крови. Волчаночный антикоагулянт

267.62

183

A12.06.035

Исследование антител к антигенам митохондрий в крови. Антитела к митохондриям AMA-M2

246,60

184

A12.06.037

Исследование антител к миелопероксидазе (МРО)

262,15

185

A12.06.037

Исследование антител к протеиназе-3 (PR-3)

262,15

186

A12.06.037

Исследование антител к цитоплазме нейтрофилов в крови. Антитела к цитоплазматическим антигенам нейтрофилов (ANCA combi) (антигены: PR3, BPI, MPO, эластаза, катепсин G, лизоцим, лактоферрин)

535,00

187

A12.06.037

Исследование антител к цитоплазме нейтрофилов в крови. Антитела к цитоплазматическим антигенам нейтрофилов к 3 антигенам (ANCA к 3 АГ: PR3, MPO, GBM)

1004,48

188

A12.06.039

Исследование антител к инсулину в крови

428,00

189

A12.06.045

Исследование антител к тиреопероксидазе в крови

208,65

190

A12.06.046

Исследование антител к рецептору тиреотропного гормона (ТТГ) в крови

484,14

191

A26.01.017

Микроскопическое исследование отпечатков с поверхности кожи перианальных складок на яйца остриц (Enterobius vermicularis)

51,32

192

A26.01.018

Микроскопическое исследование соскоба с кожи на клещей

51,32

193

A26.05.001

Бактериологическое исследование крови на стерильность

667,7

194

A26.05.002

Бактериологическое исследование крови на тифо-паратифозную группу микроорганизмов.

Гемокультура

670,25

195

A26.05.006

Микробиологическое исследование крови на грибы рода кандида (Candida spp.) с чувствительностью в антимикотикам

428

196

A26.05.009

Микроскопическое исследование «толстой капли» мазка крови на малярийные плазмодии (Plasmodium)

21,52

197

A26.05.016

Исследование микробиоценоза кишечника (дисбактериоз)

1605,00

198

A26.06.006

Определение антител к грибам рода аспергиллы (Aspergilus fumigatus) (IgG) в крови

120,91

199

A26.06.006

Определение антител к грибам рода аспергиллы (Aspergilus fumigatus) (к]М) в крови

120,91

200

A26.06.014

Определение антител к грибам рода кандида (Candida spp.) в крови (IgG)

120,91

201

A26.06.014

Определение антител к грибам рода кандида (Candida spp.) в крови (IgM)

120,91

202

A26.06.016

Определение антител классов A (IgA) к хламидии пневмонии (Chlamidia pneumoniae) в крови

170,00

203

A26.06.016

Определение антител классов G (IgG) к хламидии пневмонии (Chlamidia pneumoniae) в крови

170,00

204

A26.06.018

Определение антител классов G (IgG) к хламидии трахоматис (Chlamydia trachomatis) в крови

181,90

205

A26.06.018

Определение антител классов A (IgA) к хламидии трахоматис (Chlamydia trachomatis) в крови

181,90

206

A26.06.022

Определение антител классов G (IgG) к цитомегало-вирусу (Cytomegalovirus) в крови

156,46

207

A26.06.022

Определение антител классов M (IgM) к цитомегало-вирусу (Cytomegalovirus) в крови

156,46

208

A26.06.024

Определение антител класса G (IgG) к эхинококку в крови

92,26

209

A26.06.028

Определение антител к вирусу Эпстайна-Барр (Epstein-Barr virus) в крови. К капсидному антигену VCA-IgG

177,86

210

A26.06.029

Определение антител к капсидному антигену вируса Эпстайна-Барр VCA (IgM) (диагностика острой инфекции) в крови

177,86

211

A26.06.030

Определение антител к ранним белкам вируса Эпстайна-Барр EA (IgG) (диагностика острой инфекции) в крови

166,22

212

A26.06.031

Определение антител к ядерному антигену вируса Эпстайна-Барр NA (IgG) (диагностика паст-инфекции) в крови

177,86

213

A26.06.032

Определение антител классов A, M, G (IgM, IgG) к лямблиям в крови

102,96

214

A26.06.032

Определение антител классов IgM к лямблиям в крови

102,96

215

A26.06.033

Определение антител к Helicobacter pylori (IgA, IgG, IgM) в крови

104,67

216

A26.06.034

Определение антител классов M к вирусу гепатита A (Hepatitis A virus) в крови

107,00

217

A26.06.035

Определение антигена к вирусу гепатита B (HbeAg Hepatitis B virus) в крови

97,21

218

A26.06.036

Определение антигена к вирусу гепатита B (HbsAg Hepatitis B virus) в крови

97,37

219

A26.06.038

Определение антител классов G к антигену вирусного гепатита B (HbeAg Hepatitis B virus) в крови

391,62

220

A26.06.039

Определение антител классов M, G (IgM, IgG) к антигену вирусного гепатита B (HbcAg Hepatitis B virus) в крови

112,35

221

A26.06.039

Определение антител классов M к антигену вирусного гепатита B (HbcAg Hepatitis B virus) в крови

203,30

222

A26.06.040

Определение антител классов M, G (IgM, IgG) к антигену вирусного гепатита B (HbsAg Hepatitis B virus) в крови

391,62

223

A26.06.041

Определение антител классов M, G (IgM, IgG) к вирусному гепатиту C (Hepatitis C virus) в крови

235,40

224

A26.06.041

Определение антител классов M к вирусному гепатиту C (Hepatitis C virus) в крови

111,28

225

A26.06.043

Определение антител классов M к вирусу гепатита D (Hepatitis D virus) в крови

129,00

226

A26.06.045

Определение антител классов IgG к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 1,2) в крови

138,03

227

A26.06.045

Определение антител классов IgG к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 2) в крови

156,46

228

A26.06.045

Определение антител классов IgM к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 2) в крови

156,46

229

A26.06.046

Определение антител классов IgM к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 1,2) в крови

138,03

230

A26.06.046

Определение низкоавидных антител класса G (IgG) к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 1,2) в крови

550

231

A26.06.046

Определение низкоавидных антител класса G (IgG) к вирусу простого герпеса (Herpes simplex virus 2) в крови

650

232

A26.06.048

Определение антител классов IgM, IgG к вирусу иммунодефицита человека ВИЧ-1, 2, ВИЧ-1 группы О и антигена ВИЧ-1 (антиген р24)

87,00

233

A26.06.057

Определение антител классов к микоплазме пневмонии (Mycoplasma pneumoniae) в крови

81,56

234

A26.06.057

Определение антител классов IgG к микоплазме пневмонии (Mycoplasma pneumoniae) в крови

81,56

235

A26.06.062

Определение антител (IgG) к возбудителю описторхоза (Opistorchis felineus) в крови

92,26

236

A26.06.062

Определение антител (IgM) к возбудителю описторхоза (Opistorchis felineus) в крови

92,26

237

A26.06.068

Определение групповых антител к риккетсиям (Rikettsia spp.) в крови. Исследование на сыпной тиф (РНГА с сыпнотифозным диагностикумом)

100,00

238

A26.06.068

Определение групповых антител к риккетсиям (Rikettsia spp.) в крови. Исследование на сыпной тиф (РНГА с сыпнотифозным диагностикумом)

100,00

239

A26.06.071

Определение антител классов G к вирусу краснухи (Rubeola virus) в крови

155,39

240

A26.06.071

Определение антител классов М к вирусу краснухи (Rubeola virus) в крови

346,22

241

A26.06.072

Определение антител класса G (IgG) к уреаплазме в крови

76,22

242

A26.06.072

Определение антител класса А (IgА) к уреаплазме в крови

76,22

243

A26.06.074

Определение антител к сальмонеллам паратифа A, В; тиф

100,00

244

A26.06.079

Определение антител (IgG) к трихинеллам (Trichinella spp.) в крови

92,26

245

A26.06.079

Определение антител^М) к трихинеллам (Trichinella spp.) в крови

92,26

246

A26.06.080

Определение антител (IgG) к токсокаре собак (Toxocara canis) в крови

102,96

247

A26.06.081

Определение антител (IgG) к токсоплазме (Toxoplasma gondii) в крови

184,04

248

A26.06.081

Определение антител (IgM) к токсоплазме (Toxoplasma gondii) в крови

184,04

249

A26.06.082

Определение антител (IgG, IgM) к бледной трепонеме (Treponema pallidum) в крови

75,81

250

A26.06.082

Определение антител (IgM) к бледной трепонеме (Treponema pallidum) в крови

75,81

251

A26.06.082.001

Определение антител к бледной трепонеме (Treponema pallidum) в нетрепонемных тестах (RPR, РМП) (качественное и полуколичественное исследование) в сыворотке крови

65,51

252

A26.06.100

Определение IgA в крови

96,47

253

A26.06.100

Определение IgG в крови

96,47

254

A26.06.100

Определение IgM в крови

96,47

255

A26.19.011

Микроскопическое исследование кала на простейшие

92,26

256

A26.19.011

Микроскопическое исследование кала на простейшие. Исследование кала на описторхоз

81,48

257

A26.20.001

Микроскопическое исследование отделяемого женских половых органов на гонококк (Neisseria gonorrhoeae)

73,00

258

A26.20.008

Микробиологическое исследование отделяемого женских половых органов на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы. Посев биологического материала на уреаплазму, микоплазму

642

259

A26.20.017

Паразитологическое исследование влагалищного отделяемого на трофозоиты трихомонад (Trichomonas vaginalis)

73,00

260

B03.016.010

Копрологическое исследование

82,40

261

B03.016.02

Общий анализ крови (краткий)

48,15

262

B03.016.03

Общий (клинический) анализ крови развернутый. (CBC + 5-diff + СОЭ)

60

263

B03.016.03

Общий (клинический) анализ крови развернутый с ретикулоцитами (CBc + RET)

125,40

264

B03.016.06

Анализ мочи общий

92,02

265

А09.05.224

Определение остеокальцина (N-MID-остеокальцина)

481,50

266

А26.08.001

Бактериологическое исследование слизи и пленок с миндалин на палочку дифтерии (Corinebacterium diphtheriae). Посев на дифтерийную палочку (зев/нос)

267,50

267

А26.09.010

Бактериологическое исследование мокроты на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы

1391,00

268

А26.14.002

Бактериологическое исследование желчи на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы

963,00

269

А26.19.001

Бактериологическое исследование кала на возбудителя дизентерии (Shigella spp.) (дизгруппа)

642,00

270

А26.23.006

Микробиологическое исследование спинномозговой жидкости на аэробные и факультативно-анаэробные условно-патогенные микроорганизмы

856,00

271

А26.28.003

Микробиологическое исследование мочи на аэробные и факультативно-анаэробные условно-патогенные микроорганизмы

642,00

272

Исследование уровня плацентарного лактогена

266,43

273

Исследование уровня свободного тестостерона в крови

160,5

274

Микробиологическое исследование на анаэробные микроорганизмы с чувствительностью к антибиотикам

856

275

Микробиологическое исследование на аэробные микроорганизмы (кроме СМЖ, мочи, мокроты, желчи, зева) с чувствительностью к антибиотикам

642

276

Посев на золотистый стафилококк (зев/нос), чувствительность к антибиотикам

128,4

277

Посев воздуха

400

278

Смывы на стерильность (перевязочный материал и другой инструмент) - один объект

20

279

Смывы с объектов (КТД - контроль текущей дезинфекции) - один объект

20

280

Определение антител к микоплазме (Mycoplasma hominis) (IgA)

76,22

281

Определение антител к микоплазме (Mycoplasma hominis) (IgG)

76,22

282

N-терминальный промозговой натрийуретический пептид (NT-proBNP)

861,35

283

Определение концентрации цистатина C

203,00

284

Расчет индекса атерогенности

161,21

285

Натрий (Na+), калий (K+), кальций ионизированный (CA++)

81,86

286

Натрий (Na+), калий (K+), хлор (CL- )

81,86

287

Исследование уровня витамина В12

208,65

288

Процент насыщения трансферрина железом

139,10

289

Исследование уровня кальпротектина в кале

700,00

290

Определение клиренса креатинина по формуле MDRD и др.

32,10

291

Скорость клубочковой фильтрации по формуле Кокрофта-Голта

32,10

292

Антитела к декарбоксилазе глютаминовой кислоты (а/т к GAD)

944,81

293

Иммунологическое обследование супружеской пары по системам АВ0, резус-фактора, HLA

1605,00

294

Иммунный статус (клеточный (CD3, CD4, CD8, CD22) + гуморальный (общие IgA, IgM, IgG) иммунитет, ЦИК, ФАН)

771,04

295

Исследование уровня антител к BPI (белку, увеличивающему проницаемость)

428,00

296

Исследование уровня антител к трансглютаминазе (IgA, IgG)

375,00

297

Исследование уровня антител к прозрачной оболочке ооцита (Zona Pellucida)

535,00

298

Определение антител гепатита G, антитела HGV (IgG)

129,31

299

Исследование уровня антигена Helicobacter pylori в кале

960,00

300

Исследование уровня антигена Chlamydia trochomatis

207,08

301

Определение антигена лямблий (Lamblia intestinalis) в кале

301,00

302

Определение антител к антигенам четырех гельминтов (описторхисов, трихинелл, токсокар, эхинококков в сыворотке крови) (IgG)

105,79

303

Определение антител к антигенам Ascaris Lumbricoides (аскарид) (IgG)

280,58

304

Исследование выпотных жидкостей (экссудатов и транссудатов)

110,93

305

Исследование латентной лейкоцит-, эритро-, цилиндрурии. Проба Амбурже

71,22

306

Исследование латентной лейкоцит-, эритро-, цилиндрурии. Проба Нечипоренко

71,22

307

Исследование на КУМ в различном биологическом материале

111,14

308

Обнаружение эозинофилов в биологическом материале

83,70

II. Цитологические исследования

1

А08.01.002

Цитологическое исследование препарата кожи

99,00

2

А08.06.001

Цитологическое исследование препарата тканей лимфатического узла

122,00

3

A08.06.005

Цитологическое исследование биоптатов лимфатических узлов

122,00

4

А08.20.004

Цитологическое исследование аспирата из полости матки

122,00

5

A08.20.011

Морфологическое исследование препарата тканей шейки матки

87,00

6

А08.20.012

Цитологическое исследование препарата тканей влагалища

87,00

7

А08.20.013

Цитологическое исследование препарата тканей матки

87,00

8

A08.22.004

Цитологическое исследование препарата тканей щитовидной железы

182,00

9

A08.30.007

Просмотр цитологического препарата

55,00

10

A08.30.016

Цитологическое исследование препарата пунктатов опухолей, опухолеподобных образований мягких тканей

122,00

11

A09.04.002

Цитологическое исследование синовиальной жидкости

122,00

12

А09.09.002

Цитологическое исследование плевральной жидкости

182,00

13

A09.09.010

Цитологическое исследование мокроты

122,00

14

A09.20.010

Цитологическое исследование отделяемого из соска молочной железы

110,00

15

А09.30.006

Цитологическое исследование перитонеальной жидкости

182,00

III. Молекулярно-биологические исследования (ПЦР)

1

Молекулярно-биологическое исследование Candida albicans (соскоб)

150,00

2

A26.20.020

Молекулярно-биологическое исследование отделяемого женских половых органов на хламидии (Chlamydia trachomatis) Chlamydia trachomatis (соскоб)

135,00

3

Молекулярно-биологическое исследование Gardnerella vaginlis (соскоб)

142,00

4

Молекулярно-биологическое исследование Mycoplasma genitalium (соскоб)

134,00

5

Молекулярно-биологическое исследование Mycoplasma hominis (соскоб)

136,00

6

Молекулярно-биологическое исследование Neisseria gonorrhoeae (соскоб)

129,00

7

A26.05.013

Молекулярно-биологическое исследование крови на токсоплазмы (Toxoplasma gondii) Toxoplasma gondii (кровь)

154,00

8

Молекулярно-биологическое исследование Toxoplasma gondii (соскоб)

135,00

9

Молекулярно-биологическое исследование Trichomonas vaginalis (соскоб)

128,00

10

Молекулярно-биологическое исследование Ureaplasma spp. (urealyticum + parvum) с дифференциацией вида и количественно (соскоб)

276,00

11

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирус Varicella Zoster (кровь)

120,00

12

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирус гепатита А (кровь)

263,00

13

A26.05.020

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирусный гепатит B (Hepatitis B virus). Вирус гепатита В (количественный) (кровь)

1524,00

14

A26.05.020

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирусный гепатит B (Hepatitis B virus). Вирус гепатита В (кровь)

150,00

15

A26.05.019

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирусный гепатит C (Hepatitis C virus). Вирус гепатита O (количественный) (кровь)

1662,00

16

A26.05.019

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирусный гепатит C (Hepatitis C virus). Вирус гепатита O (кровь)

264,00

17

A26.20.012

Молекулярно-биологическое исследование влагалищного отделяемого на вирус папилломы человека (Papilloma virus). Вирус папилломы 16-го, 18-го типа (соскоб)

222,00

18

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирус простого герпеса 1-го, 2-го типа (кровь)

174,00

19

A26.20.010

Молекулярно-биологическое исследование отделяемого из цервикального канала на вирус простого герпеса 1, 2 (Herpes simplex virus 1,2). Вирус простого герпеса 1-го, 2-го типа (соскоб)

174,00

20

A26.05.011

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирус Эпстайна-Барр (Epstein-Barr virus). Вирус Эпстайна-Барр (кровь)

130,00

21

A26.05.019

Молекулярно-биологическое исследование крови на вирусный гепатит C (Hepatitis C virus). Типирование вируса гепатита С (кровь)

762,00

22

A26.05.017

Молекулярно-биологическое исследование крови на цитомегаловирус (Cytomegalovirus). Цитомегаловирус (кровь)

156,00

23

A26.20.011

Молекулярно-биологическое исследование отделяемого из цервикального канала на цитомегаловирус (Cytomegalovirus). Цитомегаловирус (соскоб)

164,00

КДЛ государственных ЛПУ могут оказывать платные лабораторные услуги при отсутствии соответствующих лабораторных услуг в гарантированной программе и целевых комплексных программах оказания медицинской помощи населению. Соответственно, существуют тарифы на платные лабораторные услуги.

Расчет тарифов на оказание платных медицинских услуг пациентам ЛПУ, коммерческим медицинским центрам и частным пациентам рекомендуется осуществлять в рамках гражданского и бюджетного кодексов в соответствии с Постановлением Правительства РФ от 4 октября 2012 г. № 1006 «Об утверждении правил предоставления платных медицинских услуг».

Цена платной медицинской услуги складывается:

  1. из действующих тарифов по программе ОМС;

  2. затрат КДЛ, связанных с эксплуатацией и ремонтом зданий, сооружений, приобретением оборудования и другой уставной деятельностью и определяется обычно путем применения к тарифам ОМС коэффициента (к).

При оказании платных медицинских услуг государственные и муниципальные учреждения здравоохранения выполняют функции частных медицинских организаций. Практика оказания платных медицинских услуг бюджетными учреждениями подрывает финансовую основу рынка частных медицинских услуг, формируя условия неравной конкуренции для частных медицинских организаций.

Основные преимущества, позволяющие государственным (муниципальным) учреждениям оказывать около 40% (а вместе с теневым сектором - 70%) объема платных медицинских услуг, следующие.

  • Смешанное финансирование из бюджетов соответствующих уровней, системы ОМС и доходов от коммерческой деятельности.

  • Государственные ЛПУ вкладывают собственные средства в ремонт помещений, материалы и оборудование в весьма ограниченном объеме. В основном это делается за счет средств бюджета. По этой причине государственные и ведомственные учреждения легко побеждают в ценовой конкуренции, занимая весь низ и почти всю середину среднеценового сегмента рынка платных услуг.

  • Согласно статье 256 Налогового кодекса РФ, не подлежит амортизации имущество бюджетных организаций, за исключением имущества, приобретенного и используемого для осуществления предпринимательской деятельности, то есть цены на платные медицинские услуги, оказываемые с использованием оборудования, приобретенного на бюджетные средства, формируются без учета амортизационных начислений, в то время как частные медицинские организации должны оценивать те же услуги по полной стоимости.

Естественно, что медицинские учреждения, оказывающие платные услуги, не хотят терять и бюджетное финансирование, что препятствует сокращению излишних мощностей.

Сложившаяся ситуация, с одной стороны, препятствует развитию в РФ частной системы здравоохранения, с другой - оказание платных медицинских услуг государственными и муниципальными ЛПУ нередко приводит к сокращению объема медицинских услуг, оказываемых данными учреждениями бесплатно в рамках реализации программы государственных гарантий.

Многие авторы признают, что наделение государственных и муниципальных учреждений здравоохранения правом на оказание платных медицинских услуг является вынужденной мерой, не соответствующей основному правовому статусу данных учреждений, и обусловлены современным состоянием российского здравоохранения.

Доходы, полученные учреждением в результате осуществления им приносящей доходы деятельности, а также приобретенное за счет этих доходов имущество поступает в самостоятельное распоряжение учреждения и учитывается им на отдельном балансе. На такие доходы не распространяется режим имущества, закрепленного за учреждением собственником на праве оперативного управления, и такое имущество не может быть изъято у учреждения без его согласия.

Все вышеизложенное в полной мере относится и к КДЛ, функционирующим в составе государственных ЛПУ. Другое дело, что доходами от платных лабораторных услуг полностью распоряжается руководитель ЛПУ, а КДЛ от этих доходов ничего не получают.

Третий вид тарифов на лабораторные услуги - это тарифы в рамках добровольного медицинского страхования. Пациент или третья сторона (у нас в стране это обычно частные медицинские центры и страховые компании) заранее определяют сумму, которую они оплатят за каждый вид лабораторных исследований. В свою очередь страховые компании договариваются с КДЛ ЛПУ или коммерческими лабораториями о тарифах на лабораторные услуги. Безусловно, договорные тарифы страховых компаний с КДЛ ниже тех сумм, которые заранее определены между страховой компанией и пациентом. При этом эта разность бывает весьма существенной.

Гражданско-правовые связи «медицинская организация - страховая компания» являются, пожалуй, наиболее распространенными в сфере медицинских услуг по добровольному медицинскому страхованию. Все больше медицинских организаций отказывается от схемы «медицинская организация - пациент», перекладывая на страховую компанию всю тяжесть достижения договоренностей с конкретным гражданином (пациентом) об объеме и качестве медицинских услуг. И это во многом себя оправдывает. По итогам 2012 г., рынок добровольного медицинского страхования вырос на 40%. С этим связан и рост числа коммерческих КДЛ.

Таким образом, существующие тарифы на лабораторные услуги и применяемые для их расчета методики ценообразования не приводят к повышению объективности тарифов (имеются в виду регулируемые тарифы). Кроме того, существующие тарифы и расчеты в рамках ОМС не способствуют повышению заинтересованного участия КДЛ государственных ЛПУ, как в расширении спектра лабораторных услуг, так и повышении их качества.

3.2. ПРИБЫЛЬНОСТЬ И РЕНТАБЕЛЬНОСТЬ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ЛАБОРАТОРИИ

Потенциальная возможность КДЛ сохранять (достигать) приемлемое финансовое состояние определяется объемом получаемой прибыли. Необходимо отметить, что прибыльность деятельности лаборатории влияет на все без исключения показатели финансового состояния КДЛ и является одним из ключевых условий ее стабильного финансового положения.

Основные составляющие, от которых зависит объем прибыли КДЛ, - это стоимость, по которой реализуются лабораторные анализы и объемы их реализации, а также уровень производственных издержек (себестоимость анализов). Когда ведется обсуждение прибыльности КДЛ, необходимо иметь представление о ряде характеристик, связанных с ней.

Выручка от реализации лабораторных анализов - стоимость реализованных анализов (лабораторных услуг) без учета налога на добавленную стоимость, акцизов и других налогов за определенный период.

Прибыль от основной деятельности КДЛ (прибыль от реализации анализов) представляет собой разность между выручкой от реализации анализов и затратами на реализованные анализы. Экономический смысл данного понятия состоит в оценке эффективности производственной деятельности КДЛ.

Балансовая прибыль (прибыль до налогообложения) представляет собой массу прибыли до ее налогообложения. Балансовая прибыль формируется из прибыли (убытков) от основной деятельности, а также прочих доходов (расходов).

Чистая прибыль - прибыль, остающаяся в распоряжении КДЛ после уплаты налогов, - ключевая характеристика экономической эффективности деятельности КДЛ. Чистая прибыль является основным источником увеличения собственного капитала КДЛ. Она рассчитывается как разница между балансовой прибылью и налогом на прибыль. Направления использования чистой прибыли определяются самой КДЛ.

Маржинальная прибыль - разница между выручкой от реализации лабораторных анализов и переменными (прямыми) затратами на их производство и реализацию. Маржинальная прибыль имеет принципиальное значение при анализе прибыльности КДЛ, так как позволяет проанализировать причины убытков, определить границы безубыточности деятельности, охарактеризовать тенденции ценовой политики КДЛ. С экономической точки зрения маржинальная прибыль представляет собой резерв покрытия постоянных (косвенных и накладных) расходов и получения прибыли.

Положительная маржинальная прибыль свидетельствует о потенциальной возможности КДЛ получать прибыль от реализации лабораторных анализов.

Для общей характеристики ценовой политики КДЛ в отношении продажной стоимости лабораторных анализов рассчитывается ценовой коэффициент, называемый также нормой маржинальной прибыли. Ценовой коэффициент определяется как отношение маржинальной прибыли к выручке от реализации лабораторных анализов и характеризует соотношение цен на реализуемые услуги и потребляемые в процессе производства анализов ресурсы переменного характера. Динамика ценового коэффициента отражает, насколько темп роста цен на реализуемые лабораторные анализы отличается от темпа роста цен на реактивы, калибраторы, контрольные материалы, расходный материал и т.д., устанавливаемые фирмами-поставщиками этих материалов:

маржинальная прибыль

ценовой коэффициент =-, %.

выручка от реализации

Значение ценового коэффициента не зависит от объема производимых КДЛ анализов и их реализации и определяется уровнем цен на реализуемые анализы и переменной составляющей затрат.

Величина ценового коэффициента определяется следующими факторами:

  • ценами на реализуемые лабораторные анализы;

  • ценами на реактивы, калибраторы, контрольные материалы, расходный материал и т.д., устанавливаемыми фирмами-поставщиками этих материалов (стоимостью переменных затрат);

  • номенклатурой реализуемых лабораторных анализов;

  • изменениями технологии производства лабораторных анализов (изменяются переменные затраты на производство анализов).

Общая положительная величина маржинальной прибыли не гарантирует, что каждый из видов лабораторных исследований является потенциально прибыльным. Для выявления потенциально прибыльных видов лабораторных анализов и исследований, имеющих отрицательную маржинальную прибыль, необходим номенклатурный анализ - расчет ценовых коэффициентов по отдельным видам лабораторных исследований:

image

С точки зрения максимизации прибыли КДЛ целесообразно:

  • реализовывать лабораторные анализы, имеющие максимальный ценовой коэффициент;

  • минимизировать объем реализации лабораторных анализов, имеющих отрицательный ценовой коэффициент.

В табл. 3.12 приведены усредненные переменные затраты (затраты на реактивы) на производство основных видов лабораторных исследований и их стоимость на рынке в г. Москве.

Из табл. 3.12 видно, что наибольший ценовой коэффициент имеют серологические и биохимические исследования, ПЦР-анализы и их реализация наиболее прибыльны для КДЛ. В то же время наименьший ценовой коэффициент имеют бактериологические анализы. Именно этим можно объяснить то, что большинство кожно-венерологических диспансеров, санитарно-эпидемиологические службы стремятся создать в своем составе КДЛ и любыми путями повернуть потоки серологических анализов в свою сторону. С этим связано и то, что ПЦР-лаборатории растут во всех городах страны, как грибы после дождя. В свою очередь, коммерческие медицинские центры создают КДЛ для проведения гематологических и особенно биохимических анализов, у которых ценовой коэффициент очень высок. Данные табл. 3.12 во многом объясняют плачевное состояние бактериологических лабораторий государственных ЛПУ и практически полное отсутствие коммерческих бактериологических лабораторий на рынке.

Таблица 3.12. Себестоимость реактивов и рыночная стоимость лабораторных анализов
№ п/п Вид анализа Средняя стоимость реактивов на один анализ, руб. Средняя рыночная стоимость одного анализа, руб.

1

Гематологические

28

120

2

Биохимические

6,5

50

3

Гормональные

27

180

4

Онкомаркеры

54

240

5

Серологические

14

140

6

Бактериологические

190

300

7

ПЦР

16

80

Наличие отрицательной маржинальной прибыли - крайне негативная ситуация для любой лаборатории. Она свидетельствует о том, что выручка от реализации лабораторных услуг не покрывает даже переменных затрат на производство исследований. При отрицательной маржинальной прибыли обязательное условие улучшения финансового состояния КДЛ - оптимизация ценовой и номенклатурной политики лаборатории на рынке.

При анализе и планировании прибыли необходимо понимать, на какие темпы изменения прибыли может рассчитывать КДЛ при изменении объемов продаж лабораторных исследований. Характеристику возможных темпов роста прибыли КДЛ при изменении объемов реализации лабораторных услуг дает производственный рычаг (operating leverage). Главная задача производственного рычага - показать, на сколько процентов изменится прибыль КДЛ при изменении выручки на 1%. Производственный рычаг рассчитывается по следующей формуле:

маржинальная прибыль

производственный рычаг =---.

прибыль от основной деятельности

Например, значение рычага 5% свидетельствует о том, что при изменении выручки от реализации лабораторных услуг на 1% прибыль лаборатории увеличится на 5%. Чем выше производственный рычаг, тем быстрее лаборатория имеет возможность наращивать прибыль.

Величину производственного рычага определяет структура производственных затрат, точнее, доля переменных и постоянных затрат в себестоимости исследований. Чем выше доля постоянных затрат в общих затратах КДЛ, тем выше производственный рычаг. В связи с этим:

  • лаборатория с высоким производственным рычагом - это КДЛ, у которой в затратах преобладает доля постоянных затрат;

  • у лаборатории с низким производственным рычагом в составе затрат преобладают переменные расходы.

Чем отличаются КДЛ с высоким и низким производственным рычагом? Как указывалось выше, производственный рычаг характеризует возможные темпы роста прибыли лаборатории при изменении выручки от реализации лабораторных услуг. При увеличении объемов реализации КДЛ, имеющая высокий производственный рычаг, получает возможность более высокими темпами наращивать прибыль, чем лаборатория с низким производственным рычагом.

Необходимо понимать, что производственный рычаг - это, с одной стороны, характеристика возможных темпов роста прибыли, с другой - характеристика темпов ее падения. При одинаковом росте объемов продаж лабораторных услуг КДЛ с высоким производственным рычагом (с высокой долей постоянных затрат в себестоимости исследований) будет наращивать прибыль более высокими темпами, чем лаборатория с низким рычагом. Однако при падении продаж лабораторных услуг первая лаборатория будет терять прибыль быстрее. Чем больше производственный рычаг, тем выше зависимость КДЛ (с точки зрения получаемой прибыли) от объемов реализации лабораторных услуг.

Производственный рычаг необходимо использовать для эффективного управления финансовым состоянием КДЛ. На практике такое управление заключается в изменении структуры затрат - изменении вклада переменных и постоянных затрат в себестоимость исследований.

Ответ на вопрос, к какому производственному рычагу должна стремиться КДЛ, во многом зависит от прогнозируемых объемов продаж лабораторных услуг. При неблагоприятной рыночной обстановке, то есть при снижении объемов продаж, выгоден низкий производственный рычаг (низкая доля постоянных затрат в себестоимости исследований), так как при падении объемов продаж необходимо решать задачу минимизации потерь прибыли. Наоборот, при благоприятной рыночной конъюнктуре, то есть при росте объемов реализации лабораторных услуг, выгоден высокий рычаг (высокая доля постоянных и низкая доля переменных затрат в себестоимости исследований). Данная структура затрат будет способствовать максимизации прибыли.

В практическом плане в отношении производственного рычага можно сделать следующие выводы:

  • при одном и том же объеме реализации лабораторных услуг размер получаемой прибыли может изменяться за счет изменения доли переменных и постоянных затрат в себестоимости исследований;

  • целесообразно изменять долю переменных и постоянных затрат в себестоимости исследований за счет элементов (центров затрат), имеющих значительный удельный вес в структуре затрат.

Прибыль, которую приносят КДЛ любой формы собственности в нашей стране, неизвестна. В государственных КДЛ она просто не рассчитывается, а данные по коммерческим КДЛ недоступны, можно сказать, даже засекречены, так как получить какие-либо сведения по данному вопросу невозможно даже в личной беседе с руководителями коммерческих лабораторий. В государственных КДЛ США прибыль составляет 5-8% в год (в государственных лечебных учреждениях США она еще ниже - 1-5%).

Рентабельность продукции (коэффициент рентабельности), то есть результатов лабораторных анализов, - отношение чистой прибыли от реализации результатов анализов к их себестоимости. Коэффициент рентабельности может быть рассчитан для каждого лабораторного теста по следующей формуле:

общий доход от продажи тестов

коэффициент рентабельности = --.

общие затраты на производство тестов

Определение рентабельности деятельности КДЛ позволяет оценить способность лаборатории приносить доход на вложенный капитал. Рентабельность капитала определяется прибыльностью деятельности КДЛ, но прибыльность и рентабельность не тождественны. Прибыльность характеризует отдачу на вложенные в текущую деятельность КДЛ средства, рентабельность - отдачу на средства, вложенные в активы (имущество КДЛ). От уровня рентабельности КДЛ зависит ее инвестиционная привлекательность.

Согласно экспертным оценкам, рентабельность деятельности КДЛ составляет 6-40%. Еще в середине 1990-х годов рентабельность коммерческих КДЛ в нашей стране была достаточно высокой. Однако в связи с возрастающей конкуренцией как между коммерческими, так и государственными КДЛ рентабельность заметно снизилась.

Рентабельность - категория совершенно новая для большинства специалистов КДЛ. Вместе с тем есть среди них незначительное число специалистов, которые хотят инвестировать свой собственный капитал в создание новых КДЛ. В связи с этим приведенный ниже материал будет полезен.

3.3. КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ЛАБОРАТОРИИ

По мере того как КДЛ будут все более и более экономически самостоятельными в любом варианте (будут ли они находится на своем отдельном бюджете, станут самостоятельным юридическим лицом, самостоятельной коммерческой организацией), возникнет необходимость оценивать эффективность использования расходных материалов и труда, продуктивности, эффективности и объемов потерь с экономических позиций. Безусловно, себестоимость анализов будет одной из сторон таких оценок. Однако, чтобы детально разобраться в экономической эффективности КДЛ, необходимо научиться использовать индексы (отношения), которые позволят сконцентрировать все усилия на проблемных областях деятельности лаборатории.

Соотношения обеспечивают количественную информацию об использовании материалов и труда, продуктивности, эффективности и объемов потерь - данные, которые помогают контролировать затраты и улучшать все процессы в лаборатории. Учитывая, что такие подходы в отношении КДЛ в нашей стране не разработаны, ниже приведены наиболее часто используемые индексы в коммерческих лабораториях США (Sharp J.W., 1985).

Соотношения, используемые для оценки экономической эффективности деятельности лаборатории

Процент продуктивности = (рабочие единицы/отработанные часы)/60.

Необходимые рабочие часы = (рабочие единицы/мес)/(45х173,33[4]).

image

1 FTE - эквивалент полного времени; Т - количество часов за оплачиваемый период для FTE, основанный на двухнедельном периоде оплаты, или 26 периодов оплаты в год (для специалистов КДЛ США).

Прямые расходы/тест = прямые расходы/оплачиваемые процедуры.

Общие расходы/тест = общие расходы/оплачиваемые процедуры.

Уровень эффективности = (продуктивность/FTE в час х 100)/(прямые расходы/тест).

Переменные затраты/тест = (обеспечение+1/2 лабораторных затрат)/оплачиваемые процедуры.

Постоянные затраты/тест = (распределяемые издержки + 1/2 затрат труда)/оплачиваемые процедуры.

Доход/тест = доход/оплачиваемые процедуры.

Объем потерь = фиксированные затраты/(доход/тест-переменная затраты на тест).

Ключевым моментом анализа финансовых показателей является оценка затрат. В табл. 3.13 приведены основные индексы, которые используются в коммерческих лабораториях США для этих целей, и принятые стандарты, которым лаборатории должны соответствовать (Fantus J., 1990).

Таблица 3.13. Индексы используемые для оценки экономической деятельности лаборатории
Индекс Стандарт

Затраты на заработную плату/выручка от реализации анализов

<40%

Затраты на обеспечение/выручка от реализации анализов

<15%

Косвенные расходы/выручка от реализации анализов

<35%

Для оценки экономической деятельности лаборатории можно использовать и более простые показатели. Например, оптимальными считаются затраты на производство анализов в пределах 25-30% всех затрат лаборатории, а доля заработной платы должна составлять 20% всех затрат.

В настоящее время наиболее перспективными направлениями снижения затрат и повышения экономической эффективности деятельности лаборатории являются (William O.U., 1996):

  • гибкая система закупок (способствует снижению затрат до 17%);

  • оптовые закупки (способствует снижению затрат до 16%);

  • контроль за работой персонала и рабочей нагрузкой (способствует снижению затрат до11%);

  • инвентаризация используемого оборудования (способствует снижению затрат до 10%).

Неперспективные пути снижения затрат лаборатории:

  • сокращение штата;

  • отсутствие необходимых капиталовложений на модернизацию оборудования и информационной системы;

  • экономия на обучении.

Не менее важно для принятия управленческих решений в КДЛ проводить регулярный анализ распределения накладных затрат на производство различных видов исследований.

Рассмотрим одну из методик распределения накладных затрат на основе прямой себестоимости лабораторных исследований. Данная методика использует для распределения накладных затрат коэффициент, рассчитанный на основе основных материалов и прямой заработной платы. В целом методика распределения накладных затрат на лабораторные исследования используется для анализа и принятия таких управленческих решений, как оценка выгодности производства и продажи каждого вида исследований в отдельности, какой вклад вносит каждый вид анализа в чистую прибыль (убыток) КДЛ по сравнению с другими исследованиями, принятия решения об изменении спектра выполняемых исследований - отказ от проведения неприбыльных исследований (или выполнение их в другой лаборатории) или продвижение на рынок более прибыльных видов лабораторных услуг.

В табл. 3.14 приведена выдержка из бухгалтерского учета ЗАО «Лаборатория XXI век». Суммарная колонка (всего по видам исследований) в общем отображает структуру отчета по прибылям и убыткам (profit and loss statement) (за исключением строк, которые являются дополнительными), а колонки 1 и 2 детализируют доходы и затраты по видам исследований. При этом валовая прибыль рассчитывается как разница между чистыми продажами лабораторных услуг и себестоимостью исследований. В себестоимость исследований включаются прямые материальные затраты, трудовые затраты прямого производственного персонала (врачей и фельдшеров-лаборантов), производственные накладные затраты. Термин «прямые» обозначает, что данные затраты могут быть конкретно идентифицированы с видом исследований.

Таблица 3.14. Выдержка из бухгалтерского учета закрытого акционерного общества «Лаборатория ХХ! век»
Показатель Страница учета Креатинин КК Всего по исследованиям

Продажи анализов, количество

10

100

120

-

Цена одного исследования, руб. без НДС

20

10

15

-

Чистые продажи анализов, руб. без НДС

30

1000

1800

2800

Прямые основные материалы

40

250

360

610

Заработная плата прямого производственного персонала

50

200

960

1160

Прямые производственные затраты, руб.

60

450

1320

1770

Прямые производственные затраты на одно исследование, руб.

70

4,50

11,00

15,50

Прямые производственные затраты на одно исследование, в процентах к прямым производственным затратам по всем продуктам

80

29%

71%

100%

Коэффициент поглощения непрямых затрат всей продукцией (отношение прямых производственных затрат к по данному виду исследований к общим затратам), %

90

25%

75%

100%

Производственные накладные затраты в целом по КДЛ

100

-

-

200

Производственные накладные затраты по видам исследований согласно коэффициенту поглощения, руб.

110

51

149

200

Производственные накладные затраты на одно исследование согласно коэффициенту поглощения, руб.

120

0,51

1,24

Себестоимость всего объема анализов, руб.

130

501

1469

1970

Себестоимость одного исследования, руб.

140

5,01

12,24

-

Валовая прибыль, руб.

150

499

331

830

Валовая прибыль на одно исследование, руб.

160

5,0

2,8

-

Валовая прибыль, в процентах к чистым продажам

170

50%

18%

30%

Административные затраты в целом по КДЛ, руб.

180

-

-

300

Административные затраты по видам исследований согласно коэффициенту поглощения, руб.

190

76

224

300

Административные затраты на одно исследование согласно коэффициенту поглощения, руб.

200

0,76

1,86

-

Операционная прибыль, руб.

210

423

107

530

Операционная прибыль на одно исследование, руб.

220

4,2

0,9

-

Операционная прибыль, в процентах к чистым продажам

230

42%

6%

19%

Проценты по кредитам и амортизация в целом по КДЛ, руб.

240

-

-

400

Проценты по кредитам и амортизация по видам исследований согласно коэффициенту поглощения, руб.

250

102

298

400

Проценты по кредитам и амортизация на одно исследование согласно коэффициенту поглощения, руб.

260

1,0

2,5

-

Чистая прибыль или убыток, руб.

270

321

191

130

Чистая прибыль или убыток на одно исследование, руб.

280

1,6

0,2

-

Чистая прибыль или убыток, в процентах к чистым продажам

290

32%

11%

5%

В данном примере основные материалы и трудовые затраты прямого производственного персонала могут быть непосредственно отнесены к конкретным видам исследований, поэтому и выступают как база распределения, поглощения всех других затрат (производственных накладных, административных, процентов по кредитам и амортизации), которые не могут напрямую быть идентифицированы с конкретными исследованиями. Это допущение является основным при данном анализе - базой распределения служат те затраты, которые могут быть точно идентифицированы с конкретными видами исследований. Дальше рассчитывается операционная прибыль как разница между валовым доходом и административными затратами. Чистая прибыль рассчитывается как разница между операционной прибылью и процентами по кредитам, амортизацией. Надо отметить, что такие затраты, как проценты по кредитам, амортизация, считаются постоянными и независимыми от уровня продаж лабораторных услуг КДЛ, то есть эти затраты будут начисляться независимо от того, выполняет КДЛ исследования или нет. В международной практике широко используется подход, когда проценты по кредитам вообще не распределяются на продукцию. Проанализируем данные табл. 3.14 для принятия управленческих решений.

Во-первых, проведем оценку выгодности производства и продажи каждого вида исследований в отдельности. Для ответа на этот вопрос классифицируем затраты, приведенные в этой таблице, с точки зрения их идентификации с конкретными видами исследований. В табл. 3.14 представлены такие виды затрат, как прямые основные материалы для производства исследований, зарплата прямого производственного персонала, накладные производственные затраты, административные затраты, проценты по кредитам и амортизация. В данном примере только основные материалы, зарплата прямого производственного персонала могут быть непосредственно отнесены к конкретным видам исследований, и эти затраты находят свое отображение в себестоимости продукции, которая определяет валовую прибыль, поэтому в данном примере валовая прибыль является основной мерой определения прибыльности производства каждого вида исследований. Видно, что продажа исследований креатинина более прибыльна, чем КК (18 против 50%). Все другие виды прибыли являются дополнительными и демонстрируют уменьшение валового дохода на сумму поглощенных затрат. Надо отметить, что если бы другие затраты можно было идентифицировать с конкретными видами исследований, то для анализа прибыльности вида исследований можно было бы использовать другой вид прибыли.

Во-вторых, проанализируем, какой вклад вносит каждый вид исследования в чистую прибыль КДЛ по сравнению с другими анализами. Видно, что по исследованиям КК КДЛ потерпела убыток на 191 руб., а по исследованиям креатинина получила чистую прибыль 321 руб. Это вызвано двумя факторами: во-первых, валовая прибыль по исследованиям КК значительно ниже, чем валовая прибыль по исследованиям креатинина (18 против 50%), во-вторых, выполнение одного исследования КК в 2,44 раза более трудо- и материалоемко по сравнению с одним исследованием креатинина, поэтому на одно исследование КК потребовалось в 2,44 раза больше непрямых затрат, что и привело к убыткам по данному виду исследования. В принципе, такой подход к распределению непрямых затрат корректен, так как на одно исследование КК тратится больше времени и ресурсов КДЛ. Однако, если себестоимость исследований различается на порядок, то более ресурсоемкие виды исследований будут перепоглощать большую часть затрат и будут в явном виде иметь чистые убытки против прибылей по лабораторным исследованиям, которые имеют небольшую себестоимость. В таком случае необходимо применять другую методику распределения накладных затрат.

В-третьих, рассмотрим, как анализ данных в табл. 3.14 может повлиять на принятие решений по изменению видов исследований, выпускаемых КДЛ. Как уже упоминалось, выгодность исследования оценивается в данном примере валовой прибылью, однако необходимо отметить, что данная таблица не учитывает целый ряд неколичественных факторов: условия и тенденции развития рынка лабораторных услуг, возможные действия конкурентов, изменение запросов потребителями, ограниченность производственных мощностей, достаточность оборотных средств для финансирования производства исследований. Иногда эти факторы могут быть значительно более важными, чем показатели прибыли по виду исследований в отчетном периоде. Но при прочих равных условиях можно сделать вывод, что КДЛ проводить исследования креатинина более выгодно, чем КК, но и отказываться полностью от выполнения КК нельзя. Например, если продажи исследований креатинина будут на уровне 100 единиц за отчетный период, а исследования КК не будут выполняться, то исследования креатинина поглотят все непрямые затраты и будут убыточны. Кроме того, следует отметить, что эти исследования КК убыточны, а непрямые затраты КДЛ достаточно высоки и надо уделять внимание их снижению.

Практический опыт показывает, что данная методика позволяет оценить выгодность производства и продажи каждого вида лабораторных исследований в отдельности, вклад каждого исследования в чистую прибыль (убыток) КДЛ по сравнению с другими исследованиями, принять решение об изменении спектра выполняемых анализов или базы для их производства.

3.4. ТОЧКА БЕЗУБЫТОЧНОСТИ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ЛАБОРАТОРИИ

При осуществлении деятельности КДЛ в рыночных условиях неизменно возникают вопросы: «Какой объем реализации лабораторных анализов необходим для максимизации прибыли?», «Какой объем реализации анализов допустим, для того чтобы свести концы с концами?» Все эти вопросы пересекаются в одной точке - необходимо определить тот объем продаж лабораторных анализов, ниже которого КДЛ будет убыточной, выше которого - зарабатывать деньги. Этот минимально допустимый объем продаж лабораторных анализов, который покрывает все затраты на производство и реализацию исследований, не принося при этом ни прибыли, ни убытков, носит название «точка безубыточности».

Как только КДЛ достигла точки безубыточности, можно говорить о получении прибыли. Свыше точки безубыточности каждый проданный лабораторный анализ приносит прибыль. Если же объем продаж анализов не достигает безубыточности, КДЛ работает с убытком. В данном случае финансовое положение КДЛ неблагополучно. Законы рыночных отношений неумолимы: убыточные КДЛ нежизнеспособны.

Точка безубыточности определяется на основании данных об объемах продаж лабораторных анализов и затратах на их производство и реализацию. Обязательное условие расчетов - разделение затрат на переменные и постоянные. Напомним, что переменные затраты изменяются пропорционально объему проводимых лабораторных исследований (реактивы, расходный материал, калибраторы, контрольные материалы, промывающие растворы, заработная плата специалистов лаборатории), постоянные - не зависят от объемов выполняемых анализов (затраты на ремонт и содержание оборудования и помещений, арендные платежи, амортизационные отчисления, хозяйственные расходы, заработная плата административно-хозяйственного аппарата и т.д.).

Точка безубыточности (минимальное количество тестов для получения прибыли) каждого лабораторного теста рассчитывается по формуле:

тариф за тест х количество тестов = общие косвенные затраты + (количество тестов х прямые затраты на тест).

Другими словами, искомая точка безубыточности в денежном выражении определяется разностью выручки от реализации анализов следующей формулой и переменными затратами, которая должна быть более нуля:

image

При этом выручка и затраты должны относиться к одному и тому же периоду времени (месяц, квартал полгода, год). Точка безубыточности будет характеризовать минимально допустимый объем продаж лабораторных анализов за тот период. Точка безубыточности, наверное, единственный экономический показатель, о котором можно сказать: «Чем ниже, тем лучше». Действительно, чем меньше необходимо реализовывать на рынке лабораторных исследований, тем проще получить КДЛ доход.

Снижение точки безубыточности - критерий успешной работы КДЛ, рост точки безубыточности - свидетельство ухудшения ее финансового положения. Однако эти условия справедливы только при условии, что масштабы КДЛ не меняются.

Расширение, рост КДЛ (например, создание отдела для хроматографических исследований или отдела по работе с фармацевтическими компаниями) неизбежно приводят к росту постоянных затрат. Так, с увеличением объемов производства анализов вырастут затраты на ремонт и обслуживание оборудования. Расширение производства анализов, внедрение новых методов исследования - это арендная плата за новые помещения, привлечение дополнительного персонала и, следовательно, дополнительные затраты на оплату труда, рост затрат на рекламу и продвижение лабораторных услуг. Как только масштабы КДЛ увеличиваются (масштаб, измеряющийся объемами продаж анализов), КДЛ выходит на новую, более высокую точку безубыточности.

Другими словами, точка безубыточности изменяется пропорционально масштабам КДЛ.

Для того чтобы определить, насколько близко КДЛ подошла к границе, за которой деятельность становится убыточной, определяется отклонение фактического объема выручки от реализации анализов от расчетной величины точки безубыточности.

Абсолютное отклонение от точки безубыточности = Фактическая выручка от реализации за период - Точка безубыточности

Наиболее наглядным показателем, характеризующим степень удаленности КДЛ от точки безубыточности, является запас прочности. Он показывает, на сколько процентов может быть снижен объем продаж лабораторных анализов для сохранения безубыточного уровня работы КДЛ (либо на сколько процентов необходимо увеличить объем продаж для достижения безубыточного уровня работы). Запас прочности определяется как отношение абсолютного отклонения от точки безубыточности к фактической величине выручки от реализации:

абсолютное отклонение

от точки безубыточности

запас прочности =-, %.

выручка от реализации

Чем выше запас прочности, тем устойчивее положение КДЛ с точки зрения прибыльности, тем меньше стоит опасаться негативных изменений рынка - падения объема продаж. Запас прочности снимает влияние масштаба КДЛ (что не позволяет точка безубыточности), поэтому позволяет объективно, без каких-либо условий, сравнивать КДЛ с различными объемами продаж или оценивать изменения финансового положения КДЛ на различных этапах ее существования.

Показатели безубыточности необходимо рассматривать в совокупности с другими финансовыми показателями работы КДЛ. В частности, необходимо помнить, что обеспечение безубыточности объема реализации лабораторных услуг еще не гарантирует получение денег. Полученная прибыль будет потрачена на уплату налогов, на приобретение оборудования, помещений (то есть на осуществление капитальных вложений), на погашение ранее привлеченных кредитов, выплату штрафов и т.д.

Возможны ситуации, при которых объемы реализации лабораторных услуг КДЛ от периода к периоду остаются стабильными, при этом точка безубыточности возрастает. Подобная ситуация является тревожным симптомом: зарабатывать прибыль становится все сложнее. Важно определить причину роста точки безубыточности и принять необходимые меры по ее оптимизации.

Причины роста точки безубыточности могут заключаться как в изменениях внешней среды, так и в действиях самой КДЛ. Изменения внешней среды - это рост цен на реактивы, контрольные материалы, расходный материал, бензин, электроэнергию, арендную плату. Действия КДЛ, повлекшие за собой рост точки безубыточности, как правило, связаны с постоянными затратами, например, произошло повышение заработной платы сотрудников, вышел из строя анализатор, что привело к росту затрат на его ремонт, бесконтрольно расходовались тепло и электроэнергия. Также возможной причиной роста точки безубыточности является изменение структуры продаж - лаборатория стала продавать больше бактериологических исследований при резком снижении продаж серологических анализов.

Следует понимать, что на величину запаса прочности в КДЛ оказывают влияние три фактора:

  • выручка от реализации лабораторных услуг;

  • величина постоянных затрат;

  • значение ценового коэффициента.

Факторы, определяющие величину запаса прочности, являются одновременно и рычагами оптимизации данного показателя. Можно выделить следующие пути повышения запаса прочности КДЛ с точки зрения получаемой прибыли:

  • увеличение объема продаж лабораторных услуг (только в том случае, если величина маржинальной прибыли положительна);

  • снижение постоянных затрат;

  • увеличение доли более прибыльных видов лабораторных анализов - анализов с наибольшими ценовыми коэффициентами.

В заключение данного раздела следует сказать, что формула идеального спектра лабораторных услуг и коммерческого успеха КДЛ - совокупность максимального ценового коэффициента и максимального спроса на исследования.

3.5. БЮДЖЕТ ЛАБОРАТОРИИ

Составление бюджета КДЛ - это будущие реалии нашей жизни. Представляется, что уже в ближайшие 2-3 года эта концепция будет востребована в нашей стране. По крайней мере, другого пути в условиях государственного здравоохранения для обеспечения функционирования КДЛ не просматривается, да и практический опыт развитых стран свидетельствует об этом. Существующие в настоящее время тарифы по оплате лабораторных исследований в рамках обязательного и добровольного медицинского страхования, диспансеризации не решают и не могут решить проблем финансирования КДЛ. При любых объемах средств, заработанных КДЛ, в конечном итоге та часть из них, которая достанется лаборатории, полностью зависит от доброй воли главного врача ЛПУ или вышестоящего чиновника. В таких условиях КДЛ всегда будет финансироваться по остаточному принципу. Кроме того, КДЛ - реальная составляющая ЛПУ, которая может самостоятельно выжить в рыночных условиях. Переход КДЛ на деятельность в рамках бюджета - это первый реальный шаг к дальнейшему самостоятельному экономическому существованию. Безусловно, администрация ЛПУ, в состав которого входит КДЛ, не заинтересована в том, чтобы лаборатория стала самостоятельной, так как в настоящее время это один из важных источников поступления реальных денег на счета ЛПУ из различных фондов, и будет оказывать всяческое сопротивление реализации данной идеи. Не вызовет восторга переход КДЛ на бюджет и у заведующих лабораторией. Ведь тогда предстоит бороться за то, чтобы ЛПУ направляло анализы непосредственно в данную КДЛ, а не в другую, активно искать и привлекать других заказчиков лабораторных услуг, доказывать, что качество лабораторных анализов в их лаборатории выше и уровень услуг в целом лучше, чем у конкурентов. Тем не менее представляется, что заведующим КДЛ уже в настоящее время необходимо иметь ясное представление, для чего, как и с какой целью формируется бюджет. Кроме того, понимание этой проблемы важно с точки зрения постановки задач при разработке ЛИС.

Бюджеты служат финансовыми планами на какой-то будущий период и инструментами контроля над затратами за охватываемый период. Чем лучше их планирование и подготовка, тем проще их утверждение и выполнение предусмотренных ими лимитов.

Бюджет - план действий, выраженный в количественных терминах. С помощью бюджета могут осуществляться:

  • прогнозирование доходов/расходов;

  • оценка финансовой деятельности;

  • контроль над затратами;

  • контроль за соблюдением правил финансового учета.

Являясь механизмом контроля, бюджет служит средством сдерживания затрат, который помогает соотносить расходы с доступными ресурсами. При ежемесячном анализе плана можно выявить отклонения путем сравнения бюджетных и фактических затрат. Выявление значительных расхождений позволяет предпринять корректирующие мероприятия. Это является аспектом сдерживания затрат, который так важен для администраторов, третьих лиц - плательщиков и пациентов, для которых важны расходы на медицинское обслуживание.

Корректировки бюджета могут потребоваться по различным причинам (например, становятся доступны услуги более высокого качества, требует изменений рабочая нагрузка, оборудование не подлежит ремонту или его ремонт слишком затратен), которые оказываются приоритетными.

В процессе своей деятельности КДЛ предстоит постоянно иметь дело с нескольким взаимосвязанными, но отдельными типами бюджетов, к которым относятся:

  1. общий;

  2. операционный (текущий):

    • постатейный (фиксированный);

    • гибкий.

Общий бюджет включает основные расходы не ниже определенного уровня с периодом использования более 1 года:

  • замена оборудования;

  • приобретение нового оборудования;

  • крупные нормативные затраты;

  • крупные преобразования.

Операционный бюджет включает:

  • постатейный - фиксированная сумма относится к каждому вспомогательному подразделению. Он определяется ожидаемым объемом исследований, нагрузкой на подразделение, а также доходами и расходами, которые планируются исходя из этого. Данный тип бюджета используется в государственных КДЛ;

  • гибкий - включает часть расходов, не зависящих от выполненных объемов исследований, другая часть расходов приводится в соответствие с объемами исследований. Данный тип бюджета используется в госпитальных и коммерческих КДЛ.

Однако, помимо приведенных типов бюджетов, в процессе своей деятельности КДЛ предстоит постоянно иметь дело с несколькими взаимосвязанными, но отдельными видами бюджетов:

  • доходным;

  • статистическим;

  • капитальным;

  • расходным;

  • бюджетом наличных средств.

Остановимся на краткой характеристике этих видов бюджетов.

Участие лаборатории в статистическом, доходном бюджетах и бюджете наличных средств обычно ограничено обеспечением операционной статистики. Гораздо больше усилий уходит на создание расходного бюджета и бюджета капитальных затрат КДЛ. Они должны быть четко документированы, чтобы пройти проверку экономистами ЛПУ, управлений (министерств) здравоохранения, а также представителями страховых агентств. Со временем у нас в стране будут разработаны стандарты и правила для составления бюджетов медицинских учреждений (в том числе и КДЛ), и их необходимо будет предоставлять при аккредитации ЛПУ и КДЛ.

Фиксированный бюджет предполагает стабильный уровень операций на протяжении года и равномерно распределяет все бюджетные расходы на 12 мес. Гибкий бюджет предполагает, что определенные расходы могут варьировать с изменением уровня операций, и необходимо учесть эти отклонения. Прогнозный бюджет старается предугадать, что произойдет через 2, 5 или 10 лет.

Капитальный бюджет связан с планированием средств на приобретение оборудования для КДЛ. Приобретение оборудования требует, чтобы расходы были сбалансированы с потребностями. Устаревание не должно основываться только на давности инструмента. Должны также учитываться простои, затраты на контроль качества и надежность. Заведующий КДЛ должен знать, когда тот или иной объект оборудования относится к капитальным затратам. Это основано на его стоимости и периоде полезного использования (например, минимум двухлетний срок службы). Как известно из практической жизни, большинство запросов капитального бюджета должны пройти несколько уровней анализа и согласования.

Исходными данными для формирования бюджета являются следующие:

  • стоимость тестов;

  • статистика рабочей нагрузки персонала;

  • доход или годовой доход (прошлый, настоящий и прогнозируемый);

  • стоимость капитального оборудования (первоначальная стоимость, период использования и годовая амортизация);

  • текущие расходы на реагенты, расходные материалы, сервисное обслуживание и другие статьи;

  • персонал (настоящий и планируемый);

  • общий ежедневный уровень проб и пациентов с перебоями в виде пороговых уровней;

  • планы по расширению обслуживания корпоративных и индивидуальных клиентов или его сокращению;

  • уровни оплаты по договорам;

  • предполагаемые изменения в условиях оплаты.

На основании приведенных выше данных составляется план бюджета КДЛ, который включает следующие разделы:

  1. краткое описание бюджета;

  2. консолидированный уровень планируемого дохода на бюджетный период;

  3. краткое описание необходимых капитальных затрат;

  4. анализ денежных потоков;

  5. ключевые факторы при планировании;

  6. оценка влияния бюджета на сервис и финансы учреждения.

Бюджет - главный финансовый документ для всех учреждений здравоохранения. Это основной инструмент планирования и контроля за функциями управления. Заведующим КДЛ предстоит осваивать эти новые для них сферы деятельности.

Важно понимать что переход КДЛ на бюджетную форму финансирования повлечет за собой необходимость формирования в рамках КДЛ управленческого звена в составе менеджеров, экономистов, специалистов по продвижению лабораторных услуг. Именно этот аппарат, а не врачи клинической лабораторной диагностики, будет нести ответственность за выполнение бюджета, и специалистов управленческого аппарата будут снимать с работы при систематическом нарушении бюджета или его невыполнении. Вместе с тем параллельно будет решаться и судьба самих лабораторий, кто сможет выжить в таких условиях, а кто не сможет доказать необходимость своего существования. Естественно, что, если это одна КДЛ на целый город или район, будет заменено только руководство КДЛ, а если таких лабораторий несколько в городе, возможно, встанет вопрос о закрытии одной из них и укрупнении другой в целях выполнения анализов для данного ЛПУ на ее базе.

Функционирование КДЛ в рамках бюджетного финансирования подразумевает и то, что средства, зарабатываемые лабораторией, становятся единственным источником обновления основных фондов (оборудования, помещений) и покрытия прочих расходов, включая заработную плату персонала.

Переход КДЛ на бюджетную форму финансирования или даже просто ее функционирование на современном этапе реформирования системы здравоохранения немыслимо без структурной реорганизации отечественных лабораторий. Для успеха на современном рынке лабораторных услуг в лаборатории должны сотрудничать специалисты клинической лабораторной диагностики, финансисты, менеджеры, специалисты по маркетингу и информационным системам, бухгалтера. Структура КДЛ развитых стран подтверждает эту точку зрения и свидетельствует о ее объективности (рис. 3.8).

pic 0134
Рис. 3.8. Типичная структура госпитальной клинико-диагностической лаборатории в Соединенных Штатах Америки

В качестве короткого комментария к приведенной схеме необходимо обратить внимание на то, что медицинский директор лаборатории (заведующий КДЛ в нашем понимании) - лицо, независимое даже от президента КДЛ. Такое распределение полномочий играет важнейшую роль в поддержании баланса интересов между управленческим аппаратом КДЛ и профессиональной деятельностью лаборатории. Кроме того, схема дает ясное представление о том, как должны реформироваться структура и штатное расписание КДЛ у нас в стране при переходе на бюджетное финансирование.

В реальности оценка экономических аспектов деятельности КДЛ гораздо сложнее и объемнее, чем это представлено в данном изложении. Однако эта сложная деятельность выходит за рамки данной публикации, главная цель которой состоит в ознакомлении заведующих КДЛ с основными экономическими подходами к оценке эффективности деятельности КДЛ. Читатели, заинтересованные в практической консультации по этому сложному предмету, могут ознакомиться с рекомендуемой литературой. Вместе с тем специалисты КДЛ должны воспринять тот международный опыт и те экономические пути, по которым идет реформирование лабораторной службы. Главными экономическими выводами, которым необходимо следовать при этом, являются следующие:

  1. большинство медицинских лабораторий в развитых странах функционируют в целях извлечения прибыли, при этом выручка превышает издержки.

  2. издержки рассчитывают на единицу исследования, и исходя из этого определяется цена услуги.

  3. основой деятельности лаборатории является бюджет, отклонения от которого должны быть объяснены.

  4. учет затрат - важнейший аспект в определении спектра и объема исследований, который должна выполнять каждая лаборатория.

Особое внимание обращаем на последний вывод - именно затраты являются ведущим экономическим критерием в определении того, какие тесты должна выполнять КДЛ в данном ЛПУ, а также какие новые тесты необходимо внедрять в клиническую практику.

Глава 4. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

ЛИС предназначены для комплексной автоматизации деятельности КДЛ. В зарубежной литературе для них принято название «система управления лабораторной информацией» (Laboratory information Management System - LIMS).

Информационные компьютерные технологии находят наибольшее применение в первую очередь там, где имеется большой объем выполняемой рутинной работы. Тысячи КДЛ в мире ежедневно выполняют огромное количество различных видов исследований. Объем обрабатываемой при этом информации достаточно велик. Типичная средняя КДЛ насчитывает 15 пользователей (специалистов лаборатории), исследующих примерно 10 000 проб в год и выполняющих по каждой пробе в среднем пять тестов с определением четырех параметров в каждом. В крупных лабораториях одновременно может быть задействовано до 100 пользователей и более.

Современное функционирование единого технологического процесса производства клинических лабораторных исследований невозможно без поддержки компьютерных информационных систем. Большинство КДЛ используют тот или иной вид автоматизированных информационных систем. Однако только некоторые из них используют единую ЛИС, объединяющую все подразделения лабораторий. Еще меньше лечебных учреждений имеют ЛИС, интегрированную с клинической информационной системой, хотя благодаря развитию и внедрению локальных сетей ситуация может быстро меняться. Некоторые учреждения, особенно большие больницы, предпочитают создание собственных систем, но большинство клинических лабораторий используют системы, поставляемые коммерческими фирмами. Использование ЛИС - стандарт в практике КДЛ США.

Ориентированная на технологию ЛИС оказывает благоприятное воздействие практически на все аспекты технологического процесса производства лабораторных анализов: устраняется множество рутинных операций, возрастает эффективность использования современных лабораторных анализаторов, упрощается документооборот, обеспечивается принципиально новый уровень информационного взаимодействия с заказчиками лабораторных исследований, позволяет управлять качеством результатов лабораторных анализов.

Концепция ориентированной на технологический процесс информатизации лаборатории и варианты ее реализации в лидирующих системах, бесспорно, оправдывают свое существование. Однако в настоящее время КДЛ все больше и больше превращается в коммерческое предприятие, которое начинает жить по законам рынка. Соответственно, КДЛ должны демонстрировать свою экономическую эффективность, конкурентоспособность и коммерческий успех. В связи с этим в настоящее время ЛИС становится мощным инструментом КДЛ, обеспечивая конкурентоспособное преимущество перед другими лабораториями, экономя время и деньги.

4.1. ЛАБОРАТОРНЫЕ ИНФОРМАЦИОННЫЕ СИСТЕМЫ

ЛИС представляют собой совокупность программно-технических средств, баз данных и знаний, предназначенную для автоматизации различных процессов, протекающих в лаборатории, и обеспечивающую потребность специалистов лаборатории в систематической информации по всем аспектам их деятельности для принятия решений, улучшающих работу лаборатории, в том числе и повышению качества результатов лабораторных анализов. Таким образом, ЛИС состоит из следующих трех основных компонентов:

  • технические средства - центральный процессор, устройства ввода-вывода, запоминающие устройства, интерфейсы, автоанализаторы;

  • программное обеспечение - компьютерные программные средства, обеспечивающие работу технических средств и обработку информации;

  • пользователь - специалист лаборатории, который осуществляет взаимосвязь с программными и техническими средствами системы и использует возможности ЛИС в своих целях.

Можно выделить два основных направления компьютеризации деятельности лаборатории.

Первое предусматривает использование компьютеров для автоматизации информационных и технологических процессов внутри лаборатории, то есть внедрение ЛИС. В функции ЛИС входят:

  • регистрация доставленного в лабораторию биоматериала и заявок на его исследование, их распределение по частным технологическим процессам выполнения анализов, регистрация и оформление результатов исследований, оперативный и ретроспективный анализ деятельности лаборатории;

  • автоматизация выполнения исследований, включая ввод и обработку данных с анализаторов, составление отчетов о загрузке оборудования;

  • контроль качества лабораторных исследований, оперативное выявление и исправление ошибок, оценка точности и воспроизводимости аналитических результатов, их статистическая обработка и принятие решения по этим данным;

  • анализ и выдача результатов исследований;

  • составление различных статистических отчетов;

  • предоставление информации для принятия управленческих решений по повышению качества результатов анализов;

  • учет поступления и использования реактивов, расходного имущества.

ЛИС обеспечивают выполнение основных функций как при обработке данных, так и управлении лабораторией. Компьютеры, встроенные в лабораторные приборы, выполняющие исследования, помогают анализировать первичные данные, сохранять и распространять результаты исследований, следить за качеством исследований, документировать лабораторные процедуры и предоставлять информацию, которая необходима руководителям лабораторий для управления материальным снабжением и распределением рабочей нагрузки, а также для повышения производительности лаборатории.

Одной из основных функций ЛИС является обеспечение специалистов лаборатории информацией об исследуемой пробе (данные о пациенте, время взятия материала, перечень исследований, которые нужно выполнить, диагноз, лечащий врач, специалист, проводивший взятие биоматериала) на всех этапах единого технологического процесса производства анализов. Потоки лабораторной информации при традиционном лабораторном исследовании должны идти практически параллельно с движением пробы по различным технологическим процессам и операциям производства анализов.

Второе направление использования компьютеров в деятельности лаборатории - решение проблемы взаимодействия лабораторий с клиническими отделениями стационара (поликлиники) на базе единой компьютерной медицинской информационной системы (МИС) учреждения - включает автоматизацию процессов оформления заявок на лабораторные исследования, составления списков пациентов для взятия биоматериала, а также передачу результатов анализов в отделения. Кроме того, МИС учреждения должна иметь не только базу справочных данных (инструкции для взятия биоматериала, информацию по оценке результатов анализов, перечень исследований, выполняемых лабораторией, и т.д.), но и доступ к другим информационным системам справочного или обучающего характера (например, Интернет). В рамках этого направления решаются следующие задачи:

  • составление заявок на лабораторные исследования с терминалов в клинических отделениях (рабочее место врача-клинициста) и выдача результатов анализов из ЛИС на эти терминалы;

  • составление списка пациентов, заявок на анализы и их распечатка на терминалах рабочих станций процедурной медицинской сестры или лаборанта;

  • маркировка взятого биоматериала;

  • предоставление информации о пациенте, заявке на анализы, способе маркировки биоматериала в ЛИС;

  • создание банка данных с результатами лабораторных исследований, доступного для оперативного пользования;

  • автоматизированная поддержка врачебных решений: предоставление диагностических карт обследования пациентов, схем назначений анализов, данных о диагностической чувствительности и специфичности тестов, алгоритмов оценки результатов и т.д.

Главной целью компьютеризации этого направления является уменьшение количества необоснованных назначений исследований, сокращение времени получения результатов анализов, более аргументированная интерпретация результатов и контроль за их использованием для оказания качественной медицинской помощи пациенту. По разным оценкам, в рукописной истории болезни содержится от 40 до 70% информации о больном, полученной в ходе лечебно-диагностического процесса, и 30% - в собственных архивах диагностических служб либо же безвозвратно потеряны. Примерно 11% лабораторных исследований необходимо проводить повторно, так как предыдущие данные просто невозможно отыскать.

До последнего времени при разработке компьютерных информационных систем для лабораторий основное внимание уделяли работам первого направления - созданию ЛИС, а второе направление - интегрирование ЛИС с МИС лечебного учреждения - не получило широкого распространения. Однако ситуация заметно меняется. Современная концепция медицинских информационных систем предполагает, что деятельность по объединению автономных информационных систем диагностических служб с информационной системой лечебного учреждения является одной из приоритетных.

Современные ЛИС предназначены для комплексной автоматизации деятельности КДЛ. Комплексная автоматизация позволяет достичь таких преимуществ, как:

  • оптимизация и упрощение рабочих процессов лаборатории;

  • оптимизация документооборота лаборатории;

  • максимально эффективное использование рабочего времени сотрудников лаборатории,

  • максимально эффективное использование технической базы лаборатории (анализаторов);

  • гарантирование конфиденциальности информации о результатах анализов пациентов;

  • возможности эффективного и легкого масштабирования лаборатории как по спектру выполняемых исследований, так и по потоку проб без потери качества;

  • улучшение и постоянный контроль качества выполняемых исследований;

  • упрощение ведения коммерческой деятельности лаборатории (прием и учет частных пациентов, введение индивидуальных скидок пациентам, работа с корпоративными заказчиками);

  • простота интеграции удаленных процедурных кабинетов в единую информационную систему;

  • возможность удаленного доступа лечащих врачей к информации о лабораторных анализах пациентов;

  • возможность интеграции с внешними системами для получения заявок (электронная история болезни, МИС);

  • возможность интеграции с внешними системами для автоматической выгрузки отчетности (системы ОМС, добровольного медицинского страхования, 1С);

  • получение оперативной и ретроспективной информации о деятельности лаборатории (большое количество аналитических отчетов и средств для их визуального представления);

  • ведение и контроль за использованием ресурсов (расходных материалов, реактивов и т.п.), потребляемых лабораторией;

  • подсчет себестоимости услуг, выполняемых лабораторией;

  • предоставление данных для анализа экономической эффективности деятельности лаборатории.

При внедрении ЛИС все вышеперечисленные пункты взаимосвязаны. Так, невозможно достичь масштабируемости лаборатории без оптимизации процессов, приводящей к эффективному использованию рабочего времени сотрудников и технической базы.

Лаборатории, прошедшие путь комплексной автоматизации, с гордостью констатируют упрощение технологических процессов, уменьшение ошибок при выполнении исследований, более прозрачный документооборот, простоту ввода новых исследований и освоения новых областей рынка лабораторных услуг.

4.2. ОСНОВНЫЕ ФУНКЦИИ ЛАБОРАТОРНОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМЫ НА РАЗЛИЧНЫХ ЭТАПАХ ПРОИЗВОДСТВА АНАЛИЗОВ

В настоящее время ЛИС используют главным образом для сбора данных, хранения информации и управления процессом выполнения тестов, хотя можно применять более совершенные информационные системы, позволяющие интерпретировать результаты анализов. Современные информационные системы должны обеспечивать управление информационным потоком как внутри лаборатории, так и между лабораторией и медицинским персоналом, который пользуется ее услугами.

Рассмотрим прохождение информации по информационным системам (единая МИС учреждения и ЛИС) на различных этапах единого технологического процесса производства клинических лабораторных исследований (рис. 4.1).

pic 0135
Рис. 4.1. Потоки информации на различных этапах технологического процесса производства лабораторных анализов

4.2.1. ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ ОПЕРАЦИЙ ЗАКАЗА ИССЛЕДОВАНИЙ И ПЕРЕДАЧИ РЕЗУЛЬТАТОВ

Технологические операции заказа исследований и передачи результатов являются основными звеньями взаимодействия лечебных и лабораторных подразделений.

Исторически передача заказов и результатов между лабораторией и коечными отделениями была постоянным источником ошибок и задержек. До разработки ЛИС медицинский персонал для заказа тестов и получения результатов использовал бланки-заказы на исследование, заполненные от руки. Эти бланки иногда неправильно рассылались, а при переносе и неправильной интерпретации рукописных данных и результатов нередко возникали ошибки. Более срочные результаты часто передавали по телефону, что в свою очередь являлось потенциальным источником неправильного понимания и неполной передачи данных. Для уменьшения количества ошибок и задержек при передаче заказов и результатов применяли пневмопочту и другие устройства передачи. Это было особенно важно для связи с такими отделениями, как реанимационные. Использование компьютеров дало возможность лабораториям получать и передавать результаты быстро и точно благодаря удаленной печати информации на устройствах, расположенных непосредственно в коечных отделениях. Если лабораторная информационная система поддерживает автоматический ввод заказов и выдачу результатов, то можно полностью отказаться от бумажных бланков заказов, и результаты становятся доступными без задержек всему медицинскому персоналу, имеющему доступ к информации о пациенте. Кроме того, если ЛИС связана с клинической информационной системой, то это позволяет сократить количество повторных анализов. Когда врач-клиницист пытается назначить тот или иной тест, который был выполнен уже сегодня, информационная система сразу же информирует его о том, что данный анализ был выполнен сегодня и получены такие-то результаты. В такой ситуации клиницист всегда задумывается, а стоит ли тест повторять и зачем.

Информационные системы могут сопоставлять время назначения анализов с динамикой протекания патологического процесса, учитывать период полураспада исследуемого вещества, давать информацию о лекарственных препаратах, которые влияют на результаты исследований, предоставлять данные о диагностической чувствительности и специфичности теста, его предсказательной ценности. В связи с этим информационные системы оказывают большое влияние на качество технологической операции составления заявки на анализы, что необходимо для непрерывного совершенствования технологического процесса их производства.

Следует подчеркнуть, что заказ исследований и получение результатов анализов через информационную систему являются единственно возможным подходом к полномасштабной компьютеризации единого технологического процесса производства анализов.

4.2.2. ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ ОПЕРАЦИИ ВЗЯТИЯ, СБОРА И ДОСТАВКИ БИОМАТЕРИАЛА

Центральной функцией ЛИС является автоматизация обработки данных, связанной с процессом исследования. Лабораторная информационная система составляет таблицу заказов на исследование и подготавливает рабочие листы на взятие и сбор биоматериала. Сразу после получения биоматериала образцам присваивают уникальные номера, которые вводят в систему. Рабочие листы, выдаваемые компьютером, помогают лаборантам подготовить образцы для анализа на индивидуальных рабочих местах. Обычно эти рабочие листы также включают инструкции по специальной обработке или предосторожностям, которые нужно соблюдать при исследовании.

Заявки на исследование разделяются на две категории:

  • заявки, приходящие вместе с пробами (их обычно собирает процедурная медицинская сестра);

  • заявки, по которым специалисты лаборатории должны взять материал.

Дополнительно к приведенной информации на этапе технологической операции взятия и сбора материала одновременно распечатывают перечень приспособлений для взятия или сбора материала, памятки пациенту для подготовки к исследованиям. Все это помогает процедурной медицинской сестре и лаборанту правильно распределить время и подготовиться к взятию материала. Медицинская сестра выдает пациенту памятку по подготовке его к исследованиям. Терминал рабочей станции процедурной медицинской сестры или лаборанта (механизм получения заявки на исследование) - это приспособления у компьютера, которые позволяют вводить или получать данные списка для взятия крови или сбора материала на исследование, распечатывать штрихкоды (бар-код), содержащие основную информацию о пациенте и типах исследований, работать в реальном времени, верифицировать пациента и уточнять порядок сбора или взятия материала (инструкция по взятию и сбору материала).

Перед взятием материала на исследование принтер терминала рабочей станции процедурной медицинской сестры или лаборанта печатает списки пациентов, у кого следует взять (собрать) материал вместе с заявками на необходимые анализы. Эти списки и заявки размещают около одноразовых систем для взятия крови.

В настоящее время этапом, вызывающим максимальное количество проблем в едином технологическом процессе производства анализов и работе ЛИС, является идентификация пациентов и образцов биоматериала. ЛИС помогают процессу идентификации, выдавая рабочие листы на забор биоматериала по номерам палат и печатая наклейки (штрихкоды) на пробы.

Штрихкод - ряд вертикальных полосок или более сложный матричный код, по которым с помощью специального сканера можно считать закодированную информацию, - признан наиболее эффективным методом для маркировки проб в лабораториях. С помощью штрихкодов можно кодировать номер заказа, дату, сведения о пациенте, перечень назначенных исследований и другие данные. Несмотря на то что во многих странах мира технологии штрихкодирования широко внедрены в розничной и оптовой торговле, в производстве, однако, по данным различных авторов, только от 19 до 50% лабораторий используют этикетки штрихкода для маркировки проб.

В настоящее время существует широкий спектр следующих стандартов штрихкодирования:

  • Universal Product Code (U.P.C.);

  • Interleaved 2 of 5 (2 of 5); . Code 3 of 9 (Code 39);

  • Code 128;

  • U.P.C. Shipping Container Symbol (SCS-14);

  • Codabar;

  • UCC/EAN-128 Serial Shipping Container Symbol.

Согласно стандарту ASTM, для маркировки проб в лабораториях необходимо использовать стандарты штрихкода Код 39 и Код 128.

Этикетка штрихкода должна иметь 60 мм в длину и 10 мм в ширину. Стандарт также определяет, что все данные, закодированные в штрих-коде, должны быть на этикетке в читаемом для сканера виде.

Код 39 (рис. 4.2), или код 3 из 9, является символикой, широко используемой для промышленного применения. Этот символ был изобретен доктором Д. Эллайсом, а спецификация Универсального кодирования была разработана Американским институтом управления в США. Министерство обороны, индустрия здравоохранения и автомобильная промышленность также приняли стандарт 39 как отраслевой.

Код 128 (рис. 4.3) часто используют для промышленных и торговых розничных назначений. Эта символика была разработана Т. Вильямсом, а универсальная спецификация символики была разработана Американским институтом управления (AIM).

Постоянно появляются данные о новых разработках систем штрих-кодирования. Главными и общими недостатками всех существующих систем штрихкодирования являются низкая плотность информации, необходимость использования клейкой бумаги для нанесения штрих-кода, трудность приклеивания этикетки на пробу.

pic 0136
Рис. 4.4. Двумерное штрихкодирование

Например, в госпитале Милана (Италия) разработано лазерное устройство для нанесения штрихкода, которое использует мощный лазер для нанесения штрихкода непосредственно на поверхность пробирки. Плотность нанесения информации составляет до 1 Мегабайт/см2. Важным преимуществом устройства является то, что пользователь не ограничен в материалах пробирок. Лазер легко наносит штрихкод как на стекло, так и на различные виды пластика.

Матричный код (рис. 4.4) - новый стандарт штрихкодирования с высокой плотностью информации. Внизу и слева расположены сплошные черные линии, предназначенные для определения периметра этикетки.

Преимущества матричного кода - меньший размер (по сравнению с кодом 39 и 128) и возможность использования стандартных недорогих принтеров для их печати. Стандартом штрихкодирования, который обеспечивает высокую плотность записи информации, служит код PDF-427, который позволяет записать на одной этикетке всю информацию о назначенных пациенту лабораторных исследованиях. С помощью указанной технологии удаленные рабочие места, будучи не подключенными к ЛИС, могут регистрировать исследование и печатать этикетку штрихкода. При регистрации пробы в основной лаборатории всю необходимую информацию вносят в базу данных с помощью одной операции сканирования этикетки.

Процедурная медицинская сестра или лаборант осуществляет взятие крови или сбор биоматериала, заказанного клиницистом, распечатывает штрихкод для каждого вида материала, после чего маркирует ими все емкости с биоматериалом и подтверждает в единой компьютерной системе учреждения время его взятия или сбора. Очень важно не перепутать этикетки со штрихкодами при наклеивании их на пробирки и другие емкости. Если почему-либо материал не удалось получить, то эту информацию также вводят в компьютерную систему с указанием причин неудачи. При использовании штрихкода можно указать на следующие его преимущества:

  • маркировка биоматериала с помощью штрихкода практически сводит к нулю вероятность ошибки при идентификации проб и вида исследования;

  • уменьшается количество ошибок при написании этикеток процедурной медицинской сестрой;

  • повышается производительность труда процедурной медицинской сестры вследствие уменьшения количества канцелярской работы;

  • повышается производительность труда сотрудников лаборатории, работающих на этапе приема и регистрации проб, так как нет необходимости проверять данные о пациенте и назначенных анализах.

Перед отправкой биоматериала специалист, осуществлявший его взятие или сбор, может уточнить в компьютерной системе условия транспортировки.

Однако реальные условия работы КДЛ в нашей стране еще не достигли такого уровня, когда описанные выше технологии с использованием штрихкодирования стали бы обыденной практикой. В большинстве случаев врач-клиницист заполняет бланк-заявку на лабораторные анализы, которая поступает к процедурной медицинской сестре. Эти бланки-заявки служат основным рабочим документом, согласно которому осуществляется взятие или сбор биоматериала. Разработка форм бланков-заявок (машиночитаемых форм) имеет важное практическое значение для автоматизации ввода информации о пациенте и необходимых лабораторных анализах в ЛИС. Именно поэтому каждое ЛПУ и КДЛ, которые не имеют возможности осуществлять заявку на лабораторные анализы в единой информационной системе учреждения и осуществлять штрихкодирование проб в месте их взятия, должны уделять разработке форм бланков-заявок самое пристальное внимание. В главе 2 были приведены формы бланков-заявок.

Использование форм бланков-заявок в значительной степени облегчает врачу-клиницисту выбор лабораторных тестов для обследования пациента. Для этого ему достаточно только поставить отметку рядом с необходимым тестом. Применение цветовых гамм в оформлении бланка-заявки позволяет процедурной медицинской сестре легко определить выбор нужного приспособления для взятия или сбора биоматериала. Например, если ЛПУ в своей работе использует вакуумные системы для взятия крови, то цветовой фон, на котором дается список лабораторных тестов на бланке-заявке, должен соответствовать цвету крышки вакуумной пробирки (для общеклинического исследования крови - фиолетовый, для показателей коагулограммы - голубой, для биохимических исследований - желтый и т.д.). Рядом с тестом на бланке-заявке можно поместить информацию об особенностях хранения и транспортировки проб.

Правильное заполнение заявок на исследование биологического материала в лабораторию является важнейшим этапом при использовании машиночитаемых форм бланков-заявок. Бланк-заявка должен быть заполнен шариковой, капиллярной или гелевой ручкой черными или темно-синими чернилами заглавными печатными буквами.

Основные требования к заполнению бланков-заявок

При заполнении паспортной части полностью записывается фамилия, имя и отчество пациента. Если исследование производится анонимно, то пациент должен назвать любой цифровой код, который будет внесен в поле «Фамилия» и который затем будет фигурировать в ответе.

Поля «Дата рождения», «Пол», «Дата и время взятия пробы» и «Код ЛПУ» обязательны для заполнения.

Поля «Фаза цикла» и «Срок беременности» обязательны для женщин при направлении на исследование половых гормонов, отделяемого мочеполовых органов и цитологические исследования.

Поле «Код диагноза» не обязательно для заполнения в процедурных кабинетах.

Поля «Код отделения», «Номер истории болезни», «Полис» и «Страховая компания» не обязательны для индивидуальных клиентов.

Поле «Срочная» заполняется исключительно на те виды исследований, для которых такая возможность оговорена в КДЛ.

Поле «Дата и время взятия пробы» должно четко соответствовать реальному времени забора материала.

Поля «Врач» и «Телефон» желательны для заполнения.

Поля «Номер факса», «e-mail» и «Номер чека» обязательны для заполнения в случае, если клиент хочет получить результат через средства связи (по телефону, факсу, электронной почте и т.п.). При желании получить ответ по электронной почте клиент должен своей рукой разборчиво написать в верхней части направительного бланка электронный адрес.

При заполнении бланка на бактериологические и серологические исследования, в ходе которых могут быть выявлены эпидемиологически значимые заболевания, обязательны к заполнению поля, содержащие адрес регистрации пациента, а также его паспортные данные. Заполнение этих полей производится медицинской сестрой только с документа, удостоверяющего личность, а не со слов пациента.

Выбранные исследования отмечаются крестиком x в соответствующем квадрате. Зачеркивание или дописывание наименований исследований на бланке не допускается.

Взятый и собранный материал доставляют в лабораторию на технологический процесс приема и подготовки его к исследованиям. Важнейшими моментами технологической операции доставки биоматериала в лабораторию являются условия и время транспортировки. В настоящее время для доставки материала в лабораторию внутри учреждения широко используют пневмопочту, различные виды транспортных лент и доставку вручную в специальных закрытых контейнерах.

4.2.3. ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРИЕМА И ПОДГОТОВКИ БИОМАТЕРИАЛА К ИССЛЕДОВАНИЯМ

Реальное значение ЛИС заключается в способности максимизировать пропускную способность при обработке образцов. Пропускная способность улучшается различными путями. Наиболее очевидный прирост производительности возникает вследствие улучшения оперативности при использовании легкодоступных инструментов. Также заметно уменьшаются ошибки ввода данных. И, наконец, доступность текущих свежих данных по образцам позволяет лаборатории отслеживать и перераспределять персонал для лучшего планирования аналитических работ минимизации простоев и максимизации выхода.

В лаборатории принимают и проверяют правильность не только взятия материала, но и транспортировки согласно установленным стандартам. Самый эффективный способ идентификации доставленных проб - это применение специалистом лаборатории на рабочем месте портативного штрихкодового сканера (ридера), подключенного к компьютеру ЛИС. Сканер позволяет считывать данные пациента, типы проб и тестов, которые надо выполнить. После подтверждения в ЛИС правильности взятия и доставки материала в лабораторию пробы могут быть направлены для подготовки их к исследованиям. Причины отказа в приеме материала на исследование, вводимые в ЛИС, поступают в виде электронной почты клиницисту для принятия решения о повторном взятии или сборе материала. Одновременно заявки на исследование поступают на рабочие компьютерные станции частных технологических процессов (на анализаторы).

При использовании стандартных форм бланков-заявок процесс приема и регистрации поступающих в КДЛ проб для лабораторных исследований несколько усложняется. В КДЛ должны быть установлены приспособления для распечатывания штрихкодов и сканер (или несколько сканеров) для считывания паспортных данных пациента, данных о страховой компании или лечебном учреждении, страховом полисе, диагнозе, лечащем враче, времени взятия биоматериала и т.д.

Использование форм бланков-заявок должно предусматривать систему цифровой нумерации штрихкодов, поступающих проб биоматериала и самих бланков-заявок. Проблема усложняется еще и тем, что с одним бланком-заявкой в КДЛ может поступать несколько проб. Для практического решения этой проблемы используют следующие подходы:

  1. каждому бланку-заявке и штрихкоду присваивается свой номер по возрастающей день ото дня в течение всего года, кроме того, для каждой пробы по данной заявке может быть распечатано сколько необходимо штрихкодов под одним номером; по окончании календарного года нумерация начинается вновь с единицы;

  2. каждому бланку-заявке и штрихкоду присваивается свой номер по возрастающей в течение данного дня, нумерация на следующий день снова начинается с единицы. Для того чтобы отличать каждый бланк-заявку текущего дня от последующего, к порядковому номеру добавляют число текущего дня, месяц и год (например, бланк-заявка поступил 5-м по счету 20 августа 2006 г., тогда его номер и, соответственно, номер на штрихкоде будет 0005200806); кроме того, для каждой пробы по данной заявке может быть распечатано сколько необходимо штрихкодов под одним номером.

Первый подход более предпочтителен для практического применения, так как позволяет заранее распечатать определенное количество штрихкодов и снабдить ими процедурные кабинеты ЛПУ, где расположена КДЛ, и удаленных заказчиков, если лаборатория выполняет функции централизованной. Процедурные медицинские сестры при взятии проб у пациентов непосредственно на рабочем месте осуществляют наклейку полученных штрихкодов на бланки-заявки и пробы биоматериала, и сотрудники КДЛ экономят время на выполнении данной процедуры.

При использовании второго подхода распечатка штрихкодов и наклейка их на бланки-заявки и пробы биоматериала происходит в лаборатории. Зная, сколько в среднем проб приходится на самый большой бланк-заявку, штрихкоды можно заранее распечатать в КДЛ еще до поступления проб, что ускоряет процесс регистрации доставленного биоматериала.

Штриховое кодирование значительно облегчает работу КДЛ по регистрации бланков-заявок и проб с биоматериалом. На рис. 4.5 приведен принтер штрихкодов CITIZEN CLP 2001.

pic 0137
Рис. 4.5. Принтер штрихкодов CITIZEN CLP 2001

Работа в лаборатории по штрихкодированию проб может быть построена в нескольких вариантах. Однако прежде чем изложить эти варианты, необходимо отметить, что принтер штрихкодов может быть запрограммирован на распечатывание различного количества этикеток с одинаковым штрихкодом. Количество этикеток штрихкодов, которое должно быть запрограммировано, зависит от количества возможных видов биоматериала, исследуемых в лаборатории, в соответствии с максимально возможным спектром лабораторных анализов или количества рабочих мест, куда пробы биоматериала могут поступить для исследования. Например, пациенту назначены следующие виды исследований: общий анализ крови (одна вакуумная пробирка с ЭДТА), биохимический анализ крови (одна вакуумная пробирка с гелем), коагулограмма (одна вакуумная пробирка с цитратом натрия) и общий анализ мочи (одна емкость с мочой). Значит, необходимо распечатать четыре этикетки с одинаковым штрихкодом для маркировки проб и еще одну такую же этикетку для маркировки бланка-заявки, если все эти виды исследований содержатся в одном бланке-заявке. Однако, если общий анализ мочи (одна емкость с мочой) в лаборатории внесен в другой бланк-заявку, необходимо распечатать еще одну такую же этикетку со штрихкодом для самого бланка-заявки на общий анализ мочи.

При этом один штрихкод из блока наклеивается на бланк-заявку в специально отведенное поле вверху бланка, а остальные - на пробирки или другие контейнеры с биологическим материалом (пластиковые емкости, специальные контейнеры, стекла и т.д.).

После наклейки штрихкодов на бланки-заявки и пробы биоматериала бланки-заявки подвергают сканированию для считывания информации о пациенте, лечащем враче, страховой компании, диагнозе и заказанных лабораторных тестах. Эффективность сканирования бланков-заявок во многом зависит от качества их заполнения. Все бланки-заявки с плохо считанной сканером информацией ЛИС выводит в рабочее окно для просмотра их специалистами лаборатории и одобрения. Опыт информатизации КДЛ показывает, что на первоначальном этапе внедрения ЛИС в данной конфигурации некачественно заполненные бланки-заявки могут составлять до 60%. В дальнейшем их количество постепенно снижается до 20-30%. Только постоянное обучение медицинских сестер заполнению бланков-заявок способствует снижению количества дефектов. Весьма эффективным средством борьбы с некачественным заполнением бланков-заявок является включение их основных типов в перечень критериев отказа в приеме проб биоматериала как одного из разделов СОП по приему биоматериала в КДЛ, утвержденных руководителем ЛПУ. Такую инструкцию необходимо иметь специалисту КДЛ, осуществляющему прием проб, и на ее основании при выявлении некачественного заполнения бланков-заявок отказывать в приеме проб на исследование.

На рис. 4.6 приведен внешний вид быстрого сканера Fujitsu fi-5120C бланков-заявок, который используется ЛИС для автоматизации средних и крупных КДЛ.

Сканер бланков-заявок Fujitsu fi-5120C - это скоростной двусторонний сканер, способный обрабатывать бланки в черно-белом, цветном режиме и в градациях серого со скоростью до 25 бланков-заявок в минуту. Рекомендуемая ежедневная нагрузка - 1000 бланков-заявок.

pic 0138
Рис. 4.6. Внешний вид сканера Fujitsu fi-5120C для бланков-заявок

Автоподача бланков-заявок в сканере Fujitsu fi-5120C рассчитана на 50 страниц. Сканер позволяет сканировать одно- и двусторонние бланки-заявки формата от A8 (52x74 мм) до A4. Автоподатчик обеспечивает подачу бланков-заявок различной фактуры, шероховатости и плотности без каких-либо проблем.

Технологическая операция приема и регистрации проб биоматериала в лаборатории является одной из ключевых, и важнейшим критерием ее оценки является фактор времени. Чем быстрее осуществится прием и регистрация проб в ЛИС, тем быстрее задание поступит на автоанализаторы и начнется процесс выполнения исследований. Роль фактора времени возрастет для отечественных КДЛ уже в ближайшее время. Это обусловлено тем, что в США и странах Европейского союза принят стандарт (в США - NCCLS H18-A2), который устанавливает для рутинных биохимических исследований длительность фазы между взятием проб венозной крови и их центрифугированием максимум 2 ч. Пробы крови необходимо доставить в лабораторию в течение 1 ч, а в течение следующего часа плазму крови необходимо отделить от клеточных элементов и подготовить ее к исследованиям.

Если в ЛИС регистрация одного бланка-заявки занимает не более 30 с, а возможность перехода к аналитическому этапу и проведению назначенных исследований без регистрации всех демографических данных пациента отсутствует, то работа КДЛ в рамках такой информационной системы при большом потоке выполняемых в день исследований становится невозможной. Это обусловлено тем, что длительность технологической операции приема и регистрации проб биоматериала в лаборатории при потоке 500-600 проб в день составит 4-5 ч и приведет к нарушению установленного стандарта. В связи с этим важно, чтобы ЛИС обеспечивала возможность проведения исследований при регистрации штрихкода пробы (номера пробы) и списка назначенных тестов, а все остальные данные можно было ввести позже.

Регистрация бланков-заявок вручную предусматривает введение всей информации о пациенте, ЛПУ, страховой компании, пробе (виде биоматериала), дате взятия и доставки и т.д., а также о перечне исследований в ЛИС регистратором или любым специалистом лаборатории. ЛИС должна позволять выбрать тип заявки, ввести все данные с бланка-заявки и виде биоматериала (пробе) в систему, сохранить заявку, в случае необходимости внести в информационную систему дополнительные тесты или отменить ненужные, редактировать заявку. В случае необходимости ручной регистрации однотипных бланков-заявок и в целях экономии времени в ЛИС может содержаться функция «Пакет заявок». «Пакет заявок» - это возможность создания нескольких однотипных заявок (то есть содержащих однотипные поля или одинаковые исследования). Наличие данной функции существенно сокращает время регистрации заявок и проб биоматериала и повышает производительность лаборатории. Кроме того, еще одной возможностью по ускорению ручной регистрации заявок в ЛИС «Рослабсистема» на пациента, который уже был когда-то зарегистрирован в системе, является наличие справочника зарегистрированных пациентов. Достаточно войти в этот справочник, ввести параметры поиска и выбрать пациента из предложенного списка. После нажатия клавиши Enter все данные о пациенте скопируются в поля заявки.

После завершения сканирования бланков-заявок и исправления ошибок или ручного ввода заявок специалист лаборатории должен одобрить принятую информацию, после чего задания (заказанные лабораторные тесты) распределяются ЛИС по рабочим местам и анализаторам.

Самый эффективным способом сокращения времени на операции приема и регистрации проб является использование удаленной регистрации в процедурных кабинетах и штрихкодирования проб биологического материала (рис. 4.7). Схема регистрации заявки на анализы при использовании данного подхода следующая:

  • регистрация заявки осуществляется онлайн на любом компьютере, подключенном к ЛИС (через сеть Интернет или внешний носитель), в процедурных кабинетах или местах сбора проб биологического материала для транспортировки в ЛПУ-объекте централизации;

  • ЛИС осуществляет автоматическое присвоение штрихкода через сеть Интернет или внешний носитель и распечатывает в процедурном кабинете готовую заявку со штрихкодом, данными пациента и заказанными тестами;

  • заявки в электронном виде отправляются в лабораторию на этап приема биоматериала;

  • после доставки биоматериала в лабораторию ввод заявки в ЛИС производится автоматически (с помощью сканера штрихкода);

  • сканер позволяет считывать данные пациента, типы проб и тестов, которые надо выполнить;

  • после подтверждения в ЛИС правильности взятия и доставки материала в лабораторию пробы могут быть направлены для подготовки их к исследованиям;

  • причины отказа в приеме материала на исследования, вводимые в ЛИС, поступают в виде электронной почты в ЛПУ для принятия решения о повторном взятии или сборе материала;

  • одновременно заявки на исследование поступают на рабочие компьютерные станции частных технологических процессов (на анализаторы).

pic 0139
Рис. 4.7. Схема удаленной регистрации

Принятые пробы подвергают обработке - центрифугируют, готовят мазки, их окрашивают, разливают во вторичные пробирки сыворотки или плазмы, если это необходимо, для чего в настоящее время используют станции подготовки и разлива биоматериала. Эти станции копируют штрихкод на первичных пробирках и наклеивают его на нужное количество вторичных пробирок, что сводит до минимума ошибки при идентификации проб (см. главу 2). Подготовленный к исследованиям материал распределяют по рабочим местам для непосредственного выполнения анализов.

4.2.4. ЛАБОРАТОРНЫЕ ИНФОРМАЦИОННЫЕ СИСТЕМЫ НА АНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА АНАЛИЗОВ

Сразу после подтверждения приема информации с отсканированных бланков-заявок и проб биоматериала в ЛИС данные о пациенте и назначенных исследованиях поступают на компьютеры анализаторов или автоматизированные рабочие места, где эти анализы будут выполнять. Анализаторы калибруют, проводят ВКК с введением его результатов в ЛИС.

ЛИС принадлежит важная роль в обеспечении контроля качества лабораторных исследований, цель которого состоит в слежении за качеством выполняемой работы. Основным предметом внимания является правильная работа оборудования, предназначенного для непосредственного выполнения исследований. В биохимических лабораториях обычно в последовательность исследуемых образцов биоматериала с определенной регулярностью добавляют контрольные образцы. Сравнивая измеренные и ожидаемые результаты, полученные для контрольных образцов, персонал лаборатории может определить правильность работы оборудования. Кроме того, статистический анализ результатов, полученных при периодическом исследовании контрольных образцов, может помочь определить точность полученных результатов исследований.

Как известно, система качества предполагает введение на предприятии процедур управления качеством и гарантии качества. ЛИС в этой области может предоставлять целый ряд возможностей.

  1. С точки зрения контроля качества в ЛИС возможно:

    • сконфигурировать окружение для каждого специалиста в соответствии с его задачами;

    • прослеживать образцы, автоматически генерировать штрихкоды;

    • отслеживать работу анализаторов, администрировать их калибровки;

    • фиксировать повторные калибровки, частоту проведения контроля качества, повторение тестов и отслеживать корректное их выполнение;

    • документировать и сообщать об отклонениях в работе лабораторий;

    • осуществлять комплексный документированный аудит всего, что происходит в лаборатории.

  2. С точки зрения управления качеством в ЛИС возможно:

    • вводить критерии качественного выполнения для каждого технологического процесса и операции с генерацией событий при их нарушении;

    • отслеживать сроки действия лабораторных стандартов;

    • автоматически генерировать статистические отчеты для управления качеством.

Большое значение для системы качества имеет авторизация. Способность ЛИС поддерживать систему электронных подписей является несомненным ее достоинством. Это помогает выполнить одно из ключевых положений системы качества - требование прослеживания всей технологической цепи производства анализов, которую в ЛИС можно осуществить вплоть до единичной записи.

После того как специалисты лаборатории проконтролировали качество, принимают решение о проведении исследований, а результаты контроля качества передают в ЛИС.

Поступивший на анализатор биоматериал для исследования сверяют с заданием, полученным на рабочий компьютер анализатора или рабочее место при ручном проведении исследования. Все анализаторы, независимо от количества выполняемых на них исследований, должны быть подключены к ЛИС. Многие анализаторы способны читать штрихкоды, то есть идентифицировать пациента; если же они не имеют встроенных сканеров, то необходимо провести дополнительные работы по их оснащению. Анализаторы должны иметь такую двустороннюю связь с ЛИС, чтобы ЛИС могла передавать заявки на исследование непосредственно на прибор, а он, в свою очередь, в ЛИС.

КДЛ выполняют две категории тестов:

  • тесты, при которых измеряют числовые показатели, например концентрацию или активность;

  • тесты, требующие визуализации и интерпретации, например, классификация тканей, полученных в результате биопсии, или идентификация культур микроорганизмов.

В любом случае результаты исследований должны быть введены в ЛИС и показаны в формате, понятном для медицинского персонала, занимающегося лечением пациента. Характеристики данных (цифра, изображение, график и т.д.) определяют механизм, используемый ЛИС для сбора данных и выдачи результатов в нужном формате.

Ввод результатов исследований в ЛИС, выполненных в ручном режиме и на анализаторах, отличается. При ручном выполнении результаты исследований вводят в ЛИС в виде цифр или путем закрепления за какой-то клавишей клавиатуры компьютера определенной фразы или заключения. Такое закрепление особенно эффективно в микробиологии, гематологии и цитологии.

Анализаторы выдают непрерывный поток данных по мере того, как в порядке очереди тестируется каждый образец биоматериала. Компьютер преобразует аналоговые данные в цифровую форму или графическое изображение, сглаживая кривую и выделяя максимумы, связанные с отдельными образцами. Затем измеренные значения переводят в значимые с медицинской точки зрения числа и результаты привязывают к образцам. Вначале промежуточные результаты обработки выполнял центральный компьютер ЛИС, но сейчас они совершаются самими инструментами.

Большинство биохимических и гематологических исследований выполняют автоматические инструменты, которые выдают числовые результаты. Встроенный интерфейс преобразует напряжение, измеренное инструментом, в цифровые значения, которые могут быть обработаны компьютером (аналого-цифровое преобразование). Результаты должны быть связаны с индивидуальными образцами биоматериала; если анализатор способен считывать штрихкод, то эта операция становится автоматической. Когда такой возможности нет, то специалисту лаборатории приходится вводить в компьютер список номеров образцов и загружать образцы в инструмент в том же порядке. Таким образом, осуществляется соответствие между номером образца и результатами, полученными для этого номера.

В первых лабораторных системах центральный лабораторный компьютер обрабатывал все первичные данные. Сегодня специальные компьютеры, встроенные в инструменты, сами обрабатывают первичные данные, проверяют достоверность результатов, связывают результаты с отдельными образцами и передают числовые результаты в режиме реального времени непосредственно в ЛИС. ЛИС могут собирать и интегрировать информацию от различных инструментов, сохранять данные и выдавать отчеты о результатах лабораторных исследований.

Одним из современных направлений по оптимизации производственных операций и движения проб в КДЛ является использование ряда программных продуктов, которые дополняют имеющиеся функциональные возможности ЛИС, делая ежедневную работу более эффективной. Одним из таких программных продуктов является система MIDDLEWARE, которая служит эффективным мостом между ЛИС и автоматизированными системами (например, между преаналитической станцией, системой транспортировки проб и анализаторами). Система MIDDLEWARE осуществляет полный контроль за всем жизненным циклом проб биоматериала внутри лаборатории. Главная цель системы MIDDLEWARE - максимально упростить рабочие технологические процессы в КДЛ и повысить качество и эффективность использования анализаторов. Система MIDDLEWARE имеет целенаправленный модуль Lab.TAT, который предоставляет лаборатории очень важные функциональные возможности по контролю за производственными процессами в режиме реального времени и идентификации пунктов улучшения.

Данный модуль предназначен для генерации в интерфейсе пользователя визуальных сигналов тревоги в режиме реального времени при приближении значения ТАТ к максимальному установленному значению. Для каждого типа пробы можно установить значение ожидаемого ТАТ, а также время сигнала, то есть предельный срок (в минутах) генерации сигнала в интерфейсе пользователя.

Модуль Lab.Workflow - это специально разработанный модуль, который дает точные ответы на два основных вопроса: «Где моя пробирка?» и «Что не сделано из этой пробирки?» Lab.Workflow обеспечивает лабораторию мощнейшим средством для составления маршрута любой пробирки, основанное на идентификации всех операций, которым должна быть подвергнута проба с биологическим материалом. Через дополнительное аналоговое окно модуля можно отобразить маршрут каждой пробы и ее последнее положение как на анализаторе, так и в архивном штативе. Этот модуль позволяет также измерять и проверять время между разными операциями производственного процесса.

Модуль Lab.Viewer - это система мониторинга работы всей лаборатории, которая позволяет следить за общим состоянием всей системы. С помощью этого модуля можно обнаружить, какие анализаторы (и/ или автоматизированные системы) имеют проблемы различной степени серьезности с точки зрения коммуникации, обеспечения качества (браки), возникновения определенных событий, аварий анализаторов, необходимости технического обслуживания, контроля качества.

Исследования, проведенные в зарубежных лабораториях, показали, что внедрение программных продуктов, аналогичных системе MIDDLEWARE, приводит к значительному сокращению ТАТ. Так, J.I. Westbrook и A. Georgiou (2006) установили, что в 650-коечной больнице внедрение программы MIDDLEWARE в КДЛ сопровождалось снижением ТАТ на 21% (с 73,8 до 58,3 мин).

Модуль Lab.Maint системы MIDDLEWARE предназначен для управления техническим обслуживанием лабораторного оборудования. Это приложение обеспечивает эффективный способ слежения, упрощения и документирования ремонтов и срока службы всего оборудования.

Помимо исследования контрольного материала, для контроля качества результатов анализов ЛИС предоставляет и другие возможности. Одной из распространенных методик обеспечения контроля качества является проверка результатов со значительными отклонениями от установленных границ, при которой кто-то просматривает все результаты тестов, выходящие за определенные границы, и проверяет достоверность полученного значения. Например, лаборатории могут установить правило, при котором такой проверке подвергаются все результаты, значения которых отличаются от среднего более чем на два стандартных отклонения. Проверка величины относительного изменения отслеживает результаты, в которых текущие величины значительно отличаются от предыдущих для того же самого пациента. Если разность превышает заданный порог, то врачи лаборатории будут искать причину этого отклонения. Если они не могут найти приемлемое физиологическое объяснение, то должны будут рассмотреть другие возможные причины, например, перемешивание нескольких образцов, загрязнение и ошибка в применении реактивов.

После завершения исследований их результаты поступают в память компьютера, который может выдавать отчеты, используя различные форматы, помогающие медицинским работникам в интерпретации этих данных. Лабораторные отчеты, выдаваемые компьютером, обычно для каждого измеренного значения приводят диапазон нормальных величин или другие справочные значения; кроме того, в отчетах обычно специальным образом помечают те значения, которые выходят за пределы нормы. Обобщающий отчет о результатах ряда последовательных исследований пациента нередко печатают в виде хронологически упорядоченной таблицы. Другим подходом может быть представление этих результатов в графическом виде, облегчающем выявление даже незначительных тенденций в динамике результатов. Более сложные программы могут выдавать список возможных диагнозов или автоматически интерпретировать результаты, специфичные для данного пациента.

Прежде чем ввести результаты исследований с рабочего компьютера анализатора в ЛИС, врачи лаборатории проводят целый ряд оценочных проверок. Результаты исследований сравнивают с референтными величинами, специфическими для пола и возраста пациента, и с предыдущими результатами этого пациента, чтобы оценить степень отклонения; специальным образом помечают те значения, которые выходят за пределы нормы. Одни результаты проходят через установленные в лаборатории расчеты или алгоритмы, чтобы сделать определенное заключение по ним, другие - требуют необходимости выполнения других анализов (например, при низком среднем объеме эритроцитов определяют содержание ферритина, при высоком уровне общего билирубина - прямого билирубина). Если необходимо, проводят дополнительный контроль качества для конкретного метода исследования и при получении неудовлетворительных результатов исследование повторяют. Критические результаты исследований немедленно сообщают клиницисту.

Только после этого врач лаборатории вводит результаты исследований в ЛИС и пишет заключения по ним. ЛИС специализированных лабораторий должны выдавать как результаты исследований, так и их клиническую интерпретацию. Умение оценивать результаты исследований - это умение работать с информацией: получение и сбор информации, ее организация, движение, хранение, интегральная оценка, интерпретация, ее передача и предоставление в доступной форме.

Дополнительную информацию о пациенте врач лаборатории может получить из компьютерной истории болезни, при консультации с лечащим врачом, из заключений других специалистов, имеющихся в истории болезни, данных предыдущих лабораторных исследований.

Сбор информации в лаборатории наиболее эффективен, если все анализаторы подключены в ЛИС. В таких случаях врач лаборатории может без затруднений получить информацию о результатах исследований с любого частного технологического процесса.

Обычно результаты лабораторных исследований выводят на экран или бумагу вместе с нормальными и справочными значениями; результаты, выходящие за пределы нормы, выделяют тем или иным способом для привлечения внимания.

Врач клинической лабораторной диагностики, кроме внутрилабораторной информации, должен использовать информацию и из других подразделений (рентгенология, диетология, операционные, реанимация и т.д.). Он может консультироваться и за пределами лечебного учреждения. Не только клиницист вносит изменения в диагноз и лечение пациента, но и врач клинической лабораторной диагностики должен активно помогать клиницистам в выборе диагностических и лечебных мероприятий на основании оценки своих данных по ключевым результатам исследований. Он должен убедиться, что результаты исследования дошли до врача и врач принял во внимание эту информацию.

Интерпретация результатов исследований - ключевая функция врача клинической лабораторной диагностики. ЛИС делают заключения врача клинической лабораторной диагностики легко- и быстродоступными. При написании заключения врач клинической лабораторной диагностики должен оценивать результаты исследований комплексно, с учетом всей имеющейся информации о пациенте, а не только данных лабораторных анализов. Принципы оценки результатов исследований рассмотрены в предыдущей главе.

ЛИС предоставляет широкий выбор новых возможностей для расширения базы, необходимой для интерпретации результатов исследований:

  • возвратное тестирование, при котором результаты одного анализа или более запускают выполнение подтверждающих или дополнительных тестов;

  • рекомендации врача клинической лабораторной диагностики могут быть введены в стандартный лабораторный бланк с результатами;

  • критические величины результатов лабораторных исследований о тревожном состоянии пациента могут быть быстро получены лечащим врачом.

К сожалению, возможности ЛИС по валидации результатов анализов крайне ограничены, поэтому необходимо использовать существующие программные продукты.

Система Middleware позволяет создать/настроить автоматические правила автовалидации (автоверификации) результатов без человеческого вмешательства (можно валидировать автоматически до 85% всех результатов). Время, сэкономленное на улучшении TAT и стандартизации принятия решений по валидации, может быть потрачено на анализ патологических результатов или другие, более важные виды деятельности врачей лаборатории.

N. Torke и соавт. (2005) в своих исследованиях показали, что автоверификация результатов тестов в лаборатории, выполняющей более 6 млн анализов в год с помощью дополнительных программных продуктов, приводит к уменьшению ТАТ для рутинных лабораторных тестов с 151 до 115 мин, а общего анализа мочи - с 138 до 111 мин.

Модуль LabSRE (Laboratory Smart Rule Editor) системы Middleware позволяет создавать и включать в работу расширенные правила для автовалидации результатов, автоматического назначения разведения/ повторных постановок/рефлексного тестирования, перекодирования данных на входе/выходе, распределения пробирок, принятия решений относительно различных фаз процесса обработки проб.

При массовом производстве анализов в КДЛ использование программных модулей в дополнение к ЛИС - это основной путь как повышения качества результатов анализов, так и сокращения ТАТ.

Форматирование отпечатанных бланков (см. раздел 2.5.1.9) с результатами исследований и их изображений на экране компьютера - само по себе целая наука и заслуживает большого внимания врачей клинической лабораторной диагностики и лечащих врачей. Печатающие устройства помогают получать бланки высокого качества в цветном изображении, что облегчает клиницисту оценить результаты анализов. Возможность получения клиницистом информации на экране дает много преимуществ, включая способность видеть лабораторные показатели в динамике. Тем не менее при разработке форматов отображения лабораторной информации необходимо проявлять определенную осторожность, чтобы не перенасытить бланк ненужной информацией, используя при этом до 20 различных цветов, десятки графиков и т.д. Такого рода информация может быть избыточной для клинициста, так как он должен иметь возможность получить наиболее важную информацию, быстро взглянув на бланк.

Только после оценки результатов исследований и написания заключений по ним врач клинической лабораторной диагностики может отправить результаты анализов из ЛИС в единую компьютерную сеть лечебного учреждения.

На этом работа в лаборатории с информацией не заканчивается. ЛИС могут не только выполнять различные задачи по сбору и анализу данных, которые помогают руководителям лабораторий оценивать текущие лабораторные процессы и предлагать мероприятия по повышению эффективности работы лаборатории, но и собирать и анализировать информацию о результатах тестов, включая данные о времени получения образца и времени завершения теста. Отчеты о распределении загрузки лаборатории по дням недели и времени дня помогают руководителям определять периоды наибольшей и наименьшей загрузки лаборатории. Эта информация полезна для составления расписания работы персонала и для выявления таких проблем в функционировании лаборатории, как недопустимо большое время оборота заказов и результатов.

ЛИС хранят информацию о результатах контроля качества лабораторных тестов. Анализ такой информации позволяет выявлять отклонения (разброс, сдвиги, иные тенденции), которые характеризуют точность и воспроизводимость измерений.

Кроме приведенных возможностей, ЛИС помогает решать еще целый ряд проблем повседневной деятельности лабораторий, которые имеют не менее важное значение для обеспечения качества результатов анализов и требуют значительных затрат времени.

ЛИС могут выдавать отчеты, которые помогают руководителям оценивать производительность труда в своем подразделении. На основе хронометража различных исследований в лабораториях можно рассчитать нагрузку на специалистов. Руководитель может определить загруженность лаборатории, сравнив количество рабочих часов персонала с количеством выполненных исследований и затратами времени на их проведение, сравнивая их с принятыми расчетными нормами.

ЛИС также поддерживает ведение журналов, которые позволяют лабораторному персоналу определить, кто и когда выполнял каждый этап исследования.

Другой обязанностью руководителей лабораторий, представляющей серьезную проблему, является управление расходованием реактивов, их учетом и списанием. Лабораторная информационная система может значительно упростить решение задач по обработке информации, связанных с управлением запасами. Помимо этих функций, ЛИС может предоставлять различные отчеты по отделениям, нозологическим формам, проценту выявления патологических результатов и т.д.

Таким образом, традиционное использование ЛИС позволяет в определенной степени повысить качество клинических лабораторных исследований. Важнейшими преимуществами ЛИС являются следующие.

  1. Уменьшение количества ошибок:

    • испорченные бланки;

    • перепутанные пробы;

    • ошибки в расчетах;

    • ошибки при переписывании или написании;

    • ошибки, допущенные по оплошности и халатности.

  2. Снижение нагрузки на специалистов лаборатории.

  3. Рост производительности труда.

  4. Возможность получения информации в реальном времени.

  5. Сокращение времени на регистрацию проб.

  6. Улучшение качества самих бланков с результатами исследований:

    • четкость;

    • несколько копий (если необходимо);

    • все результаты исследований можно получить на одном бланке;

    • облегчена оценка и интерпретация результатов;

    • возможность представлять результаты исследований в графическом изображении.

Главное достижение при использовании ЛИС - точность информации. Если раньше при ручной работе с информацией допускалось 3% ошибок (от всех лабораторных), то при работе с ЛИС количество ошибок должно быть менее 1% (Henry J.B., 1996). Это основной показатель, за которым необходимо следить, анализировать и разрабатывать меры к снижению.

Очень важная функция ЛИС состоит в производстве денежной оценки каждого выполненного теста. Такая оценка может быть осуществлена ко времени заказа теста, взятия материала или по завершении исследования.

Наличие единой ЛИС, работающей круглосуточно, может оказать значительную помощь в сокращении количества анализов. Так, например, когда лаборатория экспресс-диагностики получила доступ к базе данных, где хранятся результаты исследований группы крови и резус-фактора, то при поступлении пациента по неотложным показаниям в вечернее и ночное время количество этих исследований сократилось на 25% в результате выдачи дубликатов анализов.

При работе с ЛИС нельзя забывать, что все такие системы содержат так называемые пунктики, которые не могут быть устранены даже изнурительной работой. В связи с этим специалисты лаборатории должны научиться жить и работать с проблемами и дефектами ЛИС. Кроме того, ЛИС обладают способностью отказывать в неподходящее время. Оптимальным решением такой проблемы является дублирование компонентов ЛИС, так чтобы при выходе из строя одного компонента можно было продолжать работу на другом. Следует ежедневно создавать копии о пациентах и данных лабораторных исследований. Периодически нужно передавать базы данных из ЛИС на другой накопитель, желательно независимый от ЛИС. Это необходимо для того, чтобы в случае выхода из строя ЛИС и последующего восстановления баз данных была возможность вновь ввести нужную информацию.

Таковы традиционные функции ЛИС.

4.3. ОСОБЕННОСТИ ИНФОРМАТИЗАЦИИ ЛАБОРАТОРИЙ В СОВРЕМЕННЫХ УСЛОВИЯХ

В настоящее время КДЛ все больше и больше превращается в коммерческое предприятие, которое начинает жить по законам рынка. Соответственно, КДЛ должны демонстрировать свою экономическую эффективность, конкурентоспособность и коммерческий успех. В связи с этим в настоящее время ЛИС становится мощным инструментом

КДЛ, обеспечивая конкурентоспособное преимущество перед другими лабораториями, экономя время и деньги.

Изменение взгляда на эффективность лаборатории в новых условиях требует пересмотра концепции ее информатизации и требований к ЛИС следующего поколения. Рассмотрим, в чем изменились условия деятельности КДЛ после превращения в коммерческое предприятие.

В первую очередь эти изменения коснулись взаимодействия КДЛ и клиентов, как физических, так и юридических (корпоративных) лиц.

Остановимся на взаимодействии с физическими лицами.

Первая и главная задача коммерческого предприятия КДЛ - качественное обслуживание пациентов. Традиционная для лаборатории технологическая составляющая этой задачи важна здесь, как никогда ранее. Коммерческая лаборатория имеет свои процедурные кабинеты или медицинские офисы для пациентов, где осуществляются взятие крови на анализы и сбор биоматериала, выдача результатов исследований, а также здесь же может находиться врач-консультант, в функции которого входят назначение необходимых пациенту анализов и консультации по различным вопросам. От того, как организована работа процедурных кабинетов, на каком уровне осуществляется обслуживание пациентов, во многом зависит коммерческий успех КДЛ.

Однако со стороны пациента процесс обслуживания представляется иначе. Пациент видит, есть или нет очередь на приеме заказов, то, насколько быстро и четко организован прием, и то, насколько удобно для него получение результата. Эти запросы пациентов должны найти решение при создании современной ЛИС. При практической разработке ЛИС в качестве образца здесь можно воспользоваться достижениями систем розничной торговли:

  • пропускная способность системы приема рассчитывается на пиковую нагрузку, так как, увидев очередь 1 раз, пациент надолго перестает быть клиентом данной лаборатории;

  • прием заказа и платежа должен осуществляется в одном месте: пациент не должен перемещаться между регистратурой и кассой, по несколько раз объясняя, зачем он пришел; предусмотрено оказание услуг на дому;

  • ритмичность приема не должна нарушаться законным желанием пациента внести изменения в заказ;

  • в любой момент пациент может запросить справку о ходе выполнения заказа, запросить результаты лично, по факсу или электронной почте;

  • любой выдаваемый пациенту документ должен не просто выполнять свою функцию, но также подчеркивать значимость клиента и одновременно продвигать торговую марку лаборатории.

Информатизация данного этапа должна быть реализована с установкой достаточного количества автоматизированных рабочих мест для врача-консультанта и медицинских сестер.

В части решения проблемы очередей необходимо использовать средства оптимизации процесса приема заказов, включая регистрацию, прием платежа, забор биоматериала.

Есть ряд методов регулирования времени ожидания в очереди. Можно привлекать дополнительных работников в часы пик и обходиться меньшей численностью, когда наплыв клиентов спадает. За счет профессиональной подготовки, анализа процессов обслуживания и вложений в технологию можно повысить скорость обслуживания. Иногда удается с помощью разных стимулов уменьшить наплыв клиентов в часы пик, либо ввести обслуживание в выходные дни и по вечерам, либо организовать круглосуточную запись клиентов по телефону. Можно ввести систему предварительной записи, вместо того чтобы обслуживать в порядке живой очереди.

Главной целью информационной поддержки взаимодействия с физическими лицами является обеспечение максимально быстрого и комфортного для клиента процесса приема заказов и выдачи результатов. Ускорение приема заказов достигается за счет тесной интеграции составляющих процесса приема заказа: регистрации заказа, приема оплаты, забора проб биоматериала. Средством интеграции может служить специально разработанный для этой цели торговый терминал, интегрированный с контрольно-кассовой машиной. Терминал должен обеспечивать быстрое согласование спектра услуг и регистрацию заказа в процессе живого диалога с клиентом, определения стоимости заказа с учетом различных форм оплаты, прием платежа через контрольно-кассовую машину, выдачу квитанции об оплате, информационную поддержку процедурного кабинета. Пропускная способность терминала должна быть в пределах 40-60 пациентов в час. Выдача результатов должна обеспечиваться наиболее удобным для клиента способом: на фирменном бланке, по факсу или электронной почте.

Взаимодействие с корпоративными клиентами

Коммерческие лаборатории сами занимаются активным поиском корпоративных клиентов, организуют взаимодействие лаборатории с ними и осуществляют постоянную поддержку. Они заинтересованы в увеличении числа корпоративных клиентов. В свою очередь, действующие в жестких рыночных условиях коммерческие медицинские учреждения предъявляют достаточно жесткие требования к исполнителю лабораторных исследований. Наиболее важные из них приведены ниже.

  1. Гибкость механизма ценообразования и условий оплаты услуг. Вследствие большого разнообразия организационных форм заказчиков лабораторных исследований возникает соответствующее разнообразие вариантов ценообразования и условий платежа. Ведение счетов корпоративных клиентов с учетом индивидуальных вариантов взаимодействия по мере роста количества клиентов оборачивается серьезной задачей финансового учета.

  2. Четкое соблюдение регламента обслуживания: соблюдение сроков выполнения исследований, эффективность технологии приема заказов и передачи результатов. Пиковые нагрузки при обработке заказов корпоративных клиентов могут в десятки раз превышать среднестатистические. Требуются принципиально новые технологические решения в области регистрации и обработки заказов. Во избежание нарушений регламента и решения спорных вопросов необходимо обеспечить учет и контроль длительности каждого этапа прохождения заказа (от забора материала и транспортировки пробы до получения результата заказчиком).

  3. Прозрачность деятельности лаборатории для корпоративного клиента. Клиент должен иметь возможность оперативно получить сведения по широкому кругу вопросов (текущие цены, детализация счетов, стадия прохождения конкретного заказа и т.д.). В информационном взаимодействии с корпоративными клиентами намечается переход от реагирования на запросы клиентов по телефону к предоставлению им доступа непосредственно к информационным ресурсам лаборатории.

С учетом различного уровня информационного обеспечения корпоративных клиентов современная ЛИС должна поддерживать два способа взаимодействия с ними: традиционный прием пакета заказов, выдачу результатов в бумажном виде и обмен информацией в электронном виде.

Для регистрации заказов, поступающих в виде бланков-заявок, ЛИС должна иметь механизмы пакетной и многостадийной регистрации, которые позволяют очень быстро произвести первичную регистрацию заказов, достаточную для передачи большого количества проб на исследование. Дальнейшая регистрация заказов может выполняться параллельно с исследованиями. Данный механизм позволяет одному регистратору передавать на исследование несколько тысяч проб в час.

Обмен данными с корпоративными клиентами в электронном виде может осуществляться способом, наиболее подходящим конкретному клиенту: на магнитных носителях, по электронной почте и через Интернет. Для первых двух случаев клиенту необходимо установить специальное программное обеспечение, позволяющее самостоятельно регистрировать заказы и передавать их в виде файлов вместе с пробами на магнитных носителях или по электронной почте, затем таким же образом получать файлы с результатами и выводить их на печать. При взаимодействии через Интернет клиент регистрирует заказы и просматривает результаты непосредственно на сайте лаборатории с помощью веб-интерфейса. В этом случае клиента можно дополнительно обеспечить возможностью просматривать прейскурант лаборатории, справочные материалы, состояние своего счета, отслеживать ход выполнения своих заказов и т.д. ЛИС должна обеспечивать учет оказанных лабораторией медицинских услуг с выдачей результатов в виде журналов или с периодической передачей сведений в страховую систему медицинского учреждения или непосредственно в страховую компанию в электронном виде.

По результатам работы с корпоративными клиентами за отчетный период ЛИС должна выдавать полный комплект документов, необходимых для расчета по договорам.

Маркетинговая политика

Ключевыми составляющими ведения активной маркетинговой политики являются, во-первых, механизм оперативного анализа продаж, во-вторых, механизм управления прейскурантом по результатам анализа. Названные аспекты маркетинговой политики нуждаются в информационной поддержке уже в самых простых случаях. Например, требуется ежемесячно контролировать динамику по нескольким десяткам позиций прейскуранта и нескольким десяткам корпоративных клиентов. Полученное разнообразие вариантов уже не укладывается ни в уме, ни на бумаге. В то же время упрощенный анализ, например, только по позициям или только по клиентам, уже не отражает картину в целом.

Изменение условий деятельности КДЛ требует создания четко отлаженной системы учета оказанных лабораторией медицинских услуг с выдачей результатов в виде журналов или с периодической передачей сведений в страховую систему медицинского учреждения или непосредственно в страховую компанию в электронном виде. Внутри самой лаборатории возникла необходимость учитывать услуги в денежном выражении с периодическим выставлением счетов страховым компаниям и корпоративным клиентам.

По мере увеличения разнообразия вариантов расчетов с клиентами появились задачи автоматизированного ведения прейскуранта с реализацией того или иного дифференцированного подхода к обслуживанию различных категорий частных лиц и корпоративных клиентов с учетом различных форм оплаты, кредитования, льгот, скидок и т.д. Одновременно возникла задача контроля заказов на соответствие определенной категории и проверки факта оплаты.

Обострение конкуренции на рынке лабораторных услуг заставляет руководителей КДЛ и маркетинговые подразделения уделять большее внимание стилю обслуживания и торговой марке своей КДЛ. Это и индивидуальный дизайн бланков-заявок на лабораторные исследования и бланков результатов анализов, информационных и обучающих материалов. Все это предъявляет соответствующее требование к ЛИС в целях удовлетворения запросов маркетологов и дизайнеров. Пакет лабораторных статистических отчетов, выполнявший ранее функции формальной отчетности перед вышестоящим руководством, под воздействием новых рыночных условий трансформировался в инструмент оперативного маркетингового анализа.

Проявлением конкурентной борьбы стали сужение лабораториями спектра оказываемых услуг и специализация в наиболее выгодных для себя областях исследований. Как следствие, усиливается кооперация лабораторий, призванная обеспечить предоставление клиенту широкого спектра услуг по месту обращения и в то же время выполнение исследований по наименьшей себестоимости. Все это повышает требования к информатизации взаимоотношений лаборатории с другими лабораториями, выступающими в роли заказчиков или исполнителей определенных видов исследований.

Планирование производства

Рынок лабораторных услуг находится в стадии становления, исключающей долгосрочное планирование. Вместе с тем лаборатории должны планировать достаточный запас производительности относительно средней загрузки для исключения невозможности обработки потока заказов. В перспективе планирование и соответствующие возможности ЛИС, так же как и в других областях экономической деятельности, станут играть решающую роль в организационной и информационной структуре лабораторий.

Оперативный учет

Экономическая деятельность должна основываться на величинах нормативных и фактических издержек, основные составляющие которых для лаборатории - расход реактивов и заработная плата. Как следствие, возникает потребность в организации полноценного складского, кадрового и других видов учета.

Взаимодействие ЛИС с другими системами

Очевидно, что собрать информацию и выполнить перечисленные в предыдущих разделах требования без использования ЛИС принципиально невозможно. В новых условиях лабораторная информационная система становится таким же средством производства, как лабораторное оборудование, без нее нет конечного продукта, адекватного потребностям рынка.

Ни одна серьезная информационная система для современной КДЛ не может сейчас рассчитывать на успех, если она не способна интегрироваться с другими системами. Это могут быть системы более низкого и более высокого уровня. Кроме того, в настоящее время интеграция подразумевает также связь с другими, например, офисными приложениями, а также использование веб-технологий.

Перечисленные выше новые задачи, стоящие перед КДЛ, относятся к далеким друг от друга предметным областям, и их невозможно решить в полном объеме в рамках одной информационной системы. Практическое решение проблемы лежит в использовании комбинации систем разного профиля или разработке многомодульной ЛИС. По аналогии с информатизацией промышленного предприятия, каким по своей сущности является и КДЛ, информационные системы должны иметь следующий перечень составляющих:

  1. технологический процесс лаборатории - ЛИС;

  2. обслуживание индивидуальных пациентов - рабочие терминалы медицинских офисов (процедурных кабинетов);

  3. работа с корпоративными клиентами - система управления отношений с клиентами;

  4. финансовый учет - бухгалтерская система;

  5. материальный учет - система складского учета;

  6. заработная плата - система управления персоналом;

  7. снабжение - система управления поставками;

  8. маркетинговая политика - система управления рыночной стоимостью исследований, система оперативного анализа продаж;

  9. планирование - система планирования ресурсов КДЛ.

Естественно, что для конкретной лаборатории на конкретном этапе развития одномоментное внедрение всего приведенного комплекса - задача слишком сложная как в финансовом, так и в организационном отношении. Практическое решение комплексной информатизации КДЛ в современных условиях лежит в поэтапной реализации возникающих проблем. На первом этапе функции ЛИС могут сводиться к предоставлению сведений той или иной направленности в виде журналов и отчетов. По мере дальнейшего роста объема информации и формализации процесса ведения отношений с клиентами возникает задача автоматизации. Требования к информационной системе сначала ограничиваются автоматизацией процесса подготовки сложившегося набора документов. В дальнейшем требования расширяются до коренного преобразования документооборота и перехода к взаимодействию с клиентами через Интернет. И здесь, как правило, требуется уже специализированная система. Именно поэтому далее в лаборатории можно проводить внедрение специализированных (бухгалтерской, складской, кадровой и т.д.) систем, в окружении которых ЛИС обретает четкую позицию системы автоматизации технологического процесса, а вместо разнообразных статистических отчетов ЛИС возникают механизмы передачи данных в другие системы. В окончательном варианте ЛИС, вместе с другими информационными системами, образуют органичное целое - модульную систему лаборатории.

Экономическая эффективность. На современном этапе КДЛ из технологического подразделения в составе предприятия должна стать самостоятельной структурой или отдельным предприятием в составе ЛПУ. В связи с этим экономическая эффективность становится важнейшей составляющей функционирования лаборатории. Сам факт существования КДЛ определяется экономическим расчетом. Спектр и объем исследований становятся предметом коммерческой деятельности.

Новая функция КДЛ - экономически целесообразное существование на рынке лабораторных услуг. Задачи руководителя (заведующего, директора) лаборатории - укрепление позиций на рынке за счет эффективного использования имеющихся ресурсов. С этой точки зрения ЛИС должна обеспечивать получение всех необходимых данных для эффективного управления деятельностью КДЛ, включая:

  • финансово-экономические данные о производственном процессе, позволяющие осуществлять расчет нормативов расходования реактивов, калибраторов, контрольных материалов и другого расходного материала на одно исследование, а также себестоимость анализов;

  • планирование бюджетов и их контроль;

  • оптимизацию расходов в целях повышения рентабельности деятельности лаборатории;

  • формирование данных для принятия управленческих решений.

Таким образом, в настоящее время ЛИС должны обеспечивать не только простой сбор информации о функционировании технологических процессов для управления лабораторией, но и учитывать все другие элементы деятельности, сводить их воедино и оценивать их в денежном выражении.

4.4. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ И УПРАВЛЕНИЕ МАТЕРИАЛЬНЫМИ РЕСУРСАМИ ЛАБОРАТОРИИ

Приобретение реактивов, калибраторов, контрольных материалов и расходных материалов составляет значительную долю расходов любой КДЛ - в зависимости от ее предназначения от 20 до 50% всех операционных расходов. В связи с этим оптимизация снабженческой деятельности КДЛ и ведение правильного учета расходуемых материалов могут заметно улучшить финансовые показатели лаборатории. Опыт коммерческих лабораторий Западной Европы показывает, что при снижении этих затрат на 10% вполне реально увеличить прибыльность КДЛ на 10-20%. Вместе с тем большинство российских КДЛ не используют этот относительно простой рычаг для повышения прибыльности и весьма недальновидно относятся к сфере снабжения. Правда, существует множество объективных причин такого положения дел. Возможным выходом из создавшейся ситуации является использование возможностей ЛИС для управления материальными ресурсами КДЛ. В мировой практике накоплен огромный опыт оптимизации этой сферы деятельности.

Рост объемов продаж лабораторных услуг КДЛ и качественное удовлетворение потребностей пациента во многом зависят от состояния обеспечения технологического процесса производства лабораторных анализов необходимыми расходными материалами. Если КДЛ постоянно испытывает сбои в поставках реактивов, ей очень трудно рассчитывать на рост продаж анализов, если контрольные материалы, калибраторы поступают нерегулярно, качество исследований невозможно поддерживать на высоком уровне и удовлетворять запросы пациентов в качественных результатах анализов.

В связи с этим особую актуальность приобретают следующие задачи:

  • определение норм расходования реактивов, калибраторов, контрольных материалов и другого расходного материала для каждого вида анализов;

  • ежедневный учет количества выполненных исследований по тестам;

  • формирование помесячных заявок на реактивы и расходные материалы;

  • получение, учет и контроль за расходованием реактивов и расходных материалов.

Реальное решение перечисленных задач возможно только при использовании ЛИС. Именно уровень развития информационных технологий в КДЛ определяет в настоящее время эффективность обеспечения реактивами, расходными материалами, бесперебойность снабжения, учета расходования материалов необходимых для производства анализов, и, соответственно, себестоимость анализов и коммерческий успех лаборатории.

Отправная точка решения этих практических задач - уровень автоматизации документооборота и обработки данных, и именно от этого зависит возможность КДЛ качественно планировать и контролировать закупки. КДЛ, использующие в своей работе такие возможности ЛИС, значительно повышают свои шансы ускорить процесс работы с информацией (со всеми вытекающими последствиями) и наладить эффективное взаимодействие с потребителями лабораторных услуг и поставщиками реактивов и расходных материалов.

Следующая отправная точка - система планирования. Для того чтобы правильно посчитать количество необходимого расходного материала для обеспечения производства анализов, нужно исходить из их количества и вида за определенный период. При этом необходимо исходить из количества реально проведенных исследований. Расчет потребности в расходных материалах необходимо вести по программе реального производства каждого вида анализов с учетом запасов расходных материалов на складе КДЛ, чтобы они не скапливались.

Существенные погрешности в определении необходимого объема закупок - основная причина всех проблем снабжения КДЛ. Ее прямые следствия известны подавляющему числу заведующих КДЛ: это и завышенные запасы, и живые деньги, извлекаемые из оборота, и необоснованно высокие затраты на хранение. Кроме всего прочего, погрешности в определении необходимого объема закупок являются условием для постоянного аврала в работе КДЛ, а он (аврал), в свою очередь, есть не что иное, как благодатная почва для злоупотреблений: на аврал можно списать и завышенные цены, и необоснованные предоплаты, и ошибочные закупки того, что уже лежит на складе.

Теперь несколько слов о нормах расхода реактивов, контрольных материалов, калибраторов и другого расходного имущества для производства каждого вида анализа в КДЛ. Если они неадекватны, ни одна продвинутая информационная система, ни отработанная до совершенства система планирования работать не будут.

Однако не все так страшно, как может показаться любому заведующему КДЛ при упоминании о нормах расхода. Ведь ЛИС и призваны помочь решить эту проблему. Если в течение всего времени вводить в ЛИС весь расходный материал, определенным кодом привязывая его к конкретному виду анализа, то со временем накопится достаточно информации для расчета реальных норм расхода и реактивов, и контрольных материалов, и калибраторов, и другого расходного материала на каждый вид анализа.

В связи с этим важнейшим компонентом в системе управления материальными ресурсами КДЛ является правильная организация учета поступления реактивов и расходного материала на складе. Порядок в складируемых запасах должен начинаться, прежде всего, с организации системы их правильных наименований.

На этом принципе основан учет наличия и движения запасов. Его бич - задвоения. Задваиваться могут отдельные позиции, например, набор реактивов для определения креатинина может прийти с одной и той же фирмы под разными названиями, а с разных фирм - с разными каталожными номерами, и, соответственно, в бухгалтерии будут числиться на разных страницах учета. Для реактивов и расходного материала имеет значение не только вид, но и разнообразие его характеристик (марка, размеры, каталожный номер и т.п.). А их кодификацию и поименование отдают на откуп сотрудникам бухгалтерии, которые ничего в этом не понимают. Здесь и появляется множество названий для одного набора.

Понятно, что каждое задвоение увеличивает хаос - начиная с ошибочных и преднамеренных закупок того, что уже есть, заканчивая мучительной инвентаризацией и составлением актов сверок. Добавим сюда потери времени на ввод самих карточек, на поиск ошибок и их устранение.

Стандартный путь, который позволит избежать задвоения, - формирование справочника-классификатора реактивов и расходного материала при создании ЛИС, где шестизначным кодом обозначаются классы, подклассы, группы, подгруппы и виды реактивов и расходного материала. Каждой КДЛ требуется набор внятных принципов словесного обозначения и кодирования товарно-материальных ценностей. Основным маркером наборов реактивов и расходного материала при организации приходования на склад, безусловно, является каталожный номер набора. Однако, помимо этого, при разработке ЛИС обязательно необходимо привязать все наборы реактивов, калибраторов, контрольных материалов и расходный материал к видам исследований. Только в этом случае удастся избежать задвоения и завышения запасов на складе. В конечном итоге правильная организация поступлений на склад сама по себе приводит к экономии финансовых средств КДЛ на 7-11% ежемесячно.

При ведении учета реактивов, калибраторов, контрольных материалов и расходного материала в ЛИС можно регулярно получать отчеты о запасах. Эти отчеты представляют собой обобщенные сведения об остатках запасов на дату составления отчета или о движении запасов за отчетный период (день, неделя, месяц, квартал, год). Отчеты группируют запасы по самым разным информационным разрезам - по видам продукции, по производственным подразделениям КДЛ (например, биохимия, бактериология) и так далее и содержат следующую информацию:

  • наименование реактивов;

  • дату изготовления;

  • срок годности;

  • себестоимость единицы запасов;

  • каталожный номер набора, партии;

  • единицу измерения запасов;

  • местонахождение запасов;

  • общее количество на складе;

  • заказанное (зарезервированное) количество;

  • ожидаемые поступления;

  • количество некондиционных наборов (например, с отсутствующим калибратором);

  • количество наборов, не пользующихся спросом;

  • количество наборов с истекающим сроком годности;

  • местонахождение и движение запасов наборов;

  • минимально допустимые объемы запасов реактивов, калибраторов, контрольных материалов и расходного материала;

  • уровень омертвления запасов (объем запасов, по которым не было движения за отчетный период) и т.д.

Кроме того, наличие справочника-классификатора в ЛИС КДЛ позволяет гораздо лучше решать и проблему контроля закупочных цен.

В контроле закупок все и вся вертится вокруг цен. Излюбленный способ контроля закупочных цен - поручение этой функции планово-экономическому отделу или создание специализированного структурного подразделения. В подавляющем большинстве случаев это сводится лишь к тому, что группа сотрудников ведет поиски информации в бумажных ценовых справочниках (например, прайс-листах), а также в Интернете, и на основе найденных сведений выносит вердикты на предоставленных снабженцами счетах. При этом даже минимальная проверка собранных сведений (цены, наличия товара на складе и поставщика в природе) методом простого телефонного звонка - большая редкость.

Справочник-классификатор позволяет при выборе поставщика реактивов и расходных материалов учитывать целый ряд характеристик набора реактивов (например, объем реактивов, срок годности и т.д.), что оказывает существенное влияние на закупочную цену, а также упрощает контроль за ценами на основании сравнения с ценами ранее приобретенных наборов.

Управляя материальными запасами КДЛ, приходится делать выбор между большим объемом запасов (обходится дороже) и малым объемом (есть риск возникновения дефицита плюс расходы на частое пополнение складов). Можно избежать этой дилеммы и сократить стоимость поддержания запасов.

Содержание материальных запасов в КДЛ стоит денег. Это расходы на складирование и процент по неиспользуемым запасам. Альтернативная стоимость капитала, омертвленного в запасах, бывает порой очень велика. Вместе с тем, если возникнет дефицит реактивов и расходных материалов, начнутся проблемы со стабильностью производства лабораторных исследований и потребуются дополнительные расходы на срочное пополнение запасов. К тому же наличие запасов позволяет быстрее выполнять заказы клиентов.

Вместе с тем заведующим КДЛ необходимо понимать, что сокращение запасов обеспечивает рост прибыли.

Решение о величине материальных запасов (или о времени заказа на пополнение запасов) зависит от соотношения между стоимостью запасов и издержками, возникающими из-за их дефицита (нужно также учитывать возможность экономии на размере закупок).

Решение о размерах материальных запасов в КДЛ определяется соотношением между стоимостью запасов и потерями из-за их нехватки. Таким образом, управляя запасами, нужно уметь сбалансировать стоимость запасов и потери от их недостачи, от использования субститутов или передачи заказов субподрядчикам.

Проблема организации учета материальных ценностей и доходов является одной из более важных практических задач современной КДЛ. В настоящее время эта задача, как правило, решается силами самой лаборатории. В бумажном виде в каждой КДЛ организован учет прихода реактивов, расходного материала и других материальных ценностей, который возложен на старших лаборантов или заведующих лабораториями. В журнале том или ином виде ведутся учет и контроль за расходами лаборатории, а иногда и доходами. Довольно часто встречается ситуация, когда учет доходов отделен от учета расходов и осуществляется внешней по отношению к лаборатории финансово-экономической службой ЛПУ. Возможности современных ЛИС практически не используются для решения этих задач, что во многом тормозит развитие КДЛ, снижает ее доходы и сказывается на качестве результатов исследований.

Основным объектом усилий в КДЛ при определении прямых затрат на производство лабораторных исследований является трудоемкий учет реактивов, контрольных материалов, калибраторов, пробирок и другого расходного материала в их количественном и стоимостном выражении. При отсутствии ЛИС информация о прямых затратах на производство лабораторных исследований доступна лаборатории, как правило, в виде общей суммы годовых расходов лаборатории, которые можно сопоставить с общим количеством сделанных тестов для составления заявки или плана на следующий год. При этом добиться большей детализации практически невозможно, часто эти затраты трудно разделить даже по организационным подразделениям лаборатории, не говоря уже о себестоимости конкретных услуг или конкретных выполняемых методик. Как правило, вместо фактической себестоимости оказанной услуги в отчетах и планах фигурирует нормативная, плановая себестоимость, которая берется из нормативных значений расхода реагентов, пробирок и других дорогостоящих материалов и имеет мало отношения к действительности.

При организации учета в ЛИС важнейшими организационными моментами являются следующие.

  1. Организация места. Выбор специализированного места, удобного для приходования и выдачи товара со склада и одновременного ввода большого количества первичной информации, имеет большое значение для успеха автоматизации, создает серьезное отношение и подчеркивает важность учета.

  2. Организация персонала. При переходе от бумажного варианта учета к электронному формализованному нагрузка на персонал лаборатории скорее возрастает, чем облегчается. Период ввода в эксплуатацию электронного учета, как правило, болезненный и требует настойчивости в поддержании дисциплины ввода первичной информации. Именно поэтому если с частичным вводом легко справляется персонал лаборатории в свободное от основной работы время, то полноценный учет требует, как правило, большей занятости, особенно на этапе опытной эксплуатации информационной системы. Именно поэтому рекомендуется выделять на учет особое время и особого сотрудника, возможно, также мотивируя его дополнительно, поскольку эта работа требует труда и внимания.

  3. Организация контроля. В течение первых 3 мес заведующему КДЛ рекомендуется хотя бы раз в неделю проверять полноту и действительность отраженных в системе данных.

Сам процесс автоматизации учета в ЛИС состоит из двух этапов.

Первый этап предусматривает организацию простого склада в ЛИС, который включает практическое внесение данных о поступивших материалах и их расходе. Внедрение простого склада позволяет видеть в реальном времени остатки на складе по каждой позиции, формировать акты списания продукции за период, быстро осуществлять инвентаризацию. При этом организация простого склада не требует обязательного участия заведующего КДЛ в вводе первичной информации и может быть выполнена любым сотрудником лаборатории, которому поручено ведение учета.

Операция прихода материалов - самая ответственная при внедрении электронного склада, поскольку от правильности внесения первичной информации зависит ее корректность для дальнейшего использования.

При приходовании расходных материалов вносятся следующие сведения:

  • о документах, сопровождающих товар (номер товарной накладной);

  • наименовании и номере продукции по каталогу (каталожный номер);

  • количестве товара в упаковках;

  • количестве товара в учетных единицах (миллилитрах, граммах и т.п.);

  • сроках годности;

  • неснижаемом запасе;

  • методиках, связанных с использованием данного реактива;

  • стоимости единицы материала;

  • сотруднике, осуществлявшем операцию.

Остальные рутинные операции - расхода, возврата, списания - относительно просты и отражают изменение только нескольких параметров, не отнимая много времени у сотрудников лаборатории.

При внедрении этого этапа в лаборатории лицу, ответственному за ведение учета расходных материалов, устанавливается автоматизированное рабочее место, в результате в ЛИС ему становятся доступны базовая складская отчетность и планирование закупок. На рис. 4.8 представлено рабочее окно ЛИС для регистрации прихода материалов.

На рис. 4.9 приведена возможность редактирования прихода материалов в ЛИС.

Заведующий КДЛ всегда может получить оперативные сведения о наличии расходного материла и реактивов на складе. На рис. 4.10 приведена рабочая страница журнала остатков в ЛИС.

Поставшнк |Поставщик!!713GE5] "zi® Номер документа от |1412200Б

Номер накладной 1234232 от |14.12.2006 3 Номер счёта-фактуры | от 1 14.12.200Б

S

в> а

л

+

Зарегистрировать

Открыть черновик Сохранить черновик

Выше Ниже

Добавить

Удалить

Позиции в накладной

*/

Наименование*

товара в накладной

Кат. номер N- лота Кол-во

Ед. изм. Цена

Стоимость Ск/

1 40% Potassium Hydroxide Reagent - Гидроксид Калия 30 мл

В1010-43А 5

шт. 200

1000 -

1 ?"

2?

Сохранить черновик Зарегистрировать Выйти

Рис. 4.8. Регистрация прихода материалов

pic 0140
Рис. 4.9. Редактирование прихода материалов
pic 0141
Рис. 4.10. Остатки по складу

Не менее важно для управления материальными ресурсами КДЛ иметь сведения в реальном времени о регулярности списания реактивов и расходных материалов, своевременности их приходования. На рис. 4.11 приведена рабочая страница журнала операций по складу в ЛИС.

Однако, помимо простого видения прихода, расхода и наличия остатков, ЛИС ведет наиболее важную аналитическую работу, связанную с расчетом важнейших базовых экономических показателей. Учет затрат реактивов, калибраторов, контрольных материалов, расходных материалов и т.д., их привязка к виду анализа (услуги), стоимости расходных материалов и их расходу за определенное время позволяет ЛИС рассчитать и предоставить сведения заведующему КДЛ обо всех прямых затратах на каждый вид исследования. Знание прямых затрат на каждый вид исследования во многом позволяет оценивать экономические аспекты деятельности КДЛ.

pic 0142
Рис. 4.11. Журнал операций по складу

Вторым этапом автоматизации учета в ЛИС является организация экономического анализа. На этом этапе склад превращается в элемент общей аналитической системы лаборатории. В этом смысле в учет затрат могут быть также включены затраты на амортизацию оборудования, коммунальные платежи, фонд оплаты труда, налоги и другие фиксированные издержки, которые обычно не находятся в центре внимания заведующего КДЛ и что нередко вызывает разногласия в оценке экономической деятельности лаборатории с главным врачом и внешними экспертами.

Как правило, эти издержки корректно считаются бухгалтерией и могут быть без особого труда получены из внешней бухгалтерской системы.

На этом этапе все затраты могут быть отнесены к себестоимости в зависимости от вида исследования или объекта затрат, для которого в данном случае себестоимость актуальна. Целесообразно относить стоимость материала к себестоимости тех услуг, из которых она производится. При этом необходимо понимать, что для корректного подсчета себестоимости необходимо полное внесение данных о затратах, в противном случае цифры будут некорректными. Внедрение аналитического склада вызывает значительные трудности, но это единственный способ посчитать фактическую себестоимость услуги.

4.5. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ И УПРАВЛЕНИЕ ИЗДЕРЖКАМИ ПРОИЗВОДСТВА ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Эффективное управление производством лабораторных исследований требует достоверных данных о количественных и качественных сторонах производства. При этом важно, чтобы данные были получены в необходимые сроки, так как оперативность получения данных влияет на скорость принятия решений. Достоверность и своевременность получения данных влияет на правильность принятия решений. Все это придает большое значение бизнес-процессу контроля качества результатов лабораторных исследований.

Повышение качества производственных процессов выполнения лабораторных исследований и готовой продукции - результатов лабораторных анализов - решающее условие привлечения потребителей лабораторных услуг и снижения издержек.

Низкое качество дорого обходится. За высокое качество приходится платить, но это правильное вложение денег. Успешные КДЛ стремятся к повышению качества лабораторных исследований не ради самого качества, а чтобы повысить эффективность результатов лабораторных анализов и, таким образом, увеличить выгоды для потребителей лабораторной информации. В большинстве случаев программы повышения качества лабораторных исследований ведут к непосредственному снижению расходов, потому что уменьшается число дефектов, сокращаются расходы на их повторение и списание реактивов и расходных материалов. В таких случаях производительность возрастает потому, что сразу все делается как следует. Нередко усилия по повышению качества лабораторных исследований сопряжены с ростом расходов, но при этом услуги КДЛ приобретают такие свойства, что покупатель охотно заплатит более высокую цену. Сторонники системы ВУК указывают, что в обоих этих случаях повышение качества достается КДЛ даром.

В ряде случаев повышение качества лабораторных исследований сопровождается ростом их себестоимости, но без соответствующей наценки. Здесь качество достается не бесплатно, но это хорошее вложение капитала, если руководство КДЛ предвидит будущую отдачу в форме более высокого спроса на данный вид анализов или будущего повышения цен как признака высокого качества. Как и другие капиталовложения, инвестиции в совершенствование производственных процессов могут окупаться не сразу, но предпринимать их следует, только если они обещают КДЛ положительную чистую приведенную стоимость. Дело не в том, что управленческий аппарат КДЛ должен стремиться к точному подсчету всех возможных выгод (которые не всегда легко измерить и оценить). Необходимо сопоставлять затраты на повышение качества с возможными выгодами, тем более что неудачная программа повышения качества может обременить производство ненужными дополнительными расходами. В связи с этим КДЛ дешевле предотвращать дефекты, чем заниматься контролем и устранением недостатков.

Разные КДЛ по-разному понимают, что такое ВУК лабораторных исследований, но в современных условиях существования конечный смысл этого метода - использование анализа и управления качеством для повышения прибыльности КДЛ. Важнейшей частью ВУК является анализ, поскольку именно он позволяет понять, чтоб нужно сделать для предотвращения дефектов и повышения качества. Альтернативой предотвращению дефектов является постоянный контроль. Для КДЛ в любом случае дешевле сразу все делать как следует, чем потом выявлять дефекты и устранять их, то есть повторять исследования.

Обеспечение качества лабораторных исследований и снижение издержек при их производстве возможно только при использовании современных ЛИС. КДЛ, применяющие в своей работе такие ЛИС, имеют явное преимущество перед конкурентами.

Благодаря новому поколению ЛИС, КДЛ обладают лучшими средствами для получения достоверной, подробной информации о технологических процессах производства лабораторных исследований. При этом эта информация поступает в режиме реального времени и в случае отклонения параметров от заданных критериев оценки качества каждой технологической операции сообщает об этом. Своевременное поступление необходимой информации позволяет снизить уровень затрат на производство анализов при обеспечении высокого качества и технологии.

По своей экономической сущности роль ЛИС состоит в создании прозрачной модели производства лабораторных исследований в КДЛ для осуществления оперативного контроля над формированием переменных затрат, к которым в лаборатории относятся наборы реактивов, калибраторы, контрольные материалы и расходные материалы (кюветы, моющий раствор, чистящий раствор, разводящий раствор и т.д.).

Наличие ЛИС значительно облегчает регулярный и оперативный анализ причин нарушения технологических процессов и операций производства лабораторных исследований, позволяет более глубоко вникнуть в их суть и быстро выработать мероприятия по их устранению.

Для управления единым технологическим процессом производства анализов необходимо определить критерии (индикаторы, пороги) качества для каждого технологического процесса и операции, введение которых в ЛИС КДЛ позволило бы превратить эту систему в инструмент управления процессом непрерывного совершенствования качества результатов исследований.

Ключевые процессы или операции производства анализов, профессиональные действия специалистов лаборатории (категории вмешательств) и их результаты должны быть документированы с помощью различных графиков и диаграмм. Документирование технологических процессов и операций позволяет получить ответ на вопросы: что выполнено? как? имеются ли отклонения и почему? могло бы это быть выполнено проще или более быстрым способом? почему это не было сделано?

Важнейшим моментом при этом является анализ результатов выполнения каждой технологической операции, каждого технологического процесса. Сопоставление отклонений от определенного стандартами их выполнения, особенно в сравнении с дополнительными затратами ресурсов (реактивы, калибраторы и т.д.), анализ причин возникающих отклонений позволяет вырабатывать мероприятия по улучшению технологических процессов и операций. Анализ отклонений может послужить причиной изменения организации технологического процесса, замены используемых методик исследования и оборудования, автоматизации слабых звеньев. Установление контроля над отклонениями делает возможным управление результатом.

Большой поток информации, который возникает при производстве анализов, свидетельствуют о том, что практический учет ее и использование могут быть осуществлены в полной мере только через возможности информационных систем. Индикаторы качества, включенные в ЛИС, и отклонения от них служат основой для непрерывного совершенствования качества результатов лабораторных исследований и сокращения затрат на их производство.

На рис. 4.12-4.13 приведены примеры использования возможностей ЛИС для управления технологическими процессами при выполнении ряда лабораторных исследований.

pic 0143
Рис. 4.12. Функционирование лабораторной информационной системы на различных этапах единого технологического процесса производства лабораторных исследований
pic 0144
Рис. 4.13. Лабораторная информационная система при проведении биохимических исследований у пациента с подозрением на инфаркт миокарда

На рис. 4.12, отражающем общие принципы создания ЛИС для единого технологического процесса производства результатов лабораторных исследований, представлены основные части процесса и индикаторы (критерии), превышение которых служит источником информации для анализа причин отклонений и выработки конкретных мер для их устранения.

На рис. 4.13 приведен частный случай проведения биохимических исследований у пациента с ИМ. Общим требованием для экстренных исследований является выполнение их в течение 60 мин после доставки материала в лабораторию, а для исследования жизненно важных параметров (гемоглобин, гематокрит, КОС, калий, глюкоза) - 5 мин. Это те критерии, которые необходимо включить в ЛИС и отслеживать их выполнение.

На рис. 4.13 показано, как должна отслеживаться информация в ЛИС при диагностике ИМ. При назначениях исследований АСТ, АЛТ, КК, КК-МВ, миоглобина и тропонина Т вступают в действие критерии преаналитического этапа. Первый критерий - когда можно назначать эти исследования? Для диагностики ИМ такие исследования могут быть выполнены в любое время, поэтому критерий, определяющий время назначения таких анализов, в данном случае не включают и в последующем его не используют для анализа. Второй критерий при составлении заявки на анализы - сколько времени прошло после острого ангинозного приступа? В данном примере - 6 ч, значит, критерий не задействуется, так как все назначаемые анализы могут предоставлять полезную информацию для диагностики ИМ, а если бы после острого приступа прошло 3 сут, то критерий включают, так как в этот период ИМ миоглобин для диагностики заболевания не определяют. На этапе технологической операции взятия крови на исследование, несмотря на неподготовленность пациента к исследованию, критерий не включают, так как неотложные исследования проводят без подготовки, а если бы пациенту были назначены плановые биохимические исследования, то этот критерий был бы включен и потребовалось бы вмешательство специалистов лаборатории для устранения отклонений. Кровь на исследование у пациента с подозрением на ИМ должна быть взята в течение 10 мин после получения процедурной сестрой заявки и в течение такого же времени доставлена в лабораторию. Отклонения по времени на этих этапах также анализируют и по ним вырабатывают программы устранения причин, приводящих к нарушениям. Аналогичным образом работают критерии для технологических операций взятия и доставки крови.

На аналитической части технологического процесса критерии устанавливают для операций приема и подготовки крови, калибровки, ВКК, так как эти операции являются важнейшими в обеспечении качественных результатов исследований. Любые превышения критериев служат основанием для вмешательства врача клинической лабораторной диагностики в технологический процесс. При ВКК контрольными признаками нарушения воспроизводимости и точности являются пять правил Wesgard.

На этом же этапе оценивают и качество операции подготовки материала к исследованиям. Плохо отцентрифугированная или гемолизированная сыворотка не может быть использована для анализа.

Устранение причин нарушений на данном этапе производства анализов очень эффективно с экономической точки зрения, так как повторные калибровки, дополнительное проведение ВКК, повторение исследований увеличивают стоимость анализа на 2,5-50,0%.

На этапе технологической операции обработки результатов анализов и написания заключений критериями оценки качества являются данные о повторении исследований, повторных калибровках, о дополнительном проведении ВКК, случаях срочного информирования клинициста о результатах исследований, требующих немедленных действий, и наличие или отсутствие заключений по результатам анализов. Превышение критических порогов на этом этапе требует тщательного анализа и выяснения причин включения критериев.

При получении результатов исследований, требующих немедленных действий клинициста, врач лаборатории срочно информирует его об этом. В данном случае при повышенных значениях КК-МВ, миоглобина, тропонина врач клинической лабораторной диагностики должен сообщить клиницисту о результатах (критерий не включают) и только затем приступить к написанию заключения.

На этапе технологической операции передачи результатов исследований врач лаборатории обязан указать время поступления материала в лабораторию и время выдачи ответа, убедиться в том, что результаты получены клиницистом. Выполнение этих критериев имеет важное значение, особенно при экстренных исследованиях и исследованиях по жизненным показаниям, так как устраняет повод для разбирательства в тех случаях, когда безответственный клиницист в качестве оправдания своего бездействия ссылается на то, что он не был вовремя информирован о результатах исследований.

На этапе передачи результатов исследований процесс не заканчивается, так как он должен обязательно включать постаналитический этап единого технологического процесса производства анализов. Эта часть процесса не менее важна, чем все предыдущие, так как позволяет оценить все предыдущие этапы. Клиницист отвечает за интерпретацию и использование полученной лабораторной информации. Критерии на постаналитическом этапе следующие: соответствуют ли результаты исследований объективному состоянию пациента, проанализированы ли результаты исследований в технологической карте и истории болезни, какие действия предприняты клиницистом по результатам исследований, повлияли ли результаты исследований на качество оказания медицинской помощи пациенту. Если результаты исследований не востребуются клиницистом (нет записей в истории болезни), это является условием срабатывания критериев и служит материалом для анализа и выяснения причин, почему это происходит. Врач лаборатории не должен устраняться от анализа причин срабатывания порогов на постаналитическом этапе технологического процесса. На этом функция ЛИС для диагностики ИМ заканчивается. Однако при лечении пациента с ИМ он может повториться через какое-то время (исследования будут назначены повторно для оценки лечения, определения прогноза или диагностики возникших осложнений), и оценивать его придется уже в динамике с учетом выявленных отклонений в предыдущем случае.

Отражением использования результатов исследований являются применение их клиницистом для обоснования диагноза, назначение тромболитической терапии и подача заявки на повторные исследования маркеров повреждения миокарда через 6-12 ч для слежения за динамикой ИМ.

Работа КДЛ очень сложна. Для того чтобы поддерживать функционирование всех составляющих единого технологического процесса производства лабораторных анализов на пике эффективности и надежности, руководитель лаборатории (врач лаборатории) должен иметь надежную и самую свежую информацию о том, что происходит на этапах производства. «Рисуя» цепочку прохождения этапов от заказа исследований до передачи и использования результатов анализов клиницистом, ЛИС может дать детальные и точные сообщения о действиях специалистов лаборатории, включая следующие:

  • время полного оборота анализа, производительность смены, лаборанта, врача лаборатории;

  • недостатки, выявленные на этапах производственных процессов или операций (превышение контрольных критериев);

  • распределение нагрузки в лаборатории в течение дня, недели;

  • поступление заявок на исследование по часам или дням.

Эти данные (отчеты) могут быть использованы для отслеживания внутренних тенденций функционирования технологического процесса. ЛИС позволяет отслеживать выполнение технологического процесса, выявлять отклонения и оперативно вырабатывать меры по их устранению.

ЛИС разрабатывают с той целью, чтобы избежать нежелательной изменчивости в технологическом процессе производства различных видов анализов.

Наличие ЛИС значительно облегчает регулярный и оперативный анализ причин нарушения технологических процессов и операций производства лабораторных исследований, позволяет более глубоко вникнуть в их суть и быстро выработать мероприятия по их устранению.

4.6. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ И УПРАВЛЕНИЕ СЕБЕСТОИМОСТЬЮ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Системы информатизации КДЛ позволяют проводить расчеты и контролировать основные экономические показатели лаборатории: себестоимость реагентов и расходных материалов, границы экономически допустимой стоимости произведенных анализов, уровень лабораторных производственных затрат, критерии экономической стабильности лаборатории и некоторые другие вопросы.

Однако основным вопросом, влияющим на все остальные аспекты разработки и развертывания ЛИС, является вопрос о себестоимости одного анализа.

Сегодня во многих КДЛ себестоимость воспринимают исключительно как атрибут налогообложения и не используют в качестве объективного экономического показателя в оперативном управлении. Между тем управление себестоимостью - это сердцевина того самого управленческого учета.

Использование ЛИС позволит перейти от применения средних расчетных цифр к детальному определению расхода реактивов для каждого вида исследования и подсчета реальной себестоимости теста в случае каждой конкретной лаборатории с определенными объемами исследований. В программу необходимо вводить такие исходные данные, как количество запусков анализатора и смен в лаборатории в день, количество рабочих часов в день и количество самих рабочих дней в году, процент повторных исследований, частоту проведения контроля качества. По каждому виду исследований вводятся те количества тестов, которые лаборатория выполняет и сообщает пациенту за год. В английском варианте это звучит как report-test, то есть отчетный тест, или, другими словами, сообщенный пациенту результат, за который в конечном итоге будет произведена оплата (пациентом или страховой компанией). Важно производить расчеты именно по тем фасовкам реактивов, которые будут использоваться. Ниже, в табл. 4.1, приведен фрагмент программы компании Olympus Diagnostica расчета расхода реактивов для биохимического анализатора AU400.

Таблица 4.1. Фрагмент программы компании Olympus Diagnostica расчета расхода реактивов для биохимического анализатора AU400

Количество запусков анализатора в день

1

Модель анализатора

AU400

Количество смен в день

1

Количество часов работы в день

3

Процент повторных исследований

10%

Количество рабочих дней в году

250

Тест

Количество тестов во флаконе

Количество флаконов в упаковке

Количество тестов в упаковке

Количество рабочих дней в месяц

Количество тестов за год

Albumin

500

4

2000

21

15 000

ALP

485

4

1940

21

18 000

ALT

485

4

1940

21

40 000

Amylase

200

4

800

21

13 000

Bilirubin total

500

4

2000

21

38 000

С учетом известной стабильности и частоты калибровок по каждому тесту программа рассчитывает дополнительный расход реактива на проведение калибровок, контроля качества и, что очень важно, с учетом стабильности реактива на борту. В современных анализаторах реактивы хранятся в охлаждаемых модулях анализатора, и каждый реактив после вскрытия обладает определенной стабильностью на борту, то есть временем, в течение которого реактив будет качественно работать. В зависимости от используемой фасовки реактивов и потока по этому виду исследований лаборатория успевает использовать разное количество реактива во флаконе до истечения его срока стабильности.

Программа также высчитывает расход промывочного раствора, стоимость калибраторов для проведения всех тестов, в том числе и на специфические белки и иммунохимию, требующих отдельных калибраторов. Все эти затраты включаются в итоговую себестоимость теста.

Однако до сих пор в большинстве КДЛ управление себестоимостью лабораторных исследований осуществляется на основе традиционной калькуляции полной себестоимости по данным бухгалтерского учета. Причина этого понятна: в условиях ручного учета иная, более оперативная технология контроля за себестоимостью трудноосуществима, поскольку сбор, регистрация и обработка данных производятся слишком медленно. Но даже и с применением компьютерных систем, позволяющих автоматизировать процесс решения локальных задач бухгалтерского и оперативно-технического учета, качественно улучшить технологию управления себестоимостью часто оказывается невозможным. Дело в том, что при внедрении подобного рода «лоскутных» программных систем обычно консервируется фактически сложившаяся до автоматизации неэффективная технология решения задач. Традиционно в коммерческих КДЛ плановый отдел в начале каждого периода формирует оценку плановой себестоимости, во многом исходя из нее формируются бюджет КДЛ, политика продвижения лабораторных услуг, цены на исследования, определяется порядок взаимоотношений с поставщиками реактивов и расходных материалов. Фактические же оценки могут быть получены только по завершении учетного периода, что предопределяется классической цикличностью работы бухгалтерии, то есть реальный контроль в течение периода не осуществляется. Именно поэтому бывает трудно вовремя оценить фактические затраты, и при низкой рентабельности в результате колебаний цен на реактивы и расходные материалы может возникнуть ситуация, когда выручка от реализации определенных видов анализов не покрывает себестоимости их производства.

На самом же деле ЛИС способны дать существенно больший эффект при решении задач управления себестоимостью анализов. Благодаря оперативности процедур обработки данных может быть изменен сам характер технологии контроля за ней. Однако для этого ЛИС должна комплексно увязывать процедуры обработки массивов плановой и фактической информации, формируемые в разных подразделениях системы управления КДЛ. Программные средства, ориентированные исключительно на решение учетных задач, такой взаимоувязки обеспечить не могут. Именно поэтому их внедрение не дает того эффекта, на который потенциально способны ЛИС. А ведь во многом именно благодаря им в КДЛ развитых стран вся цепочка «сбыт-производство-реализация» работает, как часы. И там не жалеют средств на внедрение компьютерных систем организационно-экономического управления, видя в них важный резерв повышения эффективности работы КДЛ. Достаточно сказать, что, по данным многих аналитиков, спрос на специалистов по внедрению сложных систем комплексной автоматизации управления огромен и продолжает расти. Каким же образом может быть реализована эффективная технология управления себестоимостью? Основа продуктивного подхода к этой проблеме - ориентация на полнофункциональную комплексную систему автоматизации управления, связывающую все подразделения КДЛ в единый организм и реализующую концепцию единого информационного пространства лаборатории.

Такая система, во-первых, должна развернуто поддерживать решение задач планирования себестоимости по всем или большинству основных видов лабораторных анализов. Реалистичная оценка себестоимости в сопоставлении с тарифными ценами на нее является отправной точкой для определения спектра лабораторных исследований. Уже здесь можно выявить те позиции, по которым нужно осуществлять наиболее пристальный контроль, задуматься о правильности выбора поставщиков, взаимозаменяемых материалов. Эти оценки, естественно, должны базироваться на фактических учетных показателях, но и не замыкаться полностью на них. Именно поэтому ЛИС и ее подсистемы должны предоставлять инструменты прогнозирования поведения важнейших составляющих себестоимости с учетом существующих рыночных тенденций. Мы специально говорим о возможностях ЛИС по выполнению подобного рода расчетов, поскольку при получении большого числа перспективных оценок затрат реактивов и расходных материалов не всегда можно полагаться только на оценки специалистов КДЛ, полученные методом пристального внимания. Тут, что называется, легко попасть пальцем в небо.

Во-вторых, необходим постоянный мониторинг как фактической, так и плановой себестоимости исследований. К примеру, в ЛИС мониторинг плановой себестоимости может быть реализован за счет увязки нормативных данных о потребности в реактивах, контрольных материалах, калибраторах, расходных материалах в расчете на каждый вид лабораторных анализов, запланированных объемов производства и цен ресурсов. На основе этой информации постоянно проводятся оценка плановой себестоимости исследований и мониторинг уровня затрат по данным о фактическом объеме их производства. При изменении стоимости затрат производится пересчет плановой (прогнозной) себестоимости анализов, основанный на нормативах ресурсоемкости каждого вида исследований, с учетом фактически произведенных исследований и уровня текущих запасов каждого вида ресурсов. Без использования комплексной автоматизированной системы управления выполнение подобного рода оперативных расчетов практически неосуществимо вследствие высокой трудоемкости.

За счет отслеживания динамики стоимости затрат на производство анализов ЛИС в состоянии автоматически проводить пересчет прямой себестоимости исследований на каждый день. Эта информация может быть дополнена оценочными данными по накладным расходам, что дает возможность получения оценки полной себестоимости, которая складывается в результате функционирования КДЛ на текущий момент. Благодаря наличию таких оценок создаются предпосылки для оперативной корректировки планов по производству исследований и согласования цен с их заказчиками. Немаловажно и то, что контроль за изменениями плановой себестоимости может позволить вовремя задуматься о перспективности перехода к использованию иных технологий в КДЛ в случае их взаимозаменяемости.

Комплексная ЛИС позволяет повысить и оперативность мониторинга фактической себестоимости исследований. В отдельно взятой бухгалтерской программе, при необходимости многоаспектного анализа затрат (по видам выпускаемых исследований, подразделениям КДЛ, элементам затрат, заказам и т.д.), вся затратная аналитика привязывается к синтетическим счетам, и подготовкой соответствующей отчетности вынуждена заниматься бухгалтерия. Как уже говорилось ранее, в силу определенной цикличности решения бухгалтерских задач необходимая аналитическая информация обычно может быть получена только по прошествии определенного периода. В комплексной же ЛИС функции аналитического учета затрат для управления себестоимостью не скованы рамками технологии бухгалтерского учета.

Например, в ЛИС может быть создан модуль «Фактические затраты», который позволяет собирать и анализировать затраты в любых необходимых разрезах без привязки к бухгалтерским счетам. В этом случае в модулях бухгалтерского контура можно вести только ту аналитику, которая необходима бухгалтерии, например, для осуществления налогового учета, а детальный управленческий учет затрат можно вести в модуле «Фактические затраты», но аналитику, необходимую для налогового учета, не вести: там она не нужна. Это позволяет экономисту анализировать себестоимость исследований сразу по факту получения и вводу в систему первичной информации без необходимости ее обработки бухгалтерией, что дает возможность осуществлять контроль за соответствием фактических затрат плановым более оперативно. Еще раз обращаем внимание на возможность оперативного контроля соответствия нормативных затрат плановым. Его наличие позволяет сразу выявлять факты нерационального использования материальных ресурсов КДЛ, а то и прямые злоупотребления. Нужно отметить, что в комплексных ЛИС за счет применения специального инструментария информация оперативного мониторинга себестоимости сразу же может быть доступна коммерческому или финансовому директору КДЛ.

Третьим необходимым компонентом управления себестоимостью с помощью ЛИС является блок калькуляции полной фактической себестоимости исследований. Это достаточно традиционный компонент компьютерных систем учета. Система должна предоставлять возможность выполнения расчета полной себестоимости по различным методикам, в частности, с использованием различных баз распределения накладных расходов. Большинство тиражных ЛИС поддерживают только 2-3 самых распространенных метода. Однако опыт внедрения ЛИС показывает, что в разных странах управленческий аппарат КДЛ порой используют весьма сложные схемы распределения накладных расходов. Если программа не поддерживает нужного метода распределения, то бухгалтерия вынуждена выполнять расчет полной себестоимости вспомогательными средствами и потом переносить результаты расчетов в систему. В результате полная себестоимость калькулируется только по окончании периода. Опыт создания ЛИС позволил встроить в систему самые разные способы распределения. К тому же они являются настраиваемыми. Благодаря этому расчет полной себестоимости можно выполнять многократно в течение отчетного периода.

В заключение еще раз подчеркнем, что ключ к решению задачи эффективного управления себестоимостью - в применении полнофункциональной комплексной ЛИС, связывающей все участки учета в едином информационном пространстве.

4.7. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ И ВЫСТАВЛЕНИЕ СЧЕТОВ ЗА ВЫПОЛНЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Модуль ЛИС, значение которого в настоящее время трудно переоценить для КДЛ, - это модуль платежей. Для современных КДЛ наличие такого модуля в ЛИС не только обязательно, но и жизненно необходимо. Модуль должен обеспечивать регистрацию любого количества заказчиков, контрактов, счетов, цен на выполняемые тесты, денежных единиц (валют), тарифных планов. При определении правил работы по выставлению счетов заказчику КДЛ должна иметь возможность принять решение о выставлении счетов за услуги по проведению лабораторных исследований на любом этапе жизненного цикла образца. На рис. 4.14 приведена ситуация, когда счет за лабораторную услугу выставляется после авторизации пробы. Точно так же счет может быть выставлен на этапе регистрации пробы (например, выявлен гемолиз в пробе, и необходимо выставить счет за использованную вакуумную пробирку) или на этапе, когда введены все результаты по зарегистрированным тестам.

pic 0145
Рис. 4.14. Выставление счета за выполненные тесты

ЛИС должна обеспечивать множество схем выставления счетов в зависимости от статуса пациентов, форм платежа (наличные, по договору/контракту, частично наличными, а частично по договору), производить учет льгот, предоставлять накопительные скидки. Объектом для выставления счета являются проба, список тестов, вариация теста, отдельный результат, заключение. Гибкость и настраиваемость этого модуля ЛИС должна позволять решать сложные и порой противоречивые проблемы. Например, заказчик производит оплату наличными за набор тестов. В процессе ввода результатов тестов алгоритм тестирования должен настраиваться таким образом, чтобы на основании медицинских показаний назначать дополнительные тесты в случае, если при регистрации пациент согласился с предлагаемым алгоритмом, или в заключение о проведенном исследовании попадает запись о необходимости проведения дополнительных тестов.

Знания себестоимости исследований, без совместного анализа со спектром оказываемых лабораторией услуг и их продажной стоимости, недостаточно для полноценного управления доходами лаборатории. ЛИС существенно расширяет возможности КДЛ по ведению финансового учета и управления доходами. Например, в доходной части ЛИС «Рослабсистема»:

  • поддерживает множественные источники дохода лаборатории, в том числе одновременный учет услуг как по прейскурантам платных услуг, так и по бюджетным и страховым классификаторам;

  • поддерживает разные категории заказчиков, позволяя сформировать полностью индивидуальные условия расчета стоимости оказанных услуг для каждого заказчика;

  • обеспечивает гибкую работу с повторными исследованиями и дополнительным заказам и отмене услуг;

  • обеспечивает гибкую работу по дисконтным картам и скидкам для пациентов и учреждений;

  • обеспечивает разнообразные виды контроля на этапе регистрации заказа, в том числе контроль Ф.И.О. пациента, идентификаторов заявки и заказчика, назначаемых и выполненных услуг, соответствия назначаемых услуг правилам оплаты.

Практическое решение приведенных возможностей в ЛИС «Рослабсистема» реализовано за счет наличия множества модулей, таких как:

  • модуль «Услуги»;

  • модуль «Прайс-листы»;

  • модуль «Категория оплаты»;

  • модуль «Заказчики»;

  • модуль «Журнал счетов».

Все эти функции доступны без поддержки дополнительных систем, при этом все данные могут быть экспортированы во внешние системы.

Для предотвращения претензий и контроля деятельности сотрудников все данные, которые вводятся в систему, протоколируются. Протоколы доступны для просмотра администратору системы.

Рассмотрим более детально возможности ЛИС «Рослабсистема» по учету услуг, так как этот модуль служит основным источником информации других аспектов доходной части.

Как правило, лаборатория оказывает несколько категорий услуг, в том числе услуги, оплачиваемые по ОМС, из бюджета, добровольной медицинской страховки, платные. Каждая из этих категорий имеет свой порядок учета.

К основным возможностям учета услуг, реализованных в ЛИС «Рослабсистема», относятся:

  • учет услуг, оказываемых частным лицам, регистрация договоров с частными лицами, ведение кассы и управление фискальным регистратором;

  • учет услуг, оказываемых корпоративным клиентам, выставление счетов (актов, выполненных работ, счетов-фактур) и контроль оплаты;

  • построение разнообразной отчетности по оказанным и заказанным услугам.

Порядок назначения услуги необходимо контролировать, чтобы исключить неверно назначенные услуги, в частности, ошибочно назначенные врачом, или услуги, не выполняемые для этого типа пациентов или лечебных учреждений. Для этого необходим контроль прайс-листов, заказчиков, ЛПУ, пациентов и номеров страховых компаний.

Также нужно контролировать порядок оказания услуги, в частности, авансом с оплатой по факту оказания (как правило, для корпоративных) или же оказание услуги после оплаты (для частных пациентов). Порядок начисления оплаты при этом тоже требуется контролировать - скидки, категории оплаты.

В системе предусмотрен гибкий встроенный OLAP-механизм для построения многомерных отчетов со сложной группировкой данных. Также в системе существует набор стандартных отчетов и документов для печати.

Отчеты сопровождаются графическим представлением, делающим возможным визуальную оценку тенденций развития лаборатории. На рис. 4.15-4.17 приведены примеры отчетов, которые можно получить в ЛИС «Рослабсистема».

При отсутствии информационной системы выставление счетов заказчикам - довольная трудная задача. ЛИС «Рослабсистема» поддерживает выставление счетов в любой необходимой для заказчика форме (бумажной, электронной). На рис. 4.18 представлена одна из форм счета на оплату по выполненным лабораторным услугам.

Экономические аспекты деятельности приобретают все более важное значение для современных КДЛ. Во многом экономическая эффективность КДЛ на современном этапе реформирования здравоохранения является основой самого существования лабораторий. Без всесторонней информатизации этих аспектов деятельности КДЛ не смогут конкурировать за рынок лабораторных услуг.

pic 0146
Рис. 4.15. Отчет по оказанным услугам для пациентов
pic 0147
Рис. 4.16. Отчет по услугам, оказанным для лечебно-профилактических учреждений
pic 0148
Рис. 4.17. Отчет по услугам, оказанным разными подразделениями. Табличный вид
pic 0149
Рис. 4.18. Счет на оплату по выполненным услугам

4.8. ИНФОРМАТИЗАЦИЯ И ТРЕБОВАНИЯ ПО БЕЗОПАСНОСТИ

Современная ЛИС должна обеспечивать как безопасность баз данных и пользовательских функций, так и конфиденциальности данных клиента и результатов исследований. Каждый пользователь ЛИС должен иметь строго определенные полномочия по работе только с определенными группами данных в ЛИС - это важнейшее требование по безопасности. В итоге пользователь имеет возможность выполнять разрешенные ему функции только с теми данными, к которым он допущен. При разработке ЛИС необходимо предусмотреть механизм ролей каждого пользователя, что в дальнейшем значительно упрощает работу по настройке безопасности данных и разграничении доступа пользователей. Не менее важно предусмотреть возможность поддержки требований к электронным записям и электронным подписям. При необходимости использования в ЛИС электронной подписи пользователь должен всегда получать запрос на ввод пароля при сохранении данных. Сохранение данных возможно только при вводе правильного пароля. Если вводится неправильный пароль, данные не должны сохраняться, и система должна генерировать уведомление для системы безопасности.

Особое внимание необходимо обратить на конфиденциальность данных клиента и результатов исследований. Доступ к этим данным должен быть строго определен и подвергаться постоянному контролю.

В конечном итоге современная ЛИС должна поддерживать взаимодействие со множеством модулей, обеспечивать интеграцию информационных потоков и решаемых КДЛ задач в целях:

  • оптимизации технологий производственных операций;

  • определения соответствующей производственным процессам организационно-штатной структуры лаборатории;

  • интеграции систем автоматизации с учетом имеющихся в лаборатории программных и аппаратных средств;

  • реализации стратегии развития информационных технологий, создающих единое информационное пространство лаборатории;

  • обеспечения конфиденциальности данных клиента и результатов исследований;

  • повышения качества управления КДЛ, основанного на технологиях, обеспечивающих управление ресурсами, финансами, производством, материально-техническим снабжением, сбытом, персоналом, курьерской службой и др.;

  • получения руководством оперативной и достоверной информации для анализа финансово-хозяйственной деятельности лаборатории, прогнозирования развития ситуации;

  • обеспечения статистической информацией по всем точкам контроля и управления;

  • объединения данных, полученных от различных систем в единой базе данных, что позволяет иметь одноразовый ввод информации и многократное ее использование разными пользователями на различных уровнях управления.

Таким образом, информатизация современной лаборатории не ограничивается установкой ЛИС для обеспечения технологических процессов производства результатов лабораторных анализов, но также включает внедрение определенной совокупности информационных подсистем окружения, поддерживающих различные бизнес-процессы.

4.9. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К ИНФОРМАТИЗАЦИИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

Конфигурация ЛИС для каждой конкретной лаборатории во многом зависит от структуры КДЛ, ее расположения, оснащенности приборами и анализаторами, а также объема выполняемых исследований. В связи с этим необходимо определить основные принципы или требования к ЛИС.

  1. При информатизации лаборатории важно обращать внимание на соответствие внедряемой системы как отечественным, так и международным требованиям и стандартам лабораторной практики. Важными моментами являются возможность анонимного проведения исследований в целях обеспечения одинаковых условий тестирования всех поступающих материалов и сохранение медицинской тайны, а также максимально полная фиксация сведений об исполнителях и манипуляциях, проведенных с поступившим в лабораторию материалом.

  2. ЛИС должна быть открытой для администрирования пользователем для внесения справочной информации (учреждений заказчиков, новых методов исследования, референтных величин и т.д.).

  3. ЛИС должна быть доступной для МИС, то есть врачи-клиницисты должны иметь возможность получать результаты лабораторных исследований в компьютерном варианте, а специалисты лаборатории - дополнительную информацию о пациенте.

  4. Особое внимание необходимо уделять надежности функционирования ЛИС, защищенности ее от сбоев в работе и способности к самовосстановлению, а также организации резервного копирования данных с использованием магнитооптических или лазерных дисков.

  5. Иметь систему гарантийного обслуживания, направленную на устранение ошибок в программном обеспечении и оборудовании ЛИС, и послегарантийного обслуживания системы, включающего добавление по согласованию с заказчиком новых функций и рабочих мест, контроль и профилактику работы системы, оперативное устранение возможных сбоев.

Типичные функциональные возможности ЛИС приведены в табл. 4.2.

Таблица 4.2. Типичные функциональные возможности лабораторной информационной системы
Типичные функции/ модули Лис Характеристика

Прослеживание проб

Эта функция позволяет лабораториям прослеживать прохождение проб через различные технологические процессы и операции производства анализов в лаборатории с машинно-генерируемым уникальным типовым идентифицирующим номером и обеспечивает законченный ряд по сохранности информации

Ввод данных

Функция ввода данных позволяет специалистам лаборатории вводить результаты в ЛИС и предписывать процедуры контроля качества, отсылать результаты анализов клиентам через факс, электронную почту или копию на бумаге

Управление пробами и назначениями

Автоматически регистрирует пробы и назначенные тесты, печатает штрихкоды и распределяет задания по анализаторам и рабочим местам

Контроль и управление качеством

Эта функция позволяет пользователям генерировать контрольные карты, регулярность проведения контроля качества, просматривать принятые меры по выявленным отклонениям. Контрольные карты могут включать бланки, дубликаты, идентификаторы объектов, стандарты и т.д.

Электронная передача данных

Эта особенность позволяет автоматически передавать данные от аналитической аппаратуры в ЛИС. Эта функция увеличивает производительность и уменьшает вероятность ошибок

Учет реактивов и расходного материала

Функциональная возможность, которая прослеживает закупки и использование запасов в лаборатории и управляет партиями и номерами заказов, сроками годности, затратами и т.д., помогает в управлении поставками

Управление персоналом и оборудованием

Особенность, которая позволяет пользователям прослеживать обучение специалистов лаборатории, а также прослеживать калибровку инструментов, ремонты, затраты, тенденции и т.д.

Обслуживание

Функция, которая позволяет системному администратору управлять базой данных, следя за клиентскими списками, персоналом, исследованиями, методами, параметрами, разрешениями, приоритетами и т.д.

В соответствии с приведенными принципами и возможностями должна строиться информатизация конкретной лаборатории. При этом можно остановиться на варианте приобретения готовой ЛИС как зарубежного (например, ILIMS производства компании ORSYS Ltd., Израиль), так и отечественного производства (например, лабораторная информационная система «РосЛабСистема», многофункциональная система автоматизации лабораторных исследований Altey Laboratory научно-производственного объединения «АЛТЭЙ», программно-аппаратный комплекс MEDAP фирмы «БиоХимМак», «ВИДАР» и др.), или разработать собственную ЛИС силами лечебного учреждения. В каждом конкретном случае выбор системы ЛИС определяется потребностями лечебного учреждения, его материальными и интеллектуальными возможностями, географическим положением, с тем чтобы обеспечить выполнение основных требований к ЛИС.

Необходимо отметить, что в настоящее время готовые ЛИС различных компаний достигли такого высокого уровня, что создать собственную многофункциональную ЛИС, отвечающую требованиям времени и современной КДЛ силами ЛПУ, практически невозможно. Именно поэтому для реального решения проблем КДЛ ЛИС необходимо приобретать. Однако при выборе ЛИС важное значение имеют ее конкретные возможности. При оценке этих параметров необходимо исходить из того, что важнейшими возможностями информационно-управляющей системы для лаборатории являются:

  • возможность поддержки интерфейсов с лабораторным оборудованием и устройствами автоматизации;

  • возможность использования систем идентификации проб;

  • модульность и гибкость при настройке пользователем прикладной части;

  • возможность применения технологий рабочих потоков для организации эффективной вычислительной среды в лаборатории;

  • использование баз данных алгоритмов для настраиваемой пользователем автоматизированной интерпретации результатов лабораторной диагностики;

  • поддержка интерфейса с клинической информационной системой (информационной системой всего учреждения).

В целом ЛИС должна обеспечивать движение потоков информации на всех этапах технологических процессов производства анализов - от регистрации пациента и полученного биоматериала до выдачи результатов исследований.

ЛИС должна отслеживать статус биоматериала и выполняемых лабораторных тестов на всех технологических операциях. Информация о статусе пробы и тестов необходима как для мониторинга выполнения задания, так и для организации рабочих потоков в ЛИС.

Покупая коммерческое изделие или заказывая разработку ЛИС сторонней фирме, необходимо в первую очередь учитывать репутацию фирмы (ее надежность) и наличие у нее опыта по разработке или внедрению аналогичных проектов. Нужно поинтересоваться количеством внедрений в действующих медицинских учреждениях, а также прислушаться к мнению уже работающих пользователей системы (врачей, руководителей), чтобы иметь четкую информацию о ее достоинствах и недостатках, а также объеме необходимых доработок для настройки системы под конкретные условия функционирования. Приобретение ЛИС, работающей, пусть даже успешно, всего лишь в одном медицинском учреждении, неизбежно приведет к дополнительным непредвиденным расходам.

Для оценки пригодности той или иной системы к использованию нужно провести сравнение ряда известных характеристик информационных систем, описанных в табл. 4.3.

Таблица 4.3. Критерии оценки лабораторной информационной системы
№ п/п Критерий Характеристика

1

Стоимость

Данный критерий вынесен на первое место, так как в любой ситуации требование минимизации затрат на внедрение ЛИС из общих соображений экономии финансовых ресурсов всегда должно приниматься во внимание. Финансовые ресурсы, зарезервированные для приобретения ЛИС, уже нельзя будет использовать для удовлетворения других нужд медицинского учреждения. Однако следует помнить, что ЛИС не может быть дешевой. Стоимость системы напрямую зависит от значений остальных показателей

2

Полнота охвата функций клинико-диагностической лаборатории и других подразделений лечебного учреждения

Определяет сумму дополнительных затрат, необходимых для включения в работу с системой всех подразделений лаборатории и других подразделений лечебного учреждения

3

Количество внедрений

Данный показатель свидетельствует о степени приемлемости программного обеспечения для использования врачами, а также о наличии у разработчика опыта работы с медицинскими приложениями

4

Открытость и настраиваемость

Определяет возможность поддержки работы системы собственными силами, без привлечения поставщика или разработчиков, а также возможность интеграции с другими информационными системами без существенной доработки

5

Платформа, стоимость системы управления базами данных и комплекса технических средств

Данная характеристика напрямую связана со стоимостью системы и ее сопровождения в будущем. Платформа (операционная среда), на которой функционирует система, определяет также возможность использования имеющихся в наличии технических средств и объем дополнительных затрат на их модернизацию или приобретение новых. Наиболее дешевыми и простыми в обслуживании являются информационные системы для платформ IBM PC, MS DOS, WINDOWS и NOVELL. Более дорогими и требовательными к наличию высококвалифицированных кадров являются системы, разработанные для RISC-платформ, UNIX, VAX/VMS. Наиболее целесообразно приобретать систему, способную функционировать на нескольких платформах.

В этом случае с развитием комплекса технических средств не надо будет ставить вопрос о замене программного обеспечения информационной системы. Стоимость системы управления базами данных обычно включается в стоимость информационной системы. Чем выше класс системы управления базами данных, тем выше ее стоимость

6

Сроки внедрения

Характеризует степень владения поставщика (разработчика) предметной областью и период времени, необходимый для оценки результатов внедрения

7

Стоимость сопровождения

Определяет размер финансовых средств, которые необходимо зарезервировать в будущем для поддержки работы информационной системы

8

Локализация (язык)

Неспособность системы «разговаривать» на родном языке всегда было и есть одним из важных аргументов против использования зарубежных разработок, так как согласование схем кодировки информации и ее представление в системе может потребовать дополнительных расходов и привлечения высококвалифицированных трудовых ресурсов. Особенно это важно для систем, функционирующих на платформах UNIX, где проблемы локализации традиционно трудноразрешимы

Применение перечисленных в табл. 4.3 критериев выбора информационной системы требует использования так называемого ситуационного подхода, то есть значимость (вес) каждого критерия во многом определяется обеспеченностью конкретного проекта информатизации лечебного учреждения финансовыми и трудовыми ресурсами.

КДЛ находятся в сфере информационного бизнеса, предлагая на рынке лабораторную информацию. Те КДЛ, которые смогут поставить своим клиентам качественную информацию, станут лидерами на рынке. Перед выбором ЛИС важно иметь ясное понимание, каковы в точности требования вашей лаборатории по организации данных в дополнение к выгодам, которые ваша лаборатория может ожидать от ЛИС.

Глава 5. АВТОМАТИЗАЦИЯ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ПРОИЗВОДСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Компьютеры, ЛИС и анализаторы - это те технологические достижения, которые широко применяют в лабораториях как для выполнения большого объема исследований, так и для правильной их интерпретации. Лабораторная автоматизация является новым направлением развития технологий для здравоохранения.

В соответствии с данными мировой статистики, на протяжении последних десятилетий число клинических лабораторных исследований экспоненциально возрастало, причем этот рост продолжается. Важность внедрения в современный лечебно-диагностический процесс ЛИС и систем лабораторной автоматизации подтверждается тем, что лаборатория занимает большую часть в структуре диагностических исследований пациента как по количеству исследований, так и по клинической значимости результатов тестирования.

Системы и устройства лабораторной автоматизации во всех лабораториях мира стали более широко использоваться. Процессу распространения лабораторных автоматизированных систем (ЛАС) способствуют как развитие современных технологий, так и требования снижения стоимости медицинского обслуживания.

5.1. ПОДХОДЫ К ОПРЕДЕЛЕНИЮ ОБЪЕКТА ДЛЯ АВТОМАТИЗАЦИИ В ЛАБОРАТОРИИ

Использование возможностей анализаторов для автоматизации процесса производства анализов, повышения качества результатов исследований, снижения расходов на их выполнение хорошо известны и активно применяются в КДЛ. Свыше 80% объема гематологических и биохимических тестов в настоящее время можно выполнить полностью в автоматическом режиме. Значительные успехи достигнуты и в автоматизации бактериологических и молекулярно-генетических исследований. Вместе с тем единый технологический процесс производства лабораторных анализов включает целый ряд процедур, связанных со взятием проб крови, технологической операцией подготовки биоматериала к исследованиям, которая состоит из снятия крышек с приспособлений, в которых находится биоматериал, центрифугирования проб, приготовления и окраски мазков; дополнительной сортировкой и доставкой подготовленных проб на частные технологические процессы исследований. Автоматизация и стандартизация перечисленных процедур имеет не менее важное значение в работе по непрерывному повышению качества результатов лабораторных исследований, чем автоматизация технологического процесса их выполнения на анализаторах.

Повышенное внимание к автоматизации в клинических лабораториях связано с необходимостью оптимизации затрат на здравоохранение (в том числе затрат на лаборатории), с желанием уменьшить количество лабораторных ошибок и обеспечить безопасность пациентов и медицинских специалистов. Использование автоматических интегрированных технологий вместо повторяющихся ручных операций, которые подвержены ошибкам в процедурных кабинетах и лабораториях, является одним важным инструментом для уменьшения ошибок, возникающих на преаналитическом этапе.

Лотки для автоматизированной подготовки вакуумных пробирок к флеботомии, автоматические конвейерные ленты, пневматические системы доставки проб в лабораторию и другие инновационные роботизированные устройства для стандартизации, упрощения и ускорения процедур сбора и транспортировки образцов в настоящее время широко применяются в лабораториях.

Правильная идентификация пациента и маркировка вакуумных пробирок перед флеботомией крайне важны для безопасности пациентов. Автоматизированные системы для подготовки вакуумных пробирок к забору крови медицинским персоналом были внедрены в начале 1990-х гг.

Станции автоматической подготовки штативов (лотков) с необходимыми вакуумными пробирками для флеботомии с большим успехом используются в Японии и Европе. Такие станции обеспечивают автоматическую подготовку полного набора промаркированных вакуумных пробирок для взятия проб крови и этикеток для ручной маркировки в одном штативе для каждого пациента в соответствии с назначениями врача. Таким образом, устраняется утомительная работа и опасность ошибок, связанных с приготовлением необходимого набора вакуумных пробирок для взятия проб крови вручную.

Среди производителей станций для автоматической подготовки набора промаркированных вакуумных пробирок следует отметить различные системы компании Olympus:

  1. BC-ROBO mini 20 - система с одним лотком и пропускной способностью до 150 пациентов в час;

  2. BC-ROBO mini 40 - мультилотковая система с пропускной способностью до 150 пациентов в час;

  3. BC ROBO 585 - система с несколькими лотками и пропускной способностью до 300 пациентов в час; RADIM - система смешанных лотков SprintLab, производительность - 150 пациентов в час (с четырьмя пробирками); «Бектон Дикинсон» - система с несколькими лотками EOS Lab.E.L.® 8.

  4. BC-ROBO-8000 RFID - это новейшая модель системы подготовки вакуумных пробирок с опцией радиочастотной идентификацией (RFID) пациентов в сочетании с одним или несколькими считывателями штрихкода (рис. 5.1).

pic 0150
Рис. 5.1. Система подготовки вакуумных пробирок BC-ROBO-8000 RFID

Компания «Бектон Дикинсон» производит станции с несколькими лотками EOS Lab.E.L.® 8 (пропускная способность - до 308 пациентов в час) и многолотковую систему EOS Lab.E.L.® 16 (пропускная способность - до 308 пациентов в час).

Использование станций для автоматической подготовки набора промаркированных вакуумных пробирок дает следующие преимущества:

  1. сводит к минимуму влияние фактора человеческой ошибки, поскольку все вакуумные пробирки предназначены для каждого конкретного пациента и находятся в отдельном штативе;

  2. экономит время по наклеиванию штрихкода на вакуумные пробирки;

  3. предотвращает сбои при считывании штрихкода на анализаторах, так как наклеивание их проводится автоматически, а не вручную;

  4. позволяет использовать почти все виды вакуумных пробирок, представленные на рынке, диаметром от 12 до 16 мм и длиной от 75 до 100 мм.

Применение средств автоматизации на этапе технологической операции подготовки биоматериала к исследованиям позволяет увеличить производительность труда, снизить риск инфицирования персонала лаборатории, уменьшить финансовые расходы на реактивы, разовый материал, стандартизировать подготовку биоматериала и тем самым повысить качество результатов исследований.

На рис. 5.2 представлены данные по стоимости различных стадий обработки проб в общей стоимости анализа (данные консалтинговой компании Miles Diagnostics) (Kost G.J., 1996). При построении диаграммы учитывалось, что назначение врачом исследования и взятие пробы предусматривают забор пробы у пациента, регистрацию пациента и пробы (процедура регистрации), а также транспортировку пробы в лабораторию. Подготовка пробы включает стоимость не только ввода информации, сортировки, дозирования порции проб (деления), центрифугирования, но и необходимых расходных материалов. Интерфейс с лабораторным анализатором предполагает создание рабочей таблицы загрузки анализатора, передачи ее в прибор и получение результатов исследования от прибора. Выполнение исследования на автоанализаторе включает капитальные затраты на приобретение оборудования, реагенты, контрольные и повторные исследования. Выдача результатов предусматривает суммарную стоимость архивирования, перемещения и передачи результатов лабораторного исследования.

pic 0151
Рис. 5.2. Доля различных технологических процессов в общей стоимости анализа

Распределение времени на выполнение различных технологических операций при лабораторном исследовании представлено на рис. 5.3. Прием проб охватывает время от взятия (сбора) пробы у пациента до момента, когда проба получена в лаборатории. Предварительная обработка проб суммирует время, необходимое для выполнения различных процедур с пробой перед проведением собственно исследования на анализаторе, то есть сортировка, разлив пробы во вторичные пробирки, центрифугирование и т.д. Исследование на анализаторе включает время от загрузки пробы в анализатор до получения аналитического результата. Просмотр - это время, требуемое для подтверждения лабораторного результата (включая усредненное время на проверку результатов контрольных исследований). Создание компьютерной записи - время, необходимое для того, чтобы подтвержденный результат был введен в ЛИС. Передача результатов - это время, необходимое для информирования врача о результатах лабораторного исследования либо с помощью документа, либо по телефону, либо через компьютерную систему.

pic 0152
Рис. 5.3. Распределение времени на проведение исследования (Godolphin W. et al., 1990)

Анализ приведенной круговой диаграммы показывает, что значительную часть времени - 57% (20% прием проб + 37% регистрация, подготовка проб) занимают процедуры, входящие в преаналитический этап лабораторного тестирования. Таким образом, наибольшую эффективность дает использование устройств и систем автоматизации на пре-аналитическом этапе тестирования (Schoeny D.E., Rollheiser J.J., 1991).

На рис. 5.4 представлены результаты оценки сложности процедур, проводимых в лабораториях (данные компании Boehringer Mannheim). Сложность стадий обработки проб оценивалась по шкале от 0 - минимальная трудность до 1 или 2 - наибольшая трудность.

pic 0153
Рис. 5.4. Степень сложности технологических операций выполнения лабораторных исследований (Kost G.J., 1996)

Таким образом, наиболее значима (и сложна) автоматизация следующих технологических операций единого технологического процесса производства анализов:

  • транспортировка проб в лабораторию;

  • получение, регистрация и проверка проб;

  • сортировка;

  • центрифугирование;

  • снятие крышек (с моноветт, вакутейнеров) - вскрытие проб;

  • деление проб (из первичной пробирки во вторичные);

  • подготовка на приборе.

Приведенная диаграмма также подтверждает вывод о том, что первоочередной задачей при автоматизации процедур в лаборатории является автоматизация преаналитического этапа единого технологического производства - технологической операции подготовки доставленного биоматериала к исследованиям.

Использование автоматизированных преаналитических роботизированных рабочих станций эффективно сокращает трудозатраты, связанные с обработкой образцов, и снижает количество лабораторных ошибок, возникающих при сортировке, маркировке и аликвотировании проб.

Перед тем как выбрать преаналитическую автоматизированную рабочую станцию, заведующий лабораторией должен определить конкретные цели в области качества:

  1. избежать ошибок, требующих взятия новой пробы;

  2. уменьшить объем пробы;

  3. обеспечить надежную идентификацию пациента и пробы;

  4. отслеживать пробу на протяжении всего процесса выполнения исследований;

  5. добиться эффективного сохранения проб;

  6. повысить инфекционную безопасность специалистов лаборатории;

  7. минимизировать трудовые затраты и количество используемых пробирок.

В экономическом плане эффективность автоматизации оценивается с учетом количества проб в день, поступающих в лабораторию, при которой достигается точка финансовой безубыточности работы лаборатории. К автоматизации не следует приступать, если количество проб, ежедневно получаемых лабораторией, ниже точки безубыточности. Если количество проб, которые поступают в лабораторию ежедневно, выше точки безубыточности, то автоматизация оправдана.

Современные преаналитические станции могут автоматически проверять вакуумные пробирки с пробами, штрихкодировать, центрифугировать, снимать крышки, сортировать, проверять объем образца, обнаруживать сгустки, создавать и осуществлять вторичную маркировку пробирок, аликвотирование, сортировку по назначению в штативы анализаторов и в конечном итоге хранение проб. В преаналитических станциях могут быть представлены приведенные ниже компоненты (блоки) и возможности.

  1. Зона загрузки проб, или модуль загрузки, куда маркированные штрихкодом пробы загружаются в станцию. Этот блок способен разделять все пробы на не требующие подготовки к исследованиям и пробы, требующие центрифугирования или снятия крышки, по разным штативам или лоткам.

  2. Идентификация пробы. Все преаналитические станции способны считывать штрихкод пробы для идентификации пробы. Применяются два варианта идентификации пробы: 1) несколько линейных считывателей штрихкода и 2) радиочастотная идентификация (RFID) закрепленных на вакуумных пробирках носителей в сочетании с одним или несколькими считывателями штрих-кода. Решающее значение имеет надежность идентификации образца; когда образцы идентифицируются штрихкодами, важна чувствительность системы к качеству и ориентации этикеток со штрихкодом, а когда пробы идентифицируются с помощью радиочастотной идентификации, закрепленного на пробирках носителя, крайне важно предотвратить ручное извлечение пробирок из держателей для поддержания связи между штрихкодом пробирки и идентификацией пациента (носителем радиочастотного идентификатора-браслета). В некоторых системах есть несколько считывателей штрихкодов, размещенных в критических местах в системе обработки, для отслеживания образцов и предоставления информации для их правильной маршрутизации к различным станциям в системе обработки проб.

  3. Типы обрабатываемых вакуумных пробирок. Преаналитические станции различаются по способности обрабатывать различные размеры и типы вакуумных пробирок. В некоторых системах есть держатели для пробирок или штативы, которые могут работать с пробирками любого размера, но центрифуга, аликвотер и/или модуль для повторного закрывания пробирок могут не быть такими универсальными. В некоторых из этих систем с вакуумных пробирок большего размера необходимо снимать крышки или центрифугировать их вручную.

  4. Система транспортировки. Данная система представляет собой сегменты конвейерной ленты, которые перемещают пробы в транспортных контейнерах к соответствующему месту назначения. Некоторые контейнеры вмещают только одну пробу, в то время как другие могут содержать несколько проб.

  5. Устройство сортировки или маршрутизации. Оно разделяет пробы по коду заказа (виду лабораторного анализа), типу образца (например, по высоте пробирки или цвету крышки) или информации, полученной от устройства ввода (пункт 1), и направляет пробы на конвейерную ленту или стеллажную платформу.

  6. Автоматическая центрифуга. В модуле центрифугирования пробы снимаются с конвейера и помещаются в центрифугу. Емкость и функциональность каждой центрифуги различаются в зависимости от системы. Емкость центрифуги, размеры и типы предварительно подготовленных (например, предварительно центрифугированные, очищенные от крышек) пробирок, производительность и температура центрифугирования зависят от производителя преаналитической станции. Наличие механизма балансировки пробирок разного размера важно, потому что предварительная балансировка пробирок или размещение пробирок по отдельности в центрифуге может привести к задержке центрифугирования. Также важно учитывать количество доступных центрифуг, особенно в лабораториях с большим количеством проб.

  7. Блок оценки уровня и качества проб. В блоке используются датчики для оценки объема пробы в каждой пробирке и для выявления сгустков, гемолиза, липемии или желтухи. В некоторых системах оценка уровня и качества проб включена в основную систему автоматизации, а в других эти функции выполняют сопряженные анализаторы. Большинство систем аликвотирования могут измерять объем проб, а некоторые могут проверять наличие интерферирующих ингредиентов.

  8. Станция для снятия крышек. Данный модуль обеспечивает автоматическое удаление и сбрасывание в контейнер для отходов крышек с пробирок. В то время как большинство систем содержат приспособление для удаления колпачков, не все способны удалять крышки типа «Гемогард», резиновые пробки и/или винтовые колпачки.

  9. Аликвотер. Модуль, который отбирает аликвоты соответствующего объема из каждого исходного контейнера для пробы в соответствии с заявкой на анализы и помещает их во вторичные пробирки со штрихкодом. Большинство аликвотеров могут осуществлять определение уровня и обнаружение сгустков. Некоторые системы оптически регистрируют оставшийся в трубке объем пробы, уведомляя технолога лаборатории о наличии достаточного объема для анализа.

  10. Интерфейс с автоматическим анализатором. Прямое физическое соединение преаналитической станции с автоматическим анализатором позволяет пробозаборному зонду анализатора проводить аспирацию необходимого объема пробы непосредственно из открытой пробирки. В некоторых конструкциях преаналитической станции пробирка с пробой автоматически снимается с транспортного держателя станции и вставляется в анализатор.

  11. Блок доставки/сортировки проб. Данный блок может осуществлять сортировку аликвот (вторичных пробирок) и/или первичных пробирок. Сортировщик обычно разделяет пробы на разные группы на штативах или носителях. В некоторых системах для удобства штативы предназначены для определенных анализаторов.

  12. Станция повторной закупорки проб (перекаппер). Данный модуль в автоматизированной системе, с помощью которого пробирки с пробами автоматически закрываются новой пластиковой крышкой или термосвариваемой алюминиевой фольгой для подготовки к хранению. Не во всех преаналитических станциях имеется автоматизированный механизм для последующего снятия крышки с пробы для дополнительного тестирования.

  13. Модуль для временного хранения образцов до или после анализа. Данный модуль может быть таким же, как вышеописанный блок доставки/сортировки проб, причем пробы сортируются для ручной доставки на анализаторы или в архив.

Существующие преаналитические автоматические станции можно разделить на две группы:

  1. автономные независимые системы обработки проб, которые автоматизируют несколько преаналитических операций, но не транспортируют пробирки на конвейерную линию;

  2. преаналитические рабочие станции, напрямую взаимодействующие с системой полной автоматизации, которая объединяет все анализаторы.

Первый тип преаналитических автоматических станций используют при частичной автоматизации лаборатории, при которой автоматические преаналитические станции сортируют доставленные в лабораторию пробы и помещают их в штативы для ручной транспортировки на анализаторы для исследований. Они могут быть подходящим выбором для лабораторий с низким или средним ежедневным поступление проб, лабораторий с ограниченной площадью или лабораторий, требующих модернизации и оптимизации проведения исследований на различных анализаторах от разных производителей. Второй тип станций применяют при тотальной (полной) автоматизации производственных процессов в лаборатории.

В настоящее время на рынке представлено большое количество систем автоматизированной подготовки доставленного в лабораторию биоматериала к исследованиям. Так, станция подготовки проб фирмы Sarstedt позволяет проводить в автоматическом режиме регистрацию и проверку моноветт с кровью, считывая штрихкод, вскрывать моноветты (снимать крышки), разделять полученную при центрифугировании сыворотку или плазму во вторичные пробирки, при этом на вторичные пробирки копированием наклеивают штрихкоды, аналогичные таковым на первичных пробирках, и распределять их по технологическим процессам выполнения исследований (рис. 5.5). Станция подготовки проб фирмы «Sarstedt может быть подключена к клинической информационной системе. Тогда всю информацию о пациенте, включая его штрихкод, передают на станцию и с нее - на все анализаторы лаборатории. Поступившие в лабораторию образцы крови предварительно центрифугируют и затем в специальных штативах помещают в станцию. После подготовки образцов (разлива во вторичные пробирки) их могут автоматически переносить в автоанализаторы. Станция способна подготовить до 1000 моноветт в час. Фирма «Sarstedt может создавать станции подготовки проб любой конфигурации по желанию заказчика. Недостатком станции подготовки проб является отсутствие встроенной центрифуги.

pic 0154
Рис. 5.5. Станция подготовки проб HSS 1625 фирмы Sarstedt

Станция HSS 1625 представляет собой производительный и гибкий высокоскоростной сортер, который осуществляет автоматизацию следующих процедур:

  1. регистрацию проб;

  2. снятие крышек с пробирок (включая резьбовые крышки);

  3. сортировку пробирок в штативы анализаторов;

  4. надевание крышек (включая резьбовые крышки) на пробирки после анализов;

  5. установку пробирок в штативы для архивирования. Производительность станции составляет до 1200 пробирок в час.

Она не привязана к определенным типам штативов или рэков, а может работать с любыми исходными и целевыми штативами. Являясь открытой системой, HSS 1625 может быть подсоединена к любым аналитическим линиям или использоваться независимо от них. Система распознает пробы по штрихкодам и цветам крышек вакуумных пробирок, открывает пробирки, если это необходимо, и сортирует их в рэки анализаторов. После анализа пробирки в рэках анализаторов закрываются крышками и пересортировываются в штативы для архивирования.

Компания Roche разработала системы автоматизации для пре-аналитической обработки образцов в двух вариантах: cobas p 512 и cobas p 612 (рис. 5.6).

Преаналитическая система cobas p 512 дает возможность отслеживать все образцы и сократить ручные операции с помощью cobas IT-решений. Производительность cobas p 512 составляет до 1400 пробирок в час.

pic 0155
Рис. 5.6. Система автоматизации для преаналитической обработки образцов в cobas p 512

Окончательная производительность зависит от таких параметров, как объем аликвотирования и количество аликвот для каждой первичной пробирки.

Преаналитическая система cobas p 512 позволяет осуществлять:

  1. непрерывную загрузку пробирок;

  2. одновременную загрузку пробирок различных типов;

  3. приоритетную обработку срочных проб;

  4. регистрацию проб;

  5. комплексную оценку качества проб. Оценка качества проб проводится по пяти категориям, настроенным пользователем (хороший образец, легкий гемолиз, сильный гемолиз, липемия, иктеричность), с хранением снимка пробы;

  6. идентификацию типа пробирок по их размеру и цвету крышки (используется для перекрестного контроля типа пробирки с заказанными тестами и/или биоматериалом);

  7. определение уровня жидкости и вычисление объема пробы сквозь три слоя этикеток;

  8. определение качества центрифугирования проб;

  9. снятие крышек;

  10. одновременное снятие крышек с различных типов пробирок;

  11. процесс сортировки пробирок на основании настроенных правил, включая использование информации о качестве пробы для отбраковки проб;

  12. запечатывание пробирок.

Системы компании Beckman Coulter позволяют автоматизировать практически любой ручной этап рутинного анализа, значительно увеличив производительность лаборатории.

Для автоматизации пре- и постаналитической обработки проб компания предоставляет широкий спектр модулей серии AutoMate.

Система AutoMate 800 предназначена для средних и крупных госпитальных лабораторий с потоком от 500 до 1000 пробирок в день. Она позволяет осуществлять центрифугирование до 350 пробирок в час и сортировку до 700 пробирок в час. AutoMate 800 позволяет проводить:

  1. одновременную обработку рутинных и срочных проб крови с автоматической установкой приоритетности;

  2. уравновешивание, центрифугирование, загрузку/разгрузку встроенной центрифуги;

  3. сенсорное определение уровня сыворотки в пробирке;

  4. селективное удаление крышек с пробирок;

  5. аликвотирование для выполнения тестов - до восьми вторичных пробирок с нанесением штрихкода на каждую пробирку;

  6. возможность полного архивирования для хранения, повторного тестирования образцов и выполнения дополнительных тестов.

Лабораторная автоматизированная модульная система пре- и постаналитической обработки проб AutoMate 2500 (рис. 5.7) осуществляет только сортировку пробирок (представляет собой сортер) и обладает следующими возможностями:

  1. производительность составляет до 1200 пробирок в час, включая снятие крышек и сортировку;

  2. настраиваемые пользователем правила сортировки, снятия крышек и архивирования;

  3. распознавание всех распространенных форматов штрихкода;

  4. избирательное снятие крышек с пробирок всех распространенных типов, одновременная работа со снимающимися и закручивающимися крышками;

  5. настраиваемая область выгрузки (любые специфические штативы, смена конфигурации без остановки работы станции);

  6. программное обеспечение позволяет программировать и настраивать необходимые правила сортировки.

pic 0156
Рис. 5.7. Лабораторная автоматизированная модульная система пре- и постаналитической обработки образцов AutoMate 2500

Системы автоматизации AutoMate 1250 и AutoMate 2550 обладают не только возможностями системы AutoMate 800, но и позволяют осуществлять аликвотирование проб во вторичные пробирки с наклеиванием на них штрихкодов. Отличаются они друг от друга своей производительностью:

  1. AutoMate 1250 позволяет осуществлять сортировку 800 пробирок в час, AutoMate 2550 - 1200 пробирок в час;

  2. обе системы позволяют выполнить из одной пробирки до семи аликвот единовременно;

  3. производительность аликвотирования составляет для AutoMate1250 - 700 первичных пробирок в час, для AutoMate 2550 - 900 первичных пробирок в час.

Ведущее место в автоматизации преаналитического этапа производства лабораторных анализов в нашей стране занимают лабораторные автоматизированные модульные станции компании Beckman Coulter OLA. OLA - лабораторная автоматизированная модульная станция (рис. 5.8) для преаналитической и постаналитической обработки проб крови и другого биологического материала для последующего проведения лабораторных анализов. Она предназначена для выполнения таких операций, как:

  • первичная сортировка пробирок;

  • автоматическое удаление крышек пробирок;

  • нанесение на вторичные пробирки штрихкода и внесение аликвот анализируемого материала (в том числе в микропланшеты и другие емкости);

  • сортировка пробирок в штативы для анализаторов;

  • подготовка к архивированию пробирок.

pic 0157
Рис. 5.8. Станция подготовки проб OLYMPUS OLA

Лабораторная автоматизированная модульная станция OLA имеет три модуля загрузки образцов и может рассортировать до 1080 пробирок в штативы по более чем 20 направлениям. Производительность станции зависит от конфигурации и составляет:

  • OLA 2500 в стандартной конфигурации - 650 проб в час;

  • OLA 2500 с двойным сортировщиком - 1000 проб в час;

  • OLA 2500 удвоенная конфигурация - 1300 проб в час.

Технологическая линия компании Beckman Coulter в составе гематологического анализатора DxH 900 и системы приготовления и окрашивания мазков DxH SlideMaker Stainer II способна полностью в автоматизированном режиме подготовить образцы крови к исследованиям (приготовление мазков, их окраску) и выполнить полный общеклинический анализ крови с определением пяти популяций лейкоцитов.

В табл. 5.1 приведены типы и особенности преаналитических автоматических станций, которые используют для частичной автоматизации лабораторий, а в табл. 5.2 - для полной автоматизации.

Таблица 5.1. Типы и особенности преаналитических автоматических станций

Критерий Pathfinder MK2 Lab FLEX 2500 Auto-Mate? 800 Auto Sorter III HCTS 2000 MK3 OLA2500 High Speed Full Size System RSA Pro FE 500 PVS

Компания-поизводитель

AI Scientific

Aloka

Beckman Coulter

Moto-man

Mutt

Olympus

PVT

Tecan

Sarstedt

Возможности

Автоматическая сортировка

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Центрифугирование

Нет

Нет

Да

Да

Нет

Да

Да

Да

Нет

Автоматическое аликвотирование

Да

Да

Да

Да

Нет

Да

Да

Да

Да

Снятие крышек

Да

Да

Да

Да

Нет

Да

Да

Да

Да

Закрытие пробирок

Да

Нет

Нет

Да

Нет

Да

Да

Нет

Нет

Монитор качества пробы

Нет

Нет

Нет

Нет

Нет

Нет

Да

Нет

Нет

Таблица 5.2. Типы и особенности преаналитических автоматических станций, подключаемых напрямую к системе автоматизации

Критерий Acceleretor Open LA21 Module System (Clinilog III) Power Processor The Efficiency series Flexlab Modular Analytics Evo Stream-Lab Advia LabCell

Компания-производитель

Abbott

A&T

Beckman Coulter

iLAS

Inpeco

Roche

Sie mens

Sie mens

Возможности

Автоматическая сортировка

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Центрифуга

Да

Нет

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Автоматическое аликвотирование

Нет

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Нет

Снятие крышек

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Да

Закрытие пробирок

Да

Нет

Да

Да

Да

Да

Да

Нет

Монитор качества пробы

Нет

Нет

Да

Нет

Нет

Нет

Да

В анализаторах

Использование преаналитических автоматических станций для так называемой промежуточной автоматизации, когда эти системы сортируют пробы в штативы для ручной транспортировки к анализаторам, приводит к снижению затрат времени в среднем с 14,2±2,3 (без автоматизации) до 8,3±1,7 мин.

Преаналитические станции активно используются для автоматизации множества технологических операций и процедур при выполнении бактериологических и молекулярно-генетических исследований. Роботизированные системы, объединяющие в себе автоматизированный процесс микробиологического посева, приготовление мазка и пересев на твердые и жидкие питательные среды, находят все более широкое применение в бактериологических лабораториях. В настоящее время все большее количество тестов для диагностики инфекционных заболеваний проводится молекулярными методами (то есть анализом последовательности ДНК и РНК). Эта возрастающая нагрузка на молекулярную диагностику стимулировала разработку автоматизированных рабочих станций, которые выполняют выделение, как ДНК, так и РНК, приготовление реакционной смеси и их внесение в планшеты для анализа.

Таким образом, представленный анализ существующих подходов к автоматизации клинических лабораторных исследований показывает, что перед лабораторией открываются новые перспективы для стандартизации наиболее трудоемких технологических операций производства анализов, повышения производительности труда, качества результатов исследований и снижения финансовых затрат. Без активного внедрения достижений современных технологий в практику лабораторий невозможно добиться повышения качества результатов анализов.

Технологические линии, позволяющие автоматизировать технологические операции подготовки биоматериала к исследованиям и выполнение анализов, называют ЛАС. ЛАС - это комплекс программных и технических средств, предназначенных для автоматизации различных технологических операций, связанных с производством лабораторных анализов, при этом специалисты лаборатории являются звеном этой системы (в отличие от автоматической системы, функционирующей без участия человека).

ЛАС могут не только подготавливать доставленный в лабораторию биоматериал, но и транспортировать его к анализаторам. На рис. 5.9 представлен принцип организации системы транспортировки проб в ЛАС Clinilog корпорации A&T (в верхней части рисунка линия транспортировки для одного типа проб, в нижней - для различных типов проб).

pic 0158
Рис. 5.9. Принцип организации системы транспортировки проб в лабораторную автоматизированную систему Clinilog корпорации A&T

В настоящее время ЛАС могут включать устройства автоматического сбора доставленных проб, автоматические центрифуги, дозаторы порций проб, сканирующее устройство для идентификации проб по штрихкодам, пипетирующие установки, переносчики проб, моторизированные станции микроскопирования.

Для полной автоматизации технологического процесса производства анализов необходимо соединение системы подготовки проб и анализаторов с помощью конвейерной линии. На рис. 5.10 представлены возможные схемы соединения системы подготовки проб с лабораторными анализаторами.

pic 0159
Рис. 5.10. Соединение между системой транспортировки проб и лабораторными анализаторами: 1 - чтение штрихкода (идентификационный номер пробы или штатива с пробами); 2 - пробы, ожидающие обработку; 3 - анализируемые пробы; 4 - обработанные (проанализированные) пробы

Система транспортировки проб, или конвейерная линия, должна отвечать следующим требованиям:

  • иметь возможность создать любую конфигурацию и размещаться на стенах, полу или потолке;

  • состоять из модулей для облегчения сборки и ремонта;

  • вписываться в дизайн лаборатории;

  • работать бесшумно;

  • иметь гибкую программу функционирования;

  • отвечать требованиям техники безопасности.

Кроме того, система транспортировки проб должна работать как со стандартными, так и с нестандартными контейнерами для проб, обладать способностью быстро обнаруживать нужную пробу, если это необходимо.

Практическая реализация функциональности системы транспортировки проб - ключевой момент для успешной эксплуатации ЛАС.

Таким образом, в настоящее время автоматизация технологического процесса включает автоматизацию технологических операций подготовки биоматериала к исследованиям с помощью различных станций подготовки проб, которые связаны технологическими линиями доставки подготовленных проб к автоанализаторам, где непосредственно проводят исследования.

На рис. 5.11 приведена схема виртуальной системы транспортировки проб, технология которой экономически наиболее эффективна, так как исключается необходимость построения длинных по протяженности транспортировочных линий и функциональных петель для автоматического возврата проб при исследовании. Кроме того, технология виртуальных систем означает, что для загрузки проб в различные анализаторы, обеспечивающие выполнение лабораторных тестов, используется только одна физическая линия системы транспортировки проб (петли повторной обработки проб строятся внутри этой линии).

pic 0160
Рис. 5.11. Виртуальная система работы лабораторной автоматизированной системы (подготовка и транспортировка проб к анализаторам)

Основными целями внедрения ЛАС в практику лаборатории являются стандартизация технологических операций подготовки биоматериала к исследованиям, исключение контакта персонала с биоматериалом и увеличение производительности труда в лаборатории.

Эффективное внедрение систем лабораторной автоматизации невозможно без использования ЛИС. Этой точки зрения придерживаются все без исключения разработчики систем лабораторной автоматизации. Лаборатории должны внедрить в повседневную практику программное обеспечение процессов управления и анализа лабораторных данных для получения полной отдачи от систем лабораторной автоматизации.

Таким образом, лабораторную автоматизацию можно условно разделить на три составляющие:

  • программное обеспечение, то есть ЛИС с использованием технологий рабочих потоков (workflow) для организации эффективной информационной среды в лаборатории;

  • устройства, оборудование, приспособления (hardware) для подготовки доставленного биоматериала к исследованиям и сами автоанализаторы;

  • конвейерную систему или линию транспортировки проб, призванную соединить друг с другом автоматические устройства для различных технологических операций при производстве анализов.

5.2. РОЛЬ ЛАБОРАТОРНОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМЫ В АВТОМАТИЗИРОВАННОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Рабочим материалом лаборатории является биологический материал с закрепленным за ним информационным запросом, сформулированным врачом.

При использовании технологий ЛАС клиническая лаборатория переходит из состояния обработки образцов в состояние анализа и управления информацией за счет использования системы автоматической обработки образцов и интегрированной управляющей ЛИС.

Цикл начинается с врача, который обследует пациента, затем следуют заказ анализа, взятие образцов, подтверждение, транспортировка, предварительная обработка, анализ, отчет, архивирование, анализ результатов врачом и принятие лечебных решений.

Задачи лаборатории по обеспечению надежности в данном цикле выполняются с применением систем маркирования и идентификации образцов с помощью унифицированных технологий штрихового кодирования. Применение штрихкодов в дополнении к схеме Лундберга превращает биологический материал в информационную единицу Единицей информационно-аналитического потока в автоматизированной лаборатории является идентифицированный биологический материал, проходящий через стандартные этапы лабораторного анализа.

Лабораторная информационная система становится приоритетным объектом в автоматизированной лаборатории. Для того чтобы адекватно отвечать потребностям автоматизированной лаборатории, информационная система должна стать информационно-управляющей. Информационная система при построении комплексной автоматизированной системы лаборатории служит также интегрирующим фактором.

Важнейшими возможностями информационно-управляющей системы для лаборатории являются:

  • поддержка интерфейсов с лабораторным оборудованием и устройствами автоматизации;

  • возможность использования систем идентификации проб;

  • модульность и гибкость при настройке пользователем прикладной части;

  • возможность применения технологий рабочих потоков для организации эффективной вычислительной среды в лаборатории;

  • использование баз данных алгоритмов для настраиваемой пользователем автоматизированной интерпретации результатов лабораторной диагностики;

  • поддержка интерфейса с клинической информационной системой (информационной системой всего учреждения).

В целом ЛИС должна обеспечивать движение потоков информации на всех этапах технологических процессов производства анализов - от регистрации пациента и полученного биоматериала до выдачи результатов исследований (рис. 5.12). Под термином «правила авторизации» следует понимать определенные алгоритмы (программы) или предоставление определенных полномочий специалистам лаборатории, которые необходимы для оценки результатов лабораторных анализов.

pic 0161
Рис. 5.12. Рабочие потоки информации в лабораторной информационной системе

ЛИС отслеживает статус биоматериала и выполняемых лабораторных тестов на всех технологических операциях. Информация о статусе пробы и тестов, необходимая как для мониторинга выполнения задания, так и для организации рабочих потоков в ЛИС, является важной для использования в ЛАС при реализации интерфейса ЛИС-ЛАС.

5.2.1. ИНТЕРФЕЙС ЛАБОРАТОРНОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМЫ С ЛАБОРАТОРНЫМ ОБОРУДОВАНИЕМ

Интерфейс с лабораторным оборудованием является важнейшим элементом информационной системы, благодаря которому может быть значительно улучшена обработка проб. Существует несколько способов подключения лабораторных анализаторов к ЛИС.

В настоящее время в большинстве лабораторных анализаторов для реализации процессов приема и передачи информации используют стандартный компьютерный интерфейс RS-232, скорость которого (до 115 Кб) достаточна как для ввода заданий в анализатор из ЛИС, так и для передачи результатов лабораторных исследований в ЛИС.

Рассмотрим следующие способы подключения лабораторного анализатора к ЛИС:

  • прямое подключение лабораторного анализатора к персональному компьютеру через порт RS-232;

  • использование специализированных карт, устанавливаемых в персональный компьютер, для соединения интерфейса с анализатором;

  • применение специализированных устройств для переадресации данных из анализатора в локальную информационную сеть;

  • использование терминальных серверов, обеспечивающих подключение лабораторного оборудования к ЛИС с помощью структурированной кабельной системы.

Непосредственное подключение лабораторного анализатора к персональному компьютеру является наиболее простым и недорогим решением, так как каждый персональный компьютер имеет один или два свободных СОМ-порта (последовательных порта). Однако такое подключение анализатора приемлемо лишь для небольших лабораторий. Если при приеме данных от анализатора в компьютер сотрудник лаборатории запустит на исполнение прикладную программу, требующую больших объемов баз данных, то это может привести к сбою операции передачи данных или их потере. В связи с этим при наличии интерфейса между лабораторным анализатором и персональным компьютером на последнем нельзя выполнять другие задачи, что неприемлемо для больших лабораторий с обработкой данных в сетевом режиме.

В качестве примера специализированной карты для подключения лабораторного анализатора можно рассмотреть устройство компании Dawning - 530МРС Intelligent PC Interface. Указанная карта стандартная и предназначена для обеспечения интерфейса между лабораторным анализатором и ЛИС. Карта 530МРС, обеспечивая модель распределенных вычислений, обладает достаточной производительностью и изолирует процесс приема-передачи информации анализатора от ЛИС. Карта имеет внутренний буфер, который непрерывно принимает информацию от анализатора вне зависимости от текущего процесса использования объема памяти компьютера и ЛИС. Карта 530МРС конвертирует все данные, полученные от анализатора, в стандартный формат, который позволяет ЛИС использовать одну программу для обеспечения коммуникаций со всеми лабораторными анализаторами.

Для управления коммуникацией с анализатором карта 530МРС применяет внутреннюю программу - интерпретатор данных. Библиотека анализаторов, поддерживаемых картой, включает 350 видов анализаторов производства различных компаний. Для создания интерпретатора данных для нового анализатора используют язык программирования - расширенный BASIC. Карта имеет свой процессор и энергонезависимую память, применяемую для буферизации принятой информации.

Указанная интерфейсная карта - хорошее решение при подключении небольшого количества лабораторных анализаторов; к недостаткам можно отнести высокую стоимость карты и входящего в ее состав программного обеспечения.

В качестве специализированного устройства для подключения лабораторного оборудования рассмотрим Dawning Secure Network Interface (SNI). Указанное интернет-совместимое устройство (10base-2 или l0base-X) обеспечивает интерфейс в реальном времени между портом RS-232 лабораторного анализатора и Internet/Intranet локальной сетью. SNI производит эффективный обмен данными с помощью File Transfer Protocol (FTP), Hypertext Transfer Protocol (HTTP). С точки зрения локальной сети SNI является микроузлом сети. Программное обеспечение, используемое для интерпретации данных, такое же, как и карта 530МРС. Устройством можно управлять дистанционно с помощью стандартного браузера (программа просмотра сети Интернет).

Устройства Secure Network Interface имеют тот же недостаток, что и интерфейсные карты, - высокую стоимость. SNI предназначено для интерфейса только с одним лабораторным анализатором. Положительными качествами устройства являются возможности использования преимуществ Internet/Intranet-технологий.

Терминальный сервер представляет собой активное сетевое устройство, которое, с одной стороны, имеет подключение к ЛИС, а с другой - 4, 8, 16 или 32 порта для подключения периферийных устройств принтеров, терминалов, в том числе и лабораторных анализаторов. При этом лабораторные анализаторы могут подключаться к терминальному серверу с помощью структурированной кабельной системы локальной сети (при условии, что терминальный сервер будет размещен совместно с активным сетевым оборудованием, что представляется логичным решением).

5.2.2. ИНТЕРФЕЙС ЛАБОРАТОРНОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМЫ С МЕДИЦИНСКОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМОЙ

Интерфейс ЛИС с МИС является очень важным моментом для непрерывного обеспечения лечебно-диагностического процесса лабораторной информацией. Наличие связи между МИС и ЛИС позволяет специалистам лаборатории иметь все необходимые данные о пациенте, контролировать такие показатели технологических операций, как время взятия крови, сбора биоматериала, время его доставки в лабораторию, кроме того, клиницисты имеют прямой доступ к результатам лабораторных исследований в любое время. Специалисты лаборатории получают также возможность исключать дублирование исследований, контролировать частоту назначаемости, оценивать результаты исследований с учетом влияния лекарственных препаратов, лечебных процедур, данных других методов исследования, быстро информировать клинициста о результатах, требующих от него немедленных действий.

Интерфейс между МИС и ЛИС представлен на рис. 5.13. Врач назначает пациенту лабораторное исследование (исследования), работая в клинической информационной системе. Назначение из клинической системы передается в лабораторную систему. После обработки данных результаты лабораторного исследования передаются из лабораторной системы в МИС и становятся доступны врачу, заказавшему исследование.

pic 0162
Рис. 5.13. Интерфейс медицинской информационной системы с лабораторной информационной системой

Под драйвером следует понимать программу операционной системы, предназначенную для выполнения форматных преобразований данных при обмене между различными информационными системами.

Построение эффективного интерфейса между МИС и ЛИС - сложная задача. Это обусловлено тем, что в большинстве случаев МИС и ЛИС разрабатываются изолированно друг от друга, поэтому имеют неоднородную структуру. Роль интерфейса между этими информационными системами состоит в синхронизации однородных данных между ними. Под синхронизацией в данном случае понимается обеспечение временной упорядоченности поступления информации из одной системы в другую, то есть если данные о пациенте заносят в МИС, то они становятся доступными для ЛИС, или когда клиницист составляет заявку на анализы в МИС, то она поступает в ЛИС.

Если в лечебном учреждении функционируют две автономные информационные системы - ИМС и ЛИС, то построение интерфейса между ними рационально разбить на несколько этапов.

  • Первый этап - отработка интерфейса на организационном уровне. Интерфейс между информационными системами на данном этапе будет поддерживаться с помощью синхронного ведения справочных баз данных, то есть проводится информационное наполнение основных справочных баз ЛИС базами данных пациентов, накопленных в клинической информационной системе.

  • Второй этап - внесение изменений в МИС в целях обеспечения возможности клиницистам производить назначения на лабораторные исследования из автоматизированных рабочих мест этой системы.

  • Третий этап - включение в ЛИС программных средств, позволяющих генерировать отчеты о результатах лабораторной диагностики в электронном виде. Электронные отчеты о результатах лабораторных исследований должны быть доступны клиницистам из среды автоматизированных рабочих мест клинической информационной системы или с помощью доступа из стандартного браузера веб-страниц, то есть разрабатывается модель интерфейса для обеспечения синхронизации однородных данных, хранящихся в МИС и ЛИС.

  • Четвертый этап - разработка интерфейса между МИС и ЛИС, то есть специализированной программы, которая обеспечивает передачу в реальном времени назначений на лабораторные исследования из МИС в ЛИС, а результаты передаются из ЛИС в МИС.

Следует подчеркнуть, что перечисленные этапы синхронизации можно избежать, если МИС и ЛИС исходно создаются структурно однородными.

5.2.3. ИНТЕРФЕЙС ЛАБОРАТОРНОЙ ИНФОРМАЦИОННОЙ СИСТЕМЫ С ЛАБОРАТОРНОЙ АВТОМАТИЗИРОВАННОЙ СИСТЕМОЙ

Интерфейс ЛИС с ЛАС является сложной проблемой. Сложность построения интерфейса ЛИС-ЛАС в немалой степени объясняется тем, что в настоящее время еще не накоплено достаточного опыта по указанному вопросу.

Рассмотрим следующие методы подключения ЛАС к ЛИС:

  • дублирующий;

  • треугольный;

  • последовательный.

Дублирующий метод подключения может быть использован тогда, когда в лаборатории установлена лабораторная информационная система, разработанная одной компанией, а приобретается ЛАС, разработанная другой компанией (рис. 5.14). В состав приобретаемой ЛАС включается минимальный объем ЛИС компании-разработчика ЛАС. В лаборатории устанавливают две ЛИС: одна - основная, вторая предназначена для управления системами и устройствами ЛАС. Таким образом, интерфейс строится между двумя ЛИС. Достоинство метода состоит в том, что ЛИС для управления ЛАС и сама автоматизированная система разрабатываются одной компанией, а недостаток в необходимости технической эксплуатации и поддержания в рабочем состоянии двух информационных систем.

Треугольный метод подключения ЛАС к ЛИС характеризуется тем, что создается драйвер между системой управления ЛАС и ЛИС (рис. 5.15). Вершинами треугольника являются ЛИС, ЛАС и анализаторы. Система подготовки и транспортировки проб (СТП) управляет лабораторными анализаторами, а данные о пациенте, видах анализов и так далее передаются через ЛИС на анализаторы. Треугольный метод может быть применен, если ЛАС и ЛИС разработаны одной компанией. Недостатком метода является сложность модернизации системы с применением оборудования производства других компаний.

pic 0163
Рис. 5.14. Дублирующий метод подключения лабораторной автоматизированной системы к лабораторной информационной системе
pic 0164
Рис. 5.15. Треугольный метод подключения лабораторной автоматизированной системы к лабораторной информационной системе

На рис. 5.16 показана сложность подключения нового лабораторного анализатора другой фирмы в ЛАС при использовании треугольного метода. В этом случае необходимо вносить изменения во многие механические и электронные устройства, а также модернизировать программное обеспечение.

Последовательный метод подключения подразумевает, что ЛАС может управлять с помощью одного компьютера (рис. 5.17). При этом, если ЛАС и ЛИС разработаны разными компаниями, предметом разработки является драйвер между системой управления ЛАС и ЛИС. Важным преимуществом последовательного метода подключения является минимальная стоимость модернизации системы.

pic 0165
Рис. 5.16. Подключение нового анализатора к лабораторной автоматизированной системе и лабораторной информационной системе
pic 0166
Рис. 5.17. Последовательный метод подключения лабораторной автоматизированной системы к лабораторной информационной системе

На рис. 5.18 изображено подключение нового анализатора в состав ЛАС при последовательном методе, при подключении которого обеспечивается новый фрагмент системы транспортировки проб для нового анализатора, а в системе управления ЛАС и ЛИС описываются данные нового анализатора как параметрическая настройка, то есть без программирования, и может быть выполнено сотрудниками, занимающимися ежедневной эксплуатацией системы, без привлечения специально подготовленного персонала.

pic 0167
Рис. 5.18. Последовательный метод подключения лабораторной автоматизированной системы к лабораторной информационной системе

Последовательный метод подключения является предпочтительным способом подключения лабораторной автоматизированной системы к информационной.

Следует также отметить, что при применении ЛАС с последовательным методом подключения возникает два способа подключения лабораторных анализаторов к ЛИС. Лабораторные анализаторы, входящие в состав ЛАС, подключаются к информационной системе через интерфейс с управляющей системой, а остальные - непосредственно. На рис. 5.19 показана конфигурация системы, имеющей в своем составе анализаторы обоих типов подключения.

Для повышения производительности труда персонала лаборатории на аналитическом и постаналитическом этапах необходимо использовать ЛИС, причем для обработки информации на лабораторном анализаторе ключевым моментом повышения производительности является наличие интерфейса для подключения анализатора к ЛИС.

Современное состояние лабораторий объясняется состоянием технологий лабораторного тестирования, так как до недавнего времени центр тяжести разработок технологий для лаборатории приходился на разработку передовых методов анализа проб и получения точных лабораторных результатов. Автоматизация лаборатории может также способствовать изменению организационно-штатной структуры лаборатории.

pic 0168
Рис. 5.19. Интерфейс лабораторной информационной системы с лабораторной автоматизированной системой и лабораторными анализаторами

5.3. СОВРЕМЕННЫЕ ТЕНДЕНЦИИ ЛАБОРАТОРНОЙ АВТОМАТИЗАЦИИ

При определении архитектуры ЛАС необходимо принимать во внимание существующие на рынке технологии и тенденции развития, определять цели системы, оценивать структуру лаборатории и вырабатывать план, отвечающий интересам лаборатории как важного элемента лечебно-диагностического процесса.

В настоящее время существуют следующие тенденции развития ЛАС (Sasaki M., 1993; Kost G.J., 1996):

  • полностью автоматизированные системы (Total Laboratory Automatisation Systems);

  • модульная автоматизация отдельных лабораторий и подразделений лаборатории (modular and work-cell automation).

Коротко рассмотрим каждое из представленных направлений развития.

5.3.1. КОМПЛЕКСНЫЕ ЛАБОРАТОРНЫЕ АВТОМАТИЗИРОВАННЫЕ СИСТЕМЫ

Широкое и успешное распространение в Японии получили комплексные, или тотальные, лабораторные автоматизированные системы (Total Laboratory Automatisation Systems). Лаборатории госпиталей и крупных коммерческих лабораторий США, несколько клиник в Европе также выбрали указанное направление лабораторной автоматизации. Комплексные лабораторные автоматизированные системы требуют больших капитальных инвестиций, которые окупаются не менее чем через 2-3 года.

Комплексные лабораторные автоматизированные системы предназначены для полной автоматизации всех этапов обработки проб в лаборатории, включая:

  • преаналитический этап (проверка поступивших проб, сортировка, отбраковка);

  • технологический процесс подготовки биоматериала к исследованиям (дополнительная сортировка, центрифугирование, снятие крышек, разлив биоматериала во вторичные пробирки и т.д.);

  • аналитический этап (проведение лабораторных исследований на анализаторах или вручную);

  • постаналитический этап (архивирование и сохранение биоматериала определенное время);

  • хранение информации.

Приведенная выше классификация этапов обработки проб может быть упрощена и сведена к трем основным этапам: преаналитическому, аналитическому и постаналитическому.

Основными компонентами комплексной автоматизированной системы являются система маркировки и слежения за пробами, зона механизмов для распределения проб, секция центрифугирования, зона приспособлений для разлива пробы, конвейерная линия, секция хранения и возврата (если необходимо) проб. Система должна работать с нестандартными контейнерами для биопроб, иметь возможность быстро обнаруживать пробу и внести изменения в заявку на исследование, обладать способностью выявлять липемичные и иктеричные сыворотки, гемолиз и т.д.

Создание комплексных ЛАС обосновывается главным образом необходимостью проведения большого или очень большого объема лабораторных исследований (более 5-7 млн тестов в год).

Признанным центром по разработке ЛАС является Япония (Sasaki M., 1996). На японском рынке в этом направлении уже длительное время работает несколько десятков конкурирующих компаний. Тем не менее рынок ЛАС очень быстро развивается, и появляются компании-разработчики ЛАС в Европе и США.

В качестве примеров комплексных ЛАС можно привести следующие.

В медцинской школе Kouchi Medical School (Япония) была разработана и реализована первая в мире система транспортировки проб, к которой подключено значительное количество лабораторных анализаторов. Системой управляют через интерфейс с ЛИС. Конструкция системы была создана одним из пионеров лабораторной автоматизации профессором M. Sasaki (1993). Система имеет открытый интерфейс, поэтому к ней могут дополнительно подключаться новые лабораторные анализаторы.

Компания Hitachi являлась одним из лидеров по производству высокопроизводительных ЛАС, а также систем транспортировки проб. В настоящее время эта компания вошла в состав фирмы Roche, которая продолжает разработку и совершенствует лабораторные автоматизированные системы.

Фирма IDC Company производит высокоэффективные системы транспортировки проб. Данная ЛАС является типичным примером использования системы транспортировки проб по одной (каждая пробирка перемещается индивидуально). На мировом рынке IDC работает в тесной кооперации с компанией Coulter. В Kobe University School of Medicine инсталлирована автоматизированная система производства компании IDC Company. Большие аналогичные системы установлены в медицинском центре компании Samsung (Корея) и в медицинском центре Beth Israel (США).

В Университете Kagoshima ЛАС разработана компанией А&Т, которая использует идеологию виртуальных линий в системе транспортировки проб, обеспечивает повторное выполнение тестов в реальном времени, предоставляет возможность включения в состав системы анализаторов различного типа. Лабораторные автоматизированные системы разработки компании А&Т установлены также в Университете Showa, медицинском Университете Iwate, госпиталях Ebara, Okazaki, Iizuka и во многих других лабораториях (рис. 5.20-5.22).

pic 0169
Рис. 5.20. Система CLINILOG компании А&Т в Университете Showa
pic 0170
Рис. 5.21. Система CLINILOG компании А&Т в Университете IWATE
pic 0171
Рис. 5.22. Система CLINILOG компании А&Т в госпитале EBARA

Взаимосвязь ЛИС с ЛАС, используемой в системе CLINILOG компании А&Т, представлена на рис. 5.23.

pic 0172
Рис. 5.23. Лабораторная автоматизированная система в системе CLINILOG компании А&Т

Комплексные лабораторные автоматизированные системы, представленные на мировом медицинском рынке, предназначены в основном для создания на их основе больших лабораторий, выполняющих несколько миллионов исследований в год. Они экономически не выгодны для средних и малых медицинских учреждений.

5.3.2. МОДУЛЬНАЯ ПОШАГОВАЯ АВТОМАТИЗАЦИЯ

Основным направлением автоматизации для небольших и средних медицинских центров является модульная пошаговая автоматизация, которая позволяет лабораториям поэтапно решать проблемы автоматизации преаналитического, аналитического и постаналитического этапов обработки проб. Современные автоматизированные центрифуги, микроскопы, системы для деления на порции проб, мобильные роботы, аналитические рабочие ячейки представляют собой решения для сфокусированной автоматизации наиболее трудоемких процессов обработки в лабораториях.

Модульная автоматизация позволяет решать проблему создания современной автоматизированной лаборатории с помощью ряда последовательных шагов. При условии, что этапы создания автоматизированной лаборатории разнесены во времени, возможно добиться практически близкой к нулю степени риска при планировании капиталовложений. На рис. 5.24, а показан случай, когда можно начать автоматизацию лаборатории с гематологии и биохимии. Затем, после установки модуля деления и сортировки проб, на последующих этапах получают автоматизированную лабораторию с древовидной структурой (рис. 5.24, б).

Что является модулем? В качестве модуля может быть использован как лабораторный анализатор совместно с компьютером ЛИС, так и комплексная аналитическая рабочая ячейка.

Рис. 5.25 иллюстрирует возможные варианты модулей в лаборатории и их пошаговую эволюцию. Центральным звеном любого модуля в лаборатории является лабораторный анализатор.

pic 0173
Рис. 5.24. Архитектура лабораторной автоматизированной системы: а - модульная автоматизация (рабочие ячейки); б - древовидная структура
pic 0174
Рис. 5.25. Пошаговая эволюция модульной рабочей ячейки

Первый шаг автоматизации - установка анализатора для проведения анализов в автоматическом режиме. Если для проведения анализов на анализаторе требуется дополнительное разведение биоматериала, то вторым шагом будет подключение к анализатору автоматического устройства разбавления проб и последующий возврат для повторного тестирования. Третьим шагом автоматизации может быть подключение к анализатору робота для загрузки проб в анализатор (входной буфер) и их выгрузки (выходной буфер), в результате получается аналитическая рабочая ячейка с буферизацией проб. Следующим, четвертым шагом автоматизации будет подключение аналитической рабочей ячейки с автоматической загрузкой и выгрузкой проб к линии транспортировки, в результате будет достигнута комплексная автоматизация данного технологического процесса.

Преимуществом модульной автоматизации является оптимальное решение задач автоматизации с точки зрения специализации лабораторной диагностики.

В качестве примера модульной автоматизации рассмотрим решения и соответствующее оборудование производства компании Beckman-Coulter (рис. 5.26-5.28).

Автоматизация КДЛ, предлагаемая компанией Beckman-Coulter, имеет следующие преимущества:

  • повышение производительности лаборатории при эффективном контроле и управлении стоимостью проводимых исследований;

  • улучшение качества анализов при значительном снижении количества ошибок;

  • уменьшение времени на проведение анализов;

  • снижение риска соприкосновения персонала с биоматериалом.

Эксперты компании считают, что поэтапная автоматизация лаборатории является наилучшим выбором. Для обеспечения поэтапной автоматизации Beckman-Coulter предлагает концепцию модульной системы (modular system), которая, с точки зрения компании, служит наилучшей стратегией защиты капиталовложений.

pic 0175
Рис. 5.26. Модуль подготовки проб компании Beckman-Coulter
pic 0176
Рис. 5.27. Модуль автоматизации биохимических исследований компании Beckman-Coulter
pic 0177
Рис. 5.28. Модуль автоматизации гематологических исследований компании Beckman-Coulter

При планировании установки системы лабораторной автоматизации пользователь должен сделать выбор стандарта штрихкодирования, который будет использоваться в лаборатории. Это может быть Code 39, Interleaved 2 of 5, Codabar или другой стандарт. Применение такой автоматизации может быть ограничено, так как в системе используется только один стандарт штрихкодирования. Это требование налагает ограничения на спектр используемых лабораторных анализаторов, так как после выбора стандарта штрихкодирования в системе могут быть применены только те анализаторы, которые принимают выбранный стандарт. Кроме того, существуют ограничения на размер этикетки штрихкода.

В составе автоматизированной лаборатории Beckman-Coulter могут быть использованы следующие анализаторы.

Биохимия:

  • DxC 700 AU, AU 5800, Vitros 950A, Nihon Denshi HR-2200, Technicon DAX-96, Toshiba 80M, Toshiba TBA-M series, Toshiba TBA-80FR.

Гематология:

  • DxH 600, DxH 800, DxH 900, Sysmex ХЕ 2100, Sysmex ХЕ 5000, Sysmex XN 2000.

Иммунология:

  • Access 2, UniCel DxI 600, UniCel DxI 800, Abbott ARCHITECT, Centaur, Tosoh AIA-1200, Tosoh AIA-21.

Следует отметить, что перечень приборов, совместимых с той или иной системой лабораторной автоматизации, всегда достаточно ограничен.

Важным вопросом также является размер пробирок (контейнеров), используемых в системе. Так, например, имеется система ЛАС, спроектированная для вакуумных пробирок, - Becton-Dickinson Vacutainers. Для корректной работы системы транспортировки проб необходима стандартизация размеров вакутейнеров. Устройство сортировки, расположенное в начале системы транспортировки проб, разработано для вакутейнеров диаметром 13 и 16 мм.

Для уменьшения системы транспортировки проб необходимо сделать выбор одного диаметра вакутейнера. Например, биохимический модуль использует в работе вакутейнеры размером 16x100 мм, имеющие силиконовый разделитель сыворотки. Для гематологического модуля нужны вакутейнеры размером 13x75 мм.

Таким образом, если в лаборатории используется широкий спектр пробирок, необходимо планировать мероприятия по их стандартизации.

Компания рекомендует начать процесс автоматизации с установки в лаборатории модуля подготовки проб (рис. 5.26). Модуль подготовки проб Beckman-Coulter включает следующие компоненты:

  • входной приемный модуль - пробирки с пробами устанавливают в индивидуальные держатели;

  • центрифуга - загрузку в центрифугу производят автоматически, после центрифугирования пробы возвращают в систему транспортировки проб;

  • детектор уровня сыворотки - определяет уровень сыворотки в каждой пробирке, информация об уровне сохраняется в системе для дальнейшего использования в устройстве дозирования проб на порции;

  • устройство удаления крышек - крышки, закрывающие пробирки, автоматически удаляются и помещаются в специальный контейнер, отвечающий требованиям безопасного хранения;

  • устройство для нанесения штрихкода - предназначено для нанесения штрихкода на вторичные пробирки;

  • устройство деления проб на порции - сыворотка автоматически переносится в нужном количестве из первичной пробирки в одну или несколько вторичных пробирок;

  • выходной модуль - пробирки автоматически помещаются в выходное устройство, при этом производится сортировка по лабораторным анализаторам и по срочности тестирования.

После установки модуля подготовки проб лаборатория затем может планировать установку модуля автоматизации биохимии (рис. 5.27), гематологии (рис. 5.28), коагулологии, исследования мочи.

Таким образом, принцип модульности является важнейшим для построения эффективной лаборатории, а реализация системы транспортировки проб - ключевым моментом для успешной эксплуатации ЛАС.

При построении комплексной ЛАС с помощью модульной автоматизации важно придерживаться принципа минимизации количества поставщиков оборудования и программного обеспечения в целях снижения расходов на приобретение и эксплуатацию системы лабораторной диагностики.

В настоящее время наибольший интерес представляют открытые системы для лабораторной автоматизации, которые позволяют использовать принцип модульности для построения комплексной ЛАС. В такие ЛАС могут встраиваться практически любые анализаторы современного поколения.

5.4. ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО АВТОМАТИЗАЦИИ ЛАБОРАТОРИИ

Применение технологий ЛАС возможно только в том случае, если будут выполнены минимальные требования к технической оснащенности лаборатории. Базовые требования описаны ниже и указаны в порядке возможной последовательной поэтапной установки или применения их в лаборатории.

  1. Наличие высокоскоростных, многозадачных лабораторных анализаторов, поддерживающих протоколы обмена с информационной системой и работающих с первичными штрихкодированными образцами по принципу запроса из информационной системы.

  2. Наличие в лаборатории ЛИС со следующими функциями:

    • поддержка двусторонней связи с анализаторами;

    • поддержка обмена данными с клинической системой или внешней информационной системой (страховой компанией и др.);

    • наличие модуля автоматической загрузки заданий с печатных форм направлений на исследования или модуля загрузки заданий электронных форм;

    • наличие модуля контроля качества;

    • наличие модуля автоматического одобрения результатов;

    • наличие модуля оперативного управления по бизнес-правилам;

    • наличие модуля учета и расходования реагентов;

    • наличие двусторонних программ связи (драйверов) между анализаторами и ЛИС.

  3. Возможность поддержки ЛИС внешними сервисными центрами посредством удаленного доступа к аналитическим и информационным ресурсам.

  4. Весь поступающий в лабораторию биологический материала должен быть в унифицированных одноразовых пластиковых системах:

    • по типу и размеру (высота, диаметр, тип дна, тип закрытия пробирки - винтовой или вставляющийся);

    • унифицированные пластиковые системы должны выполнять функцию первичных пробирок, способных загружаться на анализаторы без дополнительных манипуляций;

    • пластиковые системы с биологическим материалом должны быть универсально кодированы (наличие унифицированного штрихкодирования всего поступающего в лабораторию биоматериала).

  5. Обеспечение непрерывного поступления потока только штрихкодированных образцов от момента их поступления в лабораторию до загрузки на анализаторы.

  6. Наличие достаточных по производительности центрифуг в лаборатории.

  7. Наличие системы пробоподготовки с набором функций: регистрации материала, идентификации материала, снятия крышек, аликвотирования, сортировки.

  8. Наличие источников бесперебойного питания для всего оборудования.

  9. Наличие источника резервного питания.

  10. Наличие холодных комнат или холодильников, необходимых для временного и буферного хранения образцов.

5.5. МЕЖДУНАРОДНЫЕ СТАНДАРТЫ ПО АВТОМАТИЗАЦИИ ЛАБОРАТОРИИ

Отечественные стандарты в области автоматизации КДЛ отсутствуют. Однако это не должно препятствовать внедрению современных технологий в практику отечественных КДЛ. Подавляющее большинство оборудования на российском рынке - импортная техника. В связи с этим при отсутствии отечественной нормативной базы в области автоматизации потребители лабораторного оборудования, системные интеграторы и консультанты в области автоматизации КДЛ должны руководствоваться международными стандартами, обеспечивающими максимальную гибкость планов автоматизации.

Существует ряд международных и национальных организаций, занимающихся вопросами стандартизации в медицинской, информационной, клинико-диагностической и лабораторной деятельности.

История автоматизации КДЛ имеет короткий срок. Первоначально автоматизацией КДЛ начали заниматься в Японии, поэтому наибольший опыт в области автоматизации КДЛ накоплен у японских ученых, производителей, а также специалистов крупных медицинских центров, в которых установлены ЛАС. Этот практический опыт и стал основой для стандартизации. Идеолог автоматизации КДЛ профессор Takashi Kanno в 1992 г. предложил план стандартизации пробирок для сбора проб, что стало первой попыткой создания стандартов в этой области.

В 1994 г. Японское общество клинической химии (Japan Society of Clinical Chemistry - JSCC) заложило основу стандартизации в области автоматизации лабораторий, создав комитет по стандартизации штативов для транспортировки проб. В 1996 г. JSCC предложило стандарт на различные штативы для проб. В начале 1990-х гг. создан Японский совет по стандартизации клинических лабораторий (Japan Council for Clinical Laboratory Standardization - JCCLS). JCCLS активно участвует в разработке международных и национальных стандартов в области автоматизации КДЛ.

В 1996 г. NCCLS создал в своей структуре подкомитет по стандартизации в области автоматизации клинических лабораторий. С этого же года начинается совместная работа NCCLS и JCCLS по разработке стандартов автоматизации КДЛ.

В конце 1990-х гг. в международном комитете HL7 при активном участии NCCLS создана специальная группа (Special Interest Group - SIG) по автоматизации клинических лабораторий. Ее задачей стала синхронизация работы HL7 и NCCLS. Результатом работы этой группы стала новая, 13-я глава «Автоматизация клинической лаборатории», вошедшая в стандарт HL7 начиная с версии 2.4 в декабре 1999 г.

В 2002 г. между Американским обществом по материалам и их испытаниям (American Society for Testing and Materials - ASTM) и NCCLS заключено соглашение о передаче группы стандартов в области ЛИС, разработанных комитетом ASTM E31 для дальнейшей их поддержки NCCLS.

В 2005 г. NCCLS переименовывается в Институт клинической и лабораторной стандартизации (Clinical and Laboratory Standards Institute - CLSI). При разработке стандартов CLSI тесно работает с комитетами HL7, ISO/TC 212.

Организации различных стран, занятые разработкой стандартов по автоматизации КДЛ, тесно взаимодействуют. В связи с этим прогресс, достигнутый в одной из стран, неизбежно отражается в международных документах с различной временной задержкой. Кроме того, в целях приведения стандартов в соответствие с требованиями современного состояния автоматизации, правила каждой организации регламентируют периодичность пересмотра и при необходимости переработки стандартов. В частности CLSI планируется сократить время пересмотра стандартов до 2-3 лет вместо ранее принятых 5 лет.

Стандартизация для построения ЛАС имеет важное практическое значение и направлена на решение пяти главных проблем этой области.

  1. Стандартизация информационного обмена: в центре подхода - обмен информацией между различными базами данных, информационными системами, компьютерами, а также стандартизация названий и методов исследований, применяемых при заполнении баз данных.

  2. Стандартизация взаимодействия на физическом уровне: в центре подхода - интеграция аналитического, оптического и механического оборудования, однако предметом интереса является передача и синхронизация электрических сигналов внутри системы.

  3. Стандартизация контейнеров для хранения и транспортировки образцов биоматериала: в центре подхода - система транспорта образцов, изучается стандартизация размеров контейнеров (пробирок) и штативов для образцов, используемых в автоматизированных анализаторах.

  4. Стандартизация нумерации образцов: в центре подхода - требование к идентификатору-наклейке, кодирование информации, идентификация запросов и ответов по штрихкоду.

  5. Стандартизация вспомогательного информационного обеспечения: в центре подхода находится мониторинг состояния системы и обеспечение правильного реагирования на проблемы.

В настоящее время в группу стандартов CLSI по автоматизации КДЛ входят семь стандартов, имеющих статус «утвержденный» (approved), которые приведены ниже.

Стандарты CLSI в области автоматизации КДЛ

Стандарт AUTO1 - Specimen Container/Specimen Carrier (пробирки и штативы для проб).

Стандарт AUTO2 - Bar Codes for Specimen Container Identification (штрихкоды для идентификации пробирок).

Стандарт AUTO3 - Communications with Automated Clinical Laboratory Systems, Instruments, Devices, and Information Systems (обмен информацией с ЛАС, инструментами, устройствами и информационными системами).

Стандарт AUTO4 - Systems Operational Requirements, Characteristics, and Information Elements (эксплуатационные требования к системе, характеристики и информационные элементы).

Стандарт AUTO5 - Electromechanical Interfaces (электромеханические интерфейсы).

Стандарт AUTO7 - Data Content for Specimen Identification (содержание данных, идентифицирующих пробу).

Стандарт L1S2 - Specification for Transferring Information Between Clinical Instruments and Computer Systems (спецификация для информационного обмена между клиническими инструментами и компьютерными системами).

Коротко остановимся на характеристике приведенных стандартов.

Стандарт AUTO1 - Specimen Container/Specimen Carrier. Общая цель - стандартизировать два существенных для автоматизированной обработки проб компонента: пробирка и штатив. Первая цель - стандартизировать размеры пробирок для сбора проб так, чтобы обработка проб могла быть оптимизирована с помощью ЛАС. Вторая цель - определить стандартные параметры одно- и многоячеечных штативов, что должно способствовать оптимизации процесса автоматизированной обработки проб.

Действие стандарта распространяется только на системы взятия крови.

Обоснование необходимости стандартизации многоячеечного штатива прежде всего основано на существовании аналогичного стандарта JSCC. На момент утверждения AUTO1 соответствующий стандарт JSCC специфицировал пятиячеечный штатив с расстоянием между пробирками 22 мм, общей длиной 110 мм и максимальной высотой 70 мм. По определению, в многоячеечном штативе может быть не менее двух ячеек. AUTO1 также поддерживает пятиячеечную конфигурацию штатива для производителей, принявших соответствующий стандарт JSCC, не ограничивая при этом будущие проектные решения.

Стандарт AUTO2 - Bar Codes for Specimen Container Identification. Предназначен для подразделений и аппаратов, выполняющих сбор проб для их последующего исследования и анализа. Стандарт определяет требования к штрихэтикеткам и штрихкодам, маркирующим контейнеры с пробой: к символике, качеству печати, размерам символов, расположению и ориентации наклейки, формату данных, смысловому содержанию штрихкода.

Стандарт AUTO3 - Communications with Automated Clinical Laboratory Systems, Instruments, Devices, and Information Systems. Устанавливает протокол информационного обмена между элементами ЛАС. Это самый большой стандарт по объему и по степени значимости из числа утвержденных. Его цель - способствовать точному и своевременному информационному обмену между элементами ЛАС. Стандарт нацелен на обеспечение масштабируемости, открытости, интероперабельности и расширяемости элементов ЛАС. Прежде всего, стандарт ориентирован на КДЛ, но в будущем он может быть распространен на патолого-анатомические, цитологические и другие, в том числе неклинические, лаборатории.

Стандарт фокусируется как на характеристиках обмена (протокол низкого уровня) так и на передаваемых данных (протокол высокого уровня). Протокол низкого уровня специфицирует частотные и временные характеристики для автоматизированной системы, а протокол высокого уровня определяет специфические сообщения и данные, передаваемые в автоматизированном информационном обмене. По стандарту AUTO3 информацией могут обмениваться любые модули и друг с другом, и с управляющим центром.

Стандарт AUTO4 - Systems Operational Requirements, Characteristics, and Information Elements. Данный стандарт определяет эксплуатационные требования, характеристики и информационные элементы, необходимые для описания статуса инструментов ЛАС. Автоматизация КДЛ включает сложное взаимодействие всех элементов ЛАС. У производителей ЛАС существует необходимость в унифицированном подходе к отслеживанию статуса автоматизированных элементов ЛАС. Стандарт AUTO4 определяет унифицированные способы обмена существенными данными, описывающими статус, расположение, целостность, контроль качества и другие соответствующие характеристики ЛАС. Этот стандарт информирует и направляет производителей в развитии мониторинга статуса ЛАС. Стандартизованная система обмена информацией о статусе способствует непрерывной работе всей системы при соответствующем уровне вмешательства персонала.

Стандарт AUTO5 - Electromechanical Interfaces. В стандарте изложены требования к электромеханическим интерфейсам. Он разработан, поскольку интерфейс между аналитическими инструментами, инструментами поддержки процессов и транспортной системой является критическим звеном при производстве, установке и обслуживании ЛАС.

Стандарт AUTO5 затрагивает решение таких проблем, как:

  • оптимальная ориентация транспортной системы по отношению к аналитическим инструментам и инструментам поддержки процессов;

  • взаимосвязь электромеханических интерфейсов с различными способами транспортировки (например, автоматизированными тележками, конвейером и др.), связанными с определенными референтными точками для обеспечения возможности механической стыковки элементов ЛАС;

  • ответственность элементов ЛАС за установку пробирки в определенном положении;яя

  • вопросы безопасности и эргономики на этапе эксплуатации ЛАС; кроме расстояния от пола, стандарт устанавливает другие зазоры и расстояния для обеспечения стандартного интерфейса между аналитическим оборудованием, транспортной системой, инструментами поддержки процессов.

Спецификации для референтной точки могут использоваться производителями автоанализаторов, инструментов поддержки процессов и автоматизированных транспортных систем (конвейеры, транспортные системы, роботизированные тележки и другие транспортные устройства) с целью сориентировать расположение элементов системы таким образом, чтобы один аппарат мог получить доступ и идентифицировать образцы, транспортированные другим аппаратом.

Стандарт AUTO7 - Data Content for Specimen Identification. Данный стандарт расширяет требования стандарта AUTO2 и определяет формат для идентификации образцов, позволяющий системам с различными возможностями использовать общий структурированный формат.

В условиях централизации лабораторных исследований идентификационные номера пробирок из различных ЛПУ могут случайным образом совпасть, что приведет к недопустимой путанице при постановке диагноза. Очевидно, что идентификация проб должна быть привязана не только к пациенту, но и к направляющему учреждению.

Стандарт AUTO7 позволяет различным пунктам штрихкодирования присваивать идентификационные номера пробиркам таким образом, чтобы номера, назначенные каждым пунктом, правильно, однозначно и без коллизий воспринимались любым другим пунктом штрихкодирования и ЛАС. Этот документ не рассматривает обмен заявками на исследование и информацией о пациенте. Такой обмен обеспечивается интерфейсом между информационными системами (ЛИС и МИС).

Стандарт LIS2 - Specification for Transferring Information Between Clinical Instruments and Computer Systems. Представляет собой пересмотренный вариант стандарта ASTM Е1394-97. Стандарт специфицирует двусторонний обмен данными между лабораторным оборудованием и информационными системами. Он документирует общие соглашения для обмена результатами исследований и информацией о пациентах между приборами лаборатории и информационными системами. Стандарт специфицирует содержание сообщений, участвующих в этом информационном обмене. Он позволяет любым двум системам устанавливать логическую связь для обмена текстовой информацией в стандартизованных интерпретируемых формах (результаты, запросы на исследование, демографическая информация).

Глава 6. УПРАВЛЕНИЕ КАЧЕСТВОМ В КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

КДЛ предоставляет достоверную диагностическую информацию о клеточном, биохимическом, иммунном составе проб биологических материалов, полученных от больного, о наличии в них микроорганизмов и соответствии показателей этого состава с общепринятой нормой или сопоставлении их с ранее определявшимися у того же человека аналогичными показателями. При этом важнейшей задачей КДЛ является обеспечение высокого качества результатов лабораторных исследований. Основополагающее значение категории качества в отношении деятельности КДЛ состоит в том, что она имеет по меньшей мере три равнозначные грани.

  1. Качественно удовлетворять запросы пациентов (качество как обеспечение сервиса лабораторной услуги).

  2. Совокупность характеристик результата исследования, обусловливающая ее соответствие определенным требованиям, предъявляемым к технологии и методике исследования (аспект технологии и методики исследования).

  3. Способность обеспечить качество в двух первых аспектах при минимуме затрат (производственно-экономический аспект).

Первая грань качества связана с уровнем обеспечение сервиса лабораторной услуги и во многом определяет качество работы лаборатории. Пациенты в большинстве случаев оценивают качество работы лаборатории по тому, как его примут в процедурном кабинете или медицинском офисе, будет ли он стоять в очереди для взятия крови на анализы, в удобные ли часы можно сдать анализы, как выглядит медицинская сестра, насколько хорошо она владеет методикой взятия крови и культурой общения с клиентом, как можно получить результаты анализов и как оформлен бланк результатов исследований. При этом предоставление лабораторией одноразовых фирменных приспособлений для взятия крови и сбора биоматериала, хорошо оформленных и отпечатанных в типографии бланков-заявок на исследование, прибытие курьера в четко установленное время к клиенту, наличие у него необходимых контейнеров для соблюдения условий транспортировки биоматериала в лабораторию, своевременная доставка результатов анализов, консультации специалистов лаборатории по результатам исследований и быстрое сообщение результатов, требующих немеленых действий, - это те составляющие, которые обеспечивают успех КДЛ на современном рынке лабораторных услуг. При этом отсутствие взаимосвязи между врачами-клиницистами (заказчиками лабораторных исследований и потребителями лабораторной информации) и специалистами лаборатории - наиболее слабое звено у современных коммерческих лабораторий по сравнению с КДЛ государственных ЛПУ. В коммерческих лабораториях наиболее развитых стран эта проблема решена. Врачи-патологи лабораторий постоянно поддерживают контакт с врачами-клиницистами, в отличие от отечественных коммерческих КДЛ.

Вторая грань качества - это аспекты технологий (уровень оснащенности лаборатории современным оборудованием) и методик исследования, которые использует лаборатория для получения результатов анализов. Не менее важными аспектами этой грани являются профессионализм сотрудников лаборатории и уровень организации технологических процессов производства анализов. Низкий уровень профессиональной подготовки специалистов и плохая организация выполнения исследований в лаборатории (например, отсутствие регулярного ВКК, превышение временных интервалов в калибровке анализаторов) приводят в конечном итоге к получению ошибочных результатов анализов и полностью обесценивают все усилия лаборатории по предоставлению качественных лабораторных услуг. По своей важности эта грань должна быть главной сущностью при оценке качества результатов лабораторных исследований и качества работы КДЛ, однако в силу сложности для понимания оценивается в последнюю очередь и в большинстве случаев только врачами-клиницистами самой высокой квалификации.

В рамках доказательной медицины технологические процессы в КДЛ должны быть стандартизированы в соответствии с научно обоснованными требованиями международных или отечественных стандартов. С практических позиций КДЛ необходимо:

  1. обеспечить качественное выполнение технологических операций (стандартизация, автоматизация, контроль качества и средств измерений), следствием которых является результат анализа;

  2. использовать технологии, позволяющие объективно и с высокой степенью надежности отражать состояние внутренней среды организма и ее изменения, вызванные определенным патологическим процессом;

  3. добиться в своей работе выполнения требований международных и отечественных стандартов по критериям приемлемости ошибок и точности методов исследования;

  4. иметь хорошие результаты регулярной проверки деятельности лаборатории внешними независимыми организациями по контролю качества;

  5. предоставлять полученные результаты лабораторных анализов в максимально информативной форме;

  6. использовать технологии, обеспечивающие безопасность пациента и персонала.

Практическая реализация данного направления включает:

  • правильную организацию производства результатов лабораторных анализов с выделением важнейших технологических процессов и операций;

  • использование статистических и аналитических методов изучения процессов и операций в целях их постоянного совершенствования;

  • создание групп, ответственных за укрепление атмосферы постоянного обучения и личной ответственности.

Производственно-экономический аспект является третьей гранью качества результатов лабораторных исследований и качества работы КДЛ. Для практической медицины наиболее важно, чтобы при производстве анализов применялись самые современные технологии, максимально обеспечивающие соответствие полученных результатов исследований объективному состоянию пациента. Однако при этом затраты на исследование должны быть как можно меньше. В практическом плане КДЛ должна найти это оптимальное соотношение между затратами на производство анализов и их высоким качеством, которое обеспечит лаборатории преимущество перед конкурентами.

Основой обеспечения качества результатов анализов является правильная организация технологических процессов производства лабораторных исследований. Вместе с тем, как отмечают специалисты, на 85% качество определяется организационно-управленческой деятельностью (Исакава Кару, 1988; Мескон М., 1997).

В предыдущих главах изложено построение технологического процесса производства анализов, показаны возможности ЛАС и ЛИС для обеспечения его функционирования. Однако основной целью использования этих средств является управление качеством результатов клинических лабораторных исследований.

6.1. ОРГАНИЗАЦИЯ УПРАВЛЕНИЯ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

В настоящее время основным документом, регламентирующим организацию работы по управлению качеством в КДЛ, является Положение об организации управления качеством клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения, изложенное в приложении 1 к приказу Минздрава России от 7 февраля 2000 г. № 45. Частично положения данного приказа были рассмотрены в главе 1 при описании основной документации, которую должна вести КДЛ. В данном разделе рассматриваются положения, касающиеся непосредственно управления качеством результатов лабораторных исследований. Данный приказ содержит приведенные ниже разделы.

Положение об организация управление качеством клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения

  1. Система мер по управлению качеством клинических лабораторных исследований.

    1. 1.1. Качество лабораторных исследований должно соответствовать требованиям по аналитической точности, установленным нормативными документами Минздрава России, что является обязательным условием надежной аналитической работы КДЛ учреждений здравоохранения (вне зависимости от формы собственности) по обеспечению лабораторной диагностической информацией учреждений здравоохранения страны. Осуществление системы мер по управлению качеством клинических лабораторных исследований - основа достижения и повсеместного соблюдения необходимого уровня качества этих исследований.

    2. 1.2. Управление качеством клинических лабораторных исследований состоит в планировании, обеспечении и контроле качества исследований.

    3. 1.3. Планирование качества клинических лабораторных исследований состоит в определении норм точности, реально выполнимых с применением имеющихся в распоряжении лабораторий технических средств, химических и биологических реагентов и расходных материалов при минимальных затратах рабочего времени и лабораторных материалов, с учетом медицинских обоснованных требований.

      1. 1.3.1. Нормы точности для различных видов клинических лабораторных исследований устанавливаются нормативными документами Минздрава России и выполняют функцию отраслевых стандартов аналитической точности указанных исследований. При разработке норм точности учитываются как сведения о внутри- и межиндивидуальной биологической вариации определяемых показателей биологических материалов здоровых людей и вытекающих из них требований к ПДЗ аналитической вариации, так и технические возможности оборудования, которым оснащены клинические лаборатории. Пересмотр норм точности клинических лабораторных исследований должен происходить по мере совершенствования методического и технического оснащения клинико-диагностических лабораторий.

      2. 1.3.2. Планирование мероприятий по обеспечению качества клинических лабораторных исследований в соответствии с действующими нормативными документами Минздрава России и перечнем выполняемых в лаборатории исследований является обязанностью заведующего клинико-диагностической лабораторией. При выполнении лабораторных исследований вне лаборатории нелабораторным персоналом планирование качества исследований должно осуществляться руководителем соответствующего клинического подразделения, частного медицинского учреждения или семейным врачом при консультативно-методической помощи клинико-диагностической лаборатории данного или ближайшего лечебного учреждения.

      3. 1.3.3. Важным элементом обеспечения качества в клинико-диагностических лабораториях является ВКК. При планировании и осуществлении ВКК используются положения «Правил внутрила-бораторного контроля качества количественных лабораторных исследований». Достигнутые в лаборатории показатели точности повседневно выполняемых лабораторных исследований должны быть отражены в «Руководстве по качеству клинических лабораторных исследований» данной лаборатории.

    4. 1.4. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований состоит в осуществлении мер, создающих необходимые условия для получения лабораторной информации, адекватно отражающей состояние внутренней среды у пациентов. Меры по обеспечению качества осуществляются:

      • на уровне системы здравоохранения России;

      • на уровне отдельного учреждения здравоохранения;

      • на уровне отдельной клинико-диагностической лаборатории.

        1. 1.4.1. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований на уровне системы здравоохранения России состоит в экспертизе качества приборов, реагентов, стандартных образцов (калибровочных и контрольных материалов), лабораторного оборудования и другого оснащения, предназначенного для использования в клинико-диагностических лабораториях страны. После проведения в наиболее квалифицированных учреждениях технических и медицинских испытаний образцов технического, химического и биологического оснащения лабораторий соответствующие комиссии Комитета по новой медицинской технике Минздрава России выдают разрешительные заключения на использование в клинико-диагностических лабораториях учреждений здравоохранения России серийно выпускаемой российскими предприятиями или поставляемой из-за рубежа продукции. Деятельность комиссий Минздрава России регламентируется действующим законодательством РФ и нормативными документами Минздрава России.

        2. 1.4.2. Аналитические характеристики методов исследований (чувствительность, специфичность, правильность, воспроизводимость, диапазон измерения) и средств лабораторной диагностики, рекомендуемых для использования в клинико-диагностических лабораториях учреждений здравоохранения, оцениваются в экспертных лабораториях, аккредитуемых в соответствии с приказом Минздрава России от 5 июня 1996 г. № 233.

        3. 1.4.3. Обеспечение качества исследований на уровне отдельного учреждения здравоохранения состоит в разработке и осуществлении персоналом клинических подразделений мер, предупреждающих отрицательное влияние на качество результатов лабораторных исследований факторов преаналитического этапа (диагностических и лечебных процедур, создающих помехи правильному отражению в результатах исследований состояния внутренней среды обследуемых пациентов; нарушения правил взятия, маркировки, первичной обработки, условий хранения и транспортировки в лабораторию образцов биоматериалов, взятых у пациентов) и постаналитического этапа (неадекватной интерпретации результатов исследования). Разработка и осуществление мер обеспечения качества клинических лабораторных исследований на уровне отдельного учреждения здравоохранения является обязанностью руководителя данного учреждения.

        4. 1.4.4. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований на уровне клинико-диагностической лаборатории состоит в разработке и осуществлении мер, предупреждающих отрицательное влияние факторов преаналитического (нарушение правил маркировки, хранения, первичной обработки), аналитического (нарушение правил проведения аналитической процедуры, ошибок калибровки метода и настройки измерительного прибора, приобретение и использование реагентов и других расходных материалов, не допущенных к использованию) и постаналитического (оценка правдоподобия и достоверности полученных результатов исследований, их предварительная интерпретация) этапов, способных помешать получению достоверного результата лабораторного исследования. Разработка и осуществление мер обеспечения качества клинических лабораторных исследований на уровне клинико-диагностической лаборатории и их отражение в «Руководстве по качеству клинических лабораторных исследований» данной лаборатории является обязанностью заведующего лабораторией.

    5. 1.5. Контроль качества клинических лабораторных исследований состоит в разработке и осуществлении на уровне системы здравоохранения России, на уровне субъектов РФ и на уровне клинико-диагностических лабораторий системы контрольных мер для обнаружения и отслеживания погрешностей, которые могут проявиться в процессе выполнения клинических лабораторных исследований проб биоматериалов пациентов и исказить клинико-лабораторную информацию о состоянии внутренней среды обследуемых пациентов учреждений здравоохранения.

      1. 1.5.1. Контроль качества клинических лабораторных исследований на уровне системы здравоохранения России и на уровне субъектов РФ (межлабораторный контроль качества) осуществляется Федеральной системой внешней оценки качества (ФСВОК) на основе обработки результатов проведенных КДЛ исследований образцов контрольных материалов, рассылаемых Центром внешнего контроля качества клинических лабораторных исследований и его региональными отделениями. Целью внешней оценки качества исследований является оценка степени сопоставимости результатов исследований, выполняемых в различных учреждениях здравоохранения, и соответствия их установленным нормам аналитической точности. Внешняя оценка качества клинических лабораторных исследований в клинико-диагностических лабораториях учреждений здравоохранения производится в соответствии с нормативными документами Минздрава России. Участие в мероприятиях ФСВОК является обязательным для лабораторий учреждений здравоохранения всех форм собственности и учитывается при их аккредитации и лицензировании. Наряду с этим допускается участие лабораторий в других программах внешней оценки качества (международных, коммерческих и региональных), в частности, для показателей, отсутствующих в ФСВОК.

      2. 1.5.2. Контроль качества клинических лабораторных исследований на уровне клинико-диагностической лаборатории (ВКК) состоит в постоянном (повседневном, в каждой аналитической серии) проведении контрольных мероприятий: исследовании проб контрольных материалов или применении мер контроля с использованием проб пациентов. Целью ВКК является оценка соответствия результатов исследований установленным критериям их приемлемости при максимальной вероятности обнаружения недопустимой погрешности и минимальной вероятности ложного отбрасывания результатов выполненных лабораторией аналитических серий. ВКК обязателен в отношении всех видов исследований, выполняемых в лаборатории. Порядок проведения ВКК должен быть отражен в «Руководстве по качеству клинических лабораторных исследований» данной лаборатории. Организация ВКК исследований в соответствии с нормативными документами Минздрава России является обязанностью заведующего лабораторией и уполномоченных им сотрудников лаборатории. Наличие системы ВКК является одним из оснований для аккредитации и лицензирования лабораторий.

      3. 1.5.3. Регулярно проводимая внешняя оценка качества и повседневно проводимый ВКК дополняют, но не заменяют друг друга: внешняя оценка качества направлена прежде всего на выявление систематических ошибок лабораторных методов и обеспечение единства измерений на всей территории страны, а ВКК предназначен для поддержания стабильности аналитической системы, выявления и устранения недопустимых случайных и систематических погрешностей.

    6. 1.6. Главные специалисты по клинической лабораторной диагностике органов управления здравоохранением на всех уровнях должны содействовать проведению мероприятий по управлению качеством клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения всех форм собственности; поддерживать и организовывать образовательные мероприятия, направленные на внедрение внутрилабораторного контроля и регулярное участие во внешней оценке качества в повседневную работу лабораторий.

  2. Типовая модель «Руководства по качеству исследований в клинико-диагностической лаборатории».

    Руководство по качеству исследований в клинико-диагностической лаборатории (далее - Руководство по качеству) является сводом документов КДЛ, который включает нормативные документы Минздрава России, территориальных органов управления здравоохранением и собственные документы лаборатории, регламентирующие ее структуру, оснащенность и деятельность и представляющие собой систему обеспечения качества исследований, выполняемых КДЛ. Каждая лаборатория составляет собственное Руководство по качеству на основе данной типовой модели с учетом ее особенностей.

    Деятельность лаборатории должна осуществляться в строгом соответствии с требованиями, процедурами и нормативными документами, изложенными в Руководстве по качеству. Любые изменения в системе обеспечения качества лабораторного анализа должны тотчас регистрироваться в соответствующих документах. Ответственность за соблюдение правил и требований Руководства по качеству несет заведующий лабораторией. Документ должен быть доступен для всех сотрудников лаборатории. Руководство по качеству является основным документом, предъявляемым при аккредитации КДЛ любого профиля и подчиненности, поэтому в числе других положений включает паспорт лаборатории, предусмотренный процедурой аккредитации КДЛ, проводимой в соответствии с приказом Минздрава России от 21 декабря 1993 № 295. Перечень документов, упомянутых в Руководстве по качеству, должен меняться в соответствии с отменой старых и утверждения новых.

Большим достоинством данного документа является то, что он регламентирует и в определенной степени стандартизирует выполнение многих технологических процессов и операций в лаборатории. В качестве инструмента управления качеством клинических лабораторных исследований предлагается постоянный контроль заведующим КДЛ за соблюдением положений, изложенных в Руководстве по качеству.

Однако в настоящее время этого уже недостаточно. Заведующему КДЛ необходимо освоить практическое применение методологии всеобщего управления технологическим процессом для непрерывного повышения качества результатов лабораторных исследований. Тактика практического внедрения концепции непрерывного повышения качества обеспечивается системой ВУК (Total Quality Management - TQM). В отношении производства клинических лабораторных анализов это означает, что ВУК должно охватывать все этапы их производства: преаналитический, аналитический и постаналитический. Рассмотрим основные положения системы ВУК.

6.2. ПРИНЦИПЫ ВСЕОБЩЕГО УПРАВЛЕНИЯ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Система ВУК - это структурированный, систематический процесс, направленный на организацию широкого вовлечения всех специалистов, участвующих в технологическом процессе производства анализов, в планирование и внедрение концепции непрерывного повышения качества результатов исследований. Целью ВУК является непрерывное совершенствование технологического процесса производства для повышения качества результатов клинических лабораторных анализов.

Сегодня США и весь мир признали и развивают систему ВУК, которая использует достижения теории человеческого поведения, а также статистические методы контроля за производством и приемы индустриальных производств в целях создания надежных гарантий высокого качества продукции и его непрерывного улучшения. Пришла пора внедрить достижения ВУК в клиническую лабораторную диагностику. В настоящее время в США принятый акт CLIA-88 подвергается революционным изменениям путем интегрирования концепции ВУК. Объединенная комиссия по аккредитации учреждений здравоохранения в США объявила, что одним из важнейших условий получения аккредитационного сертификата будет демонстрация активного использования в указанных учреждениях ВУК медицинской помощи.

Система ВУК предусматривает организацию работы, в которой применяют законы психологии и поведения человека, статистические подходы и элементы индустриальной технологии. Принципы системы ВУК и инструменты, используемые при решении задач по совершенствованию технологического процесса производства лабораторных анализов, можно представить в виде следующих положений.

  • Сосредоточенность на интересах потребителя (клинициста и пациента). Определение качества в рамках концепции ВУК - это не просто соответствие заранее установленным стандартам, а стремление как можно полнее и своевременно удовлетворить запросы потребителей. Концентрация усилий, целенаправленная деятельность всей организации, каждого ее структурного подразделения, каждого исполнителя на достижение высокой степени соответствия интересам потребителя отличает ВУК от простого управления.

Основное направление улучшения качества продукции - улучшение процесса производства. Это ключевая аксиома ВУК. Сторонники концепции ВУК убеждены, что качество продукции определяется качеством производственного процесса, а повышение качества происходит исключительно благодаря улучшению процесса. Именно поэтому основные усилия по ВУК направлены на улучшение единого технологического процесса производства анализов.

Главное условие улучшения качества - коллективное участие в этой работе всех специалистов технологического процесса производства лабораторных анализов (клиницистов и специалистов лаборатории). В соответствии с концепцией ВУК, именно специалисты, напрямую вовлеченные в процесс, являются его лучшими экспертами. Именно они служат источниками информации о его слабых сторонах и возможных путях улучшения качества. Использование в деятельности по улучшению качества «поперечных» производственных связей. Большинство производств применяют иерархическую, бюрократическую систему организации работ с несколькими слоями управления, формальной политикой и процедурами, устанавливающими ответственность и четко определенные границы работ отдельных исполнителей и структурных подразделений. В отличие от них процесс производства лабораторных анализов не имеет вертикальной организации и представляет собой серию «поперечных» взаимодействующих связей «лаборатория-клиницист-пациент» и между технологическими процессами и операциями. ВУК обнаруживает, что наиболее обещающими предпосылками для улучшения качества процесса являются именно эти новые точки соприкосновения. Так, консультанты в области ВУК настойчиво советуют создавать бригады качества на основе «поперечных» функциональных связей, чтобы они включали представителей всех функциональных подразделений и отделов, кто вовлечен в процесс, кто работает над повышением его качества.

ВУК - непрерывный циклический процесс. Общий управленческий цикл технологического процесса производства анализов приведен на рис. 6.1.

pic 0178
Рис. 6.1. Функционирование процесса всеобщего управления качеством результатов лабораторных исследований

Таковы основные положения концепции ВУК.

Для осуществления ВУК результатов клинических лабораторных исследований необходимо построить технологический процесс производства анализов таким образом, чтобы в нем стал возможен непрерывный процесс улучшения качества. Все усилия следует сосредоточить на том, чтобы поддерживать процесс в его непрерывном развитии.

Для осуществления контроля качества лабораторных анализов нужен инструмент, позволяющий любому специалисту лаборатории следить за выполнением технологического процесса. Если с помощью графических средств развернуть каждый технологический процесс в месте, времени и объеме выполнения на каждом его этапе (что, где, когда), определить индикаторы (критерии) и предусмотреть возможные отклонения этого процесса, то это будет означать, что полнота, своевременность и безопасность могут быть отслежены практически для любого технологического процесса и для этого не надо привлекать специальных профессиональных экспертов. От обычной схемы выполнения лабораторных исследований предложенный нами инструмент контроля качества процесса отличается наличием прогнозируемых отклонений, контрольными индикаторами и более точной разверткой во времени и пространстве.

Кроме графических инструментов, система ВУК в лабораторной диагностике предлагает такой инструмент управления процессом, как контроль за правильностью выполнения на основании критериев достаточности и своевременности. Для этого разрабатывают программы, включающие последовательное указание времени, места и объема мероприятий при производстве анализов на каждом этапе. Таким образом, современная система ВУК, поддерживая принцип стандартизации, вводит новые инструменты, позволяющие преодолевать недостатки традиционного стандарта, то есть отсутствие временных и индивидуальных критериев.

Крайне важным инструментом управления качеством является методология использования индикаторов (критериев).

В дальнейшем исследуют частоту включения индикаторов, сопоставляют с пороговыми значениями (контрольный график) и при выявлении превышения порога тщательно изучают весь процесс в области компетенции индикатора.

Все существующие проекты практического внедрения концепции непрерывного совершенствования качества имеют в своей основе цикл Шухарта (план, проба, изучение, план действий…​). Основные принципы, методы и инструменты концепции непрерывного повышения качества клинических лабораторных исследований представлены на рис. 6.2.

pic 0179
Рис. 6.2. Всеобщее управление качеством результатов лабораторных анализов

6.3. ОСНОВНЫЕ ИНСТРУМЕНТЫ ВСЕОБЩЕГО УПРАВЛЕНИЯ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Для управления качеством необходимо научиться его измерять. Одним из параметров качества, которое может быть реально измерено, - это правильность выполнения единого технологического процесса производства лабораторных анализов.

В настоящее время для практического решения проблем ВУК результатов лабораторных исследований используется семь основных инструментов диагностики и совершенствования технологических процессов (инструменты контроля качества).

  1. Схема технологического процесса производства лабораторных анализов (рассмотрена в главе 2) представляет собой последовательность определенных технологических процессов и операций. Ее применяют, когда требуется проследить стадии процесса производства анализов, которые проходит биоматериал, для того чтобы выявить время и место отклонения от схемы.

  2. Причинно-следственная диаграмма, позволяющая устанавливать причинно-следственные связи возникающих отклонений (рис. 6.3).

    pic 0180
    Рис. 6.3. Причинно-следственная диаграмма задержки результатов анализов пациентов отделения неотложной помощи

    Она применяется, когда требуется исследовать и изобразить все возможные причины выявленных проблем. Причинно-следственная диаграмма разрабатывается, чтобы представить соотношение между следствием (технологическим процессом), результатом анализа и всеми возможными причинами, влияющими на них. 3. Диаграмма Парето позволяет выявлять первоочередные задачи (определить удельный вес того или иного параметра или частоту того или иного события) Ее применяют, когда требуется представить относительную важность всех проблем или условий в целях выбора отправной точки для решения возникших проблем, проследить за результатом или определить основную причину проблемы. Построенная диаграмма Парето - это особая форма вертикального столбикового графика, которая помогает определить, какие имеются проблемы (нарушения технологического процесса производства анализов), и порядок их решения. На рис. 6.4 представлена частота различных видов нарушений (в абсолютных цифрах) в течение 3 дней на этапах технологического процесса производства анализов.

    +

    pic 0181
    Рис. 6.4. Виды нарушений технологического процесса производства анализов: 1 - неправильное взятие крови; 2 - неправильная подготовка мазков для исследования; 3 - неправильная транспортировка материала; 4 - неправильный сбор биоматериала на исследование

    + С помощью диаграммы Парето можно достичь больших результатов в обеспечении качества лабораторных анализов, сосредоточив усилия на проблемах, имеющих свое отражение в самом высоком столбике, не уделяя внимания в данный момент реже встречающимся нарушениям.

    1. Гистограмма отражает причину тех или иных нарушений, то есть позволяет детализировать график Парето. Ее применяют, когда требуется исследовать и представить распределение данных о числе единиц в каждой категории с помощью столбикового графика. На рис. 6.5 представлена частота (%) неправильного сбора биоматериала на исследования за 3 дня по их видам.

      pic 0182
      Рис. 6.5. Частота неправильного сбора биоматериалов по их видам: 1 - разовая моча; 2 - отделяемое мочеполовых органов; 3 - моча для исследования на катехоламины; 4 - суточная моча; 5 - мокрота; 6 - кал
    2. Временной ряд (линейный график по времени) используют, когда требуется представить изменения наблюдаемых данных за определенный период времени. Временной ряд позволяет сосредоточить внимание на действительно существенных нарушениях технологического процесса производства анализов. На рис. 6.6 показано время доставки крови в лабораторию после ее взятия.

      pic 0183
      Рис. 6.6. Распределение проб крови в зависимости от времени доставки в лабораторию

      Вертикальной линией на 45-й минуте обозначено контрольное время доставки взятой крови из отделения стационара. Кровь, доставленная позже 45 мин после взятия, служит поводом для установления причин нарушения технологической операции доставки крови в лабораторию.

    3. Контрольная карта. Примером такой карты может быть карта ВКК, которая представляет собой временной ряд со статистически определенными верхней и нижней границами, нанесенными по обе стороны от средней линии.

    4. Диаграмма рассеяния (разброса) иллюстрирует взаимосвязь между двумя параметрами. Ее применяют, когда требуется представить, что происходит с одной из переменных величин, если другая переменная изменяется, и установить, существует ли связь между ними. Взаимосвязь между переменными величинами может быть положительной, отрицательной или отсутствовать. На рис. 6.7 представлена положительная взаимосвязь между наличием гемолиза в пробах крови и задержкой в их доставке.

      pic 0184
      Рис. 6.7. Зависимость между количеством случаев гемолиза в пробах крови и временем их доставки в лабораторию

На основании общих подходов и критериев каждая КДЛ должна выработать свой путь к ВУК лабораторных анализов. Разные лаборатории существенно отличаются друг от друга по своим возможностям, опыту, квалификации специалистов, наличия оборудования и т.д. Вместе с тем использование универсальных методов и средств позволяет в различных условиях успешно решать задачи непрерывного повышения качества клинических лабораторных исследований.

ВУК лабораторных анализов представляет собой программу, состоящую из нескольких этапов, таких как:

  • обнаружение, идентификация имеющихся проблем и прогнозирование потенциальных проблем в технологическом процессе производства анализов;

  • объективная оценка причин и следствий проблемы;

  • выработка программы по решению проблемы;

  • осуществление программы по устранению проблемы;

  • непрерывный мониторинг программы по устранению проблемы;

  • документирование в целях демонстрации эффективности программы по решению проблемы.

Подводя итог всему вышеизложенному, следует подчеркнуть, что практическое использование методологии ВУК для непрерывного повышения качества результатов лабораторных исследований базируется на основных принципах, методах и инструментах, которые разработаны современными школами управления производством (рис. 6.8).

Далее рассмотрим, как необходимо практически применять универсальные методы и средства совершенствования технологических процессов производства лабораторных анализов.

pic 0185
Рис. 6.8. Основные принципы, методы и инструменты непрерывного повышения качества результатов лабораторных исследований

6.4. ЛАБОРАТОРНЫЕ ОШИБКИ

В настоящее время существует общее понимание врачей, что ошибки в лабораторной медицине являются частью гораздо более широкой проблемы, называемой диагностической ошибкой. Свидетельства о важности и прямой связи между диагностическими ошибками и ошибками в лабораторной медицине основаны на серии результатов исследований, приведенных в медицинской литературе. В частности, исследования, проведенные на преаналитическом этапе (первоначальные процедуры, проводимые вне клинической лаборатории или, по крайней мере частично, вне контроля персонала лаборатории) подтверждают, что неспособность назначить необходимые диагностические исследования (включая лабораторные анализы) составляет 55% среди наблюдаемых нарушений, приводящих к непостановке диагноза и поздней диагностике у амбулаторных пациентов (Hickner J. et al., 2008), и 58% ошибок в отделениях неотложной помощи (Kachalia A. et al., 2007).

Кроме того, существует осознание, что лабораторной ошибкой необходимо считать любую ошибку, которая возникает в непрерывном процессе от назначения лабораторных исследований и заканчивая получением результатов анализов, их интерпретацией и действиями, предпринятыми клиницистом по оказанию пациенту медицинской помощи. Этот непрерывный процесс в медицинской литературе получил название «TTP (Total Testing Process) - единый процесс лабораторного тестирования.

Международная организация по стандартизации (ISO/TS 22367) определила лабораторную ошибку, как «невозможность выполнить запланированное действие так, как это было запланировано, или использование неверного плана для достижения цели на любом этапе лабораторного цикла, начиная с составления заявки на исследование и заканчивая предоставлением отчета о результатах, правильной интерпретацией результатов и использованием адекватных действий, соответствующих полученным результатам.».

Традиционно общий процесс тестирования разделен на три этапа: преаналитический, аналитический и постаналитический. Такое разделение сделано в целях детализации процессов и процедур, происходящих на различных этапах, их последующей стандартизации и выработки конкретных мероприятий по снижению лабораторных ошибок. Частота лабораторных ошибок приведена в табл. 6.1.

Таблица 6.1. Типы и относительная частота ошибок на разных этапах единого процесса лабораторного тестирования
Этап TTP Тип ошибки Частота, %

Преаналитический вне лаборатории

Неправильно назначенный тест. Ошибка при заполнении направления. Неправильная идентификация пациента/пробы. Нарушение технологии взятия пробы. Некачественный сбор проб (гемолиз, свертывание крови, недостаточный объем и т.д.). Не соответствующий контейнер для пробы. Нарушение условий подготовки, хранения и транспортировки проб

46,0-68,2

Преаналитический в лаборатории

Нарушение сортировки и маршрутизации. Утеря пробы.

Нарушение аликвотирования, пипетирования и маркировки.

Нарушение условий центрифугирования (время и/или скорость)

3,0-5,3

Аналитический

Неисправность оборудования. Смешивание образцов. Интерференция (эндогенная или экзогенная). Нарушения в контроле качества

7,0-13

Постаналитический в лаборатории

Неверная проверка аналитических данных. Сбой в предоставлении результата анализа. Превышение времени проведения анализа. Неправильная запись данных и ручная ошибка транскрипции.

Несообщение/задержка сообщения критических результатов

12,5-20,0

Постаналитический вне лаборатории

Отложенная/пропущенная реакция на результат критического анализа. Неправильная интерпретация. Неадекватный план последующих действий. Неспособность назначить соответствующую консультацию

25,0-45,5

Большинство ошибок происходит на пре- и постаналитических этапах (табл. 6.1) (Hammerling J.A., 2012). В целом, по оценкам ряда публикаций, результаты лабораторных исследований ошибочны в 2-4% случаев (Howanitz P.J., 2005). Согласно данным G. Lippi и соавт. (2010), общая частота ошибок процесса тестирования варьирует от 0,1 до 3,0% (от 1000 до 30 000 на 1 млн анализов). В исследованиях, проведенных P. Carraro и М. Plebani (2007), продемонстрировано снижение лабораторных ошибок за 30 лет с 0,47% в 1977 г. до 0,33% в 2007 г. (с 4700 до 3300 на 1 млн анализов).

На преаналитическом этапе лабораторные ошибки встречаются наиболее часто и связаны с нарушением технологии взятия проб биологического материала для исследований, взятие проб в несоответствующие контейнеры и ошибками при заполнении бланков-заявок. Преаналитические ошибки составляют до 75% всех ошибок, допущенных при проведении лабораторных исследований. Их спектр достаточно широк. Так, Колледж американских патологов провел анализ 114 934 амбулаторных заявок на лабораторные исследования, в 5514 заявок (4,8%) были выявлены ошибки заполнения бланков-заявок и ввода информации в ЛИС. При этом в 1,4% случаев один или несколько тестов, указанных в бланке-заявке, не были введены в ЛИС, в 1,1% случаев, по крайней мере, один тест был заказан в ЛИС, но не указан в бланке-заявке, 1,9% случаев содержали одно или несколько несоответствий данных врача-клинициста в бланке-заявке и введенных в ЛИС.

В табл. 6.2 приведены ошибки, относящиеся к преаналитическому этапу, выявленные в КДЛ госпиталя Сан-Рафаэля (Милан, Италия) в течение 1 года (Bonini P. et al., 2002). Данные указывают количество отсутствующих результатов тестов, относящихся к определенному типу преаналитической ошибки, а не количество проблемных проб (например, одна гемолизированная проба могла вызвать отсутствие 20 результатов или более). Следует отметить существенную разницу числа ошибок между стационарными и амбулаторными пациентами: было зарегистрировано 15 503 ошибки в 2 583 850 результатах теста (0,60%) для стационарных пациентов, против 792 ошибок в 2 032 133 тестах (0,039%) для амбулаторных пациентов. Причинами таких отличий авторы считали низкую профессиональную подготовку приходящего персонала, который осуществлял взятие проб у стационарных пациентов, по сравнению с более высоким профессионализмом постоянного персонала, участвующего в амбулаторном приеме, и большей сложностью и разнообразием проб, которые брались у стационарных больных.

Таблица 6.2. Тип ошибок на преаналитическом этапе

Тип ошибки

Количество ошибок

стационарные пациенты

амбулаторные пациенты

Гемолиз в пробе

8494

256

Недостаточно биоматериала в пробе

3256

102

Неправильно взятая проба

1824

289

Сгусток в пробе с антикоагулянтом

792

80

Неправильная идентификация

287

2

Отсутствие подписи на пробе (группа крови)

266

-

Пустая проба

238

8

Отсутствие или неправильное оформление направления

120

-

Неправильная доставка пробы (не во льду)

75

6

Повреждение емкости пробы при центрифугировании

57

36

Тест заказан повторно

31

-

Неподкисленная проба мочи

24

-

Открытый контейнер с пробой

20

13

Направление без подписи

14

-

Не указан суточный объем мочи

5

-

Всего

15 503

792

Аналитический этап начинается с момента готовности пробы биологического материала к исследованию и заканчивается проверкой и оценкой результата анализа врачом клинической лабораторной диагностики. Проверка аналитических и технических характеристик метода исследования и лабораторных анализаторов на предмет точности, чувствительности, специфичности и линейности - это те области, где ошибки могут возникать на аналитическом этапе лабораторных исследований. Специалисты лабораторий на протяжении десятилетий направляли свои усилия на повышение аналитического качества лабораторного тестирования, установив строго регламентированные стандарты внутреннего и внешнего контроля качества. В дальнейшем система контроля качества в лабораторной медицине получила развитие в виде лицензирования КДЛ, сертификации и аккредитации специалистов лабораторий, стандартизации всех технологических процессов и процедур, осуществляемых в лабораториях.

Как результат, уже в конце 90-х гг. ХХ столетия по сравнению с 1970-ми гг. было отмечено резкое снижение показателей аналитических ошибок - с 161 116 на 1 млн исследований (частей на миллион - ppm) до 447 ppm (Witte VanNess S.A. et al., 1997). Фактически за последние десятилетия 10-кратное снижение коэффициента ошибок при анализе было достигнуто благодаря повышению надежности и стандартизации аналитических методов, реактивов и анализаторов. Кроме того, успехи в области информационных технологий, контроля качества и обеспечении качества внесли ценный вклад в снижение ошибок.

Несмотря на установленные в лабораторной медицине высокие стандарты качества, аналитическое качество лабораторных анализов остается достаточно серьезной проблемой. В частности, была зафиксирована относительно высокая частота аналитических ошибок для иммунохимических анализов, которые приводили к грубым диагностическим ошибкам и неблагоприятным сопутствующим клиническим результатам. Проблема интерференции на аналитическом этапе актуальна не только в отношении иммунохимических анализов. Например, моноклональные белки могут влиять на многие лабораторные измерения, включая глюкозу, билирубин, С-реактивный белок, креатинин и альбумин. Частота этого типа ошибки является переменной и, вероятно, недооценена. Отсутствие сопоставимости результатов исследования одного и того лабораторного показателя между различными методами и лабораториями, хотя и не считается аналитической ошибкой в строгом смысле, может также оказывать влияние на клиническую оценку результата и возникновение диагностической ошибки. Частота аналитических ошибок в КДЛ приведена в табл. 6.3, которая отражает динамику снижения числа ошибок за последние 40 лет.

Таблица 6.3. Показатели аналитических ошибок в клинических лабораториях
Количество ошибок: одна ошибка на каждые Публикация

33-50 лабораторных результатов

McSwiney R.R., Woodrow D.A. (1969) [48]

50-100 лабораторных результатов

Souverijn J.H.M.et al. (1980) [49]

330 лабораторных результатов

Chambers A.M. et al. (1986) [50]

1000 лабораторных результатов

Boone D.J. (1990) [51]

8300 лабораторных результатов или 2000 пациентов

Lapworth R., Teal T.K. (1994) [52]

900 пациентов

Nutting P.A. et al. (1996) [53]

214 лабораторных результатов

Plebani M., Carraro P. (1997) [54]

164 лабораторных результата

Stahl M. et al. (1998) [55]

283 лабораторных результата

Hofgartner W.T., Tait J.F. (1999) [56]

Если рассматривать производство результатов анализов только в рамках аналитического этапа, то необходимо констатировать, что она имеет гораздо более низкое количество ошибок, чем большинство других направлений практической медицины. В лучших КДЛ в аналитической фазе средняя частота ошибок составляет всего 0,002%, или 200 ppm (Gras J.M., Philippe M., 2007). Для сравнения: частота ошибок в диагностике внутрибольничных инфекций и ошибок при назначении медикаментозных препаратов более чем в 3000 раз выше, чем в КДЛ (Leape L.L., 2009). Однако в индустриальном производстве, например в авиационной промышленности, частота ошибок составляет 1-2 ppm, поэтому КДЛ есть над чем работать по совершенствованию производственных процессов.

Наиболее распространенными проблемами аналитического этапа, приводящими к диагностическим ошибкам, в настоящее время остаются:

  1. аналитическая интерференция и, как следствие, ложноположительные и ложноо трицательные результаты тестов;

  2. позднее получение результатов анализов;

  3. пропущенные или неправильно оцененные данные при цитологических или гистологических исследованиях злокачественных образований (2-4%).

На постаналитическом этапе всего процесса тестирования результаты анализов передаются клиницисту, который должен их интерпретировать и принять соответствующее диагностическое или терапевтическое решение. Несвоевременная передача или утеря бланков результатов анализов, неинформирование врача и пациента о критических результатах исследования, неправильная интерпретация и использование результатов анализов являются наиболее частыми типами лабораторных ошибок.

Было установлено, что неправильная интерпретация результатов лабораторных тестов лежит в основе большого процента диагностических ошибок в амбулаторных условиях и в отделениях неотложной помощи. Неинформирование врача и пациента о клинически значимых изменениях в результатах лабораторных тестов, отсутствие регистрации о доставке такой информации в лечебное учреждение, врачу или медицинской сестре, является одной из распространенных ошибок на постаналитическом этапе и встречается с частотой один случай на 14 результатов тестов. Например, L.P. Casalino и соавт. (2009) сообщают, что амбулаторные пациенты не были информированы об уровне в крови общего холестерина со значением 8,2 ммоль/л, гематокрита - 28,6% или уровне калия 2,6 ммоль/л. Отсутствие информирования амбулаторных пациентов или регистрации передачи информации о результатах тестов врачам в лаборатории составило 7,1%, в других лабораториях встречается с частотой от 0 до 26%. Результаты другого исследования показали, что более 2% (2,6% в 2000 г., 2,1% в 2007 г.) пациентов с уровнем ТТГ, превышающим 20 МЕ/л, не получали соответствующего лечения (Schiff G.D. et al., 2005). Еще одно исследование показало, что из 1095 пациентов почти половина была выписана из клиники до получения результатов лабораторных анализов, 9% из которых требовали коррекции лечения (Roy C.L. et al., 2005). В табл. 6.4 приведена частота неправильной интерпретации диагностических тестов в разных клинических условиях (Plebani M., 2009).

Таблица 6.4. Частота неправильной интерпретации диагностических тестов в разных клинических условиях
Тип ошибки Амбулаторная помощь Внутренние болезни Неотложная помощь

Неправильная интерпретация результатов тестов, %

37

38

37

Существуют большие различия в оценках ненадлежащего использования или неиспользования результатов лабораторных анализов врачами-клиницистами в лечении пациентов. M.D. Silverstein (2003) сообщает, что врачами-клиницистами не используется:

  • от 11 до 70% биохимических и гематологических тестов;

  • от 5 до 95% общеклинических и микробиологических анализов мочи;

  • от 17,4 до 55% анализов сердечных ферментов и гормональных тестов щитовидной железы.

Согласно данным M. Kanter (2012), 5324 пациентам с повышенными значениями креатинина в крови повторное исследование не проводилось в течение 90 дней; 2565 пациентам с повышенными значениями креатинина в крови повторное исследование было назначено, при этом у 1311 пациентов (51%) выявлены повышенные значения креатинина, у 1078 из них поставлен диагноз хронической почечной недостаточности.

Приведенные данные свидетельствуют о том, что начальные и заключительные этапы TTP - это прежде всего составление заявки на лабораторные исследования и реакция врача на результаты лабораторных анализов, не только более подвержены ошибкам, чем все другие этапы, но также являются наиболее важными причинами потенциальных неблагоприятных исходов для пациентов. Более того, данные подтверждают, что на пути взаимодействия между клинической практикой и лабораториями наблюдается значительное количество ошибок.

Ошибки в процессе лечения связаны с неправильными врачебными решениями или действиями, которые принимаются на основании данных результатов лабораторных исследований. Риск нежелательных последствий и неадекватного лечения для пациентов вследствие лабораторных ошибок составляет от 2,7 до 12,0% (Carraro P., Plebani М., 2007). В 24,4-30,0% случаев лабораторные ошибки приводят к серьезным проблемам для пациентов при оказании медицинской помощи (Plebani M., 2009). M. Plebani и P. Carraro (2007) показали, что ошибки приводили к неоправданному поступлению больных в отделения неотложной помощи, неадекватной инфузионной терапии, изменениям в дозировании гепарина и дигоксина - 6% пациентов, а 19% пациентам были назначены ненужные дополнительные обследования. Влияние лабораторных ошибок на результаты лечения, согласно данным литературы, приведены в табл. 6.5.

Таблица 6.5. Влияние лабораторных ошибок на результаты лечения
Авторы Количество ошибок Влияние на лечение, % Неблагоприятные последствия или риск побочных эффектов, %

Ross J.W., Boone D.J. (1989) [66]

336

30

7

Nutting P.A. et al. (1996) [53]

180

27

12

Plebani M., Carraro P. (1997) [54]

189

26

6,4

Carraro P., Plebani M. (2007) [37]

160

24,4

2,7

Приведенный анализ структуры лабораторных ошибок на различных этапах лабораторного тестирования показывает, что значительная доля ошибок относится к когнитивной или мыслительной деятельности врачей-клиницистов и врачей лаборатории.

6.5. ВСЕОБЩЕЕ УПРАВЛЕНИЕ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ НА ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ

ВУК результатов лабораторных исследований должно охватывать все этапы единого технологического процесса производства анализов. Если в ВУК лабораторных анализов включается только часть технологических процессов и операций этого единого процесса, то эффективность системы ВУК значительно снижается.

Концепция ВУК является условием совершенствования всех организационных и технологических процессов, способных влиять на качество результатов анализов. При практической реализации этой концепции необходимо использовать индикаторы качества для обнаружения нарушений технологических процессов и операций (процедур). Индикаторы качества позволяют выявлять нарушения или ошибки выполнения технологических процедур производства анализов. Фактически любая ошибка, независимо от ее тривиального характера, может указывать на слабые стороны в организации и выполнении процедур производства лабораторных исследований.

По сравнению с другими видами медицинских ошибок, ошибкам в лабораторной диагностике уделяется мало внимания. Причины такого отношения в значительной степени связаны с многоэтапностью выполнения лабораторных исследований (назначение лабораторных тестов, взятие проб биологического материала, доставка его в лабораторию, подготовка биоматериала и проведение анализов, получение результатов, их оценка и действия врача-клинициста) и временем, которое отделяет лабораторные исследования, действия врачей и результаты оказания медицинской помощи пациентам. Более того, как правило, только аналитический этап выполнения лабораторных исследований подпадает под лабораторный контроль, тогда как пре- и постаналитические этапы являются ответственностью врача, медицинской сестры, пациента и других лиц, вовлеченных в назначение анализов, идентификацию пациента, ввод данных, сбор и транспортировку проб биологического материала в лабораторию. Сосредоточение внимания только на определенных этапах лабораторных исследований привело к размыванию понятия лабораторной ошибки в клинической медицине и причин, лежащих в их основе. Как следствие, в медицинской литературе и практике для определения ошибок в лабораторной диагностике стали использовать различные термины (например, «недостатки», «выбросы», «неприемлемые результаты», «результаты низкого качества»), что не способствовало выявлению причин ошибок и разработке мер по их коррекции. К сожалению, лабораторные ошибки не рассматриваются как возможность повысить качество результатов лабораторных исследований и качество оказания медицинской помощи.

6.5.1. УПРАВЛЕНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКИМ ПРОЦЕССОМ ВЗЯТИЯ, СБОРА И ТРАНСПОРТИРОВКИ БИОМАТЕРИАЛА

Непрерывное совершенствование качества лабораторных исследований должно охватывать и технологический процесс взятия, сбора и транспортировки биоматериала в лабораторию. От качества выполнения данного технологического процесса во многом зависит качество результатов лабораторных исследований.

У нас в стране взятие крови венепункцией, сбор биоматериала и его доставку в лабораторию осуществляет медицинский персонал лечебного отделения или поликлиники, что нередко приводит к нарушениям данного технологического процесса и служит наиболее частой причиной снижения качества результатов лабораторных исследований.

При рассмотрении семи основных инструментов диагностики и совершенствования технологических процессов были приведены основные причины нарушений технологического процесса взятия, сбора и транспортировки биоматериала в лабораторию (см. рис. 6.4). Проанализируем их более детально.

Основными проявлениями нарушений технологической операции взятия крови на исследование венепункцией (рис. 6.9) служат гемолиз в пробах, неправильная маркировка вакуумных пробирок с кровью, наличие сгустков в пробирках с ЭДТА и ошибочный выбор вакуумных пробирок для гормональных исследований (АКТГ, ренин, альдостерон, ангиотензин I, II). Пробы крови, взятые с перечисленными нарушениями, на исследование не принимали, во всех случаях повторно брали кровь, что требовало дополнительных расходов за счет использования материалов и вакуумных пробирок.

pic 0186
Рис. 6.9. Основные виды нарушений технологической операции взятия крови на исследование венепункцией за 3 дня работы: 1 - гемолиз в пробах; 2 - неправильная маркировка вакуумных пробирок с кровью; 3 - наличие сгустков в вакуумных пробирках с ЭДТА; 4 - ошибочный выбор вакуумных пробирок для гормональных исследований

В связи с тем что основной причиной нарушения технологической операции взятия крови служит гемолиз, необходимо составить причинно-следственную схему (рис. 6.10), провести сравнительный анализ сроков доставки этих проб в лабораторию, а также выявить, из каких отделений они доставлены. Анализ такой схемы может показать отсутствие нарушений в сроках доставки проб крови. В таких случаях проводится детальное изучение работы процедурных медицинских сестер, осуществляющих взятие крови. При наблюдении за техникой венепункции и взятия крови процедурными медицинскими сестрами типичными ошибками, приводящими к гемолизу, могут быть длительное (более 1 мин) наложение жгута и использование игл малого диаметра для взятия проб крови. В таких случаях с процедурными медицинскими сестрами необходимо проводить дополнительные занятия по технике проведения венепункции и взятия крови и осуществлять дальнейший мониторинг их работы. Если отмечается резкое снижение количества гемолизированных проб, то это указывает на эффективность проведенных мероприятий и, естественно, повышает качество результатов лабораторных исследований и снижает финансовые расходы (нет повторного расходования материалов и вакуумных пробирок для взятия крови).

pic 0187
Рис. 6.10. Причинно-следственная схема для выявления гемолиза в пробах крови

Следует подчеркнуть, что использование при взятии крови и сборе биоматериала на анализы фирменных приспособлений (вакуумные системы) позволяет стандартизовать данные технологические операции и повысить качество результатов исследований. Опыт показывает, что при переходе с метода взятия крови на биохимические и коагулологические исследования в обычные стеклянные пробирки на метод с использованием фирменных приспособлений количество гемолизированных проб и проб с неправильным соотношением крови и антикоагулянта снижается на 25%.

Для уменьшения дефектов, связанных со взятием крови и сбором материала, специалисты лаборатории должны ежемесячно проводить занятия с медицинскими сестрами отделений и лаборантами по следующим темам.

  1. Подготовка рабочего места для взятия венозной крови.

  2. Идентификация пациента и маркировка собранного биоматериала.

  3. Методика взятия венозной крови на лабораторные исследования.

  4. Методика взятия крови на исследование КОС и газового состава.

  5. Особенности взятия крови на исследование у больных реанимационных отделений.

  6. Взятие крови у инфекционных больных.

  7. Особенности взятия и доставки крови на гормональные исследования.

  8. Правила доставки собранного биоматериала на исследование.

  9. Действия в ситуациях, когда невозможно взять кровь.

  10. Осложнения венепункции и действия медицинского персонала.

Большое влияние на качество результатов лабораторных исследований оказывают условия транспортировки и сроки доставки биоматериала в лабораторию. Эта проблема особенно актуальна, если биоматериал поступает из других учреждений и сроки доставки значительно удлиняются. В связи с этим основной причиной отказа в приеме проб крови, доставляемых из других учреждений, является наличие гемолиза.

Для уменьшения количества гемолизированных проб крови можно использовать предварительное центрифугирование их на месте взятия, отбор сыворотки или плазмы с последующей доставкой в лабораторию. Такие меры обычно способствуют снижению количества гемолизированных проб в 2-3 раза. Еще большей эффективностью для практического решения проблемы гемолиза обладают фирменные приспособления с наличием в них разделительного геля. После взятия крови такие фирменные приспособления должны подвергаться центрифугированию. При центрифугировании гель всплывает и располагается между эритроцитами и сывороткой, разделяя их. Такие пробы можно поместить в холодильник, а затем транспортировать. Фирменные приспособления с гелем стоят дороже обычных, но за счет снижения повторных взятий крови общие финансовые расходы на их приобретение снижаются на 7% по сравнению с обычными приспособлениями, и, главное, повышается качество результатов исследований.

Не меньше усилий нужно уделять обучению специалистов лаборатории, делая основной упор на знание ими методики взятия крови, сбора биоматериала, условий и временных интервалов их доставки в лабораторию, важности строгого выполнения критериев отказа в приеме проб на исследование.

Фельдшер-лаборант при приеме материала должен обращать внимание не только на качество доставленных проб, но не меньшее значение уделять проверке правильного и полного заполнения заявки на исследование. Если в заявке невозможно разобрать фамилию пациента, не указан диагноз или отделение, из которого доставлен биоматериал, не перечислены тесты, которые необходимо выполнить, нет фамилий врача, назначившего анализы, и медицинской сестры, проводившей взятие крови, и такой биоматериал принят лабораторией, то в дальнейшем специалисты лаборатории тратят много времени на выяснение, чья эта кровь, откуда доставлена, что необходимо выполнить, куда направить результаты. В конечном итоге большинство таких исследований не выполняется или их результаты теряются.

Критерии отказа в приеме биоматериала обязательно необходимо утвердить у руководителя медицинского учреждения, изучить их на занятиях с клиницистами, медицинскими сестрами и специалистами лаборатории. Их перечень должен постоянно находиться у фельдшера-лаборанта, принимающего биоматериал. Когда клиницисты и медицинские сестры отделений знают, что лаборатория может на законных основаниях отказать им в приеме материала, они с большей тщательностью и ответственностью относятся к взятию биоматериала и его оформлению. Для правильного оформления заявки на анализы, получения всей необходимой информации о биоматериале и пациенте специалисты лаборатории должны разработать оптимальную форму заявки, согласовав ее с клиницистами, и обеспечить бланками-заявками все лечебные подразделения в достаточном количестве. В дальнейшем это позволит избежать затрат времени для выяснения информации, не указанной в заявках, и связанных с этим ошибок.

Клиницистам нужно объяснить важность аккуратного заполнения направлений на анализы, тщательной маркировки образцов биоматериала, полученных своевременно, методически правильно и быстро доставленных в лабораторию. Лечение, основанное на результатах анализов, полученных при использовании ошибочно маркированных или неправильно взятых проб, может принести не меньше вреда, чем неудачная хирургическая операция, особенно если больному оказывается неотложная помощь. Более того, даже если ошибка будет обнаружена, драгоценное время будет упущено, тогда как несколько минут внимания и обдумывания в начале работы могли бы предотвратить эти нежелательные последствия.

Все изложенные выше технологические операции (составление заявки на исследование, взятие, сбор и транспортировка биоматериала) осуществляются вне лаборатории, тем не менее специалисты лаборатории должны принимать в них самое заинтересованное и непосредственное участие для обеспечения качества результатов анализов. Данные литературы и наш опыт свидетельствуют о том, что там, где специалисты лаборатории не помогают клиницистам при составлении заявки, не проводят занятий с процедурными медицинскими сестрами по правилам взятия, сбора и транспортировки биоматериала, качество результатов исследований повысить невозможно.

Таким образом, ВУК на преаналитическом этапе единого технологического процесса производства лабораторных анализов должно проводиться регулярно, оперативно, с использованием всех критериев и всех возможных средств. Мероприятия по устранению выявленных отклонений от критических путей должны быть максимально конкретными, а после их проведения должна оцениваться их эффективность. Отсутствие улучшения качества выполнения технологического процесса (операции) будет свидетельствовать о неэффективности проведенных мероприятий и потребует повторного анализа причин нарушений в целях определения других подходов для решения возникших проблем.

6.6. ВСЕОБЩЕЕ УПРАВЛЕНИЕ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ НА АНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ

Все основные инструменты ВУК должны быть в полной мере задействованы и на аналитическом этапе производства анализов.

Первая технологическая операция этого этапа производства - прием доставленного биоматериала на исследование. Как это не покажется странным, но правильное проведение именно этой операции позволяет во многом улучшить выполнение всех последующих производственных процессов и повысить качество результатов лабораторных анализов. Именно с этой технологической операции поступает основная информация для анализа причин некачественного взятия материала на исследование, его поздней доставки, неправильно оформленных заявок на анализы.

Основным средством избежать таких осложнений и добиться положительных результатов является разработка четких критериев отказа в приеме биоматериала на исследование. Такие критерии (см. главу 2) должны быть обязательно утверждены у руководителя лечебного учреждения, изучены на занятиях клиницистами, медицинским сестрами и специалистами лаборатории, постоянно находиться у фельдшера-лаборанта, принимающего биоматериал, и строго выполняться всеми. Практический опыт показывает, что только административное регулирование данной технологической операции приносит положительные результаты, все другие подходы дают временный эффект. Когда клиницисты и медицинские сестры отделений знают, что лаборатория может на законных основаниях отказать им в приеме материала, они с большей тщательностью и ответственностью относятся к взятию биоматериала и его оформлению. В целях улучшения оформления заявки на анализы заведующие КДЛ должны сами разработать оптимальную форму заявки, согласовать ее с клиницистами и обеспечить бланками-заявками все лечебные подразделения в достаточном количестве. Это трудная и обременительная для лаборатории работа, требующая дополнительных затрат времени, но если специалисты лаборатории не будут уделять ей внимания, из клинических подразделений будут поступать неправильно оформленные бланки-заявки, что потребует еще больших затрат времени для выяснения информации, не указанной в заявках. Клиницисты и медицинские сестры будут постоянно ссылаться на отсутствие бланков-заявок и этим объяснять нарушение правил оформления заявок, утвержденных руководством медицинского учреждения. Задача специалистов лаборатории состоит в том, чтобы не предоставлять им такой возможности, постоянно анализировать причины нарушений в оформлении бланков-заявок, разрабатывать меры по их устранению и самое главное - не принимать биоматериал с неправильно оформленной заявкой, несмотря на давление клиницистов.

Вторая технологическая операция аналитического этапа производства анализов - подготовка доставленного в лабораторию биоматериала к исследованию.

Если подходить к оценке ее качества без четких критериев, на первый взгляд кажется, что биоматериал подготовлен к исследованиям на хорошем уровне. Однако, когда качество подготовленного биоматериала оценивается комплексно, с помощью всех разработанных критериев, выясняется совершенно другая картина. Типичные нарушения в подготовке проб крови и мочи для исследований приведены в табл. 6.6.

Данные таблицы показывают, что 18,7% мазков крови готовятся лаборантами повторно из-за нарушений их приготовления и некачественной окраски. Примерно 75,3% проб крови подвергаются центрифугированию с несоблюдением временных параметров, в результате в 14,1% проб регистрируется плохое разделение крови на фракции, и эти пробы подвергаются повторному центрифугированию. При этом затраты времени на данную операцию увеличиваются в 2 раза. В 2% проб крови отмечается нарушение особых условий центрифугирования (температура ротора - 4 °С).

Нарушение времени центрифугирования проб мочи допускается в отношении 75,3% проб. Однако повторному центрифугированию подвергается около 10% проб, и только если при микроскопии осадка врачи лаборатории выявят явное расхождение между данными осадка и химического состава мочи (белок, эритроциты).

Таблица 6.6. Типичные нарушения выполнения технологических операций (преаналитический этап - подготовка проб крови и мочи)
Технологическая операция/тип нарушения Количество, %

Подготовка доставленных проб крови

Приготовление мазков крови (всего):

100

  • неравномерная толщина мазка;

25,1

  • мазки, превышающие 3/4 общей длины предметного стекла;

15,1

  • «метелочка» мазка расположена ближе 1,5 см от края стекла;

10

  • невозможно прочесть надписи на мазке.

2,5

Окраска мазков крови (всего):

100

  • отсутствие разницы между темно-фиолетовым ядром лейкоцитов

и ярко-красно-оранжевыми эритроцитами.

13,7

Из них потребовали повторного приготовления и окраски.

18,7

Центрифугирование (количество проб крови):

100

  • нарушение времени центрифугирования;

75,3

  • нарушение условий центрифугирования;

2

  • плохое качество разделения фракций крови.

14,1

Из них потребовали повторного центрифугирования.

14,1

Подготовка проб мочи к исследованиям (всего):

100

  • нарушение времени центрифугирования;

100

  • нарушение условий центрифугирования.

0

Из них потребовали повторного центрифугирования

18,6

Технологические операции подготовки доставленного в лабораторию биоматериала проводят лаборанты. В большинстве лабораторий такие операции выполняются вручную, поэтому они весьма субъективны. Оценивать качество их выполнения должны врачи лабораторий, ведя ежедневный учет выявленных нарушений. Для того чтобы добиться хороших результатов, работа по выявлению и устранению нарушений должна вестись регулярно, с объяснением лаборантам важности данной операции, критериев оценки качества, необходимости точного и тщательного выполнения всех пунктов инструкции. В отдельных случаях врачу лаборатории необходимо непосредственно присутствовать при выполнении лаборантом технологической операции.

Такой анализ может быть дополнен учетом выявлений частоты нарушений у каждого лаборанта, что укажет на то, с каким конкретно специалистом необходимо работать больше в плане повышения качества выполнения им данной технологической операции. Наш опыт показывает, что мероприятия по повышению качества выполнения технологической операции подготовки биоматериала к исследованиям значительно снижают количество нарушений критериев оценки, однако вследствие субъективности такой оценки нарушения остаются на уровне 8-12%.

Наибольших успехов в стандартизации выполнения данной технологической операции и повышении ее качества удается добиться с помощью средств автоматизации. Например, автоматизация процедур приготовления и окраски мазков крови с помощью анализатора «Гема-Тек 2000», который контролирует толщину мазка, количество красителя и время окраски, приводит к устранению нарушений.

Регулярный инженерный контроль за работой центрифуг с автоматическим таймером позволил исключить субъективизм в определении длительности центрифугирования, стандартизовать условия приготовления осадка мочи, плазмы и других биоматериалов и тем самым повысить качество анализов.

Важным критерием технологической операции подготовки биоматериала к исследованиям является время, затраченное на ее выполнение. В главе 2 приведены допустимые временные интервалы подготовки биоматериала для различного вида анализов. Для ВУК необходим постоянный учет и анализ данного критерия. Задержка по времени биоматериала на этапе технологической операции подготовки его к исследованиям нередко становится причиной снижения качества результатов анализов, появления патологических отклонений в отдельных показателях, которые пытаются объяснить нарушением технологической операции взятия крови, что не соответствует действительности.

Опыт зарубежных стран показывает, что использование ЛАС является основным, магистральным направлением повышения качества данной технологической операции. ЛАС позволяют исключить фактор субъективизма при ее выполнении, стандартизировать условия подготовки биоматериала (в том числе и фактор времени), контролировать его качество, доставлять его к анализаторам сразу же по готовности биоматериала к исследованиям и тем самым способствовать повышению качества результатов лабораторных анализов.

На качество результатов лабораторных исследований на аналитическом этапе оказывает влияние целый комплекс факторов: качество работы и возможности применяемых анализаторов, стабильность электроснабжения, температура окружающей среды, качество калибраторов и контрольных материалов, стабильность реактивов, метод исследования, уровень профессиональной подготовки специалистов лаборатории, а также качество выполнения всех предыдущих технологических операций (правильного взятия и подготовки биоматериала к исследованиям).

Остановимся на возможностях использования критериев, приведенных в главе 2, для оценки качества технологического процесса проведения исследований. К таким критериям относятся:

  • учет неплановых калибровок для всех методов исследования, то есть количества калибровок, которые анализатор не принимает с первого раза, с выяснением их причин;

  • учет сбоев в работе лабораторного оборудования (анализаторов) и анализ их причин;

  • пять контрольных правил Westgard;

  • результаты внешнего контроля качества;

  • наличие регулярного метрологического контроля средств измерений;

  • чувствительность и специфичность аналитического метода;

  • время, прошедшее с момента подготовки биоматериала к исследованиям до непосредственного выполнения анализов.

Типичные нарушения при технологической операции подготовки реактивов, калибраторов и калибровки анализаторов приведены в табл. 6.7. Анализ данных таблицы и результаты наблюдения за работой по приготовлению реактивов и калибраторов показывают, что специалисты лаборатории даже без учета четких критериев выполнения данной технологической операции в 14,6% случаев вынуждены проводить ее повторно. Это происходит в силу того, что при калибровке не удается получить правильный калибровочный график или результаты ВКК выходили за пределы ±3S.

Одним из предложенных критериев оценки качества аналитического этапа производства анализов является учет количества повторных неплановых калибровок. Использование данного индикатора представляет наибольший интерес в плане поиска подходов к сокращению расходов на проведение лабораторных исследований на аналитическом этапе (табл. 6.7). Данные таблицы показывают, что повторные (неплановые) калибровки составляют 26,7% всех проведенных калибровок. Для выяснения конкретных причин повторных калибровок необходимо изучить технологический процесс выполнения исследований. В первую очередь необходимо выяснить, в отношении каких методов исследования калибровки повторяются чаще.

Таблица 6.7. Типичные нарушения выполнения технологических операций (подготовка реактивов, калибраторов и калибровка анализаторов)
Технологическая операция/тип нарушения Количество, %

Подготовка реактивов, калибраторов (всего видов)

100

  • нарушение условий хранения

14,6

  • использование с истекшим сроком годности

7,3

  • нарушение технологии приготовления

13,4

  • использование воды несоответствующей степени чистоты

0

Из них готовились повторно

14,6

Калибровка анализаторов (всего калибровок)

100

  • количество неплановых калибровок

26,7

ВКК (количество контролируемых тестов)

100

  • нарушение пяти контрольных правил Westgard

18,3

  • отсутствие учета результатов участия в национальной системе ВОК

34,1

(всего тестов)

Кроме того, анализ причин повторных неплановых калибровок позволяет косвенно оценивать надежность применяемого в лаборатории метода исследования. Учет количества повторных неплановых калибровок служит дополнением к методу ВКК. Регулярное исследование контрольного материала само по себе является основным методом выявления нарушений в аналитическом процессе, в том числе при калибровке. Однако, анализируя результаты исследований контрольного материала с помощью пяти контрольных правил Westgard, редко акцентируют внимание на том, как часто приходится повторно осуществлять неплановую калибровку анализатора для данного метода. В результате довольно трудно оценить финансовые затраты на повторные калибровки и дополнительный расход реактивов. Использование данного критерия во многих случаях раньше, чем данные контроля качества, может поставить вопрос о замене применяемого метода другим, более чувствительным и надежным.

На рис. 6.11 приведен пример в отношении количества повторных неплановых калибровок для различных биохимических методов исследований. При учете количества таких калибровок биохимического анализатора обращает на себя внимание, что наиболее часто повторной калибровки требуют методы, в основе которых лежит принцип турбидиметрического анализа.

pic 0188
Рис. 6.11. Количество повторных неплановых калибровок для различных методов в течение одной недели: 1 - ферритин; 2 - антистрептолизин О; 3 - иммуноглобулины А, М, G (вместе); 4 - железо; 5 - глюкоза

Учет количества повторных неплановых калибровок, а также расчет расхода реактивов и калибровочных стандартов показывает, что турбидиметрический метод определения ферритина нестабилен, поэтому для сокращения финансовых затрат необходимо перейти на другой метод его определения. Довольно часто повторных неплановых калибровок требуют турбидиметрические методы определения антистрептолизина О и Ig. Если эти тесты выполняются на биохимическом анализаторе с использованием автоматической промывки измерительных кювет, то, прежде чем перейти на альтернативные методы определения данных показателей, необходимо заменить старые кюветы новыми. Если анализ количества повторных неплановых калибровок покажет снижение количества повторных калибровок, то проблема была в кюветах и на альтернативный метод переходить не стоит.

Анализ причин повторных неплановых калибровок глюкозы и железа может показать, что они были обусловлены неправильным обращением с реактивами. В частности, лот с реактивами для определения глюкозы не убирается в холодильник на ночь, а реактивы для определения железа содержат аскорбиновую кислоту, которая быстро окисляется на воздухе, что приводит к утрате аналитических характеристик реактивов и искажению результатов исследований. В таких случаях нужно заменить реактивы.

Нередко основной причиной повторных калибровок могут быть нарушения в работе анализаторов. Эти нарушения в меньшей степени сказываются на качестве результатов исследований, так как анализы в таких случаях просто не выполняют, но они в большой степени влияют на увеличение расхода реактивов, контрольных материалов, калибровочных стандартов, задерживают время выдачи результатов, создают трудности для работы специалистов и резко снижают производительность лаборатории. При сбоях в работе анализаторов все уже разлитые в кюветы реактивы и пробы автоматически выбрасываются, необходимо повторно проводить запуск анализатора, его калибровку, контроль качества. Все это увеличивает расход реактивов, калибраторов, контрольных сывороток и кювет (если они одноразовые). На рис. 6.12 приведены типичные причины сбоев в работе анализаторов.

pic 0189
Рис. 6.12. Причины сбоев в работе биохимических автоанализаторов в течение одной недели: 1 - нарушение электроснабжения; 2 - механические проблемы; 3 - сбои в работе компьютера/автоанализатора

Анализ приведенной диаграммы показывает, что наиболее частой причиной сбоев в работе анализатора является нарушение электроснабжения. У нас в стране нарушения в электроснабжении в виде перепадов напряжения, кратковременных отключений - наиболее болезненная проблема для работы лаборатории. В лучшем случае кратковременные отключения электроснабжения заканчиваются заменой предохранителей, повторением калибровки, контроля качества, анализов, но часто они приводят к значительным поломкам автоанализаторов (может выйти из строя материнская плата, перегореть предохранительный блок), что требует значительных финансовых затрат на ремонт. Основным решением данной проблемы служит установка в лаборатории блока бесперебойного электроснабжения и подключение всех имеющихся автоанализаторов в сеть через этот блок. Блок бесперебойного питания позволяет защитить лабораторное оборудование от кратковременных нарушений электроснабжения, а также завершить проведение исследований при длительных отключениях или авариях электросети, так как он может обеспечить электропитание еще в течение 20-30 мин.

Цена источника бесперебойного питания зависит от его мощности, стоимость 1 Квт составляет в среднем около 1000 усл.ед. Для подключения основного оборудования в электросеть в средней лаборатории необходимо иметь источник бесперебойного электроснабжения мощностью 20-25 Квт. Опыт использования источника бесперебойного электроснабжения показывает, что в результате резкого снижения затрат на ремонт оборудования, повторные калибровки, реактивы для повторных исследований можно окупить расходы на его установку в течение 4-5 мес.

Второй по значимости причиной сбоев в работе анализаторов служат механические нарушения, которые включают засорение пробозаборника, выход из строя трубок основного насоса, смещение позиций пробозаборника и раскапывателя реактивов. Причины этих сбоев нередко удается обнаружить при анализе технологической операции обслуживания и ухода за оборудованием.

Летом большие проблемы в деятельности лаборатории связаны с поддержанием оптимальной температуры в помещениях для обеспечения работы анализаторов. Большинство анализаторов рассчитано для работы в помещениях, где температура воздуха не превышает 28-32 °С. Это обусловлено тем, что анализаторы должны поддерживать определенную температуру в блоке реактивов и кюветах для прохождения реакции, лежащей в основе определения того или иного компонента (чаще 30 °С, или 37 °С). Если температура в помещении превышает 30 °С, анализаторы не в состоянии поддержать оптимальную температуру для хранения реактивов и протекания реакции в кюветах, в результате чего они автоматически отключаются и исследование выполнить невозможно. Однако, даже если анализатор продолжает работать, в таких условиях снижается стабильность реактивов, что требует их более частой замены, проведения повторных калибровок и контроля качества для получения качественных результатов, а следовательно, дополнительных финансовых затрат. В связи с этим для обеспечения микроклимата в помещениях лаборатории, где работают анализаторы, в летний период должны быть установлены кондиционеры достаточной мощности.

Таким образом, учет и анализ причин сбоев в работе оборудования в лаборатории вместе с данными затрат на ремонт, дополнительный расход реактивов, калибровочных стандартов может служить обоснованием для того, чтобы убедить руководство лечебного учреждения в необходимости приобретения источника бесперебойного электроснабжения или установки кондиционера. В конечном итоге эти расходы окупаются, а качество результатов анализов повышается.

Следующей технологической операцией на аналитическом этапе является ВКК.

Результаты ВКК являются основным инструментом ВУК на аналитическом этапе производства анализов. Ежедневные результаты исследований контрольного материала двух уровней для всех методов исследования наносят на контрольную карту и анализируют.

ВКК клинических лабораторных исследований является неотъемлемой частью работы каждой КДЛ ЛПУ. Осуществление ВКК в КДЛ позволяет предупредить и устранить ошибки, повысить точность и диагностическую надежность результатов анализа, обеспечить преемственность в анализах между различными лечебными учреждениями, что в свою очередь способствует уменьшению нагрузки лабораторий, количества дублируемых исследований и экономических затрат на производство анализов. Расширение спектра исследований и усложнение лабораторных тестов, внедрение все более сложных измерительных приборов и средств механизации лабораторного труда не исключают возможностей возникновения ошибок и требуют контроля исследований. Лабораторные ошибки влияют на постановку правильного диагноза и лечение обследуемого, определение сроков выздоровления и прогноза заболевания, а нередко решают и исход болезни. Использование методов контроля дает возможность оценить качество проводимых лабораторных исследований, выявить возникающие при исследовании всевозможные ошибки, их характер и причины, выработать способы устранения ошибок. Контроль за исследованиями обеспечивает хорошую воспроизводимость и правильность результатов анализа на протяжении всего периода работы лаборатории.

При большом практическом опыте в области ВКК контрольная карта сама по себе дает возможность в наглядной форме своевременно выявить ошибки в выполнении методики даже тогда, когда контрольные результаты не выходят за установленные пределы. На рис. 6.13 представлены образцы контрольных карт. Карта № 1 служит примером получения вполне надежных результатов, карта № 2 с большими колебаниями результатов от одного дня к другому должна заставить подумать о тщательности в проведении исследования, а карта № 3 свидетельствует о появлении какой-то прогрессирующей систематической ошибки.

pic 0190
Рис. 6.13. Примеры контрольных карт

В практической жизни такие карты встречаются крайне редко, и врачу лаборатории приходится иметь дело с более трудными случаями, когда постоянно нужно использовать для анализа результатов контроля качества и принятия решений пяти контрольных правил Westgard.

На рис. 6.14 представлены наиболее часто встречающиеся ситуации, полученные на контрольных материалах с разной концентрацией компонентов (Westgard J.O. et al., 1981).

pic 0191
Рис. 6.14. Примеры применения метода Шухарта со многими правилами для оценки контрольных карт (описание в тексте)

5-й день. Результат исследования контрольного материала с высокой концентрацией компонента находится внутри предела 2S, а результат с низкой концентрацией превышает контрольный предел -3S. Аналитическая серия должна быть отброшена, то есть результаты исследований всех пациентов, предшествовавшие исследованию контрольного материала, должны быть повторены после устранения причин, приведших к превышению контрольного предела (вероятна случайная ошибка).

6-й день. Результат с высокой концентрацией компонента превышает предел 2S, а при низкой концентрации находится внутри предела 2S. Такие данные служат предупреждением о возможных проблемах. Дальнейшая проверка контрольных данных с использованием правил 22S, 41S и 10Х не подтверждает предположение о возможной ошибке. Серия результатов исследований пациентов должна быть принята.

8-й день. Контрольные результаты на материалах с высокой и низкой концентрацией превышают пределы 2S. Серия должна быть отброшена согласно правилу 22S, применяемому между контрольными материалами. Вероятно, имеет место систематическая ошибка на всем диапазоне концентраций используемого контрольного материала.

11-й день. Контрольные результаты на обоих материалах превышают пределы 2S в противоположных направлениях. Серия отбрасывается согласно правилу R4S. Возможно, имеет место случайная ошибка.

13-й день. Результат исследования контрольного материала с высокой концентрацией превышает -2S, что служит предупреждением о возможной проблеме. Дальнейшая проверка полученных данных с помощью правил 22S, 41S и 10Х не подтверждает предположения. Серия должна быть принята.

14-й день. Результат с высокой концентрацией компонента превышает предел -2S. Результаты исследований пациентов должны быть отброшены согласно правилу 22S с одним контрольным материалом. Вероятно, имеет место систематическая ошибка.

17-й день. Результат исследования с низкой концентрацией компонента превышает контрольный предел +2S, что служит предупреждением о возможной проблеме. Дальнейшая проверка полученного результата с использованием правила 41S между контрольными материалами подтверждает проблему, так как последние два результата на каждом материале превышают соответствующие контрольные диапазоны 1S, а четыре последовательных результата в сумме превышают предел 1S. Серия результатов исследований пациентов должна быть отброшена. Вероятно, имеет место систематическая ошибка на всем диапазоне концентраций контрольного материала.

25-й день. Результат с низкой концентрацией компонента превышает контрольный предел -2S, что служит предупреждением о возможной проблеме. Однако дальнейшая проверка с применением других контрольных правил не дает оснований для отбрасывания серии результатов.

27-й день. При исследовании контрольного материала с низкой концентрацией результат превышает -2S. Использование других контрольных правил показывает, что последние 10 результатов, полученных на этом материале, оказались ниже средней линии. Серия отбрасывается на основании правила 10Х. Вероятно, имеет место систематическая ошибка при низких концентрациях.

29-й день. Результат с высокой концентрацией компонента превышает контрольный предел 3S, а с низкой концентрацией - предел 2S. Серия исследований пациентов может быть отброшена на основании контрольных правил 12S или 22S. По-видимому, имеет место систематическая ошибка во всем диапазоне концентраций контрольных материалов.

Обращаем внимание на то, что главным при оценке результатов исследования контрольного материала является принятие решения: годятся или не годятся данные проверяемой аналитической серии к выдаче их в отделение, а не обзор месячных данных контроля качества. Это ежедневная работа врачей клинической лабораторной диагностики, причем крайне важная.

Таким образом, технологическая операция ВКК позволяет выявить проблему нарушения качества результатов анализов, принять решение о передаче результатов в отделения или их повторении, в определенной степени указать, что может быть причиной возникшей проблемы. Вся дальнейшая работа специалистов лаборатории должна быть направлена на идентификацию причины и ее устранение.

Решение проблем, выявленных при анализе контрольных данных. Когда система контроля дает сигнал об отбрасывании результатов, нужно устранить проблему. Считается, что первым действием врача-лаборанта будет приготовление и анализ новых контрольных материалов. Это не всегда самая продуктивная реакция, так как, возможно, установлен очень низкий уровень вероятности ложных отбрасываний из-за неудачно выбранных правил контроля, и, кроме того, много проблем снимает использование контролей двух уровней концентрации для контрольного материала при проведении статистического анализа.

В связи с этим изучение самого аналитического метода может быть более продуктивным действием.

Начальным этапом изучения аналитического метода является обнаружение того, какое правило контроля было нарушено, что в свою очередь укажет на тип ошибки. Нарушение правил 22S, 41S или 10Х предполагает наличие систематической ошибки, в то время как нарушение правил 13S и R4S свидетельствует о наличии случайной ошибки. Интерпретация нарушения правила 13S более затруднительна, потому что это правило может быть нарушено и при очень большой систематической ошибке. Анализ данных других исследований контрольного материала, проводимых до настоящего цикла, будет полезен, в частности, для установления факта нарушения правила 22S в предыдущем цикле, так как в этом случае (то есть вместе с сегодняшним нарушением правила 13S) нужно думать о систематической ошибке.

Знание правила, которое оказалось нарушенным, позволит определить тип ошибки, что в свою очередь укажет путь решения проблемы. Например, нарушение правила 22S предполагает систематическую ошибку. Когда нарушение правила отмечено для двух разных концентраций контрольного материала внутри одного цикла, то, вероятно, причина не в контрольном материале. Можно предположить, что корень проблемы в калибраторе, самой калибровке, бланках реагентов или в других подобных факторах, которые повлияли на все измерения в одном и том же направлении.

Если нарушено правило R4S, то предполагают наличие случайной ошибки, то есть можно думать о нескольких причинах: нестабильности реактивов и условий измерения, нарушении методики по параметрам времени, какой-то индивидуальной ошибке и т.д. Определение источника ошибки зависит от особенностей не только самого аналитического метода, но и аппаратуры. Врачу клинической лабораторной диагностики в этом отношении помогут инструкция по эксплуатации прибора (глава о неисправностях), документы, прилагаемые к реактивам, знание изменений, которые произошли с прибором, документирование предыдущих проблем, опыт работы.

Факторы, влияющие на качество биохимических и иммуноферментных анализов, и пути их устранения на аналитической части единого технологического производства клинических лабораторных исследований суммированы и приведены в табл. 6.8. Пользуясь данными таблицы, можно не только быстро и целенаправленно выявить источник ошибки, но и устранить нарушения.

Таблица 6.8. Факторы, влияющие на качество лабораторных исследований
Факторы общелабораторного характера Факторы, связанные с реактивами Факторы при работе с контрольным материалом Факторы при работе с пробами Факторы, зависящие от аппаратуры

1. Загрязнение.

Вода:

  • проверить чистоту воды, ее рН (6,5-7,5), если есть сомнения, взять или свежую воду, или воду из другого источника. Крышки на флаконах с реактивами:

  • проверить их чистоту, промыть в воде, высушить.

Трубки:

  • если вода или другие жидкие реактивы поступают по трубкам, надо убедиться в их чистоте.

2. Пипетки:

  • проверить, правильно ли выбрана пипетка по рабочему объему, нормально ли она работает;

  • использовать качественные разовые наконечники;

  • не использовать пипетки, если они имеют какие-то механические повреждения.

3. Технические ошибки:

  • проверить порядок манипуляций - нет ли ошибок в последовательности их выполнения;

  • неточности в температурном режиме, инкубационном времени, пипетировании

Проверить сомнительные результаты со свежими реактивами.

1. Приготовление реактивов.

Объемы:

  • проверить, правильно ли выбран объем растворителя по описанию, вложенному в набор.

Вода:

  • проверить чистоту, рН (6,5-7,5), взять свежую воду.

2. Стабильность реактивов:

  • проверить срок годности;

  • проверить, стабилен ли готовый реактив в холодильнике;

  • использовать для хранения реактивов те флаконы, в которых они были поставлены.

Важно! Нагрев реактивов выше 37 °С сильно влияет на их стабильность.

3. Проверка наборареактивов:

  • уточнить диапазон величин для этого набора;

  • проверить срок годности;

  • уточнить, не было ли нарушений режима хранения при перевозке

1. Проверить попаспорту диапазон величин. 2. Свои сомнительные результаты проверить со свежеприготовленными контролями. 3. Приготовление контролен:

  • проверить по паспорту объем растворителя;

  • проверить пипетку;

  • проверить качество воды.

4. Стабильность:

  • проверить срок годности;

  • проверить стабильность при температуре 2-8 °С.

5. Проверка набора реактивов:

  • уточнить диапазон величин для этого набора;

  • проверить срок годности;

  • уточнить, не было ли нарушений режима хранения при перевозке

1. Проверить качество взятия материала.

2. Манипуляции с пробой:

  • проверить, правильно ли отцентрифугирована проба (обороты, температурный режим).

3. Хранение пробы:

  • как можно раньше отделить плазму или сыворотку от форменных элементов;

  • хорошо закупорить во избежание испарения;

  • хранить только в пластмассовой посуде;

  • провести анализ не позже 4 ч после взятия крови;

  • если нужно, заморозить пробу.

4. Избегать исследований плазмы или сыворотки со сгустками, гемолизированных, липемичных, с высоким содержанием билирубина

Если есть возможность, проверить результаты на другом аппарате.

1. Проверить все устройства, которые имеют отношение к дозированию и разливу реактивов:

  • трубки, носики, соединения трубок, шприцы и т.д.;

  • проверить калибровку;

  • если необходимо, смазать нужные детали;

  • если детали подлежат замене, заменить их;

  • проверить ротор, кюветы (грязь, царапины, пыль);

  • проверить дозирование реактивов: правильно ли работают насосы, чист ли пробозаборник или дозатор реактивов (шприцы, носик и т.д.).

2. Проверить правильность:

  • времени инкубации;

  • времени измерения;

  • температуру;

  • чувствительность и т.д.

3. Оптика:

  • избегать работы в поцарапанных кюветах;

  • протереть оптическую систему;

  • проверить юстировку всех элементов оптической системы

Когда источник ошибки установлен, выполняют действия по ее устранению и повторно проводят контроль качества данного метода. Если данные исследования контрольного материала не нарушают контрольных правил, проводится повторный анализ отброшенной серии.

После того как проблема решена, встает вопрос о том, что делать с контрольными данными, на основании которых проблема была выявлена.

Включать ли эти данные в последующую оценку контроля качества и в дальнейшие расчеты? Включать данные отброшенного цикла не имеет смысла, так как контрольные измерения имеют своей целью охарактеризовать стабильное состояние аналитического процесса. Лучше более тщательно проверить ход анализа после устранения проблемы, то есть получить необходимое количество измерений взамен отброшенных.

Примечание. Есть другое мнение специалистов, суть которого состоит в том, что простое отбрасывание данных нестабильного цикла не совсем правомочно (Westgard J.I. et al., 1981), но если эти данные внести в дальнейшие расчеты, то расширятся контрольные пределы. Если же их не учитывать, то контрольные пределы могут так сузиться, что будет много ложных отбрасываний. В связи с этим разумным считают включение данных нестабильного цикла в суммирующие расчеты, но только те из них, которые находятся в пределах 2S и 3S.

Существенное влияние на организацию технологического процесса очередности выполнения лабораторных тестов оказывает фактор времени. Обычно в лабораториях не обращают внимания на то, через какое время после доставки и подготовки биоматериала проводятся те или иные лабораторные тесты. Например, активность амилазы в сыворотке крови в 5% проб, концентрация общего белка, креатинина и мочевины - в 10% проб, глюкозы и железа - в 12% проб нередко определяются через 5 ч после доставки биоматериала в лабораторию. Сравнение этих данных с временными критериями хранения проб до исследования, приведенными в главе 2, свидетельствует о том, что они превышают допустимые пределы и тем самым могут снизить качество результатов исследований этих тестов. Для того чтобы исключить влияние фактора времени на качество результатов, таблицы с временными критериями сохранности проб для различных лабораторных тестов должны быть размещены на биохимических анализаторах. И если возникает ситуация, что анализатор не работает, пробы необходимо хранить в холодильнике, что значительно расширяет временные рамки сохранности проб. Например, если концентрация железа в сыворотке крови при ее хранении при температуре 25 °С должна быть определена в течение 4 ч, то при хранении в холодильнике этот срок увеличивается до 7 дней и качество результатов не снижается.

Таким образом, учет критерия времени до исследований потребовал внесения изменений в организацию частного технологического процесса выполнения биохимических анализов, в результате чего вероятность получения качественных результатов повысилась.

Работа врача лаборатории по первичной обработке результатов анализов имеет чрезвычайно важное значение. Нередко на этом этапе удается выявить ошибки, обусловленные нарушением технологии на предыдущих этапах, и с помощью их анализа и повторения некоторых тестов избежать выдачи неправильных результатов. Анализ полученных результатов, сопоставление показателей, характеризующих один и тот же тип патофизиологических нарушений, сравнение сегодняшних данных пациента с предыдущими, консультация с лечащим врачом для выяснения возможных причин выявленных отклонений, учет возможного влияния на результаты принимаемых пациентом лекарственных средств - основные функции врача клинической лабораторной диагностики по обеспечению качественных результатов исследований.

В настоящее время клиницист получает большое количество информации из лаборатории. Ее объем настолько велик, что лечащий врач иногда не в состоянии оценить и использовать в лечении пациента все лабораторные показатели. Именно поэтому работа врача клинической лабораторной диагностики по оценке результатов анализов и выдаче заключений по ним оказывает большое влияние на качество постаналитического этапа производства лабораторных исследований.

Если результаты анализов сгруппированы на бланке по патофизиологическому принципу, приведены референтные величины, данные аналитической вариации применяемого метода исследования для каждого исследуемого параметра, выделены результаты, превышающие референтные величины, и дополнительно дано заключение о возможных причинах, вызвавших патологические отклонения в результатах, то это будет способствовать более эффективному использованию результатов анализов в лечебно-диагностическом процессе и улучшит качество оказания медицинской помощи пациентам.

При превышении результатов анализов порога клинического решения врач лаборатории должен немедленно сообщить об этом клиницисту, что в отдельных случаях может спасти жизнь пациенту. Например, в практической жизни нередко встречается ситуация, когда больной реанимационного отделения переводится на искусственную вентиляцию легких, при этом реаниматолог задает определенные параметры для аппарата искусственной вентиляции. Внешне кажется, что аппарат проводит вентиляцию в правильном режиме. Для оценки адекватности вентиляции исследуют КОС крови, определяют рН (менее 7,2), рСО2 (более 70 мм рт.ст.), рО2 (менее 50 мм рт.ст.), что свидетельствует о неадекватности вентиляции, и, если результаты исследования не станут известны реаниматологу немедленно, пациент может умереть.

Знание и понимание клиницистом аналитической вариации применяемого метода исследования в отдельных случаях помогает правильно оценивать результаты с незначительными отклонениями от референтных величин.

Важной проблемой современной клинической медицины является перегрузка информацией, так что практикующим врачам не удается обнаружить и правильно интерпретировать лабораторные данные, имеющие значение для лечения пациента. Так, C.H. Altshuler (1983) при анализе историй болезни обнаружил, что диагноз гипотиреоза не был поставлен у 1/3 пациентов, имевших патогномоничные лабораторные признаки этого заболевания. В связи с этим наличие заключений на бланке с результатами анализов существенно влияет на их использование клиницистами. Это обусловлено тем, что от полученных заключений просто отмахнуться невозможно и, в случае даже если они ошибочны, клиницисту необходимо изложить свою точку зрения на полученные результаты в истории болезни. Если клиницист не предпринял никаких действий по результатам заключений врача клинической лабораторной диагностики, а заключение играло принципиальную роль в оказании помощи пациенту, то это всегда может быть установлено при анализе истории болезни. Именно поэтому многие клиницисты крайне негативно относятся к заключениям по результатам анализов, так как их всегда могут спросить, почему не предпринято никаких действий на полученное заключение.

Наличие заключения по результатам лабораторных исследований (клинической интерпретации результатов) может дать и важный экономический эффект. Например, немецкая практика страховых тарифов за различные аспекты работы лаборатории, собственно аналитическую и клинико-диагностическую, показывает, что доходы лаборатории многократно увеличиваются при дополнении анализа клинической интерпретацией результата (табл. 6.9) (Меньшиков В.В., 2002). Эта проблема в полной мере актуальна для КДЛ нашей страны. В.В. Меньшиков (2002) замечает: «…​Если врачи клинико-диагностических лабораторий будут действовать полноценно и квалифицированно, по-врачебному, интерпретировать результаты анализов, появится возможность аргументированно ставить вопрос о восприятии немецкого опыта перед фондом обязательного медицинского страхования».

Таблица 6.9. Страховые тарифы больничных касс ФРГ для некоторых лабораторных тестов (данные за 2001 г.)

Лабораторное исследование

Стоимость, евро

за проведение анализа

за проведение анализа и клиническую интерпретацию результата

Исследование мочи

0,50

3,35

Рутинные биохимические тесты: глюкоза, холестерин, АСТ, мочевина и др.

0,25

2,68

Глюкоза (анализ в месте лечения)

1,05

4,69

Гликозилированный гемоглобин

4,00

13,41

ТТГ, Т3, Т4

3,00

16,76

Протромбиновое время

0,60

3,35

ПСА

5,60

20,11

ВИЧ (антитела)

4,60

20,11

Онкомаркер СА-125

9,70

20,11

ФСГ

5,10

16,76

ПЦР ВИЧ-РНК (количественный)

112,50

147,48

ПЦР M. tuberculosis

61,40

113,96

Данные, приведенные в табл. 6.9, объясняют не только то, почему хорошие лаборатории для лечебного учреждения убыточны, но и показывают, почему лечебные учреждения с хорошими лабораториями имеют экономический успех.

Указание времени передачи результатов анализов из лаборатории врачу-клиницисту имеет важное значение, особенно если эти исследования выполняли по неотложным или жизненным показаниям. Любой врач клинической лабораторной диагностики неоднократно сталкивался в своей жизни с ситуацией, когда при докладах на утренних конференциях или клинических разборах врача-клинициста спрашивают, почему пациенту так долго не оказывали медицинской помощи (не проводили операцию, или он не был помещен в отделение реанимации). В таких ситуациях можно услышать ответ, что лаборатория очень длительно выполняла анализы и у врача не было нужной информации для принятия решения. Мы также сталкивались с такой ситуацией, поэтому при создании лаборатории было введено требование указывать срок готовности анализов на бланке результатов. В результате такого простого действия плоскость проблемы оказания качественной и своевременной медицинской помощи повернулась от вопроса «Кто виноват?» к вопросу «Почему так длительно пациенту не оказывалась помощь?» Все попытки клинициста в таких случаях сослаться на задержку в результатах всегда заканчиваются тем, что ему показывают время готовности анализов и время взятия пациента на операционный стол или помещения в реанимационное отделение. Указание времени передачи результатов анализов лишает возможности нерадивого врача-клинициста скрывать свои недостатки в работе, необоснованно ссылаясь на неквалифицированные действия коллег. Чрезвычайно важно, чтобы администрация медицинского учреждения использовала этот показатель для выработки мероприятий по улучшению технологического процесса оказания медицинской помощи, понимая, чьи недоработки лежат в основе нарушения технологии.

Большие дискуссии среди клиницистов вызывают сроки готовности результатов лабораторных исследований. Эти временные параметры в настоящее время не определены какими-либо руководящими документами, и такая практика существует практически во всех лабораториях разных стран. Для того чтобы на что-то ориентироваться, приводим данные по изучению времени готовности результатов лабораторных анализов в трех типах лабораторий США (табл. 6.10) (Speicher C.E., Smith J.W., 1983). Следует заметить, что в связи с техническим переоснащением в лабораториях за последние 20 лет указанные в табл. 6.10 сроки готовности результатов анализов могут быть пересмотрены. Однако это в первую очередь зависит от количества проб пациентов, анализируемых каждой конкретной лабораторией, и автоматизации выполнения исследований. В нашей стране в связи с плохим техническим оснащением большинства лабораторий, когда большинство тестов выполняется вручную, даже эти сроки готовности результатов анализов недостижимы.

Таблица 6.10. Время готовности результатов лабораторных анализов для разных лабораторий

Лабораторный тест

Время готовности результата, мин

малые лаборатории

средние лаборатории

крупные лаборатории

диапазон

в среднем

диапазон

в среднем

диапазон

в среднем

Гематология:

  • подсчет клеток крови

5-60

15

15-60

20

8-60

20

  • гемоглобин

15-60

22

10-120

60

5-90

38

  • подсчет тромбоцитов

7-60

30

17-45

30

20-90

30

  • СОЭ

60-75

62

10-120

70

20-90

65

  • миелограмма

35-60

60

35-60

60

60-120

60

Исследование мочи:

  • общеклиническое

5-60

15

8-30

15

15-60

30

  • ацетон в моче

5-60

12

10-60

15

10-90

25

Исследование спинномозговой жидкости:

  • цитоз

5-60

10

5-60

18

15-60

25

  • белок

10-60

30

10-60

20

10-90

30

  • глюкоза

10-60

15

6-60

20

10-90

30

  • мазок с окраской по Граму

5-60

10

1-30

8

1-15

5

Исследование мокроты:

  • цитология

15-60

15

15-60

18

60

60

  • мазок с окраской по Цилю-Нильсену

10-60

25

15-60

20

20-60

30

Исследование кала:

  • на скрытую кровь

3-60

5

2-16

10

2-60

15

Биохимия:

  • алкоголь

15-120

30

20-120

45

20-120

60

  • а-амилаза

15-60

25

15-60

32

20-120

45

  • аммиак

30-70

45

20-90

45

45-120

60

  • АЛТ

15-60

20

10-45

20

20-60

30

  • газовый состав крови

5-25

15

5-45

15

10-120

15

  • ГГТП

15-60

20

10-45

20

20-60

30

  • глюкоза

10-60

15

10-30

20

15-120

30

  • дигоксин

10-180

45

45-180

90

100-120

120

  • кальций

15-60

20

10-60

28

20-120

35

  • КК

15-60

15

10-30

20

20-60

30

Микроальбумин

10-60

20

10-60

22

20-60

45

Мочевина

15-60

20

10-60

20

20-120

35

Осмолярность

10-15

15

10-60

20

20-120

30

  • р-ХГ

5-130

12

5-120

12

3-60

12

  • щелочная фосфатаза

20-60

45

10-60

20

20-60

60

  • электролиты

15-60

20

15-60

22

10-120

30

Коагулология:

  • время свертывания

5-60

10

5-30

15

7-60

60

  • протромбиновое время

15-60

20

15-60

25

20-60

30

  • АЧТВ

15-60

20

15-60

30

20-60

30

  • тромбиновое время

20-60

42

15-45

28

25-60

30

  • фибриноген

15-60

20

15-60

30

15-120

30

Изосерология:

  • группа крови

10-60

10

5-45

18

10-60

10

  • резус-фактор

10-60

10

5-130

20

10-60

10

  • прямая проба Кумбса

10-60

15

5-30

15

5-60

15

Немало нареканий в работе КДЛ вызывают случаи несвоевременной доставки бланков результатов анализов лечащим врачам, нередкой их потери при доставке в отделения.

Основным путем решения данной проблемы должна стать организация доставки бланков результатов анализов самой КДЛ. Для этих целей должен быть выделен дежурный лаборант (или другое лицо), заведен журнал учета доставки бланков результатов в отделения, где лаборант должен был делать отметку о времени доставки и о том, кому они были переданы.

Как указывалось выше, второй по значимости причиной сбоев в работе анализаторов служат механические нарушения, которые включают засорение пробозаборника, выход из строя трубок основного насоса, смещение позиций пробозаборника и раскапывателя реактивов. В связи с этим необходим строгий контроль за выполнением технологической операции обслуживания и ухода за анализаторами и другим лабораторным оборудованием. Типичные нарушения данной технологической операции приведены в табл. 6.11.

Таблица 6.11. Частота нарушений технологической операции обслуживания и ухода за анализаторами и лабораторным оборудованием
Технологическая операция/тип нарушения Частота, %

Обслуживание, уход за автоанализаторами

  • неполное выполнение ежедневного регламента работ

  • неполное выполнение еженедельного регламента работ

  • отсутствие записей о проведенных работах

100

91,7

100

Из табл. 6.11 видно, что обслуживание лабораторного оборудования в КДЛ в необходимом регламенте не проводится, поэтому понятны причины механических сбоев в работе анализаторов.

Для контроля за выполнением данной технологической операции для каждого анализатора должен быть заведен журнал, где необходимо привести четкий перечень работ, который необходимо выполнять в отношении анализатора ежедневно, еженедельно, ежемесячно, ежеквартально и ежегодно, должны быть определены ответственные за проведение работ по обслуживанию. В журнале специалист, проводивший обслуживание лабораторного оборудования, отмечает, что выполнено в отношении того или иного анализатора, когда и кем. Администратор каждого технологического процесса или операции должен проверять полноту и качество проведенного обслуживания лабораторного оборудования.

Таким образом, основное направление повышения качества результатов лабораторных исследований - это совершенствование всех технологических операций единого технологического процесса получения результатов анализов.

Подводя итоги использования критериев для ВУК на аналитическом этапе, можно сформулировать основные принципы совершенствования технологического производства лабораторных анализов.

  1. Постоянное совершенствование технической и материальной базы.

  2. Постоянное совершенствование ЛИС.

  3. Создание, где это возможно, на основе материально-технической базы и ЛИС полностью автоматизированного производства анализов с выдачей лечащим врачам заключений по полученным результатам.

  4. Управление процессами производства.

  5. Постоянное совершенствование производства на основе:

    • планирования качества, систематического проведения контроля качества, участия в системе внешнего контроля качества;

    • внедрения современных методов исследований;

    • статистического анализа;

    • повышения производительности труда;

    • оценки эффективности производства с учетом разработанных индикаторов (стоимость исследований, соответствие потребностям клиники, правильность использования возможностей клиницистами и др.);

    • анализа причин сбоев технологических процессов.

  6. Постоянное совершенствование руководства производственным процессом:

    • добиваться понимания всеми сотрудниками лаборатории производства анализов как единого технологического процесса;

    • поддерживать и поощрять инициативы сотрудников;

    • постоянно обучать на рабочих местах;

    • устранять барьеры между лабораториями и выполнять исследования, даже не по профилю, в тех лабораториях, где это необходимо в интересах производственного процесса;

    • создавать и осуществлять интенсивную программу повышения квалификации и самосовершенствования;

    • создавать условия, чтобы все сотрудники работали на преобразования.

  7. Совершенствование взаимосвязи между клиническими подразделениями и лабораториями.

  8. Сокращение себестоимости лабораторных исследований за счет:

    • экономии расходных материалов для сбора биоматериала на исследование;

    • снижения потерь реактивов на калибровках, повторных исследованиях, ошибках;

    • лучшего использования рабочего времени;

    • повышения производительности труда;

    • внедрения рационализаторских предложений и изобретений;

    • рационального использования возможностей лабораторного оборудования;

    • рационального проведения исследований (выполнение их по профилям, создание алгоритмов);

    • автоматизации наиболее трудоемких и длительных по времени технологических операций.

6.7. ВСЕОБЩЕЕ УПРАВЛЕНИЕ КАЧЕСТВОМ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ НА ПОСТАНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ

Важнейшим этапом единого технологического процесса производства лабораторных анализов является оценка и эффективное использование их результатов клиницистами. Лечащие врачи обязаны отражать в истории болезни или амбулаторной карте, для каких целей были использованы результаты исследований. При отсутствии таких записей в документации о пациенте очень трудно управлять не только качеством результатов анализов на постаналитическом этапе их производства, но и оказания медицинской помощи в целом. Важность этой проблемы должны понимать руководители лечебных учреждений и постоянно требовать от клиницистов отражения целей использования результатов исследований. Это, с одной стороны, позволяет оценивать качество оказания медицинской помощи пациентам, а с другой - принимать меры по снижению расходов на анализы и улучшению обслуживания пациентов, то есть управлять качеством. Там, где нет отражения, для чего были использованы результаты анализов, информация, которую они несут, клиницисты в большинстве случаев не используют, и, несмотря на отклонения в результатах от референтных значений, пациент не получает адекватного лечения, а следовательно, качество оказания медицинской помощи снижается.

Наиболее эффективным в использовании результатов лабораторных исследований является внедрение диагностических карт для различных заболеваний, которые определяют оптимальный перечень лабораторных анализов при данной форме заболевания. Анализ диагностических карт позволяет легко установить случаи, когда результаты анализов клиницист не оценивал, а значит, и не использовал. Клиницисты с помощью диагностических карт назначают только те анализы, которые в ней перечислены, и в определенные дни нахождения пациента в стационаре. И не вспоминают через несколько дней, что они забыли назначить тот или иной анализ и даже назначали еще и часть уже выполненных анализов для динамики.

В большинстве случаев специалисты лаборатории могут предоставить руководителям лечебных учреждений и отделений информацию о том, как эффективно используются результаты анализов для оказания пациентам качественной медицинской помощи.

Постоянная оценка использования результатов лабораторных исследований для оказания пациенту качественной медицинской помощи вызывает в настоящее время наибольшие затруднения. Это обусловлено тем, что простых критериев оценки качества постаналитического этапа производства анализов просто нет. В связи с этим для учета использования результатов лабораторных анализов клиницистами в обосновании диагноза, лечения или его изменений следует использовать возможности клинической и лабораторной информационных систем.

При наличии в лечебном учреждении ЛИС, связанной с клинической системой, клиницист получает практически неограниченные возможности по эффективному использованию результатов анализов. Он может наблюдать динамику всех показателей, оценивать эффективность применения того или иного лекарственного препарата, сравнивать результаты анализов за различные периоды болезни, получать сведения из архива о предыдущих результатах анализов, статистические данные по группам пациентов и т.д.

При использовании методологии ВУК врачи клинической лабораторной диагностики должны постоянно иметь информацию о том, как клиницисты оценивают качество результатов анализов, получают ли они всю необходимую помощь от лаборатории. Важно быть восприимчивым ко всем замечаниям клиницистов, избегать немедленных защитительных речей и извинений. Самым ценным средством гарантии качества результатов анализов является положительный отзыв клинициста о деятельности лаборатории. И, несмотря на то что этот показатель субъективный, в большинстве случаев клиницисты обращают внимание специалистов лаборатории на реальные проблемы качества результатов анализов.

Подводя итоги использования возможностей методологии ВУК лабораторных анализов, следует отметить, что нами не преследовалась цель продемонстрировать роль и значение всех предложенных в главе 2 критериев оценки индикаторов качества в управлении. Важно было показать, что с помощью разработанных индикаторов можно осознанно и целенаправленно управлять единым технологическим процессом производства анализов, тем самым повышать качество результатов исследований. Основные усилия по ВУК анализов должны быть направлены на улучшение технологического процесса их производства.

Главное условие улучшения качества результатов анализов - это совместные усилия всех участников технологического процесса производства лабораторных анализов: клиницистов и специалистов лаборатории.

ВУК - непрерывный циклический процесс, где каждую проблему выявляют, анализируют, определяют мероприятия по ее устранению, после чего проводят повторный мониторинг для суждения об эффективности проведенных мероприятий.

Реализация концепции ВУК в клинической лабораторной диагностике на хорошем уровне невозможна без информационных систем, так как ВУК нуждается в адекватной информации, основанной на широком измерении различных параметров, характеризующих качество процесса, проведении по возможности непрерывного мониторного слежения за параметрами процесса; статистической отработке полученных результатов с возможностью быстрого реагирования на выявленные отклонения. Только современные информационные системы в состоянии анализировать такой объем информации.

В заключение хотелось бы сказать, что предложенные критерии оценки качества технологических процессов, средства ВУК, методология их использования не являются чем-то постоянным. Новые достижения науки в области лабораторной диагностики, особенности каждой лаборатории, внедрение средств автоматизации, поддержка технологического процесса производства анализов ЛИС требуют внесения постоянных изменений в организацию технологического процесса производства, разработку новых критериев для оценки качества и современных подходов для ВУК результатов анализов. Всегда надо помнить главное: получение результатов анализов - это единый технологический процесс их производства - от составления заявки врачом-клиницистом, взятия биоматериала, его доставки, проведения исследований до получения и использования результатов в целях оказания качественной медицинской помощи пациенту. Как только этот единый процесс разрывается и все усилия по обеспечению качества анализов сосредотачиваются только на каком-то одном из этапов, положительных результатов добиться невозможно.

6.8. ПУТИ СНИЖЕНИЯ ОШИБОК В КЛИНИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ: ОТ КОНТРОЛЯ КАЧЕСТВА К ОЦЕНКЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ ПАЦИЕНТОВ

Сложность TTP обусловлена тем, что он состоит из нескольких этапов, в которых участвуют разные медицинские специалисты, но только часть этапов находится под контролем специалистов лаборатории. КДЛ обычно оценивают свою эффективность на основе показателей производственной деятельности, внутреннего контроля качества, себестоимости анализов и других экономических показателей, а не качества оказания медицинской помощи и результатов лечения пациентов. Такой узкий подход к мониторингу процессов не позволяет выявлять не только значительную часть лабораторных ошибок, возникающих в КДЛ, но и диагностические ошибки (неправильная оценка и использование результатов анализов), которые приводят к снижению качества оказания медицинской помощи пациентам.

В 1981 г., когда Дж. Лундберг преобразовывал общий процесс лабораторного тестирования в девятиэтапный цикл, он неспроста назвал его «мозговая петля». Главное достоинство цикла «мозговая петля» состоит в том, что он направлен на установление взаимосвязи между возможными последствиями диагностической ошибки и процессом лабораторного тестирования (будь то из лабораторных или нелабораторных источников), исходно концентрируясь на понимании того, что главным источником диагностических ошибок служит мыслительная (когнитивная) деятельность врача-клинициста и врача клинической лабораторной диагностики.

Для того чтобы лабораторная медицина была ориентирована на оказание качественной медицинской помощи пациенту, важно осуществлять мониторинг и совершенствовать не только те процедуры и процессы, которые выполняются под прямым контролем специалистов лаборатории, но также начальные и заключительные этапы TTP, которые находятся в полной компетенции клиницистов. В связи с этим необходимо отказаться от традиционного разделения ошибок на пре-аналитические, аналитические и постаналитические. Все лабораторные ошибки правильно разделять на две группы:

  1. когнитивные ошибки, обусловленные индивидуальными способностями врача (в том числе и лаборатории) к клиническому мышлению;

  2. системные ошибки, возникающие вследствие нарушения процедур и процессов при проведении исследований.

Условность разделения лабораторных ошибок на две группы обусловлена тем, что такое разделение реально существует, за них отвечают различные медицинские специалисты, но возникают ошибки на едином общем пути лабораторного тестирования, что их объединяет. Соответственно, подходы к снижению когнитивных и системных ошибок будут отличаться, но в целом они должны составлять единую систему. Объединять эти разные подходы может только единая цель, которой является повышение качества оказания медицинской помощи больному.

Необходимость разделения лабораторных ошибок на две эти группы носит объективный характер, так как отражает диалектическую двойственность, присущую клинической лабораторной диагностике. Сущность этой двойственности базируется на неразрывной связи двух главных составляющих:

  1. клиническая составляющая - значение лабораторной диагностики для клинической практики - вклад в лечение пациента или повышение качества оказания медицинской помощи:

    • правильное назначение лабораторных исследований на основании данных клинических руководств профессиональных врачебных ассоциаций (какой тест, на каком этапе оказания медицинской помощи, когда, каким методом);

    • оценка и использование результатов лабораторных исследований в качестве объективных критериев постановки диагноза, выбора метода и достижения целей лечения, в качестве репер-ных точек для оценки качества оказания медицинской помощи;

    • клиническая эффективность лабораторных технологий;

  2. организационно-технологическая и производственная составляющие:

    • организация выполнения экстренных и неотложных лабораторных исследований;

    • организация выполнения лабораторных исследований в традиционной КДЛ;

    • организация выполнения лабораторных исследований в централизованной КДЛ;

    • лабораторные технологии для получения результатов лабораторных исследований;

    • стандартизация всех технологических процессов и процедур производства результатов лабораторных анализов;

    • определение индикаторов качества технологических процессов и процедур;

    • регистрация нарушений индикаторов качества технологических процессов и процедур;

    • управление качеством.

Клиническая составляющая связана с мыслительной (когнитивной) деятельностью как врачей-клиницистов, так и врачей клинической лабораторной диагностики, а организационно-технологическая, или производственная, составляющая связана с производственными процессами и процедурами на общем процессе лабораторного тестирования.

Системные ошибки необходимо рассматривать как последствия, а не причины, они возникают как результат нарушений в организации и выполнении процедур и процессов на общем пути лабораторного тестирования. Ошибки указывают на слабые стороны на общем пути лабораторного тестирования, то есть организационные и технологические нарушения, которые их порождают и которые необходимо выявить и стандартизировать.

В лаборатории основой обеспечения качества результатов анализов является правильная организация технологических процессов и процедур выполнения лабораторных исследований. Для этого их необходимо идентифицировать, документировать (стандартизировать), автоматизировать, определять критерии (индикаторы) качества процессов и процедур, обучать медицинский персонал и осуществлять мониторирование.

При разделении лабораторных ошибок на когнитивные и системные совершенно по-другому выглядит их структура. Согласно данным M.L. Graber (2014), структура диагностических ошибок, связанных с лабораторным тестированием, распределяется следующим образом:

  1. только когнитивные ошибки - 28% (отсутствие знаний - 3%, неправильный сбор анамнеза болезни - 14%, ошибочный синтез всей информации о пациенте - 83%);

  2. только системные ошибки - 19%;

  3. два типа - когнитивные и системные ошибки - 46%;

  4. неопределенный тип ошибок - 7%.

Основное достоинство разделения лабораторных ошибок на когнитивные и системные состоит в том, что оно позволяет четко понять, что для снижения этих типов ошибок необходимо использовать различные подходы, что в конечном итоге позволяет добиться положительного результата - перейти от традиционного контроля качества, используемого в лабораториях и направленного в большей степени на предупреждение возникновения производственных лабораторных ошибок, к системной работе по повышению качества лабораторных анализов и оценке ее вклада в повышение эффективности лечения пациентов.

Когнитивные ошибки возникают при назначении лабораторных тестов, оценке и использовании результатов анализов и практически целиком находятся в компетенции врача-клинициста. В редких случаях к участию в этих решениях привлекаются врачи клинической диагностики. Рассмотрим, какие подходы в настоящее время используются для снижения когнитивных ошибок. Начнем с назначения лабораторных тестов клиницистом.

При составлении заявки на лабораторные исследования выбор тестов клиницистом базируется на наиболее вероятном рабочем диагнозе (диагностической гипотезе), который влияет на величину предсказательной ценности теста. Вероятность диагноза определяется врачом-клиницистом путем анализа физикально-анамнестической информации о пациенте и выявления преобладающих нарушений. Именно поэтому сбор анамнеза и физикальное обследование пациента должны предшествовать назначению лабораторных анализов.

Исходя из клинического представления и четко сформулированных вопросов врач рассматривает множество лабораторных тестов, которые можно заказать для получения ответов на возникшие вопросы. Перечень тестов, рассматриваемых при этом, зависит от таких факторов, как способность клинициста связать патогенез заболевания с определенными лабораторными показателями, способными предоставить информацию о его состоянии, от предыдущего опыта работы врача с подобными клиническими случаями, его способности отличать наличие заболевания от отсутствия понимания информационного содержания каждого теста, знания диагностических возможностей лаборатории и алгоритмов или руководящих принципов клинической практики, которым он должен следовать. Однако, прежде чем составить заявку на исследование, врач-клиницист должен не только четко сформулировать вопросы, которые помогут разрешить результаты анализов, и дать себе ответ, почему назначается именно этот тест, но должны сопровождать каждый вопрос тщательной оценкой вероятности наличия у пациента предполагаемого заболевания. Эта оценка вероятности, проведенная перед составлением заявки на исследование, называется претестовой (априорной) вероятностью. Она может быть основана на истории болезни пациента, предыдущем опыте клинициста, данных специальной литературы.

Назначая тот или иной диагностический тест, врач должен, прежде всего, дать себе отчет, зачем он нужен, то есть важно определить, какого рода информация требуется и может ли анализ ее предоставить.

Осознание существующего характера лабораторных ошибок, связанных с неумением назначать нужные тесты, оценивать и использовать их результаты, требует проведения комплекса мероприятий для их снижения. Эксперты здравоохранения экономически развитых стран однозначно высказываются в пользу того, что улучшение использования возможностей лаборатории клиницистами имеет наибольшие клинические и экономические выгоды. Три направления деятельности по улучшению использования лаборатории выдвинуты в настоящее время на первый план:

  1. образовательные усилия;

  2. внесение изменений в систему заказа лабораторных тестов (административное регулирование);

  3. научно обоснованные способы управления объемом диагностических исследований - разработка протоколов клинического применения тестов (диагностических карт) на основе международных и отечественных клинических руководств.

В первую очередь необходимо менять образовательные программы в высших медицинских заведениях. В настоящее время среднее количество часов, отведенное студентам-медикам для изучения лабораторной медицины, составляет 8 ч, в то время как количество лабораторных тестов, используемых в клинической практике, включая генетические тесты, превышает 5000. Ни одна программа обучения, или цикла усовершенствования, не содержит тематики, направленной на обучение подходам к назначению, оценке и использованию результатов лабораторных исследований. А такие подходы существуют. При этом обучать необходимо как врачей-клиницистов, так и врачей клинической лабораторной диагностики.

Внесение изменений в систему заказа лабораторных тестов включает административное регулирование назначений определенных тестов клиницистами; модификацию заявки на исследование (например, при подозрении на заболевание щитовидной железы клиницист может назначить только исследование ТТГ, а при получении патологического результата врач лаборатории дополнительно исследует сТ4); разработку компьютерных программ заказа лабораторных исследований с анализом уместности и финансовой оценкой назначений. Это направление является одним из перспективных. Примерами административного регулирования назначения лабораторных исследований являются стандарты, распоряжения по лечебному учреждению о порядке назначения дорогостоящих лабораторных исследований, суть которого сводится к обязательному требованию участия специалиста-клинициста (кардиолога, эндокринолога, аллерголога и др.) в назначении данных анализов и строгой нумерации бланков-заявок, позволяющей информировать специалиста о количестве оставшихся тестов. Следует отметить, что этот способ приводит к уменьшению необоснованного назначения лабораторных анализов и повышает эффективность их использования для оказания медицинской помощи.

В настоящее время оказание медицинской помощи регламентировано клиническими руководствами, разработанными на принципах доказательной медицины. В рамках доказательной медицины формой документального представления пути ведения и обследования пациента с определенным заболеванием является клинический протокол ведения больного. В отношении процедур обследования пациента такой документ называется диагностической картой, которая является одной из составляющих общего протокола ведения пациента. В диагностических картах отражены исследования при предполагаемом или вероятном диагнозе, которые необходимо выполнить больному на определенных этапах оказания медицинской помощи и в течение четко определенного отрезка времени (в приемном отделении, отделении стационара).

В нашем исследовании, выполненном в 2002-2003 гг. с использованием диагностических карт, обследовано 249 больных ИМ, внеболь-ничной пневмонией, бронхиальной астмой, язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки, сахарным диабетом (Кишкун А.А., 2005). Активное использование диагностических карт ведения больных этими заболеваниями, постоянный контроль за выполнением строго определенного спектра анализов привели к сокращению количества исследований в течение года с 119,8±60,6 до 95,6±56,6 анализа на одного стационарного больного (на 20,2%).

Вместе с тем если до внедрения диагностических карт исследование тропонина при ИМ не назначалось при поступлении у 50% больных и у 76,2% не назначалось повторно через 6 ч, то после ее введения было выполнено 100% пациентов как при поступлении, так и повторно.

У пациентов с внебольничной пневмонией до введения диагностических карт врачом назначены бактериоскопия и посевов мокроты на микрофлору до назначения антибиотиков у 15,7% больных, при использовании карт - у 84,3%. Посев крови на гемокультуру до лечения антибиотиками до введения диагностических карт назначался только 13,7% больных, после их внедрения - у 54,9%. Как результат, общее количество выделенных культур при бактериологическом исследовании повысилось с 11,8 до 23,5%, что позволило индивидуализировать антибактериальную терапию пациентам с учетом чувствительности микрофлоры к антибиотикам.

Дефекты, связанные с назначением лабораторных исследований больным сахарным диабетом, также претерпели существенные изменения. Если до внедрения карт исследование гликозилированного гемоглобина не назначалось 28,7% пациентов, то после их введения такие отклонения не регистрировались, определение уровня лактата в крови у пациентов, получающих бигуаниды, не назначалось у 66,7% до введения карт, после - только у 7,1%.

Снижение среднего койко-дня при лечении больных ИМ, внебольничной пневмонией, бронхиальной астмой, язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки, сахарным диабетом с 22,6 до 20,0 (на 11,5%) позволяет утверждать, что использование диагностических карт оказывает влияние и на качество медицинской помощи.

Приказ Минздрава России от 10 мая 2017 г. № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи» определил научно обоснованные (взятые из клинических руководств) критерии качества медицинской помощи, которые содержат перечень ключевых лабораторных тестов для обследования пациентов с определенным диагнозом.

Совместное использование клинических руководств и критериев оценки качества медицинской помощи (приказ от 10 мая 2017 г. № 203н) в клинической практике - это революция в системе нашего здравоохранения, которая позволяет перейти от субъективной практики оценки качества оказываемой медицинской помощи населению страны на основании мнений экспертов к объективным критериям на основании данных клинических руководств, то есть принципов доказательной медицины. Конечно, это первоначальный шаг, но даже его реализация позволяет однозначно говорить о том, что В.И. Скворцова вошла в историю здравоохранения страны как выдающийся организатор. Основное достоинство совместного использования клинических руководств и критериев оценки качества медицинской помощи состоит в том, что вместе они представляют собой дублирующую систему, что повышает ее надежность. Если врач не назначил необходимые лабораторные тесты на основании клинических руководств, то все это будет выявлено при оценке критериев качества (они содержат тот необходимый набор тестов, который надо назначить больному на основании данных доказательной медицины), и врач вынужден будет изучать клинические руководства и проверять свои знания, используя критерии качества. Кроме того, в критериях оценки качества приведены величины отклонений в лабораторных анализах, которые требуют принятия решений по лечению пациентов, служат в качестве значений в достижении целей лечения, отмены лекарственных препаратов, выписки из отделения (табл. 6.12-6.14), то есть оценивают, использовал ли клиницист результаты тестов или нет.

Таблица 6.12. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым при остром коронарном синдроме
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

3

Выполнено определение уровня тропонинов I или Т в крови и/или определение уровня и активности КК в крови

Да/нет

Таблица 6.13. Критерии качества специализированной медицинской помощи взрослым и детям при вирусном гепатите без печеночной комы
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

2

Выполнен анализ крови биохимический общетерапевтический (АЛТ, АСТ, у-глутамилтранспептидаза, билирубин, общий белок, альбумин, глюкоза)

Да/нет

3

Выполнены определение протромбинового индекса или коагулограмма (ориентировочное исследование системы гемостаза) при протромбиновом индексе менее 70%

Да/нет

4

Выполнено определение маркеров вирусов гепатитов А и Е и/или вирусов гепатитов В и С методами иммуноферментного анализа, или хемилюминесцентного иммунного анализа, или ПЦР

Да/нет

7

Достигнуто снижение уровня АЛТ менее 150 ЕД/л на момент выписки из стационара

Да/нет

8

Достигнут уровень билирубина в крови не выше 40 мкмоль/л на момент выписки из стационара

Да/нет

9

Достигнут уровень протромбинового индекса не ниже 80% на момент выписки из стационара

Да/нет

Таблица 6.14. Критерии качества специализированной медицинской помощи детям при лихорадке без очага инфекции
№ п/п Критерии качества Оценка выполнения

2

Выполнен развернутый общий (клинический) анализ крови не позднее 24 ч от момента поступления в стационар

Да/нет

3

Выполнено исследование уровня С-реактивного белка или прокальцитонина в крови

Да/нет

4

Выполнен общий анализ мочи не позднее 24 ч от момента поступления

Да/нет

5

Выполнено бактериологическое исследование крови на стерильность с определением чувствительности возбудителя к антибиотикам и другим лекарственным препаратам (при наличии лабораторных маркеров бактериальной инфекции)

Да/нет

6

Выполнено бактериологическое исследование мочи с определением чувствительности возбудителя к антибиотикам и другим лекарственным препаратам (при выявлении лейкоцитурии, и/или бактериурии, и/или нитритов в моче)

Да/нет

7

Выполнена рентгенография органов грудной клетки (при наличии лабораторных маркеров бактериальной инфекции)

Да/нет

8

Проведена терапия антибактериальными лекарственными препаратами (при подтверждении бактериальной инфекции и/или при наличии лабораторных маркеров бактериальной инфекции)

Да/нет

Одним из общепризнанных путей решения проблемы когнитивных лабораторных ошибок является создание в каждом лечебном учреждении комитета по использованию диагностических исследований. В состав комитет необходимо включить руководителей учреждения, клинических и лабораторных специалистов, а также специалистов других диагностических направлений. В компетенцию таких комитетов входят разработка диагностических протоколов и порядок их применения на основании имеющихся материально-технических и интеллектуальных ресурсов учреждения.

У нас в стране эти функции выполняет врачебная комиссия по контролю качества оказания медицинской помощи. Врачебная комиссия должна быть в любой медицинской организации, независимо от организационно-правовой формы, видов деятельности и объема услуг. Цель ее создания и работы - повышение качества оказания медицинской помощи. Деятельность врачебной комиссии регламентирована приказом Минздрава России от 23 января 2015 г. № 13н «Об утверждении Административного регламента Федеральной службы по надзору в сфере здравоохранения по исполнению государственной функции по проведению проверок организации и осуществления федеральными органами исполнительной власти и органами исполнительной власти субъектов РФ ведомственного контроля качества и безопасности медицинской деятельности, осуществления федеральными органами исполнительной власти, органами исполнительной власти субъектов РФ и органами местного самоуправления, осуществляющими полномочия в сфере охраны здоровья граждан, а также осуществляющими медицинскую деятельность организациями и индивидуальными предпринимателями внутреннего контроля качества и безопасности медицинской деятельности» (зарегистрировано в Минюсте России 27 февраля 2015 № 36278).

Внимание врачебной комиссии следует сосредоточить на областях, которые оказывают наибольшее влияние на частоту диагностических ошибок, а также мониторинге дорогостоящих и дублирующих назначений исследований. Специалисты лаборатории должны обеспечить комитет информацией о несоответствующих назначениях тестов, неоправданных повторных анализах и ошибках на преаналитическом этапе вне лаборатории (нарушения в подготовке пациента к анализам, нарушения технологии взятия проб, их подготовки, условий и сроков доставки в лабораторию, ошибках в идентификации пациентов и вводе записи данных пациента в бланк направления, гемолизированных пробах и т.д.). Среди других направлений деятельности комитетов необходимо использовать:

  1. анализ случаев диагностических расхождений с данными аутопсии;

  2. сравнение назначений тестов с разработанными диагностическими протоколами;

  3. анализ случаев проведения повторных исследований в случае расхождений данных с результатами других диагностических исследований или клинической картиной у пациента;

  4. назначение и проведение экспертных оценок результатов исследований;

  5. проведение аудита в КДЛ;

  6. анализ диагностических ошибок при распространенных и редко встречающихся заболеваниях;

  7. анализ анонимного опроса врачей и пациентов;

  8. анализ добровольных отчетов врачей о своих диагностических ошибках.

Добровольные системы отчетности об ошибках в настоящее время действуют в большинстве учреждений здравоохранения в США, их использование содержит уникальный потенциал для изучения как системных, так и когнитивных диагностических ошибок.

Одной потенциальной возможностью снижения диагностических ошибок является активное вовлечение в диагностический процесс врачами-клиницистами врачей клинической лабораторной диагностики. Сложившаяся за десятилетия корпоративная профессиональная культура во взаимодействии между врачами-клиницистами и врачами клинической лабораторной диагностики создала целый ряд ограничений для практической реализации данного направления:

  1. врачи-клиницисты стараются не привлекать для участия в диагностическом процессе врачей клинической лабораторной диагностики;

  2. сложилась тенденция к ограничению доступа врачей клинической лабораторной диагностики к истории болезни, результатам других исследований, проблемам дифференциальной диагностики, назначению лекарственных препаратов, результатам лечения;

  3. врачи клинической лабораторной диагностики не имеют права вносить изменения в назначения лабораторных тестов, инициировать новые тесты, даже если они включены в диагностический протокол.

Основными причинами таких ограничений является низкая клиническая подготовка врачей лабораторий и их неоправданно высокая вовлеченность (и вследствие этого загруженность) непосредственно в производственно-аналитический процесс КДЛ. Однако улучшение взаимодействия между врачами-клиницистами и врачами клинической лабораторной диагностики - это единственный путь повышения эффективности назначения, оценки и использования лабораторных анализов и снижения числа диагностических ошибок. Доступность экспертных систем поддержки, которые предоставляют информацию о критериях эффективности диагностики заболеваний и интерпретации результатов исследований при оказании медицинской помощи, может также играть определенную роль, но междисциплинарное сотрудничество является обязательным для обеспечения ориентированного на пациента подхода к снижению диагностических ошибок.

Следует заметить и еще один момент, присущий современной ситуации. Дело в том, что клинические руководства в отношении большого числа заболеваний уже разработаны, а профессиональное сообщество врачей клинической лабораторной диагностики в их разработке практически не принимало участия, не знает о них и не задумывается над тем, какие могут возникнуть сложности в деятельности КДЛ в связи с их принятием. Над этими вопросами необходимо задуматься и решать их.

  1. Какие лабораторные тесты необходимо иметь в арсенале КДЛ в соответствии с принципами доказательной медицины?

  2. Какими методами определять те или иные лабораторные показатели?

  3. В какие временные интервалы на этапах оказания медицинской помощи следует выполнить необходимые лабораторные тесты?

  4. Чем должна располагать КДЛ (дополнительное оборудование, наборы реагентов) для выполнения необходимых лабораторных тестов?

Специалистам лабораторий важно осознать огромную важность клинических руководств и доказательной медицины для деятельности КДЛ и приложить все усилия по ускоренному ознакомлению специалистов лабораторий с разработанными клиническими руководствами, для того что бы они понимали, какие лабораторные тесты необходимо будет внедрить и что для этого необходимо сделать. Вместе с тем клинические руководства будут обновляться в соответствии с новыми данными доказательной медицины, поэтому при понимании важности этого направления лабораторной медицины для клинической и лабораторной практики все можно изменить.

Системные ошибки возникают при нарушении выполнения процедур и процессов на общем этапе лабораторного тестирования. Важнейшей составляющей для выявления лабораторных ошибок служат индикаторы качества, которые должны быть определены для всех этапов (процедур и процессов) на протяжении всего процесса тестирования. Они подробно рассмотрены в главе 2.

Преаналитический этап лабораторного тестирования - это место возникновения большинства лабораторных ошибок. Комплексный план предотвращения преаналитических ошибок должен содержать пять взаимосвязанных шагов:

  1. разработку четких письменных стандартов выполнения всех процедур;

  2. программу повышения профессиональной подготовки медицинских специалистов;

  3. максимальную автоматизацию процедур;

  4. мониторинг индикаторов (показателей) качества;

  5. описание порядка взаимодействия специалистов лаборатории и клинических отделений.

Письменные стандарты должны четко объяснять, как подготовить пациента к анализам, как заполнять заявки на исследование, идентифицировать пациента, забирать биологический материал и маркировать пробы, подготовить, а затем транспортировать в лабораторию.

Все медицинские специалисты, которые участвуют в преаналитическом этапе, должны не только уметь правильно выполнять процедуры, но и понимать, почему процедуры необходимо мониторировать. Они должны знать, что произойдет, если нарушается технология процедуры, какие ошибки могут возникнуть и какое влияние они могут оказать на пробу биологического материала и в конечном итоге на пациента. Необходимо проводить постоянное обучение этих сотрудников, а их компетенции должны оцениваться ежегодно.

В лабораторной медицине анализ процессов, регистрация/документация всех процедур и процессов в соответствии со стандартами качества, особенно ISO 15189, являются ключевыми инструментами для изменения и улучшения повседневной клинической практики.

Современные робототехнические и информационные технологии способствуют снижению преаналитических ошибок. Компьютеризированная запись заказа на лабораторные тесты упрощает порядок тестирования и исключает второе лицо для переписывания заказов. Автоматическая подготовка флеботомического лотка обеспечивает полный набор штрихкодированных вакуумных пробирок для взятия проб крови и этикеток для ручной маркировки в одном лотке для каждого пациента. Штрихкоды также упрощают маршрутизацию и отслеживание проб.

Благодаря внедрению в практику КДЛ ЛИС и автоматических преаналитических станций, которые позволили автоматизировать такие процедуры, как регистрация проб по штрихкоду, подготовка проб, центрифугирование, аликвотирование, пипетирование и сортировка, практически исчезли преаналитические ошибки, ранее возникавшие в лабораториях.

Отсутствие взаимодействия между врачами лаборатории и клиницистами - главная проблема и причина лабораторных ошибок на пре- и постаналитическом этапе.

В последнее время для улучшения коммуникаций с клиницистами лаборатории все более активно используются возможности современных информационных технологий, которые позволяют улучшить своевременность уведомления о результатах анализов и избежать потенциальных ошибок. Критические значения могут автоматически передаваться (в режиме реального времени) клиницистам, медицинским сестрам в виде коротких сообщений или предупреждающих сообщений, прямо на настольный компьютер или телефон. Аналогичным образом результаты анализов могут передаваться пациентам на их мобильный телефон или компьютер. Информационные технологии активно используются в лабораториях для валидации данных, полученных с анализаторов, и отчетности, а также позволяют эффективно управлять процессами на основании индексов качества, поддерживать базу данных для интерпретации результатов лабораторных исследований и принятия клинических решений при оказании медицинской помощи пациенту. Аналогичные инструменты могут быть использованы для улучшения составления заявки на лабораторные анализы.

Вместе с тем необходимо обратить внимание еще на один важный аспект общего пути тестирования, который может приводить к лабораторным ошибкам. Отклонения во времени выполнения лабораторного исследования и готовности результата анализа игнорируются во многих лабораториях, не уделяется должного внимания данному критерию и в международных стандартах.

Для характеристики временных параметров производственных лабораторных процессов в иностранной литературе используется термин «время оборота теста», или «время получения результата» (TurnAround Time - ТАТ). Безусловно, лабораторное ТАТ может служить хорошим индикатором качества результатов лабораторных анализов, однако для выявления причин лабораторных ошибок оно должно быть детализировано и дополнено рядом других временных критериев.

Очень важным временным критерием является время от взятия пробы биологического материала до доставки его в лабораторию, так как продолжительность данного этапа TTP может оказывать существенное влияние на ряд предназначенных к анализу показателей, то есть на качество проб. Целый ряд временных ограничений в отношении сохранности проб существует в отношении биохимических анализов, исследований показателей коагулограммы, мочи. Именно поэтому время доставки биоматериала в лабораторию должно быть четко определено и постоянно контролироваться. Нормативы времени доставки должны быть в каждом отделении лечебного учреждения. В бланке результатов анализов должно быть отражено время взятия пробы и ее доставки в лабораторию.

Не меньшее влияние на качество пробы оказывает время от поступления в лабораторию до преаналитической подготовки ее к исследованию и непосредственного анализа пробы. Важное значение имеет указание времени готовности результатов в лаборатории и передачи бланков результатов анализов из лаборатории врачу-клиницисту.

Эти временные параметры в настоящее время не определены какими-либо руководящими документами, и такая практика существует практически во всех лабораториях разных стран.

Сроки готовности результатов лабораторных исследований вызывают большие дискуссии среди клиницистов. Проблему научно обоснованных временных критериев для различных процедур и процессов на TTP необходимо решать.

Поскольку одним из проявлений лабораторной ошибки является поздняя диагностика заболевания, причиной которой может быть задержка по времени результатов лабораторных исследований, в дальнейшем временные параметры необходимо распространить на все этапы лабораторного тестирования, начиная от назначения лабораторных тестов клиницистом и заканчивая действиями, предпринятыми клиницистом по лечению больного (в идеале необходимо включать время, затрачиваемое пациентом на выполнение назначенных исследований и рекомендаций по лечению). Возможно, следует начать с оценки своевременности врачебных действий после сообщения клиницисту критических результатов лабораторных тестов.

Таким образом, разделение лабораторных ошибок на когнитивные и системные позволяет создать единую систему управления качеством лабораторных исследований, основанную на использовании клинических руководств, критериев качества оказания медицинской помощи, разработанных Минздравом России, относительно назначений, оценки и использования результатов анализов при принятии клинических решений, и международных стандартов и критериев в отношении процедур и процессов, происходящих в КДЛ. Для клинической практики и практики КДЛ очень важным является то, что появился механизм регистрации и учета лабораторных ошибок, которого до сих пор у нас не было. Несмотря на то что подходы к снижению когнитивных и системных лабораторных ошибок отличаются, постоянный анализ и контроль за критериями оказания медицинской помощи и всех процедур и процессов, включенных во всеобщий процесс тестирования, особенно если применяются эффективные индикаторы качества, способствуют выявлению слабых мест и уязвимых точек, приводя в конечном итоге к снижению лабораторных ошибок. Но основное достоинство этой единой системы управления качеством лабораторных исследований состоит в том, что главным являются не дефекты процессов в лаборатории, а повышение качества оказания медицинской помощи больным. ВУК, в свою очередь, служит только инструментом по управлению этими процессами, при этом главной целью является проблема клинической эффективности - улучшает ли лабораторное тестирование результаты лечения пациента.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Измерение частоты диагностической ошибки в повседневной практике является важным требованием комплексной программы управления качеством в клинической практике и лабораторной диагностике. Используемые в настоящее время в КДЛ системы обеспечения качества лабораторных исследований направлены в первую очередь на выявление аналитических ошибок, проведение надлежащего ВКК, стандартизацию преаналитического этапа и, безусловно, способствуют снижению числа лабораторных ошибок. Однако вся эта деятельность по предупреждению и выявлению лабораторных ошибок вызывает профессиональную неудовлетворенность. В первую очередь эта неудовлетворенность обусловлена существующим разрывом между контролируемыми в настоящее время типами лабораторных ошибок и их возможными рисками для пациента. Во-вторых, в существующих концепциях обеспечения качества лабораторных исследований очень трудно определить приоритеты по снижению числа лабораторных ошибок и снижению вреда и других последствий (психологическая травма) для больного. При разделении лабораторных ошибок на когнитивные и системные приоритетом по улучшению качества лабораторных анализов становится снижение риска вреда для пациентов (повышение качества медицинской помощи), а не дефекты процессов на общем пути лабораторного тестирования, связь которых с нанесением вреда пациенту представляется не совсем ясной.

Сам факт наличия результатов лабораторных тестов не вносит никакого вклада в улучшение здоровья или благополучие отдельного пациента. Для того чтобы тест мог принести пользу, кто-то (врач-клиницист, другой медицинский специалист или пациент) должен сделать что-то полезное или эффективное на основе результата анализа. Вклад результатов лабораторных тестов можно оценить с точки зрения более быстрой или более точной диагностики заболевания, выбора правильного лечения, избежания ошибочного диагноза или неблагоприятного воздействия на лечение, улучшения результатов лечения заболевания, улучшения удовлетворенности пациентов или улучшения качества жизни.

В рамках изложенной в предыдущем разделе единой концепции по снижению лабораторных ошибок можно определить пять причин, которые вместе взятые могут объяснить все важные источники ошибок и снижения качества оказания медицинской помощи пациенту, связанные с общим процессом лабораторного тестирования:

  1. назначен ненужный лабораторный тест;

  2. нужный (правильный) лабораторный тест не назначен;

  3. назначен нужный (правильный) лабораторный тест, но клиницист неправильно использовал результат;

  4. назначен нужный (правильный) лабораторный тест, но результат получен поздно (не вовремя, задержан по какой-то причине);

  5. результат правильно назначенного лабораторного теста является неточным или неправильным.

Необходимо понимать, что в процессе тестирования даже все пять причин не всегда приводят к диагностической ошибке, однако неблагоприятные последствия для больного, весьма вероятно, будут вызваны одной из этих пяти причин. При назначении ненужного лабораторного теста ложноположительный результат может привести к постановке ошибочного диагноза или побудить клинициста назначить дополнительные ненужные исследования, процедуры или методы лечения, которые могут привести к нанесению вреда пациенту. Когда нужный тест не заказывается, клиницист может не получить ключевую информацию, важную для постановки правильного диагноза.

Даже когда назначен нужный (правильный) лабораторный тест, неправильное использование результата со стороны клинициста, будь то из-за непонимания клинических значений результата или из-за незнания ограничений методики тестирования (аналитическая погрешность, интерференция), приведет к диагностической ошибке. Неправильное использование результата может также возникать вследствие предоставления пациентом ошибочной или неполной информации, необходимой для правильной интерпретации результата. Независимо от происхождения, любое неправильное использование результатов может привести к ошибочному диагнозу.

Задержки в получении результата теста могут происходить на преаналитическом, аналитическом или постаналитическом этапе и приводят к несвоевременной (поздней) диагностике заболевания. Несвоевременное предоставление результатов тестов становится особенно проблематичным, если у пациента отмечается ухудшение состояния или если проводимое лечение неэффективно.

В случае если результат правильно назначенного лабораторного теста является неточным (например, неправильно откалиброванный анализатор, неправильно идентифицированный пациент, гемолиз пробы и др.), следствием может быть неправильный диагноз.

Эти пять причин лабораторных ошибок и должны быть главными точками внимания в деятельности врачебных комиссий по качеству оказания медицинской помощи и работе специалистов КДЛ. В дальнейшем работа по снижению лабораторных ошибок должна быть направлена на установление связи проводимых мероприятий:

  • с уменьшением числа осложнений при лечении пациента;

  • сокращением срока пребывания пациента в отделении интенсивной терапии или реанимации;

  • сокращением длительности пребывания пациента в стационаре;

  • снижением использованных средств лечения пациента;

  • снижением количества дополнительных исследований;

  • сокращением смертности;

  • увеличением продолжительности жизни;

  • удовлетворенностью пациента качеством медицинской помощи.

Опыт и знания, которыми обладают врачи клинической лабораторной диагностики, их правильное использование при назначении и оценке результатов тестов, а нередко и при выборе терапевтических мероприятий, могут принести весьма существенную пользу клиницистам и пациентам, и их вовлечение в эти процессы может иметь решающее значение для успеха. Только благодаря совместной работе с клиницистами может быть достигнута цель снижения диагностических ошибок и повышения эффективности клинической лабораторной диагностики.

Одним из наиболее реальных путей по налаживанию взаимодействия между врачами-клиницистами и врачами клинической лабораторной диагностики является их совместная работа по разработке диагностических карт относительно назначения, оценки и использования результатов лабораторных тестов для оказания медицинской помощи пациенту в рамках врачебной комиссии по контролю качества оказания медицинской помощи. Диагностические карты могут разрабатываться для любого заболевания или состояния. Они повышают согласованность действий всех специалистов, участвующих в оказании медицинской помощи, и служат полезным руководством при лабораторных исследованиях и лечении больных.

Использование диагностических карт при назначении лабораторных исследований позволяет в значительной степени стандартизировать процесс составления заявки на лабораторные тесты, выработать критерии их оценки, проводить анализ критериев, оценивать их и вырабатывать мероприятия для повышения эффективности данного процесса. Международный и отечественный опыт показывает, что использование диагностических карт приводит к снижению лабораторных ошибок и повышению качества оказания медицинской помощи.

В качестве методических рекомендаций при разработке диагностических карт в каждом лечебном учреждении можно использовать следующую последовательность действий.

  1. Создать междисциплинарную рабочую группу по разработке диагностических карт, в которую должны войти все специалисты, участвующие в едином процессе оказания медицинской помощи при той или иной нозологической форме заболевания (клиницисты, процедурные и постовые медицинские сестры, специалисты лаборатории, рентгенологи и т.д.).

  2. Определить последовательные этапы оказания медицинской помощи при определенном заболевании.

  3. Определить научно обоснованную продолжительность каждого этапа оказания медицинской помощи.

  4. Изучить клинические руководства международных и отечественных профессиональных организаций по данной нозологической форме заболевания, а также утвержденные Минздравом России стандарты оказания медицинской помощи.

  5. Определить перечень лабораторных исследований для каждого этапа оказания медицинской помощи.

  6. Определить наиболее эффективные методы определения необходимых лабораторных показателей.

  7. Определить индикаторы качества (критерии, пороги) для каждого этапа.

  8. Предусмотреть возможности отклонения от диагностической карты, связанные с пациентами, медицинским персоналом, организационной системой и т.д.

  9. Подготовить и обучить персонал.

  10. Определить порядок документирования и сбора данных с каждого этапа.

  11. Определить порядок регистрации и анализа отклонений с каждого этапа.

  12. Разработать порядок анализа экономических показателей заполнения диагностической карты.

Совместная работа в такой междисциплинарной группе клиницистов и специалистов лаборатории уже сама по себе будет способствовать налаживанию взаимодействия между врачами-клиницистами и врачами клинической лабораторной диагностики.

Необходимо отметить еще ряд важных моментов использования диагностических карт в клинической практике. Сравнительный анализ заполнения диагностических карт, возникших отклонений позволяет ответить на ряд принципиальных вопросов, стоящих перед организаторами здравоохранения, клиницистами и специалистами клинической лабораторной диагностики:

  1. как часто и при каких обстоятельствах возникают пять типов ошибок и приводят ли они к снижению качества оказания медицинской помощи, связанному с ошибочным диагнозом, пропущенным диагнозом или поздней диагностикой;

  2. какие конкретные меры могут способствовать снижению диагностических ошибок, связанных с лабораторным тестированием;

  3. какова клиническая и экономическая эффективность работы конкретного клинициста.

Врачи клинической лабораторной диагностики могут предоставлять клиницистам полезную информацию о заполнении диагностической карты, возникающих отклонениях и предпринимаемых мерах по снижению лабораторных ошибок.

В свою очередь, клиницисты путем регулярного анализа качества оказания медицинской помощи больным могут предоставлять информацию об эффективности мер по снижению лабораторных ошибок, предпринимаемых в лаборатории.

В конечном итоге главной парадигмой для врачей клинической лабораторной диагностики является переход от оценки своей эффективности на основе показателей лабораторной производительности и внутреннего контроля качества к оценке на основе результатов эффективности лечения пациентов.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Берестовская В.С., Ларичева Е.С., Руднева А.А. и др. Временной параметр эффективности лабораторных процессов // Справочник заведующего КДЛ. 2013. № 6. C. 20-28.

  2. Гудер В.Г., Нарайана С., Вислер Г., Цавта Б. Пробы: от пациента до лаборатории. Влияние факторов преаналитического этапа на качество результатов лабораторных исследований : пер. с англ. GIT VERLAG, 2003. 105 с.

  3. Евгина С.А. Экономические аспекты оснащения биохимической лаборатории // Справочник заведующего КДЛ. 2006. № 6. С. 15-23.

  4. Кишкун А.А. Современные технологии повышения качества и эффективности клинической лабораторной диагностики. Москва : РАМЛД, 2005. 528 с.

  5. Кишкун А.А., Гузовский А.Л. Лабораторные информационные системы и экономические аспекты деятельности лаборатории. Москва : Лабора, 2007. 256 с.

  6. Флетчер Р., Флетчер С., Вагнер Э. Клиническая эпидемиология: Основы до-казат. медицины : пер. с англ. Москва : Медиа Сфера, 1998. 345 с.

  7. Armbruster D., Alexander D. et al. Turnaround Time and Sample Throughput Comparison Study of Four Integrated Clinical Chemistry. Immunoassay Systems // Clin. Chem. 2006. Vol. 52. S6.

  8. Carraro P., Plebani М. Errors in a stat laboratory: types and frequencies 10 years later // Clin. Chem. 2007. Vol. 53. P. 1338-1342.

  9. Casalino L.P., Dunham D., Chin M.H. Frequency of failure to inform patient of clinically significant outpatient test results // Arch. Int. Med. 2009. Vol. 169. P. 1123-1129.

  10. Bonini P., Plebani M., Ceriotti F., Rubboli F. Errors in laboratory medicine // Clin. Chem. 2002. Vol. 48. P. 691-698.

  11. Da Rin G. Pre-analytical workstations: a tool for reducing laboratory errors // Clin. Chim. Acta. 2009. Vol. 404. P. 68-74.

  12. Davis B.G., Mass D., Bishop M.L. Principles of clinical laboratory utilization and consultation. Philadelphia : Saunders, 1999.

  13. Gambino S.R. Diagnostic Error in Medicine: Met and unmet needs of the automated clinical laboratory // Trans N.Y. Acad. Sci. 1970. Vol. 32 ( Series II). P. 816-820.

  14. Green S.F. The cost of poor blood specimen quality and errors in preanalytical processes // Clinical Biochemistry. 2013. Vol. 46. P. 1175-1179.

  15. Goldschmidt H.M.J., Lent R.W. Gross errors and work flow analysis in the clinical laboratory // Klin Biochem Metab. 1995. Vol. 3. P. 131-140.

  16. Gras J.M., Philippe M. Application of the Six Sigma concept in clinical laboratories: a review // Clin. Chem. Lab. Med. 2007. Vol. 45. P. 789-796.

  17. Graber M.L., Franklin N., Gordon R. Diagnostic error in internal medicine // Arch. Intern. Med. 2005. Vol. 165. P. 1493-1499.

  18. Hammerling J.A. A Review of Medical Errors in Laboratory Diagnostics and Where We Are Today // Lab. Med. 2012. Vol. 43. P. 41-44.

  19. Henry J.B. Clinical diagnosis and management by laboratory methods. 19 ed. Philadelphia: Saunders, 1996.

  20. Hickner J., Graham D.G., Elder N.C. et al. Testing process errors and their harms and consequences reported from family medicine practices: a study of the American Academy of Family Physicians National Research Network // Qual. Saf. Health Care. 2008. Vol. 17. P. 194-200.

  21. Hobson P., Badrick T. The impact on costs and efficiency of reducing the number of collected tubes // Clin. Chem. Lab. Med. 2013. Apr. 51(4). e. 53-54.

  22. Holland L.L., Smith L.L., Blick K.B. Reducing laboratory turnaround time outliers can reduce emergency department patient length of stay // Am. J. Clin. Pathol. 2005. Vol. 124. P. 672-674.

  23. Howanitz P.J. Errors in laboratory medicine: practical lessons to improve patient safety // Arch. Pathol. Lab. Med. 2005. Vol. 129. P. 1252-1261.

  24. ISO/TS 22367:2008. Medical laboratories - reduction of error through risk management and continual improvement. Geneva, Switzerland: International Organization for Standardization, 2008. 10 р.

  25. ISO 15189:2012. Medical laboratoriesRequirements for quality and competence. Geneva, Switzerland: International Organization for Standardization, 2012. 53 р.

  26. Kachalia A., Gandhi T.K., Pupolo A.L. et al. Missed and delayed diagnoses in the emergency department: a study of closed malpractice claims from 4 liability insurers // Ann. Emerg. Med. 2007. Vol. 49. P. 196-205.

  27. Kanter M. Reducing Diagnostic Errors By Closing The Loop On Outpatient Care. Presented at the 5th International Diagnostic Error in Medicine conference, Baltimore, 2012. https://www.healthpartners.com.

  28. Khoury M., Burnett L., Mackay M.A. Error rate in Australian chemical pathology laboratories // Med. J. Aust. 1996. Vol. 165. P. 128-130.

  29. Leape L.L. Errors in medicine // Clin. Chim. Acta. 2009. Vol. 404. P. 2-5.

  30. Lewandrowski К. Implementation and outcomes of point-of-care testing in the emergency department of a large urban academic medical center // POCT Competency Assessment: A Team Approach to Improve Patient Outcomes. October 6, 2010. http://www.aacc.org.

  31. Lippi G., Plebani M., Simundic A.M. Quality in laboratory diagnostics: From theory to practice // Biochem. Med. 2010. Vol. 20. P. 126-130.

  32. Lippia G., Panteghinia M., Bernardinia S. et al. Laboratory testing in the emergency department: an Italian Society of Clinical Biochemistry and Clinical Molecular Biology (SIBioC) and Academy of Emergency Medicine and Care (AcEMC) consensus report // Clin. Chem. Lab. Med. 2018. Vol. 56. P. 1655-1659.

  33. Lundberg G.D. Acting on significant laboratory results // JAMA. 1981. Vol. 245. P. 1762-1763.

  34. Palmer L., Briggs C., Mucfadden S. et al. ICSH recommendation for the standardization of nomenclature and grading of peripheral blood cell morphological features // Int. Lab. Hem. 2015. Vol. 37. P. 287-303.

  35. Plebani M. Errors in clinical laboratories or errors in laboratory medicine? // Clin. Chem. Lab. Med. 2006. Vol. 44. P. 750-759.

  36. Plebani M. Exploring the iceberg of errors in laboratory medicine // Clin. Chim. Acta. 2009. Vol. 404. P. 16-23.

  37. Plebani М. Laboratory-associated and diagnostic errors: a neglected link // Diagnosis. 2014. Vol. 1. P. 89-94.

  38. Roy C.L., Poon E.G., Karson A.S. Patient safety concerns arising from test results that return after hospital discharge // Ann. Intern. Med. 2005. Vol. 143. P. 121-

  39. Sciacovelli L., Plebani M. The IFCC working group on laboratory errors and patient safety // Clin. Chim. Acta. 2009. Vol. 404. P. 79-85.

  40. Schiff G.D., Kim S., Krosnjar N. Missed hypothyroidism diagnosis uncovered by linking laboratory and pharmacy data // Arch. Intern. Med. 2005. Vol. 165. P. 574-577.

  41. Silverstein M.D. An approach to medical errors and patient safety in laboratory services // A white paper. The Quality Institute Meeting, Atlanta, April 2003. 28 р.

  42. Stiene-Martin E.A., Lotspeich-Steininger, Kopke J.A. Clinical Hematology: Principles, procedures, correlations. 2 ed. Philadelphia etc. : Lippincott, 1998.

  43. Simundic A.M., Bolenius K., Cadamuro J. et al. Joint EFLM-COLABIOCLI Recommendation for venous blood sampling // Ann Biol Clin. 2019. Vol. 77, N. 2. P. 131-154. Doi : 10.1684 / abc.2019.1419.

  44. Titus K. Nurses at point of care whether or not labs are there // CAP Today, 1996 (Dec). P. 25.

  45. Thompson W., Dodek P.M,. Norena M., Dodek J. Computerized physician order entry of diagnostic tests in an intensive care unit is associated with improved timeliness of service // Crit. Care Med. 2004. Vol. 32. P. 1306-1309.

  46. Torke N., Boral L., Nguyen T., Perri A., Charkin A. Process improvement and operational efficiency through test result autoverification // Clin. Chem. 2005. Vol. 51. P. 2406-2408.

  47. Wagar E.A., Tamashiro L., Yasin B. et al. Patient safety in the clinical laboratory // Arch. Pathol. Lab. Med. 2006. Vol. 130. P. 1662-1668.

  48. Wallach J.M.D. Interpretation of Diagnostic Tests. 6 ed. Boston etc. : Little, Brown … Co, 1996.

  49. Welton J., Meyer A., Mandelkehr L. et al. Outcomes of and resource consumption by high-cost patients in the intensive care unit // Am. J. Crit. Care. 2002. Vol. 11. P. 467-473.

  50. Westbrook J.I., Georgiou A., Rob M.I. Computerised order entry systems: sustained impact on laboratory efficiency and mortality rates? // Stud. Health. Technol. Inform. 2008. Vol. 136. Р. 345-350.

  51. William O.U. The customer-oriented Laboratory. 2nd. American Society of Clinical Pathologists, Chicago, 1996. 294 p.

  52. Witte VanNess S.A., Angstadt D.S., Pennell B.J. Errors, mistakes,blunders, outliers, or unacceptable results: how many? // Clin. Chem. 1997. Vol. 43. P. 1352-1356.

  53. Valenstein P., Meier F. Outpatient order accuracy. A college of American Pathologists Q-Probes study of requisition order entry accuracy in 660 institutions // Arch. Pathol. Lab. Med. 1999. Vol. 123. P. 1145-1150.


1. ПЦР - полимеразная цепная реакция.
2. Помещения могут быть объединены.
3. Помещения могут быть общими с другими подразделениями учреждения.
4. 45 - национальный уровень рабочей единицы в час; 173,33 - отработанные часы в стандартный месяц (для специалистов КДЛ США).