
Мультиорганное донорство для трансплантации. Руководство по хирургической технике эксплантации органов / под ред. П. Асени, А. М. Гранде, Л. Де Карлис ; науч. ред. перевода А. В. Пинчук. - Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2022. - 408 с. : ил. - DOI: 10.33029/9704-6658-2-MPT-2022-1-408. - ISBN 978-5-9704-6658-2. |
Аннотация
При написании данной книги авторами были обобщены последние достижения в области хирургии мультиорганной эксплантации и кондиционирования посмертных доноров органов.
В первых двух частях руководства освещаются этические проблемы посмертного и прижизненного органного донорства, вопросы идентификации, обследования и ведения потенциальных доноров. Также рассматриваются принципы, лежащие в основе концепции смерти мозга, вопросы коррекции метаболических и гемодинамических нарушений при смерти головного мозга. Части 3 и 4 посвящены хирургическим, техническим нюансам процесса органного донорства, который, как правило, выполняется в виде мультиорганной эксплантации у доноров, умерших в результате смерти мозга. В последней части данного руководства рассматриваются различные аспекты прижизненного донорства печени и почек.
Издание рекомендуется для изучения всем специалистам, участвующим в процессе донорства органов. Заинтересованный читатель найдет в нем ответы и дополнительную информацию по большинству вопросов, связанных с донорством органов.
Предисловие
В процессе подготовки данного руководства под редакцией Паоло Асени, Антонино М. Гранде и Лучано Де Карлиса авторами были обобщены последние достижения в области кондиционирования посмертных доноров органов и хирургических аспектов мультиорганной эксплантации.
На современном этапе развития трансплантологии достигнуты отличные краткосрочные и долгосрочные результаты для всех типов трансплантаций в виде 5-летней посттрансплантационной выживаемости до 80% и 10-летней — около 60–70%. Столь хорошие результаты лечения терминальной стадии хронических заболеваний различных органов не достигнуты ни в одной другой области хирургии, за исключением хирургического лечения доброкачественных новообразований и функциональных нарушений.
Несмотря на положительное отношение к донорству органов среди населения всего мира, дальнейшее развитие трансплантологии ограничивается двумя важнейшими факторами: с одной стороны, дефицитом донорских органов, с другой — увеличением количества посмертных доноров, не являющихся идеальными ввиду нарушения у них функций различных органов. Не менее значимыми сдерживающими развитие факторами являются отсутствие единых критериев идентификации и ведения потенциальных доноров, а также несовершенная организация процесса донорства в некоторых странах и регионах Центральной Европы. Другими примерами дополнительных ограничивающих факторов могут служить вновь возникшая в Германии дискуссия о процедуре констатации смерти головного мозга, а также растущее финансовое давление на стационары.
В первых двух частях руководства освещаются вопросы идентификации потенциальных доноров, этические проблемы посмертного и прижизненного органного донорства, а также принципы, лежащие в основе концепции смерти мозга, вопросы обследования и ведения потенциальных доноров, коррекции метаболических и гемодинамических нарушений при смерти головного мозга. Для преодоления дефицита донорских органов не менее важным представляется и донорство после смерти, развившейся вследствие необратимой остановки сердечной деятельности. Однако оно, по всей видимости, способно лишь незначительно увеличить пул донорских органов ввиду особой эмоциональной окрашенности, сопровождающей этот вид донорства, у медицинских работников, у общества в целом, а в особенности — у родственников умершего.
Части 3 и 4 посвящены хирургическим, техническим нюансам процесса органного донорства, который, как правило, выполняется в виде мультиорганной эксплантации у доноров, умерших в результате смерти мозга. В дополнение к богато иллюстрированным советам и оперативным приемам, эти главы подчеркивают огромную важность технически правильного изъятия органов для успеха их последующей трансплантации. Не следует забывать, что пригодность органов для пересадки зависит не только от донорских факторов. Повреждения и ошибки при проведении эксплантации оказывают значимое влияние на результаты оперативного вмешательства, что может проявляться увеличением частоты дисфункции трансплантата, частоты повторных трансплантаций, снижением выживаемости реципиентов и трансплантатов. Несмотря на продолжающуюся дискуссию в профессиональном сообществе, в клинической практике данному аспекту уделяется незаслуженно мало внимания. Принцип «выполнять эксплантацию должен лучший или самый опытный хирург» применяется лишь в редких случаях, что также справедливо и для анестезиологического обеспечения процедуры изъятия органов. В руководстве освещаются технические аспекты сплит-трансплантации печени, а также подготовки органов к трансплантации в ходе предтрансплантационной обработки (на этапе back-table). Заинтересованный читатель найдет ответы и дополнительную информацию по большинству вопросов, связанных с донорством органов, которые, несомненно, могут оказаться полезны в ежедневной клинической работе.
Последняя часть данного руководства посвящена прижизненному донорству печени и почек. Гораздо более важным, чем технические аспекты операции у донора, которая сегодня может быть минимально инвазивной и обеспечивать отличный результат как у донора, так и у реципиента, представляется тот факт, что удаление почки или части печени производится здоровому человеку. Этот акт солидарности и пожертвования уникален для мировой медицины, а потому приоритет безопасности донора в многоэтапном процессе прижизненного донорства-трансплантации, в котором предпочтение отдается минимально инвазивным вмешательствам, является безусловным. Помимо результатов обследования, приоритетное значение имеют добровольное информированное согласие и исключение любой финансовой заинтересованности со стороны прижизненного донора. Необходима тщательная оценка хирургических и анестезиологических рисков у потенциального донора для предотвращения как возможных осложнений, так и нанесения непреднамеренного вреда его здоровью. По этой же причине не является оправданным использование операции по изъятию органов у прижизненных доноров для обучения стажеров оперативной технике.
В заключение я хотел бы еще раз подчеркнуть важность данного руководства, а также поздравить редакторов и всех авторов, внесших свой вклад в эту работу, с тем, что они сумели великолепно объединить в одной книге все важнейшие аспекты органного донорства. Руководство рекомендуется для изучения всем специалистам, участвующим в процессе донорства органов, и должно рассматриваться как дань уважения всем донорам, которые своим сочувствием и солидарностью помогают уменьшить страдания и продлить годы жизни неизлечимо больным пациентам.
Тюбинген, ГерманияАльфред Кенигсрейнер
Участники издания
Редакторы
Паоло Асени (Paolo Aseni)
Получил степень доктора медицины в Миланском университете в 1975 г., проходил стажировку в различных медицинских центрах Германии и Франции: в Высшей медицинской школе Ганновера и в Центре экспериментальной медицины Мюнхена в 1978 г., в последующие годы — в Hopital Beaujon в Париже и в Hopital Paul Brousse в Вильжюифе. С 1980 г. работает в отделении хирургии и в центре трансплантации Niguarda Hospital в Милане (Италия). В настоящее время является старшим хирургом, ответственным за хирургическую подготовку в отделении скорой помощи (Medicina d’Urgenza) того же госпиталя. С 1989 г. является доцентом кафедры анатомии и макроскопической морфологии человека медицинского факультета Миланского университета.
Антонино М. Гранде (Antonino M. Grande)
Получил степень доктора медицины в Павийском университете в 1980 г. С 1982 по 1984 г. проходил стажировку в отделении сердечно-сосудистой хирургии Техасского кардиологического института в Хьюстоне, штат Техас (США), и в Марселе (Франция). С 1986 г. работает хирургом отделения кардиохирургии и трансплантации сердца и легких в IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo в Павии (Италия). Доктор Гранде имеет более чем 25-летний опыт проведения интенсивной терапии после кардиохирургических и сосудистых операций. Основные клинические интересы: сердечная недостаточность, трансплантация сердца и легких, механическая поддержка кровообращения. С 2000 по 2010 г. он был доцентом кафедры хирургической анатомии в Павийском университете.
Лучано Де Карлис (Luciano De Carlis)
Получил степень доктора медицины в Миланском университете в 1979 г. В 1984, 1987 и 1988 гг. проходил стажировку в качестве приглашенного научного сотрудника в Центре трансплантационной хирургии в Питтсбурге (США), изучая отдельные аспекты трансплантации печени, почек, поджелудочной железы, сердца и комплекса сердце–легкие. Еще один важный опыт работы за рубежом, на этот раз в качестве приглашенного профессора, был получен в Токийском университете в 2001 г. С 1985 г. работает в Niguarda Hospital в Милане (Италия), специализируется в области трансплантации почек, печени и поджелудочной железы. В настоящее время является профессором хирургии Медицинской школы Milano-Bicocca, а также руководителем отделения хирургии и центра трансплантации Niguarda Hospital в Милане, где под его руководством впервые в Италии были начаты программа трансплантации печени от живого донора и, в последнее десятилетие, программа трансплантации печени от доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности.
Авторы
Паоло Асени (Paolo Aseni)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
General and Transplant Surgery Division, Niguarda Hospital, Milan, Italy
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy
Иван Капобьянко (Ivan Capobianco), MD
Department of General, Visceral and Transplant Surgery, University Hospital Tübingen, Tübingen, Germany
Массимо Кардильо (Massimo Cardillo)
Department of Organ and Tissue Transplant Immunology, North Italy Transplant program References Centre — Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico, Milan, Italy
Джакомо Консоне (Giacomo Concone)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy
Лучано Де Карлис (Luciano De Carlis)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Рикардо Де Карлис (Riccardo De Carlis)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy
Никола Де Фацио (Nicola De Fazio)
Department of Organ and Tissue Transplant Immunology, North Italy Transplant program References Centre — Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico, Milan, Italy
Туллия Мария Де Фео (Tullia Maria De Feo)
Department of Organ and Tissue Transplant Immunology, North Italy Transplant program References Centre — Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico, Milan, Italy
Фабрицио Ди Бенедетто (Fabrizio Di Benedetto)
Hepato-pancreato-biliary Surgery and Liver Transplantation Unit, University of Modena and Reggio Emilia, Modena, Italy
Стефано Ди Сандро (Stefano Di Sandro)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Фабио Ферла (Fabio Ferla)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Лукреция Фуриан (Lucrezia Furian)
Kidney and Pancreas Transplantation Unit, Padua University-Hospital, Padua, Italy
Андреа Гатти (Andrea Gatti), MD
Department of General, HPB and Liver Transplantation Surgery, Ghent University Hospital Medical School, Ghent, Belgium
Алессандро Джакомони (Alessandro Giacomoni)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Антонино М. Гранде (Antonino M. Grande)
Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy
Штефан Гулик (Stefan Hulik), MD, FEBS
Department of General, Visceral and Transplant Surgery, University Hospital Tübingen, Tübingen, Germany
Че Вон Чо (Jae-Won Joh)
Department of Surgery, Samsung Medical Center Sungkyunkwan University School of Medicine, Seoul, Korea
Чун Хек Дэвид Квон (Choon Hyuck David Kwon)
Department of Surgery, Samsung Medical Center Sungkyunkwan University School of Medicine, Seoul, Korea
Андреа Лаутерио (Andrea Lauterio)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Якопо Маньони (Iacopo Mangoni)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Анна Мариани (Anna Mariani)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Сильвио Надалин (Silvio Nadalin), MD, FEBS
Department of General, Visceral and Transplant Surgery, University Hospital Tübingen, Tübingen, Germany
Карло Пеллегрини (Carlo Pellegrini)
Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, University of Pavia, Pavia, Italy
Джузеппе Пикколо (Giuseppe Piccolo)
Department of Organ and Tissue Transplant Immunology, North Italy Transplant program References Centre — Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico, Milan, Italy
Винченцо Пиротта (Vincenzo Pirotta)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Чинция Поли (Cinzia Poli)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Паоло Риготти (Paolo Rigotti)
Kidney and Pancreas Transplantation Unit, Padua University-Hospital, Padua, Italy
Федерико Романи (Federico Romani)
Vascular Surgery Division, CardioToracoVascular Department, Niguarda Hospital, Milan, Italy
Орнелла Россетти (Ornella Rossetti)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Рафаэлла Сгуинци (Raffaella Sguinzi)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Джузеппе Тарантино (Giuseppe Tarantino)
Hepato-pancreato-biliary Surgery and Liver Transplantation Unit, University of Modena and Reggio Emilia, Modena, Italy
Паола Траканелли (Paola Tracanelli)
Vascular Surgery Division, CardioToracoVascular Department, Niguarda Hospital, Milan, Italy
Маттео Трипепи (Matteo Tripepi)
Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Роберто Иван Троизи (Roberto Ivan Troisi), MD, PhD, FEBS
Department of General, HPB and Liver Transplantation Surgery, Ghent University Hospital Medical School, Ghent, Belgium
Маурицио Вертемати (Maurizio Vertemati)
Department of Human Morphology, University of Milan Medical School, Milan, Italy
Список сокращений и условных обозначений
♠ — торговое наименование лекарственного средства и/или фармацевтическая субстанция
℘ — лекарственное средство не зарегистрировано в Российской Федерации
АД — артериальное давление
АТФ — аденозинтрифосфат
ВБА — верхняя брыжеечная артерия
ВБВ — верхняя брыжеечная вена
ВГВ — вирус гепатита B
ВГС — вирус гепатита С
ВИЧ — вирус иммунодефицита человека
ВПВ — верхняя полая вена
ВЧД — внутричерепное давление
ГВИ — гемотрансмиссивные вирусные инфекции
ГДА — гастродуоденальная артерия
ДЗЛА — давление заклинивания легочной артерии
ДЛПА — добавочная левая печеночная артерия
ДПВ — добавочная печеночная вена
ДПК — двенадцатиперстная кишка
ДППА — добавочная правая печеночная артерия
ДРК — донор с расширенными критериями
ИБС — ишемическая болезнь сердца
ИВЛ — искусственная вентиляция легких
ИМТ — индекс массы тела
ИРП — ишемически-реперфузионное повреждение
КОС — кислотно-основное состояние
ЛЖА — левая желудочная артерия
ЛПВ — левая печеночная вена
ЛРК — линия Рекса–Кантли
НПВ — нижняя полая вена
НПДА — нижняя панкреатодуоденальная артерия
ОНМК — острое нарушение мозгового кровообращения
ОПА — общая печеночная артерия
ОРИТ — отделение реанимации и интенсивной терапии
ОФТ — отсроченная функция трансплантата
ОЦК — объем циркулирующей крови
ПГЭ — правосторонняя гемигепатэктомия
ПД — посмертный донор
ПДКВ — положительное давление в конце выдоха
ПДС — печеночно-двенадцатиперстная связка
ПНФТ — первично нефункционирующий трансплантат
ППВ — правая печеночная вена
ПТЛД — полный трансплантат левой доли (печени)
ПТПД — полный трансплантат правой доли (печени)
РТПД — расширенный трансплантат правой доли (печени)
С I–VIII — сегмент печени (каждый сегмент обозначается римской цифрой)
СА — селезеночная артерия
САД — системное артериальное давление
СВ — селезеночная вена
СГМ — смерть головного мозга
СЛР — сердечно-легочная реанимация
СПВ — срединная печеночная вена
ССС — системное сосудистое сопротивление
СХК — статическая холодовая консервация
ТК — трансплантационный координатор
ТЛД — трансплантат левой доли (печени)
ТЛЛС — трансплантат левого латерального сектора (печени)
ТПД — трансплантат правой доли (печени)
ТПЖД — ультразвуковое исследование
ЦВД — центральное венозное давление
ЦМВ — цитомегаловирус
ЦПД — церебральное перфузионное давление
ЧМТ — черепно-мозговая травма
ЧС — чревный ствол
ЧСС — частота сердечных сокращений
ЭКМО — экстракорпоральная мембранная оксигенация
ЭхоКГ — эхокардиография
DBD (donor after brain death) — донор после смерти головного мозга
DCD (donor after circulatory death) — донор после необратимой остановки кровообращения
EHB (European Homograft Bank) — Европейский банк гомографтов
EVLP (ex vivo lung perfusion) — аппаратная перфузия легких ex vivo
HTK — гистидин-триптофан-кетоглутарат
ISHLT (International Society of Heart and Lung Transplantation) — Международное общество трансплантации сердца и легких
N-ECMO (normothermic extracorporeal membrane oxygenation) — нормотермическая экстракорпоральная мембранная оксигенация
NHBD (non-heart-beating donors) — доноры, умершие в результате необратимой остановки сердечной деятельности
NITp (North Italy Transplant program) — Трансплантационная программа Северной Италии
UW (University of Wisconsin solution) — раствор Висконсинского университета
V 1–8 — вена (добавочная печеночная или приток; каждый сегмент печени обозначается арабской цифрой)
Часть I. Расширение донорского пула и оценка потенциального донора органов
Глава 1. Этические аспекты донорства органов. Антонино М. Гранде, Паоло Асени
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it P. Aseni Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com
Ключевые тезисы
-
Первый базовый принцип заключается в том, что каждый человек может являться как донором, так и реципиентом органов.
-
Необходимость баланса всех этических аспектов, включая пользу от трансплантации, клинические противопоказания, добровольное согласие человека на прижизненное или посмертное донорство органов.
-
Увеличение количества успешных трансплантаций органов (в первую очередь, почек) от прижизненных доноров является весомым аргументом в пользу прижизненного органного донорства. Однако данную ситуацию следует рассматривать, скорее, как прискорбную необходимость ввиду сохраняющегося дефицита органов от посмертных доноров (ПД).
-
Информированное согласие является необходимым условием для прижизненного донорства. Такое согласие от потенциального донора может быть получено только после его детального информирования об операционных рисках и уровне смертности прижизненных доноров, который составляет порядка 12–13 на 6000 случаев (0,2%, включая прижизненных доноров печени) [1].
-
Обсуждение смерти (головного мозга) потенциального ПД и последующего донорства органов с членами его семьи уместно только при надлежащем отношении к телу умершего со стороны всех специалистов, участвующих в процессе донорства.
-
Критерии для возможного прижизненного неродственного донорства органов должны быть тщательно рассмотрены местным этическим комитетом, в большинстве стран — по решению специальных судебных инстанций2В РФ неродственное прижизненное донорство запрещено законодательно.
-
Прижизненное донорство органов в коммерческих целях мировым трансплантационным сообществом признается категорически неприемлемым и должно решительно пресекатьсяВ РФ неродственное прижизненное донорство запрещено законодательно.
1.1. Основные этические принципы донорства органов
Дефицит донорских органов является первой этической проблемой клинической трансплантологии, поскольку количество пациентов, нуждающихся в трансплантации, по-прежнему превышает число доступных донорских органов.
Решение стать донором органов
Существует два возможных варианта в отношении потенциальных доноров:
Согласие стать донором органов должно быть информированным личным выбором человека. Информирование населения должно осуществляться путем разработки и реализации образовательных программ, посвященных ключевым аспектам донорства и трансплантации органов, поскольку донорство — это «дар жизни» с целью спасения неизлечимо больных. Кроме того, в водительских удостоверениях или других документах, включая интернет-сайты, используется процедура регистрации согласия потенциального донора. Однако эти попытки едва ли привели к увеличению числа ПД органов [1–7].
Большинство религий, включая христианство, иудаизм и ислам, не имеют принципиальных возражений против фундаментального принципа донорства как дара жизни. Трансплантация органов от ПД морально и этически приемлема для Православной и Католической христианских Церквей, а донорство органов поощряется как акт милосердия. Папа Римский Пий XII в 1956 г. заявил: «Человек может желать распоряжаться своим телом и предназначать его для целей полезных, нравственно безупречных и даже благородных, среди которых желание помочь больным и страждущим… Это решение должно быть не осуждено, а положительно оправдано» [8]. Папа Римский Иоанн Павел II в 2000 г. на Международном трансплантационном конгрессе в Риме провозгласил: «Необходимо привить людям, особенно молодым, искреннее и глубокое понимание необходимости братской любви, любви, которая может найти выражение в решении стать донором органов» [9]. Комитет консервативного движения по еврейским законам и стандартам объявил посмертное донорство органов не только актом милосердия, но и «обязательством», спасающим человеческие жизни. Левит 19:16 предписывает: «Не стойте в стороне, когда проливается кровь ближнего вашего», что подразумевает использование любого ресурса для спасения человеческой жизни. Ислам также разрешает и поощряет как прижизненное, так и посмертное донорство органов. Первой заповедью буддизма является облегчение страданий, и донорство органов рассматривается этой религией как акт великодушия. В индуизме донорство органов также не запрещено. Свидетели Иеговы зачастую считаются противниками трансплантологии, потому что выступают против переливания крови. Однако донорство и трансплантация органов могут быть приняты представителями этой конфессии при условии, что во время операции не происходит переливания крови [10].
Увеличение количества ПД органов было достигнуто в странах, в которых была одобрена концепция «предполагаемого согласия» (presumed consent). Эта модель подразумевает, что каждый взрослый человек после своей смерти, независимо от пожеланий своей семьи, является потенциальным донором органов, если при жизни он не выразил своего возражения. Такой принцип «согласия по умолчанию» (silent consent) был принят на этических и юридических основаниях в некоторых странах Европы и АзииВ том числе и в РФ, что позволило увеличить количество эффективных ПД в таких странах, как Испания и Сингапур, со среднего показателя 20 доноров на 1 млн населения, наблюдаемого в США, Великобритании и Канаде, до почти 40 доноров на 1 млн населения [2, 11].
Безусловно, принцип «согласия по умолчанию» привел к увеличению количества эффективных ПД, но является ли данная концепция этически приемлемой? Во-первых, все граждане должны быть достоверно информированы о концепции предполагаемого согласия. Во-вторых, следует понимать, что человек после собственной смерти все еще является управляющим, но уже не владельцем своего тела, а уважение к умершему не приравнивается к неприкосновенности его тела. Посмертное донорство органов служит проявлением солидарности с пациентами, страдающими крайне тяжелыми и инвалидизирующими заболеваниями, единственным радикальным методом лечения которых является трансплантация. Таким образом, за принципом «согласия по умолчанию» скрыта необходимость и обязанность большей осведомленности общества о том, что люди могут стать донорами после своей смерти. Предполагаемое согласие оправдано также тем, что на протяжении всей своей жизни человек никогда не выражает явного согласия на жизнь в обществе, в котором он существует, а значит, нет никаких оснований оправдывать иное обращение с органами человека после его смерти. Лучше отдавать приоритет отношениям с другими членами того общества, частью которого мы являемся в течение жизни, чем узкой и ограниченной концепции «сохранения целостности тела» после смерти. Однако, несмотря на большое значение образовательных программ в области донорства и трансплантации органов, не менее важно избегать негативного ажиотажа в средствах массовой информации, связанного с пациентами, находящимися в состоянии запредельной комы. Действительно, легко найти печатные статьи и видеосюжеты, в которых потенциальный донор описывается как человек, ожидающий «казни». Читатели и зрители наверняка испытают шок, узнав, что непосредственно перед «экзекуцией» донор внезапно и чудесным образом выздоровел. Увы, но для специалистов, занимающихся органным донорством и трансплантацией органов, не является редкостью появление беспочвенных, но громких и сенсационных заголовков в средствах массовой информации. К примеру, «Мальчик, который вернулся из мертвых: специалисты заявили, что после такой автокатастрофы для подростка нет надежды выжить. Его родители не верили… У его потрясенных родителей даже испросили согласие на посмертное донорство органов». Или, «убедившись, что они видят «проблеск жизни», когда Стивен находился в коме, Джон и Джанет Т. отвергли предложение отключить его от аппарата жизнеобеспечения. И это решение спасло его. Нейрохирург обнаружил слабые признаки мозговой активности, и через две недели Стивен очнулся от комы. Через семь недель он покинул больницу. А еще через четыре года начинающий бухгалтер говорит, что всем обязан настойчивости своих родителей» [12].
Донорские органы бесценны и могут быть пожертвованы в качестве проявления альтруизма. Как потенциальный донор после своей смерти может рассматриваться каждый человек, в том числе носитель вирусов гепатита В и С. Особое внимание следует уделить потенциальной роли заключенных и приговоренных к смертной казни, среди которых были и те, кто просил предоставить им право стать донором органов после смерти [13]. Были предприняты также и другие попытки осуществления донорства органов у казненных заключенных [14, 15].
В 2007 г. американский сенатор Андерсон предложил два законопроекта, согласно которым освобождение заключенных происходило на 60 дней раньше срока в случае донорства костного мозга, а «любому заключенному, который выполняет особенно важный или гуманный акт», включающий прижизненное донорство почки, предоставлялся кредит хорошего поведения до 180 дней [16]. Тем не менее уже в XVIII в. итальянский мыслитель Чезаре Беккариа рассматривал смертную казнь этически противоречивой и неприемлемой в демократическом государстве [17]. Таким образом, этический и моральный антагонизм в отношении смертной казни продолжает набирать силу. Это может приводить к компромиссным предложениям об использовании органов, полученных от заключенных после проведения смертной казни. Например, имеются сообщения о практике казни приговоренных с немедленной эксплантацией органов в Китае [18].
1.2. Распределение донорских органов
В процессе распределения донорских органов должны быть приняты во внимание следующие критерии.
-
Возраст. С целью сокращения длительности ожидания донорского органа была введена концепция «предпочтительного статуса» (preferred status). Так, Veatch предложил модель приоритета распределения с учетом возраста потенциального реципиента, известную как «перспектива на всю жизнь» (over-a-lifetime perspective) [19].
-
Максимальная медицинская эффективность. Следующая концепция алгоритма распределения донорских органов направлена на получение максимальной пользы от трансплантации для реципиента, в том числе — на увеличение количества успешных трансплантаций, и включает следующие важнейшие параметры:
-
статус неотложности (ургентности). Предпочтение отдается наиболее тяжелым пациентам в «листе ожидания» донорских органов. Критика этого критерия заключается в деобъективизации оценки состояния потенциального реципиента врачом, принимающим участие как в лечении данного пациента, так и в деятельности, связанной с донорством органов, в результате чего возможна дискриминация в отношении других потенциальных реципиентов;
-
вычисление посттрансплантационной выживаемости и ожидаемой продолжительности жизни пациентов из «листа ожидания» после трансплантации;
-
отбор потенциальных реципиентов на основе их комплаентности и модели поведения. В некоторых ситуациях выбор может оказаться невероятно сложным, что становится понятным при рассмотрении случая, описанного Cooley, одним из пионеров трансплантации сердца. 17-летний молодой человек, живущий с подругой, которая была на 2-м месяце беременности от него и уже имела двухлетнего ребенка, был госпитализирован с кардиомиопатией, связанной с употреблением кокаина и алкоголя. В Техасском кардиологическом институте (Texas Heart Institute) в Хьюстоне, штат Техас, ему была выполнена трансплантация сердца, после которой пациент первоначально получал регулярную иммуносупрессивную терапию. В последующем пациент отправился в Индиану, где принимал иммуносупрессивные препараты периодически. За нанесение побоев своей подруге пациент был заключен в тюрьму, где у него развилась сердечная недостаточность, после чего он вернулся в больницу, где ему была проведена экстренная имплантация чрескожного желудочкового вспомогательного устройства. Через 72 ч после восстановления у реципиента функции сердечного трансплантата желудочковое вспомогательное устройство было удалено. В дальнейшем пациенту потребовалась еще одна трансплантация, однако Комиссия по медицинскому освидетельствованию вынесла отрицательное заключение на основании его недостаточной комплаентности и более низкого процента успеха ретрансплантации в сравнении с первичной [20].
-
-
Срок нахождения в «листе ожидания». Суть данного критерия заключается в том, что приоритет отдается пациентам, находящимся в «листе ожидания» наиболее продолжительное время, что может негативно сказываться на потенциальных реципиентах, наблюдающихся в нескольких центрах трансплантации (срок нахождения в каждом центре может оказаться недостаточным при распределении донорских органов).
-
Приверженность вредным привычкам и правонарушения. Посттрансплантационную комплаентность потенциального реципиента возможно оценить по его образу жизни (злоупотребление наркотиками, алкоголем, никотиновая зависимость). Отсюда возникают следующие вопросы: этично ли при распределении донорских органов между пациентами оценивать их образ жизни и вклад в общество? Является ли данный критерий дискриминационным по отношению к пациентам, находящимся в «листе ожидания»?
-
Реципиент — донор органов. Данный критерий подразумевает преференции при распределении органов пациентам в «листе ожидания», ранее зарегистрированным в регистре потенциальных доноров.
1.3. Прижизненное донорство органов
Эксплантация органов у живого донора представляет собой операцию, кардинально отличающуюся от других хирургических вмешательств, поскольку донор рискует своим здоровьем не ради самого себя, а ради другого человека, что, безусловно, противоречит старейшему принципу врачебной этики Primum nihil nocere («Прежде всего — не навреди»). Основным источником донорских органов являются ПД, однако некоторые органы и ткани могут быть получены от живых доноров, что позволяет в определенной степени компенсировать дефицит донорских органов. В настоящее время прижизненное донорство является качественной альтернативой посмертному донорству органов. Так, в США в 2013 г. 5733 почечных трансплантата были получены от прижизненных доноров [21]. При отсутствии противопоказаний живыми донорами могут являться члены семьи, друзья и даже анонимные члены общества5Согласно законодательству РФ прижизненным донором органов может являться только генетически родственный донор.
Следует помнить, что прижизненное донорство органов и тканей (почки, костного мозга, в последнее время — доли печени, легкого) представляет собой риск для здоровья донора, варьирующий в зависимости от вида выполняемой операции от очень низкого до высокого. В случае прижизненного родственного донорства будущий реципиент знает и соглашается с тем, что для спасения его жизни здоровье другого человека (его родственника) будет подвергаться опасности. Совершенно иначе обстоит дело в странах, где допускается прижизненное донорство органов в обмен на денежное вознаграждение — «купля-продажа донорских органов». Одним из наиболее распространенных способов миновать национальные законы, запрещающие любые формы торговли донорскими органами, является «трансплантационный туризм». «Трансплантационные туристы» — это пациенты, направляющиеся в центры трансплантации некоторых стран с целью получения «легкодоступных» донорских органов для трансплантации, которые приобретаются у бедных слоев населения (в основном почки, в некоторых случаях — доля печени, роговица) [22]. Данная практика известна уже на протяжении нескольких десятилетий. В 2004 г. ассамблея Всемирной организации здравоохранения приняла резолюцию, призывающую государства-члены «принять меры по защите беднейших и уязвимых групп населения от трансплантационного туризма и торговли тканями и органами и уделить повышенное внимание более широкой проблеме международной торговли человеческими тканями и органами».
Противники торговли человеческими органами могут утверждать, что рынок донорских органов эксплуатирует беспомощность бедных слоев населения, которых привлекает возможность заработка, несмотря на существенный риск для здоровья. Сторонники данной практики возражают, что, образно, «лучше быть без почки, чем без денег», полагая, будто любой, даже самый обездоленный, человек имеет право на добровольное причинение потенциального вреда своему здоровью. В то же время не следует забывать, что именно врач несет огромную моральную ответственность — не за социальное положение человека, но за отсутствие у него органа [23].
Подобный моральный выбор описан в романе Грэма Грина «Десятый» (1985). Состоятельный адвокат Шавель находится в тюремном заключении во Франции в период немецкой оккупации. Однажды ночью участники Сопротивления застрелили нациста, и возмездие последовало незамедлительно. Немецкий охранник сообщает, что трое из тридцати заключенных будут казнены утром. Поскольку Третьему рейху безразлична их судьба, решение, кто будет казнен, остается за узниками. После жребия Шавель оказывается среди приговоренных. Но вместо принятия своей судьбы Шавель продает свой приговор человеку по имени Жанвье в обмен на состоятельность его матери и сестры.
В романе показаны усилия Шавеля по избавлению от чувства вины, которое он испытывает не по причине казни Жанвье в обмен на свою жизнь, но вследствие ощущения по крайней мере частичной моральной ответственности за свою собственную смерть [24].
Несмотря на законодательное регулирование донорства человеческих органов и тканей (например, существует Закон о человеческих тканях, принятый в Великобритании в 2004 г., в котором говорится, что «взимание платы за донорство человеческих органов является преступлением»), масштаб купли-продажи органов для трансплантации увеличивается во всем мире [25]. Использование таких терминов, как «вознагражденный дар» (rewarded gifting), или идея превращения доноров органов в продавцов напоминает символические страхи перед ящиком Пандоры [23]. Так, Cameron и Hoffenberg твердо убеждены, что аргументы в пользу продажи донорских органов достаточно убедительны, чтобы оправдать дальнейшее обсуждение подобной практики. Тем не менее, эти же авторы обсуждают и некоторые противоположные взгляды (pro et contra) относительно этической целесообразности прижизненного донорства органов [26].
Pro: альтруистические доноры не могут полностью обеспечить потребность общества в донорских органах:
Contra: донорские органы следует считать бесценным даром из альтруистических побуждений, не подлежащим купле-продаже:
-
финансовое вознаграждение прижизненных доноров может препятствовать посмертному донорству органов, поскольку родственники умершего могут потребовать подобную «компенсацию»;
-
платная трансплантация органов от живого донора характеризуется неблагоприятными условиями и повышенным риском для здоровья донора, так как обстановка, в которой производится эксплантация органа, с медицинской точки зрения в большинстве случаев далека от идеальной;
-
купля-продажа донорских органов способствует низкому качеству предоперационной подготовки доноров и неадекватному скринингу сопутствующих заболеваний, что влечет за собой увеличение рисков как для донора, так и для реципиента и сопровождается повышением интраоперационной летальности прижизненных доноров почек на 0,03%;
-
купля-продажа органов поощряет несправедливость, заключающуюся в возможности состоятельных пациентов игнорировать критерии распределения донорских органов. Для предотвращения «перепрыгивания очереди» (jump the queue) состоятельными пациентами Cameron и Hoffenberg предлагают создание государственного органа центрального подчинения, в обязанности которого будут включены: получение добровольного информированного согласия прижизненного донора, обеспечение адекватного предоперационного обследования потенциального донора и последующее распределение эксплантированных органов для трансплантации исключительно по медицинским критериям.
Ряд других этических проблем особенно актуален при трансплантации от живого донора части печени (ТПЖД). Этот вид медицинской помощи позволил снизить смертность пациентов с терминальной стадией хронических заболеваний печени, состоящих в «листе ожидания», особенно для пациентов, страдающих гепатоцеллюлярной карциномой, риск исключения которых из «листа ожидания» (drop out) очень высок.
Дефицит органов от ПД является главным препятствием развития трансплантации печени, а смертность пациентов в «листе ожидания» составляет порядка 20% в европейских странах и 14% в США. ТПЖД обладает некоторыми преимуществами перед трансплантацией от ПД: контролируемые сроки выполнения хирургических вмешательств, возможность детального обследования донора и реципиента (в том числе анатомических особенностей), контроль иммунологических факторов, влияющих на результаты трансплантации. Тем не менее в европейских странах, США и Канаде отмечается снижение количества выполняемых ТПЖД, поскольку данная операция остается объектом пристального изучения по причине сохраняющейся летальности прижизненных доноров и посттрансплантационных осложнений у реципиентов, особенно билиарных. Несмотря на необходимость информирования Organ Procurement and Transplantation Network обо всех случаях смерти прижизненных доноров в течение 72 ч с момента получения центром трансплантации данной информации, это требование зачастую не соблюдается, а фактическая периоперационная летальность прижизненных доноров правой доли печени составляет более 1% [27].
Безусловно, ТПЖД связана с определенным, относительно низким риском заболеваемости и смертности доноров. Именно поэтому специалисты центров трансплантации должны признавать, что смерть прижизненного донора печени — это вопрос «когда, а не если» (when, not if) [28]. При выборе кандидатов на ТПЖД трансплантологи руководствуются перечисленными выше принципами неотложности, максимальной пользы от трансплантации, приемлемости результатов детального обследования донора и реципиента. Для этого в клинической практике применяются различные виды оценочных шкал и систем. Последние, однако, не лишены недостатков, особенно при использовании в небольших «листах ожидания» трансплантации печени у пациентов с наибольшим риском исключения из него по причине декомпенсации основного или развития тяжелых сопутствующих заболеваний (too sick to transplant), а также прогрессирования гепатоцеллюлярной карциномы. Эти вопросы являются весьма сложными этическими дилеммами для специалистов, определяющих показания к ТПЖД, в связи с чем после пика популярности этой технологии в Европе и США в 2001–2002 гг. количество таких операций постепенно сокращается.
Сплит-трансплантация трупной печени, при которой одна донорская печень разделяется для трансплантации двум реципиентам, также представлялась важным способом преодоления дефицита донорских органов. В большинстве случаев данная методика использовалась при пересадке печени от взрослого ПД реципиентам детского возраста с отличными результатами. Однако по мере накопления опыта сплит-трансплантаций была отмечена более высокая частота развития посттрансплантационных осложнений, обусловленных анатомическими вариациями, не всегда достаточным размером трансплантата, техническими трудностями сосудистой и билиарной реконструкции, особенно при сплит-трансплантации двум взрослым реципиентам [29]. Несмотря на обнадеживающие результаты с точки зрения выживаемости, этическая проблематика сплит-трансплантации печени заключается в том, что к настоящему времени преимуществ этой методики перед трансплантацией целого органа не выявлено [30].
Именно поэтому совершенствование критериев распределения донорских органов и тесное взаимодействие между центрами трансплантации, имеющими соответствующий опыт использования в своей практике хирургических вмешательств различной степени сложности, являются одними из важнейших этических вопросов современной трансплантологии.
Литература
-
Middleton P.F., Duffield M., Lynch S.V. et al. Liver donor liver transplantation-adult donor outcomes: a systematic review // Liver Transpl. 2006. Vol. 12. P. 24–30.
-
Abouna G.M. The humanitarian aspects of organ transplantation // Transpl. Int. 2001. Vol. 14. P. 117–123.
-
United Network for Organ Sharing (UNOS). Annual report. 1999. URL: https://www.unos.org/donation/
-
United Network for Organ Sharing (UNOS). Update, special edition. Winter, 2002. URL: https://www.unos.org/donation/
-
Keown P. Improving the quality of life: the new target for transplantation // Transplantation. 2001. Vol. 7. P. S67–S74.
-
Eggers P.W. Effect of transplantation on the medicare end stage renal disease program // N. Engl. J. Med. 1998. Vol. 38. P. 223–229.
-
Hunsicker L.G. Survival advantage for renal transplantation // N. Engl. J. Med. 1999. Vol. 341. P. 1762–1763.
-
Document 3. Organ donation and transplantation. Source: Pope Pius XII. Tissue transplantation (14 May 1956). The human : papal teachings // O’Rourke K.D., Boyle P. Medical ethics: source of catholics teachings / 3rd ed. Georgetown University Press, Washington, DC. 1999. P. 286–290.
-
Address of the Holy Father John Paul II to the 18th international congress of the transplantation society. 29 Aug 2000. URL: http://w2.vatican.va/content/john-paul-ii/en/speeches/2000/jul-sep/documents/hf_jp- ii_spe_20000829_transplants.html
-
Theological perspectives on organ and tissue donation. URL: http://www.unos.org/donation/index.php?topic=fact_sheet_9
-
Jarvis R. Join the club: a modest proposal to increase availability of donor organs // J. Med. Ethics. 1995. Vol. 21. P. 199–204.
-
Eccles L. The boy who came back from the dead: experts said car crash teen was beyond hope. His parents disagreed // Daily Mail online. 2012 (Apr 25, 2012).
-
Longo C. Giving life after death row // The New York Times. 2011 (Mar 5, 2011).
-
Patton L. A call for common sense: organ donation and the executed prisoner // VA J. Soc. Policy Law. 1995. Vol. 3. P. 387–434.
-
Bartz C. Prisoners and organ donation. 2005. URL: http://findarticles.com/p/articles/miqa4100/is 200512/ain15957681
-
O’Reilly K. Prisoner organ donation proposal worrisome // AMA News. 2007. URL: http://www.amaassn.org/amednews/2007/04/09/prsb0409.htm
-
Beccaria C. Dei delitti e delle pene. 1764. E-text Editoria, Web Design, Multimedia. URL: http://www.e-text.it/
-
Matas D., Kilgour D. Bloody harvest: the killing of Falun Gong for their organs. Woodstock : Seraphim, 2010.
-
Veatch R.M. Transplantation ethics. Washington, D.C. : Georgetown University Press, 2000. P. 277–413.
-
Cooley D.A., Fung J.J., Young J.B. et al. Transplant innovation and ethical challenges. What have we learned? A collection of perspectives and panel discussion. We have come far, but selecting organ recipients remains an ethical minefield // Cleveland Clin. J. Med. 2008. Vol. 75, suppl. 6. P. 24–32.
-
National Kidney Foundation. URL: www.kidney.org/news/newsroom/factsheets/Organ-Donation-and-Transplantation-Stats
-
Delmonico F.L. The hazards of transplant tourism // Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2009. Vol. 4. P. 249–250.
-
Elliott C. Doing harm: living organ donors, clinical research and The Tenth Man // J. Med. Ethics. 1995. Vol. 21. P. 91–96.
-
Cameron J.S., Hoffenberg R. The ethics of organ transplantation reconsidered: paid organ donation and the use of executed prisoners as donors // Kidney Int. 1999. Vol. 55. P. 724–732.
-
Nelson E.W., Childress J.E., Peryman J. et al. Financial incentives for organ donation: a report payment subcommittee OPTN/UNOS Ethics Committee. 1993. URL: http://optn.transplant.hrsa.gov/resources/ethics/fi nancial-incentives-for-organ-donation/
-
Surman O. The ethics of partial liver donation // N. Engl. J. Med. 2002. Vol. 346. P. 1038.
-
Miller C., Smith M., Fujiki M., Uso T., Quintini C. Preparing for the inevitable: the death of a living liver donor // Liver Transpl. 2013. Vol. 19. P. 656–660.
-
Aseni P., De Feo T.M., De Carlis L. et al. A prospective policy development to increase split-liver transplantation for 2 adult recipients: results of a 12-year multicenter collaborative study // Ann. Surg. 2014. Vol. 259. P. 157–165.
Глава 2. Трансплантационная программа Северной Италии: стратегии увеличения донорского пула. Туллия Мария Де Фео, Массимо Кардильо, Никола Де Фацио, Джузеппе Пикколо
T.M. De Feo, M. Cardillo, N. De Fazio, G. Piccolo Department of Organ and Tissue Transplant Immunology, North Italy Transplant program References Centre — Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico, Milan, Italy; e-mail: tullia.defeo@policlinico.mi.it
Основные мероприятия для увеличения донорского пула
-
Назначение в каждом донорском стационаре ответственного специалиста, координирующего деятельность по донорству органов и тканей.
-
Оптимизация всех этапов деятельности, связанной с донорством органов и тканей.
-
Совершенствование организационных моделей за счет совместной работы всех специалистов, осуществляющих деятельность, связанную с донорством органов и тканей.
-
Расширение критериев пригодности (трансплантабельности) донорских органов, оптимизация использования эксплантированных донорских органов.
Увеличивающийся разрыв между количеством пациентов, нуждающихся в трансплантации, и количеством доступных и пригодных для трансплантации донорских органов продолжает оставаться главной проблемой современной трансплантологии. Подобная ситуация наблюдается с середины 1980-х гг., когда испанская модель донорства постулировала: Sin donate no hay transplante («Нет донора — нет трансплантации») и, таким образом, определила ключевой момент всего процесса посмертного донорства органов в целях трансплантации. Поиск эффективных стратегий увеличения количества органных доноров по-прежнему является приоритетом для мирового трансплантологического сообщества. В настоящее время наиболее эффективной признана работа испанской Национальной организации трансплантации (Organización Nacional de Trasplantes), во многом благодаря учрежденной в Каталонии в 1984 г. системе госпитальной трансплантационной координации.
Испанская модель органного донорства демонстрирует, что трансплантация является медицинской деятельностью, осуществление и развитие которой возможно в обществе, готовом «отдавать, чтобы получить» (the community gives and the community receives). В свою очередь задачей трансплантологов является воспитание и поддержка подобной концепции в обществе, поэтому в обязанности системы здравоохранения должен входить контроль над различными этапами процесса посмертного донорства органов для трансплантации. Характерными признаками испанской модели являются:
-
организация центра донорства как автономной структуры, независимой от центра трансплантации;
-
назначение специалиста, ответственного за деятельность, связанную с донорством органов и тканей, в каждом донорском стационаре;
-
контроль над распределением донорских органов должен осуществляться профессионалами, обладающими соответствующими навыками и компетенциями, в том числе организационными.
Процесс донорства-трансплантации представляет собой последовательность нескольких взаимосвязанных этапов, от идентификации потенциального донора до трансплантации органов. Этот процесс занимает несколько часов (зачастую несколько десятков часов), и все участвующие в нем специалисты должны обладать необходимым набором профессиональных навыков и пониманием поставленных перед ними задач.
С целью определения точных принципов и необходимых мероприятий для обеспечения эффективности процесса посмертного донорства органов для трансплантации в Италии был принят закон №91 от 01.04.1999 г. «О правовых основах донорства и трансплантации органов и тканей», что способствовало росту донорской и трансплантационной активности в стране. В настоящее время в Италии действует трехуровневая система донорства-трансплантации.
Локальная (местная): ключевая фигура — госпитальный трансплантационный координатор (ТК), являющийся специалистом по идентификации и наблюдению потенциального донора органов и тканей. В задачи госпитального ТК входят: мониторинг регистра умерших в стационаре пациентов, идентификация всех потенциальных доноров в стационаре, общение с родственниками потенциального донора с целью информирования о смерти их близкого и получения согласия на посмертное донорство, обследование потенциального донора и оценка пригодности его органов для последующей трансплантации.
Региональная: в каждом регионе страны организован региональный центр трансплантации, функциями которого являются: организация на основе национальных руководящих принципов (национальных клинических рекомендаций) деятельности, связанной с донорством органов, распределения полученных донорских органов с последующей трансплантацией, а также ведение пациентов, находящихся в «листах ожидания» донорских органов, и наблюдение за пациентами после трансплантации.
Национальная: включает Национальный центр трансплантации и Консультативный комитет (Technical Advisory Board), отвечающие за стратегическое и практическое планирование процесса посмертного донорства органов в целях трансплантации в стране. В последние годы Национальный центр трансплантации в сфере распределения донорских органов наделен определенными функциями с целью реализации национальных программ в сотрудничестве с региональными центрами трансплантации (трансплантация высокосенсибилизированным пациентам, ургентная, педиатрическая трансплантация).
Описанная модель процесса донорства-трансплантации функционирует в Италии с конца 1990-х гг., однако предпосылки для ее создания были разработаны европейскими трансплантационными организациями еще на заре эры трансплантации.
2.1. Краткая история Трасплантационной программы Северной Италии (North Italy Transplant Programm)
Во многих европейских странах трансплантация почки получила свое развитие в конце 1960-х гг., и уже в следующем десятилетии возникла необходимость создания центров координации органного донорства с функциями распределния донорских органов, автономных от центров трансплантации. Первый в Италии региональный координационный центр органного донорства (Regional References Centre) начал свою работу в 1974 г. в Ломбардии на базе иммунологической службы миланской больницы Maggiore Policlinico. Спустя 2 года в результате соглашения о сотрудничестве между этим подразделением и регионом Венето был создан первый в Италии межрегиональный координационный центр (Interregional References Centre). В то же время профессорами Piero Confortini, Edmondo Malan и Girolamo Sirchia была основана первая в Италии трансплантационная программа — Трансплантационная программа Северной Италии (North Italy Transplant program, NITp). Координационный центр NITp располагался в Милане и выполнял функции обследования потенциальных доноров, оценки пригодности донорских органов для последующей трансплантации, определения иммунологического статуса доноров и реципиентов, распределения донорских органов между центрами трансплантации. Во многом благодаря усилиям Claudia Pizzi, Mario Scalamogna и Francesca Poli в последующие годы в состав NITp вошли такие регионы Италии, как Лигурия, Марке, Фриули — Венеция — Джулия и автономная провинция Тренто. В последующем некоторые из функций межрегионального координационного центра были делегированы региональным координационным центрам, участвующим в NITp.
Основой успеха межрегионального координационного центра были ожидания, что значительная площадь территории и большой пул пациентов, находящихся в «листах ожидания», будут способствовать увеличению количества трансплантаций наиболее тяжелым реципиентам. Для повышения эффективности межрегионального взаимодействия была выбрана модель «центральной координации». Задачи по обследованию потенциальных доноров, распределению донорских органов, наблюдению пациентов в «листах ожидания», предоперационному иммуногенетическому типированию потенциальных доноров и реципиентов, выявлению послеоперационных осложнений и посттрансплантационному наблюдению за пациентами были возложены на региональные координационные центры. Для обеспечения взаимодействия между ними и центрами трансплантации были созданы рабочие группы NITp по трансплантации почки, печени, эксплантации донорских органов, педиатрической трансплантации и др. Каждая подобная группа состоит из специалистов, работающих совместно с координаторами регионального центра над логистическими вопросами, подготовкой рабочих протоколов и алгоритомов. Кроме того, взаимодействие и встречи представителей рабочих групп NITp и координаторов региональных центров во время регулярных научно-практических конференций позволяют обсудить конкретные клинические наблюдения и предложить стратегии улучшения результатов трансплантаций.
В начале 1990-х гг. NITp, следуя испанской модели, утвердила необходимость программы непрерывного образования всех специалистов, участвующих в процессе донорства-трансплантации, а благодаря постоянному контакту с ассоциациями пациентов NITp внесла свой вклад в развитие культуры посмертного донорства в Италии. По мере накопления опыта специалисты NITp приняли идеологию, что процесс органного донорства начинается в момент идентификации потенциального донора, после которого последовательно проходит несколько этапов. Ошибка или упущение на каждом из них означает «неиспользование» органов потенциально приемлемого донора и «невыполнение» жизненно необходимой трансплантации потенциальным реципиентам. Одним из важнейших условий продуктивной деятельности, связанной с донорством органов, является успешная работа госпитальных ТК, которые не должны встречать препятствий в своей клинической практике, чему старается способствовать NITp, определяя наиболее рациональную организационную модель для каждого донорского стационара и обеспечивая взаимодействие всех специалистов, участвующих в процессе органного донорства.
2.2. Процесс донорства-трансплантации
Идентификация и ведение потенциального донора: важными факторами, способствующими деятельности, связанной с донорством органов, являются наличие/отсутствие отделения нейрохирургии, возможности отделений реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ), устройство и оборудование стационара, однако ключевая фигура в осуществлении этого процесса — госпитальный ТК.
Согласие на донорство: идентификация потенциальных доноров, безусловно, важна, однако в Италии посмертное донорство невозможно без согласия близких умершего, поэтому хорошо подготовленный ТК необходим для взаимодействия с родственниками потенциального донора.
Обследование потенциального донора: поскольку существуют определенные противопоказания к посмертному донорству (инфекционные, опухолевые заболевания), значительное внимание уделяется безопасности трансплантации донорских органов, важную роль в обеспечении которой играет взаимодействие госпитального ТК с сотрудниками структурных подразделений стационара и специалистами координационного центра.
Ведение потенциального донора: основной целью является поддержание оптимальной оксигенации и перфузии органов потенциального донора, в том числе во время «катехоламинового шторма», характерного для смерти головного мозга (СГМ), что требует соответствующей квалификации сотрудников донорского стационара, участвующих в процессе донорства.
Пригодность донорских органов: помимо установления инфекционной безопасности донорских органов для трансплантации, следует определить функциональную пригодность отдельных органов с помощью клинико-лабораторных, инструментальных и/или гистологических методов диагностики. Донорский стационар должен обеспечить предоставление результатов исследований в максимально короткие сроки.
Распределение донорских органов: за данный этап процесса донорства несет ответственность региональный координационный центр, основываясь на принципах максимальной медицинской эффективности от трансплантации, в том числе и для наиболее тяжелых групп потенциальных реципиентов.
Готовность/выезд хирургической бригады: эта задача возложена на межрегиональный координационный центр, обеспечивающий транспортировку оборудования и инструментария, необходимых для эксплантации донорских органов, и надлежащий режим транспортировки донорских органов с учетом организационно-логистических особенностей и времени ишемии.
Эксплантация донорских органов: завершающий этап оценки пригодности донорских органов для последующей трансплантации, требующий тщательной организации и хорошего взаимодействия между различными хирургическими бригадами.
Трансплантационный и посттрансплантационный мониторинг: сбор и анализ данных о ходе хирургического вмешательства, посттрансплантационных осложнениях, выживаемости трансплантатов и реципиентов необходим для последующей оценки влияния различных факторов на результаты трансплантации и эффективности NITp.
Внедрение вышеперечисленных этапов и последующий тщательный контроль исполнения позволили не только увеличить количество эффективных ПД, но и свести к минимуму разницу между потенциальными и эффективными донорами.
В 1999 г. Совет Европы, признавая несомненную важность процесса посмертного донорства органов в целях трансплантации, учредил рабочую группу, в состав которой вошел один из членов NITp, для подготовки руководства, соответствующего последним рекомендациям мирового трансплантологического сообщества, с целью улучшения результатов деятельности, связанной с донорством и трансплантацией органов. Первое издание данного руководства было опубликовано в 2002 г. и содержало рекомендации для всех специалистов, участвующих в процессе донорства-трансплантации.
2.3. Увеличение количества доноров органов
За последние годы популяция ПД претерпела существенные изменения с точки зрения возраста и сопутствующих заболеваний, поэтому основной стратегией развития органного донорства является адекватное расширение критериев пригодности органов для трансплантации. В деятельности NITp с начала 1990-х гг. возраст донора старше 60 лет не являлся критерием исключения, что позволило за 10-летний период увеличить количество эффективных доноров на 347 (около 10% от общего числа) и выполнить трансплантацию 778 органов с результатами выживаемости, аналогичными полученным при трансплантации органов от ПД моложе 60 лет [1]. На рис. 2.1 показана донорская и трансплантационная активность NITp с начала ее деятельности.
Поскольку расширение критериев отбора доноров способствует риску передачи инфекционных заболеваний при трансплантации, с конца 1990-х гг. NITp руководствовался принципом, согласно которому наибольшим риском для пациента, находящегося в «листе ожидания», является трансплантация органа, инфицированного гемотрансмиссивными вирусными инфекциями (ГВИ) или полученного от донора с онкологическим заболеванием. В этой связи подход к оценке безопасности органов, полученных от ПД, претерпел существенные изменения. На сегодняшний день ГВИ и опухоли не рассматриваются как абсолютные противопоказания к донорству: каждый донор может обладать определенной степенью относительного риска, который должен быть сбалансирован потенциальной пользой трансплантации для реципиента. Подобная тактика была решительно поддержана в 2003 г. внедрением первого издания национальных руководящих принципов по безопасности доноров, согласно которым при необходимости в течение 24 ч возможна консультация со специалистами инфекционного профиля по поводу ГВИ или врачами-онкологами при выявлении опухолевого процесса. После принятия национальных руководящих принципов и поддержки со стороны сообществ инфекционистов и онкологов начали проводить трансплантации от ПД, ранее считавшихся непригодными (например, от ВГС- или ВГВ-позитивных доноров)7В РФ трансплантация органов от доноров, инфицированных ГВИ, законодательно запрещена (рис. 2.2). Однако, несмотря на постепенное расширение критериев пригодности донорских органов, с 2003 г. общее количество эффективных ПД остается неизменным, так как наблюдается постоянное сокращение доноров молодого возраста (рис. 2.3).

В последние годы сообщество трансплантологов интенсифицировало поиск возможностей для увеличения количества эффективных доноров. В некоторых странах существуют протоколы по работе с донорами, умершими в результате необратимой остановки сердечной деятельности (non-heart beating donors, NHBD). Однако в Италии реализация подобных протоколов по ряду организационных причин затруднена. Это обусловлено законодательными актами, устанавливающими более длительный (не менее 20 мин) no touch-период от остановки сердечной деятельности до начала эксплантации, что способствует неконтролируемому и зачастую необратимому ишемическому повреждению донорских органов. Программа по работе с NHBD началась в госпитале Павии: были трансплантированы 10 почек после динамической оценки внутриорганного сосудистого сопротивления в ходе аппаратной перфузии ex vivo (аппаратной экстракорпоральной перфузии) [2]. Расширение практики применения перфузионных технологий делает возможной и эксплантацию печени от NHBD с последующей оценкой ее пригодности для трансплантации. Кроме того, в рамках реализации проекта трансплантации легких от NHBD в Милане было проведено исследование эффективности аппаратной перфузии для «реабилитации» и последующей трансплантации легких (ex vivo lung perfusion, EVLP). В последующем протокол EVLP был принят для легких, изъятых у доноров, умерших в результате СГМ и ранее признававшихся нетрансплантабельными [3].


Прижизненные доноры являются еще одним важным источником донорских органов для трансплантации. В Италии трансплантация почек от живых доноров составляет около 7% общего числа трансплантаций почки, что составляет довольно малый процент в сравнении с другими европейскими странами. Вследствие этого в последние годы были предприняты мероприятия по увеличению количества трансплантаций почек от прижизненных доноров, в том числе Национальным центром трансплантации (Centro Nazionale Trapianti). В их числе — повышение информированности врачей диализных центров о потенциальной пользе трансплантации почки для реципиента и безопасности для донора (отчасти благодаря развитию минимально инвазивных способов нефрэктомии у донора). Во-вторых, информация о возможности трансплантации почки от живого донора должна быть доведена до сведения пациента на момент постановки в «лист ожидания». Динамика количества трансплантаций почки от прижизненных доноров, начиная с 2003 г., представлена на рис. 2.4.
В ряде стран при трансплантации почки от живого донора разработаны и используются протоколы для преодоления иммунологической несовместимости пары донор–реципиент. Программа, получившая название Crossover (так называемые парные трансплантации), заключается в том, что происходит перекрестный обмен донорскими органами в иммунологически несовместимых родственных парах донор–реципиент. Основной проблемой данной практики является необходимость выполнения операций в обеих парах за короткий промежуток времени с целью избежать риска отказа донора от хирургического вмешательства, родственному реципиенту которого уже была выполнена трансплантация от донора другой пары. В программе Crossover последовательность трансплантаций может быть запущена также «самаритянином» — донором, который из альтруистических соображений жертвует свою почку в пользу пациентов, находящихся в «листе ожидания». В Италии первый подобный прецедент произошел в 2010 г., что позволило последовательно выполнить трансплантацию почки еще 5 пациентам.

Еще одной возможностью увеличения количества трансплантаций представлялись впервые выполненные специалистами NITp в 2001 г. трансплантации печени от живого донора двум реципиентам одновременно, однако данная методика не получила дальнейшего распространения ввиду ее сомнительной безопасности для прижизненного донора и сложности хирургического вмешательства.
2.4. Увеличение количества донорских органов для трансплантации
Наряду с работой по увеличению количества эффективных доноров в Италии был принят принцип рационального использования донорских органов. Используемая с 1990-х гг. техника сплит-трансплантации печени сделала возможным проведение трансплантации этого органа от одного ПД двум реципиентам (одному взрослому реципиенту и одному реципиенту детского возраста). Это позволило снизить смертность пациентов детского возраста в «листе ожидания» с 16 до 3% за первые 5 лет реализации программы, а начиная с 2005 г. — до 0% [4]. Однако смертность взрослых пациентов в «листе ожидания» донорской печени, несмотря на определенное снижение после старта программы сплит-трансплантации, продолжала оставаться достаточно высокой [5]. По этой причине в конце 1990-х гг. была разработана техника сплит-трансплантации печени для двух взрослых реципиентов [6]. Однако эта методика является технически более сложной, чем стандартная техника для взрослого/ребенка; также особую важность здесь приобретают различные аспекты предоперационной оценки донора и антропометрическое соответствие донора и реципиента. По этим причинам, несмотря на накопленный опыт, сплит-трансплантация печени двум взрослым реципиентам выполняется достаточно редко [7]. Еще одной важной технологией увеличения количества органов для трансплантации, предложенной в конце 1990-х гг., является способ двойной трансплантации почек, полученных от пожилого ПД или от донора с недостаточной функцией почек, одному реципиенту. Обоснование такой методики заключается в определении (по результатам патолого-гистологического исследования) и обеспечении реципиенту адекватной массы функционирующих нефронов (nephron mass) в почках, полученных от доноров с расширенными критериями (ДРК), которые ранее признавались непригодными для трансплантации [8]. К 2014 г. в рамках NITp выполнено около 700 двойных трансплантаций почек с удовлетворительными результатами и прослеживается ежегодный рост количества этих операций в связи с продолжающимся увеличением среднего возраста эффективных ПД (рис. 2.5).

В заключение следует отметить, что, несмотря на деятельность трансплантологического сообщества по увеличению количества эффективных доноров и доступных для трансплантации органов, огромное внимание следует уделять информированности пациентов при постановке в «лист ожидания». Все потенциальные реципиенты обязательно должны быть предупреждены о возможности трансплантации органа, как от стандартного донора, так и от ДРК, что позволит ему принять решение о согласии или несогласии на операцию на момент вызова из центра трансплантации.
Литература
-
North Italy Transplant program. Annual Report. URL: www.policlinico.mi.it/
-
Rampino T., Abelli M., Ticozzelli E. et al. Non-heart beating donor transplant: the first experience in Italy // G. Ital. Nefrol. 2010. Vol. 27, N 1. P. 56–68.
-
Valenza F., Rosso L., Coppola S. et al. Ex vivo lung perfusion to improve donor lung function and increase the number of organs available for transplantation // Transpl. Int. 2014. Vol. 27, N 6. P. 553–561.
-
Cardillo M., De Fazio N., Pedotti P. et al.; NITp Liver Transplantation Working Group. Split and whole liver transplantation outcomes: a comparative cohort study // Liver Transpl. 2006. Vol. 12. P. 402–410.
-
Maggi U., De Feo T.M., Andorno E. et al.; Liver Transplantation and Intestine North Italy Transplant Study Group. Fifteen years and 382 extended right grafts from in situ split livers in a multicenter study: are these still extended criteria liver grafts? // Liver Transpl. 2015. Vol. 21, N 4. P. 500–511.
-
Colledan M., Andorno E., Valente U., Gridelli B. A new splitting technique for liver grafts // Lancet (Letter). 1999. Vol. 353, N 9166. P. 1763.
-
Aseni P., De Feo T.M., De Carlis L. et al.; Split-Liver Study Group. A prospective policy development to increase split-liver transplantation for 2 adult recipients: results of a 12-year multicenter collaborative study // Ann. Surg. 2014. Vol. 259. P. 157–165.
-
Ruggenenti P., Perico N., Remuzzi G. Ways to boost kidney transplant viability: a real need for the best use of older donors // Am. J. Transplant. 2006. Vol. 6. P. 2543–2547.
Глава 3. Организация процесса мультиорганного донорства: общие принципы и противопоказания. Антонио М. Гранде, Паоло Асени
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy;e-mail: amgrande@libero.it P. Aseni Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com
Ключевые функции трансплантационного координатора
-
Поддержка родственников потенциального донора по вопросам донорства органов и тканей с учетом индивидуальных и культурных особенностей.
-
Вовлеченность в процесс получения согласия на посмертное донорство органов.
-
Обеспечение соответствия процесса донорства национальному законодательству и рекомендациям профессионального сообщества.
-
Предоставление всей необходимой информации, позволяющей центрам трансплантации оценить пригодность органов потенциального донора для последующих трансплантаций.
-
Помощь в адекватном ведении и кондиционировании потенциального донора.
-
Максимальное содействие в распределении донорских органов для трансплантации.
-
Образование и просвещение медицинских работников и широкой общественности.
С изменениями из Akyol M., Tswen Wen V.L. [1].
3.1. Организационные вопросы: трансплантационные координаторы
В США и большинстве европейских стран наблюдение и ведение ПД с момента констатации СГМ до эксплантации является традиционной задачей ТК. Зачастую ТК имеют многолетний опыт работы в области сестринского дела и, как правило, не являются врачами. В свою очередь, врачи ОРИТ стремятся к сокращению времени ухода за потенциальными донорами после констатации СГМ для того, чтобы уделить максимум внимания живым пациентам [1]. Однако врачи-реаниматологи используют свои профессиональные навыки для продолжения оказания помощи пациенту, лечением которого они занимались до констатации СГМ, поскольку каждый потенциальный донор способен спасти жизни нескольких пациентов, находящихся в «листах ожидания». Безусловно, при ведении и кондиционировании потенциальных доноров необходимо руководствоваться научно обоснованными рекомендациями и стремиться к стабилизации состояния донора. Поскольку отсутствие стандартизации при ведении потенциального донора является одной из причин уменьшения количества пригодных для трансплантации органов, полученных от одного донора, трансплантологическим сообществом разрабатываются протоколы ведения и кондиционирования потенциального донора, умершего в результате СГМ [2, 3].
В течение двух последних десятилетий ключевая роль ТК в организации процесса посмертного донорства органов стала особенно заметна. Деятельность ТК способствовала значительному увеличению трансплантационной активности в Испании и других странах [4]. ТК могут быть как сотрудниками центров трансплантации, так и независимых от них организаций. Модель, при которой ТК являются сотрудниками центров трансплантации, обладает определенными преимуществами, позволяя координаторам принимать участие как в ведении потенциального донора, так и в процессе трансплантации органов. Однако, как показывает международный опыт (в том числе Испании, Португалии и Италии), более совершенной для максимального увеличения количества эффективных доноров признана система госпитальных ТК, являющихся сотрудниками донорского стационара и базирующихся в каждом донорском стационаре [5]. Госпитальные ТК играют важную роль в поддержании и повышении осведомленности персонала донорских стационаров об органном донорстве, оказывают поддержку родственникам ПД и участвуют в получении согласия на донорство, а также обеспечивают соблюдение юридических норм процесса донорства. Кроме того, ТК координируют работу по эксплантации донорских органов, взаимодействуя с хирургическими бригадами, ответственность за транспортировку которых в донорский стационар возлагается на ТК, центры трансплантации или распределяется между ними [1].
ТК также несут ответственность за надлежащее оформление медицинской документации донора и предоставление этой информации в Национальную базу данных по трансплантации, а также в отдельные центры трансплантации. Помимо этого, ТК осуществляют обследование потенциального донора: измерение артериального давления (АД), частоты сердечных сокращений (ЧСС), температуры тела, центрального венозного давления (ЦВД), давления заклинивания легочной артерии (ДЗЛА) при наличии катетера Сван–Ганса, контроль темпа диуреза и параметров искусственной вентиляции легких (ИВЛ), а также обеспечивают поддержание температуры тела донора выше 36,5 °С.
3.2. Инфекционные противопоказания для донорства органов
СГМ вызывает значительное угнетение работы иммунной системы ПД и приводит к его гемодинамической нестабильности с последующей транслокацией патогенных микроорганизмов из кишечника. Это обусловливает предрасположенность к развитию инфекционных процессов в организме ПД [6, 7]. В то же время существующие тенденции к расширению критериев посмертного донорства способствуют тому, что положительные результаты бактериологического обследования или клинический диагноз инфекционного осложнения уже не являются абсолютными противопоказаниями для донорства и последующей трансплантации органов.
Инфицирование реципиента от донора представляет собой сравнительно редкое осложнение трансплантации, тем не менее зачастую ассоциированное с высокой летальностью, поскольку иммуносупрессивная терапия способствует снижению устойчивости реципиента к инфекционным процессам [8, 9]. Возможность передачи ГВИ в большинстве случаев известна, поскольку лабораторный скрининг позволяет оценить инфекционный статус донора до трансплантации. Именно поэтому такие ГВИ, как цитомегаловирус (ЦМВ) и вирус гепатита B (ВГВ), подвергаются контролю и лечению с помощью превентивной терапии и универсальной профилактики. Однако в некоторых случаях специалистам центра трансплантации приходится сопоставлять риск передачи ГВИ с медицинским статусом реципиента и пользой для него от трансплантации [10]. Кроме того, помимо лабораторного скрининга следует учитывать медицинский и социальный анамнез потенциального донора, а также проводить его тщательное обследование [10]. Принятая в США стратификация риска учитывает доноров с повышенным риском или без значимого риска передачи ГВИ. Принятая в большинстве европейских стран классификация риска передачи инфекционных заболеваний была разработана в 2002 г. Итальянским национальным центром трансплантации (Italian National Center for Transplantation) [11]. В соответствии с данной классификацией (Italian National Center for Transplantation/European risk system) выделяют следующие категории доноров [12]:
-
неприемлемый риск является абсолютным противопоказанием для донорства, за исключением некоторых неотложных жизнеспасающих трансплантаций при отсутствии других возможностей лечения;
-
высокий, но приемлемый риск — случаи выявления ГВИ или инфекционного процесса при обследовании донора, однако использование органа для трансплантации оправдано тяжестью состояния потенциального реципиента;
-
расчетный риск (критерий, относящийся к протоколам «элективной трансплантации») — случаи, когда при наличии ГВИ у донора трансплантация выполняется реципиентам с аналогичной ГВИ или защитным серологическим статусом. В данную категорию также включены доноры с бактериемией и/или бактериальным менингитом при условии получения донором направленной антибактериальной терапии в течение не менее 24–48 ч до эксплантации;
-
риск, не поддающийся оценке — случаи, когда в процессе обследования потенциального донора не удается достоверно оценить риск передачи ГВИ;
-
стандартный риск, включающий доноров, при обследовании которых ГВИ не выявлена.
Для оценки пригодности донорских органов к последующей трансплантации необходимо выполнить следующие клинико-лабораторные исследования [13] (табл. 3.1).
Положительный результат бактериологического исследования или клинический диагноз инфекционного процесса не являются абсолютными противопоказаниями для донорства органов. Результатами многочисленных исследований подтверждено, что даже при наличии у донора грамотрицательной бактериемии при трансплантации почек, печени и сердца наблюдаются благоприятные исходы [14, 15]. На принятие решения об эксплантации органов у донора с активным или предполагаемым инфекционным процессом влияют статус неотложности потенциального реципиента и доступность других донорских органов. Кроме того, необходимо надлежащим образом информировать потенциального реципиента и получить его согласие на трансплантацию потенциально инфицированного органа.
Показатель | Интерпретация положительного результата |
---|---|
ВГВ |
В большинстве случаев — отказ от донорства |
Анти-HBс |
Все донорские органы могут быть использованы для трансплантации реципиентам, являющимся ВГВ-, анти-HBc- или анти-HBs-положительными |
Донорская печень может быть использована для трансплантации ВГВ-отрицательным реципиентам с последующей пожизненной противовирусной терапией и наблюдением |
|
Возможна трансплантация других органов ВГВ-отрицательным реципиентам. Перед реваскуляризацией трансплантата следует ввести однократную дозу иммуноглобулина человека против гепатита В и назначить краткосрочную противовирусную терапию. Если донор также является анти-HBs-положительным, введение иммуноглобулина человека против гепатита В не требуется |
|
Анти-HBs |
В сочетании с анти-HBc реактивностью, см. выше |
При отрицательном результате анти-HBc теста все донорские органы могут быть использованы, так как риск передачи ВГВ отсутствует, а анти-HBs реактивность, вероятнее всего, связана с предыдущей иммунизацией донора |
|
Анти-ВГС |
Трансплантация донорских органов возможна только ВГС-положительным реципиентам |
Анти-CMV IgG |
Донорские органы используются для трансплантации |
Анти-HIV |
Отказ от донорства |
*Примечание: анти-HBc — антитела к ядерному (cor) антигену вируса гепатита В; анти-HBs — антитела к HBs-антигену вируса гепатита B; анти-CMV IgG — антитела класса IgG к цитомегаловирусу; анти-HIV — антитела к вирусу иммунодефицита человека.
При исследовании значительного пула ПД органов бактериемия на момент эксплантации была выявлена приблизительно в 5% случаев, однако не было отмечено ни одного случая передачи реципиенту выделенного у донора микроорганизма [16, 17]. Таким образом, бактериемия у донора не оказывала влияния на исход трансплантации. В исследование Cerutti et al. были включены 610 трансплантаций печени, выполненных за 5-летний период в Центре трансплантации печени Турина. У 293 доноров (48%) были отмечены положительные результаты посевов биологических сред на микроорганизмы: в 82 случаях (13%) положительные результаты были получены до начала эксплантации, в 256 (42%) — при посеве перфузата. Положительные результаты посева биологических сред на микроорганизмы были характерны для доноров старшего возраста, имевших более длительные сроки нахождения в ОРИТ, в сравнении с неинфицированными донорами [18].
Умершие с выявленными ГВИ, такими как ВГВ или вирус гепатита С (ВГС), что ранее считалось абсолютными противопоказаниями для донорства, в настоящее время могут быть донорами печени для реципиентов, инфицированных аналогичными ГВИ, при условии, что в трансплантате присутствуют лишь минимальные гистологические изменения (1–2 балла по Ishak) [19].
ЦМВ, выявленный у донора, безусловно, может вызывать развитие ЦМВ-инфекции у реципиента, однако рутинная профилактика ЦМВ-инфекции в посттрансплантационном периоде является обязательной и способствует значительному снижению уровня заболеваемости и смертности у реципиентов [20].
3.3. Противопоказания для донорства сердца
Совершенствование методов лечения сердечно-сосудистых заболеваний привело к росту продолжительности жизни населения и увеличению частоты встречаемости в популяции хронической сердечной недостаточности. В то же время внедрение в клиническую практику циклоспорина в начале 1980-х гг. позволило трансплантации сердца стать методом выбора в лечении терминальной стадии сердечной недостаточности. По данным на 30 июня 2013 г., в 416 медицинских клиниках по всему миру было выполнено 116 104 трансплантации сердца [21]. Значительное увеличение количества пациентов, находящихся в «листе ожидания» донорского сердца, привело к логичному расширению стандартных критериев посмертного донорства для этого органа [22]. Более того, увеличивающаяся разница между количеством пригодных сердечных трансплантатов и количеством нуждающихся потенциальных реципиентов способствовала разработке более строгих критериев включения пациентов в «лист ожидания» [23, 24]. По указанным выше причинам пул потенциальных доноров сердца был дополнен так называемыми маргинальными донорами. При этом отнюдь не каждый орган от ДРК признается пригодным для трансплантации, решение о проведении которой принимается по результатам обследования потенциального донора, оценки тяжести состояния и статуса неотложности потенциального реципиента. Следует воздержаться от трансплантации сердца, полученного от ДРК, при наличии у реципиента тяжелой генерализованной патологии (например, сепсиса).
При обнаружении по результатам эхокардиографии (ЭхоКГ) нарушений сократительной способности миокарда и снижения фракции выброса левого желудочка менее 45% не следует отказываться от возможного изъятия сердечного трансплантата до проведения гемодинамической и метаболической терапии [25, 26].
Стресс-ЭхоКГ. Стресс-ЭхоКГ с дипиридамолом, выполненная у потенциальных доноров, умерших в результате СГМ, с диффузными или очаговыми нарушениями сократительной способности миокарда в состоянии покоя, позволяет дифференцировать непригодные для трансплантации органы от трансплантатов, характеризующихся улучшением сократительной функции в ответ на стресс и адекватной функцией миокарда после трансплантации [27].
Возраст и время холодовой ишемии. Ранее эксплантация сердца не производилась у доноров старше 40 лет, однако дефицит донорских органов способствовал повышению возрастного порога потенциальных доноров до 60 лет [28–31]. При использовании органа от возрастных доноров исход трансплантации зависит, в первую очередь, от времени холодовой ишемии — при длительности более 3–4 ч отмечена корреляция с ростом ранней посттрансплантационной смертности [32–37]. В исследовании Lamour et al. было показано, что риск посттрансплантационной летальности в течение первого года для 40-летнего реципиента с врожденной сердечной недостаточностью, которому была выполнена трансплантация сердца от 50-летнего донора, составил 15% при 3-часовом периоде холодовой ишемии и 40% — при 5-часовой консервации трансплантата [38]. Согласно рекомендациям Международного общества трансплантации сердца и легких (International Society of Heart and Lung Transplantation, ISHLT), трансплантация сердца от доноров моложе 45 лет является относительно безопасной даже при наличии таких факторов риска, как длительное время холодовой ишемии, сопутствующие заболевания у реципиента, а также ранее выполненные у реципиента хирургические вмешательства с массивной кровопотерей. При трансплантации сердца от донора в возрасте 45–55 лет положительное влияние на исход операции оказывают время холодовой ишемии донорского сердца менее 4 ч и отсутствие у реципиентов сопутствующей патологии. Трансплантация сердца от доноров старше 55 лет возможна только после строгой оценки всех преимуществ и рисков для реципиента [37] (табл. 3.2).
Пожилой возраст донора является важным фактором риска развития ранней дисфункции трансплантата и увеличения посттрансплантационной летальности вследствие высокой вероятности наличия патологии донорского сердца: ишемической болезни сердца (ИБС), гипертонической болезни, клапанной дегенерации [39, 40]. Несмотря на это, в настоящее время регулярно проводятся трансплантации сердца от доноров в возрасте 50–55 лет, и, по данным многих одноцентровых исследований, указанный возраст донора не оказывает негативного влияния на исход хирургического вмешательства [41–46].
Стандартные критерии | Расширенные критерии |
---|---|
Возраст моложе 55 лет |
Возраст 55–70 лет |
Не выявлено кардиологической патологии. Время холодовой ишемии менее 120 мин (донор и реципиент находятся в одном центре) |
Время холодовой ишемии более 360 мин |
Отсутствие интенсивной инотропной поддержки: допамин в дозе до 20 мкг/кг в минуту или сходные дозы других адренергических препаратов [норэпинефрин (Норадреналин♠) менее 0,2 мкг/кг в минуту], несмотря на агрессивную оптимизацию пред- и постнагрузки сердца |
Высокие дозы инотропной поддержки (более 0,2 мкг/кг в минуту) |
Сопутствующие заболевания у донора |
Напротив, по результатам крупных многоцентровых исследований, а также в сообщениях Международного регистра трансплантации сердца и легких отмечается увеличение летальности после трансплантации сердца от доноров старше 50–55 лет [32, 33, 47]. Эти различия, вероятно, объясняются меньшей выборкой групп пациентов и недостаточно длительным периодом наблюдения после трансплантации в одноцентровых исследованиях. Lietz et al. в своей работе обнаружили прямую корреляцию между возрастом донора и развитием болезни коронарных артерий трансплантированного сердца: при проведении ежегодной протокольной коронарографии у пациентов после трансплантации сердца было выявлено, что в сравнении с донорами в возрасте до 20 лет третье, четвертое и пятое десятилетия жизни донора увеличивают риск развития ИБС трансплантированного сердца в 2,2, 2,4 и 2,6 раза соответственно [48].
Кроме того, согласно данным ISHLT и некоторых независимых исследований, время холодовой ишемии более 4 ч способствует увеличению риска летального исхода у реципиентов после трансплантации сердца от доноров старше 50 лет [14–16]. В своем исследовании Lietz et al. также выявили корреляцию между неудовлетворительными ранними результатами трансплантаций и длительностью холодовой ишемии органа, превышающей 4 ч, а также цереброваскулярной болезнью как причиной смерти донора сердца [48]. В то же время следует учитывать высокий уровень летальности пациентов с терминальной стадией сердечной недостаточности, находящихся в «листе ожидания». По данным регистра Объединенной сети по распределению органов (United Network of Organ Sharing) за период 1991–1996 гг., медиана сроков ожидания донорского сердца для пациентов I(0) группы крови составляет 332 дня, а для пациентов старше 18 лет — 230 дней [49]. Bennett et al. отмечают очевидный рост показателей отдаленной выживаемости реципиентов 1-го статуса (табл. 3.3), перенесших трансплантацию сердца от доноров старше 50 лет, несмотря на высокий риск, связанный с хирургическим вмешательством [50]. В упоминавшемся ранее исследовании Lietz et al. 6-месячная выживаемость пациентов 1-го статуса в «листе ожидания» составила 30%, а риск летального исхода был в 8,5 раза выше в сравнении с реципиентами 1-го статуса после трансплантации сердца от доноров старше 40 лет (6-месячная выживаемость данной группы пациентов составила 84%). При этом трансплантация сердца от доноров старше 50 лет сопровождалась увеличением посттрансплантационной летальности в 1,6 раза. Однако статистически уровень летальности достоверно не различался с аналогичным показателем в группе пациентов после трансплантации сердца от более молодых доноров [48].
Статус 1А (ургентный) |
Необходимость госпитализации в ОРИТ, имплантация катетера Сван–Ганса, внутривенное введение кардиотоников и/или имплантация механического вспомогательного устройства кровообращения |
Статус 1В |
Необходимость приема кардиотоников и/или имплантация механического вспомогательного устройства кровообращения. Пациент может находиться дома или в стационаре |
Статус 2 |
Стабильное состояние пациента, пероральный прием кардиотоников. Пациент может находиться в домашних условиях |
Статус 3 («неактивный лист ожидания») |
До ухудшения состояния пациент не рассматривается в качестве кандидата на трансплантацию |
ПД старше 70 лет не следует рассматривать в качестве потенциальных доноров сердца, поскольку немногочисленный опыт трансплантации сердца от таких доноров сопровождался развитием ранней дисфункции трансплантата, несмотря на короткий период холодовой ишемии.
В заключение следует еще раз отметить, что при трансплантации сердца от доноров старше 55 лет необходимо избегать других факторов риска, например длительного периода холодовой ишемии донорского органа.
Инфекционное заболевание. Согласно рекомендациям ISHLT, трансплантация сердца от донора с инфекционным заболеванием может быть выполнена в следующих случаях:
-
возникновение инфекционного процесса и смерть донора в течение 96 ч;
-
отрицательные результаты повторных посевов крови на микроорганизмы;
-
донору органов была назначена специфическая антибактериальная терапия;
-
нормальная функция миокарда донорского сердца, при осмотре во время эксплантации признаков эндокардита не обнаружено [37].
Наркотическая интоксикация. Кокаиновая наркомания способствует повышению риска развития острого инфаркта миокарда за счет повышения уровня адреналина и норадреналина в крови, что, в свою очередь, приводит к повышению системного АД, ЧСС и потребности миокарда в кислороде. Воздействие на сосудистую стенку проявляется увеличением частоты внутрисосудистого тромбообразования и снижением сократительной способности миокарда, обусловленными дефицитом эндотелиальных факторов релаксации [51, 52]. Кроме того, описаны прямые токсические эффекты кокаина на миокард: формирование рассеянных очагов фиброза или некроза кардиомиоцитов, «некроз полос сокращения» (contraction band necrosis) и развитие миокардита, — которые могут привести к развитию кардиомиопатии [53]. Более токсичной для миокарда является внутривенная форма кокаина, в связи с чем ISHLT рекомендует отказываться от изъятия и трансплантации сердца от доноров, злоупотреблявших внутривенными формами кокаина. Однако результаты трансплантации сердца от доноров, злоупотреблявших невнутривенными формами кокаина, не выявили дополнительного риска для реципиентов в раннем посттрансплантационном периоде [37, 54].
Злоупотребление алкоголем способствует уменьшению эффективности поглощения Ca2+ саркоплазматическим ретикулумом и снижению активности Na+/K+-аденозинтрифосфатазы, а также препятствует связыванию ионов Ca2+ с тропонином, что в совокупности приводит к ограничению миозин-актинового взаимодействия [55]. Продемонстрировано снижение выживаемости и более частое развитие дисфункции в раннем посттрансплантационном периоде после трансплантации органов, полученных от доноров с алкогольной зависимостью в анамнезе [56, 57]. Однако, по результатам некоторых исследований, факт злоупотребления алкоголем в анамнезе донора не оказывает неблагоприятного эффекта на выживаемость сердечного трансплантата [58, 59]. В личном опыте авторов (отделение кардиохирургии Policlinico San Matteo, Павия) описаны по крайней мере два наблюдения ранней дисфункции сердечных трансплантатов, полученных от доноров с алкогольной зависимостью в анамнезе.
Отравление угарным газом. Угарный газ (СО) обладает в 210 раз бóльшим сродством к гемоглобину, чем кислород, и, связываясь с гемоглобином, образует карбоксигемоглобин (HbCO). При отравлении угарным газом на клеточном уровне наблюдается сдвиг кривой диссоциации оксигемоглобина влево, проявляющийся снижением транспорта кислорода и нарушением митохондриального клеточного дыхания по причине конкурентного связывания угарного газа и кислорода с цитохромом а3 [60]. Вследствие уязвимости миокарда к недостатку кислорода зачастую наблюдается ишемическое повреждение миокарда, обусловливающее раннюю дисфункцию трансплантата. Сообщения о результатах трансплантаций сердца от доноров с интоксикацией угарным газом достаточно противоречивы [37, 61, 62]. Согласно рекомендациям ISHLT, перед эксплантацией функция сердца донора, умершего от отравления угарным газом, должна быть тщательно исследована: выполнены электрокардиография и ЭхоКГ, допустимы минимальное повышение маркеров повреждения миокарда и минимальная инотропная поддержка кровообращения донора [37]. Кроме того, необходимы краткое время холодовой ишемии органа, низкое легочное сосудистое сопротивление, а также благоприятное антропометрическое соотношение донора и реципиента.
Другие отравления. Сердечные трансплантаты от доноров с другими типами отравлений, включая цианид, метанол и экстази, были успешно пересажены с удовлетворительными результатами, однако в подобных случаях также следует проводить тщательное исследование функции сердца потенциального донора [63–66].
Кардиальные факторы
-
Инкурабельные желудочковые аритмии являются абсолютным противопоказанием.
-
Патология клапанов сердца. Порок двустворчатого аортального клапана не является противопоказанием для трансплантации, если функция клапана не нарушена [37]. Умеренная аортальная недостаточность, не диагностированная до эксплантации, может привести к ненадлежащей защите миокарда во время кардиоплегии. Патология любого клапана донорского сердца является противопоказанием к трансплантации, однако имеется ряд исследований, указывающих на успешное восстановление функции или посттрансплантационное протезирование аортального и митрального клапанов [67–70].
-
ИБС. Болезнь коронарных артерий трансплантированного сердца представляет серьезную проблему для специалистов, участвующих в программе трансплантации сердца. На донорском этапе ИБС может быть либо известна/диагностирована, либо не выявлена из-за недостаточного обследования донора. В обеих этих ситуациях существует определенный риск развития ранней дисфункции трансплантата. Распространенность болезни коронарных артерий трансплантированного сердца с учетом пациентов с ранней дисфункцией трансплантата составляет 22,8% [71]. Некоторые исследования указывают на возможность прогрессирования васкулопатии сердечного трансплантата в результате болезни коронарных артерий трансплантированного сердца [72, 73]. Grauhan et al. в своей работе продемонстрировали увеличение риска развития ранней дисфункции трансплантата при использовании донорских органов с многососудистым поражением. Этот риск составил 6,3% при трансплантации сердца без ИБС, 7,5% — с однососудистым поражением и 42,3% — с многососудистым поражением [74]. Marelli et al., напротив, в сообщении о трансплантации сердца с ИБС пациентам неотложного статуса или так называемым альтернативным реципиентам (то есть пожилым или коморбидным пациентам, находящимся в «листе ожидания» сердца от ДРК), 59% которых была выполнена симультанная операция аортокоронарного шунтирования, продемонстрировали 2-летнюю актуариальную выживаемость 50% в группе реципиентов неотложного статуса, и 81,3% — у «альтернативных реципиентов» [75].
-
Гипертрофия левого желудочка донорского сердца является значимым фактором риска развития ранней дисфункции трансплантата, особенно при толщине стенки левого желудочка более 14 мм [76].
-
Опухоли сердца. С помощью ЭхоКГ возможно выявление миксомы. Миксома правого предсердия может быть удалена во время эксплантации сердца, что возможно лишь в случае непригодности легких для последующей трансплантации, поскольку вероятность эмболии легочной артерии крайне высока. При удалении миксомы левого предсердия при эксплантации сердца существует определенный риск коронарной эмболии в момент пережатия аорты [77].
-
Нестабильность гемодинамики. Возникающая, в первую очередь, после «катехоламинового шторма», гиподинамическая фаза которого характеризуется вазодилатацией и падением системного АД, гемодинамическая нестабильность является одним из противопоказаний для донорства сердца. По этой причине появляется все больше исследований, свидетельствующих, что «агрессивная» тактика ведения потенциального донора (aggressive donor management), позволяющая корригировать быстро возникающие патофизиологические нарушения, способствует увеличению количества эффективных доноров, в том числе ДРК [78–80]. «Агрессивное» ведение потенциального донора включает следующие мероприятия:
-
имплантация катетера Сван–Ганса для измерения сердечного индекса и ДЗЛА. Измерение только ЦВД не является достаточным инструментом для мониторинга адекватного объема циркулирующей крови (ОЦК);
-
при необходимости инотропной поддержки предпочтение следует отдавать вазопрессину℘ в дозе 2,4 ЕД/ч — это препарат первого выбора9. Крайне нежелательно применение норэпинефрина (Норадреналина♠) в дозировке более 0,2 мкг/кг в минуту [81];
-
коррекция электролитных нарушений. Опубликованный в Британском журнале анестезиологии анализ трансплантационной активности европейских стран за период 1997–2005 гг. определил концентрацию сывороточного Na+ менее 130 или более 170 ммоль/л как один из факторов риска летального исхода после трансплантации сердца.
-
-
«Альтернативный лист ожидания» донорского сердца был предложен Lacks et al. [82] с целью трансплантации сердца от ДРК пациентам высокого риска. Наиболее распространенными донорскими факторами риска для сердечного трансплантата и «альтернативных реципиентов» являются высокие дозы инотропной поддержки кровообращения, гипертрофия левого желудочка, ВГС-позитивный результат лабораторного скрининга. В настоящее время данные об уровне посттрансплантационной летальности «альтернативных реципиентов» противоречивы: по результатам некоторых исследований трансплантация сердца таким пациентам сопровождается высокой летальностью [83–85], однако в других работах продемонстрирована выживаемость, сопоставимая с показателями пациентов из стандартного «листа ожидания» [86].
3.4. Противопоказания для донорства легких
Трансплантация легких до настоящего времени остается сравнительно редким трансплантационным вмешательством, поскольку пригодными для трансплантации признается менее 25% органов от доноров, умерших в результате СГМ. Важными факторами, препятствующими эффективному донорству легких, являются аспирация, ушиб, инфекционное поражение органов. Ниже приведены причины, играющие ключевую роль в развитии необратимого ухудшения функции легких у потенциального донора.
Нестабильность гемодинамики. «Катехоламиновый шторм» в гипердинамическую фазу способствует повышению минутной вентиляции легких, резкому подъему системного АД, тахикардии и развитию аритмий, в результате чего развивается переполнение малого круга кровообращения с последующим повышением давления в легочной артерии, что, в свою очередь, вызывает транзиторный отек легких. Кроме того, резкое повышение давления в легочных капиллярах оказывает повреждающее действие на альвеолярно-капиллярную мембрану, что сопровождается фильтрацией жидкой части плазмы в интерстициальное пространство и просвет альвеол, вызывая интерстициальный и альвеолярный отек легких [87, 88]. Конечным результатом этого процесса является развитие нейрогенного отека легких.
Активация воспалительных и иммунологических реакций. СГМ сопровождается значительным выбросом медиаторов воспаления, что может необратимо снижать функцию легких в период кондиционирования ПД. Кроме того, после реваскуляризации предшествующая ишемия легочной ткани может спровоцировать активацию макрофагов, которые вырабатывают провоспалительные цитокины и таким образом усиливают ишемически-реперфузионное повреждение трансплантата [89].
Критерии «идеального» донора легких, согласно ISHLT, приведены в табл. 3.4 [90, 91].
Возраст до 55 лет |
PaO2 более 300 мм рт.ст. при FiO2 1,0 и положительное давление в конце выдоха (ПДКВ) 5 см вод.ст. |
Обзорная рентгенография органов грудной клетки без патологии |
Отсутствие травмы грудной клетки |
Отсутствие признаков аспирации или сепсиса |
Стаж курения менее 20 лет |
AB0-совместимость с реципиентом |
Отрицательный результат посева мокроты на микрофлору |
Отсутствие гнойного отделяемого при бронхоскопии |
Отсутствие предшествующих хирургических вмешательств на органах грудной клетки |
При трансплантации легких от доноров старше 55 лет характерным является снижение ранней и отдаленной выживаемости пациентов, особенно значительное при времени холодовой ишемии трансплантата, превышающем 6 ч. По результатам исследования De Perrot et al. (Программа трансплантации легких Торонто, Канада) не было выявлено статистически достоверной корреляции между возрастом ПД легких и уровнем 30-дневной смертности реципиентов, однако в группе реципиентов с легочным фиброзом и легочной гипертензией наблюдали более высокий уровень летальности в сравнении с пациентами, страдавшими муковисцидозом или эмфиземой. Кроме того, показатели 5- и 10-летней выживаемости пациентов после трансплантации легких от доноров старше 60 лет были более низкими, чем у реципиентов легких от более молодых доноров. Преимущественной причиной смерти в когорте пациентов после трансплантации легких от доноров старше 60 лет был облитерирующий бронхиолит, а в когорте реципиентов легких от более молодых доноров — сепсис [92].
Специалистами большинства трансплантационных центров приемлемым временем холодовой ишемии признается длительность консервации легких в пределах 4–6 ч, однако, по результатам некоторых исследований, применение внеклеточного консервирующего раствора позволяет пролонгировать этот срок до 10 и более часов без существенного влияния на результат последующей трансплантации [93, 94].
Адекватность газообмена является наиболее важным параметром при оценке функции легких ПД. В норме значение индекса оксигенации (отношение парциального давления кислорода в артериальной крови PaO2 к фракции кислорода на вдохе FiO2) составляет более 300. Однако это соотношение может легко нарушаться при значительном объеме бронхиального отделяемого, отеке легких, ателектазе, а также «агрессивном» ведении потенциального донора (маневры рекрутмента, снижение приливного объема, увеличение ПДКВ до 15 см вод.ст., санационная бронхоскопия). Анализ содержания газов в крови непосредственно из правой и левой легочной вены с последующей раздельной оценкой индекса оксигенации для каждого легкого имеет важное значение, поскольку допускает возможность получить как минимум одно легкое, пригодное для последующей трансплантации. Кроме того, установлена прямая корреляция парциального давления крови из легочной вены с исходом трансплантации в сравнении с PaO2. Также следует помнить, что у доноров молодого возраста в некоторых случаях отмечается нормальный индекс оксигенации даже при обнаружении на компьютерных томограммах массивного двустороннего ушиба легких, пневмоперикарда и гемопневмоторакса (рис. 3.1).

Во время ведения и кондиционирования потенциального донора необходимо адекватное восполнение и поддержание ОЦК. С этой целью используются растворы коллоидов и кристаллоидов. Последним следует отдавать предпочтение в случае потенциального донорства легких с целью ограничения гиповолемии. Кроме того, введение большого количества коллоидных растворов вызывает их проникновение в интерстициальное пространство вследствие изменения проницаемости альвеолярно-капиллярной мембраны и способствует ухудшению функции легких после трансплантации, увеличивая онкотическое давление. В то же время введение большого количества кристаллоидных растворов в течение длительного времени может привести к значительному повышению ЦВД, которое, в свою очередь, может вызывать отек паренхимы печени, способствующий развитию гипокоагуляции, затрудняющей разделение печени для последующей сплит-трансплантации и вызывающей нарушение ее посттрансплантационной функции.
Непосредственный осмотр легких при эксплантации производится на предмет выявления зон ателектаза, ушиба, отека, солидных образований, которые должны быть подвергнуты интраоперационной клиновидной биопсии, а также на предмет инфильтрации легочной ткани. Затем пригодность легких для трансплантации следует оценить, выполнив «тест коллапса» (collapse test): эндотрахеальная трубка отсоединяется от аппарата ИВЛ, и, если легкие остаются раздутыми или коллапсируют медленно (более 10 с), это свидетельствует об отеке интерстициального пространства, инфекционном процессе или эмфиземе (обструктивное заболевание мелких дыхательных путей).
Как противопоказание для донорства легких не следует рассматривать положительный результат посева мокроты на грамположительную микрофлору, который, как было продемонстрировано в исследовании Университета Алабамы (Бирмингем, США), не коррелирует с риском развития посттрансплантационной пневмонии [95]. Гораздо более значимое влияние на исход трансплантации оказывает количество бронхиального отделяемого.
Злоупотребление алкоголем может оказывать серьезное влияние на риск развития первичной дисфункции трансплантата, поскольку, как установили Pelaez et al., существует корреляция между злоупотреблением алкоголем в анамнезе донора и развитием острого респираторного дистресс-синдрома в раннем посттрансплантационном периоде у реципиента [96].
Бронхиальная астма как причина смерти донора практически всегда является противопоказанием для донорства легких, в первую очередь по причине предсуществующего воспаления дыхательных путей, которое оказывает влияние на исход трансплантации и является фактором, предрасполагающим к развитию ранней или поздней дисфункции трансплантата, в частности — к рефрактерному острому отторжению. Однако трансплантация легких от доноров с бронхиальной астмой легкой и средней степени тяжести в анамнезе характеризуется удовлетворительными отдаленными результатами и способствует тем самым расширению донорского пула [97].
Протокол EVLP (аппаратная перфузия легких ex vivo) был разработан в конце 1990-х гг. исследователями из Лундского университета (Швеция) с целью трансплантации легких от NHBD [98]. В результате экспериментальных исследований на лабораторных свинках был разработан перфузионный раствор, способствующий предотвращению отека и потери функции легких, — Steen Solution® (Vitrolife; Гётеборг, Швеция), который является внеклеточным высокоонкотическим раствором для консервации легких, состоящим из электролитов, декстрана и альбумина [99]. Первое клиническое применение протокола EVLP состоялось в 2001 г.: была проведена успешная трансплантация легких от 54-летнего донора, умершего в результате необратимой остановки сердечной деятельности по причине острого инфаркта миокарда, реципиенту с эмфиземой [100]. В последующем протокол EVLP был использован в нескольких центрах трансплантации с хорошими результатами. В рамках Программы трансплантации легких Торонто (Канада) в период с сентября 2008 г. по декабрь 2011 г. было выполнено 253 трансплантации легких с использованием стандартного способа консервации (группа контроля); в группу сравнения вошли 50 пациентов после трансплантации легких с применением протокола EVLP. Первичная дисфункция трансплантата третьей степени через 72 ч после операции была зарегистрирована в 2% случаев трансплантации легких после EVLP (8,5% в группе контроля, P =0,14), а различий по показателям длительности ИВЛ, экстракорпоральной мембранной оксигенации (ЭКМО), пребывания в ОРИТ, пребывания в стационаре, а также уровня 30-суточной летальности выявлено не было. Кроме того, 1-летняя выживаемость реципиентов после трансплантации легких составила 87% в группе с применением EVLP и 86% — в контрольной группе [101].
3.5. Противопоказания для донорства печени
Как обсуждалось ранее, для донорства сердца и легких абсолютными противопоказаниями являются инфицирование вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ), злокачественные опухолевые образования, бактериальные или вирусные инфекции. Однако решение о пригодности донорской печени для трансплантации принимается на основании комплекса клинических критериев, включая биохимические, морфологические и функциональные.
Абсолютные клинико-морфологические противопоказания для донорства печени, которыми ранее руководствовались на протяжении нескольких десятилетий, в настоящее время являются относительными, и решение об отказе от донорского органа принимается только по совокупности этих критериев. На основании данных различных исследований основными маркерами жизнеспособности и трансплантабельности печени считаются ее макроскопическая оценка и патолого-гистологическое исследование. Достаточным для обеспечения нормальной функции трансплантата печени является уровень стеатоза менее 40% по результату исследования биоптатов. При отсутствии других относительных противопоказаний 50%-й гепатостеатоз также не является основанием для отказа от трансплантации такого органа реципиентам с высоким риском исключения из «листа ожидания» по причине декомпенсации основного или развития тяжелых сопутствующих заболеваний, а также прогрессирования гепатоцеллюлярной карциномы. Сплит-трансплантация печени, предложенная для преодоления дефицита органов, — это операция, при которой производится разделение одной донорской печени для двух реципиентов. Наиболее часто сплит-трансплантация печени выполняется одному взрослому и одному реципиенту детского возраста. Случаи сплит-трансплантации двум взрослым реципиентам до настоящего времени остаются спорадическими [102]. При принятии решения о сплит-трансплантации принято руководствоваться более строгими критериями, чем в оценке цельного донорского органа:
-
низкий уровень инотропной поддержки кровообращения у донора [допамин (Дофамин♠) менее 5 мг/кг в минуту, добутамин менее 10 мг/кг в минуту и отсутствие потребности в эпинефрине (Адреналине♠) или норэпинефрине (Норадреналине♠)];
-
повышение уровня печеночных трансаминаз не более чем в 2 раза от нормализованных значений;
-
отсутствие макроскопических признаков стеатоза или менее 20% стеатоза по результатам экспресс-биопсии.
Пожилой возраст ПД является относительным противопоказанием для донорства печени ввиду стремления к расширению донорского пула на фоне снижающегося в последние десятилетия количества доноров молодого возраста. В настоящее время даже органы от 80-летних ПД могут быть признаны пригодными для последующей трансплантации при отсутствии фиброзных изменений печени по результатам биопсии [103]. Органы от ВГС-положительных доноров представляют собой еще один источник увеличения донорского пула, а противопоказания для трансплантации ВГС-позитивной печени ВГС-позитивному реципиенту продолжают сокращаться. По показателям выживаемости трансплантатов и реципиентов, частоте рецидива клинических проявлений ВГС результаты таких операций не уступают результатам пересадки ВГС-негативного трансплантата печени ВГС-положительным реципиентам [104]. Кроме того, в некоторых центрах трансплантации начата активная работа по трансплантации органов, полученных от NHBD, а уровень 5-летней выживаемости трансплантатов превышает 50% [105].
Большинство противопоказаний к прижизненному донорству органов справедливы и в отношении ТПЖД. Абсолютным противопоказанием к прижизненному донорству печени является макростеатоз (более 20%) по результатам биопсии. Кроме того, при эксплантации части печени у прижизненного донора необходимо руководствоваться принципом, что остаточный объем печени донора не может составлять менее 25% от исходного. Последнее правило применимо для трансплантатов правой доли больших размеров и не является проблемой при изъятии левого латерального сегмента или левой доли печени. В некоторых странах нормативно-правовые акты, регулирующие деятельность в области донорства и трансплантации органов, не допускают неродственное донорство с целью предотвратить принудительное прижизненное донорство и избежать купли-продажи донорских органов10В соответствии с законом РФ от 22.12.1992 г. №4180-1 «О трансплантации органов и/или тканей человека», в России законодательно разрешено только прижизненное родственное донорство органов. Проведение ТПЖД возможно при возрасте донора в пределах 18–55 лет с индексом массы тела (ИМТ) более 18, но менее 30. Больший ИМТ обычно ассоциируется с определенной степенью макростеатоза, в связи с чем необходимо предварительное проведение биопсии органа для исключения гепатостеатоза более 20%. О стеатозе также свидетельствует индекс затухания сигнала от печеночной паренхимы (liver attenuation index) менее 5 при компьютерной томографии. Такие пациенты считаются непригодными для прижизненного донорства печени до снижения ИМТ менее 30 с последующей повторной оценкой степени стеатоза по результатам биопсии [3]. Анатомические противопоказания для прижизненного донорства печени в настоящее время крайне редки. Среди многочисленных вариантов билиарной анатомии у донора практически отсутствуют аномалии, исключающие прижизненное донорство. Удвоение печеночной артерии или воротной вены, множественные печеночные вены (например, V8 или V6) могут быть анастомозированы с использованием микрохирургической техники, однако проведение ТПЖД противопоказано при сочетании таких анатомических аномалий, как
3.6. Противопоказания для донорства почек
Успех трансплантации почек, поджелудочной железы и других органов зависит, в первую очередь, от гемодинамической стабильности донора и оптимальной перфузии донорских органов. Ведение потенциального донора, безусловно, влияет на посттрансплантационную функцию почек. Несмотря на то что применение допамина (Дофамина♠) в качестве «защитного почечного агента» (renal protective agent) в общей популяции пациентов, находящихся в критическом состоянии, нецелесообразно, Schnuelle et al. в Европейском многоцентровом исследовании продемонстрировали, что использование низких доз допамина (Дофамина♠) при ведении потенциального донора способствует снижению потребности в диализе после трансплантации почки [107]. Абсолютные противопоказания для донорства органов, в частности почек (табл. 3.5), включают:
-
злокачественные опухолевые образования (в том числе центральной нервной системы);
-
сепсис и генерализованные формы инфекционного процесса, не контролируемые антимикробной (антибактериальной, противогрибковой, противовирусной) терапией;
-
прионные заболевания (например, болезнь Крейтцфельдта–Якоба, куру); а также
Органы от ВГВ- и ВГС-позитивных доноров могут использоваться для трансплантации реципиентам, являющимся носителями аналогичных ГВИ11.
Абсолютные противопоказания |
---|
ВИЧ-инфекция |
Сепсис и генерализованные формы инфекционного процесса, не контролируемые антимикробной (антибактериальной, противогрибковой, противовирусной) терапией |
Полиорганная недостаточность |
Злокачественный опухолевый процесс с метастазированием |
Прионные заболевания: болезнь Крейтцфельдта–Якоба, куру, синдром Герстманна–Штраусслера–Шейнкера, фатальная фамильная бессонница |
Сахарный диабет 1-го типа |
Хронический панкреатит |
Травма поджелудочной железы (для поджелудочной железы) |
Пациенты, в период с 1950 г. по 1985 г. получавшие лечение гормонами гипофиза (из гипофиза трупов), с целью исключения возможности передачи прионных заболеваний |
Относительные противопоказания |
Хроническая почечная недостаточность |
Возраст старше 80 лет (для почек) и старше 45 лет (для поджелудочной железы) |
Гипертоническая болезнь |
Сахарный диабет 2-го типа |
Острое почечное повреждение |
Злоупотребление алкоголем |
Длительное время тепловой ишемии |
Гломерулонефрит и другие нефропатии при нормальной функции почек |
ВГВ- и ВГС-позитивные доноры (за исключением ВГВ- и ВГС-позитивных реципиентов) |
3.7. Противопоказания для донорства поджелудочной железы
Помимо вышеперечисленных противопоказаний, общих для донорства почек и поджелудочной железы, существуют критерии исключения, специфичные для поджелудочной железы: злоупотребление алкоголем, сахарный диабет, значительные изменения уровня сывороточной амилазы, а также возраст донора старше 45–50 лет (см. табл. 3.5). Определяющим критерием пригодности поджелудочной железы для трансплантации является макроскопическая оценка во время эксплантации на предмет жировой трансформации, отека, фиброза паренхимы, особенностей кровоснабжения. Тщательная ревизия органа проводится также с целью выявления травматического повреждения паренхимы, гематом, опухолей и кист. В большинстве трансплантационных центров интраоперационное выявление кальцификации, обширного фиброза, жировой инфильтрации, выраженного отека или значительного висцерального атеросклероза служит причиной отказа от эксплантации поджелудочной железы. Кроме того, аномальное артериальное кровоснабжение печени и поджелудочной железы за счет правой аберрантной печеночной артерии, отходящей от верхней брыжеечной артерии, также является критерием исключения для изъятия органа, поскольку при такой особенности кровоснабжения крайне затруднительна успешная раздельная эксплантация обоих органов. К абсолютным противопоказаниям для донорства поджелудочной железы относятся, среди прочих, интраоперационные повреждения при ее эксплантации, поскольку они в значительной степени способствуют развитию посттрансплантационных осложнений, дисфункции или потере трансплантата, увеличению летальности реципиентов. Однако в подобной ситуации может быть рассмотрена трансплантация островковых клеток поджелудочной железы. В связи с этим важнейшими компонентами успешного донорства поджелудочной железы являются грамотное ведение и кондиционирование потенциального донора и должная подготовка хирургической бригады, проводящей эксплантацию. По данным исследования Marang-van de Mheen et al. (2011), повреждения сосудистых структур наблюдаются в 16,7% случаев изъятия поджелудочной железы. В ряде случаев решение об отказе от использования трансплантата поджелудочной железы для последующей пересадки принимается по результатам ревизии задней поверхности органа [интраоперационные повреждения артерий, вен, двенадцатиперстной кишки (ДПК)], поэтому важной задачей авторам исследования представляется необходимость улучшения подготовки специалистов и стандартизации хирургической техники [108]. К повышению вероятности отказа от использования поджелудочной железы для трансплантации, безусловно, приводит эксплантация донорских органов хирургической бригадой центра, в котором трансплантации поджелудочной железы не проводятся. Таким образом, улучшение технической и теоретической подготовки хирургов-трансплантологов должно способствовать увеличению количества успешных трансплантаций поджелудочной железы.
3.8. Противопоказания для донорства тонкой кишки и мультиорганной эксплантации
В настоящее время существует 4 абсолютных противопоказания для изъятия тонкой кишки в целях трансплантации:
Кроме того, необходимо принимать во внимание наличие противопоказаний для донорства печени в случаях планируемой сочетанной трансплантации печени и тонкой кишки. «Идеальными» для изъятия тонкой кишки считаются доноры в возрасте до 45 лет, без использования вазопрессоров или с минимальной инотропной поддержкой гемодинамики.
Впалый живот у пациентов с синдромом короткого кишечника предполагает соблюдение антропометрического соотношения донора и реципиента — расчетная площадь поверхности тела донора на 30–40% меньше, чем у реципиента. Кроме того, предпочтение отдается проведению ABO-совместимых трансплантаций. С началом использования в клинической практике эффективных препаратов для профилактики и лечения ЦМВ-инфекции трансплантация органов от серопозитивных доноров не производится только серонегативным реципиентам. В клинических исследованиях не выявлено преимуществ деконтаминации желудочно-кишечного тракта и использования лимфоцит-истощающих антител в отношении посттрансплантационных инфекционных осложнений, развития острого отторжения и реакции «трансплантат против хозяина». Как правило, у ПД тонкой кишки производится также эксплантация печени и поджелудочной железы, что в некоторых случаях технически может оказаться трудновыполнимым из-за общего кровоснабжения этих органов. Однако в настоящее время существуют хирургические методики, позволяющие выполнить изъятие тонкой кишки без ущерба для донорской печени и поджелудочной железы [109] (табл. 3.6).
Критерии донора | Противопоказания для донорства |
---|---|
Доноры со стандартными критериями |
Абдоминальная травма, особенно в случае ранее выполненных хирургических вмешательств на органах брюшной полости |
Возраст до 45 лет |
Асфиксия или интоксикация угарным газом (СО) |
Пребывание в ОРИТ менее 5 сут |
Обратимая остановка кровообращения после длительного периода гипотензии |
Энтеральное питание во время пребывания в ОРИТ |
Длительное шоковое состояние |
ИМТ менее 25 |
Кровотечение, корригируемое массивной трансфузией эритроцитарной массы |
Антропометрическое соответствие донора и реципиента |
Злоупотребление алкоголем или наркотиками |
Время холодовой ишемии менее 6 ч |
Атеросклероз |
Отрицательная перекрестная проба (cross-match) |
Злокачественное опухолевое образование за пределами центральной нервной системы, активный инфекционный процесс, воспалительные заболевания кишечника |
Литература
-
Akyol M., Tswen Wen V.L. Cap. I. Organ retrieval logistics, 1–8 // Abdominal organ retrieval and transplantation bench surgery / Eds G.C. Oniscu, J.L. Forsythe, J. Fung. West Sussex : Wiley-Blackwell, 2013.
-
Keegan M.T., Wood K.E., Coursin D.B. Cap. XVIII. An update on ICU management of the potential organ donor // Vincent J.-L. Yearbook of intensive care and emergency medicine. Berlin ; Heidelberg : Springer-Verlag, 2010. P. 547–559.
-
Rosendale J.D., Chabalewski F.L., Mc Bride M.A., Garrity E.R. et al. Increased transplanted organs from the use of a standardized donor management protocol // Am. J. Transplant. 2002. Vol. 2. P. 761–768.
-
Matesanz R., Miranda B. Organ donation: the «Spanish model» // Transplant. Proc. 1996. Vol. 28, N 1. P. 11.
-
Journalist workshop on organ donation and transplantation: recent facts & figures. Brussels (Nov 26, 2014). URL: http://ec.europa.eu/health/blood_tissues_organs/docs/ev_20141126_factsfigures_en.pdf
-
Wolach B., Sazbon L., Gavrieli R. et al. Early immunological defects in comatose patients after acute brain injury // J. Neurosurg. 2001. Vol. 94. P. 706–711.
-
Kane T.D., Johnson S.R., Alexander J.W., Craycraft T.K. Bacterial translocation in organ donors: clinical observations and potential risk factors // Clin. Transplant. 1997. Vol. 11. P. 271–274.
-
Ison M.G., Hager J., Blumberg E. et al. Donor-derived disease transmission events in the United States: data reviewed by the OPTN/UNOS Disease Transmission Advisory Committee // Am. J. Transplant. 2009. Vol. 9. P. 1929–1935.
-
Ison M.G., Nalesnik M.A. An update on donorderived disease transmission in organ transplantation // Am. J. Transplant. 2011. Vol. 11. P. 1123–1130.
-
Ison M.G., Grossi P. Donor-derived infections in solid organ transplantation // Am. J. Transplant. 2013. Vol. 13. P. 22–30.
-
Nanni Costa A., Grossi P., Gianelli Castiglione A., Grigioni W.F. Quality and safety in the Italian donor evaluation process // Transplantation. 2008. Vol. 85, suppl. 8. P. S52–S56.
-
The CNT/European risk classification system. URL: http://www.edqm.eu/en/Search-519.html
-
Guidelines for prevention of transmission of infectious diseases from organ donors to recipients. URL: http://www.scandiatransplant.org/organ-allocation/ScandtxInfGuidelines2014.pdf
-
Sözen H., Fidan K., Mahli A. et al. Successful solid organ transplantation from septicemic cadaveric donors: case report // Transplant. Proc. 2008. Vol. 40. P. 299–301.
-
Grossi P.A., Fishman J.A., The AST Infectious Disease Community of Practice. Donor-derived infections in solid organ transplant recipients // Am. J. Transplant. 2009. Vol. 9, suppl. 4. P. S19–S26.
-
Freeman R.B., Giatras I., Falagas M.E. et al. Outcome of transplantation of organs procured from bacteremic donors // Transplantation. 1999. Vol. 68. P. 1107–1111.
-
Lumbreras C., Sanz F., Gonzalez A. et al. Clinical significance of donor unrecognized bacteremia in the outcome of solid-organ transplant recipients // Clin. Infect. Dis. 2001. Vol. 33. P. 722–726.
-
Cerutti E., Stratta C., Romagnoli R., Serra R. et al. Bacterial- and fungal-positive cultures in organ donors: clinical impact in liver transplantation // Liver Transpl. 2006. Vol. 12. P. 1253–1259.
-
Ydreborg M., Westin J., Lagging M., Castedal M., Friman S. Impact of donor histology on survival following liver transplantation for chronic hepatitis C virus infection: a Scandinavian single-center experience // Scand. J. Gastroenterol. 2012. Vol. 47. P. 710–717.
-
Wood K.E., Becker B.N., McCartney J.G. et al. Care of the potential organ donor // N. Engl. J. Med. 2004. Vol. 351. P. 2730–2739.
-
Lund L.H., Edwards L.B., Kucheryavaya A.Y., Benden C. et al. The registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: thirty-first official adult heart transplant report — 2014; focus theme: retrasplantation // J. Heart Lung Transplant. 2014. Vol. 33. P. 996–1008.
-
Copeland J.G. Only optimal donors should be accepted for heart transplantation: protagonists // J. Heart Lung Transplant. 1995. Vol. 14. P. 1038–1042.
-
Wittwer T., Wahlers T. Marginal donors grafts in heart transplantation: lessons learned from 25 years of experience // Transpl. Int. 2008. Vol. 21. P. 113–125.
-
Costanzo M.R., Augustine S., Bourge R. et al. Selection and treatment of candidates for heart transplantation. A statement for health professionals from the Committee on Heart Failure and Cardiac Transplantation of the Council on Clinical Cardiology, American Heart Association // Circulation. 1995. Vol. 92. P. 3593–3612.
-
Zaroff J.G., Rosengard B.R., Armstrong W.F. et al. Consensus conference report: maximizing use of organs received from cadaver donor-cardiac recommendations (28–29 Mar, 2001). Crystal City, VA // Circulation. 2002. Vol. 106. P. 836–841.
-
Dronavalli V.B., Banner N.R., Bonser R.S. Assessment of the potential heart donor: a role for biomarkers? // J. Am. Coll. Cardiol. 2010. Vol. 56. P. 352–361.
-
Bombardini T., Ghrerardi S., Sicari R., Picano E. Transplant of stunned donor hearts rescued by pharmacological stress echocardiography: a «proof of concept» report // Cardiovasc. Ultrasound. 2013. Vol. 11. P. 27.
-
Loebe M., Potapov E.V., Hummel M. et al. Medium-term results of heart transplantation using older donor organs // J. Heart Lung Transplant. 2000. Vol. 19. P. 957–963.
-
Blanche C., Kamlot A., Blanche D.A. et al. Heart transplantation with donors fifty years of age and older // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2002. Vol. 123. P. 810–815.
-
Potapov E.V., Loebe M., Hubler M. et al. Medium-term results of heart transplantation using donors over 63 years of age // Transplantation. 1999. Vol. 8. P. 1834–1838.
-
Gupta D., Piacentino V., Macha M. et al. Effect of older donor age on risk for mortality after heart transplantation // Ann. Thorac. Surg. 2004. Vol. 78. P. 890–899.
-
Bourge R.C., Naftel D.C., Costanzo-Nortdin M.R. et al. Pre-transplantation risk factors for death after heart transplantation: a multiinstitutional study. The Transplant Cardiologists Research Database Group // J. Heart Lung Transplant. 1993. Vol. 12. P. 549–562.
-
Young J.B., Naftel D.C., Bourge R.C. et al. Matching the heart donor and heart transplant recipient. Clues for successful expansion of the donor pool: a multivariable, multiinstitutional report. The Cardiac Transplant Research Database Group // J. Heart Lung Transplant. 1994. Vol. 13. P. 353–365.
-
Fernandez Lucas M., Miranda B., Matesanz R. et al. Donor characteristics and hospital survival in cardiac transplantation. The Spanish Groups of Heart Transplantation // Transplant. Proc. 1997. Vol. 29. P. 3384–3385.
-
Boehmer J.P. Expanding the donor pool: how far is too far? // J. Heart Lung Transplant. 1993. Vol. 12. P. 816–818.
-
Omoto T., Minami K., Böthig D. et al. Risk factor analysis of orthotopic heart transplantation // Asian Cardiovasc. Thorac. Ann. 2003. Vol. 11. P. 33–36.
-
International Society for Heart and Lung Transplantation guidelines for the care of heart transplant recipients task force 1: peri-operative care of the heart transplant recipient (date of access Aug 4, 2010). URL: http://www.jsht.jp/uploads/ISHLT_GL_TaskForce1_080410.pdf
-
Lamour J.M., Kanter K.R., Naftel D.C. et al. The effect of Age, diagnosis, and previous surgery in children and adults undergoing heart transplantation for congenital heart disease // J. Am. Coll. Cardiol. 2009. Vol. 54. P. 160–165.
-
Bourge R.C., Kirklin J.K., Thomas K. et al. The emergence of co-morbid diseases impacting survival after cardiac transplantation, a ten year multiinstitutional experience // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20. P. 167–168.
-
Young J.B., Hauptman P.J., Naftel D.C. et al. Determinants of early graft failure following cardiac transplantation, a 10-year, multi-institutional, multivariable analysis // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20. P. 212.
-
Hoecher K., Young J.B., McCarthy P.M. et al. Long term mortality and morbidity with use of older donors in cardiac transplantation: a single center experience (abstr.) // Transplantation. 1998. Vol. 65. P. S104.
-
McCarthy J.F., McCarthy P.M., Massad M.G. et al. Risk factors for death after heart transplantation: does a single center experience correlated with multicenter registries? // Ann. Thorac. Surg. 1998. Vol. 65. P. 1564–1569.
-
Livi U., Bortolotti U., Luciani G.B. et al. Donor shortage in heart transplantation: is extension of donor age limits justified? // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1994. Vol. 107. P. 1346–1355.
-
Drinkwater D.C., Laks H., Blitz A. et al. Outcomes of patients undergoing transplantation with older donor hearts // J. Heart Lung Transplant. 1996. Vol. 15. P. 684–691.
-
Pflugfelder P.W., Singh N.R., McKenzie F.N. et al. Extending cardiac allograft ischemic time and donor age: effect on survival and long-term cardiac function // J. Heart Lung Transplant. 1991. Vol. 10. P. 394–400.
-
Tenderich G., Koerner M.M., Stuettgen B. et al. Extended donor criteria: hemodynamic follow-up of heart transplant recipients receiving a cardiac allograft from donors > or = 60 years of age // Transplantation. 1998. Vol. 66. P. 1109–1113.
-
Hosenpud J.D., Bennett L.E., Keck B.M. et al. The registry of the international society of heart and lung transplantation: sixteenth official report — 1999 // J. Heart Lung Transplant. 1999. Vol. 18. P. 611–626.
-
Lietz K., John R., Mancini D.M., Edwards N.M. Outcomes in cardiac transplant recipients using allografts from older donors versus mortality on transplant waiting list; implications for donor selection criteria // J. Am. Coll. Cardiol. 2004. Vol. 43. P. 1553–1561.
-
Kauffmann M.H., McBride M.A., Shield C.F. et al. Determinants of waiting time for heart transplants in the United States // J. Heart Lung Transplant. 1999. Vol. 18. P. 414–419.
-
Bennett L.E., Edwards E.B., Hosenpud J.D. Transplantation with older donor hearts for presumed «stable» recipients: an analysis of the Joint International Society for Heart and Lung Transplantation/United Network for Organ Sharing Thoracic Registry // J. Heart Lung Transplant. 1998. Vol. 17. P. 901–905.
-
Isner J.M., Chokshi S.K. Cardiovascular complications of cocaine // Curr. Probl. Cardiol. 1991. Vol. 16, N 2. P. 89–123.
-
Rongione A.J., Steg P.G., Gal D., Isner J.M. Cocaine causes endothelium-independent vasoconstriction of vascular smooth muscle // Circulation. 1988. Vol. 78:II-436 (abstr.).
-
Kloner R.A., Hale S., Alker K., Rezkalla S. The effects of acute and chronic cocaine use on the heart // Circulation. 1992. Vol. 85. P. 407–419.
-
Houser S.L., MacGillivray T., Aretz H.T. The impact of cocaine on the donor heart: a case report // J. Heart Lung Transplant. 2000. Vol. 19, N 6. P. 609–611.
-
Rubin E. Alcoholic myopathy in heart and skeletal muscle // N. Engl. J. Med. 1979. Vol. 301. P. 28–33.
-
Houyel L., Petit J., Nottin R. et al. Adult heart transplantation: adverse role of chronic alcoholism in donors on early graft function // J. Heart Lung Transplant. 1992. Vol. 11, N 6. P. 1184–1187.
-
Freimark D., Aleksic I., Trento A. et al. Hearts from donors with chronic alcohol use: a possible risk factor for death after heart transplantation // J. Heart Lung Transplant. 1996. Vol. 15. P. 150–159.
-
Shea K.J., Sopko N.A., Ludrosky K. et al. The effect of a donor’s history of active substance on outcomes following orthotopic heart transplantation // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2007. Vol. 31. P. 452–456.
-
De La Zerda D.J., Cohen O., Beygui R.E. et al. Alcohol use in donors is a protective factor on recipients’ outcome after heart transplantation // Transplantation. 2007. Vol. 83, N 9. P. 1214–1218.
-
Goldbaum L.R., Orellano T., Dergal E. Mechanism of the toxic action of carbon monoxide // Ann. Clin. Lab. Sci. 1976. Vol. 6. P. 372–376.
-
Rodrigus I.E., Conraads V., Amsel B.J., Moulijn A.C. Primary cardiac allograft failure after donor carbon monoxide poisoning treated with biventricular assist device // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20, N 12. P. 1345–1348.
-
Karwande S.V., Hopfenbeck J.A., Renlund D.G. et al. An avoidable pitfall in donor selection for heart transplantation. Utah Heart Transplant Program // J. Heart Transplant. 1989. Vol. 8. P. 422–424.
-
Fortin J.L., Ruttimann M., Capellier G. et al. Successful organ transplantation after treatment of fatal cyanide poisoning with hydroxocobalamin // Clin. Toxicol. 2007. Vol. 45. P. 468–471.
-
Barkoukis T.J., Sarbak C.A., Lewis D., Whittier F.C. Multiorgan procurement from a victim of cyanide poisoning. A case report and review of the literature // Transplantation. 1993. Vol. 55. P. 1434–1436.
-
Snyder J.W., Unkle D.W., Nathan H.M., Yang S.L. Successful donation and transplantation of multiple organs from a victim of cyanide poisoning // Transplantation. 1993. Vol. 55. P. 425–427.
-
Wood D.M., Dargan P.I., Jones A.L. Poisoned patients as potential organ donors: postal survey of transplant centres and intensive care units // Crit. Care. 2003. Vol. 7. P. 147–154.
-
Saito S., Matsumiya G., Ueno T. et al. Bench replacement of donor aortic valve before orthotopic heart transplantation // J. Heart Lung Transplant. 2009. Vol. 28. P. 981–983.
-
Prieto D., Antunes P., Antunes M.J. Donor mitral valve repair in cardiac transplantation // Transplant. Proc. 2009. Vol. 41. P. 932–993.
-
Massad M., Smedira N.G., Hobbs R. et al. Bench repair of donor mitral valve before heart transplantation // Ann. Thorac. Surg. 1996. Vol. 61. P. 1833.
-
Coskun K.O., Coskun S.T., El Arousy M. et al. Cardiac surgery after heart transplantation: coronary artery bypass grafting and heart valve replacement // Heart Surg. Forum. 2007. Vol. 10. P. E110.
-
Sandler D., McKenzie F.N., Menkis A.H. et al. Early death after cardiac transplantation — the role of unsuspected donor coronary artery disease // J. Heart Lung Transplant. 1991. Vol. 29. P. 623.
-
Gao S.Z., Hunt S.A., Alderman E.L. et al. Relation of donor age and preexisting coronary artery disease on angiography and intracoronary ultrasound to later development of accelerated allograft coronary artery disease // J. Am. Coll. Cardiol. 1997. Vol. 29. P. 623.
-
Wong C.K., Yeung A.C. The topography of intimal thickening and associated remodelling pattern of early transplant coronary disease: influence of preexistent donor atherosclerosis // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20. P. 858.
-
Grauhan O., Patzurek J., Hummel M. et al. Donor-transmitted coronary atherosclerosis // J. Heart Lung Transplant. 2003. Vol. 22. P. 568.
-
Marelli D., Laks H., Bresson S. et al. Results after transplantation using donor hearts with preexisting coronary artery disease // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2003. Vol. 126. P. 821–825.
-
Kuppahally S.S., Valantine H.A., Weisshaar D. et al. Outcome in cardiac recipients of donor hearts with increased left ventricular wall thickness // Am. J. Transplant. 2007. Vol. 7. P. 2388–2395.
-
Grande A.M., Viganò M. Myxoma in a donor heart // Texas Heart Inst. J. 1999. Vol. 31. P. 106–107; de Boer H.D., de Jonge N., de Boer W.J. Mitral valve myxoma: an unusual reason for rejecting a donor heart // J. Heart Lung Transplant. 2004. Vol. 18. P. 924–925.
-
McKeown D.W., Bonser R.S., Kellum J.A. Management of the heartbeating brain-dead organ donor // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, N S1. P. i96–i107.
-
Venkateswaran R.V., Steeds R.P., Quinn D.W. et al. The haemodynamic effects of adjunctive hormone therapy in potential heart donors: a prospective randomized double-blind factorially designed controlled trial // Eur. Heart J. 2009. Vol. 30. P. 1771–1780.
-
Koo K.-K.-Y., Sun J.-C.-J., Zhou Q. et al. Pulmonary artery catheters: evolving rates and reasons for use // Crit. Care Med. 2011. Vol. 39. P. 1–6.
-
Shemie S.D., Ross H., Pagliarello J. et al. Organ donor management in Canada: recommendations of the forum on medical management to optimize donor organ potential // Can. Med. Assoc. J. 2006. Vol. 174. P. S13–S30.
-
Laks H., Scholl F.G., Drinkwater D.C. et al. The alternate recipient list for heart transplantation. Does it work? // J. Heart Lung Transplant. 1997. Vol. 16. P. 735–742.
-
Patel J., Kobashigawa J.A. Cardiac transplantation: the alternate list and expansion of the donor pool // Curr. Opin. Cardiol. 2004. Vol. 19. P. 162.
-
Felker G.M., Milano C.A., Yager J.E.E. et al. Outcomes with an alternate list strategy for heart transplantation // J. Heart Lung Transplant. 2005. Vol. 24. P. 1781.
-
Lima B., Rajagopal K., Petersen R.P. et al. Marginal cardiac allografts do not have increased primary graft dysfunction in alternate list transplantation // Circulation. 2006. Vol. 114, suppl. I. P. I27–I32.
-
Chen J.M., Russo M.J., Hammond K.M. et al. Alternate waiting list strategies for heart transplantation maximize donor organ utilization // Ann. Thorac. Surg. 2005. Vol. 80. P. 224.
-
Theodore J., Robin E.D. Speculations on Neurogenic Pulmonary Edema (NPE) // Am. Rev. Respir. Dis. 1976. Vol. 113. P. 405–411.
-
Davison D.L., Terek M., Chawla L.S. Neurogenic pulmonary edema // Crit. Care. 2012. Vol. 16. P. 212–218.
-
Naik P.M., Angel L.F. Special issues in the management and selection of the donor for lung transplantation // Semin. Immunopathol. 2011. Vol. 33. P. 201–210.
-
Meyer D.M., Bennett L.E., Novick R.J., Hosenpud J.D. Effect of donor age and ischemic time on intermediate survival and morbidity after lung transplantation // Chest. 2000. Vol. 118. P. 1255–1262.
-
Fischer S., Gohrbandt B., Struckmeier P. et al. Lung transplantation with lungs from donors fifty years of age and older // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2005. Vol. 129. P. 919–925.
-
De Perrot M., Waddell T.K., Shargall Y. et al. Impact of donors aged 60 years or more on outcome after lung transplantation: results of an 11-year single-center experience // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2007. Vol. 133. P. 525–531.
-
Maccherini M., Keshafjee S.H., Slutsky A.S. et al. The effect of low-potassium dextran versus Euro-Collins solution for preservation of isolated type II pneumocytes // Transplantation. 1991. Vol. 52. P. 621–626.
-
Bins O.A.R., DeLima N.F., Buchanan S.A. et al. Both blood and crystalloid-based extracellular solutions are superior to intracellular solutions for lung preservation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1996. Vol. 112. P. 1515–1521.
-
Weill D., Dey G.C., Young K.R. et al. A positive donor gram stain does not predict outcome following lung transplantation // J. Heart Lung Transplant. 2002. Vol. 21. P. 555–558.
-
Pelaez A., Mitchell P.O., Shah N.S. et al. The role of donor chronic alcohol abuse in the development of primary graft dysfunction in lung transplant recipients // Am. J. Med. Sci. 2015. Vol. 349. P. 117–123.
-
Oto T., Griffiths A., Levvey B. et al. Donor history of asthma is not a contraindication to lung transplantation: 12-year single-center experience // J. Heart Lung Transplant. 2004. Vol. 23. P. 309–316.
-
Steen S., Ingemansson R., Budrikis A. et al. Successful transplantation of lungs topically cooled in the non-heartbeating donor for 6 hours // Ann. Thorac. Surg. 1997. Vol. 63. P. 345–351.
-
Steen S., Liao Q., Wierup P.N. et al. Transplantation of lungs from nonheart-beating donors after functional assessment ex vivo // Ann. Thorac. Surg. 2003. Vol. 76, N 1. P. 244–252; discussion 252.
-
Steen S., Sjöberg T., Pierre L. et al. Transplantation of lungs from a non-heart-beating donor // Lancet. 2001. Vol. 357, N 9259. P. 825–829.
-
Machuca T.N., Cypel M. Ex vivo lung perfusion // J. Thorac. Dis. 2014. Vol. 6, N 8. P. 1054–1062.
-
Aseni P., De Feo T.M., De Carlis L. et al. A prospective policy development to increase split-liver transplantation for 2 adult recipients: results of a 12-year multicenter collaborative study // Ann. Surg. 2014. Vol. 259. P. 157–165.
-
Cuende N., Grande L., Sanjuan F., Cuervas-Mons V. Liver transplant with organs from elderly donors: Spanish experience with more than 300 liver donors over 70 years of age // Transplantation. 2002. Vol. 73. P. 1360.
-
Takada Y., Haga H., Ito T. et al. Clinical outcomes of living donor liver transplantation for hepatitis C virus (HCV)-positive patients // Transplantation. 2006. Vol. 81. P. 350–354.
-
Hong J.C., Yersiz H., Kositamongkol P. et al. Liver transplantation using organ donation after cardiac death // Arch. Surg. 2011. Vol. 146. P. 1017–1023.
-
Varma V., Mehta N., Kumaran V., Nundy S. Indications and contraindications for liver transplantation // Int. J. Hepatol. 2011. Vol. 2011. P. 121862. DOI: https://doi.org/10.4061/2011/121862
-
Schnuelle P., Gottman U., Hoeger S. et al. Effects of donor pretreatment with dopamine on graft funetion after kidney transplantation // JAMA. 2009. Vol. 302. P. 1067–1075.
-
Marang-van de Mheen P.J., Hilling D.E., Dirkes M.C., Baranski A.G. Surgical injuries of pancreatic allografts during procurement // Clin. Transplant. 2011. Vol. 25, N 5. P. 737–743.
-
Abu-Elmagd K., Fung J. et al. Logistics and technique for procurement of intestinal, pancreatic, and hepatic grafts from the same donor // Ann. Surg. 2000. Vol. 232. P. 680–687.
Часть II. Принципы диагностики смерти головного мозга и кондиционирование потенциального донора
Глава 4. Диагностика смерти мозга. Антонино М. Гранде, Паоло Асени12
Я жизнь от смерти различать умею.
Она мертва, как ком земли. Подайте
Мне зеркало: когда ее дыханье
Стекла поверхность затемнит, скажу я —
Скажу я, что жива она!
У. Шекспир. Король Лир, акт V, сцена 3 (пер. А. Дружинина)
Во времена Шекспира, в конце XVI — начале XVII вв., отсутствие дыхания и кровообращения было универсальным критерием для объявления кого-то умершим. На протяжении почти двух столетий для диагностики смерти человека врачи использовали стетоскоп. В XX в. открытие принципов сердечно-легочной реанимации (СЛР), дефибрилляции и фармакологической терапии для борьбы с остановкой сердца изменило определение смерти человека: остановку кровообращения теперь можно определить как «клиническую смерть», что дало возможность реанимации после остановки кровообращения. И вот уже на протяжении почти 50 лет врачи диагностируют смерть, применяя неврологические критерии.
Мозг человека анатомически делится на головной мозг с его корой и оболочками, мозжечок и ствол мозга, состоящий из среднего мозга, варолиева моста и продолговатого мозга. Традиционно головной мозг считался «высшим мозгом», поскольку его функцией является первичный контроль над сознанием, мышлением, памятью и чувствами. Ствол мозга воспринимался как «низший мозг», так как за счет его работы происходит организация таких спонтанных вегетативных функций, как глотание, зевание и циклы сна–бодрствования. В то же время функции «высшего мозга», такие как познание и сознание, не опосредованы строго корой головного мозга, но являются результатом сложных взаимодействий между стволом мозга и корой. Дыхание контролируется в стволе головного мозга, особенно в продолговатом мозге. Нервные импульсы, возникающие в дыхательных центрах продолговатого мозга, стимулируют работу диафрагмы и межреберных мышц, вызывающих расширение и сжатие легких. Как правило, дыхательные центры регулируют частоту дыхательных движений, чтобы поддерживать адекватный уровень углекислого газа и кислорода в крови. Во время тяжелой физической нагрузки, глубокого вдоха (вздоха), кашля или чихания другие области головного мозга регулируют деятельность дыхательных центров или даже на короткое время непосредственно контролируют дыхание. Остановка дыхания происходит при гибели дыхательного центра мозга, что вызывает прекращение поступления кислорода к сердцу и остановку сердечной деятельности. В результате человек признается умершим при исчезновении традиционных признаков жизни: дыхания и кровообращения.
Необратимая потеря способности к сознанию в сочетании с необратимой потерей способности к самостоятельному дыханию признается специалистами во всем мире как СГМ. СГМ является результатом необратимой утраты обеих указанных функций в головном мозге [1]. Гибель ствола головного мозга может быть вызвана как интракраниальными (травма, кровоизлияние, ишемическое поражение), так и экстракраниальными причинами (остановка кровообращения, церебральная аноксия). Идея СГМ возникла в 1950-х гг., когда с помощью ИВЛ появилась возможность поддерживать достаточную оксигенацию у пациентов с поражением головного мозга, находящихся в бессознательном состоянии, и благодаря сохранявшемуся регулярному сердечному ритму эти пациенты казались «живыми». Стало понятным, что появление ИВЛ остановило необратимую остановку кровообращения, которое всегда следовало за остановкой дыхания, что потенцировало возможность диагностики смерти человека на основании неврологических критериев. В 1959 г. Wertheimer et al. описал «смерть нервной системы» (death of the nervous system) [2], а французские нейрофизиологи Mollaret и Goulon дали определение состояния «запредельной комы» (coma depassè), при котором в результате повреждения головного мозга наступала необратимая утрата его функций (отсутствие стволовых рефлексов, реакции на болевые раздражители, зрачков на свет), но была возможной искусственная поддержка кровообращения и дыхания [3]. За несколько лет до этого, в 1954 г., Joseph Murray, в будущем нобелевский лауреат в области медицины и физиологии 1990 г., выполнил первую в мире успешную трансплантацию человеческого органа — родственную трансплантацию почки от гомозиготного близнеца, а в 1962 г. — первую в мире успешную трансплантацию почки от ПД [4]. Годом позже Starzl et al. выполнили первую трансплантацию печени [5], а Hardy et al. — первую трансплантацию легких [6]. В обоих случаях донорами были пациенты, умершие в результате необратимой остановки кровообращения: из ОРИТ они были переведены в операционную, где после остановки сердечной деятельности, ставшей следствием прекращения ИВЛ, была произведена эксплантация донорских органов [7]. В том же 1963 г. бельгийским хирургом Guy Alexandre из Левенского католического университета была выполнена первая трансплантация почки от донора, признанного умершим на основании неврологических критериев, с сохраненным кровообращением и ИВЛ (рис. 4.1)[8, 9].

Была отмечена немедленная начальная функция трансплантата почки, нормализация уровня сывороточного креатинина наступила спустя несколько дней после операции, однако пациент умер от септических осложнений на 87-е сутки посттрансплантационного периода. Критерии диагностики СГМ, которыми руководствовался Guy Alexandre, приведены в табл. 4.1.
В 1966 г. Richard Lillehei, William Kelly et al. осуществили первую успешную трансплантацию поджелудочной железы [10, 11], а в 1967 г. Christiaan Barnard в Кейптауне (ЮАР) выполнил первую трансплантацию сердца от донора, умершего в результате необратимой остановки сердечной деятельности, наступившей в операционной после прекращения ИВЛ [12, 13]. Как утверждал сам Barnard: «Как только донор был признан умершим (отсутствие активности на электрокардиограмме в течение 5 мин, а также отсутствие спонтанных дыхательных движений и рефлексов) <…> была произведена быстрая стернотомия» [12].
Условие: тяжелая черепно-мозговая травма (ЧМТ) |
Критерии диагностики : |
фиксированный двусторонний мидриаз |
полное отсутствие рефлексов и реакции на болевые раздражители |
полное отсутствие спонтанных дыхательных движений в течение 5 мин после прекращения ИВЛ |
артериальная гипотензия, требующая увеличения дозы вазопрессивных препаратов [эпинефрин (Адреналин♠)] или Неосинефрина [фенилэфрина (Фенилэфрина гидрохлорида♠)] |
При наличии всех критериев время наблюдения составляет менее 6 ч при сохраняющемся отсутствии электрической активности на электроэнцефалографии |
В связи с развитием трансплантации органов по всему миру в 1968 г. в США Специальной комиссией Гарвардской медицинской школы по исследованию формулировки диагноза смерти мозга (Ad Hoc Committee of the Harvard Medical School to Examine the Definition of Brain Death) были установлены критерии СГМ [14]. Данная комиссия определила СГМ у пациента в состоянии комы как состояние, характеризующееся стойким отсутствием сознания, отсутствием любых реакций на внешние раздражители и любых рефлексов, в том числе стволовых, а также отсутствием любых движений, в том числе дыхательных (табл. 4.2).
Условия |
Необратимое повреждение головного мозга |
Исключение двух состояний: 1) гипотермии [ниже 90 °F (32,2 °С)] и 2) применения препаратов, угнетающих центральную нервную систему, например барбитуратов |
|
Критерии |
Фиксированный мидриаз и отсутствие реакции зрачков на прямой яркий свет |
Отсутствие реакции даже на сильные болевые раздражители |
|
Отсутствие моргания и движений глазных яблок (в сторону поворота головы и орошения наружного слухового прохода холодной водой) — окулоцефалических и окуловестибулярных рефлексов |
|
Отсутствие признаков постуральной активности (децеребрационной и др.) |
|
Отсутствие актов глотания, зевоты, вокализации |
|
Критерии |
Отсутствие корнеальных и фарингеальных рефлексов |
Отсутствие сухожильных рефлексов. Отсутствие ответа на плантарную и ноцицептивную стимуляцию |
|
Атония всех мышц и отсутствие самостоятельного дыхания |
|
Наблюдения, проводимые врачами в течение не менее 1 ч, достаточны для установления критерия отсутствия спонтанных мышечных движений и спонтанных дыхательных движений, устанавливаемых прекращением ИВЛ в течение 3 мин, или отсутствия реакции на такие внешние раздражители, как боль, прикосновение, звук и свет |
|
После 24-часового периода наблюдения при повторной регистрации вышеперечисленных критериев — без изменений |
|
Отсутствие электрической активности на электроэнцефалографии |
Кроме того, недопустимым является участие в процессе установления смерти человека специалистов, осуществляющих эксплантацию донорских органов и трансплантацию этих органов реципиентам.
В августе того же года на 22-й Всемирной медицинской ассамблее в Сиднее (Австралия) была принята так называемая Сиднейская декларация (табл. 4.3), согласно которой «смерть есть последовательный процесс гибели отдельных клеток и тканей, неодинаково устойчивых к кислородному голоданию», а также «важен не момент гибели отдельных клеток, а момент, когда, несмотря на все возможные реанимационные мероприятия, организм необратимо теряет свою целостность» [15].
Законодательство большинства стран справедливо возлагает ответственность за определение момента наступления смерти на врача. Как правило, врач констатирует смерть на основании общеизвестных критериев. Однако развитие таких современных направлений медицины, как: 1) искусственное поддержание кровообращения в необратимо поврежденном теле; 2) использование трупных органов для трансплантации, переводят вопрос констатации момента наступления смерти в новую плоскость. Смерть есть последовательный процесс гибели отдельных клеток и тканей, неодинаково устойчивых к кислородному голоданию. Задача лечащего врача — не забота об отдельных группах клеток, а борьба за сохранение целостности личности. С этой точки зрения важен не момент гибели отдельных клеток, а момент, когда, несмотря на все возможные реанимационные мероприятия, организм необратимо теряет свою целостность. В этом смысле момент наступления смерти соответствует моменту необратимого прекращения интегративных функций головного мозга, в частности стволовых функций. Определение этого момента основано на клинической оценке, дополняемой при необходимости диагностическими тестами. На современном уровне развития медицины не существует удовлетворительного универсального критерия определения этого момента, и в настоящее время никакая техника не может заменить врачебного решения. Если предполагается пересадка органа, то факт смерти должны независимо констатировать минимум два врача, не заинтересованных напрямую в проведении трансплантации. Медицинская этика позволяет прекратить все реанимационные мероприятия в момент наступления смерти, а также изъять трупные органы, если получено необходимое согласие и законодательство страны не запрещает этого |
4.1. Повреждение ствола головного мозга
В 1971 г. Mohandas and Chou было описано повреждение ствола мозга как критическая составляющая повреждения всего головного мозга [16], что позднее было подтверждено Конференцией медицинских колледжей и их факультетов в Великобритании (Conference of Medical Royal Colleges and their Faculties, United Kingdom), на которой СГМ была определена как полная необратимая потеря функций ствола мозга [17]. Эта формулировка, принятая в 1981 г., позволила Президентской комиссии по изучению этических проблем в биомедицинских и поведенческих исследованиях (President’s Commission for the Study of Ethical Problems in Medicine and Behavioral Research) выработать рекомендации [18] и принять «Акт о единообразном определении смерти» (Uniform Determination Death Act), согласно которому «человек признается умершим в результате: 1) необратимой остановки кровообращения и дыхания; 2) необратимой утраты всех функций головного мозга, включая ствол. Определение смерти должно производиться в соответствии с принятыми медицинскими стандартами» [19]. Другими словами, «смерть — это уникальное явление, которое может быть точно установлено либо на основании традиционных критериев необратимой остановки кровообращения и дыхания, либо на основании необратимой потери всех функций головного мозга, включая ствол мозга» [18]. Согласно «Акту о единообразном определении смерти», «для юридических и медицинских целей человек с установленной необратимой утратой всех функций головного мозга мертв».
Таким образом, смерть человека может быть установлена на основании неврологических критериев, что свидетельствует о гибели головного мозга, в том числе ствола мозга [20]. Поскольку дыхание и кровообращение пациента с тяжелым повреждением головного мозга могут быть поддержаны искусственно, были разработаны критерии определения утраты функций головного мозга при кардиореспираторной поддержке.
Потеря нейронной активности и гибель нейронов головного мозга у взрослого человека наступают после дефицита кислорода и глюкозы в течение нескольких минут [21]. Таким образом, активность головного мозга может быть утрачена даже при отсутствии прямой ЧМТ или отека мозга, а именно — при нарушении внутримозгового кровообращения. Повреждение нервной ткани вследствие прекращения внутримозгового кровообращения характеризуется полным аутолизом в течение нескольких последующих дней. Вместе с другими функциями мозга происходит полная утрата сознания. В то время как некоторые спинальные рефлексы по причине обособленного от головного мозга кровоснабжения спинного мозга у таких пациентов часто сохраняются, все рефлексы, контролируемые стволом головного мозга, а также когнитивные, аффективные и интегративные функции отсутствуют. Дыхание и кровообращение в органах может осуществляться с помощью аппарата ИВЛ, а также с помощью массивного медицинского пособия. У взрослых, у которых произошло необратимое прекращение функций всего головного мозга, кровообращение обычно прекращается в течение 2–10 сут, однако у детей, умерших в результате СГМ, остановка кровообращения происходит только через несколько недель [22].
Менее массивная травма головного мозга может вызвать легкое или глубокое повреждение коры головного мозга, нижележащих мозговых структур, мозжечка, ствола мозга или их комбинации. Вследствие прекращения кровоснабжения головной мозг, а в особенности его кора, повреждаются раньше и быстрее, чем ствол мозга. Остановка кровообращения в течение 4–6 мин приводит к необратимым повреждениям коры головного мозга, при этом функции относительно более устойчивого ствола мозга могут не быть повреждены [21]. В этом случае происходит безвозвратная потеря основных функций головного мозга и пациент остается в «стойком вегетативном состоянии» (persistent vegetative state): у пациента могут сохраняться спонтанные, непроизвольные движения, такие как зевок или гримасы лица, его глаза могут быть открыты и он может осуществлять самостоятельные дыхательные движения [23]. Однако при отсутствии функций головного мозга движения пациента не означают, что он осознает себя или свое окружение. Так обстояло дело с Карен Энн Куинлан (Karen Ann Quinlan), которая прожила более 10 лет в стойком вегетативном состоянии, находясь в госпитале и получая всю необходимую медицинскую и паллиативную помощь, в том числе энтеральное и парентеральное питание [24]. По результатам аутопсии Карен Энн Куинлан, умершей 11 июня 1985 г., были выявлены наиболее значительные повреждения в таламусе (с обеих сторон) при умеренной рубцовой деформации коры головного мозга и неповрежденном стволе мозга.
Черепные нервы, за исключением I, II и спинномозгового компонента XI, берут начало в стволе головного мозга, и определение утраты их функции подтверждает необратимое повреждение ствола мозга, в том числе ретикулярной формации и продолговатого мозга. Для диагностики отсутствия их функции необходимы следующие исследования черепных нервов (рис. 4.2):
-
зрачки должны быть фиксированными по диаметру, глазные яблоки неподвижны, отсутствие реакции зрачков на прямой яркий свет (средняя позиция по отношению к расширению зрачков в разных странах — от 4 до 6 мм): черепные нервы II и III;
-
окуловестибулярный рефлекс (нистагм или любые движения глаз отсутствуют при орошении наружного слухового прохода холодной водой): черепные нервы II, IV, VI, VIII;
-
отсутствие движения лица или конечностей при надавливании в тригеминальных точках: черепные нервы V, VII;
-
окулоцефалический рефлекс (при горизонтальных и вертикальных поворотах головы движений глаз не происходит): афферентные волокна лабиринта, вестибулярный нерв (порция черепного нерва VIII), шейные проприоцепторы, эфферентные волокна черепных нервов III и VI;
-
отсутствие реакции на болевые раздражители в супраорбитальной области или в области мыщелка височно-нижнечелюстного сустава: афферентные волокна черепного нерва V, эфферентные волокна черепного нерва VII;
-
отсутствие кашля в ответ на трахеальную аспирацию и отсутствие рвотного рефлекса после стимуляции задней стенки глотки: черепные нервы IX и X;
-
разъединительный тест (тест апноэтической оксигенации) положительный.

После подтверждения утраты функций всех черепных нервов для установления клинического диагноза СГМ проводится тест апноэтической оксигенации. Пациента отключают от аппарата ИВЛ и осуществляют подачу увлажненного 100% кислорода посредством канюли, проведенной в эндотрахеальную трубку до киля трахеи, за счет чего обеспечиваются достаточная альвеолярная вентиляция и поступление кислорода в кровь при отсутствии дыхательных движений. Перед началом разъединительного теста следует провести преоксигенацию 100% кислородом в течение не менее 10 мин, чтобы избежать гипоксии. Уровень артериального PO2 перед оксигенацией должен быть ≥200 мм рт.ст., что позволяет избежать возможной гипокапнии вследствие гипервентиляции или высокого дыхательного объема при проведении ИВЛ. Перед началом теста апноэтической оксигенации систолическое АД должно быть не менее 90 мм рт.ст., температура тела должна быть не ниже 32 °С, а показатель PaCO2 — находиться в пределах нормы или ≥40 мм рт.ст. Разъединительный тест завершается при отсутствии дыхательных движений при PaCO2 ≥60 мм рт.ст. или на 20 мм рт.ст. и более выше исходного уровня PaCO2. В таком случае результат теста апноэтической оксигенации является положительным и подтверждает диагноз СГМ [25].
Поскольку трактовка клинических критериев СГМ не позволяет с абсолютной точностью поставить этот диагноз, продолжается обсуждение вопроса о необходимости использования подтверждающих параклинических тестов [26].
Ошибочный диагноз СГМ возможен при следующих состояниях: переохлаждение, наркотическая интоксикация и синдром «запертого человека». При гипотермии менее 28 °С стволовые рефлексы отсутствуют и могут быть выявлены вновь при согревании [27].
Многие седативные препараты и анестетики могут вызывать клиническую картину, соответствующую таковой при СГМ, однако некоторые функции ствола мозга, в частности реакция зрачков на свет, могут сохраняться. При лекарственной и наркотической интоксикации может наблюдаться частичная или полная утрата стволовых рефлексов. При подозрении на интоксикацию следует придерживаться следующего алгоритма:a) если известно лекарственное средство, но количественная оценка его концентрации невозможна, наблюдение пациента продолжается в течение по меньшей мере 4 периодов полувыведения препарата;б) при подозрении на интоксикацию (лекарственное средство неизвестно) наблюдение пациента проводится в течение 48 ч для оценки любых изменений стволовых рефлексов. При отсутствии изменений в конце периода наблюдения необходимо проведение подтверждающего теста [28].
Синдром «запертой личности» обычно возникает вследствие разрушения основания варолиева моста. У пациента отмечаются тетраплегия, паралич бульбарной, мимической и жевательной мускулатуры, однако сохраняются моргание, вертикальные движения глаз и, что самое главное, сознание, поскольку ростральные отделы среднего мозга, покрышка мозга и ретикулярная формация оказываются неповрежденными [26, 29]. Частой причиной синдрома «запертой личности» является острая эмболия базилярной артерии. Другим заболеванием, имитирующим СГМ, является синдром Гийена–Барре, при котором поражаются все периферические и черепные нервы. Прогрессирование этого заболевания отмечается в течение нескольких дней или недель, однако большинство пациентов выздоравливают без каких-либо неврологических осложнений [30].
Выполнение подтверждающих СГМ тестов требуется в соответствии с нормативно-правовыми актами ряда европейских, азиатских, центрально- и южноамериканских стран. В Швеции для подтверждения диагноза СГМ обязательным является проведение церебральной ангиографии. В США необходимые подтверждающие тесты определяет врач, наблюдающий пациента [26]. В Италии СГМ диагностируется на основании следующих законодательно утвержденных критериев: а) глубокая кома; б) отсутствие стволовых рефлексов; в) отсутствие двигательных реакций на болевые раздражители при надавливании в тригеминальных точках; г) отсутствие дыхательных движений при PaCO2 >60 мм рт.ст.; д) отсутствие электрической активности на электроэнцефалограмме; е) продолжительность периода наблюдения составляет 6 ч для взрослых, 12 ч — для детей в возрасте до 5 лет и 24 ч — для новорожденных и младенцев в возрасте до 2 мес; ж) исследование церебрального кровообращения для выявления его остановки при наличии факторов, влияющих на клинические критерии диагноза СГМ и/или электроэнцефалографию (например, токсические, метаболические факторы или введение седативных препаратов) [31]. В табл. 4.4 приведены основные подтверждающие тесты для диагностики СГМ.
Церебральная ангиография (в большинстве случаев — компьютерная, магнитно-резонансная или радионуклидная томография): отсутствие поступления контрастного вещества на уровне бифуркации сонных артерий с обеих сторон, виллизиева круга |
Электроэнцефалография: отсутствие электрической активности в течение не менее 30 мин записи (следует обращать внимание, что в условиях интенсивной терапии показания могут быть изменены из-за артефактов) |
Транскраниальная доплерография: небольшие систолические пики в ранней систоле без диастолического компонента, демонстрирующие очень высокое сосудистое сопротивление, связанное с аномально высоким внутричерепным давлением (ВЧД) (примерно у 10% пациентов отсутствует возможность инсонации из-за толщины черепа) |
Радионуклидное исследование головного мозга: СГМ подтверждается отсутствием поглощения изотопов веществом головного мозга |
В настоящее время признанными и равнозначными считаются две модели СГМ: смерть всего головного мозга и смерть ствола головного мозга. По этой причине в разных странах существуют различные критерии СГМ: концепция смерти всего мозга принята в США, Италии и большинстве европейских стран, в то время как концепция смерти ствола принята, в первую очередь, в Великобритании [31–37]. При интерпретации концепции СГМ как смерти всего мозга обоснованными подтвержающими тестами являются такие исследования церебрального кровообращения, как ангиография и однофотонная эмиссионная компьютерная томографияВ РФ критерии и процедура установления диагноза СГМ определяются Приказом Министерства здравоохранения РФ от 25.12.2014 г. №908н «О порядке установления диагноза смерти мозга человека» [35].
После идентификации клинических критериев СГМ устанавливается период наблюдения (обычно для взрослых и детей от 1 года — 6 ч) с целью исключения клинических признаков, несовместимых с СГМ. По окончании периода наблюдения оценка клинических критериев СГМ повторяется, при сохранении клинической картины констатируется диагноз СГМ у пациента, после чего врачу необходимо проинформировать близких родственников умершего и обсудить с ними возможность посмертного донорства органовВ РФ и странах с принятой концепцией «презумпции согласия» информирование близких и родственников о возможном посмертном органном донорстве, обсуждение с ними этих вопросов и получение согласия не требуются.
В некоторых случаях период наблюдения может быть сокращен ввиду тяжести ЧМТ или повреждений шейного отдела позвоночника, гемодинамической нестабильности или других причин. Обязательным условием диагностики СГМ в таких ситуациях является проведение подтверждающих тестов.
К настоящему времени различные юридические определения смерти привели к установлению двух основных категорий ПД органов: а) умерших в результате СГМ; б) умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности.
Первые трансплантации почек в 1950–1960-х гг. были выполнены от прижизненных доноров, а первыми ПД органов стали пациенты, умершие в результате необратимой остановки кровообращения. После установления клинических критериев диагностики СГМ основным пулом ПД являются доноры с СГМ. Однако в последние десятилетия количество ПД, умерших в результате СГМ, неуклонно уменьшается в связи с улучшением диагностики и лечения тяжелых ЧМТ и снижением смертности пациентов молодого возраста от острого нарушения мозгового кровообращения (ОНМК) и тяжелых ЧМТ [7, 38, 39]. Во всем мире отмечается постепенный рост количества доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности. Например, в Великобритании количество таких ПД увеличилось с 5,6% (42 донора из 745) в 2001–2002 гг. до 36,9% (373 донора из 1010) в 2010–2011 гг. [39, 40].
Литература
-
Gardiner D., Shemie S., Manara A., Opdam H. International perspective on the diagnosis of death // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, suppl. 1. P. i14–i28.
-
Wertheimer P., Jouvet M., Descotes J. A propos du diagnostic de la mort du systeme nerveux dans les comas avec arrêt respiratoire traites par respiration artifi cielle // Presse Med. 1959. Vol. 67. P. 87–88.
-
Mollaret P., Goulon M. The depassed coma (preliminary report) // Rev. Neurol. (Paris). 1959. Vol. 101. P. 3–15.
-
Merrill J.P., Murray J.E., Takacs F.J. et al. Successful transplantation of kidney from a human cadaver // JAMA. 1963. Vol. 185. P. 347–353.
-
Starzl T.E., Marchioro T.L., Vonkaulla K.N. et al. Homotransplantation of the liver in humans // Surg. Gynecol. Obstet. 1963. Vol. 117. P. 659–676.
-
Hardy J.D., Webb W.R., Dalton M.L. Jr., Walker G.R. Jr. Lung homotransplantation in man // JAMA. 1963. Vol. 186. P. 1065–1074.
-
Machado C. The first organ transplant from a brain-dead donor // Neurology. 2005. Vol. 64. P. 1938–1942.
-
Squifflet J.P. The history of transplantation at the Catholic University of Louvain, Belgium (1963–2003) // Acta Chir. Belg. 2003. Vol. 103, N 3. P. 10–20.
-
Alexandre G.P.J. From the early days of human kidney allotransplantation to prospective xenotransplantation // History of transplantation: thirty-five collections / Ed. P.I. Terasaki. UCI Tissue Typing Laboratory, Los Angeles. 1991. P. 337–348.
-
Lillehei R.C., Idezuki Y., Feemster J.A. et al. Transplantation of stomach, intestine, and pancreas: experimental and clinical observations // Surgery. 1967. Vol. 62. P. 721–741.
-
Kelly W.D., Lillehei R.C., Merkel F.K. et al. Allotransplantation of the pancreas and duodenum along with the kidney in diabetic nephropathy // Surgery. 1967. Vol. 61. P. 827–837.
-
Barnard C.N. The operation // S. Afr. Med. J. 1967. Vol. 41. P. 1271–1274.
-
Machado C. The first organ transplant from a brain-dead donor // Brain death. A reappraisal. Springer, New York. 2007. Cap. 2. P. 21–31.
-
A definition of irreversible coma. Report of the Ad Hoc Committee of the Harvard Medical School to examine definition of brain death // JAMA. 1968. Vol. 205. P. 337–340.
-
Gilder S.S. Twenty-second world medical assembly // Br. Med. J. 1968. Vol. 3. P. 493–494.
-
Mohandas A., Chou S.N. Brain death: a clinical and pathological study // J. Neurosurg. 1971. Vol. 35. P. 211–218.
-
Diagnosis of brain death: statement issued by the honorary secretary of the Conference of Medical Royal Colleges and their Faculties in the United Kingdom on Oct 11, 1976 // BMJ. 1976. Vol. 2. P. 1187–1188.
-
President’s Commission for the Study of ethical problems in medicine and biomedical and behavioral research. Defining death: a report on the medical, legal and ethical issues in the determination of death. Washington, D.C. : Government Printing Office, 1981.
-
Uniform Determination Death Act. URL: www.law.uppen.edu/bll/archives/ulc/finact199/1980s/udda80.pdf
-
Smith M. Brain death: time for an international consensus // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, N S1. P. i6–i9.
-
Cranford R.E., Smith H.L. Some critical distinctions between brain death and persistent vegetative state // Ethics. Sci. Med. 1979. Vol. 6. P. 199–209.
-
Korein J. Brain death // Anesthesia and neurosurgery / Eds J. Cottrell, H. Turndorf. St. Loui : CV Mosby & Co, 1980. P. 282, 284, 292–293.
-
Jennett B., Plum F. The persistent vegetative state after brain damage: a syndrome in search of a name // Lancet. 1972. Vol. 1, N 7753. P. 734–737.
-
McFadden R.D. Karen Ann Quinlan, 31, dies; Focus of’76 right to die case. New York Times, June 12, 1985.
-
Machado C., Perez J., Scherle C., Areu A., Pando A. Brain death diagnosis and apnea test safety // Ann. Indian Acad. Neurol. 2009. Vol. 12. P. 197–200.
-
Wijdicks E.F.M. The diagnosis of brain death // N. Engl. J. Med. 2001. Vol. 344. P. 1215–1221.
-
Danzl D.F., Pozos R.S. Accidental hypothermia // N. Engl. J. Med. 1994. Vol. 331. P. 1756–1760.
-
Henderson G.V. Coma, head trauma, and spinal cord injury // Samuel’s manual of neurologic therapeutics / 8th edn. Philadelphia, PA : Lippincot Williams & Wilkins, 2010. P. 27.
-
Patterson J.R., Grabois M. Locked-in syndrome: a review of 139 cases // Stroke. 1986. Vol. 17. P. 758–764.
-
Kotsoris H., Scheifler L., Menken M., Plum F. Total locked-in state resembling brain death in polyneuropathy // Ann. Neurol. 1984. Vol. 16. P. 150 (abstr.).
-
Ministero della Sanità: Regolamento recante le modalità per l’accertamento e la certifi cazione di morte // Decreto. 1994. N. 582.
-
Abdel-Dayem H.M., Bahar R.H., Sigurdsson G.H. The hollow skull: a sign of brain death in Tc-99m HM-PAO brain scintigraphy // Clin. Nucl. Med. 1989. Vol. 14. P. 912–916.
-
Royal Colleges and Faculties of the United Kingdom Diagnosis of brain death // BMJ. 1976. Vol. 2. P. 1187–1188.
-
Editorial. Brain death criteria // Ned. Tijdschr. Geneeskd. 1983. Vol. 127. P. 2293.
-
Le Ministre Delegue charge de la Sante. Decretn. 90–844 du 24 septembre 1990.
-
Wissenschaftlicher Beirat der Bundesärtzekammer, Kriterien des Hirntodes, Kriterien des Hirntodes // Dtsch Artzebl Mitteilg. 1991. Vol. 87. P. 2855–2860.
-
Munari M., Zucchetta P., Carollo C. et al. Confirmatory tests in the diagnosis of brain death: comparison between SPECT and contrast angiography // Crit. Care Med. 2005. Vol. 33. P. 2068–2073.
-
Death rate trends for RTAs and CVAs. WHO European Health for All database. URL: http://www.euro.who.int/hfadb
-
Ridley S., Bonner S., Bray K.et al.; Intensive Care Society’s Working Group on Organ and Tissue Donation. UK guidance for non-heart-beating donation // Br. J. Anaesth. 2005. Vol. 95. P. 592–595.
-
Akoh J.A. Kidney donation after cardiac death // World J. Nephrol. 2012. Vol. 6, N 1(3). P. 79–91.
Глава 5. Спонтанные рефлекторные движения при смерти мозга. Антонино М. Гранде
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it
Ключевые тезисы
-
При СГМ могут наблюдаться спонтанные движения и рефлексы, возникающие на уровне спинальных центров.
-
Спинальные автоматические рефлексы не противоречат диагнозу СГМ.
-
К спинальным автоматизмам относятся: подошвенный рефлекс, сухожильно-мышечные рефлексы при сгибании-разгибании, сгибание пальцев в ответ на постукивание. Напряжение мышц передней брюшной стенки при лапаротомии отмечается у 60% ПД.
-
Рефлекторные движения исходят из спинного мозга, начиная с метамера С1, и охватывают определенное количество нижележащих метамеров.
-
Патофизиологическим объяснением спинальных автоматизмов служит потеря контроля вышележащих и филогенетически более поздних структур головного мозга над спинным мозгом. За счет ИВЛ и медикаментозной поддержки при сохраненном кровообращении происходит насыщение кислородом спинальных нейронов пациента с СГМ, что способствует восстановлению функций нейронов спинного мозга и возникновению рефлекторных движений.
-
Широкую огласку в средствах массовой информации получают сенсационные заголовки, в которых донор «выздоравливает непосредственно перед казнью». Существующее до настоящего времени непонимание различий между комой и вегетативным состоянием значительно затрудняет посмертное донорство.
«В старой миланской больнице, построенной из красного кирпича, в час ночи двое мужчин заталкивают носилки в двери старой операционной, где когда-то выполнялись неотложные хирургические вмешательства, а теперь она используется только для мультиорганных эксплантаций. В операционной раздается непрерывный писк кардиомонитора, анестезиолог проводит вентиляцию легких донора мешком Амбу. Высокий спортивный мужчина умер от геморрагического инсульта. Внезапно в операционной раздается крик: «Он шевелится, хочет подняться!» Донор только что пошевелил правой рукой и поднял с носилок правое бедро. Паника распространяется среди медсестер, но и некоторые врачи кажутся озадаченными. Анестезиолог в течение 15 мин успокаивает персонал в операционной. Размахивая листком бумаги (протоколом констатации смерти), он протестует и объясняет, что донор умер в результате СГМ, диагностированной на основании всех необходимых клинических критериев и подтверждающих тестов. После минутного колебания «вновь умершего» донора везут обратно в операционную, и начинается операция мультиорганной эксплантации.
В другом случае все было готово к выполнению последнего этапа эксплантации; все сосудистые структуры, исходящие из сердца, были выделены и взяты на держалки. Именно в этот момент, при пережатии восходящей аорты, посмертный донор рефлекторно двинулся и нанес левой рукой мощный удар в живот моему ассистенту. Аортальный зажим был снят, кровоток в аорте возобновлен, но донор все еще совершал спонтанные движения — на этот раз правой ногой. С тысячью мыслей в голове секунды казались часами. Отстраненный взгляд и эхо взволнованных слов медсестер, кто-то закричал, что это последний отчаянный протест человека против донорства. Однако чрезвычайно решительный абдоминальный хирург восклицает: «Пережатие аорты, начало перфузии». И я автоматически переключаюсь на выполнение операции, не скрывая собственного беспокойства и нервозности».
5.1. Историческая справка
Существует значительное число наблюдений спонтанных движений после смерти. Вероятно, впервые этот феномен был описан в 1637 г. Рене Декартом в работе «Рассуждение о методе…»: «Только что отрубленные головы животных двигаются и кусают землю, хотя уже не одушевлены…» [1]. Будучи свидетелями казни гильотиной, в 1887 г. двое французских врачей Regnard и Loye сообщили: «Спустя две секунды после обезглавливания щеки все еще были розовыми, глаза широко открытыми, зрачки умеренно расширенными, а рот был плотно закрыт. Мышечных сокращений не наблюдалось. Выражение лица не менялось в случае надавливания на один глаз, однако при прикосновении к глазу или кончикам ресниц в течение первых пяти секунд веки закрывались так же, как и при жизни. Данное рефлекторное движение не вызывалось с шестой секунды после обезглавливания. Челюсти были плотно сжаты и не могли быть открыты при усилии; ни в туловище, ни в конечностях не было обнаружено подобных мышечных сокращений.
Через минуту после смерти лицо начало бледнеть, туловище оставалось вялым, через сонные артерии продолжала выделяться кровь, оставшаяся в кровеносной системе. Спустя четыре минуты лицо стало совсем бледным, верхние веки полузакрыты, челюсти сжаты не так крепко, как прежде.
Раздражение рассеченных поверхностей спинного мозга не вызывало рефлекторных движений ни в туловище, ни на лице. В течение двадцати минут ничего не менялось; затем началось вскрытие трупа. Налицо были признаки застарелого плеврита и алкоголизма. Отмечалось активное сердцебиение. При вскрытии перикарда желудочки и предсердия продолжали пульсировать в течение двадцати пяти минут; первые затем перестали биться, но предсердия продолжали пульсировать еще сорок минут. Таким образом, сердце билось в течение часа после обезглавливания. Затем его камеры были вскрыты: отмечено выраженное напряжение левого желудочка и расслабление правого. По краям левого легкого наблюдалась эмфизема, что отмечается практически во всех случаях смерти после гильотинирования. В сосудах твердой мозговой оболочки присутствовали пузырьки газа, а в субарахноидальном пространстве — значительно большее количество воздуха. Гильотинный нож прошел через нижнюю часть четвертого шейного позвонка» [2].
5.2. Патофизиология спинальных автоматизмов
Хорошо известно, что спонтанные движения и рефлексы могут возникать у людей, умерших в результате СГМ. Эти движения, возникающие из нейронов спинного мозга, не исключают диагноза СГМ. К спинномозговым рефлексам относятся подошвенный рефлекс, сухожильно-мышечные рефлексы при сгибании-разгибании, сгибание пальцев в ответ на постукивание. Напряжение мышц передней брюшной стенки при лапаротомии наблюдается у 60% ПД [3]. В прошлом смерть всегда была синонимом неподвижности, но концепция СГМ привела к эволюции этого понятия по причине описания различных типов движений при СГМ.
В 1982 г. Medel et al. сообщили о наблюдении у 28-летнего пациента, умершего вследствие ОНМК, спонтанных разгибательных движений обеих верхних конечностей с последующим сложением рук в позе молящегося, закончившихся отведением и опусканием верхних конечностей вдоль туловища. Кроме того, у умершего наблюдались сгибательные и разгибательные движения нижних конечностей, а также движения, напоминающие ходьбу [4]. Такие проявления могут быть обусловлены вызыванием сухожильных рефлексов конечностей или сгибанием шеи. Ropper опубликовал данные о 5 наблюдениях «классического симптома Лазаря» (сгибание и приведение обеих верхних конечностей к туловищу, плечевое отведение, поднятие рук над грудной клеткой и сгибание шеи) у доноров с СГМ и сохраненным кровообращением во время прохождения теста апноэтической оксигенации при отключении аппарата ИВЛ [5]. Подобные эпизоды отмечались не только в условиях гипоксии, но и при значительном повышении системного АД, сопровождающегося также тахикардией и покраснением лица [6, 7].
По сообщениям Christie et al. [8], Wu и Balaguer [9], голова также может участвовать в спонтанных движениях, поскольку в их осуществлении принимают участие грудино-ключично-сосцевидная, трапециевидная и передние позвоночные мышцы, а задействованными нервами являются добавочный нерв (XI пара черепных нервов) и длинные ветви плечевого сплетения: С1–С2 для грудино-ключично-сосцевидной мышцы, шейная петля (ansa cervicalis) и спинномозговой добавочный нерв от корешков С3 –С4 для трапециевидной мышцы, С2 и С7 — для передних позвоночных мышц. В результате становится понятным, что движения головы регулируются в первую очередь спинномозговой иннервацией.
При обследовании 107 пациентов, умерших в результате СГМ, Saponisk et al. отметили спинальные автоматизмы у 40–50% умерших с сохраненным кровообращением [10]. В табл. 5.1 перечислены описанные в литературе спонтанные движения у пациентов, умерших в результате СГМ.
Сгибательно-разгибательные подошвенные рефлексы |
Феномен тройного сгибания |
Брюшные рефлексы |
Кремастерный рефлекс |
Рефлексы, возникающие при сгибании шеи |
Изолированные сгибания-отдергивания верхних конечностей |
Одностороннее разгибание-пронация |
Асимметричное опистотоническое положение тела |
Сгибание I пальца стопы |
Миоклонус |
Симптом Лазаря |
Движения, напоминающие дыхательные, без изменения дыхательного объема |
Сокращения квадрицепсов |
Реакция на открытие глаз |
Движения нижних конечностей, имитирующие повседневную деятельность (ходьба, бег) |
Лицевая миокимия (псевдофасцикуляции) |
Существует большое количество объяснений рефлекторных движений у пациентов, умерших в результате СГМ, однако механизмы, лежащие в основе этих спонтанных движений, продолжают оставаться неясными.
Рефлекторные движения возникают в спинном мозге, начиная с метамера С1 , включают в себя переменное число нижележащих метамеров. Патофизиологическое объяснение двигательных автоматизмов продолжает существовать на уровне гипотезы. Механизм, показанный на рис. 5.1, является вполне разумным объяснением феномена рефлекторных движений при СГМ: 1) прекращение контроля филогенетически более поздних структур над более архаичным спинным мозгом; 2) насыщение нейронов спинного мозга кислородом за счет проведения ИВЛ и сохранения кровообращения; 3) устранение «шока спинного мозга» (spinal cord shock) и восстановление функции спинальных нейронов с последующим возникновением спинальных автоматизмов.

5.3. Анестезиологическое обеспечение эксплантации органов
Согласно выпущенным в июне 1999 г. рекомендациям Общества интенсивной терапии (Великобритания) по анестезиологическому пособию, во время выполнения эксплантации донорских органов «пациенты, умершие в результате смерти ствола мозга, не нуждаются в обезболивании или седации <…>» [11]. Однако во время проведения операции необходимо использование средств, влияющих на нервно-мышечную передачу (миорелаксантов), с целью предотвращения рефлекторного сокращения мышечных волокон, а повышение системного АД следует купировать нитропруссидом натрия или таким ингаляционным анестетиком, как изофлюран. Известно, что подъем системного АД нередко наблюдается у ПД при выполнении стернолапаротомии, в результате чего может потребоваться коррекция дозы препаратов для инотропной поддержки кровообращения донора. Повышение системного АД и тахикардия, в определенных случаях сопровождающие эксплантацию донорских органов, требуют интраоперационного применения препаратов, позволяющих купировать данную симптоматику. По данным Wetzel et al., начало мультиорганной эксплантации может способствовать повышению системного АД на 31 мм рт.ст. и увеличению ЧСС в среднем на 23 в минуту [12]. Такое влияние на системное АД и ЧСС, вероятнее всего, обусловлено стрессовой реакцией организма ПД, реализующейся на уровне спинного мозга. Однако до настоящего времени отсутствуют данные исследований интраоперационной электроэнцефалографии для подтверждения этого мнения [13]. Резюмируя вышеизложенное, анестезиологическое пособие при эксплантации необходимо для поддержания гемодинамической стабильности ПД, осуществления блокады нервно-мышечной передачи, а также, возможно, для ишемического прекондиционирования донорских органов [14].
Анестезиологическое пособие у доноров, умерших в результате СГМ, с сохраненным кровообращением применяется не с целью обезболивания, а для стабилизации системного АД, ЧСС и улучшения микроциркуляции за счет блокады вегетативных рефлексов.
5.4. Заголовки в средствах массовой информации
В настоящее время несложно найти статьи в средствах массовой информации, в которых ПД описывается как человек, ожидающий, когда его выпишут. Читатели наверняка будут шокированы, прочитав, что непосредственно перед «казнью» такой донор неожиданно и чудесным образом выздоровел. Именно поэтому для тех, кто каждый день работает в сфере донорства и трансплантации органов, не редкость читать сенсационные заголовки вроде: «Мальчик, вернувшийся из мертвых: специалисты заявили, что после такой автокатастрофы для подростка нет надежды выжить. Его родители не верили… У его потрясенных родителей даже испросили согласие на посмертное донорство органов» [15]; «Пациент, которого признали умершим, чувствует себя великолепно» [16]; «Признанный пригодным для донорства органов, 21-летний пациент пришел в себя и находится в удовлетворительном состоянии» [17]; «Пациент в больнице города Сиракузы очнулся перед изъятием органов» [18]. В последнем сообщении «врачи больницы города Сиракузы едва не приступили к операции по изъятию органов у живой женщины, очнувшейся на операционном столе, несмотря на указания медсестер, что она жива» [18]. Ниже приводится краткое изложение данного случая. У пациентки C.S.B., 41-летней женщины, после приема (что выяснилось позднее) алпразолама, дифенгидрамина и миорелаксанта развилась глубокая кома. После констатации СГМ родственник женщины дал согласие на посмертное донорство органов и отключение ее от аппарата ИВЛ. За сутки до начала эксплантации медсестра заметила непроизвольное сгибание пальцев ног при оценке подошвенного рефлекса. Этот и несколько других последовавших за ним признаков были проигнорированы врачами, а перед началом операции медсестра видела движения крыльев носа женщины, словно она пыталась дышать независимо от аппарата ИВЛ. Также были замечены движения губ и языка женщины. Несмотря на указанные признаки, во врачебной медицинской документации не было данных о движениях, и в операционной, перед началом эксплантации, женщина открыла глаза и увидела яркий свет лампы, висящей над ней. Впоследствии женщина была выписана из больницы после двухнедельного пребывания. Важно отметить, что ни сама женщина, ни ее родственники не подали иска против больницы и ее персонала. Тем не менее Департамент здравоохранения штата Нью-Йорк оштрафовал больницу на 6 тыс. долларов, а также распорядился нанять на работу консультанта для пересмотра программы обеспечения качества работы учреждения и строго выполнять рекомендации этого консультанта, а также нанять на работу в качестве консультанта врача-невролога с целью обучения персонала больницы процедуре диагностики СГМ [18]. Произошедшее в Сиракузах было действительно исключительным явлением, главным образом из-за невнимательности врачей, поставивших совершенно неправильный диагноз СГМ. Несмотря на случившееся в Сиракузах, не зарегистрировано ни одного случая «пробуждения» или «нахождения в удовлетворительном состоянии» умерших в результате СГМ. Более того, необходимо упомянуть о полном несоответствии понятий комы и вегетативного состояния пациентов, что зачастую встречается в средствах массовой информации и существенно препятствует развитию посмертного органного донорства.
Вегетативное состояние — это клиническое состояние полного отсутствия осознания пациентом себя (своей личности) и окружающей среды. При этом у пациентов сохраняются циклы сна и бодрствования, а также отмечается полное или частичное сохранение вегетативных функций гипоталамуса и ствола мозга. Таким образом, человек в вегетативном состоянии не имеет устойчивых, воспроизводимых, целенаправленных или произвольных поведенческих реакций на визуальные, слуховые, тактильные или болевые раздражители. Отсутствуют признаки языкового понимания или выражения, наблюдается недержание мочи и кала. Однако у пациента могут сохраняться спонтанные, непроизвольные движения за счет сохраненных участков церебральной и спинальной активности [21]. Вегетативное состояние определяется как стойкое, если оно продолжается более 4 нед. Его причинами являются тяжелые ЧМТ/ОНМК, различные нейродегенеративные и метаболические заболевания. Поскольку у пациентов в стойком вегетативном состоянии сохранены функции промежуточного мозга и ствола мозга, они могут совершать самостоятельные дыхательные движения, открывать и закрывать глаза, однако реакция на внешние, в том числе словесные, раздражители отсутствует. Таким образом, именно путаница в понятиях СГМ и стойкого вегетативного состояния и создает сенсационные заголовки в средствах массовой информации (табл. 5.2).
Мальчик, вернувшийся из мертвых: специалисты заявили, что после такой автокатастрофы для подростка нет шансов выжить. Его родители не верили… У его потрясенных родителей даже испросили согласие на посмертное донорство органов [15] |
Пациент, которого признали умершим, чувствует себя великолепно [16] |
Признанный пригодным для донорства органов, 21-летний пациент пришел в себя и находится в удовлетворительном состоянии [17] |
Пациент в больнице города Сиракузы очнулся перед изъятием органов [18] |
Le donneur d’organes n’était pas mort (Донор органов не был мертв) [19] |
Pronto per l’espianto, chiede una sigaretta (Донор перед изъятием попросил закурить) [20] |
Литература
-
Descartes R. (1637). Discourse on the method. Oxford University Press, Oxford, 2006.
-
Regnard P., Loye P. (1887). Death by decapitation // BMJ. Vol. ii. P. 195.
-
Conci F. et al. Viscero-somatic and viscero-visceral reflexes in brain death // J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 1986. Vol. 48. P. 695–698.
-
Mandel S., Arenas A., Scasta D. Spinal automatism in cerebral death // N. Engl. J. Med. (Letter). 1982. Vol. 307. P. 501.
-
Ropper A.H. Unusual spontaneous movement in brain-dead patients // Neurology. 1984. Vol. 34. P. 1089–1092.
-
Jordan J.E., Dyess E., Cliett J. Unusual spontaneous movements in brain-dead patients // Neurology (Letter). 1985. Vol. 35. P. 1082.
-
Heytens L., Verlooy J., Gheuens J., Bossaert L. Lazarus sign and extensor posturing in a brain-dead patient // J. Neurosurg. 1989. Vol. 71. P. 449–451.
-
Christie J.M., O’Lenic T.D., Cane R.D. Head turning in brain death // J. Clin. Anesth. 1996. Vol. 8. P. 141–143.
-
Wu Y., Balaguer P.O. Spontaneous and reflex head turning in brain death // Crit. Care. 2013. Vol. 17. P. 440.
-
Saponisk G., Maurino J., Saizar R., Bueri J.A. Spontaneous and reflex movements in brain death // Am. J. Med. 2005. Vol. 118. P. 311–314.
-
Morgan G., Morgan V., Smith M. Donations of organs for transplantation. The management of the potential organ donor. A manual for the establishment of local guidelines. The Alden Group, Intensive Care Society, Oxford, 1999.
-
Wetzel R.C., Setzer N., Stiff J.L. et al. Hemodynamic responses in brain dead organ donor patients // Anesth. Analg. 1985. Vol. 64. P. 125–128.
-
Young P.J., Matta B.F. Anaesthesia for organ donation in the brainstem dead: why bother? // Anaesthesia. 2000. Vol. 55. P. 105–106.
-
McKeown D.W., Bonser R.A., Kellum J.A. Management of the heart-beating brain-dead organ donor // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, suppl. 1. P. I96–I107.
-
Eccles L. The boy who came back from the dead: expert said that crush teen was beyond hope. The Daily Mail on line (Apr 24, 2012).
-
Levy M. and agencies. Man who was declared dead feels ‘pretty good’. The Telegraph (24 Mar, 2008).
-
Donaldson James S. Poised to donate organs, 21-year-old emerges from coma // ABC news. 2011. URL: http://abcnews.go.com/Health/arizona-accident-victimemerges-coma-poised-donate-organs/story?id=15208351
-
Golgowsky N. Syracuse hospital patient awakens just before organs were to be harvested // New York Daily News (July 9, 2013).
-
Nau J.-Y., Le Monde. Le donneur d’organes n’était pas mort. 2008. P. 11.
-
Il Giorno. Pronto per l’espianto, chiede una sigaretta. 1999. P. 1.
-
The Multi-Society Task Force on PVS Medical aspects of the persistent vegetative state // N. Engl. J. Med. 1994. Vol. 330. P. 1499–1508.
Глава 6. Доноры со смертью мозга: коррекция гемодинамических и метаболических нарушений. Антонино М. Гранде, Паоло Асени
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it P. Aseni Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy
Ключевые тезисы
-
Результаты трансплантации органов от прижизненных доноров значительно лучше в сравнении с трансплантацией органов от ПД.
-
Такое различие напрямую связано с известными физиологическими нарушениями в организме донора с СГМ, при недостаточной коррекции которых необратима остановка кровообращения.
-
Недостаточная коррекция системного воспалительного ответа и гормональных нарушений в организме донора оказывает отрицательное влияние на посттрансплантационную функцию и развитие отторжения донорских органов.
-
Имеющиеся при СГМ патофизиологические нарушения прогрессируют вследствие введения различных лекарственных средств и развития дисфункции отдельных органов.
-
Нарушения системной гемодинамики во время кондиционирования и эксплантации могут поставить под угрозу функциональную пригодность донорских органов для трансплантации.
-
Повышение ВЧД способствует компенсаторной артериальной гипертензии, за которой следуют активация симпатической системы и развитие «катехоламинового шторма», сопровождающегося увеличением сердечного выброса, ЧСС и системного сосудистого сопротивления.
-
Разработаны алгоритмы ведения потенциального донора в некоторых распространенных клинических ситуациях.
-
По вопросам же коррекции метаболических, кислотно-основных, водно-электролитных нарушений, предотвращения необратимого ухудшения функции легких ПД единого мнения в среде профессионального сообщества не существует.
Результаты трансплантаций органов от прижизненных доноров значительно лучше в сравнении с трансплантациями органов, полученных от доноров, умерших в результате СГМ или необратимой остановки кровообращения [1–3]. Такое различие напрямую связано с известными физиологическими нарушениями в организме донора с СГМ, при недостаточной коррекции которых развивается необратимая остановка кровообращения. Кроме того, недостаточная коррекция системного воспалительного ответа и гормональных нарушений в организме ПД оказывают отрицательное влияние на посттрансплантационную функцию и развитие отторжения донорских органов [4–7].
Развившиеся при СГМ патофизиологические нарушения прогрессируют вследствие введения различных лекарственных средств и развития дисфункции отдельных органов. В табл. 6.1 приведены основные физиологические нарушения у доноров, умерших в результате СГМ.
Патофизиологическое нарушение | Возможные причины |
---|---|
Гипотермия |
Повреждение гипоталамуса, снижение интенсивности метаболизма, вазодилатация и потеря тепла |
Гипотензия |
Вазоплегия, гиповолемия, снижение коронарного кровотока, дисфункция миокарда |
Несахарный диабет |
Повреждение задней доли гипофиза |
Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания |
Высвобождение тканевого фактора (тканевого тромбопластина, фактора свертывания крови III), коагулопатия, стимуляция агрегации тромбоцитов катехоламинами |
Дисфункция миокарда |
«Катехоламиновый шторм», повреждение миокарда, снижение коронарного кровотока |
Отек легких |
Переполнение кровью малого круга кровообращения, повреждение легочных капилляров |
Электролитные нарушения |
Изменение проницаемости клеточной мембраны, несахарное мочеизнурение |
Гипергликемия |
Снижение концентрации инсулина, развитие тканевой инсулинорезистентности |
Дефицит тиреотропного гормона |
Необратимое повреждение гипоталамуса и гипофиза |
Дисфункция легких |
Риск развития пневмонии, аспирация содержимого желудка, нейрогенный отек легких |
6.1. Нарушения гемодинамики и их коррекция
Необратимое повреждение центральной нервной системы приводит к тяжелым системным нарушениям в организме донора [8]. Патофизиологический механизм СГМ заключается в следующем. Головной мозг, ствол мозга, спинной мозг, спинномозговая жидкость и кровь, находящиеся внутри черепа — закрытой костной структуры — и позвоночного канала, образуют ригидную систему (за исключением межпозвонковых пространств, обладающих незначительной мобильностью). Суммарный объем внутричерепного содержимого в норме составляет около 1450 мл, распределенных следующим образом: головной мозг — 1300 мл, спинномозговая жидкость — 65 мл и кровь — 110 мл.
Давление внутри твердой мозговой оболочки и черепа называется внутричерепным давлением и в норме составляет 5–15 мм рт.ст. [9, 10]. Согласно гипотезе Монро–Келли, сумма внутричерепных объемов (мозг, ликвор, кровь) должна оставаться постоянной [11, 12]. А значит, для предотвращения роста ВЧД увеличение любого из этих компонентов должно быть уравновешено уменьшением другого. Церебральное перфузионное давление (ЦПД) зависит от показателей среднего системного АД (САД) и ВЧД:ЦПД=САД–ВЧД,где САД = 1/3 систолического АД + 2/3 диастолического АД [13], так как диастола по продолжительности составляет 2/3 сердечного цикла. Достаточным для адекватной перфузии коронарных артерий, головного мозга и почек является показатель САД, равный 60.
В соответствии с приведенной формулой снижение ЦПД возможно за счет увеличения ВЧД или уменьшения САД. Причиной повышения ВЧД служит увеличение внутричерепного объема, равномерно распределенного в полости черепа. В норме колебания ВЧД компенсируются, а церебральный кровоток остается адекватным при ЦПД в пределах 50–150 мм рт.ст. Однако при резком увеличении внутричерепного объема происходит значительное повышение ВЧД. Благодаря механизмам гомеостаза компенсация повышения ВЧД осуществляется за счет подъема САД, но данные механизмы становятся неэффективными при снижении уровня ЦПД менее 50 мм рт.ст., что ведет к ишемии головного мозга. При снижении ЦПД с целью обеспечения адекватного мозгового кровотока происходит его ауторегуляция, способствующая расширению церебральных сосудов. Однако стойкая вазодилатация может привести к увеличению ВЧД, которое, в свою очередь, вызывает падение ЦПД («каскад вазодилатации», vasodilatation cascade). Соответственно, рост ЦПД вызывает церебральную вазоконстрикцию, сопровождающуюся снижением ВЧД.
Повышение ВЧД в конечном итоге вызывает ишемию различных отделов головного мозга, проявляющуюся следующими патофизиологическими нарушениями:
-
ишемия среднего мозга сопровождается активацией парасимпатической системы и развитием брадикардии;
-
ишемия варолиева моста ведет к резкой активации симпатической системы и артериальной гипертензии (рефлекс Кушинга);
-
нарушение кровоснабжения продолговатого мозга усиливает активацию симпатической системы одновременно с угнетением барорецепторных рефлексов. Симпатическая стимуляция приводит к высоким концентрациям циркулирующих эндогенных катехоламинов, развивается «катехоламиновый шторм» («вегетативный шторм», vegetative storm), характеризующийся вазоконстрикцией, артериальной гипертензией, тахикардией и отрицательным кислородным балансом в миокарде [14]. Спазм коронарных артерий снижает поступление кислорода в миокард, что приводит к субэндокардиальной ишемии, миолизу, некрозу сократительных белков, субэндокардиальным кровоизлияниям, отеку и лейкоцитарной инфильтрации миокарда.
СГМ зачастую характеризуется возникновением аритмий и нарушений проводимости миокарда, которые являются прямым следствием снижения тонуса блуждающего нерва, чрезмерной активации симпатической системы, ишемии миокарда или электролитных нарушений, вызванных увеличением объема вводимых лекарственных препаратов. Кроме того, при СГМ более чем в 80% случаев развивается несахарный диабет вследствие утраты функции задней доли гипофиза.
Нарушения гемодинамики у донора во время кондиционирования и эксплантации могут поставить под угрозу функциональную пригодность донорских органов для трансплантации. Повышение ВЧД вызывает компенсаторную артериальную гипертензию [15], за которой следует резкая активация симпатической системы и развитие «катехоламинового шторма» [16, 17], характеризующегося повышением сердечного выброса, ЧСС и системного сосудистого сопротивления. Происходит централизация кровообращения с переполнением по малому кругу, увеличение постнагрузки сердца, висцеральная и миокардиальная ишемия. Тяжесть нарушений связана со скоростью наступления СГМ. Так, в экспериментальном моделировании СГМ на собаках было продемонстрировано, что концентрация циркулирующего эндогенного адреналина при резком повышении ВЧД увеличивается более чем в 1000 раз. Постепенный подъем ВЧД приводил к снижению концентрации катехоламинов (в 200 раз), а также к уменьшению ишемического повреждения миокарда (93% и 23% в группах резкого и постепенного повышения ВЧД соответственно) [18]. У людей, умерших в результате СГМ, повреждения миокарда отмечаются в 20–25% случаев, а миокардиальная дисфункция по результатам электрокардиографии регистрируется в 40% наблюдений [19, 20]. После «катехоламинового шторма» происходят резкое падение симпатического тонуса и периферическая вазодилатация, которые при отсутствии медикаментозной коррекции приводят к недостаточной перфузии и ишемии во всех потенциально пригодных для трансплантации донорских органах.
В этот период рекомендуется регулярное определение уровня тропонина, имеющего важное значение в оценке потенциального донора. Повышение уровня тропонина указывает на повреждение миокарда и служит предиктором вероятной дисфункции трансплантата сердца в посттрансплантационном периоде, поэтому данный показатель всегда следует учитывать при выборе реципиентов: уровень тропонина, значительно превышающий норму, является фактором риска развития посттрансплантационной дисфункции, особенно в сочетании с длительным временем холодовой ишемии (более 4 ч) [21].
При гемодинамической нестабильности и невозможности поддержания адекватного системного АД «агрессивное» ведение потенциального донора, включающее массивную инфузионную терапию, направленную на восстановление и поддержание адекватного ОЦК, ориентировано на целевые показатели «правила 100» (rule of 100, табл. 6.2): 1) систолическое АД >100 мм рт.ст.; 2) темп диуреза >100 мл/ч; 3) PaO2 >100 мм рт.ст.; 4) содержание гемоглобина >100 г/л [22]. Для достижения и поддержания удовлетворительного ЦВД (8–10 мм рт.ст.) восполнение ОЦК следует проводить с помощью изотонических растворов кристаллоидов и коллоидов, свежезамороженной плазмы и эритроцитарной массы. В случае потенциального донорства легких необходимо избегать инфузии коллоидных растворов на основе гидроксиэтилкрахмала. Мониторинг сатурации кислородом гемоглобина центральной и смешанной венозной крови обязателен у всех потенциальных доноров с нестабильной гемодинамикой. Терапию следует назначать и подбирать с учетом целевого уровня SvO2 не менее 60%.
Систолическое АД более 100 мм рт.ст. |
ЧСС менее 100 в минуту |
Концентрация гемоглобина более 100 г/л |
Темп диуреза более 100 мл/ч |
PaO2 более 100 мм рт.ст. |
6.1.1. Гипотензия
Уровень САД менее 60 мм рт.ст. определяется как гипотензия, при развитии которой органы потенциального донора подвергаются большему риску дисфункции, чем при гипертензии [23]. Гипотензия может быть следствием как патологических состояний, приведших к развитию шока, так и СГМ, поскольку утрата функций вазомоторных центров головного мозга вызывает вазодилатацию, снижение сократительной способности миокарда и гиповолемию, ассоциированную с сахарным диабетом.
Причинами развития гипотензии во время эксплантации могут являться и некоторые интраоперационные приемы: 1) продолжительное отведение кверху правой доли печени может вызвать пережатие нижней полой вены; 2) перекрут брыжейки тонкой кишки при выполнении приема Каттеля–Брааша вместе с сосудами, расположенными в ней, ведет к депонированию венозной крови в кишечнике и снижению ОЦК, провоцируя развитие гипотонии. Именно поэтому для предотвращения скопления большого количества венозной крови в органах брюшной полости следует избегать или ограничивать продолжительность перечисленных приемов при эксплантации органов у доноров с нестабильной гемодинамикой.
6.1.1.1. Терапия
Перед началом эксплантации следует проверить медицинскую документацию донора с целью исключения постгеморрагической анемии, развившейся после острого кровотечения: оценить показатели гемоглобина, гематокрита и коагулограммы. При гематокрите менее 28% необходимо переливание крови и ее компонентов (эритроцитарной массы, свежезамороженной плазмы).
При наличии полиурии необходима ее срочная коррекция.
Следует также проверить медицинскую документацию донора на предмет выявления тяжелого инфекционного процесса, введения лекарственных средств, различных аллергических реакций, тампонады сердца (по результатам ЭхоКГ) и пневмоторакса (по результатам обзорной рентгенографии органов грудной клетки). Для исключения ишемического поражения или инфаркта миокарда необходимо регулярное выполнение электрокардиографии.
В случае сохранения нестабильной гемодинамики у донора, несмотря на достижение целевого уровня ЦВД 8–10 мм рт.ст. по итогам восполнения ОЦК, следует рассмотреть возможность имплантации катетера Сван–Ганса, благодаря чему возможна оценка таких гемодинамических показателей, как давление в легочной артерии, ДЗЛА, сердечный выброс, сердечный индекс, системное сосудистое сопротивление (ССС), индекс ударной работы левого желудочка, легочного сосудистого сопротивления. Определение перечисленных показателей гемодинамики дает специалисту возможность ювелирного подбора и титрования наиболее рациональной терапии.
Далее будут рассмотрены алгоритмы ведения потенциального донора в определенных общеклинических условиях.
-
У донора развилась гипотензия (САД менее 60 мм рт.ст.):
-
контроль возможных источников кровотечения (наружного, желудочно-кишечного тракта, мочевыводящих путей, брюшной полости);
-
при низкой преднагрузке сердца по данным катетера Сван–Ганса (ЦВД 10 мм рт.ст., ДЗЛА 15 мм рт.ст., сердечный индекс менее 3,2 л/мин/м2, индекс ударной работы левого желудочка 50 гм×м/м2, ССС более 1800 дин×с×см–5) следует начинать инфузию вазодилататоров одновременно с умеренной инотропной поддержкой допамином (Дофамином♠). Не рекомендуется использование вазопрессоров [норэпинефрин (Норадреналин♠)], поскольку повышение периферического сосудистого сопротивления может вызвать тяжелую гипотензию и значительно снизить перфузию с развитием тяжелых повреждений органов брюшной полости, особенно кишечника и печени;
-
при низком ССС (менее 1100 дин×с×см–5) препаратами выбора являются вазопрессоры [норэпинефрин (Норадреналин♠), фенилэфрин], титрование которых проводится для достижения и поддержания целевого САД более 60 мм рт.ст.;
-
при низком индексе ударной работы левого желудочка (< 35 гм×м/м2) следует применять позитивные инотропные препараты [допамин (Дофамин♠), добутамин]. При достижении уровня САД более 60 мм рт.ст. необходимо как можно скорее прекратить вазоактивную терапию, оказывающую негативное влияние на перфузию органов брюшной полости [22].
-
-
Органы грудной клетки ПД признаются непригодными для последующей трансплантации при следующих показателях гемодинамики: ДЗЛА >25 мм рт.ст., сердечный индекс <2,2 л/мин/м2, индекс ударной работы левого желудочка < 45 гм×м/м2, ССС >2000 дин×с×см–5. Эти показатели соответствуют наихудшему прогнозу у пациента, находящегося в ОРИТ [23, 24].
-
В случае развития у донора гипотензии при ЦВД <10 мм рт.ст. и ДЗЛА <12 мм рт.ст. необходимы следующие мероприятия:
-
при низких ЦВД, ДЗЛА и высоком ССС следует увеличить объем инфузии для восполнения ОЦК (табл. 6.3), оптимизировать преднагрузку миокарда, а также избегать высоких доз вазопрессорных препаратов [норэпинефрина (Норадреналина♠), эпинефрина (Адреналина♠)] при высоком ССС.
-
-
Цель не достигнута — применение стартового протокола вазопрессорной поддержки (табл. 6.4).
-
Цель достигнута — титрование вазопрессорного препарата до минимальной эффективной дозы.
-
Цель не достигнута (САД по-прежнему менее 60 мм рт.ст.) — выполнение ЭхоКГ, при низком или нормальном значении ССС — оценка необходимой дозы вазопрессина℘ и/или эпинефрина (Адреналина♠).
Отношение ЦВД/ДЗЛА, мм рт.ст. | Объем инфузии, см 3 |
---|---|
Менее 5 |
1000 |
5–10 |
500 |
10–15 |
250 |
Более 15 |
0 |
Начальная доза допамина (Дофамина♠) 5 мкг/кг в минуту |
Титрование дозы допамина (Дофамина♠) до достижения целевого САД (более 60 мм рт.ст.) |
Максимальня доза допамина (Дофамина♠) 10 мкг/кг в минуту |
Добавление норэпинефрина (Норадреналина♠) в дозе 0,05 с последующим увеличением до 0,15–0,2 мкг/кг в минуту (в случае признания сердца донора пригодным для трансплантации) |
Титрование дозы норэпинефрина (Норадреналина♠) до максимальной 2,0 мкг/кг в минуту (в случае признания сердца донора непригодным для трансплантации) |
Следует помнить, что органы, полученные от доноров с расширенными критериями, в большей степени подвержены риску развития посттрансплантационных осложнений (см. главу 3), однако дисфункция донорских органов может наблюдаться и до начала эксплантации вследствие причин, указанных в табл. 6.5.
1. Предсуществующая патология органа |
2. Хронические сопутствующие заболевания донора |
3. Интенсивная терапия при повреждении головного мозга |
4. Патофизиологические нарушения при СГМ |
Согласно пуктам 1, 2 табл. 6.5, состояние потенциального донора до возникновения у него патологии, приведшей к СГМ, коррелирует с функцией различных органов, что подчеркивает важность обследования и оценки органов потенциального донора на предмет пригодности для последующей трансплантации. Из пункта 3 следует, что интенсивная терапия при повреждении головного мозга также может оказывать определенное влияние на функцию органов потенциального донора, поскольку для поддержания адекватного церебрального кровотока применяются следующие лекарственные средства:
-
седативные препараты (барбитураты, пропофол) назначаются с целью снижения церебрального метаболизма за счет индуцирования фармакологической комы и особенно эффективны у пациентов с гиповолемией. Назначение седативных препаратов зачастую сопровождается гипотензией, что требует вазопрессорной поддержки кровообращения, которая, в свою очередь, способствует развитию субэндокардиальной ишемии [25];
-
осмотическая терапия отека головного мозга может стать причиной острой сердечно-сосудистой и дыхательной недостаточности [26];
-
инотропные препараты, назначаемые с целью повышения САД, оказывают повреждающее действие на миокард [27].
6.1.2. Гипертензия
После развития СГМ артериальная гипертензия встречается редко, но может возникнуть и до установления этого диагноза. Пограничными целевыми значениями САД являются уровни менее 90 и более 60–65 мм рт.ст.
6.1.2.1. Терапия
Следует уменьшить дозировку или прекратить введение инотропных и/или вазопрессорных препаратов. В случае стойкого повышения САД более 95 мм рт.ст. в течение 30 мин после диагностики СГМ необходимо начинать антигипертензивную терапию: лабеталол в дозе 20 мг внутривенно болюсно с последующим повторным введением той же дозы через 20 мин под контролем ЧСС. Если после двукратного введения лабеталола САД все еще остается повышенным, назначается никардипин с титрованием дозы в пределах от 5 до 15 мг/ч.
6.2. Гормональные нарушения и заместительная терапия
При развитии ишемического поражения гипофиза и гипоталамуса происходит снижение уровня трийодтиронина, кортизола/адренокортикотропного гормона, инсулина и аргинин-вазопрессина. В некоторых экспериментальных и клинических исследованиях сообщалось о возможности быстрого восстановления функции миокарда при использовании заместительной гормональной терапии, что способствовало трансплантации большего количества органов [28, 29]. В ретроспективное эпидемиологическое исследование Mi et al. из Координационного центра программы совместных исследований (Cooperative Studies Program Coordinating Center, штат Мэриленд, США) с использованием данных Объединенной сети по распределению органов были включены более 71 570 потенциальных доноров за период с 1 января 2000 г. по 31 декабря 2009 г. [30]. Группу сравнения составили 40 124 потенциальных донора, умерших в результате необратимой остановки кровообращения до начала процедуры эксплантации, для которых были доступны полные сведения о гормональной терапии, если таковая проводилась. Было установлено, что тиреоидные гормоны (трийодтиронин или Т4), глюкокортикостероиды и антидиуретический гормон играют важную роль в ведении потенциального донора, а комбинация трийодтиронина, глюкокортикостероидов, антидиуретического гормона и инсулина способствует получению большего количества органов, пригодных для трансплантации. Однако при трансплантации поджелудочной железы введение инсулина оказывало отрицательное влияние на посттрансплантационные результаты. Кроме того, было продемонстрировано, что применение гормональной терапии, вне зависимости от используемых препаратов, способствовало получению статистически большего количества (более 80%, p < 0,0001) пригодных трансплантатов печени в сравнении с любым другим органом (почки и легкие рассматривались как один орган). Таким образом, по-видимому, печень является донорским органом, наиболее устойчивым к патофизиологическим нарушениям, возникающим в результате СГМ. Кроме того, было установлено, что глюкокортикостероиды не всегда оказывают положительное влияние на пригодность донорского сердца для трансплантации, возможно, потому, что тиреоидные гормоны особенно эффективны в увеличении энергетических запасов миокарда и в уменьшении системной воспалительной реакции, в отличие от менее выраженного эффекта применяемых с этой целью глюкокортикостероидов [29].
6.3. Коррекция нарушений гликемического гомеостаза
Контроль уровня глюкозы сыворотки крови потенциального донора необходимо осуществлять каждые 4 ч, а при возможности использования глюкометра — каждые 2 ч, так как повреждающее воздействие на донорские органы оказывает как гипо-, так и гипергликемия [31].
6.3.1. Гипогликемия
Коррекция уровня глюкозы сыворотки крови менее 75 мг/дл (4,2 ммоль/л) проводится путем введения 50% раствора декстрозы (Глюкозы♠) (D50), содержащих в одном шприце 25 г декстрозы (Глюкозы♠) в 50 мл воды для инъекций (0,5 г/мл). В случае отсутствия D50 следует использовать 250 мл раствора с альтернативной концентрацией, но постоянным (25 г) содержанием декстрозы (Глюкозы♠). Контроль уровня гликемии проводится спустя 30 мин, при сохраняющемся снижении уровня глюкозы менее 75 мг/дл следует повторно ввести D50.
6.3.2. Гипергликемия
Причинами гипергликемии во время кондиционирования потенциального донора являются парентеральное введение растворов декстрозы (Глюкозы♠) и повышение уровня эндогенных «стрессовых» гормонов (кортизол, глюкагон, катехоламины), вызывающих инсулинорезистентность.
Коррекцию гипергликемии следует начинать при уровне глюкозы сыворотки крови более 150 мг/дл (8,3 ммоль/л). Необходимо прекратить внутривенную инфузию растворов декстрозы (Глюкозы♠), после чего начинают подкожное введение инсулина каждые 4 ч согласно алгоритму, приведенному в табл. 6.6. При гликемии более 225 мг/дл (12,5 ммоль/л) необходимо дополнительное внутривенное введение инсулина каждый час в соответствии с табл. 6.6. Если уровень глюкозы сыворотки крови, несмотря на проводимые мероприятия, сохраняется более 250 мг/дл (13,9 ммоль/л), следует начать непрерывную инфузию инсулина.
Уровень глюкозы, мг/дл | Уровень глюкозы, ммоль/л | Единицы инсулина (ЕД) |
---|---|---|
100–150 |
5,5–8,3 |
Не требуется |
151–175 |
8,4–9,7 |
7 ЕД подкожно |
176–200 |
9,8–11,1 |
12 ЕД подкожно |
201–225 |
11,2–12,5 |
16 ЕД подкожно |
Более 225 |
Более 12,5 |
Внутривенное введение инсулина |
226–250 |
12,6–13,9 |
5 ЕД внутривенно |
251–275 |
14,0–15,3 |
8 ЕД внутривенно |
276–300 |
15,4–16,7 |
10 ЕД внутривенно |
Более 300 |
Более 16,7 |
Непрерывная инфузия инсулина |
6.4. Нарушения кислотно-основного состояния и их коррекция
Мониторинг кислотно-основного состояния (КОС) донора и своевременная коррекция его нарушений имеют первоочередное значение для адекватной перфузии и получения возможно большего количества пригодных для трансплантации донорских органов.
6.4.1. Мониторинг и оценка
По результатам показателей крови возможно оценить КОС тканей, дыхательную функцию за счет выделения углекислого газа легкими, а также отношение сывороточных электролитов и белков. Нарушения КОС проявляются путем изменения рН крови. Поскольку на показатель рН венозной крови влияют множество факторов, необходимо проводить анализ артериального рН и газов артериальной крови. Артериальный рН (в норме 7,36–7,44) представляет собой отрицательный десятичный логарифм содержания ионов водорода в образце артериальной крови.
Изменение КОС артериальной крови всегда является симптомом развития каких-либо метаболических или респираторных нарушений. Важно учитывать, что нарушения, инициируемые изменением содержания PaCO2, называются респираторными; в свою очередь, метаболическими являются нарушения, инициируемые изменением концентрации бикарбонатов в плазме крови. Кроме того, нарушения КОС могут сопровождаться определенной симптоматикой, терапия которой должна быть направлена не только на коррекцию ацидоза или алкалоза, но и на установление причины дисбаланса КОС [32].
Возможные причины алкалоза [32]:
Возможные причины ацидоза:
Нарушения КОС, выявляемые на основании показателей газов артериальной крови, могут быть обусловлены респираторными и метаболическими причинами, поэтому коррекция этих нарушений должна начинаться с изменения параметров ИВЛ с опорой на корреляцию PaCO2 и pH: PaCO2 менее 35 мм рт.ст. указывает на гипер-, а PaCO2 более 45 мм рт.ст. — на гиповентиляцию легких.
Респираторный алкалоз зачастую является следствием интенсивной терапии. Поскольку в результате повреждения головного мозга отмечается резкое снижение (вплоть до полного прекращения при СГМ) церебрального кровотока, производится коррекция таких параметров ИВЛ, как дыхательный объем и частота дыхательных движений, с целью увеличения PaCO2 вследствие реакции: CO2 + H2 O → H2 CO3 → H+ + HCO3.
Ионы водорода, образующиеся в результате данной реакции, способствуют снижению рН. Элиминация СО2 из организма потенциального донора зависит от следующего соотношения: вентиляция легких = (дыхательный объем – мертвое пространство) × частоту дыхательных движений. Следовательно, увеличение мертвого пространства дыхательных путей или уменьшение дыхательного объема и/или частоты дыхательных движений способствуют повышению РаСО2 и накоплению углекислого газа в организме донора.
Изменения в тканевом метаболизме могут являться причиной развития как метаболического ацидоза, так и алкалоза. Основываясь на концентрации бикарбоната в артериальной крови, возможно оценить нарушения КОС: концентрация бикарбоната более 28 ммоль/л свидетельствует о метаболическом алкалозе, а менее 20 ммоль/л — о метаболическом ацидозе. Кроме того, избыток или дефицит оснований определяет количество необходимых кислот или оснований для нормализации pH при нормальном значении РаСО2. Базовый избыток (как и дефицит) оснований обычно равен нулю, а амплитуда этого значения указывает на выраженность метаболического дисбаланса: «+» — метаболический алкалоз, «–» — метаболический ацидоз [32].
Причиной метаболического алкалоза может быть гиповолемия, индуцированная приемом диуретиков (в частности, маннитола) для профилактики и терапии отека головного мозга. Кроме того, алкалемией сопровождается значительное снижение кислотности желудочного сока или низкое содержание калия в организме.
Для коррекции расчетного метаболического кислотно-основного дефицита можно применять соляную кислоту (HCl) или натрия гидрокарбонат (NaHCO3). В случае метаболического алкалоза количество вводимого HCl рассчитывается следующим образом: необходимый мэкв HCl = (103 – Cl− донора) × 0,5 (масса донора в кг).
При метаболическом ацидозе, который чаще отмечается у потенциальных доноров, введение NaHCO3 можно рассчитать по следующей формуле: необходимый мэкв HCO3– = (24 – HCO3– донора) × 0,4 (масса донора в кг).
Следует стараться установить и компенсировать именно причины развития метаболического алкалоза, не только вводя NaHCO3, но также корригируя содержание калия и темп диуреза донора.
Мониторинг лактата крови: следует проводить последовательные измерения уровня лактата (в норме концентрация лактата в крови составляет 1–0,5 ммоль/л). Молочная кислота является конечной точкой анаэробного распада глюкозы в тканях. Лактат выходит из клеток и транспортируется в печень, где окисляется обратно до глюкозы. В случае тканевой гипоксии молочная кислота вырабатывается в анаэробном цикле и используется в дальнейшем для производства энергии. Если организм остается в состоянии стойкой и длительной тканевой гипоксии, развивается лактат-ацидоз. Степень гиперлактатемии определяется как легкая или умеренная при концентрации лактата в крови от 2 до 4 ммоль/л, без метаболического ацидоза. Лактат-ацидоз характеризуется устойчивым высоким уровнем содержания лактата в крови (обычно более 4–5 ммоль/л) в сочетании с метаболическим ацидозом [33]. Именно поэтому при нарастании содержания лактата в крови при его динамическом определении необходимо выявить этиологию этого нарушения КОС (см. выше, Возможные причины алкалоза).
6.5. Водно-электролитные нарушения и их коррекция
6.5.1. Мониторинг и оценка
Поскольку поддержание уровня электролитов крови в пределах нормы является чрезвычайно важным аспектом ведения потенциального донора, мониторинг содержания натрия (Na+), калия (K+), хлорида (Cl−), бикарбоната (HCO3−), магния (Mg2+), фосфора (P+) и ионизированного кальция (Ca2+) должен производиться каждые 4 ч с необходимым минимальным 30-минутным временным промежутком между внутривенным введением электролитов и взятием образца крови для анализа (табл. 6.7). Общее содержание воды в организме человека (общая вода тела) включает внутриклеточную (60%) и внеклеточную (40%) жидкость. В состав внеклеточной жидкости входят интравазальный (плазма — 8% общей воды тела), интерстициальный (вокруг клеток, вне капилляров — 28% общей воды тела) и трансцеллюлярный (4% общей воды тела) компоненты [33, 34]. Ионы, глюкоза, гормоны и другие субстанции распределены в различных компонентах общей воды тела неравномерно по причине различий в проницаемости клеточных мембран, активности ионных насосов, размерах молекул, осмолярных градиентах, а также других электрохимических и гормональных факторах [34].
Na+ |
136–142 ммоль/л |
|
K+ |
3,5–5,0 ммоль/л |
|
Cl− |
96–106 ммоль/л |
|
HCO3− |
21–28 ммоль/л |
|
Mg2+ |
0,65–1,05 ммоль/л |
1,5–2,3 мг/дл |
P+ |
0,74–1,52 ммоль/л |
2,3–4,7 мг/дл |
Ca2+ |
1,15–1,27 имоль/л |
2,3–2,54 мэкв/л |
6.5.2. Коррекция нарушений натриевого баланса
У доноров, умерших в результате СГМ, чаще всего отмечаются нарушения концентрации натрия в сыворотке крови, в том числе выраженная гипернатриемия (иногда до 180 ммоль/л).
6.5.3. Гипернатриемия
При ведении потенциального донора, умершего в результате СГМ, чаще прочих встречаются полиурия и гипернатриемия, которые не только имеют важное значение в поддержании стабильной гемодинамики, но и могут оказывать влияние на результаты трансплантаций. Имеются свидетельства, что гипернатриемия у ПД способствует ухудшению результатов трансплантации печени и почек [35].
Коррекцию гипернатриемии следует начинать при повышении уровня сывороточного натрия более 150 ммоль/л. Принципы терапии гипернатриемии при полиурии (темп диуреза более 250 мл мочи/ч) см. в главе 6.5.17 («Коррекция полиурии»). При нормальном темпе диуреза необходимо введение 1 л 0,2% раствора натрия хлорида в виде быстрой инфузии под контролем темпа диуреза (объем вводимого раствора равен количеству выделяемой мочи). Все лекарственные средства вводятся после разведения в 0,45%, 0,2% растворе натрия хлорида или 5% растворе декстрозы (Глюкозы♠) (если это допустимо с точки зрения фармакокинетики). Необходимо избегать назначения диуретиков.
6.5.4. Гипонатриемия
При содержании сывороточного натрия менее 125 ммоль/л следует назначить непрерывную инфузию 3% раствора натрия хлорида (513 ммоль/л) со скоростью 30–40 мл/ч в течение 3 ч, предпочтительно через центральный венозный катетер. Все лекарственные средства вводятся по возможности после разведения в изотоническом растворе натрия хлорида (0,9% растворе натрия хлорида). За счет выполнения перечисленных назначений можно ожидать повышения уровня натрия в сыворотке крови на 10–15 ммоль/л в течение 24 ч.
Кроме того, одной из причин гипонатриемии может быть выраженная гипергликемия: при повышении уровня глюкозы крови более 16,7 ммоль/л развивается стойкое повышение осмоляльности, происходит увеличение объема внеклеточной жидкости за счет внутриклеточного компонента и снижение концентрации натрия. В таком случае необходимо проведение адекватной инсулинотерапии. Следует также помнить, что концентрация натрия в сыворотке крови, как правило, снижается на 1,6 ммоль/л при увеличении концентрации глюкозы на каждые 100 мг/дл [36].
6.5.5. Нарушения обмена калия
У ПД органов зачастую наблюдаются нарушения обмена калия, являющегося, главным образом, внутриклеточным электролитом. В отличие от достаточно редко встречающейся гиперкалиемии, гипокалиемия отмечается примерно у 90% доноров, умерших в результате СГМ.
6.5.6. Гиперкалиемия
Гиперкалиемия (более 7,0 ммоль/л), обычно ассоциированная с острым почечным повреждением, способствует нарушению работы проводящей системы сердца и развитию аритмий, включая фибрилляцию желудочков, вплоть до асистолии. К изменениям, регистрирующимся на электрокардиографии, относятся: высокие Т-волны более 5 мм (K+ 6–7 ммоль/л), невысокие широкие P-волны или отсутствие зубца P, широкий комплекс QRS (K+ 7–8 ммоль/л), синусоидальные комплексы QRST (K+ 8–9 ммоль/л), атриовентрикулярная диссоциация или желудочковая тахкардия/фибрилляция (K+ более 9,0 ммоль/л) [37]. В случае острого почечного повреждения единственным доступным методом лечения является срочное проведение процедуры гемодиализа.
При выявлении гиперкалиемии более 5,8 ммоль/л следует вначале исключить гемолиз образца крови и повторить лабораторное исследование. При подтверждении гиперкалиемии необходимо исключить из протокола терапии K+-содержащие препараты и каждый час контролировать уровень калия. Коррекция гиперкалиемии проводится внутривенным введением в течение 5–10 мин D50 [предварительно заполненный шприц, содержащий 25 г декстрозы (Глюкозы♠)] и 15 ЕД инсулина, 50 мэкв (50 мл 8,4% раствора) натрия гидрокарбоната, 20 мл 10% раствора кальция глюконата для взрослых (0,5 мл/кг для детей). Поскольку начало действия препаратов немедленное, но по продолжительности составляет всего несколько минут, необходимы контроль уровня калия каждые 1–2 ч и повторное назначение перечисленных препаратов при сохраняющейся гиперкалиемии [38, 39]. Кроме того, следует рассмотреть возможность использования катионообменных смол типа полистиролсульфоната натрия (Kayexalate, Resonium A℘, производство Sanofi-Aventis) для связывания K+ в просвете желудочно-кишечного тракта, особенно подвздошной и толстой кишки.
6.5.7. Гипокалиемия
При гипокалиемии менее 3,9 ммоль/л следует прекратить диуретическую терапию. Максимальная скорость внутривенного введения растворов для замещения ОЦК не должна превышать 20 мэкв/ч при постоянном мониторинге электрокардиографии (в экстренных ситуациях возможно увеличение скорости введения до 40 мэкв/ч):
-
K+ 3,6–3,9 ммоль/л — внутривенное введение 20 мэкв калия хлорида в течение 2 ч, предпочтительно через центральный венозный катетер;
-
K+ 3,4–3,5 ммоль/л — внутривенное введение 20 мэкв калия хлорида в течение 2 ч с последующим однократным назначением 10 мэкв в течение 1 ч;
-
K+ 3,1–3,3 ммоль/л — двукратное внутривенное введение 20 мэкв калия хлорида в течение 2 ч с повторным определением уровня калия в конце инфузии;
-
K+ 2,6–3,0 ммоль/л — двукратное внутривенное введение 20 мэкв калия хлорида в течение 2 ч с последующим однократным назначением 10 мэкв в течение 1 ч; контроль уровня калия в конце инфузии;
-
K+ 2,3–2,5 ммоль/л — трехкратное внутривенное введение 20 мэкв в течение 2 ч.
6.5.8. Нарушения обмена магния
Магний является вторым по распространенности внутриклеточным катионом после калия и четвертым по распространенности катионом организма после кальция, калия и натрия. Ионы магния необходимы для внутриклеточной жизнедеятельности, так как принимают участие в сотнях ферментативных реакций, являются важным кофактором для многих биологических процессов, а также играют важную роль в контроле активности паратиреоидного гормона.
6.5.9. Гипермагниемия
За счет быстрого снижения почечной канальцевой реабсорбции магния до незначительного количества гипермагниемия у ПД с СГМ наблюдается сравнительно редко. Наиболее частой причиной повышения содержания магния является почечная недостаточность, и в случае гибели клеток происходит выход Mg2+ за пределы клеточной мембраны, что способствует снижению экскреции калия. Гипермагниемия зачастую сопровождается гипокальциемией и/или гиперкалиемией, поэтому в таком случае оправдано назначение внутривенно кальция глюконата, так как влияние магния на нервно-мышечную проводимость и функцию миокарда антагонизируется кальцием. Помимо кальция глюконата, при нормальной функции почек и отсутствии полиурии следует применять внутривенные диуретики.
6.5.10. Гипомагниемия
Гипомагниемия обусловливает уменьшение высвобождения паратиреоидного гормона и резистентность к нему костной ткани, а также сопровождается выраженной гипокальциемией. Продолжительное снижение концентрации Mg2+ в крови приводит к развитию тетании, аритмий и нарушению метаболизма костной ткани. Уровень магния в сыворотке крови у взрослых составляет 1,5–2,5 мг/дл. При снижении этого показателя менее 1,5 мг/дл требуется коррекция гипомагниемии.
-
Введение 4 г MgSO4 в течение 2 ч; при сохранении гипокалиемии — повторное введение аналогичной дозы.
-
В ряде случаев гипомагниемия связана с такими нарушениями, как гипоальбуминемия, гипофосфатемия и гипокалиемия. В этих ситуациях коррекцию гипомагниемии следует рассматривать в сочетании с терапией ассоциированных электролитных нарушений [40].
6.5.11. Нарушения обмена кальция
Почти 98% всего кальция в организме содержится в костях; в сыворотке крови кальций связывается с белком или другими анионами в виде ионизированного кальция, который является его биологически активной формой. Нормальные значения для кальция для взрослых следующие: ионизированный (предпочтительно контрольный) кальций 1,0–1,4 ммоль/л (4,0–5,6 мг/дл), общий кальций 2,12–2,62 ммоль/л (8,5–10,5 мг/дл).
6.5.12. Гиперкальциемия
Гиперкальциемия у ПД органов отмечается редко и в большинстве случаев вызвана наличием предсуществующей патологии паращитовидных желез, почечной недостаточности, злокачественных новообразований и применением тиазидных диуретиков. Гиперкальциемия способствует усилению полиурии и потенцирует побочные эффекты сердечных гликозидов.
6.5.13. Гипокальциемия
Наиболее частыми причинами гипокальциемии, довольно распространенной у доноров, умерших в результате СГМ, являются хроническая почечная недостаточность, патология паращитовидных желез, рабдомиолиз, а также сепсис. Следует помнить, что алкалемия усиливает активность кальций-связывающих белков, тем самым понижая уровень ионизированного кальция. Также гипокальциемия сопровождает гипомагниемию, что может приводить к развитию аритмий сердца, снижению сократительной способности миокарда и системного АД. Коррекция гипокальциемии заключается в следующем: внутривенное введение 10 мл 10% раствора кальция глюконата (1 ампула) болюсно в течение 10 мин (в экстренной ситуации возможно сокращение времени введения до 4 мин [41]) с последующим внутривенным введением 10 мл 10% раствора кальция хлорида болюсно в течение 15 мин. Контроль содержания ионизированного кальция проводится через 1 ч; по результату принимается решение о необходимости повторного введения кальция глюконата.
6.5.14. Нарушения обмена фосфора
Нормальными показателями концентрации ионов фосфора в сыворотке крови являются 0,89–1,44 ммоль/л (2,5–4,5 мг/дл). Фосфор представляет собой преимущественно внутриклеточный электролит (85%).
6.5.15. Гиперфосфатемия
Гиперфосфатемия у ПД встречается редко и может наблюдаться при прогрессирующей или хронической почечной недостаточности, гемолизе или рабдомиолизе. Ацидоз, помимо гиперфосфатемии, способствует также развитию гипокальциемии.
6.5.16. Гипофосфатемия
Значительно чаще у доноров, умерших в результате СГМ, встречается гипофосфатемия, которая может быть следствием полиурии или потери жидкости через желудочно-кишечный тракт. Другой причиной гипофосфатемии может являться респираторный алкалоз при введении декстрозы (Глюкозы♠) или инсулина. Патофизиологические эффекты гипофосфатемии заключаются в снижении сократительной способности миокарда, гемолизе эритроцитов и рабдомиолизе, тромбоцитопении и снижении функции лейкоцитов [32]. Коррекцию гипофосфатемии начинают при уровне фосфора менее 2,2 мг/дл (0,71 ммоль/л). Необходимо двукратное внутривенное введение 30 ммоль фосфата калия или 30 ммоль натрия фосфата (предпочтительно при уровне сывороточного калия более 4,0 ммоль/л) в течение 2–3 ч. При сохраняющейся гипофосфатемии следует повторно ввести 30 ммоль фосфата калия в течение 2–3 ч.
Ионы хлора в значительном количестве присутствуют во внеклеточном пространстве, и изменения их концентрации не требуют специфического лечения.
Бикарбонат-ионы. Специфическая коррекция их концентрации требуется только в некоторых случаях гиперкалиемии.
6.5.17. Коррекция полиурии
Критериями полиурии служат суточный диурез более 3 л у взрослых или более 2 л/м2 у детей. Следствием полиурии является возможное развитие выраженных метаболических и гемодинамических нарушений в процессе ведения потенциального донора органов. В результате неадекватной инфузионной терапии могут развиться нарушения водно-электролитного баланса (отек, гиперосмолярность, гипернатриемия, гипокалиемия), способствующие повреждению клеточных мембран и в конечном итоге донорских органов, которые планируются к эксплантации [43, 44]. Почти у половины доноров, умерших вследствие СГМ, отмечаются полиурия и гипернатриемия, наиболее частой причиной которых является несахарное мочеизнурение центрального генеза вследствие недостаточной секреции антидиуретического гормона задней долей гипофиза. Полиурия, индуцирующая гиповолемию и нарушение электролитного баланса, способствует снижению системного АД и, как следствие, нарушению гемоперфузии органов. Для предупреждения недостаточной органной перфузии и оксигенации у потенциального донора необходима оценка диуреза и уровня электролитов сыворотки крови каждые 2–4 ч.
6.5.18. Мониторинг и оценка
-
Оценка уровня глюкозы крови — уровень глюкозы более 200 мг/дл (11,1 ммоль/л) способствует развитию полиурии.
-
Подсчет текущего гемогидробаланса и его коррекция таким образом, чтобы объем вводимой жидкости был на 100 мл/ч меньше почасового диуреза. Так, если диурез за последние 3 ч составил в среднем 400 мл/ч, то объем вводимой жидкости должен составлять порядка 300 мл/ч.
-
Содержание Na+ в сыворотке крови >148 ммоль/л свидетельствует о дегидратации.
-
При уровне натрия 135–147 ммоль/л следует контролировать диурез и проводить инфузионную терапию в темпе меньше, чем почасовой диурез на 100 мл/ч.
6.5.19. Терапия
-
Инфузионная терапия: ежечасное введение жидкости на 100 мл меньше почасового диуреза до достижения нормоурии. После этого следует каждый час вводить объем инфузионных сред, равный почасовому диурезу.
-
При темпе почасового диуреза, превышающем почасовой объем инфузии более чем на 250 мл/ч в течение последних 2 ч, и уровне сывороточного натрия более 145 ммоль/л, по результатам последнего исследования, необходимо внутривенное введение 1 мкг десмопрессина.
-
После чего восполнение ОЦК следует проводить каждый час объемом 0,2% гипотонического раствора натрия хлорида, равным темпу почасового диуреза.
-
Если темп почасового диуреза не снизился до уровня менее 200 мл относительно почасового объема инфузии в течение следующего часа, необходимо повторное внутривенное введение 1 мкг десмопрессина [42].
6.6. Легочные нарушения и их коррекция
Причинами часто встречающейся у доноров, умерших в результате СГМ, легочной недостаточности могут быть пневмония (особенно у пациентов, длительно находящихся на ИВЛ), аспирация желудочного содержимого, нейрогенный отек легких или повреждение легких, обусловленное их массивной контузией.
Безусловно, важной функцией является принятие протективной (защитной) стратегии ИВЛ у потенциальных доноров легких, которая включает в себя следующее: 1) малые дыхательные объемы; 2) ПДКВ порядка 5 см вод ст.; 3) маневры рекрутмента после каждого отключения от аппарата ИВЛ; 4) аспирация трахеобронхиального содержимого с помощью закрытого вакуумного контура (табл. 6.8). Уменьшение используемых дыхательных объемов с 10–15 мл/кг массы тела до 6–8 мл/кг способствует улучшению исхода острого повреждения легких и увеличению количества пригодных для трансплантации донорских органов [45, 46]. С целью профилактики аспирации давление в манжете эндотрахеальной трубки должно составлять 25 см вод.ст., а голова потенциального донора должна быть в приподнятом положении [18].
1 |
Пиковое давление в дыхательных путях (peak airway pressure) менее 40 см вод.ст. |
2 |
Давление плато в дыхательных путях менее 35 см вод.ст. |
3 |
Минимальное значение FiO2 для поддержания SpO2 более 92% и PaO2 более 70 мм рт.ст. |
4 |
ПДКВ <5 см вод.ст. В случае признания легких донора непригодными для трансплантации необходимо адекватное ПДКВ для поддержания PaO2 >70 мм рт.ст. |
5 |
Следует избегать ауто-ПДКВ |
6 |
Дыхательные объемы 6–8 мл/кг массы тела |
7 |
Частота дыхательных движений регулируется для поддержания минутной вентиляции порядка 8–10 л/мин или для поддержания PaСO2 в пределах 16–60 мм рт.ст. и pH артериальной крови на уровне 7,35–7,45 |
8 |
Объемная скорость потока около 60 л/мин. Основная цель — минимизация пикового давления в дыхательных путях. Следует избегать ауто-ПДКВ при снижении объемной скорости. Для минимизации ауто-ПДКВ может потребоваться бóльшая объемная скорость потока |
9 |
Давление, обеспечивающее вдох, — для ограничения пикового давления в дыхательных путях на уровне 35–40 см вод.ст. Необходима консультация опытного анестезиолога-реаниматолога с целью окончательной установки предельного давления в зависимости от типа аппарата ИВЛ |
10 |
Адекватная и своевременная санация трахеобронхиального дерева |
11 |
Назначение бронходилататоров — при влажных хрипах или градиенте пикового давления и давления плато в дыхательных путях более 10 см вод.ст. |
Улучшению идентификации потенциальных доноров с ИВЛ-ассоциированной пневмонией и тем самым улучшению результатов трансплантации легких могут способствовать такие бронхоскопические методы взятия материала для микробиологического исследования, как бронхоальвеолярный лаваж и браш-биопсия (protected specimen brush) [47, 48].
6.7. Коррекция гипотермии
Непосредственной причиной нарушений процессов терморегуляции у ПД является гибель гипоталамуса, а снижение уровня метаболизма и отсутствие мышечной активности дополнительно способствуют снижению теплопродукции. Кроме того, следует учитывать потерю тепла вследствие периферической вазодилатации. Развитие гипотермии у донора, умершего в результате СГМ, ожидаемо и предсказуемо, а коррекция этого состояния возможна с помощью следующих мероприятий:
6.8. Коррекция анемии и коагулопатии
Нарушения свертывающей системы крови и анемия обусловлены в большинстве случаев кровопотерей, однако определенную роль в развитии этих состояний могут играть требования различных участников процесса донорства к получению образцов крови для лабораторных исследований.
6.8.1. Мониторинг и оценка
Во-первых, низкое значение гематокрита (28–30%) может быть обусловлено гипергидратацией, которая увеличивает количество плазмы и уменьшает относительный показатель гематокрита.
В подтвержденных случаях анемии необходимо тщательное обследование потенциального донора для выявления источника кровотечения, включая поверхности тела и места внутривенных инъекций. Также необходимо проведение гастродуоденоскопии, визуального контроля и клинического анализа мочи, исключение гематохезии и внутрибрюшного кровотечения (например, после чрескожной биопсии печени). При гематокрите ниже 28–30% следует выполнить трансфузию двух доз эритроцитарной массы, и через 1 ч после окончания трансфузии необходим контроль гематокрита. Если этот показатель остается менее 30%, производится повторная трансфузия двух доз эритроцитарной массы.
Если источников продолжающегося кровотечения не обнаружено, следует проверить наличие возможной коагулопатии у потенциального донора: определение протромбинового времени, активированного частичного тромбинового времени, уровня фибриногена и количества тромбоцитов. Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания, как и массивная гемотрансфузия, является следствием посттравматического или хирургического кровотечения. Кровопотеря после массивной гемотрансфузии может быть обусловлена гипотермией, дилюционной коагулопатией, тромбоцитарной дисфункцией, фибринолизом или гипофибриногенемией. Трансфузия 15–20 доз донорской крови и ее компонентов вызывает дилюционную коагулопатию, которая может потребовать трансфузии тромбоцитарной массы, особенно при снижении количества тромбоцитов ниже 20 000/мкл [49].
Коагулопатии, способствующие развитию геморрагических осложнений у доноров, умерших в результате СГМ, в первую очередь вызваны следующими нарушениями: высвобождение активатора плазминогена и тканевого тромбопластина при СГМ, дисфункция тромбоцитов вследствие «катехоламинового шторма», тромбоцитопения по причине развития синдрома диссеминированного внутрисосудистого свертывания и гипотермии [50–53].
Литература
-
Wilhelm M.J., Pratschke J., Beato F. et al. Activation of the heart by donor brain death accelerates acute rejection after transplantation // Circulation. 2000. Vol. 102, N 19. P. 2426–2433.
-
Zweers N., Petersen A.H., Van Der Hoeven J.A. et al. Donor brain death aggravates chronic rejection after lung transplantation in rats // Transplantation. 2004. Vol. 78, N 9. P. 1251–1258.
-
Pratschke J., Wilhelm M.J., Laskowski I. et al. Influence of donor brain death on chronic rejection of renal transplants in rats // J. Am. Soc. Nephrol. 2001. Vol. 12, N 11. P. 2474–2481.
-
Barklin A. Systemic inflammation in the braindead organ donor // Acta Anaesthesiol. Scand. 2009. Vol. 53. P. 425–435.
-
Avlonitis V.S., Wigfield C.H., Kirby J.A., Dark J.H. The hemodynamic mechanisms of lung injury and systemic inflammatory response following brain death in the transplant donor // Am. J. Transplant. 2005. Vol. 5, N 4, pt 1. P. 684–693.
-
Bos E., Leuvenink H., van Goor H., Ploeg R.J. Kidney grafts from brain dead donors: inferior quality or opportunity for improvement? // Kidney Int. 2007. Vol. 72. P. 797–805.
-
Weiss S., Kotsch K., Francuski M. et al. Brain death activates donor organs and is associated with a worse I/R injury after liver transplantation // Am. J. Transplant. 2007. Vol. 7. P. 1584–1593.
-
Kutsogiannis D.J., Pagliarello G., Doig C., Ross H., Shemie S.D. Medical management to optimize donor organ potential: review of the literature // Can. J. Anaesth. 2006. Vol. 53. P. 820–830.
-
Rangel-Castillo L., Gopinath S., Robertson C.S. Management of intracranial hypertension // Neurol. Clin. 2008. Vol. 26. P. 521–541.
-
Docze T. Volume regulation of the brain tissue: a survey // Acta Neurochir. (Wien). 1993. Vol. 121. P. 1–8.
-
Langfit T.W., Weinstein J.D., Kassell N.F. Cerebral vasomotor paralysis produced by intracranial hypertension // Neurology. 1965. Vol. 15. P. 622–641.
-
Miller J.D., Sullivan H.G. Severe intracranial hypertension // Int. Anesthesiol. Clin. 1979. Vol. 17. P. 19–75.
-
Sesso H.D., Stampfer M.J., Rosner B. et al. Systolic and diastolic blood pressure, pulse pressure, and mean arterial pressure as predictors of cardiovascular disease risk in men // Hypertension. 2000. Vol. 36. P. 801–807.
-
Smith M. Physiologic changes during brain stem death: lessons for management of the organ donor // J. Heart Lung Transplant. 2004. Vol. 23. P. 217–222.
-
Agrawal A., Timothy J., Cincu R. et al. Bradycardia in neurosurgery // Clin. Neurol. Neurosurg. 2008. Vol. 110. P. 321–327.
-
Bugge J. Brain death and its implications for management of the potential organ donor // Acta Anaesthesiol. Scand. 2009. Vol. 53. P. 1239–1250.
-
Smith M. Physiologic changes during brain stem death: lessons for management of the organ donor // J. Heart Lung Transplant. 2004. Vol. 23, suppl. 9. P. S217–S222.
-
McKeown D.W., Bonser R.S., Kellum J.A. Management of the heart-beating brain-dead organ donor // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, suppl. 1. P. i96–i107.
-
Dujardin K.S., McCully R.B., Wijdicks E.F. et al. Myocardial dysfunction associated with brain death: clinical, echocardiographic, and pathologic features // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20. P. 350–357.
-
Venkateswaran R.V., Townend J.N., Wilson I.C. et al. Echocardiography in the potential heart donor // Transplantation. 2010. Vol. 89. P. 894–901.
-
Potapov E.V., Ivanitskaja E.A., Loebe M. et al. Value of cardiac troponin I and T for selection of heart donors and as predictors of early graft failure // Transplantation. 2001. Vol. 71. P. 1394–1400.
-
Gelb A.W., Robertson K.M. Anaesthetic management of brain dead for organ donation // Can. J. Anaesth. 1990. Vol. 37. P. 806–818.
-
Powner D.J., Crommett J.W. Advanced assessment of hemodynamic parameters during donor care // Prog. Transplant. 2003. Vol. 13. P. 249–257.
-
Unverferth D.R., Magorien R.D., Moeschberger M.L. et al. Factors influencing the one-year mortality of dilated cardiomyopathy // Am. J. Cardiol. 1984. Vol. 54. P. 147–152.
-
Rosner M.J. Pathophysiology and management of increased intracranial pressure // Neurosurgical intensive care / Int. ed. B.T. Andrews. McGraw Hill, New York. 1993.
-
Harukuni I., Kirsch J.R., Bhardwaj A. Cerebral resuscitation: role of osmotherapy // J. Anesth. 2002. Vol. 16. P. 229–237.
-
Schunelle P., Berger S., De Boer J. et al. Effects of catecholamine application to brain-dead donors on graft survival in solid organ transplantation // Transplantation. 2001. Vol. 72. P. 455–463.
-
Rosendale J.D., Kauffman H.M., McBride M.A. et al. Aggressive pharmacological donor management results in more transplanted organs // Transplantation. 2003. Vol. 75. P. 482–487.
-
Novitzky D., Cooper D.K. Thyroid hormone and the stunned myocardium // J. Endocrinol. 2014. Vol. 223, N 1. P. R1–R8.
-
Mi Z., Novitzky D., Collins J.F., Cooper D.K.C. The optimal hormonal replacement modality selection for multiple organ procurement from brain-dead organ donors // Clin. Epidemiol. 2015. Vol. 7. P. 17–27.
-
Powner D.J., Kellum J.A., Darby J.M. Abnormalities in fluids, electrolytes, and metabolism of organ donors // Prog. Transplant. 2000. Vol. 10. P. 88–96.
-
Powner D.J., Kellum J.A. Maintaining acid-base in organ donors // Prog. Transplant. 2000. Vol. 10. P. 98–105.
-
Mizock B.A., Falk J.L. Lactic acidosis in critical illness // Crit. Care Med. 1992. Vol. 20. P. 80–93.
-
Oh M.S., Carroll H.J. External balance of electrolytes and acids and alkali // The kidney: physiology & pathophysiology / Eds D.W. Seldin, G. Giebisch. Lippincott Williams & Wilkins, Philadelphia, 2000. P. 33–60.
-
Kazemeyni S.M., Esfahani F. Influence of hypernatremia and polyuria of brain-dead donors before organ procurement on kidney allograft function // Urol. J. 2008. Vol. 5. P. 173–177.
-
Katz M.A. Hyperglycemia-induced hyponatremia: calculation of expected serum sodium depression // N. Engl. J. Med. 1973. Vol. 289. P. 843–844.
-
Mandal A.K. Hypokalemia and hyperkalemia // Med. Clin. North Am. 1997. Vol. 81. P. 611–639. Wrenn K.D., Slovis C.M., Slovis B.S. The ability of the physician to predict hyperkalemia from the ECG // Ann Emerg Med. 1991. Vol. 20. P. 1229–1232.
-
Allon M. Treatment and prevention of hyperkalemia in end-stage renal disease // Kidney Int. 1993. Vol. 43. P. 1197–1209.
-
Ahee P., Crowe A.V. The management of hyperkalaemia in the emergency department // J. Accid. Emerg. Med. 2000. Vol. 17. P. 188–191.
-
Martin K.J., Gonzalez E.A., Slatopolsky E. Clinical consequences and management of hypomagnesemia // J. Am. Soc. Nephrol. 2009. Vol. 20. P. 2291–2295.
-
Bushinsky D.A., Monk R.D. Calcium // Lancet. 1998. Vol. 352. P. 306–311.
-
Hirschl M.M., Matzner M.P., Huber W.O. et al. Effect of desmopressin substitution during organ procurement on early renal allograft function // Nephrol. Dial. Transplant. 1996. Vol. 11. P. 173–176.
-
Shah V., Bhosale G. Organ donor problems and their management // Indian J. Crit. Care Med. 2006. Vol. 10. P. 29–34.
-
Ramos H.C., Lopez R. Critical care management of the brain-dead organ donor // Curr. Opin. Organ Transplant. 2002. Vol. 7. P. 70–75.
-
Distress Syndrome Network. Ventilation with lower tidal volumes as compared with traditional tidal volumes for acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome // N. Engl. J. Med. 2000. Vol. 342, N 18. P. 1301–1308.
-
Mascia L., Pasero D., Slutsky A. et al. Effect of a lung protective strategy for organ donors an eligibility and availability of lungs for transplantation // JAMA. 2010. Vol. 304. P. 2620–2627.
-
Chastre J., Fagon J.Y. Ventilator-associated pneumonia // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2002. Vol. 165. P. 867–903.
-
Bonten M.J., Bergmans D.C., Stobberingh E.E. et al. Implementation of bronchoscopic techniques in the diagnosis of ventilator-associated pneumonia to reduce antibiotic use // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1997. Vol. 156. P. 1820–1824.
-
Levy J.H. Massive transfusion coagulopathy // Semin. Hematol. 2006. Vol. 43, N 1, suppl. 1. P. S59–S63.
-
Talving P., Benfield R., Hadjizacharia P. et al. Coagulopathy in severe traumatic brain injury: a prospective study // J. Trauma. 2009. Vol. 66. P. 55–61, discussion 61–62.
-
Barklin A., Tønnesen E., Ingerslev J., Sørensen B., Fenger-Eriksen C. Coagulopathy during induced severe intracranial hypertension in a porcine donor model // Anesthesiology. 2009. Vol. 110. P. 1287–1292.
-
Hefty T.R., Cotterell L.W., Fraser S.C., Goodnight S.H., Hatch T.R. Disseminated intravascular coagulation in cadaveric organ donors. Incidence and effect on renal transplantation // Transplantation. 1993. Vol. 55. P. 442–443.
-
Valdivia M., Chamorro C., Romera M.A., Balandín B., Pérez M. Effect of posttraumatic donor’s disseminated intravascular coagulation in intrathoracic organ donation and transplantation // Transplant. Proc. 2007. Vol. 39. P. 2427–2428.
Глава 7. Доноры с необратимой остановкой кровообращения. Антонино М. Гранде, Карло Пеллегрини
A.M. Grande, C. Pellegrini Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it
Ключевые тезисы
-
На начальных этапах развития трансплантологии органы для трансплантации были получены от доноров, умерших в результате необратимого прекращения сердечной деятельности.
-
После принятия в 1968 г. Гарвардских критериев СГМ стало возможным получение органов от доноров с «бьющимся сердцем», которые вскоре стали основным источником трансплантатов от ПД.
-
В настоящее время сокращается количество доноров, умерших в результате СГМ, поскольку все меньше пациентов сравнительно молодого возраста умирают от тяжелых ЧМТ или ОНМК, что объясняется улучшением диагностики и лечения этих состояний.
-
Постоянно увеличивающийся разрыв между количеством ПД органов и пациентов в «листах ожидания» способствует принятию посмертного донорства после необратимой остановки кровообращения (смерть по циркуляторным критериям, донорство после необратимой остановки кровообращения, donation after circulatory death, DCD; non-heart beating donors, NHBD) с механической поддержкой кровообращения в виде ЭКМО в качестве одного из источников получения пригодных для трансплантации органов.
-
ЭКМО может использоваться как «мост» для трансплантации органов, полученных от доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности.
На начальных этапах развития трансплантологии органы для пересадки получали от доноров, умерших в результате необратимой остановки кровообращения. После принятия в 1968 г. Гарвардских критериев СГМ стало возможным получение органов от доноров с «бьющимся сердцем», которые вскоре стали основным источником посмертных донорских органов [1].
Однако в настоящее время количество доноров, умерших в результате СГМ, сокращается, что объясняется снижением смертности пациентов молодого возраста от тяжелых ЧМТ или ОНМК за счет улучшения методов своевременной диагностики и лечения таких состояний [2]. Именно поэтому во всем мире дефицит донорских органов является основным фактором, ограничивающим развитие трансплантологии, и такая ситуация способствует постоянному увеличению времени между включением пациента в «лист ожидания» и выполнением трансплантации донорского органа, а также увеличению смертности потенциальных реципиентов. По этой причине критерии пригодности донорских органов для трансплантации претерпели существенные изменения, что привело к широкому использованию органов, полученных от так называемых «маргинальных доноров». К таким относятся доноры старше 60 лет, имеющие легкую/умеренную степень дисфункции отдельных органов (например, сахарный диабет 2-го типа, артериальная гипертензия, почечная недостаточность) или ГВИ (ЦМВ или ВГС). В отдельных группах результаты трансплантации органов от «маргинальных доноров» не отличаются от результатов пересадки органов, полученных от доноров со стандартными критериями. В результате постоянно увеличивающийся разрыв между количеством доноров и пациентами в «листах ожидания» способствует принятию посмертного донорства после констатации смерти донора по циркуляторным критериям (donation after circulatory death; non-heart beating donors) в качестве одного из источников получения пригодных для трансплантации органов. Кроме того, определенный пул составляют доноры, у которых необратимая остановка сердечной деятельности наступила после прохождения теста апноэтической оксигенации до констатации смерти по неврологическим критериям. Интенсивная, патогенетически направленная терапия потенциальных доноров в процессе констатации СГМ зачастую позволяет предотвратить развитие эпизодов неэффективного кровообращения и остановки сердечной деятельности с последующей утратой потенциально пригодных трансплантатов, тем самым увеличивая количество эффективных ПД и трансплантабельных органов [3, 4]. Кроме того, у пациентов с острой сердечной недостаточностью, а также после внезапной госпитальной и внегоспитальной остановки сердца в настоящее время все чаще применяется ЭКМО [5, 6].
Специалистам хорошо известно, что у доноров, умерших в результате СГМ, системная гемодинамика, несмотря на адекватную инотропную поддержку, отличается неустойчивостью. Именно поэтому механическая поддержка кровообращения в виде ЭКМО может предотвратить потерю пригодных для трансплантации органов за счет нормализации кровообращения потенциального донора. В нескольких недавних исследованиях была продемонстрирована возможность использования ЭКМО в качестве «моста» для донорства органов [7, 8].
Доноры, умершие в результате необратимой остановки сердечной деятельности, обычно идентифицируются в соответствии с Маастрихтской классификацией [9], основанной на обстоятельствах смерти и, как следствие, времени тепловой ишемии органов (табл. 7.1). Доноры I, II и V категорий считаются «неконтролируемыми», поскольку процесс донорства в этих группах не был спланированным и они зачастую находятся в отделениях и стационарах скорой медицинской помощи, в отличие от «контролируемых» доноров III и IV категорий.
I |
Смерть по прибытии — внегоспитальная необратимая остановка сердца |
Неконтролируемый |
II |
Неудачная СЛР — начало реанимационных мероприятий в процессе транспортировки или сразу после прибытия в стационар |
Неконтролируемый |
III |
Ожидаемая остановка сердца после прекращения жизнеподдерживающей терапииВ РФ запрещена на законодательном уровне |
Контролируемый |
IV |
Остановка сердца после констатации СГМ |
Контролируемый |
V |
Внезапная остановка сердца у пациентов, находящих в ОРИТ, — необратимая госпитальная остановка сердца |
Неконтролируемый |
7.1. «Контролируемые» доноры
В категории так называемых контролируемых доноров входят в основном неизлечимо больные пациенты, чьи родственники выступают за прекращение жизнеподдерживающей терапии. После получения согласия на посмертное донорство в контролируемой медицинским персоналом ситуации происходит отмена жизнеподдерживающих мероприятий. После остановки дыхательной и сердечной деятельности в течение нескольких минут пациент признается умершим и может быть начата деятельность, связанная с донорством органов. Поскольку прекращение жизнеподдерживающей терапии контролируется, тепловая ишемия и повреждение донорских органов сводятся к минимуму.
7.2. «Неконтролируемые» доноры
Доноры с внезапной остановкой сердечной деятельности входят в категории «неконтролируемых». Непредвиденное наступление остановки кровообращения, а также потенциальные задержка и/или неадекватное проведение СЛР являются причинами крайне низкого показателя выживаемости, который составляет менее 10% при восстановлении самостоятельного кровообращения (return of spontaneous circulation) и менее 1% — без восстановления самостоятельного кровообращения. После констатации смерти в результате необратимой остановки кровообращения (в большинстве европейских стран это происходит после 5-минутного no touch-периода асистолии, однако в Италии констатация смерти требует 20-минутной непрерывной регистрации асистолии по данным электрокардиографии) у родственников умершего испрашивается согласие на посмертное донорство и, если согласие получено, выполняется эксплантация донорских органов.
Использование органов, полученных от доноров, умерших в результате необратимой остановки сердца, ограничено двумя условиями:
Тепловая ишемия
Прекращение кровотока в органе или ткани вызывает их ишемию, а последующая реперфузия вызывает развитие острой воспалительной реакции, которая может привести к значительному повреждению клеток и нарушению функции трансплантированного органа. Например, тепловое ишемически-реперфузионное повреждение (ИРП) печени было продемонстрировано в большом количестве клинических случаев, включая резекционную хирургию печени, трансплантацию печени и реанимационные мероприятия при геморрагическом шоке [9, 10]. В трансплантологии обычно учитываются 2 периода тепловой ишемии: 1) ишемия во время эксплантации — время от пережатия аорты (или от остановки сердца) до момента начала холодовой перфузии; 2) ишемия во время формирования сосудистых анастомозов — время от момента извлечения органа из охлажденного консервирующего раствора/ледяной крошки до реперфузии. Эти периоды тепловой ишемии различаются по своей природе и тяжести патофизиологических нарушений. В значительной части специальной медицинской литературы термин «тепловая ишемия» используется для определения обоих указанных периодов [11].
К последствиям ИРП относятся функциональная недостаточность печеночного трансплантата в сочетании с развитием его ранней дисфункции в более тяжелых случаях, что способствует значительному увеличению риска утраты органов и снижению выживаемости реципиентов. Экспериментальное моделирование теплового ИРП печени позволило улучшить понимание происходящих патофизиологических процессов и выработать несколько клинических подходов к профилактике и лечению дисфункции печеночного трансплантата, обусловленной ИРП.
Одним из первых предложенных способов консервации донорских почек без добавления кислорода в контур является холодовая перфузия in situ [12]. Поскольку охлаждение не является равномерным, органы, полученные от доноров, умерших в результате необратимой остановки сердца, страдают от более длительного периода тепловой ишемии — от момента остановки кровообращения до начала холодовой перфузии консервирующим раствором или начала регионарной перфузии. В зависимости от степени ИРП отсроченная функция трансплантата (ОФТ) и первично нефункционирующий трансплантат (ПНФТ) развиваются после трансплантации почек, полученных от доноров, умерших в результате необратимой остановки кровообращения, в 20–80% и 15–25% соответственно. Очевидно, что уменьшение степени ИРП крайне важно для снижения частоты развития ОФТ и ПНФТ, а также позволяет значительно увеличить количество эффективных ПД [13–15].
Использование ЭКМО в деятельности, связанной с донорством органов, обосновано возможностью минимизировать последствия тепловой ишемии, возникающей вследствие остановки сердечной деятельности.
С целью оценки функции органов, полученных от доноров, умерших в результате необратимой остановки кровообращения, в клиническую практику вошли также различные перфузионные методики консервации изолированных почек и легких [16, 17].
7.3. Технология экстракорпоральной мембранной оксигенации
Аппарат ЭКМО — это устройство, позволяющее заменить функции как сердца, так и легких, поскольку кислород поступает в кровь донора, циркулирующую по замкнутому контуру. Этот аппарат состоит из центробежного насоса, оксигенатора, венозных и артериальных канюль и магистралей. Дополнительным компонентом ЭКМО является теплообменник для регулирования температуры крови во время перфузии: гипотермической или нормотермической (рис. 7.1).
Центробежный насос, передавая кинетическую энергию, обеспечивает ток крови через оксигенатор, магистрали и артериальную канюлю. Движение вращающейся части насоса также вызывает отрицательное давление, которое облегчает поступление венозной крови через венозную канюлю. В настоящее время используются половолоконные мембранные оксигенаторы. За последние 10 лет метилпентановые волокна в оксигенаторах вытеснили силиконовые: полипропилены более устойчивы к плазме и, соответственно, более долговечны.

Проведение ЭКМО у потенциального донора целесообразно при следующих ситуациях и условиях: 1) необратимая остановка сердца; 2) максимальная длительность остановки сердечной деятельности 15 мин; 3) низкая эффективность системного кровообращения (продолжительность СЛР) — менее 150 мин; 4) возраст <60 лет; 5) отсутствие онкологического анамнеза или наркотической интоксикации в недавнем прошлом; 6) отсутствие диссекции аорты. В зависимости от законодательной базы государства и/или решения Этического комитета канюляция бедренных сосудов и начало процедуры могут быть разрешены до получения согласия родственников умершего на донорство органовВ РФ не требуется. В деятельности NITp для начала канюляции сосудов и перфузии необходимо согласие родственников умершего.
Канюляция бедренных сосудов может быть выполнена открытым или чрескожным способами. На начальном этапе работы с ЭКМО предпочтительным является открытый способ канюляции — во время выполнения автоматизированных компрессий грудной клетки разрез в паховой области выполняется с одной из сторон (рис. 7.2).

После рассечения подкожной клетчатки выделяют бедренные артерию и вену. Кисетные швы на обоих сосудах накладывают полипропиленовой нитью 5/0. После артерио- и венотомии выполняют канюлирование сосудов и соединяют канюли с соответствующими артериальной и венозной магистралями. Вводят 5000 МЕ гепарина натрия (Гепарина♠) и начинают процедуру ЭКМО (скорость потока — 2,4 л/мин/м2 поверхности тела). В противоположной паховой области производят еще один разрез, выделяют и берут на держалки бедренную артерию. После наложения кисетного шва для контроля кровотечения в просвет артерии имплантируют окклюзионный баллонный катетер и проводят его ориентировочно на уровень диафрагмального отверстия. После раздувания окклюзионного баллона смесью изотонического раствора натрия хлорида и рентгенконтрастного красителя, что позволяет верифицировать баллон рентгенологически, просвет грудной аорты перекрывается, а обе бедренные артерии перевязываются ниже артериальной канюли ЭКМО и баллонного катетера. Таким образом, ЭКМО представляет собой закрытую систему рециркуляции крови, которая исключает перфузию головы, верхней половины туловища и нижних конечностей. Скорость потока снижают до 2,2–2,4 л/мин (рис. 7.3). Правильное положение окклюзионного баллона (непосредственно над диафрагмой) подтверждается рентгенографией грудной клетки.
Существуют две различные методики ЭКМО в зависимости от температуры перфузата:
При обеих методиках производится взятие образцов крови для определения активированного частичного тромбинового времени (целевые значения 160–200 °С), клинического и биохимического анализа, включая определение КОС и газов крови.
В качестве альтернативы открытому способу канюляция бедренных сосудов может быть выполнена чрескожно под ультразвуковым контролем (рис. 7.4).



При этом способе для пункции сосудов используется сосудистый линейный зонд для эхографии. По методике Сельдингера в бедренные артерию и вену вводятся металлические проволочные интродьюсеры (длиной 150 см). После дилатации подкожных каналов производят канюляцию бедренных сосудов, после чего приступают к процедуре ЭКМО.
В последующем ПД доставляют в операционную с продолжающейся ЭКМО. Максимально возможная продолжительность процедуры ЭКМО у донора составляет 240 мин. Эксплантация абдоминальных органов на фоне ЭКМО производится по стандартной методике, так как необходимость срочной статической холодовой консервации (СХК) донорских органов отсутствует. Важно отметить целесообразность тщательной ревизии внутренних органов перед изъятием, поскольку предоперационное инструментальное обследование ПД, как правило, не проводится в должном объеме.
После мобилизации донорских органов процедура ЭКМО прекращается, через артериальную канюлю производится холодовая перфузия 3–4 л консервирующего раствора. Органопротективный эффект усиливается за счет местного охлаждения стерильным льдом и/или холодным изотоническим раствором натрия хлорида.
7.4. Преимущества экстракорпоральной мембранной оксигенации в процессе донорства органов
Нормотермическая рециркуляция крови при ЭКМО позволяет частично восстановить энергетический статус органов, который резко снижается при тепловой ишемии.
У доноров, умерших в результате СГМ, высокий уровень сывороточных катехоламинов приводит к снижению чувствительности β-адренорецепторов, что способствует увеличению риска развития дисфункции трансплантата. Допускается также, что одним из преимуществ ЭКМО может быть сохранение функции надпочечников, обеспечивающих выработку эндогенных катехоламинов. Возможно, уменьшение потребности в использовании экзогенных катехоламинов способствует лучшему кондиционированию донорских органов [18].
Экспериментальные исследования. Как показало исследование Arias-Diaz et al. [19], нормотермическая рециркуляция крови позволила частично восстановить содержание аденозинтрифосфата (АТФ) и восстановленной формы глутатиона в печени и почках свиней, подвергшихся воздействию 30-минутной тепловой ишемии с последующей 30-минутной нормотермической или 100-минутной гипотермической перфузией. Восстановленные уровни АТФ и глутатиона сохранялись и после периода гипотермической перфузии.
В исследовании Net et al. остановка кровообращения и последующая нормотермическая рециркуляция рассматривались как ситуация, сходная с ишемическим прекондиционированием. Эффективность восстановления кровообращения проявлялась в поддержании адекватных уровней АТФ и ксантина. Сразу после начала нормотермической рециркуляции крови отмечалось повышение среднего АД, подъем которого продолжался в течение последующих часов. Кроме того, насыщение тканей кислородом, концентрация CO2 в крови, концентрация калия в плазме и рН крови восстанавливались до уровней, отмечавшихся перед остановкой кровообращения, в течение нескольких минут от начала нормотермической рециркуляции крови [20].
Наконец, нормотермическая перфузия органов после остановки кровообращения способствует значительному улучшению ранней выживаемости трансплантата по сравнению с гипотермической ЭКМО. В работе Garcia Valdecasas et al. оценивалась 5-дневная выживаемость трансплантата печени в трех группах экспериментальных животных (свиней): 1-я группа — донор с сохраненным кровообращением, отсутствие тепловой ишемии; 2-я группа — 20 мин тепловой ишемии, гипотермическая ЭКМО в течение 15 мин; 3-я группа — 20 мин тепловой ишемии, нормотермическая ЭКМО в течение 30 мин [21]. После чего производилась эксплантация донорских органов с последующей СХК. 5-дневная выживаемость трансплантатов в 1-й и 3-й группах составила 100%, во 2-й — 0% (p < 0,03). Кроме того, в 3-й группе с нормотермической ЭКМО отмечались менее выраженные гистологические изменения органа после реперфузии (p < 0,04) и значительное уменьшение повреждения эндотелия (p < 0,05).
Клинические исследования. В 1989 г. Koyama опубликовал первое описание клинического применения гипотермической ЭКМО у донора, умершего в результате необратимой остановки сердечной деятельности, с целью получения пригодных для трансплантации почек [22]. В первых клинических наблюдениях область ЭКМО не ограничивалась брюшной полостью [12]. Первое клиническое применение нормотермической ЭКМО было выполнено у «неконтролируемого» донора, умершего в результате необратимой остановки сердца, для получения пригодных для трансплантации почек. В нескольких последующих исследованиях была продемонстрирована безопасность использования ЭКМО с целью стабилизации гемодинамики и обеспечения адекватной оксигенации у пациентов с выраженной сердечной или дыхательной недостаточностью. Таким образом, ЭКМО представляет собой своеобразный «мост» к осуществлению процесса посмертного донорства (как после СГМ, так и после необратимой остановки сердечной деятельности) за счет обеспечения оптимальной перфузии органов во время кондиционирования [23]. Кроме того, в некоторых исследованиях сообщается об успешном применении гипотермической и нормотермической ЭКМО у «неконтролируемых» доноров, умерших в результате остановки сердца.
Данные основных исследований, посвященных результатам трансплантации почек после применения ЭКМО в процессе органного донорства, приведены в табл. 7.2.
Центр | Тип исследования | Способ консервации | Представленные результаты | Недостатки | Ссылка на источник |
---|---|---|---|---|---|
Барселона (Испания) |
Сравнительное ретроспективное нерандомизированное |
Сравнение N-ECMO и H-ECMO с холодовой ISP |
1. Частота ПНФТ и ОФТ в группе N-ECMO ниже, чем в группах H-ECMO и ISP. 2. Продолжительность ОФТ в группе H-ECMO ниже, чем в группе ISP |
Небольшое число наблюдений в обеих группах ЭКМО (N =8) |
[24] |
Мадрид (Испания) |
Сравнительное ретроспективное нерандомизированное |
Сравнение N-ECMO и H-ECMO с DBD |
1- и 5-летняя выживаемость трансплантатов от DCD сопоставима с DBD моложе 60 лет и выше, чем у DBD старше 60 лет |
Нет сравнения N-ECMO c H-ECMO |
[25–27] |
Санкт-Петербург (Россия) |
Ретроспективное |
N-ECMO |
1. Отсутствие ПНФТ, несмотря на длительную тепловую ишемию (М=76±16 мин). 2. Немедленная функция у 30% трансплантатов. 3. Нормальный уровень креатинина через 3 мес после трансплантации |
Нет контрольной группы |
[28] |
Питье-Сальпетриер (Франция) |
Сравнительное ретроспективное нерандомизированное |
Сравнение N-ECMO с холодовой ISP |
Более раннее восстановление функции трансплантата и более низкий уровень креатинина через 30 сут после трансплантации в группе N-ECMO |
Ретроспективное исследование |
Представлены на первой международной конференции по вопросам ишемии-реперфузии (IMIRT–2012) |
Тайбэй (Тайвань) |
Сравнительное ретроспективное |
Сравнение МК II, III, IV с DBD и прижизненными донорами |
1. Идентичная 5-летняя выживаемость трансплантата во всех трех группах. 2. Прямая зависимость между временем ЭКМО и продолжительностью ОФТ |
Ретроспективное исследование |
[29–31] |
Уинстон-Салем (США) |
Сравнительное ретроспективное |
Сравнение N-ECMO с аортальной перфузией у DCD |
В группе N-ECMO отмечена меньшая частота ОФТ (p <0,016) |
Ретроспективное исследование. Локальный характер исследования |
[32] |
Университет Мичигана (США) |
Сравнительное ретроспективное |
Сравнение N-ECMO с DBD |
1. В группе N-ECMO отмечена меньшая частота ОФТ (незначимо статистически). 2. 1 случай ПНФТ в группе DBD |
Малое число наблюдений |
[33] |
N-ECMO — нормотермическая ЭКМО, H-ECMO — гипотермическая ЭКМО, ISP — перфузия in situ, DBD — донор, умерший в результате СГМ, DCD — донор, умерший в результате необратимой остановки сердечной деятельности, ПНФТ — первично нефункционирующий трансплантат, ОФТ — отсроченная функция трансплантата, МК — категория донора по Маастрихтской классификации, IMIRT (International Meeting on Ischemia Reperfusion) — Международная конференция по реперфузии ишемии.
Несмотря на небольшое количество наблюдений и отсутствие среди представленных работ двойных слепых исследований, продемонстрированы возможности технологии ЭКМО применительно к расширению донорского пула и получению большего количества пригодных для трансплантации органов. Однако, учитывая определенные методологические ограничения, активное использование ЭКМО в органном донорстве требует дополнительного изучения с целью улучшения качества донорских органов и исходов трансплантаций.
Литература
-
A definition of irreversible coma. Report of the Ad Hoc Committee of the Harvard Medical School to Examine the Definition of Brain Death // JAMA. 1968. Vol. 205. P. 337–340.
-
Death rate trends for RTAs and CVAs, WHO European Health for All database. URL: http://www.euro.who.int/hfadb
-
Lee J.H., Hong S.Y., Oh C.K., Hong Y.S., Yim H. Kidney transplantation from a donor following cardiac death supported with extracorporeal membrane oxygenation // J. Korean Med. Sci. 2012. Vol. 27. P. 115–119.
-
DuBose J., Salim A. Aggressive organs donor management protocol // J. Intensive Care Med. 2008. Vol. 23. P. 367.
-
Deakin C.D., Nolan J.P., Soar J. et al. European Resuscitation Council guidelines for resuscitation — 2010 (section 4). Adult advanced life support // Resuscitation. 2010. Vol. 81. P. 1305–1352.
-
Massetti M., Gaudino M., De Paulis S., Scapigliati A., Cavaliere F. Extracorporeal membrane oxygenation for resuscitation and cardiac arrest management // Heart Fail Clin. 2014. Vol. 10. P. S85–S93.
-
Isnardi D.I., Olivero F., Lerda R., Guermani A., Cornara G. Extracorporeal membrane oxygenation as a bridge to organ donation: a case report // Transplant. Proc. 2013. Vol. 45. P. 2619–2620.
-
Ke H.-Y., Lin C.-Y., Tsai Y.-T. et al. Increase the donor pool: transportation of a patient with fatal head injury supported with extracorporeal membrane oxygenation // J. Trauma. 2010. Vol. 68. P. E87–E88.
-
Kootstra G., Daemen J.H.C., Oomen A.P.A. Categories of non-heart beating donors // Transplant. Proc. 1995. Vol. 27. P. 2893–2895.
-
Bellingham J.M., Santhanakrishnan C., Neidlinger N. et al. Donation after cardiac death: a 29-year experience // Surgery. 2011. Vol. 150. P. 692.
-
Halazun K.J., Al-Mukhtar A., Willis S., Ahmad N. Warm ischemia in transplantation: search for a consensus definition // Transplant. Proc. 2007. Vol. 39. P. 1329–1331.
-
Garcia-Rinaldi R., Lefrak E.A., Defore W.W. et al. In situ preservation of cadaver kidneys for transplantation: laboratory observations and clinical application // Ann. Surg. 1975. Vol. 182. P. 576–584.
-
Perico N., Cattaneo D., Sayegh M.H., Remuzzi G. Delayed graft function in kidney transplantation // Lancet. 2004. Vol. 364. P. 1814–1827.
-
Wijnen R.M., Booster M.H., Stubenitsky B.M. et al. Outcome of transplantation of non heartbeating donor kidneys // Lancet. 1995. Vol. 345. P. 1067–1070.
-
Yarlagadda S.G., Coca S.G., Formica R.N. Jr. et al. Association between delayed graft function and allograft and patient survival: a systematic review and meta-analysis // Nephrol. Dial. Transplant. 2009. Vol. 24. P. 1039–1047.
-
Nicholson M.L., Hosgood S.A. Renal transplantation after ex vivo normothermic perfusion: the first clinical study // Am. J. Transplant. 2013. Vol. 13. P. 1246.
-
Cypel M., Yeung J.C., Machuca T. et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2012. Vol. 144. P. 1200.
-
Fukushima N., Sakagoshi N., Ohtake S. et al. Effects of exogenous adrenaline on the number of the beta-adrenergic receptors after brain death in humans // Transplant. Proc. 2002. Vol. 34. P. 2571–2574.
-
Arias-Díaz J., Álvarez J.M., Gómez M. et al. Changes in adenine nucleotides and lipid hydroperoxides during normothermic cardiopulmonary bypass in a porcine model of type II non-heart-beating donor // Transplant. Proc. 1997. Vol. 29. P. 3486–3487.
-
Net M., Valero R., Almenara R. et al. The effect of normothermic recirculation is mediated by ischemic preconditioning in NHBD liver transplantation // Am. J. Transplant. 2005. Vol. 5. P. 2385.
-
García-Valdecasas J.C., Tabet J., Valero R. et al. Liver conditioning after cardiac arrest: the use of normothermic recirculation in an experimental animal model // Transpl. Int. 1998. Vol. 11. P. 424–432.
-
Koyama I., Hoshino T., Nagashima N. et al. A new approach to kidney procurement from non-heart-beating donors: core cooling on cardiopulmonary bypass // Transplant. Proc. 1989. Vol. 21. P. 1203–1205.
-
Barrou B., Billault C., Nicolas-Robin A. The use of extracorporeal membranous oxygenation in donors after cardiac death // Curr. Opin. Organ Transplant. 2013. Vol. 18. P. 148–153.
-
Valero R., Cabrer C., Oppenheimer F. et al. Normothermic recirculation reduces primary graft dysfunction of kidneys obtained from non-heartbeating donors // Transpl. Int. 2000. Vol. 13. P. 303–310.
-
Sanchez-Fructuoso A.I., Prats D., Torrente J. et al. Renal transplantation from non-heart beating donors: a promising alternative to enlarge the donor pool // J. Am. Soc. Nephrol. 2000. Vol. 11. P. 350–358.
-
Sanchez-Fructuoso A.I., de Miguel Marques M., Prats D., Barrientos A. Non-heart-beating donors: experience from the Hospital Clinico of Madrid // J. Nephrol. 2003. Vol. 16. P. 387–392.
-
Sanchez-Fructuoso A.I., Marques M., Prats D. et al. Victims of cardiac arrest occurring outside the hospital: a source of transplantable kidneys // Ann. Intern. Med. 2006. Vol. 145. P. 157–164.
-
Reznik O., Skvortsov A., Loginov I. et al. Kidney from uncontrolled donors after cardiac death with one hour warm ischemic time: resuscitation by extracorporeal normothermic abdominal perfusion in situ by leukocytes-free oxygenated blood // Clin. Transplant. 2011. Vol. 25. P. 511–516.
-
Lee C.Y., Tsai M.K., Ko W.J. et al. Expanding the donor pool: use of renal transplants from non-heart-beating donors supported with extracorporeal membrane oxygenation // Clin. Transplant. 2005. Vol. 19. P. 383–390.
-
Chen K.H., Tsai M.K., Ko W.J. et al. Renal transplantation from non-heart-beating donors with extracorporeal membrane oxygenation: preliminary results // Transplant. Proc. 2000. Vol. 32. P. 1743–1744.
-
Ko W.J., Chen Y.S., Chen R.J. et al. Non-heartbeating donors under extracorporeal membrane oxygenation support // Transplant. Proc. 2002. Vol. 34. P. 2600–2601.
-
Farney A.C., Hines M.H., al-Geizawi S. et al. Lessons learned from a single center’s experience with 134 donations after cardiac death donor kidney transplants // J. Am. Coll. Surg. 2011. Vol. 212. P. 440–451; discussion 451–453.
-
Gravel M.T., Arenas J.D., Chenault R. 2nd et al. Kidney transplantation from organ donors following cardiopulmonary death using extracorporeal membrane oxygenation support // Ann. Transplant. 2004. Vol. 9. P. 57–58.
Глава 8. Мультиорганная эксплантация: общие принципы, консервация органов, новые стратегии. Рикардо Де Карлис, Рафаэлла Сгуинци, Антонино М. Гранде, Паоло Асени
R. De Carlis Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: riccardo.decarlis@alice.it R. Sguinzi, P. Aseni Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione, Policlinico San Matteo, Pavia, Italy
Ключевые тезисы
-
Донорство органов — это первый этап трансплантации, от которого в значительной степени зависит ее исход.
-
У гемодинамически стабильных доноров рекомендуется в первую очередь осуществить доступ к забрюшинному пространству, выделить нижнюю полую вену и брюшную аорту, после чего — разделить элементы печеночно-двенадцатиперстной связки (ПДС) и выявить имеющиеся особенности анатомии сосудов до начала перфузии in situ.
-
Цель консервации — замедлить процессы повреждения органа в период между его эксплантацией и реперфузией, обеспечить время для его транспортировки, организации операции, а также проведения морфологического исследования при необходимости.
-
Наиболее распространенным способом консервации органов является статическая холодовая консервация, основанная на замедлении метаболизма в условиях гипотермии в условиях добавления консервирующих растворов.
-
Благодаря аппаратной перфузии возможно поддерживать холодовую ишемию более длительно и безопасно, проводить оценку функциональной пригодности органов до начала трансплантации, а в ближайшем будущем — ex vivo осуществлять фармакологическое воздействие, направленное на восстановление функции трансплантатов, путем введения лекарственных препаратов в перфузионную систему.
8.1. Общие принципы
8.1.1. Организационные и предоперационные аспекты
Изъятие органов является «живительной силой» трансплантационной технологии, ее первым этапом, от которого в максимальной степени зависит ее успех или неудача. Именно поэтому любая ошибка на донорском этапе может сделать трансплантат непригодным для последующей пересадки, нетрансплантабельным или же явиться причиной развития серьезных осложнений после операции [1].
В идеале хирургическая донорская бригада должна быть самодостаточной единицей, не нуждающейся в какой-либо помощи со стороны донорского стационара, за исключением персонала операционного блока. Но, как показывает практика, во многих ситуациях для непосредственного осуществления деятельности, связанной с изъятием органов, дополнительно может потребоваться и врач-анестезиолог, и медицинская сестра-анестезист донорского стационара. Обычно эксплантацию производят хирургические бригады из тех центров, в которых в последующем планируется выполнять трансплантации. Изъятие органов грудной клетки (сердце, легкие) практически всегда производится хирургами из сердечно-легочных трансплантационных клиник. Для эксплантации прочих целесообразно сформировать единую хирургическую бригаду по изъятию абдоминальных органов. В отличие от практики одновременной эксплантации разных органов брюшной полости хирургами из различных центров трансплантации, такой подход значительно упрощает проведение изъятия, а также обеспечивает единый порядок эксплантации и кондиционирования донорских органов, что чрезвычайно важно при обеспечении работы в различных донорских стационарах. Кроме того, существует ограниченная практика эксплантации почек хирургической бригадой непосредственно донорского стационара [2]. В организации деятельности, связанной с донорством органов, транспортировка выездных хирургических бригад в донорский стационар и обратно, а также в решении значительной части административных задач ведущая роль, безусловно, принадлежит ТК [1, 3]. В оснащение всех выездных донорских бригад должны входить контейнеры для транспортировки необходимого хирургического инструментария. Охлажденные консервирующие растворы транспортируются в термоконтейнерах со льдом или хладоэлементами. Поскольку в донорских стационарах не всегда доступно некоторое хирургическое оборудование, необходимо обеспечение полноценного оснащения выездной хирургической бригады с обязательной проверкой хирургического инструментария перед каждым выездом. Кроме того, не следует забывать и о достаточной обеспеченности лекарственными препаратами, получить которые на месте (в донорском стационаре) по ряду причин может быть затруднительно. Это касается простациклинов, противогрибковых препаратов, антибиотиков для деконтаминации желудочно-кишечного тракта в случаях эксплантации поджелудочной железы [2]. В зависимости от потребностей разных бригад по эксплантации донорских органов возможны различные варианты хирургического оснащения. В табл. 8.1 представлен типовой перечень необходимого инструментария и расходных материалов выездной хирургической бригады по эксплантации донорских органов.
Пила Джигли (или пила для стернотомии) |
Ретрактор реберный Финочетто |
Ретракторы абдоминальные хирургические |
Зажимы-диссекторы Оверхольта |
Зажим монополярный для коагуляции |
Зажим аортальный |
Стерильные аортальные и венозные канюли различного диаметра |
Одноходовая и двухходовая системы для быстрой перфузии |
Линейный степлер для формирования гастроинтестинального анастомоза (в случаях планируемого изъятия поджелудочной железы) |
Степлер сосудистый |
Клип-аппликатор Multifire (с малыми и средними клипсами) |
Игла полуавтоматическая для биопсии |
Шприц Туми |
Игла тупая для шприца (для промывания желчных протоков) |
Стерильные пакеты для упаковки органов |
Стерильные контейнеры (типа мочеприемников) для сосудистых аллопротезов |
Фартуки медицинские |
Стерильные перчатки |
Простациклин |
Амфотерицин В (для деконтаминации желудочно-кишечного тракта в случае эксплантации поджелудочной железы) |
Консервирующий раствор (в термоконтейнерах со льдом и хладоэлементами) |
Эксплантация донорских органов должна проводиться в спокойной и уважительной ко всем участникам процесса обстановке. Уважительное отношение к ПД органов является непременным и обязательным условием для каждого участника деятельности, связанной с донорством органов. Необходимо проявлять должное уважение к пожеланиям родственников умершего. Коммуникативные навыки специалистов выездных донорских бригад играют важную роль в обеспечении слаженной работы и получении достоверной информации. Конкурентные, напряженные отношения между членами выездной бригады могут привести к повреждению донорских органов во время эксплантации или к неадекватной консервации [1, 3]. Именно поэтому после прибытия в донорский стационар ведущему хирургу по эксплантации донорских органов следует представить себя и членов своей бригады. Если в хирургическом вмешательстве планируется участие хирургических бригад из различных центров трансплантации, необходимо совместное обсуждение последовательности этапов изъятия перед началом операции, поскольку каждый донорский орган должен быть эксплантирован без ущерба для других. Особенно это важно в случаях вариантной сосудистой анатомии, выявленных при ревизии [3]. Необходимо четко помнить о порядке мультиорганной эксплантации: вначале — сердце и легкие, затем — печень, поджелудочная железа и тонкая кишка и наконец — почки, сосудистые аллопротезы (графты) и донорские ткани [2, 4].
Ключевыми задачами для ведущего хирурга выездной донорской бригады являются идентификация донора, определение его группы крови, контроль правильности проведения процедуры констатации СГМ и оформления соответствующей медицинской документации, а также подтверждение получения информированного согласия или разрешения на посмертное донорство. Как указано в табл. 8.2, обследование потенциального донора должно обеспечить наличие всей необходимой информации, включая осмотр всей поверхности тела на предмет возможных поражений кожи, пальпацию молочных желез (у всех доноров — как мужского, так и женского пола!), а также пальцевое исследование прямой кишки на предмет наличия злокачественных новообразований.
Идентификация донора |
|
Правильность проведения процедуры констатации СГМ и оформления соответствующей медицинской документации |
|
Получение информированного согласия или разрешения на посмертное донорство органовЕсли в стране действует «презумпция испрошенного согласия» |
|
Определение или подтверждение группы крови донора |
|
Проверка оформления истории болезни донора, данных его вирусологического обследования, проведения необходимых клинических и биохимических лабораторных исследований |
|
Координационный центр органного донорства и все причастные центры трансплантации должны быть оповещены о следующих аспектах донорского процесса: |
|
1. |
Положительные результаты микробиологического обследования донора |
2. |
Сепсис или эндокардит |
3. |
ВГС-, ВГВ- (с некоторыми исключениями) и HIV-положительный статус |
4. |
Злокачественный опухолевый процесс (с некоторыми исключениями — низкодифференцированный рак предстательной железы, некоторые опухоли центральной нервной системы и немеланомные опухоли кожи)22 |
5. |
Болезнь коронарных артерий сердца (ИБС) |
6. |
Патология клапанов сердца |
7. |
Неудовлетворительная желудочковая функция |
8. |
Системные васкулиты |
9. |
Эпизоды выраженной гипо- или гипертензии, поддержка гемодинамики вазопрессорными или инотропными препаратами |
10. |
Важные интраоперационные находки при проведении эксплантации |
11. |
Полнота и достоверность представленной медицинской документации донора |
12. |
Полнота и достоверность протокола эксплантации органов |
13. |
Качество упаковки и достоверность маркировки донорских органов и тканей |
8.1.2. Предотвратимые ошибки в процессе донорства
Как в специальной литературе, так и в средствах массовой информации периодически публикуются сообщения о небольшом количестве случаев тяжелых посттрансплантационных осложнений или смертельных исходов у реципиентов по причине ошибок в трансплантационном процессе [5]. Поскольку врачи клинических специальностей традиционно отождествляют подобные ошибки с «человеческим фактором», для истинного понимания этой проблемы ускользает важность реорганизации системы и процессов оказания медицинской помощи с целью предотвращения условий, которые могут привести к данным ошибкам. Трансплантация органов, являясь особенно сложным видом медицинской помощи, который затрагивает практически все системы и процессы осуществления хирургической деятельности, обеспечивает уникальную возможность выявления уязвимых мест и потенциальных ошибок на практике. Первые шаги в этом направлении были предприняты Комитетом по операциям и безопасности Объединенной сети по распределению органов (United Network of Organ Sharing Operations and Safety Committee), который собрал данные о потенциально предотвратимых неблагоприятных событиях при трансплантации органов и показал, что причиной 55% зарегистрированных неблагоприятных событий являются недопонимание и ошибки в оформлении медицинской документации и при вводе данных. При анализе данных по трансплантации почек и печени было выявлено, что существенный вклад в предотвратимые неблагоприятные события вносят неудовлетворительные коммуникация и координация в процессе осуществления медицинской деятельности. Помимо этого, Комитетом по операциям и безопасности Объединенной сети по распределению органов (United Network of Organ Sharing) были выявлены регулярно повторяющиеся во всех центрах трансплантации ошибки при маркировке и упаковке донорских органов, составившие в период с 2006 по 2010 г. до 38% общего числа зарегистрированных неблагоприятных событий [6]. Национальной комиссией, созданной в Италии в 2007 г. после трех случаев заражения реципиентов ВИЧ-инфекцией при трансплантации, были опубликованы рекомендации по повышению безопасности процессов донорства и трансплантации: автоматическое внесение результатов лабораторных тестов в лабораторные информационные системы и медицинскую документацию донора, централизация вирусологического обследования доноров, а также активное обучение персонала для повышения качества и безопасности вирусологического обследования доноров в региональных центрах донорства и трансплантации [5]. Кроме того, важную роль в осуществлении хирургической деятельности могут играть унифицированные протоколы. Так, после публикации Всемирной организацией здравоохранения в июне 2008 г. протокола по вопросам хирургической безопасности в 8 больницах, принявших данный протокол к действию, в течение 2009 г. было проведено исследование, по результатам которого было отмечено уменьшение госпитальной смертности и снижение частоты послеоперационных осложнений c 1,5 до 0,8% и с 11 до 7% соответственно. Однако поскольку в настоящее время не существует единых международных рекомендаций в области трансплантации органов, каждый трансплантационный центр руководствуется собственным опытом и собственными разработанными и принятыми протоколами [7].
8.1.3. Доноры с высоким риском передачи гемотрансмиссивных вирусных инфекций
Понятие доноров с высоким риском передачи ГВИ, относящихся к категории субоптимальных доноров, было предложено в 1994 г. после разработки центрами по контролю и профилактике заболеваний (Centers for Disease Control and Prevention) руководящих принципов по выявлению групп населения, подверженных риску передачи ГВИ при трансплантации. К донорам с высоким риском передачи ГВИ относятся:
-
мужчины, имевшие гомосексуальные контакты в течение последних 5 лет;
-
лица, сообщившие о внутривенном, внутримышечном или подкожном введении лекарственных средств не в медицинских целях в течение последних 5 лет;
-
лица с гемофилией или связанными с ней нарушениями свертываемости крови, получавшие концентраты факторов свертывания крови;
-
работники сферы сексуальных услуг (commercial sex workers), занимавшиеся проституцией или употреблявшие наркотики в течение последних 5 лет;
-
лица, состоявшие в сексуальных контактах с перечисленными категориями лиц или с лицами с предполагаемым или установленным диагнозом ВИЧ-инфекции в течение последних 12 мес;
-
лица, контактировавшие в течение последних 12 мес с кровью лиц с предполагаемым или установленным диагнозом ВИЧ-инфекции;
-
заключенные пенитенциарных (уголовно-исправительных) учреждений.
Поскольку всем донорам выполняется вирусологическое исследование крови, в настоящее время понятие доноров с высоким риском передачи ГВИ включает лиц, которые были подвержены инфицированию за несколько недель или месяцев до смерти, а также в связанных с этим периодом случаях ложноотрицательных результатов обследования по причине «серонегативного окна». Несмотря на противоречивое отношение к использованию органов от доноров с высоким риском передачи ГВИ, нельзя отрицать определенное увеличение донорского пула за счет использования данной категории доноров, что ведет к сокращению сроков нахождения в «листах ожидания» пациентов с высокой вероятностью наступления летального исхода в ближайшее время. Использование специальных форм добровольного информированного согласия способствует минимизации юридических рисков. Так как настоящий риск передачи ГВИ значительно варьирует в зависимости от индивидуальных особенностей донора, донесение достоверной информации о возможности инфицирования до потенциального реципиента в понятных ему терминах крайне затруднено. Исходя из этого с целью снижения риска передачи ГВИ необходимо наряду с серологическими методами использовать NAT-технологии (nucleic acid testing, тест на нуклеиновую кислоту), в частности — метод ПЦР (полимеразной цепной реакции), которые позволяют диагностировать ГВИ в период «серонегативного окна» [8].
8.1.4. Хирургическая техника: основные принципы
Хирургическая техника мультиорганной эксплантации будет подробно изложена в следующих главах. Здесь же будут описаны основные принципы проведения этого вмешательства. Независимо от принятой в центре методики первый этап операции должен включать тщательную ревизию органов грудной клетки и брюшной полости на предмет наличия патологических состояний, являющихся противопоказаниями для донорства. Ревизия является одновременно последним этапом предоперационной оценки донора и способствует минимизации рисков получения непригодных для трансплантации органов.
Главным принципом всех существующих методик эксплантации является максимально возможное сокращение времени тепловой ишемии, что достигается началом холодовой перфузии органов in situ консервирующим раствором в момент остановки кровообращения у донора [4]. По этой причине в ходе эксплантации донорских органов обычно выделяют 2 этапа, называемых «теплой» и «холодной» фазами, относительно момента холодовой перфузии in situ.
С течением времени хирургическая техника эксплантации донорских органов последовательно совершенствовалась. Первые методики, использовавшиеся в 1970-х и в начале 1980-х гг., основывались на экспозиции и мобилизации каждого донорского органа в «теплую» фазу, при сохраненном кровообращении. Основным недостатком этих способов была значительная длительность операции, обусловленная, среди прочего, малым опытом хирургов в проведении такого хирургического вмешательства, что также затрудняло взаимодействие торакальной и абдоминальной бригад [9, 10]. В 1984 г. Starzl et al. предложили «гибкую методику» (flexible technique) эксплантации донорских органов, при которой производилась быстрая холодовая перфузия органов in situ с одновременной мобилизацией донорских органов «в холодном операционном поле» и последующим их разделением на этапе back-table [4, 9, 11]. В некоторых центрах трансплантации такая техника, изначально разработанная для работы с гемодинамически нестабильными донорами, стала применяться у всех категорий ПД [9]. Таким образом, хирургические методики эксплантации донорских органов можно условно разделить на 2 основные категории: техника диссекции на кровотоке (в «теплую» фазу) и техника быстрой эксплантации (диссекция в «холодном операционном поле»). При использовании техники диссекции на кровотоке мобилизация органов происходит до канюляции аорты и начала холодовой перфузии, а при быстрой эксплантации в первую очередь выполняется канюляция аорты для скорейшего начала холодовой перфузии. В некоторых случаях выполняется изолированное изъятие почек или печени, если другие органы признаны непригодными для последующей трансплантации [3].
Хирурги, выполняющие эксплантации донорских органов, должны владеть как техникой диссекции на кровотоке, так и техникой быстрого изъятия, поскольку они являются взаимодополняющими. Технику быстрой эксплантации целесообразно использовать в случае выраженной гемодинамической нестабильности донора, поскольку эта методика позволяет минимизировать время тепловой ишемии и может быть относительно безопасно выполнена хирургами, обладающими небольшим опытом эксплантации. Одним из наиболее существенных недостатков данной техники является трудность определения аберрантных и добавочных артерий, пульсация которых уже отсутствует и не может быть определена пальпаторно во время «холодной» фазы. Таким образом, техника быстрой эксплантации требует тщательной ревизии и диссекции сосудистых структур в «холодном операционном поле» и на этапе back-table, что, в свою очередь, способствует увеличению длительности хирургического вмешательства и, следовательно, риска повреждения трансплантатов [2, 10]. Именно поэтому у гемодинамически стабильных доноров предпочтительно использование комбинированной техники. Ее первый этап заключается в осуществлении доступа в забрюшинное пространство и мобилизации брюшной аорты для того, чтобы обеспечить возможность немедленного начала холодовой перфузии органов in situ в случае резкой дестабилизации состояния донора. Вторым этапом комбинированной техники при стабильном состоянии донора является разделение элементов ПДС на кровотоке и определение особенностей сосудистой анатомии до начала холодовой перфузии. По мнению авторов руководства, благодаря такому подходу возможны как практическое обучение молодых хирургов, так и минимизация риска случайного повреждения аберрантных и добавочных сосудистых структур. Кроме того, дополнительное время при диссекции на кровотоке у гемодинамически стабильного донора способствует улучшению взаимодействия между различными хирургическими бригадами. К настоящему моменту не получено убедительных доказательств в подтверждение существующего мнения, что диссекция сосудов и мобилизация органов до начала холодовой перфузии провоцирует развитие сосудистого спазма. Который, в свою очередь, увеличивает потребность органов брюшной полости, особенно печени, в кислороде и, как следствие, ухудшает качество их консервации [3, 9]. По мнению авторов руководства, данный эффект незначителен и может быть компенсирован быстрой диссекцией в «холодном операционном поле» и на этапе back-table, во время которой эксплантированные органы не подвергаются воздействию температуры, превышающей оптимальную для адекватной консервации.
8.2. Консервация органов
8.2.1. Патофизиология ишемически-реперфузионного повреждения
Патофизиологические механизмы, лежащие в основе развития как ПНФТ, так и ОФТ, до настоящего времени остаются не до конца изученными, но, вероятнее всего, обусловлены ИРП, которое развивается в посттрансплантационном периоде [12]. После эксплантации и до реперфузии в донорском органе продолжаются процессы ишемического повреждения, пусть и значительно замедленные холодовой консервацией. И чем дольше продолжительность холодовой ишемии трансплантата, тем более высока вероятность необратимой утраты его функции. Тяжесть ишемической травмы усугубляется последующим резким разогреванием органа при реперфузии [13]. С ИРП ассоциирован широкий спектр патологических процессов, происходящих в донорском органе.
Период ишемии, в частности, характеризуется значительными нарушениями контроля экспрессии генов. Так, при ишемии отмечается ингибирование пролилгидроксилазы (prolylhydroxylase) ввиду ее потребности в кислороде как кофакторе, что приводит к посттрансляционной активации гипоксии и воспалительных сигнальных каскадов, контролирующих стабильность таких транскрипционных факторов, как фактор, индуцируемый гипоксией (hypoxia-inducible factor), и ядерный фактор «каппа-би» (nuclear factor-kB) [14]. По-видимому, наиболее ранним проявлением ИРП является изменение экспрессии генов. Количественный анализ такой экспрессии в постреперфузионных биопсиях может оказаться ценным диагностическим и прогностическим инструментом для выявления реципиентов с высоким риском развития ранней дисфункции трансплантата [12]. В ряде исследований было высказано предположение об определенной роли микрорибонуклеиновой кислоты в развитии ИРП. В этой связи фармакологическое ингибирование микрорибонуклеиновой кислоты, по-видимому, может стать одной из важных терапевтических стратегий в ближайшем будущем [14].
После того как запас кислорода в клетке исчерпан, происходит переход от аэробного к энергетически менее выгодному анаэробному пути метаболизма, в результате чего образуются лактат и протоны. Без достаточного количества АТФ прекращается мембранный ионный транспорт и происходит пассивное перераспределение жидкости, приводящее к набуханию клеток. В результате описанные изменения гомеостаза приводят к активации программируемой клеточной гибели, в том числе через процессы апоптоза и некроза [13].
Гибель клеток способствует активации иммуностимуляции, приводит к воспалительной клеточной инфильтрации и продукции цитокинов. Во время реперфузии ишемизированной ткани происходит активация стерильного воспаления, компонентами которого являются такие паттерн-распознающие рецепторы, как Toll-подобные рецепторы (Toll-like receptors), активирующиеся эндогенными молекулами, которые образуются в результате программируемой гибели клеток. Многие исследования показывают, что ингибиторы сигнализации Toll-подобных рецепторов могут эффективно применяться в терапии стерильного воспаления, вызванного ишемически-реперфузионным повреждением. ИРП способствует формированию выраженного иммунного ответа, включающего, помимо других типов клеток, Т-лимфоциты. В отличие от Т-лимфоцитов, Т-регуляторные клетки, по-видимому, играют защитную роль при ИРП. В ряде исследований было продемонстрировано, что неоэпитопы, экспрессируемые на мембранах клеток ишемизированных тканей, являются мишенями для естественного связывания антител во время реперфузии с последующей активацией системы комплемента, рекрутированием нейтрофилов и повреждением тканей. Кроме того, к дисфункции и гибели клеток приводит продукция активных форм кислорода за счет изменения структуры клеточных белков, липидов и рибонуклеиновых кислот при стерильном воспалении [14].
Дальнейшее повреждение донорского органа происходит за счет окислительного стресса, связанного с реперфузией [13]. Ксантиноксидаза при ИРП может служить источником образования свободных радикалов. С началом ишемии АТФ разлагается до гипоксантина, одновременно с чем происходит преобразование ксантиндегидрогеназы в ксантиноксидазу. Отсутствие поступления кислорода в ишемическом периоде препятствует окислению пуринов, однако быстрое и избыточное поступление кислорода при реперфузии приводит к стремительному окислению гипоксантина, способствуя образованию значительного количества активных форм кислорода [2]. Таким образом, реперфузионные процессы способствуют усугублению обусловленного ишемией повреждения паренхимы трансплантата за счет пролонгирования очаговой ишемии (вследствие прямого повреждения перицитов свободными радикалами) или высвобождения медиаторов воспаления, способствующих лейкоцитарной инфильтрации и локальной активации системы комплемента [13]. Кроме того, следует помнить, что после реперфузии выраженный вазоспазм за счет повреждения перицитов может привести к развитию феномена no-reflow, характеризующегося повышенным индексом сосудистого сопротивления на уровне микроциркуляторного русла [14].
8.2.2. Стратегии консервации донорских органов
Консервация донорских органов также является неотъемлемой частью технологической цепочки органного донорства и трансплантации органов, поскольку позволяет предоставить дополнительное время на организацию работы медицинского персонала и оборудования, транспортировку органов и проведение необходимых лабораторных исследований. Цель консервации заключается в замедлении повреждения донорского органа ex vivo в период между эксплантацией и реперфузией и обеспечении тем самым возможности восстановления и эффективного функционирования трансплантата в теле реципиента, поэтому адекватная консервация является еще одним важнейшим фактором, определяющим исход трансплантации в целом [11, 12, 15].
В процессе эволюции трансплантационных технологий, от экспериментальных операций в начале 1950-х гг. к современному главенствующему положению в лечении пациентов с терминальной стадией хронических заболеваний различных органов, успеху трансплантологии, безусловно, способствовало развитие стратегий консервации трансплантатов. В условиях сохраняющегося дефицита донорских органов важным источником для расширения донорского пула становятся ДРК. Для данной категории ПД консервация органов имеет приоритетное значение, а потому исследования в этом направлении активно продолжаются [11].
К настоящему времени выработаны два основных подхода к консервации большинства донорских органов: статический и динамический (перфузионный). Обоим способам консервации предшествует эксплантация донорских органов, на этапе которой производится доступ к главным сосудам человеческого тела с последующей холодовой перфузией in situ для «вымывания» (флашинга) крови и ее форменных элементов из органов и достижения их умеренного охлаждения непосредственно перед изъятием [11].
СХК — это самый простой в использовании и наиболее распространенный метод консервации донорских органов. Механизм СХК основывается на замедлении метаболизма, снижении потребности в кислороде и подавлении активности гидролитических ферментов (гидролаз) в условиях гипотермии и добавления консервирующих растворов, направленных на замедление неизбежного повреждения функции и структуры органов. В определенном смысле гипотермия представляет собой компромисс вреда и пользы воздействия на донорский орган низких температур. Стандартная рекомендуемая температура для СХК составляет 4 °С, ниже которой возможно развитие коагуляционного некроза тканей после реперфузии, а температура выше 4 °С связана с повышением метаболической активности, истощением запасов АТФ, накоплением лактата и развитием митохондриальных нарушений, приводящих к тяжелым повреждениям эндотелиоцитов и паренхимы донорского органа [11, 13].
Аппаратная перфузия представляет собой метод динамической консервации, при котором изъятый донорский орган после флашинга крови и ее форменных элементов помещается в перфузионный контур, по которому циркулирует консервирующий раствор [16]. В результате непрерывной аппаратной перфузии обеспечивается поступление в паренхиму органа кислорода и питательных веществ и удаление токсичных метаболитов. В настоящее время используются различные температурные режимы аппаратной перфузии донорских органов: от гипотермического при 4 °С до нормотермического при 37 °С (представляется, что это позволяет обеспечить более физиологичное и метаболически активное состояние трансплантата). В качестве перфузата используются различные консервирующие растворы: от кристаллоидов с низким содержанием калия до растворов и смесей на основе эритроцитов как переносчиков кислорода. Кроме того, различные режимы аппаратной перфузии подразумевают использование непрерывного потока перфузата или же пульсирующего, имитирующего чередование систолического и диастолического давления [17].
Несмотря на то что первые устройства для аппаратной перфузии появились еще в 1960-е гг., они долгое время характеризовались громоздкостью и требовали значительных ресурсов, например специальных фургонов для транспортировки донорского органа из донорского стационара в центр трансплантации. Именно поэтому появление и клиническое применение консервирующих растворов для СХК на долгие годы стало ведущим методом консервации трансплантатов [13]. Однако в современных условиях дефицита донорских органов и возрастающего использования органов от ДРК преимущества использования СХК достигли своего предела, что привело к возрождению интереса к методикам аппаратной перфузии, — были разработаны новые портативные устройства и постепенно накоплен опыт их клинического применения при трансплантации почек и легких [17]. При трансплантации почек несколько исследований, включая международные, рандомизируемые и контролируемые, продемонстрировали снижение частоты ОФТ и лучшую выживаемость трансплантатов после гипотермической аппаратной перфузии в сравнении со СХК [16, 18]. В другом клиническом исследовании был проведен сравнительный анализ результатов 20 взрослых реципиентов трансплантатов печени после гипотермической аппаратной перфузии с сопоставимой группой реципиентов трансплантатов печени после СХК. Данное исследование позволило выявить снижение частоты развития ранней дисфункции печеночного трансплантата в группе, где была использована гипотермическая аппаратная перфузия [19]. Кроме того, в ближайшие годы ожидаются результаты международного многоцентрового рандомизированного исследования преимуществ аппаратной перфузии при трансплантации легких [20], а наиболее распространенным протоколом нормотермической перфузии легких (EVLP) в настоящее время является протокол Программы трансплантации легких Торонто, обладающей наибольшим опытом EVLP в мире. За период с октября 2008 г. по декабрь 2017 г. в этой программе было выполнено 372 процедуры EVLP, что позволило увеличить количество трансплантаций легких на 70% за указанный период времени с отличными ранними и отдаленными посттрансплантационными результатами [32].
8.2.3. Наиболее распространенные растворы для статической холодовой консервации
Сравнительная характеристика наиболее распространенных растворов для СХК приведена в табл. 8.3. Если длительность допустимого периода холодовой ишемии не превышена, большинство исследований, посвященных данной проблеме, демонстрируют идентичные результаты при использовании растворов HTK (гистидин-триптофан-кетоглутарат), Celsior и раствора Висконсинского университета (University of Wisconsin solution, UW) при трансплантации печени, почки и поджелудочной железы [21].
Euro-Collins | UW | HTK | Celsior | |
---|---|---|---|---|
Электролиты |
||||
Na+ (ммоль/л) |
10 |
25–30 |
15 |
100 |
K+ (ммоль/л) |
115 |
125–130 |
10 |
15 |
Ca2+ (ммоль/л) |
– |
– |
0,015 |
0,25 |
Mg2+ (ммоль/л) |
– |
5 |
4 |
13 |
Cl– (ммоль/л) |
15 |
– |
50 |
41,5 |
Буферы |
||||
Фосфат (ммоль/л) |
57,5 |
25 |
– |
– |
Бикарбонат (ммоль/л) |
10 |
– |
– |
– |
Сульфат (ммоль/л) |
– |
5 |
– |
– |
Гистидин (ммоль/л) |
– |
– |
198 |
30 |
Углеводы |
||||
Маннитол (г/л) |
– |
– |
30 |
60 |
Рафиноза (ммоль/л) |
– |
30 |
– |
– |
Лактобионат (ммоль/л) |
– |
100 |
– |
80 |
Гидроксиэтилкрахмал (г/л) |
– |
50 |
– |
– |
Декстроза (Глюкоза♠) (ммоль/л) |
198 |
– |
– |
– |
Энергетические субстраты |
||||
Аденозин (ммоль/л) |
– |
5 |
– |
– |
Aльфа-кетоглутарат (ммоль/л) |
– |
– |
1 |
– |
Триптофан (ммоль/л) |
– |
– |
2 |
– |
Глутамат (ммоль/л) |
– |
– |
– |
20 |
Антиоксиданты |
||||
Аллопуринол (ммоль/л) |
– |
1 |
– |
– |
Дексаметазон (мг/л) |
– |
16 |
– |
– |
Глутатион (ммоль/л) |
– |
3 |
– |
3 |
Другие компоненты |
||||
Инсулин (ЕД/л) |
– |
40 |
– |
– |
Бензилпенициллин (ЕД/л) |
– |
200 000 |
– |
– |
Общие свойства |
||||
pH |
7,0 |
7,4 |
7,2 |
7,3 |
Осмолярность (мосм/л) |
375 |
320 |
310 |
320 |
Вязкость (сП при 4° C) |
нет данных |
5,7 |
1,8 |
1,15 |
8.2.3.1. Раствор Коллинза
Разработанный в 1969 г. раствор Коллинза был основан на сочетании высокого содержания ионов калия, имитирующего внутриклеточный состав, и осмотического барьера, поддерживаемого глюкозой, с целью подавления набухания клеток [11]. Добавление магния обосновывалось его действием как стабилизатора клеточных мембран, однако в присутствии фосфата образовывался фосфат магния в виде кристаллического осадка, о чем сообщалось при использовании исходного раствора. Для устранения этой проблемы в Европе была разработана модификация оригинального раствора Коллинза под названием Euro-Collins, в котором отсутствовали ионы магния, а вместо декстрозы (Глюкозы♠) использовался маннитол [13]. Раствор Коллинза и его более поздний вариант Euro-Collins широко использовались при консервации донорских органов вплоть до появления раствора Висконсинского университета в конце 1980-х гг. [11, 21].
8.2.3.2. Раствор Висконсинского университета, или раствор Бельцера
Разработанный в 1987 г. Belzer и Southard для консервации поджелудочной железы, раствор UW в настоящее время является наиболее часто используемым консервирующим раствором для органов брюшной полости [21]. Этот осмотически активный раствор характеризуется высоким содержанием калия, низкой концентрацией натрия; в нем также содержатся предшественник АТФ (аденозин) и антиоксиданты (аллопуринол и восстановленный глутатион). Осмотически активные вещества (рафиноза и лактобионат) предотвращают набухание клеток, создавая при этом высокую вязкость раствора. Для более эффективной перфузии в раствор добавлен коллоид (гидроксиэтилкрахмал) [11, 21]. К потенциально негативным эффектам раствора UW относят риск остановки сердца при реперфузии трансплантата вследствие гиперкалиемии, развитие билиарных ишемически обусловленных осложнений и микроциркуляторных нарушений. Эти недостатки в большинстве случаев не являются клинически значимыми, и в то же время раствор обеспечивает безопасную пролонгированную консервацию всех органов брюшной полости [21].
8.2.3.3. Гистидин-триптофан-кетоглутарат-раствор
Первоначально разработанный Bretschneider в 1980 г. как раствор для кардиоплегии, HTK-раствор в настоящее время представляет собой альтернативу раствору UW [12, 21]. Основными компонентами этого кристаллоидного раствора с осмолярностью, несколько превышающей осмолярность внутриклеточного пространства, являются сильный буфер (гистидин), осмотически активный компонент (маннитол) и низкопроницаемые аминокислоты (триптофан и a-кетоглутаровая кислота), которые способствуют стабилизации клеточных мембран и могут использоваться клетками в качестве субстратов для анаэробного метаболизма. Электролитный состав раствора HTK характеризуется низкой концентрацией калия, что, в свою очередь, обеспечивает его безопасное высвобождение в системный кровоток реципиента после реперфузии. Более низкая вязкость раствора HTK обеспечивает более эффективный флашинг и быстрое охлаждение донорских органов. Еще одним преимуществом HTK, способствующим его активному клиническому использованию в последние 20 лет, особенно в развивающихся странах, является его меньшая стоимость в сравнении с раствором UW, что обеспечивает снижение финансовых затрат на работу с ПД [11]. Кроме того, по результатам значительного количества клинических исследований было установлено, что применение HTK сопровождается меньшим количеством билиарных осложнений после трансплантации печени. Однако, по данным Национального регистра США по трансплантации почек, поджелудочной железы и печени, консервация этих органов с помощью раствора HTK сопровождается бóльшим числом неблагоприятных событий и более ранним сроком потери трансплантата реципиентами в сравнении с раствором UW [21, 22].
8.2.3.4. Раствор Celsior
Консервирующий раствор Celsior, разработанный в 1995 г. для консервации донорского сердца, в настоящее время широко используется при эксплантации как органов грудной клетки, так и органов брюшной полости [21]. Этот раствор сочетает в своем составе некоторые компоненты раствора UW (осмотические активные компоненты: лактобиотат и маннитол) и раствора HTK (гистидин). Однако в отличие от раствора UW единственным антиоксидантом в растворе Celsior является восстановленный глутатион. В сравнении с UW и Euro-Collins раствор Celsior обладает более низкой концентрацией калия и меньшей вязкостью, что позволяет осуществлять более быструю холодовую перфузию in situ крупных паренхиматозных органов (печень, легкие) [2, 11].
8.2.4. Комментарии по поводу консервации донорского сердца (А.М. Гранде)
При динамической консервации обеспечивается поступление кислорода и метаболических веществ в эксплантированные донорские органы, что способствует снижению ИРП и увеличению выживаемости трансплантированных органов. При трансплантации сердца приемлемый срок консервации составляет 4–6 ч, однако даже после 3 ч консервации отмечается определенное увеличение посттрансплантационной смертности реципиентов [23]. Именно поэтому многие исследования в области трансплантации сердца направлены на совершенствование существующих перфузионных консервирующих растворов за счет добавления или исключения отдельных компонентов, которые могут оказывать определенное влияние на выживаемость трансплантата. Растворы для консервации подразделяются на две обширные категории, отличающиеся по концентрации электролитов:
Консервирующие растворы внутриклеточного типа снижают потребность донорского органа в АТФ за счет снижения выработки энергии, необходимой для поддержания активности мембранной Na+/K+-аденозинтрифосфатазы [24]. Однако, принимая во внимание, что для сердечного трансплантата в одних только США используется более 150 видов различных консервирующих растворов, такая ситуация убедительно иллюстрирует отсутствие оптимального решения проблемы наиболее эффективной консервации донорского сердца. Клеточная и функциональная консервация миокарда начинается при гипотермии, следующей за необратимой остановкой сердечной деятельности. Потребление АТФ снижается до незначительного уровня, что поддерживается анаэробным гликолизом в период ишемии. Тем не менее при необратимом истощении запасов АТФ развивается контрактура миофибрилл [26]. Кроме того, одной из основных целей растворов для консервации сердца является поддержание электролитного баланса, и, хотя активность Na+/K+-аденозинтрифосфатазы при СХК значительно снижается, происходит непрерывная диффузия ионов по градиенту концентрации: внутриклеточные ионы водорода обмениваются на внеклеточные ионы натрия, которые, в свою очередь, замещаются ионами кальция. В конечном счете концентрация ионов кальция в сарколемме способствует усилению ИРП миофибрилл кардиомиоцитов.
8.3. Новые стратегии
8.3.1. Динамическая консервация (аппаратная перфузия) донорских органов ex vivo
Главным преимуществом аппаратной перфузии в настоящее время является возможность оценки функции и жизнеспособности донорского органа в период между эксплантацией и трансплантацией с помощью измерения различных физиологических параметров и анализа биохимических маркеров в перфузате. Однако определение значимости последних для достоверного прогнозирования дальнейшей функции трансплантата остается предметом продолжающихся исследований [17]. В отношении трансплантации почки известно, что показатели сосудистого сопротивления коррелируют с частотой развития ОФТ и 1-летней выживаемостью трансплантата. Однако прогностическая ценность данного критерия невелика, что не позволяет расценивать сосудистое сопротивление как независимую характеристику качества почечного трансплантата для принятия решения о трансплантации этого органа или отказе от него. Для более точного прогнозирования исходов трансплантации почки требуется интеграция множества донорских факторов, биохимических маркеров и параметров органной перфузии в сложные многофакторные системы оценки качества донорского органа [27]. Кроме того, аппаратная перфузия предоставляет уникальную возможность фармакологического воздействия на донорский орган ex vivo с целью улучшения его качества до проведения непосредственно трансплантации. К настоящему времени опубликовано явно недостаточно результатов исследований по фармакотерапии трансплантата в ходе аппаратной перфузии, ограничивающихся доклиническими моделями крупных животных. Однако потенциал этого направления динамической консервации достаточно велик, поскольку существенное улучшение качества трансплантата может быть достигнуто за счет относительно простого добавления в перфузат специфических фармакологических агентов [28]. Весьма перспективным выглядит использование в процессе динамической консервации органов мезенхимальных стволовых клеток благодаря их прогенеративным, противовоспалительным и иммуномодулирующим свойствам. В нескольких исследованиях было продемонстрировано, что введение мезенхимальных стволовых клеток способствует восстановлению почечной функции после острого почечного повреждения, вызванного ИРП. В рандомизируемом контролируемом исследовании была изучена роль аутологичных мезенхимальных стволовых клеток в качестве индукционной терапии при трансплантации почки для снижения иммуногенности донорского органа. В свою очередь аппаратная перфузия представляется оптимальным способом таргетного введения мезенхимальных стволовых клеток непосредственно в донорский орган, благодаря чему решается проблема транспортировки и безопасности [17].
8.3.2. Доноры, умершие в результате необратимой остановки сердечной деятельности
Донорству органов после смерти, констатированной по циркуляторным критериям, посвящена отдельная глава данного руководства. В этом разделе будут освещены лишь некоторые существенные аспекты. Потенциал донорства после смерти в результате необратимой остановки сердца был выявлен уже на ранних этапах развития трансплантологии, и в последнее время интерес к DCD как к важному источнику расширения донорского пула только увеличивается. Наличие периода тепловой ишемии донорских органов между необратимой остановкой кровообращения и началом их холодовой перфузии является кардинальным отличием этого типа посмертного донорства от донорства после СГМ. Кровообращение и дыхательная функция у ПД с СГМ сохраняются вплоть до начала холодовой перфузии органов in situ, что сопровождается минимальным сроком их ишемии и незначительным дальнейшим повреждением во время холодовой консервации. Напротив, в органах, полученных от DCD, исходно значительные ишемические повреждения, возникшие в результате длительной тепловой аноксии, в дальнейшем, по мере увеличения длительности периода холодовой ишемии, экспоненциально усугубляются. Согласно Маастрихтской классификации, среди доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности, выделяют категории «контролируемых» и «неконтролируемых» [29]. «Неконтролируемый» DCD объявляется умершим по прибытии в стационар или после неудачной СЛР, начатой в процессе транспортировки или сразу после прибытия в стационар. Процесс посмертного донорства в таких ситуациях невозможно спланировать, отсутствует какая-либо возможность заранее организовать деятельность, связанную с донорством органов, поэтому определить истинную продолжительность первичной тепловой ишемии и степень повреждения донорских органов не представляется возможным. В случае «контролируемого» DCD необратимая остановка кровообращения является ожидаемой и наступает после отказа от жизнеподдерживающей терапии ввиду ее бесперспективности и бесполезности. Обычной практикой считается получение согласия на посмертное донорство от родственников умершего. Кроме того, в такой ситуации возможно транспортировать хирургическую бригаду по эксплантации в донорский стационар. Из этого следует, что время тепловой ишемии органов при «контролируемом» донорстве после смерти в результате необратимой остановки сердца значительно меньше, чем в категории «неконтролируемых» DCD [29, 30]. Результаты трансплантации органов, полученных от DCD, аналогичны результатам трансплантаций органов от доноров, умерших в результате СГМ. Однако крайне важным критерием является период относительно безопасной тепловой ишемии для различных донорских органов. Так, считается, что для печени он составляет не более 30 мин, а для почки и поджелудочной железы — не более 60 мин после необратимой остановки кровообращения [31]. Кроме того, на длительность тепловой ишемии могут оказывать влияние особенности законодательства: так, в зависимости от регламентирующих нормативно-правовых актов после констатации смерти канюляция бедренных сосудов и начало холодовой перфузии in situ могут быть произведены еще до получения согласия родственников умершего на донорство органов. Разумеется, при изъятии органов у доноров после необратимой остановки сердца крайне желательно использовать технику быстрой эксплантации с «диссекцией в холодном операционном поле» [29].
Литература
-
Baranski A. Surgical technique of abdominal organ procurement: step by step. Springer, London, 2009.
-
Aseni P., De Carlis L. Prelievomultiorgano a scopo di trapianto. Ghedimedia, Milano, 2011.
-
Wunderlich H., Brockmann J.G., Voigt R. et al. DTG procurement guidelines in heart beating donors // Transpl. Int. 2011. Vol. 24, N 7. P. 733–757.
-
Starzl T.E., Hakala T.R., Shaw B.W. Jr. et al. A flexible procedure for multiple cadaveric organ procurement // Surg. Gynecol. Obstet. 1984. Vol. 158, N 3. P. 223–230.
-
Bellandi T., Albolino S., Tartaglia R. et al. Unintended transplantation of three organs from an HIV-positive donor: report of the analysis of an adverse event in a regional health care service in Italy // Transplant. Proc. 2010. Vol. 42, N 6. P. 2187–2189.
-
Ison M.G., Holl J.L., Ladner D. Preventable errors in organ transplantation: an emerging patient safety issue? // Am. J. Transplant. 2012. Vol. 12, N 9. P. 2307–2312.
-
Pondrom S. The AJT report: news and issues that affect organ and tissue transplantation // Am. J. Transplant. 2011. Vol. 11, N 7. P. 1345–1346.
-
Kucirka L.M., Singer A.L., Segev D.L. High infectious risk donors: what are the risks and when are they too high? // Curr. Opin. Organ Transplant. 2011. Vol. 16, N 2. P. 256–261.
-
Brockmann J.G., Vaidya A., Reddy S. et al. Retrieval of abdominal organs for transplantation // Br. J. Surg. 2006. Vol. 93, N 2. P. 133–146.
-
Vegeto A., Berardinelli L. Il trapianto di rene. UTET, Milano, 1999.
-
Guibert E.E., Petrenko A.Y., Balaban C.L. et al. Organ preservation: current concepts and new strategies for the next decade // Transfus. Med. Hemother. 2011. Vol. 38, N 2. P. 125–142.
-
Anaya-Prado R., Delgado-Vázquez J.A. Scientific basis of organ preservation // Curr. Opin. Organ Transplant. 2008. Vol. 13, N 2. P. 129–134.
-
Henry S.D., Guarrera J.V. Protective effects of hypothermic ex vivo perfusion on ischemia/reperfusion injury and transplant outcomes // Transplant. Rev. (Orlando). 2012. Vol. 26, N 2. P. 163–175.
-
Eltzschig H.K., Eckle T. Ischemia and reperfusion: from mechanism to translation // Nat. Med. 2011. Vol. 17, N 11. P. 1391–1401.
-
McLaren A.J., Friend P.J. Trends in organ preservation // Transpl. Int. 2003. Vol. 16, N 10. P. 701–708.
-
Moers C., Smits J.M., Maathuis M.H. et al. Machine perfusion or cold storage in deceased-donor kidney transplantation // N. Engl. J. Med. 2009. Vol. 360, N 1. P. 7–19.
-
Van Raemdonck D., Neyrinck A., Rega F. et al. Machine perfusion in organ transplantation: a tool for ex-vivo graft conditioning with mesenchymal stem cells? // Curr. Opin. Organ Transplant. 2013. Vol. 18, N 1. P. 24–33.
-
Moers C., Pirenne J., Paul A. et al. Machine perfusion or cold storage in deceased-donor kidney transplantation // N. Engl. J. Med. 2012. Vol. 366, N 8. P. 770–771.
-
Guarrera J.V., Henry S.D., Samstein B. et al. Hypothermic machine preservation in human liver transplantation: the first clinical series // Am. J. Transplant. 2010. Vol. 10, N 2. P. 372–381.
-
Warnecke G., Moradiellos J., Tudorache I. et al. Normothermic perfusion of donor lungs for preservation and assessment with the organ care system lung before bilateral transplantation: a pilot study of 12 patients // Lancet. 2012. Vol. 380, N 9856. P. 1851–1858.
-
Parsons R.F., Guarrera J.V. Preservation solutions for static cold storage of abdominal allografts: which is best? // Curr. Opin. Organ Transplant. 2014. Vol. 19, N 2. P. 100–107.
-
Stewart Z.A., Cameron A.M., Singer A.L. et al. Histidine-Tryptophan-Ketoglutarate (HTK) is associated with reduced graft survival in deceased donor livers, especially those donated after cardiac death // Am. J. Transplant. 2009. Vol. 9, N 2. P. 286–293.
-
Taylor D.O., Edwards L.B., Mohacsi P.J. et al. The registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: twentieth official adult heart transplant report — 2003 // J. Heart Lung Transplant. 2003. Vol. 22, N 6. P. 616–624.
-
Belzer F.O., Southard J.H. Principles of solidorgan preservation by cold storage // Transplantation. 1988. Vol. 45, N 4. P. 673–676.
-
Demmy T., Biddle J.S., Bennett L.E. et al. Organ preservation solutions in heart transplantation – patterns of usage and related survival // Transplantation. 1997. Vol. 63, N 2. P. 262–269.
-
Costanzo M.R., Dipchand A., Starling R. et al. The International Society of Heart and Lung Transplantation Guidelines for the care of heart transplant recipients // J. Heart Lung Transplant. 2010. Vol. 29, N 8. P. 914–956.
-
Jochmans I., Moers C., Smits J.M. et al. The prognostic value of renal resistance during hypothermic machine perfusion of deceased donor kidneys // Am. J. Transplant. 2011. Vol. 11, N 10. P. 2214–2220.
-
Bon D., Chatauret N., Giraud S. et al. New strategies to optimize kidney recovery and preservation in transplantation // Nat. Rev. Nephrol. 2012. Vol. 8, N 6. P. 339–347.
-
Reddy S., Friend P. Liver transplantation outcomes using donors after cardiac death // Curr. Opin. Organ Transplant. 2005. Vol. 10. P. 95–100.
-
Manzarbeitia C., Reich D.J. Non-heartbeating donors: special considerations for procurement and preservation in liver transplantation // Curr. Opin. Organ Transplant. 2005. Vol. 10. P. 101–104.
-
Steinbrook R. Organ donation after cardiac death // N. Engl. J. Med. 2007. Vol. 357, N 3. P. 209–213.
Дополнительно к указанным в оригин але.
-
Cypel M., Yeung J.C., Donahoe L. et al. Normothermic ex vivo lung perfusion: Does the indication impact organ utilization and patient outcomes after transplantation? // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2019. Vol. S0022–5223, N 19. P. 31732–31735. DOI: https://doi:org/10.1016/j.jtcvs.2019.06.123
Часть III. Хирургическая техника эксплантации органов грудной клетки
Глава 9. Ревизия органов грудной клетки и средостения. Эксплантация сердца. Антонино М. Гранде
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it
Советы, приемы и возможные ошибки при эксплантации сердца
-
Визуальная оценка грудной клетки на предмет рубцов и ушибов.
-
Пальпация и контроль коронарных артерий для выявления атеросклероза и кальцификации.
-
Если вы не собираетесь оставаться у операционного стола во время работы абдоминальных хирургов, закончите свои манипуляции до канюляции брюшной аорты и нижней полой вены (НПВ).
-
Договоритесь с абдоминальными хирургами о пути венозного оттока: в перикард или через инфраренальный отдел НПВ.
-
Внутривенное введение гепарина натрия (Гепарина♠) — после пережатия аорты.
-
Убедитесь, что абдоминальные хирурги не начинают холодовую перфузию до удовлетворительной мобилизации сердца.
-
Пересечение левой легочной вены или — в случае эксплантации легких — ушка левого предсердия для декомпрессии левого желудочка.
-
Поперечное пережатие восходящей аорты над кардиоплегической канюлей.
-
В полость перикарда засыпают ледяную крошку и помещают аспиратор в НПВ.
-
Во время кардиоплегической инфузии необходимы контроль давления в восходящей аорте и предотвращение дилатации левого желудочка за счет ослабления зажима на аорте на несколько секунд.
-
Следует избегать дилатации желудочков сердца, тем самым контролируя эффективность декомпрессии, что особенно важно при одновременном изъятии легких: при неадекватной декомпрессии возможна регургитация перфузата в левое предсердие.
-
К эксплантации сердца приступают по завершении кардиоплегии: пересекают НПВ, правую и левую легочные вены и артерии, ВПВ и аорту на уровне дуги. При эксплантации легких необходимо формирование мышечной манжеты левого предсердия вокруг легочных вен (см. главу 10).
-
Этап back-table: рассечение легочного ствола в зоне бифуркации, ревизия клапанов сердца на предмет дефектов и вегетаций, оценка наличия дефектов межпредсердной перегородки, открытого овального окна, а также достаточного объема ткани предсердия вокруг коронарного синуса.
-
Сохраните кардиоплегическую канюлю, что облегчит кардиоплегическую инфузию во время трансплантации сердца.
-
Упаковка донорского сердца в стерильные пакеты с холодным изотоническим раствором натрия хлорида или кардиоплегическим раствором.
9.1. Введение
Повсеместное распространение таких средств безопасности, как шлемы для водителей мотоциклов, ремни безопасности, ограничения скорости и улучшения в дизайне автомобилей, а также улучшение координации работы бригад скорой медицинской помощи способствовали снижению количества и степени тяжести ЧМТ, полученных в результате дорожно-транспортных происшествий. За 10-летний период деятельности NITp была выполнена оценка пригодности 153 донорских сердец и 118 пар донорских легких: из них 106 сердец (69,28%) и 38 пар легких (47,5%) были признаны пригодными для последующей трансплантации. Однако в период 1995–1999 гг. (период А) пригодными для трансплантации были признаны 86% донорских сердец (79 из 92) и 59% пар донорских легких (30 из 51). Это было значительно больше, чем в период 2000–2005 гг. (период В), за который пригодными для трансплантации были признаны 44% сердец (27 из 61) и 12% пар легких (8 из 67) (оба p <0,001, точный тест Фишера) [1]. Обследование всех донорских органов за указанные периоды было интраоперационным, с применением одинаковых критериев пригодности. Однако с течением времени критерии пригодности доноров и донорских органов становятся все менее строгими. Уже не являются редкостью случаи сообщения из ОРИТ донорского стационара в координационный центр органного донорства о донорах с расширенными критериями, с изначально скомпрометированными (с точки зрения возможности последующей трансплантации) органами. Следовательно, при трансплантации торакальных органов необходимо не только стремиться к увеличению и расширению донорского пула (рассматривать в качестве потенциальных доноров лиц старше 65 лет, а также пациентов с системными заболеваниями, инфекционной патологией и др.), но и определять для ПД критерии пригодности для последующей безопасной и эффективной трансплантации. Недостаточное соблюдение критериев пригодности, с одной стороны, способствует увеличению количества эффективных доноров сердца и легких. С другой — создает большой риск для потенциальных реципиентов этих органов. Несмотря на постоянный рост пациентов в «листе ожидания» донорского сердца, трансплантологическое сообщество рекомендует придерживаться все более строгих критериев пригодности донорских органов. Так, при анализе Khush et al. данных Organ Procurement and Transplantation Network обо всех потенциальных взрослых донорах сердца (более 80 000) за период с 1995 г. по 2010 г. пригодными для трансплантации были признаны 34%, а непригодными — 48% донорских органов [2]. Кроме того, было отмечено значительное снижение количества донорских сердец, признанных пригодными для трансплантации: с 44% в 1995 г. до 29% в 2006 г. В последующем последовал незначительный рост до 32% в 2010 г.
Предикторами признания сердечного трансплантата непригодным для последующей пересадки оказались пожилой возраст, женский пол и наличие у донора ряда сопутствующих заболеваний. На протяжении исследуемого периода наблюдалось увеличение возраста доноров и наличия сопутствующей патологии, что коррелировало со снижением частоты признания сердца пригодным для трансплантации. Таким образом, необходимо продолжать разработку обоснованных и достоверных критериев пригодности донорского сердца для последующей трансплантации. Кроме того, следует признать, что именно этап эксплантации является наиболее важным, сложным и ответственным при трансплантации сердца.
9.2. Оценка донора
После констатации смерти пациента на основании СГМ и получения добровольного информированного согласия его ближайших родственников на посмертное донорствоВ РФ законодательно закреплена «презумпция согласия», при которой согласие родственников умершего не требуется, проводится медицинское обследование донора, включающее изучение медицинского и социального анамнеза на основании информации, полученной от родственников умершего. Инструментальное обследование потенциального донора сердца включает ЭхоКГ и коронарную ангиографию, особенно для возрастных доноров мужского пола (старше 40 лет). Абсолютными противопоказаниями для донорства сердца являются активный инфекционный или злокачественный опухолевый процесс, а также длительная остановка сердечной деятельности. К относительным противопоказаниям относятся возраст донора, наличие у него сахарного диабета или заболеваний легих, никотиновая зависимость в анамнезе, злоупотребление алкоголем и наркотиками. Кроме того, в обязанности ведущего хирурга бригады по эксплантации входит оценка соответствия переданной в координационный центр информации, содержащейся в медицинской карте потенциального донора, а также правильная идентификация донора и проверка соответствия группы крови, указанной в медицинской документации.
Помимо этого, чрезвычайно важной является предоперационная оценка статуса реципиента. В случае если реципиент ранее перенес операцию на сердце, корэктомия потребует у него больше времени, что должно быть согласовано ТК с кардиохирургом бригады по эксплантации. Более того, в большинстве случаев анестезиологическое пособие у реципиента откладывается до момента окончательного признания донорского сердца пригодным для трансплантации, поэтому для сокращения времени холодовой ишемии органа необходима хорошая коммуникация между кардиоторакальной и абдоминальной бригадами по эксплантации [3].
Коронарная ангиография является обязательной при условии возраста донора старше 40 лет, наличия в анамнезе артериальной гипертензии и курения. При тщательном исследовании у таких доноров могут быть выявлены различные нарушения и снижение коронарного кровотока. Следует помнить, что выявленные при коронарографии нюансы могут находиться в допустимых пределах, однако при ревизии во время эксплантации обернуться массивным атеросклеротическим поражением коронарных артерий, вплоть до кальцификации. На рис. 9.1 приведена коронарная ангиография мужчины 48 лет, умершего от геморрагического инсульта, по результатам которой выявлено диффузное сужение просвета коронарных сосудов, что трактовалось как «некритические коронарные нарушения». При интраоперационной ревизии (рис. 9.2) обнаружена диффузная кальцификация коронарных артерий.



Именно поэтому изменения, выявленные при коронарографии и признающиеся у лиц старше 40 лет субоптимальными, не всегда могут оказаться таковыми у потенциальных доноров. Как показано на рис. 9.3, при интраоперационной ревизии у 48-летней женщины, причиной смерти которой стал геморрагический инсульт, выявлена значимая кальцификация передней межжелудочковой ветви левой коронарной артерии. В данном клиническом наблюдении по результатам коронарографии было выявлено лишь замедление коронарного кровотока, что не позволило идентифицировать внутрисосудистые изменения.

9.3. Хирургическая техника
Ревизия органов грудной клетки и средостения имеет значение для выявления инфекционного или опухолевого процесса у донора.
Ревизию средостения и плевральных полостей на предмет узелковых структур и спаечного процесса проводят непосредственно перед вскрытием перикарда, особенно в случаях отсутствия предоперационной компьютерной томографии грудной клетки. Необходимо также произвести осмотр париетальной плевры для исключения злокачественной мезотелиомы и ревизию легких на предмет узелковых образований, которые могут оказаться признаком как первичного злокачественного процесса (аденокарцинома легкого), так и метастазирования следующих онкологических процессов: почечно-клеточный рак, мультиформная глиобластома и лимфома. Кроме того, узелковые структуры могут быть источником инфекционных заболеваний, поэтому необходимо выполнять биопсию любого подозрительного узла, выявленного при ревизии.
Использование большинства лекарственных препаратов [противосудорожных, антигипертензивных, противорвотных, осмотических диуретиков, анальгетиков, гепарина натрия (Гепарина♠), стимуляторов моторики желудочно-кишечного тракта] во время эксплантации не требуется и должно быть прекращено.
Инвазивный мониторинг системного АД, давления в легочной артерии, давления в правом предсердии, необходимый для определения адекватного объема инфузионной терапии и дозы вазоактивных препаратов, продолжается после доставки донора в операционную. Коррекция водного баланса донора позволяет уменьшить потребность в инотропных препаратах, высокие дозы которых способствуют ишемическому повреждению сердца и других органов. Именно поэтому, особенно при гемоглобине ниже 100 г/л, следует выполнить трансфузию 1–2 доз эритроцитарной массы для профилактики последствий возможного кровотечения в ходе хирургического вмешательства.
По мнению авторов руководства, эксплантация сердца является последним, самым важным этапом, на котором возможна оценка пригодности донорского органа для последующей трансплантации.
На операционном столе донор находится в положении лежа на спине, обе руки отведены под углом 80° и размещены на подлокотниках, ноги не перекрещиваются. После бритья и обработки операционного поля производят его отграничение — накрывают тело стерильным операционным бельем и инцизионной пленкой. Хирургическое вмешательство всегда начинает кардиохирург со срединного разреза кожи от яремной вырезки до мечевидного отростка грудины. Гемостаз достигается с помощью электрокоагуляции, рассекаются подкожная жировая клетчатка и собственная фасция груди. С помощью проволочной пилы Джигли или стернотома продольно пересекается грудина. Вилочковая железа удаляется, передний листок перикарда рассекается по средней линии, на края перикарда накладываются швы-держалки.
На этом этапе следует выполнить тщательную ревизию донорского сердца, руководствуясь следующей последовательностью шагов:
-
оценка перегрузки правых отделов сердца на основании расширения легочного ствола;
-
оценка гиповолемии малого круга кровообращения на основании сужения легочного ствола;
-
ревизия эпикарда на предмет кровоизлияний и гематом, вызванных травмой;
-
детальный осмотр и пальпация коронарных артерий для выявления атеросклеротического поражения и кальцификации;
-
оценка клапанной патологии на основании патологических шумов;
С целью коррекции перегрузки правых отделов сердца, сопровождающейся дилатацией и угнетением функции правого желудочка, врачом — анестезиологом-реаниматологом назначается диуретическая терапия. Напротив, при гиповолемии малого круга кровообращения необходима адекватная инфузионно-трансфузионная терапия, включающая трансфузию эритроцитарной массы в случае анемии. Отрицательное влияние на сократительную способность миокарда оказывают кровоизлияния и гематомы. Одним из важнейших факторов, определяющих результат будущей трансплантации, является болезнь коронарных артерий сердца (ишемическая болезнь сердца, ИБС), диагностика которой у потенциального донора в некоторых случаях достаточно сложна, особенно при отсутствии коронарной ангиографии.
В случае нестабильной гемодинамики донора и ее инотропной поддержки необходим обязательный контроль ЦВД. Его увеличение свидетельствует о высоком конечном диастолическом давлении в правых отделах сердца. Имплантация катетера Сван–Ганса обеспечивает мониторинг давления в легочной артерии и ССС, которые могут быть повышены при нейрогенном отеке легких и остром респираторном дистресс-синдроме, вызванном травмой легких. В этой ситуации действия бригады по эксплантации заключаются в увеличении инотропной поддержки кровообращения, стимуляции диуреза и отключении ПДКВ при ИВЛ. Если, несмотря на указанные мероприятия, ЦВД донора остается резко положительным и отмечается дилатация правого желудочка, хирурги по эксплантации должны понимать, что подобная симптоматика, вероятнее всего, будет отмечаться и после трансплантации у реципиента, особенно при повышении давления в легочной артерии.
Другой значимой проблемой является невозможность снижения высоких доз инотропной поддержки кровообращения, что в ряде случаев не связано с сердечной недостаточностью, а обусловлено утратой тонуса симпатической нервной системы после СГМ. В данной ситуации низкое системное АД объясняется периферической вазодилатацией, а высокие дозы инотропных препаратов обладают значительным сосудосуживающим эффектом. Причиной дисфункции миокарда может быть также контузия или субэндокардиальное повреждение вследствие травмы или гипотензии. Определение с помощью катетера Сван–Ганса повышенного сердечного выброса и низкого ССС будет свидетельствовать о сохраненной функции миокарда.
После тщательной ревизии органов грудной клетки, оценки донорского сердца и признания его пригодным для последующей трансплантации аорту отделяют от легочного ствола, обходят тесьмой и берут в турникет. ВПВ обходят двумя толстыми лигатурами или накладывают турникет. НПВ обычно не обходят и в турникет не берут.
По готовности абдоминальных хирургов производится системная гепаринизация донора, в восходящую аорту вводится кардиоплегическая канюля, которая соединяется с системой для перфузии консервирующим раствором. ВПВ дважды перевязывают или затягивают предварительно наложенный турникет, а НПВ пересекают при одновременном деликатном оттягивании печени абдоминальным хирургом в каудальном направлении (этот прием позволяет избежать повреждения печеночных вен над диафрагмой, рис. 9.4). Аспиратор помещают внутрь пересеченной НПВ на протяжении 5–6 сердечных циклов для адекватной декомпрессии камер сердца, после чего накладывают аортальный зажим и начинают холодовую перфузию кардиоплегическим раствором. Следующим этапом надсекают левую нижнюю легочную вену (рис. 9.5) для предотвращения дилатации левого желудочка, а в полость перикарда вводят охлажденный до 4 °С изотонический раствор натрия хлорида для местного охлаждения. Продолжают аспирацию поступающей крови. После быстрой остановки сердца в фазу диастолы кардиохирург осуществляет контроль функциональной состоятельности аортального клапана — при поступлении кардиоплегического раствора постоянно должны отмечаться дилатация и высокое давление в участке аорты между аортальным зажимом и клапаном.


По окончании холодовой перфузии кардиоплегическая канюля может быть удалена, а кисетный шов на аорте завязан, однако многие хирурги предпочитают сохранить канюлю, поскольку она облегчает перфузию кардиоплегическим раствором на этапе непосредственно трансплантации. Последовательно пересекают аорту сразу под зажимом, ВПВ и НПВ, после чего сердце вывихивают кверху, раздельно пересекают легочные вены и легочный ствол с его бифуркацией. Эксплантированное сердце помещают в емкость с холодным раствором (рис. 9.6) и вскрывают в области впадения легочных вен для ревизии.

При выявлении открытого овального окна его ушивают полипропиленовой нитью 5/0 с обеих сторон. Затем донорское сердце упаковывают в стерильный пакет, содержащий холодный изотонический раствор натрия хлорида или кардиоплегический раствор. Этот пакет помещают во второй, наполненный холодным изотоническим раствором натрия хлорида, после чего орган упаковывают в пластиковый контейнер, содержащий охлажденный изотонический раствор натрия хлорида и ледяную крошку, предварительно выпустив весь воздух, который препятствует адекватной консервации органа по причине недостаточной герметичности упаковки и, как следствие, нагревания. Транспортировку донорского сердца осуществляют в термоконтейнере со льдом.
9.4. Эксплантация сердца для гетеротопической трансплантации
Эта техника, при которой выполняется анастомозирование донорского сердца с сердцем реципиента — между левыми предсердиями, правыми предсердиями, аортами и легочными артериями донора и реципиента, — была предложена J. Losman и C.H. Barnard [4, 5]. Сосудистый протез анастомозируют с легочным стволом реципиента по типу «конец в бок», после чего другой конец протеза анастомозируют с легочной артерией трансплантата по типу «конец в конец». Эксплантация сердца для последующей гетеротопической трансплантации практически аналогична описанной в этой главе стандартной методике, за исключением необходимости сохранения более длинного участка ВПВ.
Литература
-
Grande A.M. Supply and demand of organs for donation // Intensive Care Med. 2006. Vol. 32. P. 342.
-
Khush K.K., Zaroff J.G., Nguyen J., Menza R., Goldstein B.A. National decline in donor heart utilization with regional variability: 1995–2010 // Am. J. Transplant. 2015. Vol. 15, N 3. P. 642–649.
-
Camp P.C. Jr. Heart transplantation: donor operation for heart and lung transplantation // Oper. Tech. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2010. Vol. 15. P. 125–137.
-
Barnard C.N., Losman J.G. Left ventricular bypass // S. Afr. Med. J. 1975. Vol. 49. P. 303–312.
-
Novitzky D., Cooper D.K.C., Barnard C.N. The surgical technique of heterotopic heart transplantation // Ann. Thorac. Surg. 1983. Vol. 36. P. 476–482.
Глава 10. Эксплантация легких и сердечно-легочного комплекса. Антонино М. Гранде
A.M. Grande Department of Cardiac Surgery, IRCCS Fondazione Policlinico San Matteo, Pavia, Italy; e-mail: amgrande@libero.it
Советы, приемы и возможные ошибки при эксплантации легких
-
Выполните диссекцию задней межпредсердной борозды (борозды Ватерстоуна, Waterston’s groove) для обеспечения достаточной манжеты левого предсердия.
-
Установите канюлю для перфузии легких по направлению к пульмональному клапану.
-
Для декомпрессии желудочков сердца надо удалить ушко левого предсердия, а затем надсечь НПВ. Выполните этот этап до того, как полость перикарда будет заполнена кровью, поступающей из НПВ.
-
Ушко левого предсердия следует удалять без пережатия сосудистым зажимом, чтобы избежать отрыва ушка и повреждения огибающей ветви левой коронарной артерии.
-
Ввести болюсно простагландин Е1℘ в легочный ствол непосредственно перед наложением зажима на аорту.
-
Сразу после опорожнения сердца необходимо наложить зажим на восходящую аорту.
-
Начните перфузию сердца через кардиоплегическую канюлю, а легких — через легочный ствол.
-
Во время холодовой перфузии сердца необходимо постоянно контролировать давление в восходящей аорте.
-
Предотвратить дилатацию левого желудочка можно, ослабив аортальный зажим на несколько секунд.
-
К завершению перфузии цвет легких должен стать белым. Различный цвет легких свидетельствует о перфузии преимущественно одного легкого.
10.1. Введение
Дефицит донорских органов является главным фактором, ограничивающим количество трансплантаций легких, которое неизменно оставалось меньше в сравнении с трансплантациями почки, печени и сердца. Строгие критерии пригодности донорских легких для последующей трансплантации представляются другим фактором, дополнительно сдерживающим развитие этого вида медицинской помощи, поскольку даже в наиболее активных центрах трансплантации эксплантация легких производится только у 15% ПД, в то время как у 88% доноров выполняется эксплантация печени и почек, а у 30% — сердца [1]. Такая ситуация объясняется в первую очередь значительной уязвимостью легких к развитию осложнений, возникающих у потенциальных доноров как до констатации СГМ (травма грудной клетки, аспирация желудочного содержимого), так и после нее (ИВЛ-ассоциированная травма легких, пневмония, нейрогенный отек легких) [2].
10.2. Оценка донора
После прибытия в донорский стационар хирургической бригаде по эксплантации необходимо выполнить оценку потенциального донора легких по следующим критериям.
10.2.1. Методы лучевой диагностики (рентгенография и компьютерная томография органов грудной клетк
Хирург выездной донорской бригады осуществляет контроль всех выполненных исследований органов грудной клетки. В случае невозможности выполнения компьютерной томографии следует тщательно оценить рентгенографию органов грудной клетки, учитывая, что потенциальные доноры с односторонней патологией не должны быть исключены из процесса донорства легких, имея в виду контрлатеральный орган [3]. Выявленные на рентгенограмме диффузные двусторонние инфильтраты в легких свидетельствуют о наличии пневмонии у донора, особенно в совокупности с гипертермией и гнойными выделениями из верхних дыхательных путей. При подтверждении инфильтративного поражения легких при интраоперационной ревизии такие органы признаются непригодными для последующей трансплантации [4]. При травме грудной клетки необходимо учитывать, что патологические рентгенологические признаки могут быть обусловлены не только травматическим повреждением легочной паренхимы. Кроме того, при ушибе тканей грудной стенки в некоторых случаях может наблюдаться адекватная функция легких [5].
10.2.2. Посев мокроты на грамположительную флору и исследование материала, взятого при бронхоскопии
Взятие мокроты для посева на грамположительную флору с помощью аспирационного катетера или при проведении бронхоскопии проводится у всех потенциальных доноров легких. Не выявлено корреляции положительного результата посева мокроты с частотой развития посттрансплантационной пневмонии, неадекватной оксигенацией или продолжительностью посттрансплантационной ИВЛ [6–8]. По данным исследования I. Ruiz et al. (2006), частота положительного результата микробиологического исследования мокроты составила 52%, а передача соответствующего возбудителя реципиенту наблюдалась в 8,1% случаев, несмотря на соответствующую антибактериальную терапию [9]. В свою очередь, по данным центра трансплантации Ньюкасла, имеется высокий риск развития посттрансплантационных инфекционных осложнений и дисфункции трансплантата в раннем послеоперационном периоде у пациентов, перенесших пересадку легких от доноров с положительными результатами микробиологического исследования бронхоальвеолярной лаважной жидкости [10].
10.2.3. Возраст донора
Учитывая сохраняющийся дефицит донорских органов, в настоящее время возраст ПД старше 60 лет не является противопоказанием для донорства легких. В исследованиях R.J. Novick et al. (1999) и D.M. Meyer et al. (2000) было продемонстрировано, что пожилой возраст донора служит фактором, способствующим снижению ранней и отдаленной посттрансплантационной выживаемости, и влияние этого фактора усиливается при длительности холодовой ишемии более 6 ч [11, 12]. Тем не менее, согласно результатам Программы трансплантации легких Торонто (de Perrot M. et al., 2007), не выявлено корреляции посттрансплантационной госпитальной летальности с возрастом донора. Однако была выявлена связь пожилого возраста доноров со снижением 10-летней посттрансплантационной выживаемости и увеличением количества реципиентов, умерших по причине облитерирующего бронхиолита [13]. Согласно анализу регистра ISHLT за период 1995–2005 гг., пожилой возраст донора является пограничным фактором риска для показателей 1-летней выживаемости (p =0,083) и остается значимым фактором риска для 5-летней выживаемости (р =0,008) реципиентов [14]. Эти выводы подтверждаются отчетом ISHLT за 2014 г., в котором пожилой возраст доноров служит фактором риска для 1-летней выживаемости реципиентов сердца и легких (p =0,00195) [15].
10.2.4. Пол донора
По данным исследований, трансплантация легких от донора женского пола реципиенту мужского пола сопровождается более высоким уровнем 30-суточной смертности и снижением отдаленной выживаемости. В то же время трансплантация легких от донора женского пола реципиенту женского пола позволяет добиться удовлетворительных результатов операции [14, 16, 17].
10.2.5. Время холодовой ишемии
В большинстве центров трансплантации легких приемлемым временем холодовой ишемии органов считается 4–6 ч. В некоторых исследованиях сообщалось о снижении выживаемости трансплантатов при длительности холодовой ишемии, превышающей 5 ч [18]. Однако, по данным регистра ISHLT, время холодовой ишемии трансплантата не является значимым фактором риска для 1- и 5-летней выживаемости реципиентов после пересадки легких [14, 15]. Бóльшая часть центров трансплантации, использующих в работе консервирующие растворы внеклеточного типа, сообщают о хороших результатах при длительности периода холодовой ишемии более 10 ч. Следовательно, возможное длительное время холодовой ишемии при эксплантации легких в удаленном донорском стационаре не является абсолютным противопоказанием к трансплантации при хорошем состоянии донорских органов [4].
10.2.6. Адекватность газообмена
Параметры оксигенации являются наиболее важными показателями для оценки функциональной пригодности и состояния донорских легких. Необходимо проводить постоянный мониторинг газов крови у потенциального донора, а индекс оксигенации (отношение парциального давления кислорода в артериальной крови PaO2 к фракции кислорода на вдохе FiO2) представляет собой один из ключевых критериев эффективности газообмена. К расширенным критериям донорства легких относится значение индекса оксигенации более 320 [19]. Однако адекватная оксигенация не является абсолютным параметром пригодности донорских органов к трансплантации. В некоторых случаях у доноров молодого возраста показатели газообмена могут быть удовлетворительными и при тяжелой травме грудной клетки, что подтверждается результатами инструментального обследования органов грудной клетки (массивный двусторонний ушиб легких, пневмоперикард) (см. главу 3). Объем внесосудистой воды легких также должен учитываться в качестве чувствительного прогностического критерия отека легких при мониторинге газов артериальной крови и оценке функционального состояния [20]. Целевыми показателями гемодинамики при ведении потенциального донора легких являются: сердечный индекс более 2,5 л/м2 в минуту, ЦВД и ДЗЛА 10 мм рт.ст. и менее, САД 65–85 мм рт.ст. В то же время следует стремиться к ограничению инфузионно-трансфузионной терапии — трансфузия цельной крови и ее компонентов проводится при необходимости достижения целевого значения гемоглобина более 100 г/л. Для снижения ЦВД и ДЗЛА назначаются диуретические препараты; для поддержания отношения ЦВД/ДЗЛА используются коллоидные растворы желатина. Целевым показателем ССС считается 800–1200 дин×с×см–5 ×м2 , поддержанию которого способствует активное замещение вазопрессорных препаратов — например, вазопрессина℘ на норэпинефрин (Норадреналин♠) [19].
10.3. Хирургическая техника
После срединной стернотомии и оценки состояния сердца плевральные полости вскрываются без использования электрокоагуляции, чтобы избежать непреднамеренного повреждения легочной паренхимы. На этом этапе обязательной является тщательная ревизия легких, париетальной и висцеральной плевры на предмет узелковых образований, которые должны быть подвергнуты срочному гистологическому исследованию.
Производятся осмотр и пальпация легких, после чего выполняется контроль наличия зон ателектаза — аккуратная пальпация обоих легких во время раздувания их врачом — анестезиологом-реаниматологом при поддерживаемом давлении 30 см вод.ст. и ПДКВ 15 см вод.ст.
Пригодность легких для последующей трансплантацииad oculus с помощью «теста коллапса» (collapse test): эндотрахеальная трубка отсоединяется от аппарата ИВЛ, и, если легкие остаются раздутыми или медленно коллапсируют (более 10 с), тест считается положительным, что служит косвенным признаком отека интерстициального пространства, эмфиземы или обструктивного заболевания дыхательных путей, инфекционного процесса с инфильтративным поражением легких. Вывихивание легких из плевральных полостей для точного контроля зон ателектаза не рекомендуется, поскольку может привести к выраженной легочной гиперинфляции (гипервоздушности), повреждению корня легкого, падению САД и, как следствие, подвергнуть риску проведение всей процедуры мультиорганной эксплантации [21]. Ревизия легких должна выполняться деликатно и осторожно, так как интраоперационные повреждения (гематома, множественные ушибы паренхимы) ставят под угрозу успех будущей трансплантации (рис. 10.1).
С помощью электрокоагуляции начинают аккуратную диссекцию легочного ствола и правой легочной артерии от аорты, после чего мобилизуют ВПВ, разделяя сращения между ней и правой легочной артерией (не следует захватывать пинцетом ушко правого предсердия, содержащее синоатриальный узел!). Диссекцию ВПВ начинают справа от ранее мобилизованной правой легочной артерии до места впадения в нее левой безымянной вены, затем ВПВ обходят двумя толстыми шелковыми лигатурами. Мобилизуют и перевязывают непарную вену, но не пересекают ее (преимущества пересечения этой вены отсутствуют, однако такой прием может явиться причиной кровотечения вследствие непреднамеренного повреждения расположенных рядом ветвей правой легочной артерии, отходящих к верхней доле легкого) [21]. Выделяют и берут на держалки левую безымянную вену и безымянную артерию, непосредственно позади которой располагается передняя стенка трахеи (рис. 10.2). Продольно вскрывают претрахеальную пластинку шейной фасции и по хрящевым кольцам с обеих сторон трахеи производят аккуратную диссекцию до ее задней (мембранозной) стенки. На этом участке трахеи возможны ее мобилизация и взятие на держалку посредством дальнейшей деликатной диссекции тупым путем с помощью изогнутого зажима или пальцевой диссекции [22].


Следующим этапом является диссекция задней межпредсердной борозды (борозды Ватерстоуна, Waterston’s groove) для обеспечения достаточной манжеты левого предсердия. Для визуализации части стенки левого предсердия, прикрытой правым предсердием, производят тракцию правого предсердия влево, после чего выполняют продольное рассечение борозды Ватерстоуна (рис. 10.3, a).
Имплантацию кардиоплегической канюли производят в среднюю часть восходящего отдела аорты через кисетный шов, предварительно наложенный полипропиленовой нитью 4/0. В дистальную часть легочного ствола устанавливают канюлю для перфузии легких по направлению к пульмональному клапану для того, чтобы предотвратить перфузию преимущественно одного легкого (в большинстве случаев левого, так как именно левая легочная артерия является непосредственным продолжением легочного ствола).
По готовности абдоминальных хирургов производится системная гепаринизация донора и в легочный ствол болюсно вводится простагландин Е1℘ 500 мкг непосредственно перед наложением зажима на восходящую аорту. ИВЛ с низкой скоростью потока и малым дыхательным объемом продолжается до пересечения трахеи.
Перевязывают ВПВ, для декомпрессии левых отделов сердца резецируют ушко левого предсердия. Ушко левого предсердия следует удалять без предварительного наложения сосудистого зажима, чтобы избежать отрыва ушка и повреждения огибающей ветви левой коронарной артерии. Затем надсекают НПВ для декомпрессии правого желудочка. После опорожнения камер сердца в течение 5–6 сердечных циклов пережимают аорту и начинают холодовую перфузию сердца через кардиоплегическую канюлю (под давлением 80–100 мм рт.ст.) и легких через канюлю в легочном стволе (под действием гравитации). К окончанию перфузии цвет легких должен стать белым — различный цвет легких свидетельствует о перфузии преимущественно одного легкого.
После полного пересечения НПВ сердце отводится влево для визуализации вскрытой борозды Ватерстоуна. С помощью скальпеля №11 или острых ножниц производится рассечение левого предсердия, при этом нужно сохранить не менее 1 см ткани вокруг правых легочных вен (см. рис. 10.3, a). После этого сердце вывихивают в ростральном направлении и по задней поверхности визуализируют устье левых легочных вен. Рассечение левого предсердия продолжают по направлению справа налево на середине расстояния между коронарным синусом и устьем левых легочных вен (рис. 10.3, б), затем — до основания ушка левого предсердия. Заканчивают формирование мышечной манжеты, достигая рассеченной ранее борозды Ватерстоуна (рис. 10.3, в).

Пересекаются ВПВ, непарная вена, безымянная и левая сонная артерии. Дуга аорты пересекается после отхождения левой сонной артерии, легочный ствол — в месте канюляции. Производится эксплантация сердца, после которой некоторые центры трансплантации рекомендуют выполнять дополнительную ретроградную холодовую перфузию легких. При этом продолжается ИВЛ с низкой скоростью потока и малым дыхательным объемом. Продольно рассекают перикард в месте его перехода в диафрагму и пересекают нижние легочные связки, стараясь не повредить нижние доли легких. Атравматичными зажимами захватывают и оттягивают кпереди и кверху рассеченный перикард, который служит направляющей поверхностью последующей диссекции. Правое легкое аккуратно вывихивают влево, рассекают аваскулярную зону между аортой и пищеводом. Аналогичные действия выполняют для левого легкого, после чего легкие возвращают в исходное анатомическое положение и рассекают ткани средостения над трахеей с обеих сторон. Затем трахею оттягивают кпереди, легкие раздуваются до 80% своего объема, эндотрахеальная трубка удаляется. Трахею на 2 кольца выше киля дважды прошивают ушивателем органов и пересекают между линиями скрепок. Легкие извлекают из грудной клетки, выполняют осмотр органов, после чего упаковывают с помощью метода трех пакетов: первый мешок содержит легкие и консервирующий раствор, два последующих заполняются ледяной крошкой и охлажденным изотоническим раствором натрия хлорида. Транспортировку органов осуществляют в термоконтейнере со льдом.
10.4. Эксплантация комплекса сердце–легкие
Хирурги выездной донорской бригады должны оценить параметры гемодинамики и ИВЛ потенциального донора, проверить результаты рентгенографии, компьютерной томографии органов грудной клетки, ЭхоКГ, электрокардиографии и коронарной ангиографии при наличии таковых. Технически эксплантация комплекса сердце–легкие несколько проще раздельной эксплантации сердца и легких. После стернотомии и вскрытия перикарда производят мобилизацию ВПВ (над местом впадения непарной вены) и трахеи. После пережатия аорты болюсно вводят простагландин Е1℘ в легочный ствол и начинают холодовую перфузию сердца и легких. За счет удаления ушка левого предсердия осуществляют декомпрессию левого желудочка, пересекают ВПВ и НПВ, трахею на 2 кольца выше киля дважды прошивают ушивателем органов и пересекают между линиями скрепок. Затем выполняют мобилизацию комплекса сердце–легкие от тканей заднего средостения по вышеописанной методике (рис. 10.4).
После эксплантации производится ревизия сердечно-легочного комплекса на предмет различной патологии (например, открытое овальное окно, дефект межпредсердной перегородки, опухолевые и узелковые образования легких, ятрогенные повреждения).

Литература
-
Division of Transplantation, Bureau of Health Resources Development. Annual report of the US Scientific Registry for Transplant Recipients and the Organ Procurement and Transplantation Network (transplant data: 1995–2004). Health Resources and Services Administration; US Department of Health and Human Services, Rockvillе, 2005.
-
Ware L.B., Wang Y., Fang X. et al. Assessment of lungs rejected for transplantation and implications for donor selection // Lancet. 2002. Vol. 360, N 9333. P. 619–620.
-
Puskas J.D., Winton T.L., Miller D.J., Scavuzzo M., Patterson G.A. Unilateral donor lung dysfunction does not preclude successful contralateral singlelung transplantation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1992. Vol. 103. P. 1015–1017.
-
Van Raemdonck D., Neyrinck A., Verleden G.M. et al. Lung donor selection and management // Proc. Am. Thorac. Soc. 2009. Vol. 6, N 1. P. 28–38.
-
Lau C.L., Patterson G.A. Current status of lung transplantation // Eur. Respir. J. 2003. Vol. 22, suppl. 47. P. 57s–64s.
-
Weill D., Dey G.C., Young K.R. et al. A positive donor gram stain does not predict the development of pneumonia, oxygenation or duration of mechanical ventilation following lung transplantation (abstr.) // J. Heart Lung Transplant. 2001. Vol. 20. P. 255.
-
Zenati M., Dowling R.D., Dummer J.S. et al. Influence of the donor lung on development of early infections in lung transplant recipients // J. Heart Lung Transplant. 1990. Vol. 9. P. 502–509.
-
Bonde P.N., Patel N.D., Borja M.C. et al. Impact of donor lung organisms on post-lung transplant pneumonia // J. Heart Lung Transplant. 2006. Vol. 25. P. 99–105.
-
Ruiz I., Gavaldà J., Monforte V. et al. Donor-to-host transmission of bacterial and fungal infections in lung transplantation // Am. J. Transplant. 2006. Vol. 6. P. 178–182.
-
Avlonitis V.S., Krause A., Luzzi L. et al. Bacterial colonization of the donor lower airways is a predictor of poor outcome in lung transplantation // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2003. Vol. 24. P. 601–607.
-
Novick R.J., Bennett L.E., Meyer D.M., Hosenpud J.D. Influence of graft ischemic time and donor age on survival after lung transplantation // J. Heart Lung Transplant. 1999. Vol. 18. P. 425–431.
-
Meyer D.M., Bennett L.E., Novick R.J., Hosenpud J.D. Effect of donor age and ischemic time on intermediate survival and morbidity after lung transplantation // Chest. 2000. Vol. 118. P. 1255–1262.
-
de Perrot M., Waddell T.K., Shargall Y. et al. Impact of donors aged 60 years or more on outcome after lung transplantation: results of an 11-year single-center experience // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2007. Vol. 133. P. 525–531.
-
ISHLT Registry slides. URL: http://www.ishlt.org/downloadables/lung_adult.ppt (date of access Aug 18, 2008).
-
Yusen R.D., Edwards L.B., Kucheryavaya A.Y. et al.; International Society for Heart and Lung Transplantation. The Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: thirty-first adult lung and heart–lung transplant report —2014; focus theme: retransplantation // J. Heart Lung Transplant. 2014. Vol. 33. P. 1009–1024.
-
Sato M., Gutierrez C., Kaneda H., Liu M., Waddell T.K., Keshavjee S. The effect of gender combinations on outcome in human lung transplantation: the International Society of Heart and Lung Transplantation Registry experience // J. Heart Lung Transplant. 2006. Vol. 25. P. 634–637.
-
Thabut G., Mal H., Cerrina J. et al. Influence of donor characteristics on outcome after lung transplantation: a multicenter study // J. Heart Lung Transplant. 2005. Vol. 24. P. 1347–1353.
-
Snell G.I., Rabinov M., Griffiths A. et al. Pulmonary allograft ischemic time: an important predictor of survival after lung transplantation // J. Heart Lung Transplant. 1996. Vol. 15. P. 169–174.
-
Venkateswaran R.V., Patchell V.B., Wilson I.C. et al. Early donor management increases the retrieval rate of lungs for transplantation // Ann. Thorac. Surg. 2008. Vol. 85. P. 278–286.
-
Hu W., Lin C.-W., Liu B.-W. et al. Extravascular lung water and pulmonary arterial wedge pressure for fluid management in patients with acute respiratory distress syndrome // Multidiscip. Respir. Med. 2014. Vol. 9. P. 3. URL: http://www.mrmjournal.com/content/9/1/3
-
Pasque M.K. Standardizing thoracic organ procurement for transplantation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2010. Vol. 139. P. 13–17.
-
Camp P.C. Jr. Heart transplantation: donor operation for heart and lung transplantation // Oper. Tech. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2010. Vol. 15. P. 125–137.
Часть IV. Хирургическая техника эксплантации органов брюшной полости
Глава 11. Ревизия органов брюшной полости и подготовка к началу эксплантации. Паоло Асени, Анна Мариани, Рикардо Де Карлис, Винченцо Эмануэле Бушеми, Джакомо Консоне
P. Aseni, A. Mariani Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com R. De Carlis, V.E. Buscemi, G. Concone Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Для ревизии органов грудной клетки и средостения выполнение стернотомии является обязательным.
-
При выявлении жирового гепатоза необходима биопсия для определения степени макро- и микровезикулярного стеатоза.
-
Стремитесь распознать наличие добавочной печеночной артерии или отхождение правой печеночной артерии от ствола верхней брыжеечной, что наблюдается в 18% случаев.
-
Сохраните добавочную или аномально отходящую от левой желудочной артерии и проходящую в малом сальнике левую печеночную артерию.
-
Оцените наличие нижнеполюсных почечных артерий, которые могут отходить от подвздошных артерий. При их наличии они должны быть сохранены. Канюляция подвздошной артерии может быть выполнена ниже отхождения нижнеполюсной.
-
При сложностях с выделением надчревного отдела брюшной аорты рассмотрите возможность пережатия грудной аорты над диафрагмой как альтернативу пережатию брюшной аорты в надчревном отделе.
-
При резкой дестабилизации гемодинамики донора во время операции будьте готовы к быстрой канюляции брюшной аорты над бифуркацией с пережатием нисходящего отдела грудной аорты.
-
Помните о необходимости эвакуировать желчь и тщательно промыть общий желчный проток до начала холодовой перфузии.
11.1. Детальная ревизия органов брюшной полости
Ключевыми вопросами для ответственного хирурга выездной донорской бригады являются идентификация донора и идентификация его группы крови до начала эксплантации. Согласно многочисленным литературным источникам [1–10], эксплантация донорских органов включает в себя 3 последовательных этапа:
Правильное положение донора на операционном столе учитывает потребности сердечно-легочной и абдоминальной хирургических бригад. В большинстве случаев оптимальным положением донора является положение лежа на спине, обе руки отведены под углом 80° и размещены на подлокотниках, шея разогнута при помощи валика, подложенного под плечи, ноги не перекрещиваются. Операционное поле (верхняя граница — яремная вырезка грудины, нижняя — лобковый симфиз и верхняя треть бедер) отграничивается стерильным операционным бельем и инцизионной пленкой. Максимальная экспозиция достигается за счет тотальной срединной стернолапаротомии. Стернотомия обязательна к выполнению даже в отсутствие планируемой эксплантации сердца и легких, поскольку ревизия органов грудной клетки и средостения должна быть произведена при любом изъятии донорских органов. Кроме того, стернотомия позволяет хирургу по эксплантации органов брюшной полости выделить НПВ над диафрагмой, а также обеспечивает возможность пережатия аорты в грудном отделе — технически более простой альтернативы пережатию надчревного отдела брюшной аорты, которое может быть затруднено у доноров с избыточным весом или при отхождении левой печеночной артерии от левой желудочной. Стернотом не входит в число обязательных инструментов хирургов по эксплантации органов брюшной полости, однако в операционном наборе должна присутствовать проволочная пила Джигли и все хирурги должны уметь ею пользоваться.
Гемостаз при кровотечении из костного мозга грудины после стернотомии достигается электрокоагуляцией. Гемостаз стерильным воском небезопасен в связи с риском попадания его мелких фрагментов в печеночные вены во время холодовой перфузии. Размещение стерильных марлевых салфеток под зеркалами реберного ретрактора Финочетто позволяет быстро обеспечить гемостаз при кровотечении из костного мозга грудины за счет прямого прижатия и давления. После стернотомии производится перикардиотомия (продольная или по типу «мерседес») для детальной ревизии средостения и визуализации внутриперикардиального отдела НПВ.
В случае ранее перенесенной донором стернотомии предпочтительным доступом является торакофренолапаротомия на уровне VII межреберья справа, позволяющая избежать массивного кровотечения при случайном повреждении сердца в ходе повторной стернотомии. Торакофренолапаротомия обеспечивает ревизию правых отделов грудной клетки, а после холодовой перфузии хирург может расширить оперативный доступ и завершить ревизию средостения и левых отделов грудной клетки.
При работе кардиоторакальной хирургической бригады по эксплантации первым этапом выполняется стернотомия с последующей детальной ревизией средостения и органов грудной клетки и окончательной оценкой пригодности донорских сердца и легких для трансплантации. Затем производится тотальная срединная лапаротомия — от мечевидного отростка грудины до лобкового симфиза (рис. 11.1).

После срединной лапаротомии круглую связку печени дважды перевязывают и пересекают, рассекают серповидную связку для доступа к передней и диафрагмальной поверхности печени, что позволяет оценить пригодность печени для последующей трансплантации на основании осмотра и пальпации.
Проводя тщательную ревизию органов брюшной полости, хирурги по эксплантации руководствуются полученными ранее медицинскими данными, включая результаты биохимического исследования крови и инструментального обследования. Начинают ревизию с осмотра абдоминальных квадрантов и поиска солидных и узелковых образований, подозрительных на онкопатологию. При обнаружении таковых должна быть выполнена биопсия подозрительных участков с патологогистологическим исследованием полученного материала.
Предварительное заключение абдоминального хирурга о пригодности донорской печени для последующей трансплантации основывается на данных общего осмотра и аккуратной пальпации, при которой возможно выявление опухолевидных образований (в таких случаях обязательна биопсия с патологогистологическим заключением!) и оценка консистенции печеночной паренхимы, в норме имеющей красновато-коричневый цвет. У гемодинамически нестабильных доноров с длительным периодом и/или высоким уровнем вазопрессорной поддержки кровообращения могут наблюдаться бледный цвет или уплотнение паренхимы, что требует выполнения срочной биопсии с гистологическим заключением.
Желтоватый цвет, обычно более заметный при деликатной пальцевой компрессии печеночной паренхимы, и сглаженный край печени зачастую свидетельствуют о жировом гепатозе. В этой ситуации также показано выполнение биопсии печени с целью определения степени макро- и микровезикулярного стеатоза. В настоящее время отсутствуют единые критерии оценки пригодности печени для последующей трансплантации на основании выраженности стеатических изменений, а решение о целесообразности эксплантации органа базируется на двух возможных рисках: риске первичной дисфункции трансплантата печени и риске упустить возможность спасения жизни пациента с терминальным поражением печени. Как правило, при отсутствии других факторов риска верхней границей пригодности донорской печени для последующей трансплантации, принятой в большинстве центров, является макростеатоз не более 50%.
Фиброзные изменения или венозный застой в печени характеризуются темным цветом печеночной паренхимы и ее плотной консистенцией при пальпации. В этом случае результат исследования биопсийного материала также может предоставить полезную информацию. Обязательной является биопсия у всех ВГС-позитивных доноров. В некоторых случаях данная манипуляция может быть выполнена до начала эксплантации — по чрескожной методике под ультразвуковым контролем, однако следует помнить, что в качестве осложнений чрескожной биопсии печени могут развиться внутрибрюшное кровотечение или внутрипеченочная гематома, способствующие дестабилизации гемодинамики донора. Если после окончания детальной ревизии брюшной полости патологии не выявлено, то печень, поджелудочная железа, тонкая кишка и почки могут быть признаны пригодными для трансплантации. Об этом информируются центры трансплантации, и абдоминальные хирурги приступают к диссекции и мобилизации необходимых сосудистых структур для перфузии донорских органов. Также принимается окончательное решение о возможности трансплантации донорских органов.
По результатам некоторых экспериментальных исследований диссекция сосудов до начала холодовой перфузии способствует развитию вазоспазма за счет увеличения потребления кислорода органами брюшной полости, особенно печенью. Как правило, эти изменения полностью обратимы за период времени, необходимый для работы кардиоторакальной хирургической бригады (20–30 мин), а при отказе от эксплантации сердца и легких индуцированный диссекцией вазоспазм корригируется восстановительным периодом в 20–30 мин перед началом холодовой перфузии. При использовании техники диссекции на кровотоке (в «теплую» фазу) можно обеспечить компенсацию вазоспазма за время подготовки системы перфузии брюшной аорты и системы декомпрессии НПВ, оставляя нетронутыми органы брюшной полости в течение 20–30 мин. Существуют две основные хирургические методики эксплантации органов брюшной полости: 1) техника диссекции на кровотоке (в «теплую» фазу) и 2) техника быстрой эксплантации («диссекция в холодном операционном поле»), которая используется у доноров с нестабильной гемодинамикой и характеризуется минимизацией времени работы в «теплую» фазу.
11.2. Диссекция на кровотоке: базовые хирургические принципы мобилизации грудного и брюшного отделов аорты
Для широкой экспозиции операционного поля используются модульные ретракторные контрукции OmniTrack от OmniTrack Surgical или Thompson от Thompson Surgical Instruments Inc. Мобилизация крупных абдоминальных сосудов достигается после выполнения приема Каттеля–Брааша и расширенного приема Кохера, при котором происходит перемещение восходящей ободочной кишки в левую половину брюшной полости и полная мобилизация дистального отдела тонкой кишки, правых отделов толстой кишки и ДПК [11]. Линия разреза проходит по правому латеральному каналу вдоль правой почечной фасции Герота (fascia renalis dextra, Gerotae), правой позадиободочной фасции Тольдта (fascia retrocolica dextra, Toldti) и предуоденопанкреатической фасции Фреде (fascia preduodenopancreatica, Fredeti) в бессосудистой зоне по белой линии Тольдта — прочному соединению забрюшинной, внутрибрюшинной и позадиободочной фасций, посредством которого брыжейка тонкой кишки присоединена к задней стенке брюшной полости [12].
Если планируется эксплантация тонкой кишки, а поджелудочная железа признана непригодной для последующей трансплантации, расширенный прием Кохера обязательно включает мобилизацию горизонтальной и восходящей частей ДПК для получения доступа к связке Трейца и позадиподжелудочной фасции Трейца (fascia retropancreatica, Treitzi). Завершенный прием Каттеля–Брааша обеспечивает широкую экспозицию подпеченочного отдела НПВ и визуализацию левой почечной вены (рис. 11.2).

Следующим этапом выделяют подпеченочный отдел НПВ и обходят его двумя толстыми лигатурами ниже места впадения правой почечной вены и выше бифуркации. При пальпации дистального отдела брюшной аорты можно выявить ее атеросклеротическое поражение. В случае диффузной атеросклеротической кальцификации следует отказаться от канюляции брюшной аорты — предпочтительной является канюляция одной из общих подвздошных артерий. Если пальпаторно не выявлено диффузной кальцификации, производят рассечение дистального отдела брюшной аорты выше бифуркации и на 5 см ниже места отхождения нижней брыжеечной артерии. Если эксплантация тонкой кишки не планируется, нижнюю брыжеечную артерию дважды перевязывают и пересекают для обеспечения лучшей мобилизации и упрощения канюляции дистального отдела брюшной аорты. Однако в случае планирующейся сплит-трансплантации печени для реципиентов детского возраста следует рассмотреть возможность сохранения нижней брыжеечной артерии и ее последующего отсечения с аортальной площадкой для артериальной реконструкции.
Непосредственно над бифуркацией брюшную аорту обходят двумя толстыми лигатурами. Возможна перевязка 2–3 поясничных ветвей, отходящих позади аорты, для препятствия рециркуляции при проведении холодовой перфузии. Обязательно проверяют наличие нижнеполюсных почечных артерий, которые могут отходить от подвздошных артерий. При их обнаружении канюляцию соответствующей подвздошной артерии производят на 4–5 см ниже места отхождения нижнеполюсной артерии для обеспечения адекватной перфузии почки. При канюляции одной из подвздошных артерий следует также выделить контрлатеральную артерию и пережать/перевязать ее при начале холодовой перфузии. У доноров с диффузным атеросклеротическим поражением брюшной аорты рекомендуется пережатие одной из общих подвздошных артерий и грудной аорты над диафрагмой, а также канюляция воротной вены, от качества перфузии которой во многом зависит адекватность общей холодовой перфузии донорских органов. Если канюляция подвздошных сосудов из-за диффузной кальцификации стенок также невозможна, единственным доступным вариантом доступа для перфузии абдоминальных органов является ретроградная канюляция восходящего или нисходящего отделов грудной аорты [13, 14]. Доступ к нисходящей грудной аорте осуществляют после вскрытия левой плевральной полости, отводя левое легкое кпереди и кверху. Мобилизация нисходящей грудной аорты зачастую сопровождается компрессией сердца и последующей нестабильностью гемодинамики донора, поэтому пережатие или ретроградная канюляция грудной аорты являются последним этапом операции перед началом холодовой перфузии. Кроме того, при резкой дестабилизации гемодинамики донора рекомендуется выполнить пережатие нисходящей грудной аорты вслепую, что быстрее в сравнении с пережатием брюшной аорты в надчревном отделе.
11.3. Диссекция на кровотоке: мобилизация нижней полой вены и нижней брыжеечной вены для перфузии воротной вены
При диссекции НПВ необходимо избегать перевязки правого мочеточника, который может плотно прилегать к правой латеральной поверхности НПВ. Если не планируется эксплантация тонкой кишки и поджелудочной железы, а также у большинства доноров пожилого возраста предпочтительным вариантом перфузии печени является двойная перфузия через аорту и воротную вену. При выраженном атеросклеротическом поражении брюшной аорты и ее ветвей значительной проблемой для обеспечения равномерной перфузии печени могут стать различные степени стеноза чревного ствола (ЧС) и отходящих от него артерий. Канюляция воротной вены осуществляется посредством мобилизации нижней брыжеечной вены, которая находится в толще связки Трейца или прилегает к ней, располагаясь ниже поджелудочной железы и впадая в селезеночную вену. После мобилизации нижней брыжеечной вены дважды обходят шелковыми лигатурами 3/0 на 10 см дистальнее связки Трейца, а на этапе подготовки к холодовой перфузии рассекают (3 мм) и имплантируют в ее просвет артериальную канюлю размером 14–16 Fr типа Bardic (без фланца), которую проводят до бифуркации воротной вены (рис. 11.3).

11.4. Диссекция на кровотоке: мобилизация надчревного отдела брюшной аорты
Для доступа к надчревному отделу аорты производят мобилизацию левой доли печени — пересечение левой треугольной связки и доступ к диафрагмальной поверхности печени вплоть до визуализации левой печеночной вены. При отведении ассистентом желудка влево оператор выполняет осмотр и пальпацию нижней трети (pars vasculosa) малого сальника на предмет эктопической или добавочной левой печеночной артерии, которую необходимо сохранить при эксплантации. После рассечения расположенных выше pars flaccida и pars condensa малого сальника получают доступ к надчревному отделу брюшной аорты, для мобилизации которого хвостатую долю печени абдоминальным ретрактором Лериша отводят в правую сторону и рассекают с помощью электрокоагуляции правую ножку диафрагмы и парааортальную клетчатку. Затем пищевод отводят влево (рис. 11.4). Аорту выделяют на протяжении 2–3 см, обходят изогнутым под прямым углом зажимом О’Шонесси и берут на держалку. Следует избегать повреждения диафрагмальных вен и пищевода. При выявлении левой печеночной артерии, отходящей от левой желудочной, выполняют диссекцию и мобилизацию левой печеночной артерии на кровотоке с лигированием отходящих от нее ветвей по большой кривизне желудка. В случае выявления добавочной левой печеночной артерии необходимо помнить о высоком риске ее повреждения при мобилизации надчревного отдела брюшной аорты и отдавать предпочтение пережатию нисходящей грудной аорты.

11.5. Диссекция на кровотоке: мобилизация грудной аорты
Производят широкое рассечение париетальной плевры, пересекают левую нижнюю легочную связку, после чего аккуратно оттягивают левое легкое кпереди и кверху. Во избежание аритмии и дестабилизации гемодинамики этот прием следует выполнять одним из последних в «теплой» фазе эксплантации. Однако прямая визуализация нисходящей аорты в положении донора лежа на спине практически невозможна, поскольку она располагается вдоль паравертебрального пространства, кпереди от позвоночного столба. Идентификация нисходящей аорты происходит вслепую, с ориентацией на расположенный рядом пищевод, который, в свою очередь, легко определить по наличию в его просвете назогастрального зонда. Париетальную плевру, покрывающую аорту, захватывают пинцетами для создания окна, которое расширяют тупым путем до 3–4 см, после чего нисходящий отдел грудной аорты обходят толстой лигатурой и перевязывают либо пережимают зажимом.
11.6. Идентификация и мобилизация элементов печеночно-двенадцатиперстной связки
При стабильной гемодинамике производится идентификация элементов портальной триады (воротной вены, общей печеночной артерии, общего желчного протока), а также аберрантной (добавочной или аномально отходящей) правой печеночной артерии, которая может быть обнаружена по правому краю ПДС, позади общего желчного протока и справа от воротной вены. При нестабильной гемодинамике диссекция ПДС может быть ограничена мобилизацией общего желчного протока.
Вначале рассекают брюшину, покрывающую ПДС. Мобилизацию передней поверхности ДПК и головки поджелудочной железы осуществляют посредством перевязки правой желудочной (пилорической) вены и левой желудочной (коронарной) вены. Этот прием обеспечит в последующем контроль селезеночной артерии.
В качестве ориентира для выявления общего желчного протока можно использовать пузырный лимфатический узел Масканьи (nodus lymphaticus cysticus, Mascagnii), расположенный у шейки желчного пузыря. Общий желчный проток мобилизуют на протяжении 1,0–1,5 см, перевязывают в супрадуоденальной части и пересекают над лигатурой, проксимальная часть общего желчного протока остается открытой (рис. 11.5). Следует помнить о наличии двух внутристеночных артерий, сопровождающих общий желчный проток, кровотечение из которых может потребовать гемостаза. Его выполняют электрокоагуляцией на минимальной мощности для того, чтобы избежать ишемического повреждения дистального отдела общего желчного протока.

Идентификация и мобилизация гастродуоденальной артерии (ГДА) на протяжении 2 см от места ее отхождения от общей печеночной артерии предоставляют дополнительную опцию для возможной реконструкции добавочной правой печеночной артерии, отходящей от верхней брыжеечной артерии (ВБА) (рис. 11.6). После мобилизации ГДА обходят шелковой лигатурой 3/0, при деликатном оттягивании кверху которой производят пальцевой контроль пульсации печеночной артерии — прием Рио–Бранко: если пульсация печеночной артерии пропадает, это свидетельствует о стенозе или окклюзии ЧС с ретроградным кровотоком по печеночной артерии, обеспечиваемым ВБА за счет ГДА. При прохождении правой печеночной артерии, отходящей от ВБА, в паренхиме головки поджелудочной железы другими причинами отсутствия пульсации печеночной артерии могут быть атеросклеротический стеноз ЧС или компрессионный стеноз ЧС (синдром Данбара), обусловленный в большинстве случаев сдавлением ЧС срединной дугообразной связкой диафрагмы. Эти причины должны быть исключены при последующей ревизии. При отсутствии аберрантной артерии, отходящей от ВБА, и пульсации печеночной артерии ГДА должна быть сохранена на единой аортальной площадке с ВБА и последующим точным определением сосудистой анатомии на этапе back-table.

Если планируется эксплантация поджелудочной железы, перфузия воротной вены, как правило, не проводится, поскольку считается, что она способствует высокому риску развития постперфузионного отека поджелудочной железы. Однако возможность дополнительной перфузии печени через воротную вену должна быть рассмотрена при выраженном атеросклеротическом поражении аорты, когда высок риск неадекватной перфузии печени. В данной ситуации следует идентифицировать, мобилизовать и взять на турникет воротную вену в проекции ПДС. Последующая венотомия ниже турникета может способствовать снижению спланхнического кровотока, что позволяет избежать постперфузионного отека поджелудочной железы. Кроме того, резекция нижнего полюса селезенки может способствовать поддержанию более низкого перфузионного давления в спланхнической области.
После перевязки левой желудочной вены, расположенной в нижней части малого сальника, продолжают разделение ПДС в плоскости препанкреатического пространства, проходящей по верхней поверхности поджелудочной железы, где селезеночная артерия располагается глубже на 90° по отношению к общей печеночной артерии. После идентификации селезеночную артерию мобилизуют и обходят турникетом.
Далее по малой кривизне определяют левую желудочную артерию (артерию Гиртля, arteria Hyrtli). При выявлении аберрантной (добавочной или дислоцированной) левой печеночной артерии, отходящей от левой желудочной артерии, следует выполнить ее мобилизацию с лигированием отходящих от нее ветвей во время «теплой» фазы эксплантации, тем самым сокращая время холодовой ишемии на этапе back-table.
После идентификации и мобилизации названных сосудистых структур выполняют вскрытие желчного пузыря в области его дна, эвакуируют желчь и тщательно промывают изотоническим раствором натрия хлорида или натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠). Известный факт, что застой желчи увеличивает риск развития неанастомотических билиарных стриктур при длительной холодовой ишемии, особенно в случае неадекватной эвакуации желчи, подчеркивает важность обработки желчного пузыря на данном этапе [15].
Таким образом, в результате выполнения диссекции на кровотоке оказываются мобилизованы следующие сосудистые элементы:
-
подпеченочный отдел НПВ выше места впадения правой почечной вены;
-
инфраренальный отдел брюшной аорты до бифуркации или подвздошных артерий;
-
все элементы ПДС, включая ГДА, левую желудочную и селезеночную артерии, воротную вену (см. рис. 11.6).
11.7. Техника быстрой эксплантации («диссекция в холодном операционном поле»)
Некоторые центры трансплантации предпочитают использовать эту технику, основываясь на соображении, что меньшее количество манипуляций с анатомическими структурами способствует снижению ИРП [8, 16, 17]. Авторы руководства применяют технику быстрой эксплантации только у гемодинамически нестабильных доноров, так как до настоящего времени отсутствуют обоснованные доказательства каких-либо преимуществ данной методики над техникой диссекции на кровотоке в контролируемых проспективных исследованиях. Начальные этапы операции являются аналогичными с той лишь разницей, что при технике быстрой эксплантации более широко используется рассечение тканей острым путем с помощью электрокоагуляции для ускорения достижения гемостаза.
Быстро выполняются следующие этапы операции:
-
продольное вскрытие перикарда от верхушки сердца до плечеголовных вен;
-
детальная и тщательная ревизия органов грудной клетки и средостения, органов брюшной полости и оценка пригодности донорских органов для последующей трансплантации;
-
установка реберного ретрактора и модульных ретракторных конструкций;
-
при нестабильной гемодинамике донора — быстрое выделение брюшной аорты и подвздошных артерий одновременно с подготовкой перфузионной системы. Быстрая канюляция и начало холодовой перфузии;
-
при стабильной гемодинамике донора — обязательная мобилизация брюшной аорты, общих подвздошных артерий и НПВ;
-
выполнение приема Каттеля–Брааша и расширенного маневра Кохера;
-
выделение инфраренального отдела НПВ от бифуркации до места впадения почечных вен;
-
идентификация и мобилизация бифуркации брюшной аорты и общих подвздошных артерий, а также вариантных нижнеполюсных почечных артерий, которые в 1–3% случаев отходят от общих подвздошных артерий. В данной ситуации обязательна канюляция подвздошных артерий ниже места отхождения нижнеполюсных почечных артерий;
-
мобилизация и обхват инфраренального отдела брюшной аорты двумя толстыми лигатурами для последующей фиксации перфузионной канюли.
11.8. Следующий этап: холодовая перфузия органов брюшной полости
При использовании каждой из описанных техник эксплантации этап холодовой перфузии органов брюшной полости является общим, после которого при использовании техники быстрой эксплантации потребуется дополнительное время для «диссекции в холодном операционном поле». После подготовки систем перфузии брюшной аорты и воротной вены обязательным является заполнение перфузионных контуров холодным консервирующим раствором с удалением пузырьков воздуха. Аортальную перфузионную систему размещают на высоте 120–150 см от уровня операционного стола, а систему для перфузии воротной вены — на высоте 50–60 см. Перед началом холодовой перфузии внутривенно вводят гепарин натрия (Гепарин♠) из расчета 300 ЕД/кг массы тела.
Через небольшую венотомию (3 мм) в нижнюю брыжеечную вену имплантируют канюлю размером 14–16 Fr типа Bardic (без фланца) и проводят ее на протяжении 2 см до бифуркации воротной вены, после чего канюлю фиксируют двумя шелковыми лигатурами 3/0 (рис. 11.7).
Перевязывают брюшную аорту на уровне бифуркации и через поперечную артериотомию в дистальной части брюшной аорты имплантируют аортальную канюлю, соединенную со шприцем Жане, наполовину заполненным изотоническим раствором натрия хлорида или натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠) (рис. 11.8). Правильное положение аортальной канюли контролируется заполнением шприца Жане кровью, после чего канюлю фиксируют толстой лигатурой и соединяют с системой перфузии, избегая попадания пузырьков воздуха в перфузионный контур.
Таким образом подготавливаются системы перфузии (брюшной аорты и воротной вены) in situ органов брюшной полости (рис. 11.9). Сердечно-легочная и абдоминальная хирургические бригады готовы к началу холодовой перфузии.

Тотчас после пережатия восходящей аорты пересекают НПВ над диафрагмой для адекватной декомпрессии. Помните, что при трансплантации сердца крайне редко производится формирование бикавального анастомоза, поэтому хорошее взаимопонимание и джентльменское соглашение между кардиоторакальной и абдоминальной хирургическими бригадами предполагает сохранение НПВ над диафрагмой длиной не менее 5 мм, что будет использовано при формировании анастомоза с надпеченочным отделом НПВ при трансплантации печени [18]. В первую очередь начинают перфузию органов грудной клетки. Перевязывают брюшную аорту в надчревном отделе (или пережимают нисходящую грудную аорту). Перевязывают НПВ над бифуркацией и начинают перфузию органов брюшной полости.
Одновременно с перфузией начинают внешнее охлаждение абдоминальных органов стерильной ледяной крошкой и холодным изотоническим раствором натрия хлорида или натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠) для быстрого достижения адекватной гипотермии всех анатомических отделов брюшной полости.
Авторы руководства рекомендуют использовать следующие объемы консервирующих растворов низкой вязкости (раствор HTK): перфузия брюшной аорты — 4–5 л, перфузия воротной вены — 2 л. Дополнение пассивной декомпрессии НПВ эффективной аспирацией способствует более быстрому достижению удовлетворительной гипотермии органов брюшной полости.


После окончания холодовой перфузии in situ первой производится эксплантация сердца, затем — легких, печени, поджелудочной железы и/или тонкой кишки, почек и наконец сосудистых графтов.
Литература
-
Forti D., Rondinara G.F., Aseni P. Il prelievo multi-organo a scopo di trapianto. Milano : Fogliazza Editore, 1997.
-
Baranski A. Surgical technique of abdominal organ procurement: step by step. London : Springer, 2009.
-
Aseni P., De Carlis L. Il prelievo multiorgano a scopo di trapianto. Milano : Ghedimedia, 2011.
-
Pang P., Houssin D. Le prèlevement d’organes. Paris : Masson, 1992.
-
Kremer B., Broelsch C.E., Henne-Bruns D. Atlas of liver, pancreas, and kidney transplantation. New York : Thieme Medical Publishers, 1994.
-
Belzer F.O., Southard J.H. Principles of solidorgan preservation by cold storage // Transplantation. 1988. Vol. 45, N 4. P. 673–676.
-
Starzl T.E., Hakala T.R., Shaw B.W. Jr. et al. A flexible procedure for multiple cadaveric organ procurement // Surg. Gynecol. Obstet. 1984. Vol. 158, N 3. P. 223–230.
-
Starzl T.E., Miller C., Bronznick B. et al. An improved technique for multiple organ harvesting // Surg. Gynecol. Obstet. 1987. Vol. 165, N 4. P. 343–348.
-
Van Burden C.T., Barakat O. Organ donation and retrieval // Surg. Clin. North Am. 1994. Vol. 74, N 5. P. 1055–1081.
-
Gubernatis G. Techniques of organ procurement and preservation of liver and pancreas // Baillieres Clin. Gastroenterol. 1989. Vol. 3, N 4. P. 799–811.
-
Cattell R.B., Braasch J.W. A technique for the exposure of the third and fourth portions of the duodenum // Surg. Gynecol. Obstet. 1960. Vol. 111. P. 378–379.
-
Fredet P. Le péritoine in Traité d’Anatomie humaine de Poirier et Charpy. Paris : Masson, 1905.
-
Benedetti E., Massad M.G., Kisthard J.A. Aortic cannulation in organ donors with pathology of the infrarenal aorta // J. Am. Coll. Surg. 1997. Vol. 185, N 5. P. 488–489.
-
Molmenti E.P., Molmenti H., Marubashi S. et al. Cannulation of the aorta in organ donors with infrarenal aortic pathologies // Dig. Dis. Sci. 2001. Vol. 46, N 11. P. 2457–2459.
-
Op den Dries S., Sutton M.E., Lisman T. et al. Protection of bile ducts in liver transplantation: looking beyond ischemia // Transplantation. 2011. Vol. 92, N 4. P. 373–379.
-
Boggi U., Vistoli F., Del Chiaro M. et al. A simplified technique for the en bloc procurement of abdominal organs that is suitable for pancreas and small-bowel transplantation // Surgery. 2004. Vol. 135, N 6. P. 629–641.
-
Van Buren C.T., Barakat O. Organ donation and retrieval // Surg. Clin. North Am. 1994. Vol. 74, N 5. P. 1055–1081.
-
Delgado D.H., Rao V., Ross H.J. Donor management in cardiac transplantation // Can. J. Cardiol. 2002. Vol. 18, N 11. P. 1217–1223.
Глава 12. Эксплантация печени. Паоло Асени, Анна Мариани, Фабио Ферла, Маттео Трипепи, Винченцо Пиротта
P. Aseni, A. Mariani, F. Ferla, M. Tripepi, V. Pirotta Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Эксплантацию печени после холодовой перфузии выполняйте как можно быстрее.
-
Печеночно-двенадцатиперстную и печеночно-желудочную связки пересекайте как можно ближе к малой кривизне желудка, чтобы избежать повреждения добавочных или замещающих печеночных артерий, отходящих от левой желудочной.
-
Избегайте чрезмерных тракций и ротаций печени, чтобы не повредить глиссонову капсулу и печеночную паренхиму.
-
Продольное рассечение правого надпочечника обозначает корректную плоскость пересечения подпеченочного отдела НПВ, что позволяет избежать повреждения правой почечной вены.
-
Избегайте любых манипуляций на паренхиме поджелудочной железы.
-
Не забудьте тщательно промыть желчные протоки консервирующим раствором непосредственно после изъятия печени.
-
Вскоре после эксплантации печени, на этапе back-table, необходимо выполнить повторный флашинг органа через культю воротной вены.
12.1. Диссекция печеночно-двенадцатиперстной связки. Гепатэктомия
Органы брюшной полости всегда эксплантируют после изъятия органов грудной клетки [1–4].
Отточенная хирургическая техника, а также обнаружение и выделение всех необходимых сосудистых структур в «теплую» фазу способствуют сокращению времени холодовой ишемии при мультиорганном изъятии, позволяя быстрее перейти к финальным этапам эксплантации печени [5, 6].
Облегчению работы хирурга способствует расширение диаметра пищеводного отверстия диафрагмы за счет широкого пересечения правой и левой ножки диафрагмы (рис. 12.1).

Пересечение печеночно-двенадцатиперстной и печеночно-желудочной связок следует выполнять как можно ближе к малой кривизне желудка, избегая повреждения добавочной или замещающей левой печеночной артерии (ДЛПА), отходящей от левой желудочной артерии (ЛЖА). ЛЖА пересекается и перевязывается дистальнее устья ДЛПА. Также пересекается ГДА, дистальная культя которой может быть прошита нитью Prolene 6/0, если планируется ее использование при трансплантации поджелудочной железы. В то же время проксимальная культя ГДА длиной не менее 5 мм может использоваться на этапе back-table для анастомоза с ДЛПА при ее наличии.
После перемещения основной массы петель тонкой и толстой кишки в грудную клетку визуализируется корень брыжейки тонкой кишки. Используя в качестве ориентира ось брюшной аорты, в толще фиброзно-жировой ткани корня брыжейки обнаруживают ВБА. В случае отказа от изъятия поджелудочной железы ВБА может быть мобилизована на протяжении 8–10 см, перевязана и оставлена с печеночным трансплантатом. Деликатное обнаружение и выделение ВБА позволяет предупредить повреждение ранее не распознанной добавочной правой печеночной артерии (ДППА), отходящей от ВБА. Возможность отхождения ДППА от ВБА следует предполагать до тех пор, пока разделение ПДС не будет завершено окончательно (рис. 12.2). Затем выполняют диссекцию ВБА до места ее отхождения от брюшной аорты, освобождают стенки аорты от окружающих фиброзно-мышечных тканей и аккуратно отсекают ВБА под углом 45° к плоскости рассечения аорты, чтобы не повредить почечные артерии, отходящие ниже устья ВБА лишь на несколько миллиметров. Дистальный конец ВБА перевязывают, а ассистент отводит его кверху и вправо, одновременно смещая головку поджелудочной железы и ДПК влево и вниз.

В случае ранее выполненной двойной перфузии через аорту и воротную вену после удаления канюли для перфузии воротная вена пересекается в области конфлюенса селезеночной и верхней брыжеечной вен. При необходимости большей протяженности воротной вены (например, для реципиентов с тромбозом воротной вены) и отказа от эксплантации поджелудочной железы ее перешеек пересекают и выделяют воротную вену дистальнее конфлюенса селезеночной и верхней брыжеечной вен. Если производится эксплантация и печени, и поджелудочной железы, с последней оставляют участок воротной вены длиной 2 см, который может быть прошит нитью Prolene 5/0 для облегчения ее идентификации на этапе back-table [7–9].
При отказе от эксплантации поджелудочной железы участок селезеночной артерии длиной 5–6 см может быть оставлен с печенью для возможной реконструкции ДЛПА на этапе back-table. Деликатное оттягивание культей ГДА, ЛЖА и селезеночной артерии вправо способствует упрощению идентификации и выделения ЧС до места его отхождения от инфраренального отдела брюшной аорты. После мобилизации ЧС надчревный отдел брюшной аорты ниже пищеводного отверстия диафрагмы пересекают в поперечном направлении и формируют овальную или цилиндрическую аортальную площадку длиной до 5 см. Аортальная площадка содержит устья ВБА и ЧС с отходящими от него общей печеночной артерией, культей селезеночной артерии длиной 4–5 см и возможной ДЛПА, отходящей от ЛЖА. Для завершения изъятия печени требуется пересечение правой нижней легочно-диафрагмальной связки, а также правого и левого листков диафрагмы до НПВ. Корректная плоскость пересечения подпеченочного отдела НПВ проходит через правый надпочечник (рис. 12.3). На этом этапе следует избегать чрезмерных тракций и ротаций печени, которые могут привести к повреждению Глиссоновой капсулы печени и ее паренхимы. Минимизации возможности случайного повреждения НПВ и печеночных вен способствует введение оператором левого указательного пальца в просвет надпеченочного отдела НПВ.

После пересечения правого надпочечника подпеченочный отдел НПВ перевязывается проксимальнее почечных вен ранее наложенной держалкой. Эксплантация печени завершается пересечением оставшихся участков диафрагмы и отделением органа от всех соседних анатомических структур. После эксплантации печеночный трансплантат помещают в стерильный контейнер, находящийся в большой емкости со льдом и холодным натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠) или изотоническим раствором натрия хлорида и предварительно заполненный холодным консервирующим раствором. После этого производят дополнительную перфузию (флашинг) трансплантата печени ex situ холодным консервирующим раствором (в объеме 1 л) через канюлю, введенную в воротную вену. Тем же раствором (100 мл) промывают общий желчный проток. Печень упаковывается в три отдельных пакета, из которых внутренний заполняют холодным консервирующим раствором, а следующие два — ледяной крошкой и холодным изотоническим раствором натрия хлорида или натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠). Важным для правильной упаковки печени является отсутствие прямого контакта органа с крупными ледяными осколками, чтобы избежать случайной травмы паренхимы трансплантата во время холодовой консервации.
12.2. Эксплантация печени и поджелудочной железы единым комплексом
При необходимости эксплантации печени и поджелудочной железы возможна их эксплантация en bloc («единым блоком») с последующим разделением этих органов на этапе back-table. Это может быть целесообразно при распределении обоих трансплантатов в один трансплантационный центр [8, 9]. Кроме того, такая техника является обязательной при проведении симультанной трансплантации печени и поджелудочной железы одному реципиенту.
При эксплантации печени и поджелудочной железы единым комплексом обязательно проведение стерилизации гастродуоденального отдела. Желудочно-кишечная деконтаминация осуществляется с помощью назогастрального зонда раствором, содержащим изотонический раствор натрия хлорида, 10% раствор повидон-йода (Бетадина♠), один флакон ванкомицина, один флакон колхицина и один флакон амфотерицина В.
Используется стандартная техника диссекции на кровотоке. Необходимо избегать любых манипуляций непосредственно с паренхимой поджелудочной железы. Кроме того, при эксплантации поджелудочной железы следует воздержаться от холодовой перфузии через воротную вену. В некоторых случаях, когда двойная перфузия (через аорту и воротную вену) целесообразна (например, при выраженном атеросклеротическом поражении сосудов), необходимо выполнить венотомию воротной вены ниже турникета для улучшения венозного оттока и предотвращения отека поджелудочной железы в ходе проведения перфузии. Тем не менее авторы руководства при эксплантации поджелудочной железы рекомендуют выполнять холодовую перфузию только через брюшную аорту. По окончании холодовой перфузии in situ выполняется пересечение желудочно-толстокишечной связки от правого (печеночного) до левого (селезеночного) изгиба толстой кишки с последующей диссекцией и перевязкой правых желудочно-сальниковой и желудочной артерий.
После пересечения желудочно-селезеночной и селезеночно-ободочной связок мобилизуется селезенка, которая в дальнейшем используется в качестве «рукоятки» (le poignet du pancreas) для манипуляций с поджелудочной железой (рис. 12.4). После перевязки коротких желудочных артерий мобилизуют дорсальную поверхность поджелудочной железы и пересекают брыжейку ободочной кишки с раздельной перевязкой всех брыжеечных сосудов. Проксимальная часть ДПК пересекается хирургическим сшивающим аппаратом GIA на уровне привратника желудка. Затем производится мобилизация нижней поверхности поджелудочной железы. Выделение и пересечение брыжеечных вен и их ветвей выполняют дистальнее нижней границы поджелудочной железы с помощью хирургического сшивающего аппарата GIA или нескольких лигатур, стремясь избегать даже небольших повреждений капсулы органа. Дистальный отдел ДПК пересекается с помощью хирургического сшивающего аппарата GIA на расстоянии 10 см от связки Трейца (рис. 12.5). После полного отделения задней поверхности поджелудочной железы от забрюшинного пространства производится пересечение брюшной аорты непосредственно ниже устья ВБА, которую отсекают под углом 45° к плоскости рассечения аорты. При этом следует соблюдать осторожность, чтобы не повредить места отхождения обеих почечных артерий.


Последовательность и принципы эксплантации печени и поджелудочной железы аналогичны таковым при изолированном изъятии печени, за исключением идентификации и разделения сосудистых и билиарных структур ПДС, которые должны выполняться на этапе back-table. Кроме того, диссекция элементов ПДС может не выполняться при симультанной трансплантации печени и поджелудочной железы. Острым путем отделяют брюшную аорту от превертебральных фиброзно-мышечных тканей, формируют аортальную площадку с ЧС и ВБА. В результате производится эксплантация единого комплекса, содержащего печень, ДПК, поджелудочную железу, селезенку и все необходимые для проведения последующей трансплантации сосудистые элементы (рис. 12.6). Дополнительный флашинг изъятого комплекса выполняют через ЧС и ВБА холодным консервирующим раствором в объеме 1000 мл. При этом можно выполнить продольный надрез в области нижнего полюса селезенки длиной около 5 см для улучшения оттока перфузата и минимизации риска отека поджелудочной железы.

12.3. Мультивисцеральная эксплантация
В этой части руководства Di Benedetto и Tarantino будет описана техника мультивисцеральной эксплантации, включая эксплантацию тонкой кишки для последующей так называемой кластерной трансплантации (cluster transplantation) [10]. Помимо изолированной трансплантации тонкой кишки, в настоящее время используется по меньшей мере 3 типа мультивисцеральной трансплантации: а) трансплантация комплекса печень–тонкая кишка; б) полный мультивисцеральный трансплантат (комплекс печень–желудок–ДПК–поджелудочная железа–тонкая кишка); в) модифицированный мультивисцеральный трансплантат, который не включает печень, а также может не включать желудок (рис. 12.7). В этой части описываются основные хирургические этапы изъятия первых двух типов органокомплексов.Во время кондиционирования ПД необходимо введение в назогастральный зонд 500 мл изотонического раствора натрия хлорида, содержащего 10% раствор повидон-йода (Бетадина♠ ), 2 флакона ванкомицина, 2 флакона колхицина и 2 флакона амфотерицина В.

Подготовка печени к эксплантации аналогична описанной выше в этой главе. Окончательное решение об эксплантации тонкой кишки принимают после пересечения круглой и серповидной связки печени на основании детальной ревизии органов брюшной полости. Решение основывается на следующих критериях: минимальный отек кишечника, отсутствие застоя кишечного содержимого и удовлетворительная перистальтика, отсутствие межпетельных спаек, отсутствие внутрибрюшных гематом и признаков недавней травмы кишки.
Существуют некоторые технические особенности эксплантации комплекса печень–желудок–ДПК–поджелудочная железа–тонкая кишка [9, 11, 12].
ПДС остается интактной, мобилизация структур печеночной связки (общего желчного протока, ГДА и воротной вены) не производится.
Обязательным является выполнение следующих этапов:
-
прием Каттеля–Брааша — для смещения кишечника к корню брыжейки;
-
разделение желудочно-ободочной (с сохранением ДЛПА), селезеночно-ободочной и почечно-ободочной связок;
-
мобилизация горизонтальной и восходящей частей ДПК и пересечение связки Трейца;
-
выделение ЧС и нижней брыжеечной артерии на одной аортальной площадке;
-
мобилизация остальных отделов толстой кишки и экспозиция всех ободочных сосудов;
-
следует воздержаться от декомпрессии кишечника, рекомендуемой некоторыми хирургами, ввиду риска механической травмы кишечной стенки;
-
вдоль брыжейки ободочной кишки диссекция продолжается в латеральном и дистальном направлениях до нижней брыжеечной вены, не затрагивая аркадные сосуды, образованные подвздошно-ободочной артерией и ВБА. Канюляция ВБА для холодовой перфузии не производится;
-
тотальная колэктомия (или левосторонняя гемиколэктомия при необходимости изъятия вместе с тонкой кишкой правой половины толстой кишки);
-
изоляция кардии и терминальных отделов подвздошной кишки (или поперечной ободочной кишки) с обнажением всего корня брыжейки;
-
медиальная висцеральная ротация (прием Мэддокса) слева с мобилизацией селезенки и хвоста поджелудочной железы;
-
полный обход проксимальной и дистальной части абдоминального отдела аорты (с целью пережатия) и отмывание желчного пузыря;
-
холодовая перфузия проводится только через аортальную канюлю после системной гепаринизации донора. Для предотвращения гиперперфузии кишечника можно осуществлять перераспределение перфузата частичной деликатной пальцевой компрессией магистральных сосудов;
-
имеющиеся к настоящему времени данные о преимуществах применяемой в некоторых трансплантационных центрах интралюминальной (внутрипросветной) перфузии тонкой кишки консервирующим раствором противоречивы;
-
эксплантация комплекса печень–желудок–ДПК–поджелудочная железа–тощая и подвздошная кишка (с или без правых отделов толстой кишки) производится после пересечения хирургическим сшивающим аппаратом GIA пищеводно-желудочного соединения (проксимально) и терминальных отделов подвздошной кишки (дистально). Грудная аорта донора используется в качестве графта для анастомоза с брюшной аортой реципиента. Сосудистая ножка изъятого комплекса представляет собой торакоабдоминальную часть аорты длиной до 12 см, пересеченной выше почечных артерий, которая включает в себя устья ЧС и ВБА, а также НПВ, пересеченную над местом впадения почечных вен.
Литература
-
Starzl T.E., Hakala T., Shaw B.J. et al. A flexible procedure for multiple cadaveric organ procurement // Surg. Gynecol. Obstet. 1984. Vol. 158. P. 223–230.
-
Starzl T.E., Miller C., Bronznick B., Makowka L. An improved technique for multiple organ harvesting // Surg. Gynecol. Obstet. 1987. Vol. 165. P. 343–348.
-
Van Burden C.T., Barakat O. Organ donation and retrieval // Surg. Clin. North Am. 1994. Vol. 74. P. 1055–1081.
-
Pang P., Houssin D. Le prèlevement d’organes. Paris : Masson, 1905.
-
Boggi U., Vistoli F., Del Chiaro M. et al. A simplified technique for the en bloc procurement of abdominal organs that is suitable for pancreas and small-bowel transplantation // Surgery. 2004. Vol. 135. P. 629–641.
-
Halazun K.J., Al-Mukhtar A., Aldouri A., Willis S., Ahmad N. Warm ischemia in transplantation: search for a consensus definition // Transplant. Proc. 2007. Vol. 39. P. 1329–1331.
-
Gubernatis G. Techniques of organ procurement and preservation of liver and pancreas // Baillieres Clin. Gastroenterol. 1989. Vol. 3. P. 799–811.
-
Dunn D.L., Morel P., Schlumpf R. et al. Evidence that combined procurement of pancreas and liver grafts does not affect transplant outcome // Transplantation. 1991. Vol. 51. P. 150–157.
-
Wunderlich H., Brockmann J.G., Voigt R. et al. Commission of Organ Donation and Removal German Transplantation Society. DTG procurement guidelines in heart beating donors // Transpl. Int. 2011. Vol. 24. P. 733–757.
-
Di Benedetto F., Tarantino G. Small-bowel and multivisceral procurement // Multiorgan procurement for transplantation. A guide to surgical technique and management. Switzerland : Springer International Publishing, 2016.
-
Abu-Elmagd K., Fung J., Bueno J. et al. Logistics and technique for procurement of intestinal, pancreatic, and hepatic grafts from the same donor // Ann. Surg. 2000. Vol. 232. P. 680–687.
-
Casavilla A., Selby R., Abu-Elmagd K. et al. Logistics and technique for combined hepatic-intestinal retrieval // Ann. Surg. 1992. Vol. 216. P. 605–609.
Глава 13. Эксплантация печени для сплит-трансплантации: хирургическая техника разделения печени для реципиентов взрослого и детского возраста и для двух взрослых реципиентов. Паоло Асени, Рафаэлла Сгуинци, Рикардо Де Карлис, Алессандро Джакомони, Якопо Маньони, Лучано Де Карлис
-
Aseni, R. Sguinzi, A. Giacomoni, I. Mangoni, L. De Carlis Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com R. De Carlis Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Существует три стандартных подхода к разделению печени, в результате которых возможно получить 6 типов трансплантатов с различными сегментами печени (С):
-
разделение для взрослого и педиатрического реципиентов — расширенный трансплантат правой доли (РТПД) печени (C I, IV–VIII) и трансплантат левого латерального сектора (ТЛЛС) печени (С II–III);
-
разделение для двух взрослых или для взрослого реципиента и ребенка с массой тела 35–45 кг — трансплантат правой доли (ТПД) печени (C I, V–VIII) и трансплантат левой доли (ТЛД) печени (С II–IV);
-
разделение для двух взрослых реципиентов — полный трансплантат левой доли (ПТЛД) печени (C I–IV) и полный трансплантат правой доли (ПТПД) печени (С V–VIII).
-
-
Бифуркация воротной вены в паренхиме печени является абсолютным противопоказанием к сплит-разделению.
-
Лигирование ветвей воротной вены от С I облегчает освобождение и удлинение левой воротной вены для имплантации.
-
Идентификация ветви воротной вены, проходящей через хвостатую долю в нижней ее части, облегчает разделение hilar plate.
-
Раннее выделение аранциевой связки способствует безопасному и контролируемому обходу левой печеночной вены (ЛПВ).
-
При разделении печени in situ для взрослого и педиатрического реципиентов пережатие ЛПВ на 1–2 мин позволяет оценить адекватность венозного оттока от С IV.
-
Обнаружение раздельного надпеченочного венозного оттока от С II и III (<5% случаев) является критическим для процедуры сплит-трансплантации взрослому и педиатрическому реципиентам.
-
Гипоперфузия С IV потенциально может препятствовать сплит-процедуре для взрослого и педиатрического реципиентов.
-
При разделении печени для взрослого реципиента и ребенка транссекция паренхимы возможна по линии Рекса–Кантли (ЛРК) или умбиликальной линии.
-
При изъятии печени для взрослых реципиентов для определения корректной плоскости разделения может быть полезен «хэнгинг-маневр» (hanging manoeuvre).
-
В редких случаях выраженной срединной печеночной вены (СПВ) при сплит-процедуре для взрослых реципиентов возможно разделение НПВ и/или СПВ ex situ, что позволит избежать множественной реимплантации всех притоков СПВ от С IV, V и VIII.
13.1. Введение
В начале 1990-х гг. очевидный дефицит пригодных для трансплантации органов от ПД послужил стимулом для поиска альтернативы традиционным способам трансплантации печени. В настоящее время смертность в «листе ожидания» трансплантации печени составляет 15–20% в европейских странах и 14% в США [1, 2]. Сплит-трансплантация печени представляет собой методику, при которой выполняется разделение одного органа на два трансплантата, что позволяет в определенной степени сократить дефицит донорских органов. Сплит-трансплантация печени производится в большинстве случаев одному взрослому реципиенту и одному реципиенту детского возраста. Большинство педиатрических центров трансплантации сообщают об отличных результатах подобных операций в последние несколько лет, с практически нулевой периоперационной смертностью.
13.2. Исторические аспекты
Разделение аллогенного трансплантата печени для реципиентов детского возраста было предложено в 1969 г. Б. Смитом, обосновавшим использование трансплантата левой доли печени в педиатрической практике [2]. Однако первые подобные трансплантации, обоснованные ростом смертности в «листе ожидания» пациентов детского возраста (более 25%) и нехваткой органов от ПД, были выполнены только в 1980-х гг. О первых успешных пересадках редуцированного трансплантата печени в 1984 г. сообщили Bismuth и Broelsh [3, 4]. Результаты подобных трансплантаций оказались сравнимыми с трансплантациями целой печени от ПД, однако сплит-процедура не только не позволила преодолеть дефицит донорских органов, но и породила проблему конкуренции между потенциальными взрослыми и педиатрическими реципиентами. После продолжительной дискуссии сплит-трансплантация печени стала производиться и невысоким худощавым взрослым реципиентам [5–8].
В 1989 г. Pichlmayr et al. и Bismuth et al. сообщили об успешном ex situ разделении печени, полученной от ПД, на ТЛЛС (С II–III) для пересадки реципиенту детского возраста и РТПД (С I, IV–VIII) для трансплантации взрослому реципиенту. Особенностью этой методики был продолжительный этап предтрансплантационной подготовки, что существенно увеличивало время холодовой ишемии трансплантатов [9, 10]. В свою очередь Goss et al. из Калифорнийского университета в Лос-Анджелесе (University of California, Los Angeles, UCLA) в 1992 г. предложил in situ разделение донорской печени как методику, которая позволяет сократить период холодовой ишемии и облегчить идентификацию билиарных и сосудистых структур при эксплантации. Такие преимущества данной техники сплит-процедуры, как сокращение продолжительности этапа back-table, закономерное уменьшение времени холодовой ишемии и связанных с ней посттрансплантационных осложнений, были продемонстрированы в опубликованных в 1997 г. работах Goss [11], Azoulay [12] и Rogiers [13]. С соблюдением требуемых критериев в отношении ПД данная техника в сравнении с ТПЖД демонстрирует очевидные преимущества отсутствия хирургического риска для прижизненного донора. В настоящее время в большинстве центров трансплантации для реципиентов младенческого и раннего детского возраста именно данная технология представляется методом выбора при трансплантации печени.
В 1999 г. Colledan et al. сообщили о первой успешной сплит-трансплантации печени от ПД двум взрослым реципиентам с in situ разделением печени на ПТПД и ПТЛД.
13.3. Анатомические принципы
Прежде чем перейти к описанию хирургической техники различных методик сплит-трансплантации печени, следует остановиться на анатомической классификации сегментов печени, предложенной Couinaud [13] и дополненной Bismuth [14] (рис. 13.1). Данная классификация повсеместно принята трансплантологическими сообществами Европы, Азии и Северной Америки для описания разделенных трансплантатов печени. Согласно данной классификации печень разделяется на 8 функционально независимых единиц, называемых сегментами. Каждый сегмент имеет свой собственный сосудистый приток (ветвь печеночной артерии), отток (ветвь воротной вены) и желчный проток. На периферии каждого сегмента расположены вены, собирающиеся в печеночную вену. Пересечение паренхимы печени происходит по так называемым соединительнотканным «ножничным» (scissurae) плоскостям, разделяющим печеночные сегменты.

Благодаря классификации Couinaud возможно разделение печени на различные по объему трансплантаты (рис. 13.2). Так, при разделении по серповидной связке формируются ТЛЛС (С II–III) для педиатрических реципиентов, составляющие 25% от общего объема печени (порядка 250–300 см3) , и РТПД (С I, IV–VIII) объемом 900–1100 см3 для взрослых реципиентов. ТЛЛС может быть дополнительно редуцирован до «моносегментного трансплантата» (С III) для реципиентов младенческого возраста.

Сплит-разделение печени для двух реципиентов выполняется вдоль сагиттальной плоскости, направленной вправо или влево от СПВ, что позволяет сформировать три типа парциальных трансплантатов с различным процентом объема печеночной паренхимы (см. рис. 13.2). В зависимости от антропометрических характеристик реципиентов существует три стандартных подхода к разделению печени, в результате которых возможно получить 6 типов трансплантатов:
-
a) разделение для взрослого и педиатрического реципиентов: ТЛЛС (С II–III) порядка 25% общего объема печени и РТПД (С I, IV–VIII), составляющий около 75% (рис. 13.3, a);
-
б) разделение для двух взрослых или для взрослого реципиента и ребенка с массой тела 35–45 кг: ТЛД (С II–IV) порядка 35% общего объема печени и ТПД (С I, V–VIII) — около 65%;
-
в) разделение для двух взрослых реципиентов с формированием ПТЛД (С I–IV) порядка 40% общего объема печени и ПТПД (С V–VIII) — порядка 60% (рис. 13.3, б).
Оценка объема трансплантата производится до операции и составляет около 1,8% и 2,2% общей массы тела донора, для женщин и мужчин соответственно (табл. 13.1). Более точный объем трансплантата рассчитывается по формуле, учитывающей поверхность тела и пол реципиента [15]. Кроме того, необходимый объем может быть преобразован в массу трансплантата печени, поскольку существует точная корреляция между массой печени и объемом жидкости при температуре 25 °С. По данным некоторых исследований, более высокая частота посттрансплантационных осложнений, включая синдром недостаточного размера (small-for-size), особенно у пациентов с портальной гипертензией, отмечается у реципиентов парциального трансплантата печени с соотношением массы трансплантата к массе тела реципиента менее 0,8–1,0% [16].
Тип трансплантата | Сегменты печени по Couinaud | Доля общего объема печеночной паренхимы, % | Расчетная масса, г или мл (для мужчин и женщин с массой тела 65–70 кг) |
---|---|---|---|
РТПД[1] |
С I, IV–VIII |
75 |
900–950 |
ТЛЛС[1] |
С II–III |
25 |
300–350 |
ТПД с хвостатой долей[2] |
С I, V–VIII |
65 |
800–850 |
ТЛД без хвостатой доли[2] |
С II–IV |
35 |
400–450 |
ПТПД[3] |
С V–VIII |
60 |
750–800 |
ПТЛД[3] |
С I–IV |
40 |
450–500 |
Решение о выполнении сплит-трансплантации и способе разделения печени (in situ или ex situ) зависит от ряда факторов: критерии ПД, анатомические особенности, макроскопическая оценка печени, антропометрические показатели и статус потенциальных реципиентов, техническая оснащенность хирургической бригады и логистика процесса донорства [5, 17–22]. «Идеальным» донором для сплит-трансплантации печени является донор молодого возраста без предшествующих заболеваний печени, с нормальными лабораторными показателями печеночных ферментов (особенно γ-глутамил-транспептидазы) и коротким периодом нахождения в ОРИТ (табл. 13.2). Кроме того, у оптимального для сплит-трансплантации печени донора должна быть стабильная гемодинамика как до, так и во время эксплантации.

Макроскопическими характеристиками пригодной для сплит-трансплантации печени служат мягкая консистенция, острый край, крупная левая доля (предпочтительно во всех случаях, кроме трансплантации левого латерального сектора реципиентам младенческого и раннего детского возраста). Кроме того, одним из преимуществ является наличие добавочной левой или правой печеночной артерии. Оптимальная логистика процесса донорства при сплит-трансплантации печени заключается в выполнении мультиорганной эксплантации в центре трансплантации, что обеспечивает наиболее выгодные условия для in situ разделения органа. Однако на практике такая ситуация встречается сравнительно редко.
Донор молодого возраста (<40–50 лет) |
Отсутствие предшествующих заболеваний/повреждений печени |
Нормальные показатели печеночных ферментов (АСТ, АЛТ, ГГТП) |
Нахождение в стационаре менее 5 сут, нахождение в ОРИТ ≤2 сут |
Стабильная гемодинамика |
Пригодность органа при макроскопической оценке |
Мультиорганная эксплантация у ПД с сохраненным кровообращением |
Минимальная или умеренная вазопрессорная поддержка кровообращения [допамин (Дофамин♠)] менее 15 мкг/кг в минуту |
13.4. Сплит-трансплантация печени: общие принципы
В настоящее время результаты сплит-трансплантации, ставшей стандартной операцией, взрослому и педиатрическому реципиентам эквивалентны результатам трансплантации цельного органа (рис. 13.3, 13.4). Существуют две различные методики сплит-трансплантации: разделение печени ex situ, выполняемое на этапе back-table после холодовой перфузии, и разделение печени in situ — в теле ПД при сохраненном кровообращении до начала холодовой перфузии.

Получение всех типов парциальных трансплантатов печени возможно как ex situ, так и in situ. Поскольку для большинства ПД выполнение компьютерной томографии с контрастированием затруднено, билиарная и сосудистая анатомия остается неизвестной до начала изъятия. Во время же эксплантации важной задачей хирурга является определение типа внепеченочной сосудистой анатомии: оценка внепеченочного сегмента воротной вены и ее вариантов, определение типа артериального кровоснабжения печени (стандартное или множественное), уровня деления собственной печеночной артерии на правую и левую ветви. В результате линия разделения печени определяется хирургом в соответствии с интраоперационной картиной, а также с личным опытом и знанием вариантной анатомии органа [21, 23].
13.4.1. Техника разделения печени ex situ для реципиентов взрослого и детского возраста
Разделение печени ex situ производится после стандартной техники мультиорганной эксплантации. После холодовой перфузии печеночный трансплантат упаковывают в стерильный пакет, заполненный холодным консервирующим раствором, и транспортируют для разделения в центр трансплантации печени. На этапе back-table при разделении печени ex situ могут быть выполнены предварительная диссекция, холангиография и артериография для более точного определения анатомических особенностей, однако проведение данных процедур требует значительного времени. Для выявления анатомических особенностей печеночной артерии и желчных протоков может быть использован тонкий эластичный металлический зонд. Как правило, в результате разделения печени оба парциальных трансплантата имеют сосудистые и билиарные структуры первого порядка, достаточные для формирования анастомозов. Диссекция портальной триады производится с целью выделения ветвей печеночной артерии, воротной вены, а также правого и левого печеночных протоков. В настоящее время нет единого мнения о том, к какому из сплит-трансплантатов должны отходить ЧС и основной ствол воротной вены. В большинстве случаев общий желчный проток остается с трансплантатом правой доли, а основанием для определения, к какому из трансплантатов должна отойти главная сосудистая ножка, служат индивидуальные анатомические особенности строения ворот печени [24]. В большинстве случаев производится выделение левой воротной вены, правой печеночной артерии и левого печеночного протока, поскольку они имеют бóльшую длину в сравнении с контрлатеральными. Это позволяет облегчить формирование сосудистых и билиарных анастомозов. Противопоказанием для сплит-трансплантации служит отсутствие внепеченочной бифуркации воротной вены. Широкое использование микрохирургической реконструкции печеночной артерии позволяет сохранять левую печеночную артерию с ТЛЛС. В североевропейских трансплантационных центрах такая техника признана предпочтительным вариантом при разделении печени in situ (рис. 13.5). Использование тонкого эластичного зонда для оценки особенностей билиарной анатомии позволяет избежать обширной диссекции желчных протоков, способствующей повреждению околобилиарного сосудистого сплетения. Предпочтительным является выделение левого печеночного протока, удвоение которого встречается крайне редко. Отсутствие левого печеночного протока свидетельствует об автономности оттока желчи от С IV и С II–III, а желчные протоки от этих сегментов создают с правым печеночным протоком трифуркацию, что определяет плоскость разделения между С IV и С II–III и позволяет сформировать РТПД и ТЛЛС для взрослого и педиатрического реципиентов соответственно. Для артериальной реконструкции обычно используются графты аллогенных подвздошных, селезеночных, верхних или нижних брыжеечных артерий, а для реконструкции воротной вены — графты аллогенных подвздошных вен, с помощью которых возможно удлинение как правой, так и левой ветвей воротной вены. Выделение элементов ворот печени производится только с левой стороны, правая сторона остается интактной для манипуляций.

После холецистэктомии идентифицируют воротную вену, печеночную артерию и желчный проток, а также вену и артерию С IV. После выделения печеночной артерии дистальнее устья артерии С IV лигируют и пересекают небольшие ветви левой воротной вены, отходящие к С IV. При разделении печени для реципиентов взрослого и детского возраста плоскость пересечения паренхимы проходит от места слияния СПВ и ЛПВ на 0,5 см вправо от серповидной связки до воротной пластинки на 1,0 см вправо от борозды пупочной вены [35]. Поэтапное разделение печеночной паренхимы скальпелем (с перевязкой отдельных внутрипеченочных элементов портальной триады) или с использованием техники clamp-crush (после раздавливания паренхимы зажимами типа «москит» или Келли с последующим прошиванием трубчатых структур) производится по направлению снизу вверх и сопровождается лигированием всех мелких сосудов. В результате левые печеночный проток, воротная вена и печеночная вена пересекаются вблизи надпеченочного отдела НПВ, ЛПВ отходит к ТЛЛС, СПВ и правая печеночная вена (ППВ), продолжаясь в НПВ, остается с РТПД. Контроль герметичности лигатур производится во время дополнительной перфузии воротной вены и печеночной артерии холодным консервирующим раствором. Для достижения адекватного гемостаза и уменьшения последующего интраоперационного кровотечения большинство хирургов используют такие гемостатические средства, как фибриновый клей, коллаген или полиглактиновая сетка.
В 1980–1990-х гг. техника разделения печени ex situ оставалась наиболее распространенным способом сплит-трансплантации для реципиентов взрослого и детского возраста, однако в настоящее время лишь немногие центры отдают данной методике предпочтение, поскольку разделение печени ex situ на этапе back-table является довольно трудоемкой процедурой, сопровождающейся длительным периодом холодовой ишемии [25–28]. Кроме того, при разделении печени ex situ происходит некоторое «согревание» трансплантатов, которое, даже будучи незначительным, повышает риск развития и степень ИРП. При отсутствии возможности одновременно начать гепатэктомию у обоих реципиентов или же при необходимости транспортировки одного из трансплантатов в другой центр продолжительный срок холодовой ишемии также увеличивает риск развития посттрансплантационных осложнений. Таким образом, применение техники ex situ разделения печени ограничивается отдельными случаями, в большинстве своем — для реципиентов взрослого и детского возраста, трансплантация которым производится в одном центре, а также при нестабильной гемодинамике ПД при разделении печени in situ [17–20]. Некоторые центры сообщают о хороших результатах сплит-трансплантации печени двум взрослым реципиентам с использованием техники разделения печени ex situ путем рассечения НПВ и СПВ [29] (см. ниже раздел 13.4.3).
13.4.2. Техника разделения печени in situ для реципиентов взрослого и детского возраста
Разделение печени in situ у ПД с сохраненным кровообращением основано на хирургических методиках прижизненного донорства фрагментов печени и сопровождается более низкой частотой развития билиарных осложнений, внутрибрюшного кровотечения и ПНФТ в сравнении с ex situ разделением печени [26, 27]. Очевидно, что разделение печени in situ возможно только у гемодинамически стабильных доноров. Важнейшим фактором успеха сплит-разделения печени in situ является как можно более раннее уведомление донорских стационаров, а также сердечно-легочной хирургической бригады по эксплантации органов об этом решении. Разделение печени in situ не требует какого-либо специального оснащения и оборудования, достаточным является использование стандартного для мультиорганной эксплантации хирургического оборудования. Для проведения in situ разделения печени требуется 2–3 ч дополнительного времени. Перед началом процедуры разделения в процессе мультиорганного изъятия должны быть завершены такие этапы, как мобилизация брюшной аорты в надчревном и инфраренальном отделах, канюляция нижней брыжеечной вены. При таком подходе в случае дестабилизации гемодинамики ПД процедура in situ разделения печени может быть прервана, выполнена быстрая канюляция брюшной аорты и начата экстренная холодовая перфузия органов брюшной полости.
Выделение ЛПВ. Производятся мобилизация С II и III печени, пересечение круглой связки, после чего ее приподнимают для обнажения борозды пупочной вены. Пересечение серповидной связки осуществляют до уровня диафрагмы с визуализацией печеночных вен. Идентификацию и пересечение венозного (Аранциевого) протока, соединяющего левую воротную вену и место впадения ЛПВ, выполняют после пересечения печеночно-желудочной связки и отведения левой доли печени кверху (рис. 13.6). Разделение фиброзной ткани, окружающей ЛПВ, позволяет мобилизовать ее и обойти держалкой. Выполнение этого приема технически проще и безопаснее зажимом-диссектором Оверхольта в вентрокраниальном и дорсокаудальном направлениях. Отсутствие изменения цвета паренхимы С IV, V, и VIII после пережатия ЛПВ в течение 1–2 мин свидетельствует об адекватном венозном оттоке от этих сегментов. В некоторых случаях имеет место независимый венозный отток от С II и III, поэтому следует избегать непреднамеренного повреждения этих вен, устья которых должны открываться на площадке НПВ. Кроме того, необходимо выделить СПВ и ЛПВ на 1–2 см от края печеночной паренхимы.

Разделение печеночной паренхимы и пересечение пупочной пластинки. В настоящее время существуют два основных подхода к выделению и пересечению пупочной пластинки: а) по ЛРК и б) по умбиликальной линии. Обе методики подробно описаны в работах Broelsh [30] и J. De Ville De Goyet [31], а показания к применению каждой из них во многом определяются навыками и личными предпочтениями хирурга.
При рассечении по ЛРК подготовку ТЛЛС начинают с визуализации элементов ворот печени у основания круглой связки, мобилизации левой печеночной артерии, левой ветви воротной вены и левого печеночного протока. В течение последних лет в специализированной литературе наблюдается дискуссия по вопросу сохранения артерии С IV (рис. 13.7).

Устье этой артерии располагается близко к бифуркации собственной печеночной артерии и чаще отходит от левой печеночной артерии (реже — от правой) с некоторыми анатомическими вариантами:
Следует иметь в виду, что в большинстве случаев артерии С IV функционально являются вспомогательными, а не основными, в результате чего кровоснабжение этого сегмента может обеспечиваться за счет внутрипеченочных коллатералей. Именно поэтому перевязка артерии С IV при ее отхождении от левой печеночной артерии возможна, поскольку при таком анатомическом варианте она не играет существенной роли в обеспечении кровоснабжения сегмента. При значительном диаметре этой артерии (>2 мм) и при изменении цвета паренхимы С IV после ее пережатия на 1–2 мин артерию С IV необходимо сохранить, оставив ЧС с РТПД. Или же отсечь артерию С IV непосредственно у места ее отхождения от левой печеночной артерии. Для последующей реконструкции артерии IV сегмента с ГДА желательно использование микрохирургической техники. Некоторая настороженность также наблюдается в отношении хвостатой доли (С I) в случае раннего деления правой печеночной артерии при последующем сохранении ЧС и артериальных ветвей к С I с ТЛЛС.
По опыту NITp, насчитывающему несколько сотен сплит-трансплантаций реципиентам взрослого и детского возраста, ЧС обычно оставляют с ТЛЛС, а артерию С IV перевязывают, расценивая как функционально вспомогательную ветвь. Только в нескольких случаях (изменение цвета паренхимы после пережатия, диаметр артерии >2 мм) ЧС оставляют с РТПД. Техника, при которой ЧС остается с ТЛЛС, признана в NITp стандартной и никогда не рассматривалась в качестве возможной причины утраты трансплантата при ишемическом некрозе С I или С IV. Кроме того, окончательная оценка жизнеспособности I и IV сегментов производится после реперфузии: при выявлении участков изменения цвета паренхимы I или IV сегментов РТПД возможно выполнение их резекции, что предотвращает высокий риск развития ишемического некроза и формирования билиарного свища.
Следующим этапом производят выделение и прошивание нитью Prolene 5/0–6/0 мелких ветвей (обычно 6–8) воротной вены к С IV, после чего печеночная паренхима разделяется латерально до борозды пупочной вены, а левая воротная вена изолируется (рис. 13.8). Мелкие ветви воротной вены к С I следует сохранять, поскольку они отходят от основного ствола воротной вены, а не от левой ее ветви. По завершении тотальной визуализации сосудистых структур левых латеральных сегментов с помощью электрокоагулятора намечается линия разделения, проходящая на 5 мм вправо от серповидной связки (рис. 13.9).

Разделение печеночной паренхимы производят до тех пор, пока воротная пластинка не останется на 0,5–1,0 см справа от борозды пупочной вены, и заканчивают в проекции венозного (Аранциевого) протока. Разделение печеночной паренхимы осуществляют с помощью биполярной коагуляции, водоструйного, ультразвукового скальпеля (Harmonic), кавитационного ультразвукового хирургического аспиратора (CUSA, Cavitation Ultrasound Surgical Aspirator) или монополярной коагуляции и раздавливания паренхимы зажимами Келли (келликлазия). Линия пересечения проходит между левым латеральным сегментом и С IV, на 1 см выше протоковой пластинки, покрывающей левый печеночный проток в проекции борозды пупочной вены. СПВ отходит к РТПД. Мелкие ветви, обеспечивающие венозный отток от С IV в ЛПВ, а также внутрипеченочные желчные протоки пересекают и лигируют по мере необходимости. Пережатие ЛПВ на 1–2 мин выполняется для оценки функциональной значимости какой-либо крупной венозной ветви, отходящей от С IV к ЛПВ.
Затем выделяют ветви воротной вены к С I за счет полной мобилизации воротной пластинки и ТЛЛС от хвостатой доли и ее паракавального участка путем лигирования нескольких мелких восходящих ветвей. После этого производится пересечение воротной пластинки между бифуркацией собственной печеночной артерии и бороздой пупочной вены, что позволяет сформировать единственное устье желчного протока, создавая более выгодные условия для билиарной реконструкции.
Основным преимуществом рассечения по ЛРК является возможность смещения линии разделения вправо, что обеспечивает больший объем ТЛЛС за счет включения в него части С IV и может оказаться полезным при небольшом размере формируемого ТЛЛС или необходимости его увеличения по соотношению массы трансплантата к массе тела реципиента.
(B) При рассечении по умбиликальной линии выделение синуса Рекса (дистальной части левой воротной вены, отдающей ветви к С III и IV) производится вскоре после мобилизации внепеченочных структур. Пересечение брюшины, выстилающей борозду пупочной щели, осуществляется от круглой связки до ворот печени. Выполняют лигирование и пересечение всех ветвей синуса Рекса, отходящих к С IV. Синус Рекса смещают влево до визуализации пупочной пластинки, покрывающей место деления левой воротной вены на ветви, отходящие к С II и С III (рис. 13.10), после чего производятся выделение пупочной пластинки, мобилизация левой печеночной артерии, пересечение артерии С IV (остается с ТПД). В работе NITp в качестве стандартной принята методика, при которой ЧС отходит к ТЛЛС, за исключением случаев необходимости сохранения артерии С IV при высоком риске ишемии этого сегмента (см. рис. 13.4). Разделение печеночной паренхимы начинают по плоскости серповидной связки (на передней поверхности — по средней линии предварительно выделенной пупочной пластинки, на задней — вдоль Аранциева протока) и заканчивают в области слияния СПВ и ЛПВ.

Таким образом, в сравнении с разделением по ЛРК воротная пластинка остается медиальнее. Затем выделяют ветви воротной вены к С I, левую часть воротной пластинки и левый печеночный проток пересекают ножницами или скальпелем ближе к поверхности печени, сохраняя желчный проток от С IV (рис. 13.11). Оценка кровоснабжения С IV может быть выполнена во время разделения печени in situ. Потенциальная гипоперфузия IV сегмента является относительным показанием к сегментэктомии или субсегментэктомии С IV.

Таким образом, в бескровном поле формируют два парциальных трансплантата печени с сохраненными сосудистыми ножками и венозным оттоком. На рассеченные поверхности паренхимы для обеспечения адекватного гемостаза могут быть наложены коллагеновые сетки или гемостатические губки, после чего производят канюляцию брюшной аорты и НПВ и начинают холодовую перфузию. По завершении перфузии правую печеночную артерию, левую воротную и печеночную вены пересекают. В результате основной ствол воротной вены, общий желчный проток и правая печеночная артерия остаются с РТПД, который эксплантируется с сохранением площадки НПВ, а ЛПВ отходит к ТЛЛС. Левый печеночный проток и общий желчный проток промывают 50 мл холодного консервирующего раствора перед упаковкой трансплантата.
Этап back-table. При трансплантации левого латерального сектора с сохраненной ЛПВ венозный анастомоз формируется с НПВ реципиента. После дополнительной ручной перфузии воротной вены консервирующим раствором выполняется визуальная оценка трансплантата на предмет экстравазации перфузата, крови и желчи, которые должны быть устранены на этапе back-table. Предтрансплантационная подготовка ТЛЛС определяется конкретной методикой пересадки. Устья ППВ и более мелких притоков реципиента перевязывают вдоль ствола НПВ, а места впадения СПВ и ЛПВ объединяют общим устьем, облегчая таким образом формирование венозного анастомоза. Анастомоз воротной вены выполняют по типу «конец в конец» нерассасывающейся монофиламентной нитью. У реципиентов младенческого возраста возможно формирование задней стенки анастомоза непрерывным швом (обвивным или типа Блелока), а передней — отдельными узловыми швами. Если ЧС не был сохранен с ТЛЛС, возможно наложение анастомоза левой печеночной артерии трансплантата с общей печеночной артерией реципиента при ее достаточной длине. В противном случае артериальное соустье может быть сформировано с инфраренальным отделом брюшной аорты реципиента путем интерпозиции артерии трансплантата с помощью аллогенных сосудистых графтов. Билиарный анастомоз иногда формируется по типу «конец в конец», однако чаще производится билиодигестивная реконструкция — гепатикоеюностомия на выключенной по Ру петле тонкой кишки по типу «конец в бок».
Подготовка РТПД на этапе back-table включает удаление участков диафрагмы, лигирование всех диафрагмальных вен и ушивание устьев ЛПВ, левой воротной вены и левой печеночной артерии (если ЧС остался с ТЛЛС). В случаях сохранения артерии С IV возможна ее реконструкция с ГДА реципиента. Культя левого печеночного протока ушивается. Деликатная мануальная перфузия каждой сосудистой структуры позволяет выявить экстравазацию перфузата, которая требует устранения. Устье ЛПВ ушивают непрерывным швом в поперечном направлении. Пересадка расширенной правой доли печени производится по методике трансплантации целого органа.
13.4.3. Техника разделения печени для двух взрослых реципиентов
Начальные этапы операции являются стандартными для мультиорганной эксплантации: производятся мобилизация надчревного и инфраренального отделов брюшной аорты и канюляция нижней брыжеечной вены. Таким образом, при внезапной дестабилизации гемодинамики ПД разделение печени in situ может быть прервано для экстренной канюляции магистральных сосудов и начала холодовой перфузии абдоминального региона.
Вскрыв Глиссонову капсулу, внепеченочно выделяют и обходят держалками правую печеночную артерию и правую воротную вену (рис. 13.12). Выполняют полную мобилизацию правой доли печени с сохранением ветвей, идущих к НПВ, для обеспечения адекватного венозного оттока. При наличии вокруг НПВ паренхимы С III и IV она должна быть рассечена. Правую печеночную вену выделяют и обходят турникетом. После идентификации всех коротких печеночных вен возможно выполнение «хэнгинг-маневра» (hanging manoeuvre) — проведение вдоль позадипеченочного отдела НПВ широкой держалки с выведением ее между устьем правой печеночной вены и стволом СПВ и ЛПВ. «Хэнгинг-маневр» завершается проведением держалки в вентральном направлении к правой печеночной артерии и правой воротной вене.

В результате держалка определяет корректную плоскость рассечения паренхимы: от бифуркаций собственной печеночной артерии и воротной вены к точке между правой печеночной веной и СПВ. При проведении интраоперационного ультразвукового исследования (УЗИ) перед разделением возможно обнаружение крупных вен от С V и VIII, которые пересекают плоскость пересечения по ЛРК. При данной методике (tape-assisted parenchyma transection) рассечение печеночной паренхимы производится ближе к передней поверхности НПВ, что обеспечивает потенциально лучшее сохранение венозного оттока от хвостатой доли (рис. 13.13). После разделения паренхимы и идентификации правого печеночного протока эксплантация продолжается по стандартной методике: канюляция магистральных сосудов и начало холодовой перфузии. Выделение правых печеночной вены, печеночной артерии и воротной вены производится при завершении холодовой перфузии. Правые печеночные артерия и вена, правая воротная вена и общий желчный проток отходят к ПТПД. Перед упаковкой осуществляют деликатную мануальную перфузию желчных протоков обоих трансплантатов холодным консервирующим раствором. В работе почти всех центров NITp используется методика, при которой общий желчный проток остается с ПТПД, а общий ствол воротной вены и ЧС — с ПТЛД. Однако в нестандартных анатомических ситуациях, как у донора, так и у реципиента, возможно отклонение от типичной методики операции.

Существует три способа разделения печени для двух взрослых реципиентов: a) разделение печени на ПТЛД (С I–IV) и ПТПД (С V–VIII) — в NITp выполняется наиболее часто; б) разделение печени на ТЛД (С II–IV) и ТПД (С I, V–VIII) и в) разделение печени ex situ по стандартной методике или путем рассечения НПВ и СПВ (ПТЛД С I–IV и ПТПД С V–VIII).
(a) Разделение печени для двух взрослых реципиентов с формированием ПТЛД (С I–IV) и ПТПД (С V–VIII) Эта методика сплит-трансплантации наиболее часто используется для взрослых реципиентов и развивалась параллельно с правосторонней гемигепатэктомией (ПГЭ) у живого донора [31–34] (рис. 13.14). ПТЛД (С I–IV) массой порядка 450–500 г обычно используются для взрослых реципиентов с массой тела 45–50 кг и в некоторых случаях для более тяжелых реципиентов в зависимости от антропометрических показателей донора. При трансплантации ПТПД (С V–VIII) массой около 750–800 г, как правило, допускается соотношение массы трансплантата к массе тела реципиента более 1,0%. Методика этой операции аналогична описанной выше (раздел 13.4.3). После идентификации печеночных вен правую печеночную вену обходят держалкой. Производят лигирование всех диафрагмальных вен, плоскость рассечения печеночной паренхимы проходит от правой доли до НПВ, при этом в визуализации левой стенки НПВ нет необходимости. Обычно обнаруживаемые интраоперационно добавочные печеночные вены (ДПВ) сохраняют на кавальной площадке только при диаметре более 5 мм.
После ретроградной холецистэктомии производится мобилизация элементов ПДС. Правую печеночную артерию выделяют латерально от общего печеночного протока, что позволяет избежать скелетизации области бифуркации собственной печеночной артерии, тем самым сохраняя возможную артериальную ветвь к С IV, отходящую от правой печеночной артерии. Мобилизацию правой воротной вены производят латерально справа, выделяют до уровня бифуркации и обходят держалкой, после чего для определения демаркационной линии разделения печеночной паренхимы выполняют короткий и деликатный прием Прингла (в данном случае — пережатие левых печеночной артерии и воротной вены).

После идентификации воротной пластинки левые печеночные протоки (в количестве 1–2) пересекают, а культи ушивают монофиламентной нитью 6/0. Гемостаз участков воротной пластинки осуществляется прошиванием нерассасывающейся монофиламентной нитью 5/0. Рассечение паренхимы производится по ЛРК (вдоль срединной воротной щели), хирург осуществляет предупреждение повреждения НПВ, разместив пальцы левой руки позади правой доли печени. Выполнение «хэнгинг-маневра» весьма полезно: обеспечивает лучшее сохранение венозного оттока от хвостатой доли и способствует выходу на переднюю стенку НПВ, сохраняя плоскость пересечения. Небольшие венозные ветви (диаметром менее 4 мм) от С V и VIII к СПВ лигируют и пересекают, поскольку СПВ отходит к ПТЛД (рис. 13.15). Сохранение и последующая реваскуляризация указанных ветвей необходимы при их диаметре более 5 мм, а также по результатам 5-минутного теста Makuuchi [35], предложенного автором при ТПЖД для обоснования сохранения всех вен, дренирующих правый парамедианный сектор ПТПД (С VI–VII), если СПВ не остается с этим трансплантатом. После 5-минутного пережатия как печеночной артерии, так и ветвей СПВ выполняют интраоперационную ультразвуковую допплерографию — наличие портального гепатофугального (по направлению к печени) кровотока в парамедианной ветви воротной вены свидетельствует о необходимости реконструкции окклюзированных парамедианных венозных ветвей.

По завершении разделения печеночной паренхимы вводится гепарин натрия (Гепарин♠) и выполняется канюляция брюшной аорты и НПВ. Правые печеночная артерия, воротная вена и печеночная вена остаются интактными до завершения холодовой перфузии. По окончании перфузии производится разделение печеночных трансплантатов: пересекают правую воротную вену сразу после бифуркации, пересекают правую печеночную артерию непосредственно у места ее отхождения от собственной печеночной артерии (рис. 13.16). Обоснованием сохранения ЧС с ПТЛД является оптимизация кровоснабжения С IV, артериальный приток к которому осуществляется в большей степени из ветвей левой печеночной артерии. Правая печеночная вена с площадкой отсекается от НПВ, после чего ПТПД С V–VIII извлекается из тела ПД. По причине большей вариабельности билиарной анатомии правой доли печени общий желчный проток отходит к ПТПД (см. рис. 13.16). Перед упаковкой обоих парциальных трансплантатов следует выполнить промывание желчных протоков вручную.

(a1) Основные моменты этапа back-table и операции у реципиента Подготовка ПТПД С V–VIII ex situ начинается с лигирования мелких желчных протоков и восстановления всех венозных ветвей СПВ, дренирующих С IV, V и VIII, для адекватного венозного оттока от правого парамедианного сектора. Крупные (диаметром более 5 мм) печеночные вены от С VI и VII должны быть анастомозированы с НПВ, предпочтительно с использованием венозного аллографта — подвздошного или брыжеечного (рис. 13.17). Далее производится подготовка устьев правой воротной вены и правой печеночной артерии. ПТПД трансплантируют в ортотопическую позицию. Венозный анастомоз формируют по типу «конец в бок» с расширенным устьем правой печеночной вены или объединенным устьем ЛПВ, СПВ и правой печеночной вены реципиента. Наиболее частым типом анастомоза воротной вены и правой печеночной артерии является «конец в конец» с воротной веной и общей печеночной артерией реципиента. Для артериальной реконструкции иногда могут быть использованы подвздошные аллографты. Билиарную реконструкцию осуществляют путем анастомоза «конец в конец» с общим желчным протоком реципиента.
Трансплантацию ПТЛД осуществляют стандартным ортотопическим способом с или без обходного вено-венозного шунтирования или с помощью методики piggy-back. Билиарную реконструкцию выполняют путем формирования билиодигестивного анастомоза на выключенной по Ру петле тонкой кишки или билиарного анастомоза по типу «конец в конец» между левым печеночным протоком реципиента и левым печеночным/общим желчным протоком трансплантата.

(б) Разделение печени для двух взрослых реципиентов или для взрослого реципиента и ребенка с массой тела 35–45 кг с формированием ТЛД (С II–IV) и ТПД (С I, V–VIII) Трансплантация ТЛД С II–IV (массой 400–450 г) обычно выполняется педиатрическим реципиентам с массой тела 35–45 кг. Эта операция технически сложнее ранее описанных способов и требует достаточного хирургического опыта в сплит-трансплантации печени [28]. С ТЛД сохраняются СПВ и ЛПВ, при эксплантации их обходят общей держалкой. Полезным является выполнение «хэнгинг-маневра» для точного определения плоскости рассечения печеночной паренхимы. В отличие от предыдущей методики широкую держалку следует проводить не по правой, а по левой стенке передней поверхности позадипеченочного отдела НПВ, оставляя, таким образом, хвостатую долю с ТПД (С I, V–VIII). В результате держалка располагается в проекции венозной (Аранциевой) борозды. Производится мобилизация и взятие на отдельные держалки левого печеночного протока, левых печеночной артерии и воротной вены. Рассечение паренхимы выполняют всей длине печени до круглой связки. Артерия С IV, отходящая от левой печеночной артерии, должна быть выделена и сохранена. Основным отличием данной методики является мобилизация левой воротной вены на значительном протяжении с тщательным выделением небольших ветвей к хвостатой доле (обычно 1–5), имеющих важное значение для адекватного отделения левого латерального сектора от С I, который должен быть оставлен в составе ТПД. Однако, поскольку некоторые из этих ветвей отходят к хвостатой доле от задней стенки воротной вены, полное и безопасное пересечение этих ветвей возможно после холодовой перфузии с последующим лигированием на этапе back-table.
С помощью деликатного пережатия левых печеночной артерии и воротной вены возможно определение четкой демаркационной плоскости для рассечения печеночной паренхимы. Линию рассечения намечают электрокоагуляцией, разделение паренхимы до воротной пластинки продолжают с помощью доступного хирургического инструментария [биполярная коагуляция, водоструйный, ультразвуковой скальпель (Harmonic), CUSA или простое раздавливание зажимами Келли (келликлазия) и монополярная коагуляция]. Встречающиеся по линии рассечения паренхимы сосуды перевязывают. На уровне воротной пластинки пересекают левый печеночный проток, левые печеночная артерия и воротная вена остаются интактными для обеспечения адекватной холодовой перфузии печени, которую начинают после канюляции брюшной аорты и гепаринизации ПД. По окончании холодовой перфузии выполняют быструю эксплантацию парциальных трансплантатов печени: пересекают левую воротную вену непосредственно дистальнее бифуркации, а правую печеночную артерию — непосредственно дистальнее места ее отхождения от собственной печеночной артерии. При данной методике сплит-трансплантации общий ствол воротной вены и общий желчный проток отходят к ТПД, а ЧС — к ТЛД. Поскольку в меньшей по размеру левой доле коллатеральное кровообращение менее развито, сохранение ЧС с ТЛД играет важную роль в обеспечении достаточного кровоснабжения С IV, хотя небольшие артериальные ветви к нему могут отходить как от левой, так и от правой печеночных артерий. НПВ сохраняется с ТПД — формируется единая площадка с ЛПВ и СПВ. Перед консервацией и упаковкой обоих парциальных трансплантатов выполняют флашинг желчных протоков консервирующим раствором.
Разделение печени с формированием ТЛД (С II–IV) и ТПД (С I, V–VIII) в сравнении с ранее описанными методиками сопровождается повышенным риском развития сосудистых и билиарных осложнений вследствие возможного недостаточного артериального кровоснабжения С IV. При диссекции левой воротной вены на протяжении, что само по себе сопровождается артериальной гипоперфузией, возможно пересечение некоторых ветвей к С IV. В раннем посттрансплантационном периоде это может приводить к парциальному некрозу сегмента и желчеистечению.
(б1) Основные моменты этапа back-table и операции у реципиента При подготовке ТЛД С II–IV ex situ требуется идентификация и лигирование пересеченных мелких желчных протоков, а также, при необходимости, — проведение сосудистой реконструкции ТПД с использованием сосудистых аллографтов.
Трансплантацию ТПД С I, V–VIII взрослому реципиенту осуществляют стандартным ортотопическим способом с или без обходного вено-венозного шунтирования. Формирование венозного анастомоза осуществляют по типу «конец в бок» между площадкой НПВ трансплантата и объединенным устьем СПВ и ЛПВ реципиента или по методике piggy-back. Правую печеночную артерию и общий ствол воротной вены анастомозируют «конец в конец» с печеночной артерией и воротной веной реципиента. При наличии ДППА выполняют ее реконструкцию с использованием сосудистых аллографтов. Билиарную реконструкцию осуществляют с помощью холедохо-холедохостомии на Т-образном дренаже Кера, который имплантируют с целью билиарной декомпрессии и профилактики желчеистечения с рассеченной поверхности трансплантата.
При трансплантации ТЛД С II–IV общую площадку ЛПВ и СПВ анастомозируют с надпеченочным отделом НПВ реципиента, однако ввиду частой недостаточной длины вены приходится выполнять различные варианты удлиняющей венопластики, чтобы избежать кинкинга [31–34]. Реконструкция воротной вены также производится с учетом анатомических особенностей реципиента: в некоторых случаях следует отказаться от анастомоза «конец в конец» с воротной веной реципиента и сформировать соустье в области конфлюенса селезеночной и верхней брыжеечной вен реципиента. Следует сдержанно относиться к использованию венозных аллографтов для удлинения воротной вены, которое может иногда использоваться для формирования анастомоза без натяжения (tension-free anastomosis). С этой же целью необходимо стремиться к сохранению максимальной длины воротной вены реципиента. Реконструкция печеночной артерии ТЛД может быть выполнена либо с печеночной артерией реципиента по типу «конец в конец», либо с брюшной аортой при помощи подвздошного артериального аллографта. Билиарная реконструкция ТЛД обычно выполняется путем гепатикоеюностомии на выключенной по Ру петле тонкой кишки.
(в) Разделение печени ex situ для двух взрослых реципиентов: стандартная техника и методика разделения позадипеченочной НПВ и СПВ Основные этапы разделения печени ex situ были описаны выше в разделе 13.4.1. Единственным абсолютным противопоказанием для выполнения данной операции является отсутствие внепеченочной бифуркации воротной вены. Рассечение печеночной паренхимы осуществляется по средней линии С IV с сохранением СПВ у ТПД. В некоторых случаях плоскость рассечения паренхимы проходит по ЛРК (вдоль срединной воротной щели), в результате формируются ПТПД (С V–VIII) и ПТЛД (С I, II–IV) (рис. 13.18, 13.19, 13.20). Сегмент IV отходит к левому трансплантату для увеличения соотношения массы трансплантата к массе тела реципиента, а СПВ и ЛПВ единым стволом отводятся влево. Таким образом, при разделении печени ex situ плоскость рассечения паренхимы та же, что и при левосторонней гемигепатэктомии у живых доноров. Одним из преимуществ разделения ex situ служит возможность обеспечения оптимального венозного оттока в обоих парциальных трансплантатах за счет визуальной оценки анатомии позадипеченочного отдела НПВ и мест впадения печеночных вен.


Одной из основной проблем, связанных с разделением печени для двух взрослых реципиентов, является возможное нарушение венозного оттока от правых парамедианных сегментов (С V, С VIII) и С IV, обнаруживаемое после реваскуляризации трансплантата. Венозный отток от этих сегментов происходит в СПВ. Четкая демаркационная линия при разделении печени in situ способствует профилактике нарушения оттока от одного из этих сегментов и, как следствие, развития синдрома недостаточного размера и посттрансплантационной печеночной недостаточности. При ex situ разделении печеночного трансплантата отсутствие адекватного венозного оттока от парамедианных сегментов может быть распознано только после реваскуляризации, в связи с чем некоторыми авторами было предложено продольное рассечение НПВ на две части [29]. Диссекция в области ворот печени начинается с мобилизации печеночной артерии и идентификации артерии С IV, возможность пересечения которой зависит от ее функциональной значимости и места отхождения. Воротную вену выделяют до ее бифуркации, ее основной ствол обычно отходит к ТЛД для сохранения ветвей I сегмента. При диссекции билиарных структур общий желчный проток сохраняется с ТПД по причине более вариабельной анатомии билиарного дерева правой доли. После продольного рассечения по средней линии дорсальной и вентральной стенок НПВ с формированием двух площадок (рис. 13.21) острым путем производится разделение печеночной паренхимы по ДРК.

В дальнейшем СПВ пересекается изнутри рассеченной НПВ с сохранением для каждого трансплантата половины СПВ. После рассечения паренхимы С VIII снаружи от НПВ и на 1–2 см вправо от СПВ ее основное устье отходит к ТЛД. В результате получают два парциальных печеночных трансплантата с отдельной площадкой НПВ для каждого, включающей устья СПВ и других венозных ветвей (рис. 13.22). Реконструкцию рассеченной СПВ ТЛД выполняют с помощью половины артериального подвздошного аллографта, а для ТПД используют венозный подвздошный аллографт (рис. 13.23).


Трансплантация полученных парциальных трансплантатов осуществляется по стандартной ортотопической методике. Для обеспечения венозного оттока формируют кава-кавальный анастомоз. Площадка НПВ ТПД также может быть анастомозирована с правой печеночной веной реципиента за счет расширения ее устья.

Следует помнить, что рассечение СПВ ex situ требует дополнительного времени для реконструктивной венопластики, что сопровождается увеличением продолжительности холодовой ишемии, способствующей увеличению частоты посттрансплантационных осложнений, в первую очередь билиарных. По этой причине, по мнению авторов, методика ex situ разделения печени имеет весьма ограниченное применение в клинической практике, особенно в случае разветвленного венозного оттока от сегментов IV, V и VIII в СПВ, что способствует развитию венозного застоя правого парамедианного сектора и С IV после трансплантации.
13.5. Заключение
Одним из факторов, препятствующих более широкому распространению сплит-трансплантации печени, является распределение парциальных трансплантатов между центрами, особенно при разделении органа для двух взрослых реципиентов. Большинство центров рассматривают возможность выполнения сплит-трансплантации печени от ПД только для одного взрослого и одного педиатрического реципиента. Подобные операции сопровождаются хорошими результатами, а с учетом отличных результатов ТПЖД значимость разделения печеночного трансплантата для двух взрослых реципиентов в трансплантологическом сообществе признается сомнительной относительно баланса потенциальных рисков и эффективности для реципиентов [26–28]. Не следует забывать, что результаты сплит-трансплантации печени двум взрослым реципиентам сопоставимы с результатами трансплантации целой печени от субоптимальных ПД, сопровождаются более высокой частотой развития посттрансплантационных осложнений и более высокой летальностью, хотя рандомизированные исследования по данному вопросу к настоящему времени отсутствуют. Определенное беспокойство также вызывают значительный рост кривой обучения сплит-трансплантации для взрослых и недостаточные данные по оценке потенциального риска малого объема парциального печеночного трансплантата и развития синдрома недостаточного размера, особенно у пациентов с портальной гипертензией. Обнадеживающие результаты достигнуты в многоцентровом исследовании H. Yersiz et al., во многом благодаря тщательному подбору донора и пары реципиентов [1, 26–28, 33, 34]. Совместная работа различных центров трансплантации печени, безусловно, будет способствовать более грамотному распределению трансплантатов, а также, весьма вероятно, позволит улучшить результаты сплит-трансплантации печени для взрослых при условии тщательного подбора донора и пары реципиентов.
Литература
-
Aseni P., De Feo T.M., De Carlis L.et al.; Split-Liver Study Group. A prospective policy development to increase split-liver transplantation for 2 adult recipients: results of a 12-year multicenter collaborative study // Ann. Surg. 2014. Vol. 259. P. 157–165.
-
Smith B. Segmental liver transplantation from a living donor // J. Pediatr. Surg. 1969. Vol. 4. P. 126–132.
-
Bismuth H., Houssin D. Reduced-sized orthotopic liver graft in hepatic transplantation in children // Surgery. 1984. Vol. 95. P. 367–370.
-
Broelsch C.E., Neuhaus P., Burdelski M. Orthotopic transplantation of hepatic segments in infants with biliary atresia // Chirurgisches Forum 84f. Experim U / Ed. L.K. Klinische Forschun. Berlin : Heidelberg-Springer, 1984.
-
Rogiers X., Malago M., Gawad K. et al. In situ splitting of cadaveric livers. The ultimate expansion of a limited donor pool // Ann. Surg. 1996. Vol. 224. P. 331–339.
-
Vulchev A., Roberts J.P., Stock P.G. Ethical issues in split versus whole liver transplantation // Am. J. Transplant. 2004. Vol. 4. P. 1737–1740.
-
Busuttil R.W., Goss J. Split liver transplantation // Ann. Surg. 1999. Vol. 229. P. 313–321.
-
Giacomoni A., Lauterio A., Donadon M. et al. Should we still offer split‐liver transplantation for two adult recipients? A retrospective study of our experience // Liver Transpl. 2008. Vol. 14. P. 999–1006.
-
Pichlmayr R., Ringe B., Gubernatis G. // Transplantation. of a donor liver to two recipients (splitting transplantation): a new method in the further development of segmental liver transplantation // Langenbecks Arch. Chir. 1989. Vol. 373. P. 127–130.
-
Bismuth H., Morino M., Castaing D. et al. Emergency orthotopic liver transplantation in two patients using one donor liver // Br. J. Surg. 1989. Vol. 76. P. 722–724.
-
Goss J.A., Yersiz H., Shackleton C.R. et al. In situ splitting of the cadaveric liver for transplantation // Transplantation. 1997. Vol. 64. P. 871–877.
-
Azoulay D., Astarcioglu I., Bismuth H. et al. Split-liver transplantation. The Paul Brousse policy // Ann. Surg. 1996. Vol. 224. P. 737–746.
-
Bismuth H. Surgical anatomy and anatomical surgery of the liver // World J. Surg. 1982. Vol. 6. P. 3–9.
-
See Ching C., Chi Leung L., Chung Mau L. et al. Estimating liver weight of adults by weight and gender // World J. Gastroenterol. 2006. Vol. 12. P. 2217–2222.
-
Hill M.J., Hughes M., Jie T., Cohen M. et al. Graft weight/recipient weight ratio: how well does it predict outcome after partial liver transplants? // Liver Transpl. 2009. Vol. 15. P. 1056–1062.
-
Rela M., Voregas V., Miniesan P. et al. Split liver transplantation: King’s College Hospital experience // Ann. Surg. 1998. Vol. 227. P. 282–288.
-
Yersiz H., Renz J.F., Hisatake G.M., Farmer D.G., Busuttil R.W. The conventional technique of in-situ split-liver transplantation // J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 2003. Vol. 10. P. 11–15.
-
Renz J.F., Yersiz H., Reichert P.R. et al. Split-liver transplantation: a review // Am. J. Transplant. 2003. Vol. 3. P. 1323–1335.
-
Humar A., Ramcharan T., Sielaff T.D. et al. Split liver transplantation for two adult recipients: an initial experience // Am. J. Transplant. 2001. Vol. 1. P. 366–372.
-
Broering D.C., Wilms C., Lenk C. et al. Technical refinements and results in full-right full-left splitting of the deceased donor liver // Ann. Surg. 2005. Vol. 242. P. 802–812; discussion 812–813.
-
Rogiers X., Bismuth H., Busuttil R.W. et al. Split liver transplantation. Heidelberg : Springer Edition, 2002.
-
Chaib E., Bertevello P., Saad W.A., Pinotti H.W., Gama-Rodrigues J. The main hepatic anatomic variations for the purpose of split-liver transplantation // Hepatogastroenterology. 2007. Vol. 54. P. 688–692.
-
Broering D.C., Schulte am Esch J., Fischer L., Rogiers X. Split liver transplantation // HPB. 2004. Vol. 6. P. 76–82.
-
Emond J.C., Whitington P.F., Thistlethwaite J.R. et al. Transplantation of two patients with one liver. Analysis of a preliminary experience with ‘split-liver’ grafting // Ann. Surg. 1990. Vol. 212. P. 14–22.
-
Hong J.C., Yersiz H., Farmer D.G. et al. Long term outcomes for whole and segmental liver grafts in adult and pediatric liver transplant recipients: a 10-year comparative analysis of 2988 cases // J. Am. Coll. Surg. 2009. Vol. 208. P. 682–689; discussion 689–691.
-
Hashimoto K., Quintini C., Aucejo F.N. et al. Split liver transplantation using hemiliver graft in the MELD Era: a single center experience in the United States // Am. J. Transplant. 2014. Vol. 14. P. 2072–2080.
-
Lee W.C., Chan K.M., Chou H.S. et al. Feasibility of split liver transplantation for 2 adults in the model of end-stage liver disease era // Ann. Surg. 2013. Vol. 258. P. 306–311.
-
Broering D.C., Pamela B., Lars M., Christian W., Xavier R. Splitting of the middle hepatic vein in full-right –fullleft splitting of the liver // Liver Transpl. 2005. Vol. 11. P. 350–352.
-
Broelsch C.E., Whitington P.F., Emond J.C. et al. Liver transplantation in children from living related donors surgical techniques and results // Ann. Surg. 1991. Vol. 214. P. 428–437.
-
de Ville de Goyet J., di Francesco F., Sottani V., Grimaldi C., Tozzi A.E., Monti L., Muiesan P. Splitting livers: trans-hilar or trans-umbilical division? Technical aspects and comparative outcomes // Pediatr. Transplant. 2015. Vol. 19. P. 517–526.
-
Forti D. Transplantul cu ficat redus (reduced size) si impartit (split) // Capitolul. 2004. Vol. 48. P. 1098–1110 // Irinel Popescu. Chirurgia Ficatului. Vol. II. Editura Universitara «Carol Davila», 2004.
-
Yersiz H., Renz J.F., Hisatake G. et al. Technical and logistical considerations of in situ split-liver transplantation for two adults: part I. Creation of left segment II, III, IV and right segment I, V-VIII grafts // Liver Transpl. 2001. Vol. 7. P. 1077–1080.
-
Yersiz H., Renz J.F., Hisatake G. et al. Technical and logistical considerations of in situ split-liver transplantation for two adults: part II. Creation of left segment I–IV and right segment V–VIII grafts // Liver Transpl. 2002. Vol. 8. P. 78–81.
-
Makuuchi M., Sugawara Y. Technical progress in living donor transplantation for adults // HPB. 2004. Vol. 2. P. 95–98.
Дополнительно к указанным в оригинале.
-
Kawarada Y., Das B.C., Taoka H. Anatomy of the hepatic hilar area: the plate system // J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 2000. Vol. 7, N 6. P. 580-586. DOI: https://doi.org/10.1007/s005340070007
Глава 14. Изъятие трансплантата тонкой кишки и мультивисцеральная эксплантация. Ф. Ди Бенедетто, Дж. Тарантино
F. Di Benedetto, G. Tarantino Hepato-pancreato-biliary Surgery and Liver Transplantation Unit, University of Modena and Reggio Emilia, Modena, Itally; e-mail: f.diben@virgilio.it
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Необходимы тщательный отбор доноров и соблюдение разумного антропометрического соответствия донора и реципиента.
-
Тщательная ревизия органов брюшной полости является неотъемлемым и существенным этапом мультивисцеральной эксплантации.
-
Следует соблюдать аккуратность при выделении нижних брыжеечных сосудов после применения приемов Каттеля–Брааша и Кохера, избегая повреждения правого мочеточника, анатомия которого достаточно вариабельна.
-
Особое внимание следует обратить на наличие добавочных артерий печени: правая может отходить от верхней брыжеечной артерии, а левая — от левой желудочной артерии.
-
Необходимо избегать повреждения ствола Генле (при его наличии) и нижней панкреатодуоденальной вены для сохранения венозного оттока от поджелудочной железы, а также повреждения тощекишечных ветвей верхней брыжеечной артерии, обеспечивающих кровоснабжение проксимальной части трансплантата тонкой кишки.
-
После начала холодовой перфузии кишечный трансплантат следует обернуть хирургическим полотенцем, предотвращая его холодовую травму.
14.1. Введение
Прогресс в области трансплантации тонкой кишки, достигнутый за последние десятилетия, обусловлен разработкой более четких показаний к трансплантации, улучшением стратегии иммуносупрессивной терапии, основанной на индукционной терапии и использовании ингибиторов кальцинейрина, расширением возможностей для мониторинга состояния трансплантата за счет применения увеличительной илеоскопии (ZOOM) и ортогональной поляризационной спектральной визуализации, регулярным гистологическим исследованием кишечной стенки и, наконец, снижением частоты инфекционных осложнений и посттрансплантационных лимфопролиферативных заболеваний [1]. Сочетание указанных факторов определило увеличение выживаемости пациентов и трансплантатов, а также рост количества трансплантируемых органов и центров, выполняющих эту операцию.
Развитие трансплантации тонкой кишки началось с новаторских экспериментальных работ Алексиса Карреля, а позднее, в середине XX в., было дополнено исследованиями Lillehei et al., посвященными изолированной трансплантации тонкой кишки, а также Starzl и Kaupp, изучавших возможности экспериментальной мультивисцеральной гомотрансплантации [2–4]. В последующие десятилетия попытки клинической трансплантации тонкой кишки оказывались неудачными по причинам развития различных осложнений, в частности сепсиса или реакции отторжения. Лишь в конце 1980-х гг. появились первые сообщения об успешных подобных операциях: мультивисцеральной трансплантации в 1987 г. в Питтсбурге, США, трансплантации тонкой кишки в 1989 г. в ФРГ, а затем во Франции и Канаде [5–8].
Только после внедрения в начале 1990-х гг. в клиническую практику ингибиторов кальцинейрина (такролимуса) трансплантация тонкой кишки стала доступным и относительно безопасным способом лечения пациентов с кишечной недостаточностью за счет увеличения выживаемости реципиентов и трансплантатов [9]. В дальнейшем результаты трансплантации тонкой кишки улучшались за счет применения индукционной иммуносупрессивной терапии, совершенствования хирургической техники, посттрансплантационного ухода и наблюдения за пациентами.
Определение типов кишечных трансплантатов основано на предложенном T. Starzl «кластерном» принципе для тонкокишечных и мультивисцеральных трансплантатов (рис. 14.1) [4, 5, 8]. В настоящее время единое мнение существует по определению изолированного трансплантата тонкой кишки, состоящего из тощей и подвздошной, кровоснабжение которого осуществляется через верхние брыжеечные сосуды, и комплекса печень–тонкая кишка (non-composite liver–intestine transplant), реваскуляризация которого выполняется раздельно для печеночного и тонкокишечного трансплантатов. Термин же «мультивисцеральный трансплантат» используется для любого органокомплекса, в состав которого входят желудок и тонкая кишка. Мультивисцеральный трансплантат может быть полным (комплекс печень–желудок–ДПК–поджелудочная железа–тонкая кишка) или модифицированным, который не включает печень, а также может не включать желудок. Кроме того, некоторые авторы сообщают об успешной трансплантации правых отделов толстой кишки и илеоцекального клапана, в частности у реципиентов после колэктомии, страдающих нарушениями моторики [10].

14.2. Критерии отбора доноров
Каждый случай трансплантации тонкой кишки требует грамотного подбора пары донор–реципиент. Пристальное внимание уделяется соблюдению антропометрического соотношения в паре, поскольку ошибка на данном этапе может привести к неудаче всей трансплантации. В настоящее время существует несколько видов хирургической тактики для коррекции малого объема брюшной полости реципиента, которые можно разделить на две основные группы. Первая направлена на уменьшение содержимого брюшной полости за счет работы с худощавыми невысокими донорами и редуцированными трансплантатами. Вторая — на увеличение объема брюшной полости реципиента — использование ротационных лоскутов, рассасывающихся или нерассасывающихся эндопротезных сеток, ацеллюлярного дермального матрикса из донорской кожи человека [10, 11]. В 2003 г. была разработана методика с использованием свободного васкуляризированного композитного лоскута брюшной стенки донора, получившая название «трансплантация брюшной стенки» (abdominal wall transplantation) [12]. Реваскуляризация этого лоскута производится путем формирования анастомозов с подвздошными или эпигастральными сосудами реципиента с использованием микрохирургической техники. Преимущества такой операции заключаются в низкой иммуногенности лоскута и возможности ее выполнения как во время трансплантации, так и в посттрансплантационном периоде от другого ПД. Еще одной возможной опцией укрепления передней брюшной стенки является использование влагалища прямой мышцы живота, которое после пластики располагается под кожей реципиента и создает прочный рубец, препятствуя возникновению послеоперационных грыж.
К относительным противопоказаниям для донорства тонкой кишки относится ожирение ПД, так как развитая тяжелая брыжейка способствует тромбозу сосудистых анастомозов в посттрансплантационном периоде.
В течение долгого времени серологически ЦМВ-негативные доноры считались предпочтительными для ЦМВ-позитивных реципиентов, однако ввиду постоянно увеличивающейся потребности в трансплантации и дефицита ПД в последние годы данный принцип не соблюдается. Кроме того, применение превентивной противовирусной терапии в случаях ЦМВ-позитивных доноров нивелирует имевшиеся прежде различия в исходах трансплантаций в сравнении с использованием органов от ЦМВ-негативных доноров [13].
Важной проблемой при отборе донора остается причина его смерти. Абдоминальная травма не является безусловным противопоказанием для донорства тонкой кишки, поскольку большинство травм живота сопровождаются повреждением паренхиматозных органов (печени, селезенки), в отличие от кишечника, страдающего гораздо реже ввиду естественной относительной подвижности в брюшной полости.
Посмертные доноры с сохраненным кровообращением являются основным источником органов; в настоящее время донорство после остановки сердечной деятельности служит абсолютным противопоказанием для эксплантации кишечника. Определенная дискуссия продолжается по вопросу использования доноров с предшествующей СЛР, поскольку в исследовании C.S. Matsumoto et al. не было выявлено различий при использовании данной категории доноров в сравнении с «идеальными» донорами по показателям продолжительности пребывания реципиента в стационаре, выживаемости трансплантата, срока полной отмены парентерального питания, а также частоты и степени реакции отторжения [14]. Спорным остается и вопрос о целесообразности изъятия при значительной вазопрессорной поддержке гемодинамики донора, поскольку тонкие сосуды, образующие артериальные аркады петель тощей и подвздошной кишки, особенно чувствительны к ишемии.
Предпочтение отдается также выполнению ABO-совместимых трансплантаций, однако использование трансплантатов от ABO-несовместимых доноров возможно для пациентов, находящихся в ургентном «листе ожидания». Следует отметить, что у пациентов, перенесших трансплантацию тонкой кишки, наблюдается достаточно высокий процент (до 30%) панель-реактивных антител, и до недавнего времени при положительной перекрестной пробе (cross-match) трансплантация тонкой кишки не выполнялась. Однако это было преодолено за счет использования новых стратегий иммуносупрессивной терапии [15].
«Идеальными» донорами тонкой кишки являются доноры в возрасте до 45 лет после смерти головного мозга, без или с минимальными дозами вазопрессорной поддержки кровообращения. Важность возрастного критерия основывается на статистически меньшей частоте встречаемости полипов (или рака) кишечника у доноров молодого возраста в сравнении с пожилыми.
Перед началом эксплантации потенциальному донору проводится селективная деконтаминация кишечника через назогастральный зонд с использованием антибактериальных и противомикробных препаратов с целью предотвращения избыточного бактериального роста и последующей транслокации микроорганизмов во время холодовой ишемии.
После лапаротомии производится детальная ревизия органов брюшной полости. При выявлении какой-либо патологии кишечника от эксплантации следует отказаться (например, наличие гематомы брыжейки тонкой кишки после реперфузии может привести к катастрофическим для реципиента последствиям).
14.3. Хирургическая техника
Во время ревизии кишечника пристальное внимание уделяется его цвету, наличию отека и перистальтики. Обнаружение дивертикула Меккеля не является противопоказанием для донорства. Первым этапом эксплантации производится выделение ВБА, отходящей от брюшной аорты. Выполняя прием Каттеля–Брааша и расширенный прием Кохера, осуществляют мобилизацию восходящей ободочной кишки до печеночного изгиба и перемещение ее в левую половину брюшной полости. Далее пересекают связку Трейца и другие складки брюшины, после чего выделяют и перевязывают нижние брыжеечные сосуды (рис. 14.2) [16]. На этом этапе следует избегать повреждения правого мочеточника, анатомия которого может оказываться весьма вариабельной. После идентификации левой почечной вены и брыжейки тонкой кишки приступают к диссекции устья ВБА, пересекая окружающую его часть чревного сплетения. При этом необходимо учитывать возможность отхождения от ВБА добавочной правой печеночной артерии [17].

Следующим этапом выполняют вскрытие сальниковой сумки путем пересечения ободочно-сальниковой связки с целью мобилизации средней ободочной вены. Данный этап является обязательным условием при эксплантации тонкой кишки для дальнейшего выделения верхней брыжеечной вены (ВБВ), а при мультивисцеральной эксплантации необходим для обеспечения адекватного венозного оттока от дистальной части трансплантата, представленного поперечной ободочной кишкой. Пересечение поперечной ободочной кишки осуществляют линейным степлером GIA 75 дистальнее средней ободочной вены, таким образом сохраняя ее с трансплантатом. Толстая кишка необходима для правильной ориентации эксплантируемого тонкокишечного или мультивисцерального трансплантата.
Кроме того, при выполнении указанных манипуляций необходимо избегать повреждения ствола Генле (при его наличии) или нижней панкреатодуоденальной вены для сохранения интактного венозного оттока от поджелудочной железы, а также повреждения тощекишечных ветвей верхней брыжеечной артерии, обеспечивающих кровоснабжение проксимальной части тонкокишечного трансплантата (рис. 14.3).
Третий этап — мобилизация проксимальной части трансплантата: ДПК для тонкокишечного и пищевода для мультивисцерального трансплантатов. Пересечение ДПК выполняют линейным степлером GIA 75 в ее восходящей части. После рассечения левой треугольной связки печени и ножек диафрагмы производят пересечение дистальной части пищевода линейным степлером GIA 75. Мобилизация пищевода требует деликатности во избежание повреждения добавочной левой печеночной артерии, отходящей от ЛЖА.

После пересечения электрокоагуляцией требуемых складок брюшины достигается полная мобилизация трансплантата от дистального отдела пищевода (или ДПК в случае изолированного кишечного трансплантата) до поперечной ободочной кишки, после чего выполняются мобилизация поджелудочной железы и обнажение устья ЧС. Селезенку используют в качестве «рукоятки» для освобождения поджелудочной железы от сращений с забрюшинным пространством; выделение продолжают в вертикальной плоскости над левой фасцией Герота (рис. 14.4). В итоге производится полная мобилизация панкреатодуоденального комплекса, включая тело и хвост поджелудочной железы, с последующей идентификацией устья ЧС и освобождением его от окружающих ганглиев чревного сплетения (рис. 14.5). На этом этапе следует избегать травматизации селезенки и левой почки. Затем промывают желчный пузырь и мобилизуют брюшную аорту для проксимального и дистального пережатия (канюляция и перфузия воротной вены не проводятся).
После начала холодовой перфузии необходимо хирургическим полотенцем обернуть кишечный трансплантат, предотвращая его холодовую травму.


По окончании холодовой перфузии должно наблюдаться гомогенное побледнение кишечника. При мультивисцеральной эксплантации формируется аортальная площадка, содержащая устья ВБА и ЧС. После пересечения ВБА и ВБВ рекомендуется пометить нитью Prolene (обычно их правые стенки) для правильной ориентации тонкокишечного трансплантата. Если печень не входит в состав мультивисцерального трансплантата, выполняется ее изъятие. Выделенные ранее во время диссекции на кровотоке общий желчный проток, собственная печеночная артерия и воротная вена пересекаются следующим образом: общий желчный проток — чуть выше ДПК; собственная печеночная артерия — ближе к устью ГДА; воротная вена разделяется по договоренности хирургов между трансплантатами печени и тонкой кишки [18]. В настоящее время при обнаружении добавочных печеночных артерий (правой — отходящей от ВБА, левой — от ЛЖА) процедуру мультивисцеральной трансплантации останавливают в пользу печени, даже если проведение сосудистых реконструкций на этапе back-table представляется возможным. Обычно при сопоставимом диаметре добавочная правая печеночная артерия может быть анастомозирована с ГДА донора. С другой стороны, технически возможно пересечение ВБА дистальнее устья аберрантной печеночной артерии. Таким образом, наличие добавочной правой печеночной артерии анатомически не исключает одновременной эксплантации поджелудочной железы, печени и тонкой кишки, что должно учитываться при работе хирургической бригады по эксплантации органов брюшной полости.

В случае включения печени в мультивисцеральный трансплантат выполняют гепатэктомию, НПВ пересекают над диафрагмой и выше устьев почечных вен, стараясь их не повредить (рис. 14.6). Завершающим этапом производится эксплантация сосудистых графтов: подвздошных, а в случае мультивисцеральной трансплантации — и аортального (из грудного отдела аорты). Таким образом, время холодовой ишемии тонкокишечного или мультивисцерального трансплантата минимизируется, поскольку на этапе back-table выполняется только подготовка сосудов для формирования анастомозов (рис. 14.7).

Литература
-
Di Benedetto F., Quintini C., Lauro A. et al. Outcome of isolated small bowel and pancreas transplants retrieved from multiorgan donor: the in vivo technique // Transplant. Proc. 2004. Vol. 36. P. 437–438.
-
Carrel A. La technique des anastomese vasculaires et la transplantation des visceres // Lyon. Med. 1902. Vol. 98. P. 859.
-
Lillehei R.C., Goott B., Miller F.A. The physiological response of the small bowel of the dog to ischemia including prolonged in vitro preservation of the bowel with successful replacement and survival // Ann. Surg. 1959. Vol. 150. P. 543–560.
-
Starlz T.E., Kaupp H.A. Jr. Mass homotransplantations of abdominal organs in dogs // Surg. Forum. 1960. Vol. 11. P. 28.
-
Starlz T.E., Rowe M.I., Todo S. et al. Transplantation of multiple abdominal viscera // JAMA. 1989. Vol. 261. P. 1449.
-
Deltz E., Schroeder P., Gebhardt H. et al. First successful clinical small intestine transplantation. Tactics and surgical technic // Chirurg. 1989. Vol. 60. P. 235.
-
Goulet O., Re Villon Y., Jan D. et al. Small-bowel transplantation in children // Transplant. Proc. 1990. Vol. 22. P. 2499.
-
Starzl T.E., Todo S., Tzakis A. et al. The many faces of multivisceral transplantation // Surg. Gynecol. Obstet. 1991. Vol. 172. P. 335–344.
-
Di Benedetto F., Lauro A., Masetti M. et al. Outcomes after adult isolated small bowel transplantation: experience from a single European centre // Dig. Liver Dis. 2005. Vol. 37, N 4. P. 240–246.
-
Gondolesi G., Fauda M. Technical refinements in small bowel transplantation // Curr. Opin. Organ Transplant. 2008. Vol. 13, N 3. P. 259–265.
-
Di Benedetto F., Lauro A., Masetti M. et al. Use of prosthetic mesh in difficult abdominal wall closure after small bowel transplantation // Transplant. Proc. 2005. Vol. 37. P. 2272–2274.
-
Levi A.G., Tzakis A.G., Kato T. et al. Transplantation of the abdominal wall // Lancet. 2003. Vol. 361. P. 2173–2176.
-
Selvaggi G., Tzakis A.G. Small bowel transplantation: technical advances/updates // Curr. Opin. Organ Transplant. 2009. Vol. 14, N 3. P. 262–266.
-
Matsumoto C.S., Kaufman S.S., Girlanda R. et al. Utilization of donors who have suffered cardiopulmonary arrest and resuscitation in intestinal transplantation // Transplantation. 2008. Vol. 86. P. 941–946.
-
Grant W., Langnas A. Pediatric small bowel transplantation: techniques and outcomes // Curr. Opin. Organ Transplant. 2002. Vol. 7. P. 202–207.
-
Nickkholgh A., Contin P., Abu-Elmagd K. et al. Intestinal transplantation: review of operative techniques // Clin. Transplant. 2013. Vol. 27, suppl. 25. P. 56–65.
-
Abu-Elmagd K., Fung J., Bueno J. et al. Logistics and technique for procurement of intestinal, pancreatic, and hepatic grafts from the same donor // Ann. Surg. 2000. Vol. 232. P. 680–687.
-
Di Benedetto F., De Ruvo N., Masetti M. et al. Hepatic hilum management in 250 liver-multivisceral procurements // Transplant. Proc. 2006. Vol. 38, N 4. P. 1068.
-
Casavilla A., Selby R., Abu-Elmagd K. et al. Logistics and technique for combined hepatic-intestinal retrieval // Ann. Surg. 1992. Vol. 216, N 5. P. 605–609.
Глава 15. Эксплантация поджелудочной железы. Сильвио Надалин, Иван Капобьянко, Штефан Гулик
S. Nadalin, MD, FEBS, I. Capobianco, MD, S. Hulik, MD, FEBS Department of General, Visceral and Transplant Surgery, University Hospital Tübingen, Hoppe Seyler Str. 3, Tübingen 72076, Germany; e-mail: Silvio.nadalin@med.uni-tuebingen.de
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Качество эксплантации поджелудочной железы значимо влияет на исход трансплантации.
-
Качество трансплантата поджелудочной железы во многом зависит от критериев отбора доноров, уровня подготовки хирурга, выполняющего эксплантацию, и соблюдения прецизионной техники операции.
-
После грамотного отбора потенциального донора и его кондиционирования важными факторами удачной эксплантации поджелудочной железы являются знание вариантной анатомии, детальная ревизия органа, деликатная и прецизионная техника выделения поджелудочной железы и сосудистых структур как в «теплую», так и в «холодную» фазы эксплантации.
-
Длительное время изъятия поджелудочной железы после холодовой перфузии способствует увеличению риска согревания органа и развитию его дисфункции в посттрансплантационном периоде.
-
Каждый хирург, выполняющий изъятие поджелудочной железы, должен знать вариантную сосудистую анатомию этой области.
-
Ввиду потенциального риска растяжения и контаминации ДПК in vivo рекомендуется выполнять дистальное пересечение ДПК непосредственно перед изъятием поджелудочной железы.
-
Укорочение воротной вены способствует предотвращению как ее перегиба, так и компрессии соседними органами брюшной полости.
-
Минимизация времени холодовой ишемии (<12 ч) является одним из важнейших факторов успеха трансплантации вне зависимости от качества донорского органа или способа его консервации.
-
Селезенка используется при изъятии поджелудочной железы в качестве «рукоятки» (no-touch technique) при выделении медиально до брюшной аорты. При этом важно не допустить повреждения левой почечной вены, селезеночной артерии (СА) и селезеночной вены (СВ).
-
Технические погрешности, как и избыточная тракция подвздошных сосудистых аллопротезов для последующей реконструкции на этапе back-table, оказывают влияние на исход трансплантации поджелудочной железы.
15.1. Введение
Успех трансплантации поджелудочной железы обусловлен последовательным и правильным выполнением следующих этапов: 1) грамотным отбором донора; 2) эксплантацией поджелудочной железы; 3) логистикой и маршрутизацией процесса донорства-трансплантации; 4) подготовкой реципиента поджелудочной железы; 5) подготовкой трансплантата поджелудочной железы на этапе back-table; 6) самой операцией трансплантации поджелудочной железы.
Среди вышеперечисленных факторов качество эксплантации поджелудочной железы играет ведущую роль в исходе трансплантации. Оно, в свою очередь, во многом зависит от критериев отбора доноров, уровня подготовки хирурга, выполняющего эксплантацию, соблюдения прецизионной техники операции.
В этой главе рассматриваются вопросы эксплантации поджелудочной железы от доноров, умерших в результате смерти головного мозга, а также аспекты, влияющие на качество эксплантации, а следовательно — на исход трансплантации поджелудочной железы.
15.2. Характеристика доноров поджелудочной железы
Для определения «идеального» донора поджелудочной железы используют различные критерии, наиболее распространенные из которых: возраст, ИМТ, причина смерти донора, уровень сывороточного натрия и ферментов поджелудочной железы. Большинством авторов возраст донора 50 лет признается максимально пригодным для рассмотрения вопроса об эксплантации, однако в исследовании Stegall была продемонстрирована возможность успешной трансплантации поджелудочной железы от доноров старше 50 лет [1]. Кроме того, работы Brockmann и Biglarnia свидетельствуют о возможности трансплантации поджелудочной железы от ПД детского возраста [2, 3].
К общепризнанным критериям «идеального» донора поджелудочной железы относятся возраст донора от 10 до 40 лет, ИМТ менее 27 кг/м2, ЧМТ в качестве причины смерти [4]. Различные центры используют также следующие дополнительные параметры: отсутствие абдоминальной травмы, признаков панкреатита или отека поджелудочной железы при ультразвуковой визуализации, а также отсутствие/минимизация гемотрансфузий до операции по эксплантации [5, 6].
В последние десятилетия для большей систематизации критериев отбора ПД поджелудочной железы были предложены оценочные шкалы: предэксплантационная шкала пригодности поджелудочной железы (pre-procurement pancreas suitability score) и индекс риска донора поджелудочной железы (pancreas donor risk index) (табл. 15.1, 15.2).
Критерии донора | 1 балл | 2 балла | 3 балла |
---|---|---|---|
Возраст (лет) |
<30 |
30–40 |
≥40 |
ИМТ (кг/м2) |
<20 |
20–25 |
≥25 |
Пребывание в ОРИТ (сут) |
<3 |
3–7 |
≥7 |
Остановка кровообращения (мин) |
Нет |
Да, <5 |
Да, ≥5 |
Уровень сывороточного натрия (ммоль/л) |
<155 |
155–160 |
≥160 |
Уровень амилазы (Ед/л) |
<130 |
130–390 |
≥390 |
Уровень липазы (Ед/л) |
<160 |
160–480 |
≥480 |
(Нор-)адреналин (мкг/кг в минуту) |
Нет |
Да, <0,05 |
Да, ≥0,05 |
Добута-/дофамин (мкг/кг в минуту) |
Нет |
Да, <10 |
Да, ≥10 |
Общее количество баллов |
9 |
18 |
27 |
Критерии донора | «Стандартный донор» (индекс риска донора = 1,00) | Измененные критерии | Индекс риска донора |
---|---|---|---|
Пол |
Мужской |
Женский |
0,87 |
Возраст |
28 |
45 |
1,56 |
Негроидная раса |
Нет |
Да |
1,27 |
Азиатская раса |
Нет |
Да |
1,17 |
ИМТ (кг/м2) |
24 |
30 |
1,17 |
Рост (см) |
173 |
190 |
0,90 |
Причина смерти: ОНМК/ЧМТ |
Нет |
160–480 |
1,23 |
Причина смерти: ОНМК/ЧМТ (для трансплантации поджелудочной железы после предшествующей трансплантации почки) |
Нет |
Да, <0,05 |
0,93 |
Срок консервации трансплантата (ч) |
Нет |
Да, <10 |
1,13 |
DCD |
9 |
18 |
1,38 |
Уровень сывороточного креатинина >2,5 мг/дл (>220 ммоль/л) |
Нет |
Да |
1,22 |
По Axelrod et al. [10]
Индекс риска донора поджелудочной железы = exp(–0,13792×I [Донор женского пола] – 0,034455×I [Возраст донора — 20]
+ 0 026149× [Возраст донора — 28] + 0,19490×I [Креатинин донора >2,5]
+ 0,23951×I [Донор негроидной расы] + 0,15711×I [Донор азиатской расы] – 0,000986347× [ИМТ донора — 24]
+ 0,0033274×I [ИМТ донора >25]×[ИМТ донора — 25] – 0 006073879×[Рост донора — 173]
+ 0,21018× [Причина смерти ОНМК] – 0,28137×I [Причина смерти ОНМК для трансплантации поджелудочной железы после предшествующей трансплантации почки txp]
+ 0,014678× [Срок консервации трансплантата — 12] + 0,33172×I [DCD]
Предэксплантационная шкала пригодности поджелудочной железы (pre-procurement pancreas suitability score) была предложена Vinkers et al. в системе Eurotransplant в 2008 г. с целью идентификации и отбора «идеального» донора поджелудочной железы, который характеризуется в соответствии с данной шкалой показателем ≤17 баллов [7, 8]. После оценки первых результатов было отмечено влияние предэксплантационной шкалы пригодности поджелудочной железы (pre-procurement pancreas suitability score) на частоту отказа от эксплантации и исход раннего посттрансплантационного периода, однако корреляции с отдаленными результатами обнаружено не было [7, 9]. В связи с этим Axelrod et al. предложили индекс риска донора поджелудочной железы (pancreas donor risk index) как более надежный показатель для отбора доноров поджелудочной железы [10]. В настоящее время индекс риска донора поджелудочной железы (pancreas donor risk index) используется в работе центров трансплантации США и большинства европейских стран. «Идеальный» донор поджелудочной железы в соответствии с этой шкалой характеризуется показателем <1,57.
Однако остается достаточное количество центров, которые в своей деятельности не руководствуются ни одной из названных шкал и используют собственные критерии отбора доноров. Например, в центре трансплантации Инсбрука (Австрия) учитываются следующие критерии: возраст донора 5–55 лет (доноры высокого риска >45 лет), ИМТ <30, пребывание в ОРИТ <7 сут, отсутствие признаков острого или хронического панкреатита, отсутствие абдоминальной травмы, отсутствие внутрибрюшного инфицирования, отсутствие выраженного отека или липоматоза поджелудочной железы (по данным ультразвуковой визуализации или компьютерной томографии) [5]. Помимо центров, стремящихся к расширению критериев пригодности поджелудочной железы для трансплантации, существуют трансплантационные клиники, предпринимающие попытки еще более ограничить показатели «идеального» донора поджелудочной железы. Примером такого суперселективного подхода может служить применение предложенной Fischer-Frohlich et al. шкалы отбора доноров тонкой кишки для оценки пригодности поджелудочной железы (табл. 15.3) [11].
Критерии донора | «Идеальный» донор |
---|---|
Возраст |
0–50 лет |
Антропометрическое соответствие донора и реципиента |
Соответствие отношения массы тела донора к массе тела реципиента и отношения роста донора к росту реципиента |
ИМТ |
Менее 28 |
Пребывание в ОРИТ |
Менее 7 сут |
Энтеральное питание |
Начало в течение 25 ч после госпитализации |
СЛР |
Менее 10 мин |
Механизм травмы |
Отсутствие проникающей или тупой травмы живота |
Уровень натрия |
Последний показатель <155 ммоль/л; максимум (за последние 24 ч) <165 ммоль/л |
Гемотрансфузии |
Отсутствие абсолютных показаний при ведении потенциального донора |
Медикаментозная терапия |
Стандартная при ведении потенциального донора |
Раствор для перфузии |
HTK и UW (предпочтительно использовать HTK) |
Совместимость по группе крови и резус-фактору |
Донор и реципиент идентичны или совместимы |
По Fischer-Frohlich et al. [11]
15.3. Кондиционирование посмертного донора поджелудочной железы
Анестезиолого-реаниматологическое обеспечение при ведении потенциального донора, умершего в результате смерти головного мозга, является в настоящее время стандартизированной процедурой, направленной главным образом на восстановление и поддержание физиологического и метаболического гомеостаза пригодных для трансплантации органов и тканей (так называемое кондиционирование) [12, 13]. Периоперационные целевые значения функциональных и физиологических показателей донора после смерти головного мозга (donor after brain death, DBD), у которого планируется выполнение мультиорганной эксплантации, приведены в табл. 15.4.
Систолическое АД |
>90 мм рт.ст. |
Системное АД |
>60 мм рт.ст. |
Частота сердечных сокращений |
<100 в минуту |
Центральное венозное давление |
8–10 мм рт.ст. |
Системное сосудистое сопротивление |
>1000 дин с/см2 |
Сатурация кислородом артериальной крови |
>90% |
PaO2 |
>60 мм рт.ст. (>8 кПа) |
FiO2 |
<40% |
ПДКВ |
>7,5 см вод.ст. |
Пиковое инспираторное давление |
<30 см вод.ст. |
Дыхательный объем |
6–8 мл/кг |
pH |
7,35–7,40 |
PCO2 |
35–45 мм рт.ст. (4,67–6,0 кПа) |
Уровень сывороточного натрия |
<155 ммоль/л |
Темп диуреза |
0,5–2,5 мл/кг в час |
Уровень глюкозы крови |
4–8 ммоль/л |
Рассматривая потенциальное донорство поджелудочной железы, особое внимание следует уделить следующим моментам.
-
Контролируйте баланс жидкости и своевременно корригируйте гиповолемию. Используйте по возможности мониторинг сердечного выброса для титрования инотропных или вазопрессорных препаратов для достижения намеченных целей совместно с хирургами по эксплантации. При низком системном сосудистом сопротивлении используйте вазопрессин℘ или норэпинефрин (Норадреналин♠) в сочетании с инотропным препаратом [эпинефрин (Адреналин♠)], однако не забывайте, что высокие дозы вазопрессоров оказывают негативные эффекты на спланхническое кровообращение (снижение портального кровотока, ишемия кишечника) [2].
-
Контролируя баланс жидкости, избегайте положительного баланса и гипернатриемии. Стремитесь к коррекции электролитных нарушений до нормальных показателей (рекомендуемый уровень сывороточного натрия <155 ммоль/л).
-
Терапию несахарного диабета начинайте с восполнения дефицита свободной воды, после чего назначайте десмопрессин. Несвоевременная и неадекватная терапия несахарного диабета сопровождается тяжелой гипернатриемией, гипокальциемией, гипокалиемией, гипофосфатемией, гипомагниемией. При этом применение десмопрессина при кондиционировании доноров поджелудочной железы противоречиво, поскольку одномерный анализ большой серии трансплантаций поджелудочной железы показал значительно более высокий риск тромбоза трансплантатов поджелудочной железы, эксплантированных от доноров, получавших десмопрессин.
-
Рядом исследований продемонстрировано, что гормональная терапия трийодтиронином, инсулином и глюкокортикостероидами при ведении потенциального донора способствует его метаболической и гемодинамической стабилизации, получению большего количества пригодных для последующей трансплантации органов и улучшению их функции после трансплантации [2]. Для быстрой коррекции гипергликемии и предотвращения повреждения островковых клеток рекомендуется внутривенная инфузия инсулина (1 Ед/ч), однако гипергликемия у донора, умершего в результате смерти головного мозга (если только она не обусловлена предсуществующим сахарным диабетом), по-видимому, не влияет на функцию трансплантата в посттрансплантационном периоде.
-
При выявлении отека поджелудочной железы по результатам УЗИ или компьютерной томографии рассмотрите возможность внутривенного введения маннитола или коллоидных растворов [4].
15.4. Подготовка хирурга по эксплантации поджелудочной железы
Хирург по эксплантации играет ключевую роль в успехе последующей трансплантации поджелудочной железы, поскольку его решение об изъятии поджелудочной железы зависит как от знания им вариантной анатомии этого органа, так и от его хирургических навыков, благодаря которым удается избежать повреждения поджелудочной железы [4]. Предпочтительно, чтобы хирургом по эксплантации поджелудочной железы был специалист с достаточным опытом трансплантаций этого органа, а его подготовка подтверждена различными стажировками или стипендиями (модель США и Великобритании), аудитами и анализом качества проводимой работы. Кроме того, желательна принадлежность хирурга по эксплантации поджелудочной железы к центру трансплантации этого органа [4, 5, 14, 15].
В качестве демонстрации актуальности данного вопроса J. Loss et al. опубликовали исследование, посвященное анализу различных критериев принятия решения о пригодности трансплантата поджелудочной железы [16]. Одним из основных критериев, которым руководствовались при отказе от поджелудочной железы, было отсутствие уверенности в адекватной оценке и техническом уровне эксплантации донорского органа хирургической бригады по эксплантации.
15.5. Сосудистая анатомия поджелудочной железы
Каждый хирург, выполняющий эксплантацию поджелудочной железы, должен знать сложную сосудистую анатомию этого органа и ее варианты. В этом разделе будут освещены важные моменты сосудистой анатомии поджелудочной железы, которые необходимо учитывать при ее эксплантации [17].
15.5.1. Артериальное кровоснабжение поджелудочной железы
15.5.1.1. Нормальная анатомия
Кровоснабжение головки и крючковидного отростка поджелудочной железы осуществляется с помощью панкреатодуоденальных аркад Рио-Бранко. Они состоят из нескольких ветвей нижней панкреатодуоденальной артерии (НПДА), являющейся ветвью ВБА, и ветвей верхней панкреатодуоденальной артерии, отходящей от ГДА. ГДА, в свою очередь, обычно берет начало от общей печеночной артерии (ОПА) на уровне ее пересечения с воротной веной выше поджелудочной железы. В формировании аркад также принимает участие дорсальная панкреатическая артерия, отходящая от СА. Аркады проходят по передней и задней поверхности поджелудочной железы рядом с ДПК, причем передняя аркада лежит к ДПК несколько ближе (рис. 15.1).

Тело и хвост поджелудочной железы в основном кровоснабжаются из бассейна СА, которая дает начало трем ветвям, проходящим по дорсальной поверхности поджелудочной железы. Самая медиальная из этих ветвей (дорсальная панкреатическая артерия) является наиважнейшей, поскольку она анастомозирует с панкреатодуоденальными аркадами в области шейки поджелудочной железы.
15.5.1.2. Вариантная анатомия
Примерно в 25% наблюдений правая печеночная артерия частично или полностью отходит от ВБА — в таких случаях речь идет о добавочной или замещающей правой печеночной артерии (рис. 15.2).
В редких случаях правая печеночная артерия и левая печеночная артерия берут свое начало от ЧС или от отходящей от него короткой ОПА. При данном варианте ГДА может отходить от правой печеночной артерии.

Выявление ДППА не является противопоказанием для эксплантации поджелудочной железы. В этой ситуации не стоит выполнять выделение ДППА по задней стороне головки поджелудочной железы (высокий риск повреждения капсулы и паренхимы поджелудочной железы), а идентифицировать и мобилизовать эту артерию над верхней границей головки поджелудочной железы [18, 19].
НПДА может как отходить от ВБА отдельно, так и иметь общее устье с тощекишечной артерией, ДППА или дорсальной панкреатической артерией. Также следует помнить о возможности отхождения дорсальной панкреатической артерии от ВБА (рис. 15.3).

15.5.2. Венозный отток от поджелудочной железы
Венозный отток от тела и хвоста поджелудочной железы происходит по тонким и коротким ветвям СВ, частично проходящей через паренхиму задней поверхности поджелудочной железы. Вены головки и крючковидного отростка впадают в ВБВ и воротную вену по правой боковой стенке указанных сосудов (см. рис. 15.1). Венозные ветви от крючковидного отростка зачастую вливаются в крупную первую тощекишечную вену, которая обычно проходит позади ВБА, а затем впадает в ВБВ. Присутствующая практически во всех случаях задняя нижняя панкреатодуоденальная вена впадает в воротную вену по ее правой латеральной поверхности на уровне ДПК [17].
В корне брыжейки тонкой кишки ВБВ представляет собой один ствол, идущий справа от одноименной артерии. При вхождении в туннель ниже шейки поджелудочной железы ВБВ принимает 2 (реже 3) ветви, в том числе желудочно-ободочный ствол Генле (при его наличии), и следует по задней поверхности шейки поджелудочной железы до места слияния с СВ, образуя воротную вену. Последняя проходит в пределах pars vasculosa малого сальника к печени, располагается позади общего желчного протока и печеночной артерии и окружена лимфатическими узлами (см. рис. 15.1). На своем протяжении воротная вена принимает левую желудочную (коронарную) вену, сообщающуюся с пищеводными венозными коллатералями, и в некоторых случаях — правую желудочную вену. Верхняя панкреатодуоденальная вена часто впадает в воротную вену чуть выше поверхности поджелудочной железы, а несколько более мелких панкреатических венозных ветвей вливаются в ВБВ и воротную вену по правой стороне ниже шейки поджелудочной железы. Следует отметить, что анатомия воротной вены маловариативна [17].
15.6. Хирургическая техника
15.6.1. Ревизия поджелудочной железы
После проведения тотальной срединной стернолапаротомии ответственный хирург по эксплантации выполняет детальную ревизию органов брюшной полости. Первоочередным этапом любой эксплантации является выделение и подготовка к канюляции необходимых сосудистых структур (а именно — надчревного и инфраренального отделов брюшной аорты, подвздошных артерий) для того, чтобы иметь возможность в любой момент быть готовым к экстренной холодовой перфузии при внезапной дестабилизации гемодинамики донора. Для быстрого и почти полного выделения инфраренального отдела брюшной аорты и НПВ обычно выполняются прием Каттеля–Брааша и расширенный прием Кохера, после чего мобилизуют весь корень брыжейки тонкой кишки вплоть до ВБА и нижней поверхности поджелудочной железы.
Ревизия поджелудочной железы осуществляется путем рассечения:
-
печеночно-желудочной связки и доступа к малому сальнику, что позволяет исследовать верхнюю поверхность органа и идентифицировать СА. Необходимо помнить о возможном прохождении в малом сальнике ДЛПА от ЛЖА;
-
желудочно-ободочной связки вдоль большой кривизны желудка для осмотра передней поверхности поджелудочной железы.
Оценка качества и пригодности поджелудочной железы для последующей трансплантации производится на основании наличия/отсутствия следующих параметров:
Кроме того, критически важным фактором, влияющим на принятие решения об эксплантации поджелудочной железы, служит вариантная сосудистая анатомия, особенно в случаях:
Наконец, крайне важно сообщить о результатах детальной ревизии и возможности эксплантации поджелудочной железы не только локальному центру органного донорства, но и заинтересованному центру трансплантации — непосредственно по телефонной или мультимедийной связи [4].
15.6.2. Мобилизация поджелудочной железы in situ (сосуды, поверхности, корень брыжейки)
Существуют две техники мобилизации поджелудочной железы in situ:
Преимущества и недостатки указанных техник изложены в табл. 15.5. Однако вне зависимости от того, в какую фазу эксплантации выполнялась мобилизация поджелудочной железы, при работе с этим органом необходимо помнить и строго придерживаться бесконтактного принципа — крайне деликатного выполнения любых манипуляций с поджелудочной железой, соседними органами и сосудистыми структурами.
Параметры | Диссекция на кровотоке | Диссекция «в холодном операционном поле» |
---|---|---|
Вазоспазм |
– |
+ |
Продолжительность |
– |
+ |
Повреждения паренхимы и сосудистых структур |
– |
+ |
Контроль кровотечения |
+ |
– |
Идентификация сосудистой анатомии |
+ |
– |
Срок первичной тепловой ишемии |
+ |
– |
15.6.2.1. Выделение магистральных артерий поджелудочной железы
1. ГДА
Одним из противоречий между хирургами по эксплантации печени и поджелудочной железы служит адекватная протяженность и принадлежность культи ГДА к трансплантату печени или поджелудочной железы, поэтому выделение ГДА следует выполнять таким образом, чтобы гарантировать достаточную длину ее культи как со стороны печени, так и со стороны поджелудочной железы.
Пересечение ГДА непосредственно над устьем может компрометировать всю сосудистую ножку ЧС (рис. 15.4). С другой стороны, при недостаточной перфузии головки поджелудочной железы через НПДА (например, при вариантной анатомии или одновременном изъятии тонкой кишки) или при отсутствии коллатералей между СА и ВБА с помощью хорошо подготовленной культи ГДА на этапе back-table возможно выполнение так называемой «тройной» артериальной реконструкции для полноценной реваскуляризации панкреатодуоденального трансплантата (рис. 15.5) [20, 21].
2. ОПА
Выделение ОПА следует выполнять только вдоль ее верхней границы, избегая таким образом повреждения паренхимы поджелудочной железы. Во время мобилизации ОПА возможно обнаружение дорсальной панкреатической артерии в качестве ее ветви (см. рис. 15.3, г). В этом случае стоит рассмотреть возможность пересечения ЧС дистальнее дорсальной панкреатической артерии, но только после обратной связи с центром трансплантации печени в соответствии с потребностями этого центра.


3. СА и ЧС
Так же как и в случае ГДА, следует обеспечить достаточно протяженную мобилизацию СА для последующего безопасного пересечения этой артерии на несколько миллиметров ниже места ее отхождения от ЧС (см. рис. 15.4). С другой стороны, выделение СА вдоль тела поджелудочной железы способствует увеличению риска повреждения паренхимы поджелудочной железы. Сразу после пересечения культю СА необходимо пометить нитью Prolene 5/0–6/0, так как после эксплантации ее поиск в паренхиме поджелудочной железы весьма затруднителен.
При типичной трансплантации цельной печени артериальная реваскуляризация достигается анастомозированием печеночной артерии трансплантата с ОПА реципиента в месте отхождения от нее ГДА по типу «конец в конец». В такой ситуации, по согласованию с хирургом по эксплантации печени, желательно изъять с панкреатодуоденальным трансплантатом ЧС и ВБА на общей аортальной площадке, чтобы избежать артериальной реконструкции на этапе back-table и снизить риск развития сосудистых осложнений после трансплантации (рис. 15.6).

4. ВБА
Выделение устья ВБА по нижней поверхности поджелудочной железы производится при подготовке к канюляции инфраренального отдела брюшной аорты. Следует избегать слишком протяженной мобилизации ВБА для предупреждения повреждений паренхимы поджелудочной железы и самой ВБА. Настоятельно не рекомендуется на этом этапе искать ДППА, отходящую от ВБА, поскольку наличие или отсутствие ДППА надежнее определить с помощью «верхнебрыжеечного теста». Для его проведения необходимо пальцами или атравматичным сосудистым зажимом на короткое время пережать ВБА непосредственно над устьем. При наличии ДППА, отходящей от ВБА, можно определить исчезновение пульсации в области ПДС или визуализировать ишемическую демаркацию правой доли печени.
15.6.2.2. Мобилизация верхней брыжеечной вены и воротной вены
Предпочтительной линией пересечения воротной вены является середина расстояния между верхней поверхностью поджелудочной железы и нижней поверхностью печени. Однако большинство хирургов пересекают воротную вену in situ на уровне левой желудочной вены (выше конфлюенса СВ и ВБВ), что не гарантирует достаточную длину культи воротной вены панкреатодуоденального трансплантата. В некоторых случаях при длине воротной вены менее 1 см может потребоваться портальная реконструкция с использованием подвздошного венозного аллографта. Кроме того, на этапе back-table возможно выполнить элонгацию культи воротной вены. Для этого ее вытягивают на держалках и выделяют непосредственно до конфлюенса СВ и ВБВ, при необходимости лигируя и пересекая верхнюю панкреатодуоденальную вену с левой желудочной веной. Некоторые центры трансплантации предпочитают максимально укорачивать культю воротной вены, пересекая ее в поперечном направлении непосредственно над слиянием СВ и ВБВ. Хотя технически в данном случае наложение венозного анастомоза при трансплантации затрудняется, такая техника обладает рядом преимуществ, позволяя избегать кинкинга воротной вены трансплантата и ее компрессии соседними органами брюшной полости.
Несмотря на возможные противоречия между хирургами по эксплантации печени и поджелудочной железы по вопросам длины воротной вены для каждого из трансплантатов, коммуникация между ними и центрами трансплантации для достижения консенсуса должна осуществляться в дружественной и уважительной манере.
Нижняя брыжеечная вена (НПВ) при выполнении приема Каттеля–Брааша дважды перевязывается дистальнее нижней поверхности поджелудочной железы вблизи связки Трейца. Важно при этом постараться избежать сужения СВ.
15.6.2.3. Препарирование корня брыжейки тонкой кишки
Корень брыжейки тонкой кишки не следует разделять до тех пор, пока не будет завершена холодовая перфузия органов брюшной полости, чтобы обеспечить ретроградный флашинг воротной вены через ВБВ. Кроме того, преждевременное разделение корня брыжейки может привести к инфаркту кишечника и, как следствие, — к бактериальной транслокации и эндотоксемии.
При эксплантации поджелудочной железы линия пересечения корня брыжейки должна проходить на расстоянии не менее 2 см ниже головки и крючковидного отростка, чтобы не повредить ветви нижней панкреатодуоденальной аркады. Корень брыжейки пересекают с помощью линейного степлера GIA (рис. 15.7). Поскольку при использовании степлера не всегда сразу удается обеспечить адекватный гемостаз, целесообразно повторное прошивание брыжейки степлером на этапе back-table. Существует также альтернативная техника раздельного лигирования мезентериальных сосудов in situ по мере того, как производится поэтапное разделение корня брыжейки [4].

После полного пересечения брыжейки основную массу кишечных петель следует убрать за пределы брюшной полости для улучшения экспозиции забрюшинного пространства.
При симультанном изъятии поджелудочной железы и тонкой кишки с включением в кишечный трансплантат части толстой кишки мобилизация корня брыжейки производится непосредственно у нижней поверхности поджелудочной железы. Это требует максимального внимания к сохранности НПДА, а также средней ободочной артерии, отходящей от ВБА всего на несколько миллиметров дистальнее НПДА (рис. 15.8) [4]. Учитывая, что верхняя панкреатодуоденальная артерия является ветвью ГДА, которая перевязывается при изъятии печени, дополнительная утрата НПДА чревата деваскуляризацией головки и крючковидного отростка поджелудочной железы. Риск повреждения НПДА при изолированной эксплантации тонкой кишки минимален, так как диссекция ВБА производится лишь до отхождения первой тощекишечной артерии [4, 14].

15.6.2.4. Выделение двенадцатиперстной кишки
Эксплантация поджелудочной железы производится вместе с ДПК (в составе панкреатодуоденального комплекса), которая выступает в роли резервуара и позволяет анастомозировать ее с кишечником или мочевым пузырем реципиента для отведения панкреатического сока от трансплантата.
ДПК становится доступной для ревизии и пальпации после выполнения расширенного приема Кохера. После холодовой перфузии производится пересечение ДПК: проксимально — выше или ниже привратника, дистально — на уровне восходящей части ДПК или начального отдела тощей кишки на расстоянии до 10 см от связки Трейца (рис. 15.9). Пересечение ДПК выше привратника способствует снижению риска повреждения головки поджелудочной железы. На первый взгляд кажется анекдотичным предложение эксплантировать поджелудочную железу с максимально длинной культей ДПК. Однако это не лишено смысла, поскольку при проведении последующей предтрансплантационной подготовки на этапе back-table длину культи ДПК возможно легко адаптировать в соответствии с требованиями центра трансплантации и избранной хирургической методикой пересадки.
Из-за потенциального риска растяжения и контаминации ДПК in vivo рекомендуется выполнять дистальное пересечение ДПК непосредственно перед извлечением поджелудочной железы из тела ПД, а также производить декомпрессию ДПК перед наложением дистальной линии скоб. До недавнего времени считалось необходимым выполнять деконтаминацию верхних отделов желудочно-кишечного тракта через назогастральный зонд раствором амфотерицина В и/или раствором йода для интралюминальной (внутрипросветной) стерилизации. На сегодняшний день эта процедура уже не считается необходимой и стала менее распространенной практикой. Это объясняется всеобщим признанием внутрикишечного типа дренирования в качестве наилучшего способа отведения панкреатического сока трансплантата.

В завершение культю дистального отдела общего желчного протока, оставшегося с трансплантатом поджелудочной железы, перевязывают в ходе выделения элементов ПДС и ушивают на этапе back-table [4].
15.6.2.5. Мобилизация селезенки
Не следует выполнять мобилизацию селезенки из забрюшинного пространства в процессе диссекции на кровотоке по причине ее возможного разрыва и последующего кровотечения. Выделение селезенки и пересечение коротких желудочных сосудов производится во время «холодной» фазы операции при эксплантации поджелудочной железы.
15.6.2.6. Холодовая перфузия
Статическая холодовая консервация остается преимущественным способом консервации поджелудочной железы, используемым в подавляющем большинстве трансплантационных центров во всем мире [22]. До настоящего момента, как указывают A.D. Barlow et al., сохраняется дискуссия по поводу предпочтительного раствора для перфузии и консервации этого органа [22]. При ретроспективном анализе Becker et al. не выявили существенной разницы между растворами HTK и UW, а также отметили безопасность использования обоих растворов для перфузии и консервации панкреатодуоденального трансплантата [23]. Кроме того, обычно используемый в европейских странах раствор HTK, по-видимому, не оказывает какого-либо влияния на функцию трансплантата поджелудочной железы [24]. Напротив, в США предпочитают широко использовать раствор UW. По данным некоторых исследований, частота развития реперфузионного панкреатита и ранней дисфункции панкреатодуоденального трансплантата при использовании раствора HTK оказалась достоверно выше. Это различие оказалось особенно очевидным при использовании больших объемов раствора для холодовой перфузии in situ и более длительном времени холодовой ишемии поджелудочной железы (более 12–14 ч) [4].
Предварительные исследования использования других растворов внеклеточного типа, таких как Celsior (обладает низкой вязкостью и не содержит коллоидов) и IGL-1 (аналогичный UW, за исключением инверсии содержания натрия и калия и замены гидроксиэтилкрахмала полиэтиленгликолем), при клинической трансплантации поджелудочной железы также продемонстрировали удовлетворительные результаты, особенно при продолжительности холодовой ишемии менее 12–14 ч [25–28].
Достаточный объем используемого консервирующего раствора определяется изменением окраски органов и мануальной оценкой степени их охлаждения. При этом важно избегать как нарушения оттока перфузата от органов, так и избыточной перфузии кишечника и поджелудочной железы. Накопленный клинический опыт демонстрирует отсутствие необходимости и, более того, — негативный эффект использования большого объема консервирующего раствора, и в первую очередь — в отношении поджелудочной железы. Наиболее практичным в настоящее время является ограничение объема холодовой перфузии до достижения прозрачности оттекающего перфузата. Кроме того, при эксплантации поджелудочной железы не рекомендуются перфузия in situ через воротную вену или один из ее притоков, а также флашинг поджелудочной железы ex vivo на этапе back-table, который также не является необходимым и может оказывать негативное воздействие на микроциркуляторное русло трансплантата [14].
Однако одним из наиболее важных условий успеха трансплантации поджелудочной железы, независимо от соответствия донора строгим критериям отбора или способа консервации, по-прежнему является максимальное сокращение длительности холодовой ишемии трансплантата (<12 ч) [29].
15.6.2.7. Эксплантация поджелудочной железы
Эксплантация мобилизованной поджелудочной железы осуществляется, как правило, после извлечения трансплантатов печени и тонкой кишки с использованием уже описанной бесконтактной техники.
После пересечения сосудистых структур, а также проксимального и дистального участков ДПК выполняется ротация желудка в краниальном направлении для дальнейшего улучшения экспозиции поджелудочной железы. Мобилизация селезенки производится путем пересечения коротких желудочных сосудов, а также диафрагмально-селезеночной и селезеночно-ободочной связок, что позволяет отделить хвост поджелудочной железы от сращений с забрюшинным пространством. Используя селезенку в качестве «рукоятки», отделяют тело и хвост поджелудочной железы от тканей забрюшинного пространства в медиальном направлении до брюшной аорты. При этом необходимо избегать случайного повреждения левой почечной вены, СА и СВ (рис. 15.10). Учитывая извитой ход СА и ее частое расположение вне структуры железы (вдоль верхней поверхности органа), следует избегать ее хирургических и тракционных повреждений.

После полной мобилизации поджелудочной железы от сращений с забрюшинным пространством производится извлечение трансплантата, который помещают в емкость с холодным натрия хлорида раствором сложным [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствором Рингера♠) или изотоническим раствором натрия хлорида. Селезенка консервируется в составе панкреатодуоденального трансплантата. Материал для HLA-типирования (типирование генов гистосовместимости) и проведения перекрестной лимфоцитотоксической пробы (cross-match) может быть взят с верхнего или нижнего полюса селезенки. Затем проводится детальная ревизия трансплантата для идентификации анатомических особенностей, исключения повреждений и подтверждения пригодности органа для последующей трансплантации. Поджелудочная железа вместе с сосудистыми аллографтами упаковывается в соответствии с принятыми национальными рекомендациями в три отдельных пакета, после чего орган может быть транспортирован в центр трансплантации поджелудочной железы [24].
15.6.2.8. Эксплантация подвздошных сосудистых аллопротезов (Y-графтов)
В настоящее время наиболее распространенным способом артериальной реконструкции панкреатодуоденального трансплантата является использование бифуркационного аллопротеза (Y-графта). Чаще всего в качестве Y-графта используют бифуркацию общей подвздошной артерии на внутреннюю и наружную. Y-графт необходим для формирования единого артериального устья трансплантата путем анастомозирования с СА и ВБА (рис. 15.11) [4].
Альтернативными бифуркационными аллографтами могут служить брахиоцефальный ствол, бифуркация брюшной аорты, каротидный Y-графт [30–32]. При эксплантации сосудистых аллографтов следует обращать внимание на степень их атеросклеротического поражения или хирургические повреждения. Технические погрешности изъятия и тракционная травма сосудистых аллопротезов могут оказать непосредственное негативное влияние на исход трансплантации поджелудочной железы.

15.7. Другие техники эксплантации поджелудочной железы
15.7.1. Эксплантация печени и поджелудочной железы en bloc
Традиционно эксплантация донорских органов производится в определенном порядке: сердце, легкие, тонкая кишка, печень, поджелудочная железа и почки. По имеющимся данным, охлаждение органов брюшной полости происходит не так быстро, как считалось ранее, вне зависимости от качества холодовой перфузии и наружного охлаждения органов. Кроме того, длительное время эксплантации органов после холодовой перфузии увеличивает риск повторного согревания органов (особенно поджелудочной железы) и нарушения функции трансплантатов в раннем и отдаленном послеоперационном периоде. Для предупреждения этих осложнений была предложена методика en bloc эксплантации печени и поджелудочной железы, которая уменьшает продолжительность диссекции и эксплантации, частоту ассоциированных с эксплантацией повреждений и может коррелировать с лучшей начальной функцией трансплантатов [4].
После первой публикации Nakazato et al. в 1992 г. было опубликовано достаточное количество работ по изъятию печени и поджелудочной железы единым блоком [14, 26, 33], а наиболее подробно данная техника описана Wunderlich et al. [24].
-
Пересечение левого листка диафрагмы до пищевода, а правого листка — до правого надпочечника. Избегайте тракционных повреждений печеночной паренхимы.
-
Лигирование и пересечение правой желудочно-сальниковой артерии и правой желудочной артерии.
-
Проксимальное пересечение ДПК на уровне привратника линейным степлером GIA.
-
Лигирование нижней брыжеечной вены по нижней поверхности поджелудочной железы.
-
Мобилизация ВБА и ВБВ позади горизонтальной части ДПК и нижней поверхности головки поджелудочной железы. Корень брыжейки тонкой кишки пересекается с помощью линейного степлера GIA, при этом плоскость пересечения не должна проходить слишком близко к крючковидному отростку, чтобы избежать повреждения НПДА.
-
Пересечение проксимального отдела тощей кишки на уровне связки Трейца.
-
Пересечение селезеночно-ободочной связки и последующая мобилизация хвоста поджелудочной железы с использованием селезенки в качестве «рукоятки».
-
Отделение задней поверхности поджелудочной железы от сращений с забрюшинным пространством.
-
Диссекция устья ВБА под визуальным контролем устьев правой и левой почечных артерий.
-
Мобилизация инфраренального отдела НПВ до впадения правой и левой почечных вен, над которыми НПВ пересекается в поперечном направлении.
-
Рассечение паравертебральных мышц с последующим пересечением правого и левого надпочечника.
-
Освобождение стенки брюшной аорты от окружающих фиброзно-мышечных тканей и формирование над почечными артериями аортальной площадки, содержащей устья ВБА и ЧС.
-
Деликатное разделение печени и поджелудочной железы на этапе back-table с учетом уже упомянутых выше технических и анатомических особенностей для последующей стандартной изолированной трансплантации этих органов.
15.7.2. Эксплантация поджелудочной железы от доноров после необратимой остановки кровообращения
Хирургическая методика изъятия поджелудочной железы от DCD-доноров представляет собой комбинацию стандартной техники и техники быстрой эксплантации у гемодинамически нестабильных DBD-доноров. При этом увеличивается частота повреждения аберрантных сосудистых структур, диссекция которых проводится в «холодном операционном поле» в отсутствие кровотока и пульсации, очевидно облегчающих идентификацию артерий и вен. Именно поэтому от DCD-доноров эксплантация печени и поджелудочной железы производится en bloc с последующим разделением органов на этапе back-table.
В последние годы отмечается увеличение количества трансплантаций органов от DCD-доноров. При использовании органов от DCD-доноров молодого возраста с ИМТ менее 25, а также при коротких сроках тепловой и холодовой ишемии трансплантация поджелудочной железы, особенно в сочетании с пересадкой почки, демонстрирует прекрасные непосредственные результаты. Однако, несмотря на очевидную эффективность технологии, трансплантация поджелудочной железы от данной категории доноров до настоящего времени не получила широкого распространения [4, 34, 35].
Улучшению ситуации, вероятно, должно способствовать усовершенствование методов консервации трансплантатов, подвергающихся тяжелому ишемическому повреждению. К числу таких методов консервации, потенциально эффективных для трансплантации поджелудочной железы от DCD-доноров, относятся метод двухслойного хранения (two-layer method), персуффляция, гипотермическая и нормотермическая аппаратная перфузия ex vivo [22].
15.8. Заключение
Техника и качество эксплантации поджелудочной железы существенно влияют на исход ее трансплантации.
Помимо щепетильного отбора и комплексного кондиционирования ПД, другими обязательными условиями получения пригодного для пересадки, функционально полноценного панкреатодуоденального трансплантата являются знание вариантной анатомии, тщательная ревизия органов брюшной полости, деликатная и прецизионная техника выделения поджелудочной железы и ее сосудистых структур, как в «теплую», так и в «холодную» фазы эксплантации.
Каждый хирург, выполняющий эксплантацию поджелудочной железы, должен знать сложную сосудистую анатомию этого органа и ее наиболее часто встречающиеся вариации.
Литература
-
Stegall M.D., Dean P.G., Sung R. et al. The rationale for the new deceased donor pancreas allocation schema // Transplantation. 2007. Vol. 83, N 9. P. 1156–1161.
-
Brockmann J.G., Vaidya A., Reddy S. et al. Retrieval of abdominal organs for transplantation // Br. J. Surg. 2006. Vol. 93, N 2. P. 133–146.
-
Biglarnia A.R., Bennet W., Nilsson T. et al. Utilization of small pediatric donors including infants for pancreas and kidney transplantation: exemplification of the surgical technique and the surveillance // Ann. Surg. 2014. Vol. 260, N 2. P. e5–e7.
-
Fridell J.A., Powelson J.A., Kubal C.A. et al. Retrieval of the pancreas allograft for whole-organ transplantation // Clin. Transplant. 2014. Vol. 28, N 12. P. 1313–1330.
-
Ollinger R., Margreiter C., Bosmuller C. et al. Evolution of pancreas transplantation: long-term results and perspectives from a high-volume center // Ann. Surg. 2012. Vol. 256, N 5. P. 780–786; discussion 6–7.
-
Fellmer P.T., Pascher A., Kahl A. et al. Influence of donor- and recipient-specific factors on the postoperative course after combined pancreas-kidney transplantation // Langenbecks Arch. Surg. 2010. Vol. 395, N 1. P. 19–25.
-
Vinkers M.T., Rahmel A.O., Slot M.C. et al. Influence of a donor quality score on pancreas transplant survival in the Eurotransplant area // Transplant. Proc. 2008. Vol. 40, N 10. P. 3606–3608.
-
Vinkers M.T., Rahmel A.O., Slot M.C. et al. How to recognize a suitable pancreas donor: a Eurotransplant study of preprocurement factors // Transplant. Proc. 2008. Vol. 40, N 5. P. 1275–1278.
-
Schenker P., Vonend O., Ertas N. et al. Preprocurement pancreas allocation suitability score does not correlate with long-term pancreas graft survival // Transplant. Proc. 2010. Vol. 42, N 1. P. 178–180.
-
Axelrod D.A., Sung R.S., Meyer K.H. et al. Systematic evaluation of pancreas allograft quality, outcomes and geographic variation in utilization // Am. J. Transplant. 2010. Vol. 10, N 4. P. 837–845.
-
Fischer-Frohlich C.L., Konigsrainer A., Schaffer R. et al. Organ donation: when should we consider intestinal donation // Transpl. Int. 2012. Vol. 25, N 12. P. 1229–1240.
-
Handbook of renal and pancreatic transplantation / Eds I. MacPhee, J. Fronek. Hoboken : Wiley-Blackwell, 2012.
-
McKeown D.W., Bonser R.S., Kellum J.A. Management of the heartbeating brain-dead organ donor // Br. J. Anaesth. 2012. Vol. 108, suppl. 1. P. i96–i107.
-
Abu-Elmagd K., Fung J., Bueno J. et al. Logistics and technique for procurement of intestinal, pancreatic, and hepatic grafts from the same donor // Ann. Surg. 2000. Vol. 232, N 5. P. 680–687.
-
Sollinger H.W., Odorico J.S., Becker Y.T. et al. One thousand simultaneous pancreas-kidney transplants at a single center with 22-year follow-up // Ann. Surg. 2009. Vol. 250, N 4. P. 618–630.
-
Loss J., Drewitz K.P., Schlitt H.J. et al. Accept or refuse? Factors influencing the decision-making of transplant surgeons who are offered a pancreas: results of a qualitative study // BMC Surg. 2013. Vol. 13. P. 47.
-
Blumgart’s surgery of the liver, pancreas and biliary tract / Eds W.R. Jarnagin, J. Belghiti, M.W. Büchler et al. 5th edn. Philadelphia : Elsevier Saunders, 2012.
-
Huang Y., Li J., Qi H. Management of the accessory or replaced right hepatic artery (A/R RHA) during multiorgan retrieval when the inferior pancreaticoduodenal artery shares a common origin with A/R RHA // Transplant. Proc. 2013. Vol. 45, N 1. P. 20–24.
-
Molmenti E.P., Klein A.S., Henry M.L. Procurement of liver and pancreas allografts in donors with replaced/accessory right hepatic arteries // Transplantation. 2004. Vol. 78, N 5. P. 770–771.
-
Nghiem D.D. Revascularization of the gastroepiploic artery in pancreas transplant // Transpl. Int. 2008. Vol. 21, N 8. P. 774–777.
-
Socci C., Orsenigo E., Zuber V. et al. Triple arterial reconstruction improves vascularization of whole pancreas for transplantation // Transplant. Proc. 2006. Vol. 38, N 4. P. 1158–1159.
-
Barlow A.D., Hosgood S.A., Nicholson M.L. Current state of pancreas preservation and implications for DCD pancreas transplantation // Transplantation. 2013. Vol. 95, N 12. P. 1419–1424.
-
Becker T., Ringe B., Nyibata M. et al. Pancreas transplantation with histidine-tryptophan-ketoglutarate (HTK) solution and University of Wisconsin (UW) solution: is there a difference? // JOP. 2007. Vol. 8, N 3. P. 304–311.
-
Wunderlich H., Brockmann J.G., Voigt R. et al. DTG procurement guidelines in heart beating donors // Transpl. Int. 2011. Vol. 24, N 7. P. 733–757.
-
Baertschiger R.M., Berney T., Morel P. Organ preservation in pancreas and islet transplantation // Curr. Opin. Organ Transplant. 2008. Vol. 13, N 1. P. 59–66.
-
Boggi U., Vistoli F., Del Chiaro M. et al. Pancreas preservation with University of Wisconsin and Celsior solutions: a single-center, prospective, randomized pilot study // Transplantation. 2004. Vol. 77, N 8. P. 1186–1190.
-
Codas R., Petruzzo P., Morelon E. et al. IGL-1 solution in kidney transplantation: first multi-center study // Clin. Transplant. 2009. Vol. 23, N 3. P. 337–342.
-
Manrique A., Jimenez C., Herrero M.L. et al. Pancreas preservation with the University of Wisconsin versus Celsior solutions // Transplant. Proc. 2006. Vol. 38, N 8. P. 2582–2584.
-
Maglione M., Ploeg R.J., Friend P.J. Donor risk factors, retrieval technique, preservation and ischemia/reperfusion injury in pancreas transplantation // Curr. Opin. Organ Transplant. 2013. Vol. 18, N 1. P. 83–88.
-
Bandlien K.O., Mittal V.K., Toledo-Pereyra L.H. Procurement and workbench procedures in preparation of pancreatic allografts. Factors essential for a successful pancreas transplant // Am. Surg. 1988. Vol. 54, N 9. P. 578–581.
-
Ciancio G., Olson L., Burke G.W. The use of the brachiocephalic trunk for arterial reconstruction of the whole pancreas allograft for transplantation // J. Am. Coll. Surg. 1995. Vol. 181, N 1. P. 79–80.
-
de Miranda M.P., Genzini T., Gil A.O. et al. Use of a donor aortic cross for arterial reconstruction of the pancreaticoduodenal allograft // Clin. Transplant. 1998. Vol. 12, N 3. P. 165–167.
-
Nakazato P.Z., Concepcion W., Bry W. et al. Total abdominal evisceration: an en bloc technique for abdominal organ harvesting // Surgery. 1992. Vol. 111, N 1. P. 37–47.
-
Kandaswamy R., Skeans M.A., Gustafson S.K. et al. OPTN/SRTR 2013 annual data report: pancreas // Am. J. Transplant. 2015. Vol. 15, suppl. 2. P. 1–20.
-
Muthusamy A.S., Mumford L., Hudson A. et al. Pancreas transplantation from donors after circulatory death from the United Kingdom // Am. J. Transplant. 2013. Vol. 13, N 3. P. 824.
Глава 16. Изъятие почек для трансплантации. Паоло Асени, Фабио Ферла, Паола Траканелли, Чинция Поли, Алессандро Джакомони
P. Aseni, F. Ferla, C. Poli, A. Giacomoni General and Transplant Surgery Division, Niguarda Hospital, Piazza dell’Ospedale Maggiore, 3, Milan 20162, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com
P. Tracanelli Vascular Surgery Division, CardioToracoVascular Department, Niguarda Hospital, Piazza dell’Ospedale Maggiore, 3, Milan 20162, Italy
Советы, приемы и возможные ошибки
Эксплантация почек/почки может быть выполнена:
Цель этой главы — описание различных хирургических методик, применяемых во всех вышеперечисленных случаях. Лапароскопической и робот-ассистированной нефрэктомии у живого донора посвящена глава 22.
16.1. Изъятие почек как этап мультиорганной эксплантации
Эксплантация почек у DBD-доноров выполняется после эксплантации печени и поджелудочной железы [1–3]. Пересечение анатомических структур производится в бескровном «холодном поле». В первую очередь после мобилизации сигмовидной кишки следует идентифицировать места перекреста мочеточников с подвздошными сосудами. Пересекать мочеточники желательно как можно ближе к мочевому пузырю. Выделение мочеточников производят до нижнего полюса почек. Деликатную тракцию проводят за гемостатический зажим типа «москит», наложенный на периуретральную жировую клетчатку культи мочеточника. При мобилизации необходимо сохранять достаточное количество окружающей жировой ткани, чтобы избежать деваскуляризации мочеточника. После пересечения выделенные мочеточники следует располагать вне операционного поля, чтобы предотвратить их случайное повреждение при выполнении следующих этапов операции.
Возможно выполнение эксплантации почек раздельно или единым блоком. При раздельном изъятии НПВ пересекают чуть выше подвздошной бифуркации, а левую почечную вену отсекают у устья и отводят в левую сторону перед продольным рассечением аорты. НПВ отходит к правому почечному трансплантату и может быть использована для удлиняющей венопластики короткой правой почечной вены на этапе back-table (рис. 16.1). Затем аорта пересекается чуть выше подвздошной бифуркации и рассекается в продольном направлении с формированием аортальных площадок для устья каждой почечной артерии. Идентификация устьев почечных артерий, как основных, так и добавочных, является обязательной. Следует соблюдать особую осторожность на данном этапе, чтобы не допустить повреждения добавочных артерий (в особенности — нижнеполюсных), отходящих от аорты или подвздошных сосудов. После рассечения паранефральной клетчатки над фасцией Герота в краниальном и каудальном направлениях выделяют и извлекают правую почку. Левой рукой приподнимая площадки НПВ и аорты, хирург отделяет их от подлежащих тканей, покрывающих тела позвонков. Плоскость рассечения продолжается вправо по передней поверхности позвоночного столба до полного освобождения правой почечной сосудистой ножки. Затем хирург производит мобилизацию левой почки и ее паранефральной клетчатки слева направо, приподнимая почку и площадки НПВ и аорты, после чего рассечение тканей продолжается в области паравертебральных мышц.

Для эксплантации левой почки необходима мобилизация левых отделов толстой кишки. После пересечения линии Тольдта нисходящая ободочная и сигмовидная кишка оттягивается медиально до полного обнажения паранефральной клетчатки левой почки. Левый мочеточник идентифицируют латерально от сигмовидной кишки в месте его пересечения с подвздошными сосудами. После деликатного выделения мочеточника с сохранением периуретральной клетчатки его пересекают ближе к мочевому пузырю. После пересечения левый мочеточник с левой гонадной веной отводятся медиально через окно в брыжейке ободочной кишки. Производят пересечение диафрагмально-селезеночной связки и выполняют эксплантацию левой почки аналогично описанной выше технике для правой почки.
16.2. Эксплантация почек en bloc
При этой методике эксплантации почек брюшная аорта и НПВ пересекаются чуть выше подвздошных бифуркаций в поперечном направлении. Левая почечная вена не отсекается от НПВ, а аорта не рассекается продольно (рис. 16.2). Отделение от тканей, покрывающих тела позвонков, производится за счет приподнимания аорты и НПВ до того момента, пока не будут идентифицированы сосудистые ножки обеих почек, после чего выполняют мобилизацию почек в латеральном направлении, как описано выше, и завершают эксплантацию [4].

Данная техника используется и при эксплантации почек от маргинальных доноров с перспективой последующей двойной трансплантации почки. В таком случае обязательно проведение двусторонней нулевой биопсии. Результаты срочного морфологического исследования помогут ответить на вопрос, возможна ли пересадка данных органов разным пациентам или же оба почечных трансплантата следует использовать для одного реципиента. С одной стороны, эксплантация почек en bloc позволяет сократить время операции и обработки на этапе back-table, снижая продолжительность холодовой ишемии при двойной трансплантации почек. С другой — эта методика потребует большего времени для последующего разделения почек на этапе back-table. После эксплантации почки помещают в холодный натрия хлорида раствор сложный [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствор Рингера♠) или, что более предпочтительно, охлажденный консервирующий раствор, проводят тщательный осмотр органов и выполняют биопсию трансплантатов (в области верхнего полюса) при необходимости.
16.3. Изолированная эксплантация почек
У некоторых ПД почки могут оказаться единственными органами, пригодными для последующей трансплантации. В таком случае производится тотальная срединная лапаротомия (от мечевидного отростка грудины до лобкового симфиза) для обеспечения наилучшей экспозиции и детальной ревизии органов брюшной полости. Мобилизация восходящей ободочной кишки, тонкой кишки и ДПК производится, как было описано в главе 11.
Нижнюю брыжеечную артерию лигируют и пересекают, аорту и НПВ мобилизуют и берут на держалки чуть выше подвздошных бифуркаций. Тонкую кишку отводят кверху для идентификации ВБА, которую берут на держалку немного выше левой почечной вены. Брюшную аорту мобилизуют и берут на держалку в надчревном отделе. ПДС обходят турникетом для последующего пережатия — выполнения приема Прингла. При необходимости экономии консервирующего раствора ЧС и ВБА в дальнейшем также могут быть пережаты.
После системной гепаринизации донора (300 МЕ/кг массы тела) выполняют канюляцию брюшной аорты в инфраренальном отделе. На уровне подвздошной бифуркации перевязывают НПВ и надсекают ее над диафрагмой чуть ниже правого предсердия, после чего начинают холодовую перфузию. Пережимают или перевязывают аорту на уровне подвздошной бифуркации. Для селективной перфузии почек перевязывают ВБА и пережимают ПДС. Для наружного охлаждения почек и окружающих органов в брюшной полости используют холодный изотонический раствор натрия хлорида, стерильный лед или ледяную крошку. После окончания холодовой перфузии НПВ и аорту пересекают проксимальнее бифуркации. Эксплантация почек производится по методике, описанной выше, как этап мультиорганной эксплантации.
16.4. Изъятие почек у доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности (доноров после необратимой остановки кровообращения)
Доноров, умерших в результате необратимой остановки сердечной деятельности, обычно идентифицируют в соответствии с Маастрихтской классификацией (см. табл. 16.1), а эксплантацию почек проводят от доноров категории II и выше [5–8]. После остановки кровообращения начинают СЛР и ИВЛ, что позволяет возобновить поступление насыщенной кислородом крови к органам, тем самым снижая степень их ишемического повреждения. В этой связи необходима точная регистрация времени начала первичной тепловой ишемии (времени от момента остановки сердечной деятельности до начала реанимационных мероприятий, а также от момента их окончания до начала холодовой перфузии) и как можно более ранняя гепаринизация потенциального донора (300 МЕ/кг массы тела). Некоторые авторы рекомендуют использовать фентоламин (0,125 мкг/кг массы тела) для обеспечения дилатации почечных артерий и более быстрого охлаждения почек. Затем производится мобилизация и канюляция бедренных сосудов для начала холодовой перфузии in situ. Еще одной возможной опцией является использование модифицированного аппарата искусственного кровообращения.
Неконтролируемые |
I |
Включает жертв несчастных случаев и самоубийц (некоторые центры исключают самоубийц из своих программ), которые были найдены мертвыми на месте происшествия и для которых реанимация считается бессмысленной (например, перелом шейного отдела позвоночника, приведший к летальному исходу). В этой группе потенциальных доноров наблюдаются самые неудовлетворительные результаты из-за неизвестного времени первичной тепловой ишемии |
II |
Доноры, у которых СЛР оказалась неудачной, а реанимационные мероприятия были начаты либо в процессе транспортировки, либо вскоре после прибытия в стационар. Причинами смерти доноров в этой категории могут быть изолированная ЧМТ, аноксия, ОНМК или тяжелая сочетанная травма |
|
Контролируемые |
III |
Ожидаемая остановка сердца после прекращения жизнеподдерживающей терапииВ РФ законодательно запрещена |
IV |
Необратимая остановка сердца во время или после диагностики СГМ |
|
Неконтролируемые |
V |
Внезапная остановка сердца у пациентов, находящихся в ОРИТ, — госпитальная необратимая остановка сердца |
Для осуществления холодовой перфузии in situ через бедренную артерию в аорту вводят двухбаллонный трехпросветный катетер, после чего раздувают два баллона для изоляции брюшного отдела аорты и начинают ее перфузию. Отток крови и перфузата осуществляется через канюлю в бедренной вене. Как сообщает Anaise, быстрому охлаждению абдоминальных органов (до 15 °С за 5 мин) способствует проведение холодовой перфузии под давлением не менее 70 мм рт.ст. Меньшее магистральное давление недостаточно для адекватной перфузии почек и достижения гипотермии. Это объясняется высвобождением ренин-ангиотензина и увеличением сопротивления почечных сосудов при перфузии под низким давлением [9].
С помощью аппарата искусственного кровообращения холодовая перфузия абдоминальных органов также проводится через бедренные сосуды [10]. Канюляция контрлатеральной бедренной артерии позволяет разместить в аорте катетер Фогарти, раздувание баллона которого производится над почечными артериями, выключая из перфузии ЧС и надчревный отдел аорты. Основное отличие холодовой перфузии с помощью аппарата искусственного кровообращения заключается в необходимости поддержания требуемого объема циркулирующей крови донора, а также в возможности отсроченного начала эксплантации (например, при необходимости согласия родственников умершего на посмертное донорство).
При обоих видах холодовой перфузии целесообразно проведение наружного охлаждения абдоминальной области тела ПД и находящихся в ней органов. Например, с помощью непрерывной внутрибрюшинной циркуляции ледяного изотонического раствора натрия хлорида для охлаждения поверхности органов брюшной полости.
Техника эксплантации почек у DCD-доноров аналогична методике операции у доноров с СГМ.
16.5. Изъятие почечного трансплантата у прижизненного донора открытым способом
В редких случаях невозможно выполнение лапароскопического изъятия почки, ставшей уже стандартной методикой эксплантации у прижизненных доноров. В этих ситуациях эксплантационная нефрэктомия производится люмботомическим, мини-люмботомическим или трансперитонеальным (чрезбрюшинным) доступом [11, 12].
Нефрэктомия люмботомическим или мини-люмботомическим доступом. Положение донора на боку под углом 45° (люмботомическое положение). Операционному столу придают положение Тренделенбурга, при этом наклоняют его настолько, чтобы поверхность боковой стенки живота стала горизонтальной. Производится разрез длиной 15–20 см от нижнего края XII ребра до латерального края прямой мышцы живота. Для доступа в забрюшинное пространство рассекают наружную и внутреннюю косые, поперечную мышцы живота. После мобилизации почки идентифицируют мочеточник и пересекают его дистально. Почечные сосуды следует выделять как можно ближе к месту их отхождения от аорты и НПВ. При левосторонней нефрэктомии необходимо выделить, лигировать и пересечь надпочечниковую и гонадную вены, впадающие в левую почечную вену. После введения гепарина натрия (Гепарина♠) следует обратить внимание на мочеотделение из пересеченного мочеточника (с этой целью возможна стимуляция диуреза). После лигирования и пересечения почечных сосудов (сначала артерии, затем вены) производится нефрэктомия и незамедлительный флашинг почечного трансплантата холодным раствором для перфузии вручную через почечную артерию, как первый этап обработки back-table.
Нефрэктомия чрезбрюшинным доступом. Положение донора лежа на спине. Производится J-образный парамедианный трансректальный разрез длиной 20 см на расстоянии до 3 см от правого/левого подреберья и до 3 см от лобкового симфиза. При правосторонней нефрэктомии выполняется мобилизация восходящей ободочной кишки медиально (прием Каттеля–Брааша) и после расширенного приема Кохера идентифицируется НПВ. После взятия на держалку правой почечной вены визуализируется правая почечная артерия. Мочеточник идентифицируется в месте его пересечения с правыми подвздошными сосудами и пересекается дистально в предпузырной клетчатке. После мобилизации правая почка удаляется по описанной выше методике.
При левосторонней нефрэктомии производится мобилизация нисходящей ободочной и сигмовидной кишки медиально, пересечение селезеночно-ободочной связки и визуализация паранефральной клетчатки. С латеральной стороны выделяется левая почка. Идентификация и пересечение мочеточника слева аналогичны описанным для правого мочеточника. При выделении левой почечной вены обязательно лигирование и пересечение надпочечниковой и гонадной вен, после чего левая почечная артерия берется на держалку у отхождения от аорты. Не следует забывать оценить темп мочеотделения из пересеченного мочеточника до пережатия почечных сосудов. После системной гепаринизации (5000 МЕ) производится нефрэктомия и последующий флашинг почки холодным раствором для перфузии. Перед ушиванием раны следует установить дренаж.
Литература
-
Starzl T., Hakala T., Shaw B. et al. A flexible procedure for multiple cadaveric organ procurement // Surg. Gynecol. Obstet. 1984. Vol. 158. P. 223–230.
-
Starzl T., Miller C., Broznick B., Makowka L. An improved technique for multiple organ harvesting // Surg. Gynecol. Obstet. 1987. Vol. 165. P. 343–348.
-
Starzl T., Todo S., Tzakis A. et al. The many faces of multivisceral transplantation // Surg. Gynecol. Obstet. 1991. Vol. 172. P. 335–344.
-
Nakazato P., Concepcion W., Bry W. et al. Total abdominal evisceration: an en bloc technique for abdominal organ harvesting // Surgery. 1992. Vol. 111. P. 37–47.
-
Szostek M., Danielewicz R., Lagiewska B. et al. Successful transplantation of kidneys harvested from cadaver donors at 71 to 259 minutes following cardiac arrest // Transplant. Proc. 1995. Vol. 27. P. 2901–2902.
-
Anaya F. Innovaciones tecnológicas en la donación en asistolia // Nefrologia. 1996. Vol. 16. P. 96–106.
-
Booster M., Wijnen R., Ming Y., Vroemen J., Kootstra G. In situ perfusion of kidneys from non-heart beating donors: the Maastricht protocol // Transplant. Proc. 1993. Vol. 25. P. 1503–1504.
-
Bell M.D.D. Non-heart beating organ donation: old procurement strategy: new ethical problems // J. Med. Ethics. 2003. Vol. 29. P. 176–181.
-
Anaise D., Yland M.J., Waltzer W.C. et al. Flush pressure requirements for optimal cadaveric donor kidney preservation // Transplant. Proc. 1988. Vol. 5. P. 891–894.
-
Ko W.J., Chen Y.S., Tsai P.R., Lee P.H. Extracorporeal membrane oxygenation support of donor abdominal organs in non-heart-beating donors // Clin. Transplant. 2000. Vol. 14. P. 152–156.
-
Nicholson M., Kaushik M., Lewis G. et al. Health-related quality of life after living donor nephrectomy: a randomized controlled trial of laparoscopic versus open nephrectomy // Transplantation. 2011. Vol. 91. P. 457–461.
-
Nanidis T., Antcliffe D., Kokkinos C. et al. Laparoscopic versus open live donor nephrectomy in renal transplantation: a meta-analysis // Ann. Surg. 2008. Vol. 247. P. 58–70.
Глава 17. Изъятие сосудистых аллографтов. Паола Траканелли, Федерико Романи
P. Tracanelli Vascular Surgeon, Vascular Surgery Division, CardioToracoVascular Department, Niguarda Hospital, Milan, Italy; e-mail: ptracanelli@gmail.com
F. Romani Vascular and General Surgeon, Vascular Surgery Division, CardioToracoVascular Department, Niguarda Hospital, Milan, Italy; e-mail: ptracanelli@gmail.com
Советы, приемы и возможные ошибки
-
При канюляции аорты для холодовой перфузии производите артериотомию ближе к почечным артериям и пережимайте дистальный отдел аорты атравматично.
-
При изъятии органов иссекайте аортальные площадки минимально необходимого размера, оставляя бóльшую часть аорты интактной.
-
Перед эксплантацией сосудистых аллографтов оцените их морфологическое состояние и воздержитесь от использования непригодных сосудов.
-
Выделяйте донорские сосуды деликатно, избегая тракционных повреждений, надрывов, растяжений и расслоения интимной оболочки.
-
Выделяйте сосудистые аллопротезы максимальной длины, сохраняя тем самым большее количество вариантов их использования.
Гомографт — это тканевой трансплантат, полученный от донора одного вида с реципиентом (в данном случае человеческий трансплантат).
В сосудистой хирургии гомографтами (или аллографтами) называют трансплантируемые сегменты сосудов от ПД.
Сосудистые аллографты используются в экспериментальной и клинической медицине более века. В 1903 г. Hopner произвел первую попытку замены сонной артерии одной собаки бедренной артерией другой, а в 1912 г. Carrell выполнил экспериментальную замену участка аорты артериальным аллографтом. В 1948 г. Gross предложил использовать для лечения коарктации аорты человеческий аортальный аллографт, а в 1952 г. Dubost выполнил замену инфраренального участка аорты с помощью свежезаготовленного аортального аллографта.
Внедрение в 1960-х гг. синтетических протезов и их успешное применение в клинической практике привело к постепенному отказу от гомографтов. Использование искусственных сосудов стало стандартной и популярной методикой, во многом благодаря их продолжительному сроку функционирования и промышленному производству.
Возобновление интереса к аллографтам отмечается с 1988 г., после работы французского хирурга E. Kieffer’а, предложившего заменять инфицированные протезы брюшной аорты аортофеморальными аллографтами. В начале своей практики Kieffer с соавторами отдавали предпочтение свежезаготовленным сосудам, однако затем, по причине развития структурных патологических изменений, приводивших к повторной операции у 9% пациентов, перешли на использование криоконсервированного аллогенного материала [1–3].
Фактически все первые аллографты, применявшиеся для замены инфицированных инфраренальных аортальных протезов, были свежезаготовленными, сохранявшимися при температуре 4 °С менее 48 ч [2]. Самым главным недостатком таких артериальных протезов оказалась неизбежная девитализация в результате дегенеративных изменений срединного слоя, приводящая к спонтанным разрывам, тромбозам и образованию аневризм [2]. По этой причине было предложено использовать криоконсервацию донорского материала.
К этому времени уже были доказаны долговечность (до 7 лет после протезирования) криоконсервированных гомографтов клапанов сердца, а также их долговременная сопротивляемость инфекционному поражению, вероятно, за счет наличия в них жизнеспособных фибробластов, которые вырабатывали коллаген и обеспечивали непрерывное самовосстановление. Результатами различных исследований было доказано и преимущество криоконсервированных аллографтов над свежезаготовленными в уровне ранней и отдаленной послеоперационной летальности. Исследование Vogt et al., опубликованное в 2011 г., посвященное лечению микотических аневризм и инфицированию сосудистых протезов, выявило преимущества в безопасности, стоимости и эффективности криоконсервированных артериальных аллографтов. Кроме того, было отмечено статистически значимое улучшение показателей послеоперационной летальности, связанной с заболеванием выживаемости без повторной операции, продолжительности пребывания в ОРИТ, срока госпитализации и послеоперационной антибиотикотерапии, а также экономической эффективности (общее снижение затрат на 40%) в группе пациентов, которым были имплантированы криоконсервированные аллографты [2].
Согласно литературным данным, криоконсервированные аллографты особенно эффективны в лечении пациентов с аорто-энтеральными, аорто-эзофагеальными или аорто-бронхиальными фистулами. В двух последовательных исследованиях одного центра было отмечено снижение 1-летней смертности с 34% при использовании стандартных методик до 9% после имплантации аллографтов [4, 5]. Недостаточно большая выборка в этих исследованиях объясняется общим снижением частоты развития этих жизнеугрожающих состояний.
Кроме того, эффективность применения аллографтов и снижение частоты инфицирования такого протезного материала были обнаружены при лечении инфекционного поражения периферических сосудов, а также у пациентов, перенесших симультанные операции на желудочно-кишечном тракте и аорте, у больных, подверженных высокому риску инфекционных осложнений на фоне длительной иммуносупрессии, и при хирургическом лечении злокачественных новообразований органов грудной клетки с вовлечением крупных внутригрудных сосудов.
В табл. 17.1 приведены некоторые показания для использования аллографтов в сосудистой хирургии [6].
Показания | Количество имплантированных сосудистых аллографтов | % |
---|---|---|
Инфицирование синтетического протеза |
1373 |
54,8 |
Инфицирование нативной артерии |
72 |
2,9 |
Микотическая аневризма |
119 |
4,8 |
Критическая ишемия конечностей |
372 |
14,8 |
Повреждение артерии |
48 |
1,9 |
Тромбоз синтетического протеза |
40 |
1,6 |
Аорто-энтеральная фистула |
47 |
1,9 |
Аневризма нативной артерии |
15 |
0,6 |
Дисфункция аллографта |
22 |
0,9 |
Новообразование |
10 |
0,4 |
Коарктация аорты |
3 |
0,1 |
Хирургия врожденных пороков сердца |
378 |
15,1 |
Трансплантация сердца |
4 |
0,2 |
Воспалительная реакция на сосудистый протез |
3 |
0,1 |
К основным преимуществам использования аллографтов относятся:
-
возможность заменить инфицированные сегменты артерий или протезов in situ, избегая сложных реконструкций экстраанатомического шунтирования и его возможных осложнений (главным образом кровотечения из культи аорты, повторного инфицирования нового аллографта, длительной антибиотикотерапии). Кроме того, имплантация аллографтов является оптимальным решением для некоторых участков потенциального инфицирования (поперечная и восходящая части дуги аорты, надчревный отдел брюшной аорты), поскольку экстраанатомические реконструкции здесь затруднены или невозможны;
-
некоторые авторы рекомендуют при ограниченном инфицировании сосудистого протеза, затрагивающего только область анастомоза или ветвь протеза (например, при бифуркационном аорто-бедренном шунтировании), замещать только инфицированный сегмент протеза с целью снижения объема операции и частоты повторного инфицирования;
-
вокруг аллопротезов не характерно формирование рубцов и развитие жидкостных скоплений, что снижает риск развития местных раневых осложнений и повторного инфицирования;
-
снижение потребности в проведении противогрибковой и антибактериальной терапии: отмена возможна через 3–6 мес после операции. Использование аллографтов позволяет избежать практически пожизненного приема антибактериальных препаратов. Их применение делает возможным лечение инфекций, вызванных такими агрессивными патогенами, как Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans или Aspergillus fumigatus, известных своей множественной антибиотикорезистентностью [2].
Главными недостатками аллографтов признаются:
-
длительное время, необходимое для получения и подготовки оптимального аллографта для каждого отдельного случая. Фактически создание запаса аллографтов в каждой отдельной больнице невозможно, что практически не позволяет выполнять срочные и экстренные операции;
-
длительная подготовка (для правильного использования криоконсервированных аллогенных протезов необходимо соблюдение строгого протокола их оттаивания/размораживания перед имплантацией). Кроме того, при замещении протяженных сегментов сосудов аллографты требуют длительной хирургической подготовки, в частности перевязки боковых ветвей или формирования анастомоза «конец в конец» двух или нескольких коротких сегментов аллографта;
-
относительная дороговизна в сравнении с синтетическими протезами;
-
криоконсервированные аллографты обладают длительным, но все же ограниченным сроком использования. Изъятые артериальные аллографты могут быть ацеллюлярными, невитальными, со слабой или очаговой Т-клеточной инфильтрацией, без эндотелиоцитов, но единственным неизменным компонентом является фиброзная ткань, что подтверждается выводами исследования Vogt et al. Они наблюдали процесс постепенного сужения диаметра аллографтов спустя определенное время, что было расценено как признак хронической реакции отторжения [2].
Данный факт ранее отмечали и другие авторы. A.D. Callow обратил внимание, что повышенное содержание миоцитов в артериях переходного типа (бедренные, подколенные) способствует увеличению их иммуногенности в сравнении с более крупными артериями эластического типа (аорта, подвздошные). За счет криоконсервации удается значительно снизить иммуногенность артерий как переходного, так и эластического типа. И именно высокой иммуногенностью объясняется частая несостоятельность венозных аллографтов: вследствие повреждения эндотелия развивается иммунологически индуцированный тромбоз сосуда [3].
В настоящее время показания к использованию криоконсервированных артериальных аллографтов немногочисленны и ограничиваются осложненными случаями протезирования грудной и брюшной аорты [2].
В заключение своего обзора Vogt et al. отметили, что «криоконсервированные артериальные и аортальные аллографты являются мощным инструментом для лечения пациентов с опасным для жизни инфекционным поражением сосудистых протезов. Их применение способствует снижению уровня смертности в раннем и отдаленном послеоперационном периоде, частоты развития осложнений и повторных оперативных вмешательств у пациентов с аортальным инфицированием» [2].
В качестве альтернативы артериальным аллографтам были предложены аутовенозные шунты, продемонстрировавшие увеличение срока функционирования при сопоставимом поражении артериальных сегментов. Криоконсервированные венозные аллографты обладают достаточной устойчивостью к инфекциям, тромбообразованию и образованию аневризм, но не имеют сопоставимой с артериальными аллографтами прочности [2].
В соответствии с протоколом CVHG1 (CardioVascular HomoGraft) эксплантация сосудистых аллографтов производится после завершения эксплантации органов. Противопоказания для донорства сосудистых аллографтов аналогичны таковым для донорства тканей и включены в рекомендации Европейской ассоциации биобанков тканей:
-
факторы риска: ВИЧ, вирусные гепатиты и/или другие ГВИ у потенциального донора;
-
имеющиеся у потенциального донора симптомы и признаки генерализованного инфекционного или злокачественного опухолевого процесса;
-
положительный результат серологического исследования донора на ВИЧ-1, ВИЧ-2, ВГВ, ВГС или сифилис [1].
От ПД производится эксплантация участков грудной аорты, аорто-подвздошной бифуркации и бедренных артерий (как глубоких, так и поверхностных) [1]. Разработка методик эксплантации сосудистых сегментов важна для эффективного разделения аортальных площадок, отходящих к различным трансплантатам, и повышения качества эксплантируемых сосудистых элементов [7].
Канюляция аорты для холодовой перфузии является наиболее ответственным моментом. Обычно выполняют аортотомию в инфраренальном отделе и ее пережатие над/под диафрагмой. Канюляцию аорты следует проводить лишь немного ниже устьев почечных артерий. Для пережатия дистального отдела брюшной аорты рекомендуется использовать атравматичный сосудистый зажим или турникет. Некоторые хирурги рекомендуют применять с целью перекрытия просвета аорты двухбаллонный катетер, который может быть проведен к аорто-подвздошной бифуркации через нисходящую дугу аорты (антеградный доступ) или внутреннюю подвздошную артерию (ретроградный доступ). Последний способ позволяет избежать дополнительной аортотомии, технически проще при обычном положении донора на операционном столе, а кроме того, не требует срединной стернотомии.
После канюляции аорты и холодовой перфузии сначала производится эксплантация сердца, затем легких, печени, поджелудочной железы и почек. Хирургу по эксплантации печени следует проявить деликатность и сдержанность при продольном рассечении брюшной аорты, принимая во внимание правые почечные сосуды. А хирургу по эксплантации почек — умеренность при рассечении брюшной аорты в каудальном направлении, чтобы сохранить ее дистальный участок интактным на максимальном протяжении. После этого выполняется эксплантация сосудистых аллографтов, перед чем необходимо оценить их морфологические особенности и воздержаться от изъятия не пригодных для реваскуляризации аллографтов. Сначала от окружающих тканей средостения мобилизуют грудную аорту. Межреберные артерии пересекают на расстоянии 5 мм от устьев. Осторожное отведение грудной аорты кверху позволяет избежать тракционных повреждений и скрытых надрывов, которые могут проявиться только после имплантации. Устья межреберных артерий следует ушивать только после завершения этапа криоконсервации, непосредственно при подготовке аллографта к реваскуляризации.
Возможна также эксплантация дуги аорты, которая может быть полезна для реконструкции бифуркационных участков. С этой целью ветви грудной аорты пересекают как можно дистальнее места отхождения.
После пересечения левой безымянной вены возможно выделение в краниальном направлении и эксплантация протяженного аллографта общей сонной артерии до ее бифуркации. Такой протез может потребоваться для артериальной реконструкции при трансплантации печени, что позволит оставить аллографт инфраренального отдела аорты с подвздошными артериями для реваскуляризации других трансплантатов. Подвздошные и поверхностные бедренные аллографты должны включать область бифуркации. Дистально их пересекают на 0,5–1 см выше первых ветвей, отходящих от внутренней подвздошной и глубокой бедренной артерий [7]. Если эксплантированные сосудистые аллографты не будут использованы для последующей трансплантации в течение 48 ч, необходимо отправить их в биобанк тканей, где осуществляются оценка, изоляция, подготовка, криоконсервация, хранение и распределение сосудистых аллографтов. До поступления в биобанк изъятые аллографты должны находиться в консервирующем растворе при температуре 4 °С. Оптимальное время оценки сосудистых аллографтов в биобанке на основании их макроскопического исследования — не более 24 ч от момента эксплантации.
-
Первый класс (непригодны для криоконсервации): для артериальных аллографтов — наличие аневризматических поражений или двух и более кист в сосудистой стенке, трансмуральная кальцификация более 50% диаметра сосуда, изъязвления интимы; для венозных — выраженное варикозное расширение или значительные фиброзные изменения стенки.
-
Второй класс («пригодны для резерва», acceptable with reserve): для артериальных аллографтов — очаговые эктазии, фиброзно-кальцифицирующие утолщения или атеросклеротическое поражение стенки без изъязвлений интимы; для венозных — очаговые эктазии или утолщения стенки.
-
Третий класс (пригодны для криоконсервации): нормальные по диаметру и морфологии, с незначительным атеросклеротическим поражением стенки артерии; вены без патологических изменений [8].
На следующем этапе аллографты помещают на 96 ч (в среднем) в раствор с антибиотиками при температуре 4 °С и после стерилизации производят их заморозку посредством гомогенного и контролируемого снижения температуры. Длительное хранение аллографтов осуществляется при температуре –150/–180 °С в парах жидкого азота до момента использования.
Все этапы криоконсервации направлены на поддержание структурной и функциональной целостности клеток и тканей, а значительное снижение температуры обеспечивает сохранение жизнеспособности и функции клеток и тканевой структуры в целом. Некоторые криопротективные агенты используются для снижения концентрации растворенных веществ, клеточной дегидратации и образования микро- и макрокристаллов. Затем производятся бактериологическое (посевы биологических сред донора на микроорганизмы) и вирусологическое (ГВИ-скрининг донора) исследования аллографтов. На каждом этапе оценки в биобанке информация о доноре и его тканях фиксируется на бумажном и электронном носителях, что обеспечивает формирование детальной базы данных по каждому аллографту [7].
Важнейшим и наибольшим опытом в этой области обладает функционирующий с 1991 г. Европейский банк гомографтов (European Homograft Bank, EHB), в задачи которого входит заготовка в соответствии с европейскими рекомендациями и стандартами, хранение в парах жидкого азота при температуре ниже –130 °С различных видов артериальных аллографтов и последующая их транспортировка в различные европейские медицинские центры [6].
С 1991 по 2011 г. EHB было распределено 1428 криоконсервированных артериальных аллографтов. Наиболее частыми показаниями для их использования (см. табл. 17.1) были инфекционные процессы (65%), критическая ишемия конечностей (15%), врожденные пороки сердца (15%). Для восстановления поврежденных артерий применялось 2% аллографтов, при тромбозе синтетического протеза — 1,5%, для замещения трахеи при злокачественном опухолевом процессе — 0,4%. Верхний возрастной предел для доноров артериальных аллографтов составил 55 лет для мужчин и 60 лет для женщин, при отсутствии факторов риска наличия серьезной сердечно-сосудистой патологии. Эксплантация сосудистых аллографтов не производилась от доноров с симптомами и признаками генерализованного инфекционного или злокачественного опухолевого процесса, а также при положительных результатах серологического исследования на ГВИ и/или сифилис. Для криоконсервации не использовали артериальные аллографты с выраженными морфологическими изменениями сосудистой стенки — значительным атеросклеротическим поражением в виде кальцификации, стенозом просвета, изъязвлениями интимы, аневризматическим расширением, инфекционным поражением и тракционными повреждениями. Эксплантация сосудистых аллографтов производилась от доноров, умерших в результате смерти головного мозга, а также умерших в результате необратимой остановки кровообращения (со временем тепловой ишемии, не превышающим 6 ч, и сроком между констатацией смерти и эксплантацией сосудов не более 24 ч). Допустимой продолжительностью доставки аллографтов в биобанк является срок не более 24 ч от момента эксплантации, а общее время ишемии аллографтов не должно превышать 72 ч.
После эксплантации производятся флашинг и упаковка аллографтов в три стерильных пакета, наполненных холодным (+4 °С) раствором для перфузии. Транспортировка аллографтов в биобанк, вместе с образцами крови донора для скрининга ГВИ, осуществляется в термоконтейнере со льдом в течение 24 ч от момента эксплантации. После прибытия в EHB технический персонал осуществляет проверку упаковки, маркировки и условий транспортировки образцов крови и аллографтов, после чего выполняются анонимизация и кодирование донорского материала. Следующим этапом производится оценка сосудистых аллографтов на основании их макроскопического исследования с измерением проксимального и дистального диаметров и патолого-гистологическим исследованием образцов обоих концов сосуда для исключения возможных злокачественных новообразований и активного инфекционного процесса. Далее морфологически пригодные аллографты помещают в раствор с тремя антибиотиками (ванкомицин, полимиксин В и линкомицин) на 48 ч при температуре 4 °С и по прошествии указанного времени производят повторную морфологическую оценку. Затем аллографт помещают в 100 мл криопротективного 10% раствора диметилсульфоксида в среде 199 (питательная среда, предложенная в 1950-х гг. Morgan et al.). Криоконсервация достигается посредством контролируемой скорости замораживания 1 °С/мин до –40 °С и 5 °С/мин до –100 °С с помощью жидкого азота. Хранение криоконсервированных аллографтов осуществляется при температуре ниже –130 °С в парах жидкого азота.
Проверка образцов крови донора производится на наличие ВГВ, ВГС, ВИЧ, Т-лимфотропного вируса человека, сифилиса, малярии, вирусного миокардита, ку-лихорадки и туберкулеза. Перфузат, в котором были транспортированы аллографты (контроль А), раствор с антибиотиками (контроль В) и криопротективный раствор (контроль С) исследуют на контаминацию аэробными и анаэробными микроорганизмами, дрожжеподобными грибами и др.
В компетенции EHB входит выбор необходимого аллографта в зависимости от показаний, степени срочности и доступности по каждому конкретному запросу, а также транспортировка аллографтов, которую проводят двумя способами: в сухом контейнере с жидким азотом при температуре ниже –130 °С или в сухом льде при температуре –78 °С. Предпочтительным является первый способ, позволяющий безопасно возвращать аллографт в EHB при отказе от имплантации.
На последнем этапе хирургом непосредственно производится оценка морфологии, качества хранения и дополнительное бактериологическое исследование аллографта (для исключения любой возможности инфицирования). После имплантации хирург заполняет соответствующую форму и отправляет ее в EHB.
За 20 лет работы в EHB заготовлено и хранится большое количество артериальных аллографтов (рис. 17.1), максимальное количество которых было зарегистрировано в 2011 г. и составило 138 серий. При этом криоконсервировано было только 68% эксплантированных артериальных аллографтов. Отказ от использования оставшихся 32% аллографтов был обусловлен выраженными морфологическими изменениями (58%) и положительными результатами бактериологического исследования биологических сред (рис. 17.2). Наиболее востребованы оказались бедренные и торакальные артериальные аллографты (рис. 17.3) [6].
В табл. 17.2 приведены причины признания уже заготовленных EHB артериальных аллографтов непригодными для имплантации.



Причины | Количество | % |
---|---|---|
Аллографт разморожен, но не имплантирован |
36 |
83,7 |
Повреждение/разрыв аллографта после размораживания |
5 |
11,6 |
Нарушение целостности мешка для транспортировки аллографта |
1 |
2,3 |
Температурные колебания |
1 |
2,3 |
В Италии также был реализован опыт организации биобанка гомографтов. Лидирующим центром является Кардиологический центр Монцы (Centro Cardiologico Monzino), где хранятся артериальные и венозные аллографты и сосудистые клапанные гомографты (аортальные, митральные и легочные). Этот биобанк был основан в 1993 г. под названием «Итальянский банк гомографтов» (Banca Italiana Omoinnesti, BIO) как часть Кардиологического центра Монцы с целью заготовки сосудистых клапанных гомографтов для госпиталя. Однако уже в следующем году началось сотрудничество Итальянского банка гомографтов с NITp. Оно привело к расширению деятельности по заготовке и хранению сосудистых аллографтов и клапанных гомографтов, полученных в том числе и из других больниц Италии. В 1997 г. Итальянский банк гомографтов вошел в состав Европейской ассоциации банков тканей (European Association of Tissue Bank). А в 2000 г. Министерство здравоохранения Италии утвердило протоколы Итальянского банка гомографтов в качестве национального руководства по заготовке, хранению и распределению сосудистых аллографтов и клапанных гомографтов. С 2005 г. Итальянский банк гомографтов был признан сертифицированным банком тканей в рамках программы Национального центра трансплантации (Centro Nazionale Trapianti), что способствовало продолжению деятельности Итальянского банка гомографтов по обеспечению сосудистыми аллографтами и протезными гомографтами практически всех клиник Северной Италии [9].
Литература
-
Agrifoglio G., Bonalumi F. et al. Aortic allograft replacement: North Italy Transplant Programme (NITp) // Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 1997. Vol. 14, suppl. A. P. 108–110.
-
Vogt P.R. Arterial allografts in treating aortic graft infections: something old, something new // Semi Vas. Surg. 2011. Vol. 24. P. 227–233.
-
Callow A.D. Arterial homografts // Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 1996. Vol. 12. P. 272–281.
-
Vogt P.R., Pfammatter T.H. et al. In situ repair of aortobronchial, aortoesophageal, and aortoenteric fistulae with cryopreserved aortic homografts // J. Vasc. Surg. 1997. Vol. 26. P. 11–17.
-
Von Segesser L.K., Tkebuchava T. et al. Aortobronchial and aortoesophageal fistulae as risk factors in surgery of descending thoracic aortic aneurysms // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 1997. Vol. 12, N 2. P. 195–201.
-
Jashari R., Van Hoeck B. et al. Banking of cryopreserved arterial allografts in Europe: 20 years of operation in the European Homograft Bank (EHB) in Brussels // Cell Tissue Bank. 2013. Vol. 14. P. 589–599.
-
Ponzio F., Merlo M. Prelievo dei Segmenti Vascolari, Annali Italiani di Chirurgia // LXXII. 2001. Vol. 2. P. 121–123.
-
Polvani G.L., Guarino A. et al. Banking degli Omoinnesti Vascolari // LXXII. 2001. Vol. 2. P. 125–128.
-
Guarino A. Requisiti normativi e strutturali per banche di tessuti, relazione del 26 Marzo 2014 alla quarta «Round Table» di Arisla-Fondazione Italiana di Ricerca per la SLA (Sclerosi Laterale Amiotrofi ca).
Глава 18. Предтрансплантационная подготовка абдоминальных органов на этапе back-table. Рафаэлла Сгуинци, Рикардо Де Карлис, Маурицио Вертемати, Орнелла Россетти, Паоло Асени
R. Sguinzi, P. Aseni, O. Rossetti Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: raff aella_sguinzi@fastwebnet.it R. De Carlis Department of General Surgery, University of Pavia Medical School, Pavia, Italy Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy M. Vertemati Department of Human Morphology, University of Milan Medical School, Milan, Italy
Советы, приемы и возможные ошибки
-
-
Деликатное выделение нижней полой вены трансплантата, особенно по задней поверхности и в надпеченочном отделе, где адвентиция плотно прилежит к диафрагме, позволит после реперфузии избежать кровотечения, которое трудно контролировать.
-
Диссекция верхней брыжеечной артерии требует знания вариантов артериальной анатомии печени по Michel’у.
-
Выделение печеночной артерии из тканей чревного сплетения и фиброзных сращений выполняют в проксимальном направлении от аортальной площадки до устья желудочно-двенадцатиперстной артерии.
-
Следует воздержаться от перевязки мелких артериальных ветвей слишком близко к их устьям, особенно при выраженном атероматозе.
-
-
-
Следует с осторожностью удалять паранефральную клетчатку, избегая скелетирования мочеточников. Паранефральная клетчатка иногда может отделяться от почечной капсулы с большим трудом, особенно у возрастных доноров.
-
Деликатная маркировка мочеточников зажимами типа «москит» поможет избежать их случайного повреждения.
-
Пересекайте левую почечную вену вдоль левого края площадки нижней полой вены.
-
Выбирайте способ удлинения правой почечной вены, наиболее соответствующий ее форме.
-
Обращайте внимание на рассыпной тип кровоснабжения почек и наличие нижнеполюсных артерий, которые могут отходить от основной почечной артерии на достаточном расстоянии (от брюшной аорты или от общей подвздошной артерии).
-
Предтрансплантационная обработка донорских органов на этапе back-table является частью процесса органного донорства и требует выполнения тщательной ревизии, деликатной диссекции и подготовки органов к последующей трансплантации. Важным условием этого этапа является поддержание состояния адекватной гипотермии трансплантатов. Сначала выполняется детальная визуальная ревизия органа на предмет возможных повреждений или патологических изменений, после чего производится подготовка сосудов трансплантата. Это требует глубоких знаний вариантной сосудистой анатомии и деликатной мобилизации всех необходимых для формирования анастомозов структур. На этом этапе также может возникнуть необходимость выполнения разнообразных сосудистых реконструкций, в том числе с использованием гомо- или аллографтов, с обязательной проверкой герметичности швов. В данной главе описаны хирургические и анатомические аспекты подготовки печени, почек и поджелудочной железы на этапе back-table непосредственно перед трансплантацией.
18.1. Подготовка печеночного трансплантата и сосудистых аллографтов
18.1.1. Общие принципы
Подготовка печеночного трансплантата на этапе back-table является важнейшей стадией, завершающей процесс донорства и начинающей операцию ортотопической трансплантации печени. Желательно, чтобы обработку печени проводили хирурги, выполнявшие эксплантацию. На успех последующей пересадки значительное влияние оказывают продолжительность изъятия органа, сроки его холодовой и тепловой ишемии. Так, адекватная СХК органа, его незамедлительная обработка и быстрое наложение сосудистых анастомозов способствуют сокращению общего времени ишемии и улучшению качества трансплантата за счет уменьшения консервационного повреждения печени (preservation injury) как части ее ишемически-реперфузионной травмы. Консервационное повреждение печени может возникнуть в агональном состоянии пациента перед остановкой кровообращения, после пережатия аорты и остановки сердца, во время диссекции «в холодном операционном поле», а также во время наложения сосудистых анастомозов. Предсуществующая патология донора, токсичность лекарственных препаратов, длительный период гипотензии/гипоперфузии, нераспознанная травма печени, вызывающие отек трансплантата метаболические нарушения и неадекватная техника холодовой перфузии на перечисленных выше этапах донорского процесса являются потенциальными факторами риска развития первичной дисфункции трансплантата печени.
Именно поэтому в течение обработки печени на этапе back-table следует контролировать, чтобы трансплантат был полностью погружен в охлажденный консервирующий раствор. Также следует избегать прямого контакта печени с крупными ледяными осколками ввиду высокого риска холодовой травмы печеночной паренхимы.
Один из хирургов, выполняющих предтрансплантационную подготовку, готовит в емкости охлажденную смесь из ледяной шуги [4 литровых пакета замороженного изотонического раствора натрия хлорида или натрия лактата раствор сложный [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид + натрия лактат] (Рингер лактата♠)] и консервирующего раствора для перфузии, поддерживая температуру около 4 °С. Трансплантат печени укрывают холодными влажными тампонами или полотенцами для защиты органа от прямого контакта с частицами льда, избегая тем самым холодовой травмы паренхимы печени.
После флашинга трансплантата дополнительно оценивают степень жирового гепатоза и пригодности органа к последующей трансплантации.
18.1.2. Подготовка нижней полой вены
Во время подготовки печени деликатно выделяют и мобилизуют участок НПВ для выявления и перевязки ее ветвей. Это, а также идентификации возможных повреждений НПВ и печеночных вен позволит избежать развития неконтролируемого кровотечения после реперфузии трансплантата. Интраоперационный гемостаз в данной ситуации потребует выполнения сложных хирургических приемов, сопровождающихся риском повторного ишемического повреждения органа и избыточного натяжения сформированных сосудистых анастомозов, способствующего новому кровотечению.
Подготовку НПВ начинают с задней поверхности надпеченочного отдела до внутрипеченочного сегмента. Это сопровождается выделением и пересечением левой гепатокавальной связки на уровне левого края хвостатой доли. Достаточная для формирования кава-кавального анастомоза протяженность НПВ обычно достигается без лигирования ветвей хвостатой доли. После деликатной диссекции тканей, окружающих надпеченочный отдел НПВ, лигируют диафрагмальные ветви по правой и левой стенке НПВ. Идентификация диафрагмальных вен может быть значительно облегчена с помощью диссектора/зонда Уотсона–Чейна.
Затем ассистент растягивает надпеченочный и подпеченочный сегменты НПВ. Выполняется мобилизация задней поверхности нижней полой вены и правой доли печени от окружающих тканей, включая участки диафрагмы и часть правого надпочечника. При этом требуется лигировать правую надпочечниковую и нижние диафрагмальные вены (обычно 2–4). Надпеченочный отдел НПВ необходимо выделять деликатно, поскольку адвентиция правой и левой печеночных вен достаточно плотно прилежит к диафрагме. Грубое препарирование может привести к повреждению этих вен, необходимости их прошивания и, как следствие, к нарушению венозного оттока. Далее производится отделение НПВ от хвостатой доли: вначале разделяется правая гепатокавальная связка (связка Макуучи) между НПВ и правым краем С I, после чего выполняется лигирование нескольких мелких венозных ветвей для формирования площадки НПВ. Затем проводится контроль герметичности НПВ и, при необходимости, ушивание дефектов ее стенки нитью Prolene 6/0–7/0. Контроль герметичности осуществляется путем последовательного пережатия просвета НПВ и мануальной перфузии консервирующего раствора с помощью шприца объемом 50 мл с иглой-канюлей. После проверки герметичности важно сохранить достаточную длину НПВ для формирования кава-кавального анастомоза. При формировании венозного анастомоза по методике piggy-back надпеченочный сегмент НПВ укорачивают до уровня впадения печеночных вен, после чего надпеченочный и подпеченочный просветы НПВ ушивают непрерывным швом нитью Prolene 4/0 или сосудистым степлером (рис. 18.1).

18.1.3. Подготовка воротной вены
Воротную вену рассекают на достаточную длину, оставляя 3–5 см до уровня ее бифуркации. Затем перевязывают 1–2 небольшие боковые ветви, в том числе левую желудочную вену. Контроль герметичности производится после пережатия хирургом воротной вены двумя пальцами в области ворот печени путем флашинга небольшим объемом раствора для перфузии с помощью шприца с иглой-канюлей. При необходимости ушивание дефектов стенки воротной вены осуществляется нитью Prolene 6/0 [1–3].
18.1.4. Вариантная анатомия печеночной артерии
Обязательным условием обеспечения безопасности реципиента и трансплантата печени является знание вариантной анатомии печеночной артерии (рис. 18.2).
В соответствии с классификацией по Michel’у (1955) выделяют 10 основных вариантов артериального кровоснабжения печени [4–9]:
-
тип 1 (70%): типичная, классическая или стандартная анатомия, при которой ОПА отходит от ЧС, отдает ГДА, продолжается в виде собственной печеночной артерии, которая затем разделяется на правую и левую печеночные артерии;
-
тип 2 (9,7%): замещающая левая печеночная артерия отходит от ЛЖА;
-
тип 3 (7,8%): замещающая правая печеночная артерия отходит от ВБА;
-
тип 4 (3,1%): замещающая левая печеночная артерия отходит от ЛЖА и замещающая правая печеночная артерия отходит от ВБА;
-
тип 8 (0,3%): а — замещающая левая печеночная артерия отходит от ЛЖА и ДППА отходит от ВБА, б — ДЛПА отходит от ЛЖА и замещающая правая печеночная артерия отходит от ВБА;
Позднее в классификацию Michel’а были добавлены еще 2 типа артериального кровоснабжения печени:
В 1971 г. Suzuki et al. опубликовали статью, посвященную хирургическому значению вариантов артериального кровоснабжения печени. В этой работе была предложена новая классификация вариантов артериального кровоснабжения печени, основанная на его анатомии в области ПДС, а основным классифицирующим фактором было принято общее количество печеночных артерий:

Каждая указанная группа делится на 3 типа в соответствии с артериями, от которых отходит печеночная артерия:
18.1.5. Подготовка печеночной артерии
При обработке печени на этапе back-table необходимо идентифицировать аберрантные печеночные артерии и при наличии выполнить их достаточную мобилизацию. В случае обнаружения дополнительных или замещающих артерий следует обеспечить их реконструкцию с помощью донорских сосудистых аллографтов. Минимизации риска артериального тромбоза и первичной дисфункции трансплантата печени позволяет добиться микрохирургическая техника формирования анастомозов. Затем производится мобилизация печеночной артерии от окружающих ее адвентиции, чревного сплетения и лимфатических тканей. После подготовки ЧС дистальный конец ВБА выделяют с целью идентификации ДППА (тип 4) или замещающей правой печеночной артерии (тип 9). При «классическом» кровоснабжении (тип 1) выполняется выделение печеночной артерии от аортальной площадки до места отхождения ГДА. Избегая скелетирования печеночной артерии за счет сохранения незначительного количества окружающих фиброзно-лимфатических тканей по продольной оси артерии, возможно предотвратить ее кинкинг или перекручивание. В результате создается аортальная площадка размером примерно 2,0×1,5 см, после чего устья СА, ЛЖА и ГДА перевязывают или прошивают. При атероматозе артерии не следует лигировать мелкие артериальные ветви слишком близко к устью, чтобы избежать отслоения интимы. При наличии ДЛПА, отходящей от ЛЖА, ее ход прослеживается с помощью тупой иглы (иглы-канюли), поскольку диаметр артерии, как правило, достаточно мал. Для ДЛПА также справедлива рекомендация избегать скелетирования для предотвращения тем самым ее перегиба или перекрута. Далее производится тщательное лигирование коротких артерий желудка с последующим контролем герметичности левой печеночной артерии путем промывания небольшим объемом раствора для перфузии через устье ЧС [2, 3]. В случае отхождения ДППА от ВБА не существует общепринятой методики ее реконструкции. Главным правилом является обеспечение артериального притока по ЧС через единственный анастомоз с печеночной артерией реципиента — то есть формирование единого артериального устья печеночного трансплантата. После свыше 300 артериальных реконструкций, выполненных при более чем 1800 трансплантаций печени за период с 1985 по 2015 г., авторы руководства сформулировали общие принципы реконструкции печеночных артерий на этапе back-table:

В случае полного пересечения ДППА авторы руководства рекомендуют следующие способы эффективной артериальной реконструкции:
-
a) при короткой длине проксимальной культи ДППА возможно формирование анастомоза по типу «конец в конец» между ДППА и ГДА (также возможно использование короткого сосудистого аллографта соответствующего диаметра, например участка СА или ЛЖА);
-
б) при достаточной длине проксимальной культи ДППА может быть выполнена реконструкция с СА, ЛЖА или ГДА.
Приведенные на рис. 18.5 некоторые другие методики артериальной реконструкции демонстрируют индивидуальность и вариабельность анатомии артериального русла печеночного трансплантата. Выбор способа эффективной сосудистой реконструкции зависит от конкретной хирургической ситуации и должен быть тщательно продуман для каждого случая в отдельности. Иногда во время гепатэктомии (особенно при ретрансплантации печени) вследствие повреждения печеночной артерии реципиента необходимо выполнение шунтирующих вмешательств с использованием донорского подвздошного артериального аллографта в качестве «jump»-графта между печеночной артерией трансплантата и брюшной аортой реципиента (рис. 18.6).



18.1.6. Идентификация желчных протоков и завершение предтрансплантационной подготовки печени
Подготовить протоки к формированию желчеотводящего анастомоза целесообразно уже после реперфузии трансплантата, в теле реципиента. Это позволит избежать препарирования желчных протоков на этапе back-table, чтобы не нарушить кровоснабжение общего желчного протока трансплантата.
В зависимости от времени между завершением обработки печеночного трансплантата и до его пересадки орган должен быть либо повторно упакован по методу трех пакетов и помещен в термостатический контейнер со льдом, либо, укрытый холодными влажными тампонами, должен оставаться в прохладном помещении в емкости с шугой и холодным консервирующим раствором. Непосредственно перед пересадкой можно выполнить дополнительную перфузию трансплантата 500 мл натрия хлорида раствора сложного [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид] (Раствора Рингера♠) для удаления накопившегося избытка калия [10–13].
18.1.7. Подготовка артериальных аллографтов
По окончании обработки печени на этапе back-table следует подготовить донорские подвздошные артериальные и венозные аллографты не только на случай ретрансплантации, но и для возможности коррекции любого непредвиденного повреждения или тромбоза печеночной артерии и воротной вены реципиента. Донорский подвздошный артериальный аллографт может быть использован в качестве «jump»-графта между печеночной артерией трансплантата и брюшной аортой (в инфраренальном, подпеченочном отделах) или общей/наружной артерией реципиента. В этом случае формируются следующие реконструктивные артериальные анастомозы: по типу «конец в бок» между общей подвздошной артерией донорского аллографта и брюшной аортой реципиента; по типу «конец в конец» между наружной подвздошной артерией донорского аллографта и печеночной артерией реципиента в месте отхождения ГДА (внутреннюю подвздошную артерию донорского аллографта отсекают и лигируют у устья). В случае тромбоза воротной вены одной из опций является использование в качестве «jump»-графта донорского подвздошного венозного аллографта между ВБВ реципиента и воротной веной трансплантата с формированием анастомоза по типу «конец в конец». Подготовка подвздошных артериального и венозного аллографтов должна быть тщательной: следует удалить всю соединительную ткань, покрывающую сосудистую стенку снаружи, и обеспечить герметичность графта путем ушивания нитью Prolene 6/0–7/0 всех дефектов сосудистой стенки [14, 15].
18.2. Предтрансплантационная подготовка почек
18.2.1. Общие принципы
Подготовка почек на этапе back-table в некоторых случаях может быть выполнена хирургами, которые проводили и обработку трансплантата печени. Важным является сведение к минимуму возможных ошибок, которые могут поставить под угрозу успех трансплантации. Подготовка почек на этапе back-table начинается с детальной ревизии органов, находящихся в емкости с охлажденным раствором из шуги [два 1-литровых пакета замороженного изотонического раствора натрия хлорида или натрия лактата раствора сложного [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид + натрия лактат] (Рингер лактата♠)] и раствора для перфузии при температуре около 4 °С. После нефрэктомии у живого донора следует произвести немедленную перфузию трансплантата 500–600 мл консервирующего раствора, что в большинстве ситуаций, кроме наличия двух и более почечных артерий, является единственным этапом подготовки почки от живого донора на этапе back-table перед последующей пересадкой.
18.2.2. Детальная оценка почечных трансплантатов
Для исключения возможных опухолевых новообразований почки и оценки качества холодовой перфузии при эксплантации производится вскрытие фасции Герота. Паранефральная клетчатка иногда может быть отделима от почечной капсулы со значительным трудом, особенно при эксплантации у пожилых доноров. В такой ситуации рекомендуется иссекать почечную фасцию экономно, чтобы не повредить почечную капсулу. С осторожностью следует удалять также паранефральную клетчатку в области мочеточников, избегая их скелетирования. Маркировка дистальных концов мочеточников зажимами типа «москит» поможет избежать их случайного повреждения или пересечения. Затем почечные сосуды выделяют из окружающих фиброзно-лимфатических тканей [3, 16]. При эксплантации почек единым блоком производится их разделение. Для этого заднюю стенку аорты рассекают по средней линии в продольном направлении, оставляя широкую аортальную площадку для каждого почечного трансплантата (рис. 18.7). Левую почечную вену отсекают в поперечном направлении вдоль левого края НПВ. Обычно весь сегмент НПВ отходит к правой почке для возможной удлиняющей венопластики правой почечной вены. Однако в некоторых центрах предпочитают продольно рассекать НПВ по средней линии с формированием отдельных венозных площадок для каждого трансплантата.
18.2.3. Подготовка почечной вены
После разделения почечных трансплантатов производится выделение почечной вены. По направлению к воротам почки перевязывают все ее боковые ветви, в том числе гонадную и надпочечниковую, избегая обнажения лоханки. Кроме того, при необходимости целесообразно выполнить удлиняющую венопластику почечной вены. Наиболее распространенными являются три методики:
-
«стандартная» (способ Barry–Fuchs) — производят 2 поперечных разреза прилегающей к правой почечной вене НПВ по направлению к устью отсеченной левой почечной вены с последующим ушиванием этих разрезов непрерывным швом нерассасывающейся нитью (рис. 18.8, a). Эта методика используется наиболее часто ввиду своей технической простоты;
-
способ Taylor — удлинение правой почечной вены производится за счет косого участка НПВ, идущего от правого верхнего края устья правой почечной вены к нижнему краю левой почечной вены, образуя своего рода «курительную трубку» (pipe) (рис. 18.8, б). Основными недостатками данного способа являются чрезмерная длина венозной трубки сформированной вены и избыточная ширина ее дистальной части;
-
способ Розенталя — может использоваться в случае эксплантации почек единым блоком с последующим формированием раздельных венозных площадок. Производится ушивание площадки правой почечной вены вдоль ее продольной оси в поперечном направлении (рис. 18.8, в) [17, 18].

18.2.4. Подготовка почечной артерии
Мобилизация почечных артерий начинается с последовательного выделения и перевязки всех боковых ветвей по направлению к воротам почки, избегая обнажения лоханки. Нижнюю надпочечниковую артерию лигируют после прошивания. Следует обращать внимание на возможность рассыпного типа кровоснабжения почечного трансплантата и наличие нижнеполюсных артерий. Последние могут отходить на значительном расстоянии от основной почечной артерии: от брюшной аорты или от общей подвздошной артерии.

Множественный тип артериального кровоснабжения почечного трансплантата может доставить хирургу определенные трудности, для преодоления которых разработаны различные реконструктивные методики. Наиболее распространенными из них являются следующие:
-
при близком расположении устьев множественных почечных артерий для наложения единственного артериального анастомоза возможно формирование общей аортальной площадки;
-
при значительном расстоянии между устьями почечных артерий может быть сформирован артериальный анастомоз по типу «конец добавочной почечной артерии в бок основной почечной артерии» (рис. 18.9). Данная методика популярна при подготовке трансплантата от живого донора, когда аортальная площадка отсутствует;
-
при отсутствии общей аортальной площадки можно использовать анастомоз разных аортальных площадок между собой — сформировать общую аортальную площадку (предпочтительно) или анастомозировать между собой непосредственно устья почечных артерий по типу «бок в бок» (рис. 18.10). При расстоянии между почечными артериями менее 2 см дальнейшей реконструкции не требуется и может быть сформирован анастомоз между аортальной площадкой трансплантата и общей/наружной подвздошной артерией реципиента.

Несколько способов артериальной реконструкции разработано для ситуаций, когда имеется значительное расстояние между устьями почечных артерий. В таких случаях общая аортальная площадка может быть разделена на две для формирования отдельных анастомозов или укорочена с последующим формированием общего соустья почечных артерий за счет их анастомозирования по типу «бок в бок» с использованием нити Prolene 7/0–8/0 [19–22]. Восстановление пересеченных во время эксплантации или при обработке на этапе back-table добавочных или нижнеполюсных почечных артерий может быть выполнено с помощью анастомоза по типу «конец в конец» с использованием микрохирургической техники. В качестве альтернативы можно наложить дополнительный артериальный анастомоз пересеченной артерии без аортальной площадки с подвздошной артерией реципиента по типу «конец в бок». По возможности следует избегать анастомоза типа «конец добавочной почечной артерии в бок основной артерии трансплантата» по причине высокого риска тромбоза обоих сосудов, что неминуемо приведет к утрате трансплантата. Кроме того, отсутствие адекватного кровотока по нижнеполюсной артерии может привести к некрозу дистального отдела мочеточника и мочевому затеку. Нижнеполюсные добавочные артерии почечного трансплантата имеют определяющее значение для кровоснабжения мочеточника и почечной лоханки и обязательно должны быть реваскуляризированы. Лишь при незначительном диаметре этих сосудов и очевидном оттоке по ним перфузата при флашинге основной почечной артерии (что свидетельствует о хорошо развитых коллатералях) нижнеполюсные артерии могут быть сравнительно безопасно лигированы при существенных технических трудностях, сопровождающих их возможную реконструкцию.

Выраженное атеросклеротическое поражение артерий донорских органов, повышающее риск развития дисфункции почечного трансплантата и окклюзии сосудов ввиду предсуществующего стеноза почечной артерии или повреждения интимного слоя, требует особого внимания при реваскуляризации трансплантата. Необходимо выполнить ревизию почечной артерии на предмет ее проксимального стеноза, наличие которого, наряду с повреждением интимы в пределах аортальной площадки или проксимального участка почечной артерии, требует ее укорочения. По этой причине авторы руководства не рекомендуют дополнительный флашинг почечной артерии при наличии атеросклеротического поражения в области ее устья. Для минимизации риска отслоения интимной оболочки и окклюзии сосудов в случае, когда безопасно удалить атеросклеротические бляшки пораженных участков артерии невозможно, предпочтительным является формирование анастомоза по типу «конец в бок», предложенного в 1948 г. J. Kunlin. Аортальные площадки с выраженным атеросклерозом и поражением интимы необходимо резецировать и формировать анастомоз укороченной почечной артерии без площадки по типу «конец в бок». Если кровоснабжение почечного трансплантата осуществляется по двум артериям различного диаметра, желательно накладывать два отдельных артериальных анастомоза, но не реконструировать по типу «добавочная почечная артерия в бок основной артерии трансплантата». Это потенциально может привести к стенозу основной почечной артерии. При необходимости формирования двух (или нескольких) артериальных анастомозов сначала формируют анастомоз с наиболее крупной почечной артерией.
При наличии двух почечных артерий сопоставимого диаметра и отсутствии аортальной площадки возможно выполнить их реконструкцию с помощью анастомоза по типу «конец в конец» с формированием общего просвета. При значительно различающемся диаметре артерий мы рекомендуем накладывать анастомоз в бок основной почечной артерии, по возможности — используя аортальную площадку. При этом достаточная длина добавочной артерии нам представляется более важным фактором, чем наличие аортальной площадки. Общая и наружная подвздошные артерии реципиента могут быть использованы для формирования трех и более отдельных артериальных анастомозов.
В качестве другого варианта возможен анастомоз пересеченных или добавочных почечных артерий по типу «конец в бок» с артериальным аллографтом, который, в свою очередь, затем анастомозируют с подвздошной артерией реципиента [23].
Рассыпной тип кровоснабжения почек наблюдается в 25% случаев только с одной стороны, а билатеральный — в 10% наблюдений. Несколько десятилетий назад наличие множественных (более двух) почечных артерий считалось относительным противопоказанием для трансплантации почки ввиду возможных сосудистых и урологических осложнений. К настоящему времени многочисленными исследованиями продемонстрировано, что, несмотря на определенные технические трудности, результаты пересадки почек с добавочными артериями по частоте развития хирургических осложнений и исходам операции не уступают результатам трансплантации почек с единственной почечной артерией [19, 20].
Герметичность почечных сосудов оценивается путем их флашинга раствором для перфузии. Консервирующий раствор аккуратно под небольшим давлением поочередно вводят в почечные артерию и вену с помощью шприца объемом 20–50 мл. Одновременно в области ворот почки соответствующие сосуды пережимают пальцами. Для предотвращения повреждения интимы рекомендуется использовать с этой целью тупые иглы — для артерии и конические — для вены. Любой негерметичный участок сосуда должен быть ушит нитью Prolene 7/0, после чего подготовленный почечный трансплантат может быть повторно упакован в пакет, заполненный раствором для перфузии и погруженный в шугу.
18.3. Предтрансплантационная подготовка почечного трансплантата от прижизненного донора
Эксплантационная нефрэктомия у живого донора является первым и важнейшим шагом для успеха последующей трансплантации у реципиента, а потому требует от хирурга особого внимания и тщательности. После изъятия трансплантата у прижизненного донора следует выполнить немедленную перфузию органа 600–800 мл консерванта с расположением пакета с раствором на 90 см выше уровня стола, на котором производится обработка. Необходимо деликатно отделить избыток паранефральной клетчатки, обеспечив целостность мочеточника, почечной лоханки и почечных сосудов. По направлению к воротам почки выполняется мобилизация и лигирование всех ветвей почечной вены, в том числе гонадной и надпочечниковой (в случае обработки левой почки), избегая обнажения лоханки. Удлинение вены правого почечного трансплантата можно выполнить с помощью площадки НПВ, а также венозного аллографта, полученного от ПД (в течение 48 ч от момента эксплантации) или же криоконсервированного, из биобанка тканей.
Техника артериальной реконструкции при множественном типе почечного кровоснабжения индивидуальна для каждого конкретного случая и зависит от количества, диаметра и длины почечных артерий. При наличии более двух почечных артерий артериальная реконструкция может быть довольно сложной задачей ввиду невозможности эксплантации от живого донора сосудистого аллографта. Доступными вариантами являются артериальные аллографты, полученные от ПД (в течение 48 ч от момента эксплантации) или из биобанка тканей. В большинстве случаев формируют артериальные анастомозы по типу «конец в бок» между почечной артерией трансплантата и общей / наружной / внутренней подвздошной артерией реципиента. Наиболее распространенным способом артериальной реконструкции при подготовке почки на этапе back-table без использования сосудистого аллографта является анастомоз почечных артерий между собой по типу «бок в бок». Таким образом, формируется общее артериальное устье трансплантата для наложения единственного артериального анастомоза с подвздошной артерией реципиента. При диаметре верхнеполюсных артерий менее 1 мм они могут быть безопасно лигированы, поскольку не принимают участия в кровоснабжении мочеточника и лоханки и кровоснабжают менее 10% почечной паренхимы. Другие техники артериальной реконструкции представляют собой отдельные анастомозы с подвздошными артериями реципиента или анастомозы добавочной почечной артерии по типу «конец в бок» с основной почечной артерией [21]. Для формирования анастомоза с нижнеполюсной артерией можно также использовать нижнюю надчревную артерию реципиента [22]. При наличии трех почечных артерий и отсутствии их атеросклеротического поражения возможна мобилизация сегмента внутренней подвздошной артерии реципиента с устьями верхней ягодичной и запирательной артерий для последующего тройного раздельного анастомозирования артерий трансплантата.
По способу, предложенному B. He и A. Mitchell (2012), множественные почечные артерии могут быть объединены на общей сосудистой площадке, сформированной из гонадной вены. Такую общую площадку затем соединяют с наружной подвздошной артерией реципиента единственным артериальным анастомозом [24]. Данный способ позволяет избежать риска кинкинга благодаря параллельному расположению почечных артерий. При изъятии почки от прижизненного донора технически возможны мобилизация и получение гонадной вены, поэтому в таких случаях ее можно использовать для сосудистой реконструкции в качестве дополнительной опции. При дистальном впадении гонадной вены возможно расширение устья почечной вены за счет объединения устьев этих вен у почечного трансплантата, полученного от прижизненного донора. Кроме того, гонадная вена может использоваться при короткой почечной вене для ее удлинения. Для этого между венами формируют анастомоз по типу «конец в конец». Усовершенствование хирургической техники эксплантационной нефрэктомии у живого донора за счет лапароскопического и роботического оборудования позволило повысить безопасность трансплантации почки с множественными артериями. При выборе оптимальной методики артериальной реконструкции и ее безупречном исполнении риск тромбоза почечных артерий не увеличивается [25]. После обработки почки на этапе back-table производится контроль герметичности сосудов трансплантата путем их флашинга раствором для перфузии с помощью шприца с тупой иглой (иглой-канюлей).
Таким образом, обязательными условиями подготовки хирурга-трансплантолога являются обучение и владение навыками сосудистой и микрососудистой хирургии, а также развитие творческого подхода к решению сложных и непредвиденных ситуаций во время операции.
18.4. Предоперационная подготовка панкреатодуоденального трансплантата
Подготовку эксплантированной поджелудочной железы к трансплантации следует проводить непосредственно в хирургическом центре, поскольку эта процедура требует особой прецизионности хирургической техники и напряженного внимания. В случаях, когда печень и поджелудочную железу планируется пересаживать в разных трансплантационных центрах, разделение этих органов ex vivo выполняют в донорском стационаре (рис. 18.11). Панкреатодуоденальный комплекс, включающий поджелудочную железу, ДПК и селезенку, помещается в емкость с охлажденной смесью стерильной ледяной крошки [замороженный изотонический раствор натрия хлорида или натрия лактата раствор сложный [калия хлорид + кальция хлорид + натрия хлорид + натрия лактат] (Рингер лактат♠)] и раствора для перфузии при температуре приблизительно 4 °С. Избегая повреждения большого дуоденального (фатерова) сосочка, проксимальную и дистальную культи ДПК дополнительно прошивают линейным степлером GIA 60 и погружают в кисетный шов рассасывающейся нитью 4/0. Таким образом формируют дуоденальный сегмент (культю) длиной 14–15 см (от привратника желудка до нисходящей части ДПК). При обработке трансплантата поджелудочной железы необходимо лигировать максимально возможное количество мелких артериальных и венозных ветвей для предотвращения кровотечения после реперфузии. У реципиентов, страдающих сахарным диабетом 1-го типа, это особенно важно ввиду нарушений парасимпатической регуляции и отсутствия адекватной адренергической реакции в ответ на кровопотерю. Может оказаться полезным дополнительное прошивание культей общего желчного протока и ГДА, хотя некоторые центры трансплантации предпочитают использовать культю ГДА для дополнительной реваскуляризации головки и ДПК трансплантата. Лигатуры на ГДА не должны находиться непосредственно у устья верхней панкреатодуоденальной артерии, чтобы не сузить ее просвет. После раздельного дистального лигирования селезеночных сосудов производится спленэктомия. Наконец производится артериальная реконструкция с помощью Y-графта (бифуркационный артериальный аллографт общей подвздошной артерии донора) для анастомоза СА и ВБА трансплантата с концами внутренней и наружной подвздошных артерий Y-графта по типу «конец в конец» (см. рис. 18.12) непрерывными швами нитью Prolene 6/0. В случае недостаточной перфузии головки поджелудочной железы через НПДА (например, при вариантной анатомии или симультанной эксплантации тонкой кишки) на этапе back-table возможно выполнение так называемой тройной артериальной реконструкции с помощью хорошо подготовленной культи ГДА для полноценной реваскуляризации головки и ДПК трансплантата (подробнее см. главу 15).
При выраженном атеросклерозе подвздошных сосудов донора возможно использование каротидного Y-графта (общая сонная артерия с бифуркацией на наружную и внутреннюю), частота атеросклеротического поражения которого значительно ниже. Затем выполняется обработка воротной вены с сохранением ее длины в пределах 1,5–2 см, что достаточно для формирования анастомоза с веной реципиента и в то же время снижает риск кинкинга и последующего венозного тромбоза. Производится проверка герметичности сосудистых структур трансплантата поджелудочной железы путем медленного введения 100 мл холодного раствора для перфузии в конец общей подвздошной артерии Y-графта под низким давлением, что позволяет выявить и устранить негерметичные участки сосудистой стенки. После этого панкреатодуоденальный трансплантат считается готовым к пересадке реципиенту [3, 26].


Литература
-
Oniscu C.G., Forsythe J.L., Fung J. Abdominal organ retrieval and transplantation bench surgery. Chichester : Wiley, 2013.
-
Currie I. Edimbourg transplant unit annual report. Scottish Organ Retrieval Team, 2013-2014.
-
Abu-Elmagd K., Fung J., Bueno J. et al. Logistics and technique for procurement of intestinal, pancreatic, and hepatic grafts from the same donor // Ann. Surg. 2000. Vol. 232, N 5. P. 680–687.
-
Lopez-Andújar R., Moya A., Montalvá E. et al. Lessons learned from anatomic variants of the hepatic artery in 1,081 transplanted livers // Liver Transpl. 2007. Vol. 13, N 10. P. 1401–1404.
-
Bhardwaj N. Anomalous origins of hepatic artery and its significance for hepatobiliary surgery // J. Anat. Soc. India. 2010. Vol. 59, N 2. P. 173–176.
-
Hiatt J.R., Gabbay J., Busuttil R.W. Surgical anatomy of the hepatic arteries in 1000 cases // Ann. Surg. 1994. Vol. 220, N 1. P. 50–52.
-
Chiang K.H., Yang Chang P., Lee S.K. et al. Angiographic evaluation of hepatic artery variations in 405 cases // Chin. J. Radiol. 2005. Vol. 30. P. 75–81.
-
Li G.M., Zhu J.Y., Huang L. et al. The analysis for the variation of hepatic arteries of the donor livers // Zhonghua Wai Ke Za Zhi. 2005. Vol. 43, N 7. P. 447–449.
-
Chen H., Yano R., Emura S. et al. Anatomic variation of the celiac trunk with special reference to hepatic artery patterns // Ann. Anat. 2009. Vol. 191, N 4. P. 399–407.
-
Melada E., Maggi U., Rossi G. et al. Back-table arterial reconstructions in liver transplantation: single-center experience // Transplant. Proc. 2005. Vol. 37, N 6. P. 2587–2588.
-
Hevelke P., Grodzicki M., Nyckowski P. et al. Hepatic artery reconstruction prior to orthotopic liver transplantation // Transplant. Proc. 2003. Vol. 35, N 6. P. 2253–2255.
-
Andraus W., Haddad L.B., Ducatti L. et al. Artery reconstruction in liver transplantation: the best reconstruction of right artery variation // Arq. Bras. Cir. Dig. 2013. Vol. 26, N 1. P. 62–65.
-
Lee C.C., Jeng L.B., Li P.C. et al. Innovative technique to reconstruct two branches of the right hepatic artery in living donor liver transplantation // Transplant. Proc. 2008. Vol. 40, N 8. P. 2525–2526.
-
Dong J.H. Management of vascular anomalies and complication in liver tranplantation // Hepatobiliary Pancreat. Dis. Int. 2005. Vol. 4, N 3. P. 330–331.
-
Soliman T., Bodingbauer M., Langer F. et al. The role of complex hepatic artery reconstruction in orthotopic liver transplantation // Liver Transpl. 2003. Vol. 9, N 9. P. 970–975.
-
Ayala-Garcia M.A., Ramirez-Barba E.J., Encalada J.M.S., Yebra B.G. Renal explantation techniques // Renal transplantation: updates and advances / Ed. L. Long. 2011. P. 49–75. URL: www.intechopen.com
-
Valeriani G., Cerbone V., Russo E. et al. Bench surgery in right kidney transplantation // Transplant. Proc. 2010. Vol. 42, N 4. P. 1120–1122.
-
Arango O., Lorente J.A., Bielsa O. et al. Elongation of the right renal vein in 120 consecutive transplant patients: a comparative analysis // Actas Urol. Esp. 2013. Vol. 37, N 3. P. 135–141.
-
Beckmann J.H., Jackobs S., Klempnauer J. Arterial reconstruction in kidney transplantation // Tx. Med. 2008. Vol. 20. P. 7–12.
-
Hwang J.K., Kim S.D., Park S.C. et al. The longterm outcomes of transplantation of kidneys with multiple renal arteries // Transplant. Proc. 2010. Vol. 42, N 10. P. 4053–4057.
-
He B., Mou L., Mitchell A. et al. Meticulous use of techniques for reconstruction of multiple renal arteries in live donor kidney transplantation // Transplant. Proc. 2013. Vol. 45, N 4. P. 1396–1398.
-
Antonopoulos I.M., Yamaçake K.G., Oliveira L.M. et al. Revascularization of living-donor kidney transplant with multiple arteries: long-term outcomes using the inferior epigastric artery // Urology. 2014. Vol. 84, N 4. P. 955–959.
-
Berardinelli L. Best results in living donor transplantation using an aggressive policy in microsurgical bench reconstruction of nonoptimal arterial supply // Transplant. Proc. 2006. Vol. 38, N 4. P. 991–993.
-
He B., Mitchell A. A novel technique for reconstruction of multiple renal arteries in live donor kidney transplantation: a case report and literature review // Transplant. Proc. 2012. Vol. 44, N 10. P. 3055–3058.
-
Yildirim M., Kucuk H.F. Outcomes of renal transplantations with multiple vessels // Transplant. Proc. 2011. Vol. 43, N 3. P. 816–818.
-
Chaib E., Macedo R.A., Santos V.R. et al. Pancreas transplantation-surgical technique // Pancreatic Dis. Ther. 2013. Vol. 3, N 2. P. 120–123.
Часть V. Хирургическая техника эксплантации печени и почки у прижизненных доноров
Глава 19. Правосторонняя эксплантационная гемигепатэктомия у живого донора для трансплантации взрослому реципиенту (техника открытой операции. Лучано Де Карлис, Паоло Асени, Стефано Ди Сандро, Якопо Маньони, Рафаэлла Сгуинци, Андреа Лаутерио
L. De Carlis, P. Aseni, S. Di Sandro, I. Mangoni, R. Sguinzi, A. Lauterio Department of Surgery and Abdominal Transplantation, Transplant Center, Niguarda Cà Granda Hospital, Milan, Italy; e-mail: paoloaseni@gmail.com
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Минимальный оценочный риск для донора и отличные прогностические результаты трансплантации у реципиентов — это релевантные факторы, определяющие этический выбор в пользу ТПЖД.
-
Абсолютным противопоказанием для ПГЭ у живого донора служит отсутствие внепеченочной бифуркации воротной вены.
-
При проведении ТПЖД критерии пригодности донорского органа аналогичны используемым при посмертном органном донорстве.
-
Необходимым условием успешной ТПЖД является дооперационная оценка внепеченочной сосудистой и билиарной анатомии печени у прижизненного донора.
-
Отношение массы трансплантата к массе тела реципиента более 0,8% и отношение массы трансплантата к объему стандартной печени более 40% — безопасные размерные показатели трансплантата для предотвращения развития синдрома недостаточного размера.
-
При ПГЭ не следует пересекать левую треугольную или печеночно-желудочную связки, поскольку это может привести к чрезмерной мобильности левой доли печени донора с возможным перегибом или перекручиванием сосудов с нарушением венозного оттока.
-
Необходимо деликатное выполнение диссекции в области ворот печени, чтобы избежать скелетирования общего желчного протока с риском развития ишемической стриктуры желчевыводящих путей у прижизненного донора.
-
Сохранение СПВ предотвращает нарушение венозного оттока от С IV и развитие дисфункции оставшейся части печени донора.
-
Следует стремиться к полной реконструкции притоков СПВ (V5, V8) и всех добавочных печеночных вен (V6, V7) при их диаметре более 4 мм.
-
Для коррекции плоскости разделения печеночной паренхимы может быть полезно выполнение «хэнгинг-маневра».
19.1. Основные этические принципы прижизненного донорства печени
Вконце 1980-х гг. дефицит пригодных для трансплантации органов от ПД побудил хирургов-трансплантологов к поиску альтернативных решений. В результате были предложены и впервые выполнены такие методики, как сплит-трансплантация печени, пересадка печени от DCD-доноров и ТПЖД. Для ТПЖД эксплантация фрагмента печени производится у здорового человека, не имеющего никаких медицинских показаний к этой операции, кроме желания и готовности помочь таким поступком нуждающемуся реципиенту. При достаточном количестве ПД печени сравнительная эффективность ТПЖД не существенна, поскольку частота посттрансплантационных осложнений у реципиентов превышает 30%, а риск смерти донора оценивается примерно в один летальный случай на каждые 500 операций [1]. Однако в некоторых географических регионах, например в странах Азии, где альтернативы прижизненному донорству практически нет, преимущества ТПЖД максимальны, а риск для здоровья донора находится на приемлемом уровне. В США активность программ прижизненного донорства тем выше, чем выше средний балл по шкале MELD (Model for end-stage liver disease, модель терминальной стадии заболевания печени) [2]. По данным Всемирной организации здравоохранения, трансплантация печени составляет около 20% всех трансплантаций солидных органов и порядка одной пятой из них приходится на ТПЖД [3].
Тем не менее ТПЖД ставит перед трансплантологическим сообществом ряд сложных этических и хирургических вопросов. Так называемые equipoise (равновесие рисков для реципиента и донора) и double equipoise (с обеих точек зрения) являются лишь некоторыми из многих аспектов продолжающихся этических дебатов. Принимая риски для собственного здоровья в пользу помощи реципиенту, донор всегда надеется на успешный исход как эксплантации фрагмента печени, так и последующей трансплантации. Реципиент же (особенно в случаях родственного и эмоционального прижизненного донорства) рассчитывает на минимальный ущерб операции для здоровья донора. Минимальный риск для донора и отличные результаты трансплантации у реципиентов являются релевантными факторами, определяющими этический выбор в пользу ТПЖД [4, 5]. Однако ТПЖД — достаточно сложная операция, требующая значительного хирургического опыта и навыков для обеспечения хороших результатов как для доноров, так и для реципиентов. Несмотря на известные преимущества и высокую 5-летнюю выживаемость реципиентов (на уровне 80–85%), широкое распространение ТПЖД сдерживается высочайшими требованиями к хирургической технике и необходимостью учета определенных противопоказаний для прижизненного донорства. Кроме того, ТПЖД сопровождается значительной частотой развития осложнений (от 30% до 50%). Главным образом, это обусловлено многообразием анатомических особенностей и вариаций, требующих быстрых и технически сложных решений для успешного выполнения трансплантации фрагмента печени.
19.2. Исторические аспекты
В 1989 г. Raia et al. (Бразилия) сообщили о первых родственных трансплантациях фрагмента печени от живых доноров пациентам детского возраста, однако оба реципиента умерли в раннем посттрансплантационном периоде [6]. В следующем году Strong et al. (Австралия) опубликовали клинический случай первой успешной ТПЖД: 15-месячному ребенку был пересажен фрагмент печени от матери [7]. В начале 1990-х гг. благодаря усилиям Broelsch et al. в университетской клинике Чикаго была запущена первая программа ТПЖД. Серия наблюдений включала 20 трансплантаций, как у доноров, так и у реципиентов были продемонстрированы отличные результаты [8]. Аналогичные результаты, отражающие клиническую эффективность ТПЖД, были получены Tanaka et al. из Киото (Япония) [9]. Постепенно ТПЖД получила широкое распространение, особенно в азиатских странах, где трансплантации печени от ПД и по сей день выполняются достаточно редко. В 1994 г. Yamaoka et al. опубликовали первое сообщение об использовании правой доли печени от живого донора, а Marcos et al. в серии наблюдений за 30 пациентами продемонстрировали возможность трансплантации правой доли печени от живого донора с минимальным риском для здоровья донора и реципиента [10–12] (рис. 19.1).

19.3. Предоперационная оценка прижизненного донора печени
В настоящее время трансплантологическое сообщество едино во мнении, что потенциальные реципиенты для ТПЖД должны соответствовать тем же критериям включения в «лист ожидания», которые установлены для трансплантации печени от ПД.
Для оптимизации соотношения донорского риска и эффективности трансплантации необходима тщательная предоперационная оценка донора для каждого отдельного потенциального реципиента. Требования к клиническим, инструментальным и специальным исследованиям, биохимическим показателям и психосоциальной оценке потенциальных прижизненных доноров в разных центрах трансплантации могут различаться. Анатомия печени оценивается с помощью стандартного УЗИ и допплерографии с особым акцентом на состоянии паренхимы печени. При УЗИ определяются степень стеатоза и наличие дополнительных образований, ход, количество и диаметр печеночных вен, наличие ДПВ и значимых притоков СПВ [13]. Выполнение компьютерной томографии с трехфазным контрастированием особенно важно для оценки анатомии печеночных вен (рис. 19.2, 19.3), вариантной анатомии воротной вены (рис. 19.4, 19.5), оценки объема трансплантата и остаточного объема печени. Магнитно-резонансная томография позволяет детально оценить сосудистую архитектонику, а магнитно-резонансная холангиопанкреатография — анатомию желчевыводящих путей. Особое внимание следует уделить выявлению всех аномалий билиарного дерева, включая ход задней ветви от С VI и С VII (рис. 19.6). В работе Jeon et al. (2013) была предложена новая клиническая классификация желчных протоков, основанная на анатомических особенностях топографии правого заднего желчного протока, позволяющая оценить риск развития билиарных осложнений. При инфрапортальном или длинном супрапортальном правом желчном протоке у прижизненных доноров билиарных осложнений не наблюдалось, в то время как при супрапортальной топографии правого желчного протока с коротким каудальным сегментом билиарные осложнения развивались в 52,6% наблюдений [14].





Вариантная внепеченочная анатомия сосудистых и билиарных структур должна быть тщательно определена до эксплантации: отсутствие внепеченочной бифуркации воротной вены является абсолютным противопоказанием для ПГЭ у живого донора. Первостепенное значение для обеспечения безопасности донора имеют определение типа внутрипеченочного ветвления воротной вены, множественного или стандартного артериального кровоснабжения, типа деления печеночной артерии на правую и левую ветви, а также структуры желчевыводящих путей. Следует помнить, что в ряде случаев множественные анатомические варианты исключают безопасное разделение печеночной паренхимы (рис. 19.7).Таким образом, по результатам инструментального обследования и после обсуждения со специалистами по лучевой диагностике хирурги-трансплантологи могут планировать технику разделения печеночной паренхимы и стратегию сосудистой и билиарной реконструкции.

19.4. Трансплантат правой доли или трансплантат левой доли?
Первые серии ТПЖД были сфокусированы на трансплантации левого латерального сектора реципиентам детского возраста, изначально находившимся в «листе ожидания» в неблагоприятном положении. ПГЭ, выполняемая при ТПЖД взрослому реципиенту, характеризуется более высоким риском развития посттрансплантационных осложнений и летального исхода в сравнении с резекцией левого латерального сектора для трансплантации реципиенту детского возраста, а также с левосторонней гемигепатэктомией для трансплантации взрослому реципиенту. Однако при оценке конкурирующих рисков у реципиентов правой или левой доли печени отмечается более высокая частота развития стойких нарушений функций у пациентов после трансплантации левой доли [15]. Компьютерная томография с 3D-реконструкцией широко используется в клинической практике для оценки необходимого объема трансплантата. При анализе литературных источников было установлено, что отношение массы трансплантата к массе тела реципиента более 0,8% и отношение массы трансплантата к объему стандартной печени более 40% являются безопасными размерными показателями трансплантата для предотвращения развития синдрома недостаточного размера. Частота возникновения синдрома недостаточного размера также зависит от ряда других факторов, обусловленных наличием выраженной портальной гипертензии. Реципиенты с печеночным венозным градиентом давления более 15 мм рт.ст., по-видимому, подвергаются более высокому риску развития синдрома недостаточного размера [16, 17]. Авторы руководства, основываясь на данных проведенных исследований, рекомендуют использовать (при отсутствии значимых противопоказаний) для трансплантации взрослым реципиентам трансплантат правой доли, поскольку в их опыте практически во всех случаях соотношение массы трансплантата к массе тела реципиента и соотношение массы трансплантата к объему стандартной печени составляли более 1% и более 40% соответственно для всех реципиентов.
19.5. Правосторонняя гемигепатэктомия: техника открытой операции
Несмотря на то что ПГЭ у живых доноров является почти стандартизированной операцией, некоторые технические моменты все еще остаются дискутабельными. В течение 1990-х гг. наиболее обсуждаемым был вопрос о том, должна ли СПВ отходить к трансплантату правой доли. Тщательная оценка должна быть основана на детальном предоперационном изучении анатомии печени для каждого отдельного донора, включая печеночную артерию, воротную вену, печеночные вены и желчные протоки [18–20]. Относительными противопоказаниями для выполнения ПГЭ служат наличие множественных и мелких печеночных артерий, а также тип ветвления воротной вены, требующий реконструкции (см. рис. 19.4). Отсутствие внепеченочной бифуркации воротной вены является абсолютным противопоказанием для прижизненного донорства фрагмента печени.
Лапаротомию у донора осуществляют путем правостороннего подреберного доступа, продленного вертикально до мечевидного отростка. Пересекают серповидную связку и визуализируют борозду между ППВ и СПВ путем диссекции окружающей соединительной ткани. Левую треугольную и печеночно-желудочную связки не пересекают, поскольку это может привести к чрезмерной мобильности левой доли печени донора с возможным перекрутом или кинкингом сосудов и нарушением венозного оттока. Выполняют холецистэктомию, после чего во многих центрах трансплантации производится интраоперационная холангиография для уточнения билиарной анатомии. Это касается уровня формирования общего печеночного протока, наличия, количества и размеров любых аберрантных сегментарных желчных протоков от правой доли, впадающих в левый печеночный проток. Множественные билиарные протоки могут потребовать формирования дополнительного анастомоза или реконструкции на этапе back-table. В некоторых других центрах предпочитают вводить в правый печеночный проток пластиковый зонд в качестве анатомического ориентира для предотвращения нецелесообразной диссекции в этой области. Выполняют выделение и мобилизацию правой печеночной артерии от печеночной паренхимы к правой стенке общего желчного протока. Необходимо деликатное выполнение диссекции в области ворот печени, чтобы избежать скелетирования общего желчного протока с последующим возможным развитием у донора ишемической стриктуры желчевыводящих путей. После мобилизации правой печеночной артерии идентифицируют воротную вену, обходят держалкой и мобилизуют на максимальном протяжении для обеспечения комфортного наложения сосудистых зажимов (рис. 19.8).



Мобилизацию правой доли печени осуществляют путем пересечения ее сращений с диафрагмой, правой треугольной и венечной связок печени. В 2/3 случаев производится рассечение правой гепатокавальной связки (связки Макуучи), что позволяет полностью контролировать ППВ, которую обходят держалкой. Позадипеченочный отдел НПВ обнажают и мобилизуют с сохранением всех значительных (диаметром более 4 мм) ДПВ от правой доли (рис. 19.9). Интраоперационное УЗИ выполняется для оценки хода и соотношения СПВ и ППВ в месте их впадения в НПВ, а также для определения наличия и гемодинамической значимости всех печеночных венозных ветвей от правого парамедианного сектора (С V и С VIII) в СПВ (рис. 19.10) и всех ДПВ от правого латерального сектора (С VI и С VII) в НПВ. Поскольку все перечисленные вены играют определенную роль в обеспечении венозного оттока, их лигирование и перевязка могут стать причиной венозного застоя в органе после трансплантации. Полезным в оценке гемодинамической значимости ДПВ от С VI и С VII является временное пережатие этих вен с последующей оценкой изменения цвета паренхимы правой доли, что позволяет определить возможность их безопасного лигирования и пересечения. В случае выявления признаков венозного застоя при временном пережатии ДПВ от С VI и С VII в ходе последующей трансплантации необходимо формирование дополнительных анастомозов этих вен для обеспечения адекватного венозного оттока от трансплантата.
Линия рассечения печеночной паренхимы определяется с помощью предварительного деликатного пережатия (примерно на 1 мин) правой печеночной артерии и правой воротной вены атравматическим сосудистым зажимом типа «бульдог» для выявления демаркационной линии между правой и левой долей печени, которую затем размечают с помощью электрокоагулятора (рис. 19.11). При интраоперационном УЗИ идентифицируют внутрипеченочный ход СПВ, а линия рассечения паренхимы проводится на 1 см вправо от нее. Это позволяет сохранить СПВ с левой долей и обеспечить адекватный венозный отток от С IVa и С IVb, предотвращая послеоперационную дисфункцию оставшейся части печени донора. Значительное несоответствие демаркационной линии и анатомической плоскости деления правой и левой доли печени из-за малого диаметра ППВ может свидетельствовать о ведущей роли СПВ в венозном оттоке. Это диктует необходимость оставить СПВ с трансплантатом правой доли, чего, однако, авторами руководства никогда не проводилось. В подобных ситуациях мы предпочитаем формировать дополнительные анастомозы с СПВ всех печеночных венозных ветвей (V5, V8) и всех ДПВ (V6, V7) [19, 21, 22].

Рассечение печеночной паренхимы начинают от ее переднего края и продолжают в краниальном направлении к воротам печени. Для предотвращения ишемии и дисфункции правой и левой доли пережатие печеночных сосудов не производится. Важным инструментом, препятствующим пересечению внутрипеченочных сосудов, является кавитационный ультразвуковой хирургический аспиратор (CUSA). Сосуды диаметром более 4 мм лигируют и пересекают, а более мелкие сосуды коагулируют. С помощью биполярной коагуляции возможно обеспечение дополнительного гемостаза рассеченных поверхностей печени. Используя подобную комбинацию инструментов, рассечение печеночной паренхимы можно выполнить менее чем за 2 ч с минимальной кровопотерей. Для сохранения корректной плоскости рассечения печеночной паренхимы может быть полезно выполнение «хэнгинг-маневра» (рис. 19.12) — проведения вдоль позадипеченочного отдела НПВ широкой держали с выведением ее между устьем ППВ и стволом СПВ и левой печеночной вены, после чего держалка выводится в области ворот печени позади воротной пластинки. «Хэнгинг»-маневр чрезвычайно полезен для оттеснения сосудов от плоскости рассечения печеночной паренхимы, проходящей вдоль срединной воротной щели (по ЛРК). Во время диссекции паренхимы хирург предупреждает повреждение НПВ, разместив пальцы левой руки позади правой доли печени. СПВ должна быть сохранена с левой долей, а венозные ветви от С V и С VIII, впадающие в СПВ, идентифицируют и мобилизуют. После этого их пережимают на 1–2 мин — отсутствие изменения цвета паренхимы может свидетельствовать о незначительной роли этих ветвей в венозном оттоке, они могут быть перевязаны и пересечены (рис. 19.13). Гемодинамическая оценка значимости всех печеночных венозных ветвей к СПВ (V5, V8) и всех ДПВ (V6, V7) также может быть произведена с помощью 5-минутного теста, предложенного Makuuchi и Sugawara [21]. Они являются приверженцами выполнения обширной реконструкции всех вен, осуществляющих отток от правого парамедианного сектора, если СПВ не оставляют с правой долей. Интраоперационная ультразвуковая допплерография может быть полезна при оценке гемодинамической значимости одиночной ДПВ после 5-минутного пережатия как печеночной артерии, так и ветвей СПВ. Наличие портального гепатофугального (по направлению к печени) кровотока в парамедианной ветви воротной вены убедительно свидетельствует о необходимости реконструкции окклюзированных парамедианных венозных ветвей.


Все значимые сосуды и желчные протоки клипируют или лигируют тонкой нитью Prolene. Перед окончанием диссекции печеночной паренхимы правый печеночный проток идентифицируют и пересекают ножницами на удалении от бифуркации и левого печеночного протока. Моно- или биполярную коагуляцию в данном случае не используют, предотвращая возможное повреждение протока с развитием билиарной стриктуры впоследствии. Затем культю правого печеночного протока ушивают нитью Prolene 5/0.
После выделения и пересечения правого печеночного протока правая доля остается связанной с левой только за счет ППВ, правой воротной вены, правой печеночной артерии и 1–2 венозных ветвей к СПВ или ДПВ к НПВ (рис. 19.14).

В этот момент производится гепаринизация донора из расчета 40 МЕ/кг массы тела, а перечисленные сосудистые структуры пережимают и пересекают в следующем порядке: правая печеночная артерия, правая воротная вена, венозные ветви к СПВ или ДПВ к НПВ и последней — ППВ. Проксимальную культю правой печеночной артерии оставляют достаточной длины для закрытия, а дистальную культю не перевязывают для сохранения обратного кровотока. Затем проксимальную культю правой воротной вены ушивают линейным сосудистым степлером, а дистальную оставляют пережатой сосудистым зажимом типа «бульдог». Важно не накладывать степлер слишком близко к бифуркации воротной вены. Все венозные ветви к СПВ или ДПВ к НПВ лигируют и пересекают. Проксимальную культю ППВ ушивают линейным сосудистым степлером. Дистальную культю оставляют пережатой сосудистым зажимом типа «бульдог». После этого трансплантат правой доли печени извлекают из брюшной полости донора. Предтрансплантационную обработку фрагмента печени на отдельном операционном столе начинают с флашинга холодным консервирующим раствором низкой вязкости (рис. 19.15).

Проксимальную культю правой печеночной артерии ушивают. Культи ППВ и правой воротной вены донора также ушивают или используют сосудистый линейный степлер. Проксимальная культя правого печеночного протока ушивается непрерывным швом монофиламентной нитью 5/0. После контроля гемостаза через культю пузырного протока производят дренирование желчевыводящих путей донора и вводят по дренажу 10 мл изотонического раствора натрия хлорида для оценки герметичности. При выявлении дефектов накладывают дополнительные швы монофиламентной нитью, после чего повторяют введение небольшого количества изотонического раствора натрия хлорида в желчевыводящие пути для подтверждения их герметичности. Дренирование брюшной полости осуществляют установкой дренажей к сальниковому (винслову) отверстию и к пересеченной поверхности печени.
19.6. Подготовка трансплантата правой доли на этапе back-table
Выполняют деликатный флашинг правого печеночного протока консервирующим раствором, избегая его повреждения иглой-канюлей, взвешивают трансплантат или определяют его объем, измеряя объем вытесненной жидкости. Печеночный трансплантат погружают в емкость с шугой и холодным раствором для перфузии, после чего выполняют перфузию фрагмента через воротную вену консервирующим раствором низкой вязкости.
19.6.1. Реконструкция добавочных печеночных вен
Ключевым вопросом при пересадке правой доли печени от прижизненного донора является включение СПВ в состав трансплантируемого фрагмента исходя из соображений безопасности донора. СПВ обеспечивает венозный отток от правого парамедианного сектора и имеет важное значение для обеспечения адекватной функции трансплантата правой доли [19, 20, 23]. При сохранении СПВ с левой долей печени донора авторы руководства выполняют реконструкцию всех венозных ветвей от С V и С VIII диаметром более 4 мм. Положительный тест Макуучи свидетельствует о ведущей роли СПВ в венозном оттоке от правого парамедианного сектора [18]. Здесь могут быть полезны различные варианты интерпозиционной венозной реконструкции с помощью аутовенозных графтов (из расширенных венозных коллатералей или большой подкожной вены реципиента) или венозных аллографтов от ПД (в течение 48 ч от момента эксплантации) (рис. 19.16). В большинстве случаев интерпозиционный анастомоз формируют по типу «конец в конец» с V5 и/или V8 с последующим анастомозом с объединенным устьем СПВ и левой печеночной веной на этапе back-table. Или же — уже на этапе трансплантации, с позадипеченочным сегментом НПВ реципиента с помощью двух непрерывных швов полипропиленовыми нитями 6/0. При близком расположении V8 и ППВ возможно их объединение. В случае удвоения V5 также производится объединение их устьев; если же такой способ венопластики не представляется возможным, то более крупную из ветвей V5 анастомозируют с интерпозиционным венозным графтом по типу «конец в конец», а затем накладывают анастомоз по типу «конец в конец» с НПВ [22]. В некоторых ситуациях, требующих множественных реконструкций венозных ветвей к СПВ, для преодоления конкретных интраоперационных сложностей может потребоваться принятие нестандартных решений.

19.6.2. Реконструкция правой печеночной артерии
Важнейшим этапом подготовки трансплантата правой доли является реконструкция правой печеночной артерии [23]. Определение артерии реципиента, подходящей для формирования анастомоза, осуществляется на основании оценки ее проходимости, соответствия диаметра, протяженности и расположения. Для преодоления несоответствия диаметров артерий печеночного трансплантата и реципиента были предложены различные методики с использованием как непрерывных, так и одиночных швов. Высокое выделение дистальных мелких артерий в области ворот печени обеспечивает их мобилизацию и возможность обеспечения оптимального соответствия диаметров сшиваемых сосудов. Для профилактики отслойки интимы рекомендуется использовать микрохирургические сосудистые клипсы. Анастомоз накладывают с помощью бинокулярной лупы-очков (увеличение ×2,5) по принципу «парашюта»: преформирование обвивного шва полипропиленовой нитью 8/0 на определенном участке анастомоза при расположении сосудов на расстоянии друг от друга. Техника непрерывного сосудистого шва по принципу «парашюта» в сравнении с одиночными швами позволяет избежать избыточных манипуляций с артериальной стенкой, а использование бинокулярной лупы-очков способствует прецизионному формированию анастомоза.
19.6.3. Билиарная реконструкция
Частота развития билиарных осложнений в ранние и отдаленные сроки после трансплантации правой доли печени от живого донора остается достаточно высокой и составляет, по данным различных центров, от 5,3 до 40,6% [24]. В последнее десятилетие технические аспекты реконструкции желчевыводящих путей обсуждаются в контексте их влияния на посттрансплантационные билиарные осложнения, остающиеся ахиллесовой пятой ТПЖД. Предпочтительный способ билиарной реконструкции до настоящего времени не определен, однако формирование анастомозов желчевыводящих путей по типу «конец в конец» считается способом выбора даже при наличии множественных желчных протоков. Тем не менее при близком расположении устьев двух желчных протоков (около 20% всех наблюдений) возможно объединение их устьев для формирования анастомоза с общим желчным протоком реципиента по типу «конец в конец» (рис. 19.17). При значительном расстоянии между устьями протоков трансплантата следует сформировать билиодигестивный анастомоз на выключенной по Ру петле тонкой кишки (рис. 19.18).


После окончания обработки на этапе back-table трансплантат оставляют погруженным в стерильный холодный раствор.
В заключение следует отметить, что сохраняющийся дефицит пригодных для трансплантации органов от ПД позволяет рассматривать ТПЖД как значительный ресурс для помощи пациентам с терминальной стадией заболеваний печени. При этом основной задачей является соблюдение баланса риска для донора по сравнению с результатом трансплантации у реципиента. Возможными направлениями дальнейших исследований представляются обеспечение безопасности прижизненного донора в раннем и отдаленном послеоперационном периоде, коррекция у него гиперкоагуляционного синдрома, а также профилактика синдрома недостаточного размера, нарушений венозного оттока и тромбоза печеночных артерий у реципиентов [25].
Литература
-
Marsh J.W., Gray E., Ness R., Starzl T.E. Complications of right lobe living donor liver transplantation // J. Hepatol. 2009. Vol. 51. P. 715–724.
-
Mathur A.K., Ashby V.B., Fuller D.S. et al. Variation in access to the liver transplant waiting list in the United States // Transplantation. 2014. Vol. 98. P. 94–99.
-
Global observatory on donation and transplantation. Organ donation and transplantation activities — 2012. URL: http://issuu.com/o-n- t/docs/2012ad (date of access July 6, 2015).
-
Miller C.M., Smith M.L., Diago Uso T. Living donor liver transplantation: ethical considerations // Mt. Sinai J. Med. 2012. Vol. 79. P. 214–222.
-
Siegler M., Simmerling M.C., Siegler J.H., Cronin D.C. 2nd Recipient deaths during donor surgery: a new ethical problem in living donor liver transplantation (LDLT) // Liver Transpl. 2006. Vol. 12. P. 358–360.
-
Raia S., Nery J.R., Mies S. Liver transplantation form live donors // Lancet. 1989. Vol. 2. P. 497.
-
Strong R., Ong T.H., Pillay P., Wall D., Balderson G., Lynch S. A new method of segmental orthotopic liver transplantation in children // Surgery. 1988. Vol. 104. P. 104–107.
-
Broelsch C.E., Whitington P.F., Emond J.C. et al. Liver transplantation in children from living related donors // Ann. Surg. 1991. Vol. 214. P. 428–439.
-
Tanaka K., Uemoto S., Tokunaga Y. et al. Surgical techniques and innovations in living related liver transplantation // Ann. Surg. 1993. Vol. 217. P. 82–91.
-
Yamaoka Y., Washida M., Honda K. et al. Liver transplantation using a right lobe graft from a living related donor // Transplantation. 1994. Vol. 57. P. 1127–1130.
-
Marcos A., Fisher R.A., Ham J.M. et al. Right lobe living donor liver transplantation // Transplantation. 1999. Vol. 68. P. 798–803.
-
Nadalin S., Bockhorn M., Malagó M. et al. Living donor liver transplantation // HPB (Oxford). 2006. Vol. 8. P. 10–21.
-
Varotti G., Gondolesi G.E., Goldman J. et al. Anatomic variations in right liver living donors // J. Am. Coll. Surg. 2004. Vol. 198. P. 577–582.
-
Jeon Y.M., Lee K.W., Yi N.J. et al. The right posterior bile duct anatomy of the donor is important in biliary complications of the recipients after living-donor liver transplantation // Ann. Surg. 2013. Vol. 257. P. 702–707.
-
Roll G.R., Parekh J.R., Parker W.F. et al. Left hepatectomy versus right hepatectomy for living donor liver transplantation: shifting the risk from the donor to the recipient // Liver Transpl. 2013. Vol. 19. P. 472–481.
-
Chan S.C., Liu C.L., Lo C.M. et al. Estimating liver weight of adults by weight and gender // World J. Gastroenterol. 2006. Vol. 12. P. 2217–2222.
-
Hill M.J., Hughes M., Jie T., Cohen M. et al. Graft weight/recipient weight ratio: how well does it predict outcome after partial liver transplants? // Liver Transpl. 2009. Vol. 15. P. 1056–1062.
-
Ghazaly M., Badawy M.T., El-Din Soliman H. et al. Venous outflow reconstruction in adult living donor liver transplant: outcome of a policy for right lobe grafts without the middle hepatic vein // HPB Surg. 2013. Article ID 280857. P. 11. URL: http://dx.doi.org/10.1155/2013/280857
-
Radtke A., Schroeder T., Sotiropoulos G.C. et al. Anatomical and physiological classification of hepatic vein dominance applied to liver transplantation // Eur. J. Med. Res. 2005. Vol. 10. P. 187–194.
-
Grewal H.P., Shokouh-Amiri M.H., Vera S. et al. Surgical technique for right lobe adult living donor liver transplantation without venovenous bypass or portocaval shunting and with duct-to-duct biliary reconstruction // Ann. Surg. 2001. Vol. 233. P. 502–508.
-
Makuuchi M., Sugawara Y. Technical progress in living donor liver transplantation for adults // HPB (Oxford). 2004. Vol. 6, N 2. P. 95–98.
-
Kim J.D., Choi D.L., Han Y.S. Simplified one orifice venoplasty for middle hepatic vein reconstruction in adult living donor liver transplantation using right lobe grafts // Clin. Transplant. 2014. Vol. 28. P. 561–568.
-
Amin A.A., Kamel R., Hatata Y. et al. Crucial issues of hepatic artery reconstruction in living donor liver transplantation: our experience with 133 cases at Dar Al-Fouad Hospital, Egypt // J. Reconstr. Microsurg. 2009. Vol. 25. P. 307–312.
-
Wang S.F., Huang Z.Y., Chen X.P. Biliary complications after living donor liver transplantation // Liver Transpl. 2011. Vol. 17. P. 1127–1136.
-
Shimul A., Shah M.D., Gary A. et al. Adult-to-adult living donor liver transplantation // Can. J. Gastroenterol. 2006. Vol. 20. P. 339–343.
-
Nakamura T. Anatomical variations and surgical strategies in right lobe living donor liver transplantation: lesson from 120 cases // Transplantation. 2002. Vol. 73. P. 1896–1903.
Глава 20. Лапароскопическая левосторонняя латеральная секторэктомия и левосторонняя гемигепатэктомия у прижизненных доноров. Роберто Иван Троизи, Андреа Гатти
Электронные дополнительные материалы. Онлайн-версия этой главы (DOI: https:// doi.org/10.1007/978-3-319-28416-3_20) содержит дополнительные материалы, доступныеавторизованным пользователям. R.I. Troisi, MD, PhD, FEBS, A. Gatti, MD Department of General, HPB and Liver Transplantation Surgery, Ghent University Hospital Medical School, De Pintelaan 185, Ghent 9000, Belgium; e-mail: roberto.troisi@ugent.be
20.1. Введение
В настоящее время минимально инвазивная хирургия широко применяется для лечения различных заболеваний печени. По сравнению с открытой хирургией лапароскопические операции характеризуются низкой частотой послеоперационных осложнений и сокращением сроков восстановления пациентов [1–3]. Со временем эксплантация фрагмента печени у прижизненных доноров стала возможна с использованием лапароскопической техники [4–6]. Первая подобная операция была произведена в 2002 г., и с тех пор практика лапароскопических гемигепат- и секторэктомий продолжает расширяться, несмотря на характерные технические сложности и необходимость специфических хирургических навыков [4]. В последующие годы в центрах трансплантации гемигепат- и секторэктомии у живых доноров были выполнены либо полностью лапароскопическим, либо так называемым гибридным способом (включая мануально-ассистированную технику или однопортовый доступ). Различные типы изъятия фрагмента печени были использованы: левосторонняя латеральная секторэктомия, левосторонняя и правосторонняя гемигепатэктомия [5–13]. Ввиду небольшого числа пациентов и самих публикаций результаты сравнительных анализов открытых и лапароскопических эксплантаций фрагментов печени у живого донора не позволяют сделать вывод о том, какая из методик более безопасна для донора [14–16]. Согласно Второй согласительной конференции по вопросам лапароскопической хирургии печени, подобные операции следует классифицировать как Balliol 2b, что требует институционального контроля и ведения реестра для определения результатов раннего и отдаленного послеоперационного периода как у донора, так и у реципиента (равновесие риска) [17].
20.2. Хирургическая техника
(a) Левосторонняя латеральная секторэктомия
Донор на операционном столе в положении Фаулера с раздвинутыми ногами. В верхних брюшных квадрантах устанавливают 4 троакара, делают надлобковый разрез длиной 8–10 см. Для создания пневмоперитонеума используют систему GelPort (Applied Medical, США) (рис. 20.1). После идентификации СПВ с помощью интраоперационного УЗИ пересекают левую треугольную и Аранциеву связки, таким образом обнажая пространство ниже общего ствола СПВ и ЛПВ. Холецистэктомию в большинстве случаев не выполняют. Приступают к диссекции ворот печени и выделению левой печеночной артерии (сохраняя артериальную ветвь к С IV) и левой воротной вены с помощью ножниц и биполярного пинцета. Рассечение печеночной паренхимы выполняют с помощью лапароскопического ультразвукового диссектора без применения «хэнгинг»-маневра. Плоскость рассечения паренхимы может проходить на уровне круглой связки (гамбургская техника) или на 1 см медиальнее от нее (техника Tanaka). Разделение паренхимы по гамбургской технике позволяет в большинстве случаев сохранить артерию и желчный проток С IV для формирования в последующем билиарного анастомоза (рис. 20.2) [2, 3].


При рассечении паренхимы на внутрипеченочные сосуды систематически накладывают нерассасывающиеся клипсы (Hem-o-lok, TFX Medical Ltd., Durham, США). Линия пересечения левого печеночного протока проходит близко к синусу Рекса и не требует интраоперационной холангиографии, поскольку находится на удалении от протока С IV (особенно при использовании гамбургской техники). Левый печеночный проток клипируют парой титановых клипс или прошивают нерассасывающимся шовным материалом. Затем производят клипирование и пересечение ветви левой воротной вены к хвостатой доле и желчного протока. После системной гепаринизации (5000 МЕ) левую печеночную артерию клипируют и пересекают. С помощью линейного степлера пересекают левую воротную вену (линейные картриджи Endo TA 30 мм, Covidien, Мансфилд, США) и общий ствол ЛПВ и СПВ (изгибаемые сосудистые картриджи Endo GIA 60 мм, Covidien), после чего выполняют эксплантацию трансплантата левой доли через надлобковый разрез. На этапе back-table производят флашинг трансплантата 2 л раствора HTK.
(б) Левосторонняя гемигепатэктомия с мобилизацией СПВ
Для лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии необходима более тщательная предоперационная оценка потенциальных доноров, завершающим этапом которой является 3D-реконструкция объема трансплантата и его сосудистой анатомии. Авторы руководства с этой целью используют Synapse Vincent 3D Fuji (Япония) (рис. 20.3). Клинико-демографические характеристики доноров и трансплантатов печени представлены в табл. 20.1 и 20.2. При лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии обычно используют пять троакаров (четыре порта 12 мм и один 5 мм) из-за необходимости замены инструмента CUSA в соответствии с углом плоскости резекции (рис. 20.4). В отличие от левосторонней латеральной секторэктомии общий ствол СПВ и ЛПВ обходят толстой держалкой с помощью изогнутого диссектора «Голдфингер» (Ethicon Endo Surgery, Кливленд, США) для выполнения «хэнгинг»-маневра при разделении печеночной паренхимы вблизи НПВ (рис. 20.5). Необходима интраоперационная холангиография для идентификации точки пересечения левого печеночного протока. С этой целью возможно также применение флуоресцентной визуализации в околоинфракрасной области спектра с помощью индоцианина зеленого (NIR/ICG). Точку пересечения левого печеночного протока помечают титановой клипсой в качестве ориентира [18, 19]. Рассечение паренхимы производят после холецистэктомии и интраоперационного УЗИ притоков СПВ от переднего парамедианного сектора вдоль ЛРК. Выделение СПВ продолжают до идентификации и мобилизации общего ствола СПВ и ЛПВ. Последующие этапы операции идентичны описанным для левосторонней латеральной секторэктомии. В заключение выполняют холангиографию и комбинированный тест с метилтиониния хлоридом (Метиленовым синим♠) для подтверждения целостности билиарного дерева правой доли (рис. 20.6).




Пол, м/ж | Возраст, лет | ИМТ | Время анестезии, мин | Время операции, мин | Время имплантации, мин | Объем кровопотери, мл | Срок тепловой ишемии, мин |
---|---|---|---|---|---|---|---|
4/7 |
41±9a |
24±3,8 |
516±83 |
476±64 |
149±29 |
105±81 |
4±2,3 |
а Приведены средние значения ± стандартное отклонение.
Удвоение печеночной артерии | Стандартная билиарная анатомия | Объем тр-та (GV)a | Фактический объем тр-та | Остаточный объем печени, % | Масса тр-та (GW), г | Фактическое соотношение GRBWR |
---|---|---|---|---|---|---|
3/8 |
5/6 |
434±92 |
395±84 |
69±5 |
348±67 |
0,73±0,3 |
GV graft volume (объем трансплантата),
GW graft weight (масса трансплантата),
GRBWR graft-recipient weight ratio (отношение массы трансплантата к массе тела реципиента)Приведены средние значения ± стандартное отклонение.
а Рассчитанный объем трансплантата.
К данному разделу прилагается видеодемонстрация лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии у живого донора (видео 20.1).
20.3. Результаты
На сегодняшний день не отмечено каких-либо послеоперационных осложнений или ухудшения здоровья у 11 доноров, о которых сообщалось в этой серии наблюдений. Конверсия (срединная мини-лапаротомия) была выполнена только в одном случае из-за сложностей при выделении левого печеночного протока. Не было зафиксировано ни одного эпизода кровотечения или формирования желчного свища. У одного донора в отдаленном послеоперационном периоде была выполнена операция по поводу увеличения уровня холестатических ферментов при нормальном содержании сывороточного билирубина (тип билиарной анатомии С1). Магнитно-резонансная холангиопанкреатография подтвердила секторальное расширение задней ветви правого печеночного протока от С VI и С VII. Несмотря на отсутствие какой-либо симптоматики, после неудачной попытки чрескожного стентирования было принято решение о внутрикишечном дренировании этого протока на выключенной по Ру петле тонкой кишки. Средняя продолжительность пребывания доноров в стационаре составила 4–5 сут [11]. Клинико-демографические характеристики доноров и трансплантатов печени представлены в табл. 20.1 и 20.2.
20.4. Обсуждение результатов
По результатам систематического обзора и метаанализа публикаций о результатах лапароскопической гемигепатэктомии у живого донора не было выявлено различий в безопасности для здоровья донора между открытой и минимально инвазивной техниками. Кроме того, был обнаружен меньший объем кровопотери при лапароскопической левосторонней латеральной секторэктомии для последующей трансплантации реципиенту детского возраста [20]. Сравнительный анализ течения послеоперационного периода у живых доноров печени и почек продемонстрировал значительно меньшее количество незначительных осложнений у доноров печени в сравнении с донорами почек и одинаковое число в обеих группах серьезных осложнений [21]. Это исследование является первой валидацией лапароскопической гемигепатэктомии у живого донора, предполагающей рассматривать такой подход как стандартную технику, подобно лапароскопической эксплантационной нефрэктомии у прижизненного донора почки.
Иная ситуация складывается в отношении лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии у живых доноров. Впервые данная операция была продемонстрирована авторами этой главы в 2012 г. на Конгрессе Международной гепатопанкреатобилиарной ассоциации (IHPBA, International Hepato-Pancreato-Biliary Association) в Париже (Франция) [22]. В настоящее время признано, что левосторонняя гемигепатэктомия характеризуется более низким уровнем послеоперационной смертности и меньшим количеством осложнений у донора по сравнению с ПГЭ [23, 24]. По этой причине одним из доводов в пользу более широкого применения этой операции служит смещение рисков со стороны донора в сторону реципиента при выполнении левосторонней гемигепатэктомии для трансплантации взрослому реципиенту. В западноевропейских странах, где ТПЖД не является методом выбора, продолжается тщательное изучение частоты и характера послеоперационных осложнений у прижизненных доноров печени. Концептуально лапароскопическая техника эксплантации привлекательна тем, что она потенциально может еще больше снизить количество послеоперационных осложнений у доноров. К сожалению, необходимо учитывать два основных недостатка: длительную кривую обучения лапароскопическим навыкам и специфический опыт трансплантации парциальных трансплантатов печени, полученных от живых доноров. Лапароскопическую гемигепатэктомию у живого донора следует рассматривать как один из сложнейших видов лапароскопических вмешательств. В свою очередь кривая обучения напрямую зависит от уже имевшихся лапароскопических навыков хирурга, что позволяет облегчить его обучение гепатопанкреатобилиарной лапароскопической хирургии (при условии достаточного опыта открытой гепатопанкреатобилиарной и трансплантационной хирургии). При обосновании малого расчетного объема трансплантата, полученного после лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии у живого донора, учитываются два критических момента: малый диаметр левой печеночной артерии и точная локализация места пересечения левого печеночного протока. Первое условие может способствовать увеличению риска повреждения интимы во время диссекции, а второе — развитию позднего билиарного стеноза у доноров, особенно в случае нестандартной анатомии. Связь между названными осложнениями и лапароскопической техникой эксплантации на данном этапе не может быть ни подтверждена, ни опровергнута. В настоящее время основной задачей при выполнении лапароскопических операций у живых доноров, по мнению авторов главы, является оптимальная интраоперационная визуализация билиарной анатомии и определения места пересечения соответствующего печеночного протока, в связи с чем интраоперационная холангиография признается обязательной для установления точки пересечения. Кроме того, с этой целью возможно выполнение флуоресцентной визуализации в околоинфракрасной области спектра с помощью индоцианина зеленого (NIR/ICG), однако доза, направление и время контрастирования на сегодняшний день не вполне определены [19].
В заключение следует отметить, что небольшой опыт авторов главы доказывает целесообразность лапароскопической левосторонней секторэктомии для ТПЖД реципиентам детского возраста и лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии для последующей трансплантации левой доли взрослым реципиентам. Несмотря на постепенное признание лапароскопической левосторонней латеральной секторэктомии у живого донора операцией выбора в центрах трансплантации печени, лапароскопическая левосторонняя гемигепатэктомия все еще далека от стандартизации, а степень ее риска для прижизненных доноров не определена однозначно. Принимая концепцию лапароскопической левосторонней гемигепатэктомии в качестве способа повышения степени безопасности для донора в отношении послеоперационных осложнений, дополнительная оценка ее потенциала и анализ долгосрочных результатов у доноров и реципиентов требуют проведения дальнейших исследований в этом направлении.
Литература
-
Koffron A.J., Auffenberg G., Kung R., Abecassis M. Evaluation of 300 minimally invasive liver resections at a single institution: less is more // Ann. Surg. 2007. Vol. 246. P. 385–392.
-
Montalti R., Berardi G., Laurent S. et al. Laparoscopic liver resection compared to open approach in patients with colorectal liver metastases improves further resectability: oncological outcomes of a case–control matched-pairs analysis // Eur. J. Surg. Oncol. 2014. Vol. 40. P. 536–544.
-
Simillis C., Constantinides V.A., Tekkis P.P. et al. Laparoscopic versus open hepatic resections for benign and malignant neoplasms: a meta-analysis // Surgery. 2007. Vol. 141. P. 203–211.
-
Cherqui D., Soubrane O., Husson E. et al. Laparoscopic living donor hepatectomy for liver transplantation in children // Lancet. 2002. Vol. 359. P. 392–396.
-
Koffron A.J., Kung R., Baker T. et al. Laparoscopic-assisted right lobe donor hepatectomy // Am. J. Transplant. 2006. Vol. 6. P. 2522–2525.
-
Kurosaki I., Yamamoto S., Kitami C. et al. Video-assisted living donor hemihepatectomy through a 12-cm incision for adult-to-adult // Surgery. 2006. Vol. 139. P. 695–703.
-
Scatton O., Katsanos G., Boillot O. et al. Pure laparoscopic left lateral sectionectomy in living donors: from innovation to development in France // Ann. Surg. 2015. Vol. 261. P. 506–512.
-
Suh K.S., Yi N.J., Kim T. et al. Laparoscopy-assisted donor right hepatectomy using a hand port system preserving the middle hepatic vein branches // World J. Surg. 2009. Vol. 33. P. 526–533.
-
Choi H.J., You Y.K., Na G.H. et al. Single-port laparoscopy-assisted donor right hepatectomy in living donor liver transplantation: sensible approach or unnecessary hindrance? // Transplant Proc. 2012. Vol. 44. P. 347–352.
-
Yu Y.D., Kim K.H., Jung D.H. et al. Laparoscopic live donor left lateral sectionectomy is safe and feasible for pediatric living donor liver transplantation // Hepatogastroenterology. 2012. Vol. 59. P. 2445–2449.
-
Troisi R.I., Wojcicki M., Tomassini F., Houtmeyers P., Vanlander A., Berrevoet F. et al. Pure laparoscopic full left living donor hepatectomy for calculated small-for-size LDLT in adults: proof of concept // Am. J. Transplant. 2013. Vol. 13, N 9. P. 2472–2478.
-
Soubrane O., Perdigao Cotta F., Scatton O. Pure laparoscopic right hepatectomy in a living donor // Am. J. Transplant. 2013. Vol. 13. P. 2467–2471.
-
Samstein B., Adam Griesemer A., Cherqui D. et al. Fully laparoscopic leftsided hepatectomy is safe and associated with short hospital stay and earlier return to work: a comparative study // Liver Transpl. 2015. Vol. 21. P. 768–773.
-
Kasahara M., Sakamoto S., Shigeta T. et al. A 7 cm upper midline incision for living donor left lateral hepatectomy: single-center consecutive 7O donor experience // Transplantation. 2012. Vol. 93, N 8. P. e33–e34.
-
Han H.S., Cho J.Y., Yoon Y.S. et al. Total laparoscopic living donor right hepatectomy // Surg. Endosc. 2015. Vol. 29. P. 184.
-
Zhang X., Yang J., Yan L. et al. Comparison of laparoscopy-assisted and open donor right hepatectomy: a prospective case-matched study from china // J. Gastrointest. Surg. 2014. Vol. 18, N 4. P. 744–750.
-
Wakabayashi G., Cherqui D., Geller D.A. et al. Recommendations for laparoscopic liver resection. A report from the Second International consensus conference held in Morioka // Ann. Surg. 2015. Vol. 261, N 4. P. 619–629.
-
Troisi R.I., Elsheikh Y.M., Shagrani M.A., Broering D. First fully laparoscopic donor hepatectomy for pediatric liver transplantation using the indocyanine green near-infrared fluorescence imaging in the Middle East: a case report // Ann. Saudi Med. 2014. Vol. 34, N 4. P. 354–357.
-
Tomassini F., Scarinci A., Elsheik Y. et al. Indocyanine green near-infrared fluorescence in pure laparoscopic living donor hepatectomy: a reliable road map for intrahepatic ducts? // Acta Chir. Belg. 2015. Vol. 115. P. 2–7.
-
Berardi G., Tomassini F., Troisi R.I. Comparison between minimally invasive and open living donor hepatectomy: a systematic review and meta-analysis // Liver Transpl. 2015. Vol. 21, N 6. P. 738–752. DOI: https://doi.org/10.1002/lt.24119
-
Soubrane O., de Rougemont O., Kim K.H. et al. Laparoscopic living donor left lateral sectionectomy: a new standard practice for donor hepatectomy // Ann. Surg. 2015. Vol. 262. P. 757–763.
-
Troisi R. Adult LDLT with intentional small for size graft following fully laparoscopic living donor left hepatectomy including the middle hepatic vein. URL: www.IHPBA2012.com.
-
Umeshita K., Fujiwara K., Kiyosawa K. et al. Operative morbidity of living liver donors in Japan. Japanese Liver Transplantation Society // Lancet. 2003. Vol. 362, N 9385. P. 687–690.
-
Iida T., Ogura Y., Oike F. et al. Surgery-related morbidity in living donors for liver transplantation // Transplantation. 2010. Vol. 89, N 10. P. 1276–1282.
-
Troisi R.I., Van Huysse J., Berrevoet F. et al. Evolution of laparoscopic left lateral sectionectomy without the Pringle maneuver: through resection of benign and malignant tumors to living liver donation // Surg. Endosc. 2011. Vol. 25, N 1. P. 79–87. DOI: https://doi.org/10.1007/s00464-010-1133-8
-
Rogiers X., Berrevoet F., Troisi R. Comment on outcomes in right liver lobe transplantation: a matched pair analysis by G.K. Bonney et al. // Transpl. Int. 2008. Vol. 21. P. 1045–1051.
Глава 21. Лапароскопическая правосторонняя гемигепатэктомия у прижизненных доноров. Чун Хек Дэвид Квон, Че Вон Чо
C.H.D. Kwon, J.-W. Joh Department of Surgery, Samsung Medical Center Sungkyunkwan University School of Medicine, Seoul, Korea; e-mail: chdkwon@skku.edu
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Рекомендован строгий отбор доноров со стандартной сосудистой и билиарной анатомией.
-
Для упрощения диссекции и мобилизации правой доли печени следует вначале рассечь венечную и правую треугольную связки, после чего, наклонив операционный стол на 15–30° влево и на 10–15° вниз, отвести печень кверху при помощи ретрактора Сноудена–Пенсера (snake retractor), используя круглую связку или желчный пузырь.
-
Для контроля плоскости пересечения печеночного протока производится контрастная холангиография.
-
Пересечение протока следует выполнять между двумя зажимами типа «бульдог» для предотвращения нежелательного кровотечения.
-
Помните о возможности прерывистой подачи воздушной газовой смеси и повышения внутрибрюшного давления для того, чтобы сбалансировать ЦВД при попытке контролировать серьезное кровотечение.
-
Для сокращения срока тепловой ишемии поместите правую долю печени в экстракционный пакет перед пересечением сосудов.
ТПЖД была предложена в качестве альтернативного решения проблемы дефицита донорских органов и стала общепринятой методикой, особенно в регионах с малым количеством ПД. Однако, несмотря на альтруистическую концепцию технологии, существует определенный риск для физического и психического здоровья живых доноров [1, 2]. Известно, что лапароскопические резекции печени способствуют раннему восстановлению и сокращению сроков пребывания пациентов в стационаре, обладают превосходным косметическим эффектом [3]. Более широкому распространению подобных операций у живых доноров препятствуют ее техническая сложность и риск для здоровья и жизни доноров [4]. Лапароскопическая левосторонняя гемигепатэктомия в настоящее время рассматривается в качестве альтернативы открытой эксплантации [5]. Несмотря на более частое использование правой доли для ТПЖД из-за большего объема трансплантата, ПГЭ у живых доноров выполняется в очень немногих центрах ввиду технической сложности и угрозы развития возможных осложнений, а большинство публикаций представляют собой описание клинических наблюдений [6]. В настоящее время для более широкого распространения лапароскопической ПГЭ требуется проведение исследований с большим числом наблюдений наряду с усовершенствованием лапароскопического инструментария и накоплением хирургического опыта.
Прежде чем перейти к более подробному описанию, следует отметить, что все замечания, касающиеся техники операции, описанной в этой главе, основаны исключительно на личном опыте авторов и не исключают других вариантов выполнения этой операции. Кроме того, очень важно, чтобы хирург обладал достаточным опытом как в открытой эксплантации фрагментов печени у живого донора, так и в лапароскопической хирургии печени, прежде чем приступить к лапароскопической гемигепатэктомии у живого донора, выполнение которой не допускает совершения ошибок.
21.1. Критерии отбора доноров
Важным является тщательный отбор доноров для лапароскопической ПГЭ. Следует отбирать доноров с типичной сосудистой и билиарной анатомией.
21.1.1. Клинические характеристики доноров
Большинство центров, имеющих опыт выполнения лапароскопической ПГЭ, придерживаются достаточно строгих критериев отбора доноров. В центре авторов главы все доноры: 1) не должны иметь других сопутствующих заболеваний, которые могут отразиться на безопасности донора; 2) должны быть моложе 65 лет; 3) должны иметь макростеатоз менее 30%; 4) должны иметь ожидаемый остаточный объем печени более 30%. Однако по соображениям безопасности критерии отбора для лапароскопического доступа еще более консервативны: только пациенты в возрасте до 60 лет и с остаточным объемом печени более 35%.
21.1.2. Печеночная артерия
В литературе имеются сообщения о случаях развития у доноров послеоперационных кровотечений из культи печеночной артерии, которые могут привести к серьезным последствиям. Дислокация титановых или нерассасывающихся клипс Hem-o-lok отмечается чаще соскальзывания обычных хирургических узлов, поэтому так важно оставлять достаточную длину проксимальной культи печеночной артерии. Именно поэтому потенциальных доноров с выявленной ранней бифуркацией правой передней и задней печеночной артерий с короткой правой печеночной артерией не следует рассматривать как кандидатов на лапароскопическую ПГЭ.
21.1.3. Воротная вена
Из 40 случаев лапароскопической ПГЭ осложнения со стороны воротной вены наблюдались у двух доноров с вариантной анатомией воротной вены: тип 2 и тип 3. Раннее деление на переднюю и заднюю ветви правой воротной вены, которая в данном случае обладает широким диаметром, увеличивает трудность операции и не рекомендуется для лапароскопического доступа.
21.1.4. Печеночный проток
Одним из наиболее критичных и напряженных этапов ПГЭ у прижизненного донора является пересечение правого печеночного протока. По этой причине авторы главы рекомендуют использовать лапароскопическую методику только в случаях стандартной билиарной анатомии. У доноров с вариантной анатомией желчевыводящих путей частота билиарных осложнений превышает 40%, в отличие от доноров с нормальной анатомией желчных протоков, частота развития билиарных осложнений у которых не превышает 10%. Кроме того, для увеличения степени безопасности вмешательства и обеспечения контроля плоскости пересечения правого печеночного протока всем донорам необходимо проводить контрастную холангиографию до и после пересечения протока.
21.2. Хирургическая техника
21.2.1. Анестезиологическое пособие и положение пациента
Слаженная и уважительная работа хирургической бригады и анестезиолога является важным фактором успеха операции. Обычно установка центрального венозного катетера не производится, но в течение хирургического вмешательства для поддержания малого объема анестезии необходимо введение кристаллоидных растворов со скоростью не менее 500 мл/ч. В данных условиях при возникновении значимого кровотечения или длительного повышения внутрибрюшного давления может легко произойти коллапс кровообращения, поэтому анестезиолог для раннего принятия необходимых мер предосторожности должен быть проинформирован обо всех событиях, происходящих во время операции.
В литературных источниках сообщалось о серьезных осложнениях у доноров после эпидуральной анестезии, поэтому предпочтительно интратекальное (эндолюмбальное) введение морфина в дополнение к местному обезболиванию (рис. 21.1). Протокол раннего восстановления пациентов после операции может применяться с использованием указанного способа контроля болевого синдрома.

Положение донора на операционном столе — литотомическое (положение Lloyd-Davis), с «французской» расстановкой хирургической бригады, при которой оперирующий хирург располагается между ног пациента, а его ассистенты — слева от пациента. Обычно используются три 12-мм и два 5-мм порта, как показано на рис. 21.1. Через параумбиликальный порт вводится лапароскоп с 3-чиповой камерой, обеспечивающей наилучший обзор, особенно в области венечной связки печени. Внутрибрюшное давление поддерживается на уровне 11 мм рт.ст. После создания пневмоперитонеума производится клиновидная биопсия печени для окончательной патолого-гистологической оценки органа.
21.2.2. Мобилизация печени
Круглая и серповидная связки печени рассекаются с помощью биполярного коагулятора или ультразвукового скальпеля (Harmonic) до идентификации НПВ. Венечную связку рассекают на значительном протяжении слева направо с переходом на нижнюю поверхность правой треугольной связки. Следует помнить, что лапароскопические инструменты, используемые для ретракции, обычно более острые по сравнению с рукой хирурга или ретракторами, применяемыми при открытой гемигепатэктомии, и могут привести к разрыву печени. Именно поэтому, наклонив операционный стол на 15–30° влево и на 10–15° вниз, печень отводят кверху с помощью ретрактора Сноудена–Пенсера (snake retractor), используя круглую связку или желчный пузырь.
В отличие от открытой ПГЭ, когда правая гепатокавальная связка пересекается на начальном этапе операции, при лапароскопической технике угол доступа к этой связке небезопасен. Именно поэтому авторы этой главы рекомендуют производить мобилизацию печени только до тех пор, пока не будет идентифицирована правая гепатокавальная связка, разделять которую целесообразнее после завершения рассечения печеночной паренхимы (рис. 21.2).

21.2.3. Диссекция воротной пластинки
После клипирования и пересечения пузырных артерии и протока производится выделение правой печеночной артерии и правой воротной вены. Для лучшего обзора операционного поля ассистент выполняет тракцию воротной пластинки кверху и влево с помощью пузырного протока. Авторы главы о диссекции сосудов предпочитают использовать биполярный зажим и аспирационный наконечник Янкауэра (рис. 21.3). Выделение ветви воротной вены к хвостатой доле облегчает мобилизацию правой воротной вены. После мобилизации правых печеночной артерии и воротной вены их пережимают на 1–2 мин зажимами типа «бульдог» для определения демаркационной линии, которую размечают монополярным электрокоагулятором. Для предупреждения кровотечения, которое может возникнуть на любом этапе операции, следует обойти турникетом ПДС (прием Прингла) перед началом разделения печеночной паренхимы.

21.2.4. Разделение печеночной паренхимы
Перед разделением печеночной паренхимы производится интраоперационная ультрасонография для идентификации ветвей срединной и правой печеночных вен (V5 и V8). Обычно разделение паренхимы на 2 см от капсулы не требует прецизионного рассечения и может быть выполнено с помощью биполярной коагуляции, путем келликлазии или ультразвуковой диссекции. При более глубоком рассечении паренхимы для диссекции основных ветвей печеночных вен рекомендуется использовать кавитационный ультразвуковой хирургический аспиратор (CUSA) или ультразвуковой диссектор. CUSA является одним из лучших инструментов для прецизионного рассечения печеночной паренхимы и наиболее часто используется хирургами, выполняющими гемигепатэктомию у живого донора. Однако поддержание его оптимального рабочего состояния во многом зависит от работы среднего медицинского персонала операционного блока, а рукоятка достаточно тяжела и недостаточно эргономична. Аналогом CUSA в данной ситуации может служить совместное использование ультразвукового диссектора и аспиратора, что является предпочтительным инструментарием авторов главы.
Небольшие венозные ветви (диаметром менее 2 мм) обычно пересекают с помощью электрокоагуляции, а ветви диаметром 2–5 мм клипируют. В случае выявления ветвей печеночных вен, требующих реконструкции на этапе back-table, их дважды клипируют и пересекают.
После разделения по передней поверхности рассекают капсулу хвостатой доли. Для этого ассистент оттягивает воротную пластинку кверху для улучшения обзора, а хирург рассекает хвостатую долю как можно дальше от нижней поверхности правой печеночной ножки. Этот этап в дальнейшем позволит значительно облегчить рассечение остатка хвостатой доли, которое производят после пересечения правого печеночного протока.
21.2.5. Мобилизация печеночного протока
Следует стараться оставить интактными любые сосудистые структуры, кроме правых печеночной артерии и воротной вены, чтобы сохранить адекватное кровоснабжение желчевыводящих путей с целью уменьшения частоты развития билиарных осложнений у реципиентов. Для контроля плоскости пересечения печеночного протока производится интраоперационная контрастная холангиография. Пересечение протока следует выполнять между двумя зажимами типа «бульдог» для предотвращения нежелательного кровотечения (рис. 21.4). Оставшуюся проксимальную культю правого печеночного протока ушивают непрерывным швом нитью Prolene 5/0 или PDS 5/0 (рис. 21.5). После ушивания культи зажим снимают и дополняют контроль гемостаза с помощью узловых швов нитью Prolene 5/0. Использование моно- и/или биполярной электрокоагуляции крайне нежелательно ввиду возможной термической травмы и последующего развития стриктуры желчных протоков у донора. Зажим типа «бульдог» на дистальной культе правого печеночного протока снимают на этапе back-table. Контроль гемостаза сопровождающих мелких сосудов печеночного протока осуществляется после реперфузии трансплантата в брюшной полости реципиента.


21.2.6. Заключительные этапы и извлечение трансплантата
После пересечения правого печеночного протока производится разделение оставшейся печеночной паренхимы. Следует соблюдать осторожность при рассечении паренхимы вдоль ствола НПВ, избегая повреждения ее коротких ветвей. После выделения правой печеночной вены правая доля печени помещается в полиэтиленовый экстракционный пакет. Из брюшной полости аспирируют воздух и в надлобковой области выполняют разрез по Пфанненштилю длиной 10–15 см, через который выводят петлю для затягивания пакета (см. рис. 21.1). Область разреза отграничивают влажной салфеткой и 5–6 зажимами для предотвращения утечки воздушной газовой смеси и вновь накладывают пневмоперитонеум.
Правую печеночную артерию клипируют и пересекают, проксимальную культю правой воротной вены прошивают с помощью линейного сосудистого степлера Endo TA, а на дистальную культю накладывают зажим типа «бульдог», после чего правую воротную вену пересекают. Для предотвращения развития послеоперационного стеноза воротной вены у донора важно не накладывать сосудистый степлер слишком близко к ее бифуркации (рис. 21.6). Затем линейным сосудистым степлером Endo TA прошивают и пересекают СПВ. Правую гепатокавальную связку пересекают после клипирования или прошивания аппаратом Endo GIA. Правую долю печени, предварительно помещенную в экстракционный пакет, осторожно извлекают из брюшной полости, протягивая петлю для затягивания через разрез по Пфанненштилю. Это позволяет сократить время тепловой ишемии в среднем до 5 мин и даже менее. Подготовку трансплантата на этапе back-table начинают с флашинга раствором HTK с добавлением 2–3 тыс. МЕ гепарина натрия (Гепарина♠). Снимают зажимы с ветвей V5 и V8, флашинг правой печеночной артерии осуществляют деликатно, стараясь не повредить интиму сосуда.

Осуществляют контроль герметичности сосудистых структур и рассеченной поверхности трансплантата. Контроль подтекания желчи проводится с использованием индигокармина. После экстракции трансплантата у донора выполняется заключительная интраоперационная холангиография для исключения билиарной стриктуры, после чего два дренажа Джексона–Пратта располагают по правому фланку брюшной полости и в области ворот печени.
21.2.7. Остановка массивного интраоперационного кровотечения
Значительное кровотечение, особенно из ветвей печеночной вены и/или НПВ, до сих пор остается большой проблемой при проведении обширных резекций печени. Хирург должен прикладывать максимум усилий для предотвращения любого повреждения вен, которое может привести к массивному кровотечению и, как следствие, необходимости гемотрансфузий. В случае интраоперационного кровотечения авторы главы предлагают две стратегии:
-
взятие на турникет ПДС (прием Прингла) для временного ее пережатия. Несмотря на существующие данные о возможном увеличении уровня печеночных ферментов в послеоперационном периоде после использования приема Прингла, особенно у пациентов с жировым гепатозом, на выживаемость реципиента и трансплантата его выполнение не влияет [7], что позволяет безопасно применять его при необходимости;
-
прерывистая подача воздушной газовой смеси и повышение внутрибрюшного давления. Во время операции внутрибрюшное давление поддерживается на как можно более низком уровне (обычно на уровне 11 мм рт.ст.), чтобы свести к минимуму возможное развитие ацидоза или повышение рCO2. Однако в случаях повреждения крупных вен и развития профузного кровотечения внутрибрюшное давление может быть последовательно увеличено до 15 мм рт. ст., чтобы сбалансировать ЦВД. Этого времени хирургу обычно достаточно для остановки кровотечения. Авторы главы регулярно использовали данный прием при более чем 200 обширных резекциях печени, не испытывая никаких побочных эффектов и осложнений, связанных с возможной газовой эмболией.
21.3. Послеоперационный период
Интратекальное (эндолюмбальное) введение морфина в дополнение к местному обезболиванию бупивакаином обычно обеспечивает достаточный контроль болевого синдрома, поэтому у пациентов может быть применен протокол раннего восстановления после операции (см. рис. 21.1). Питье разрешается на 1-е сутки, а щадящая диета — на 2-е сутки послеоперационного периода. Контроль содержания общего билирубина и протокольное контрастное исследование билиарного дерева проводятся на 5-е сутки, перед удалением дренажей, для исключения несостоятельности желчевыводящих путей. Выписка из стационара возможна на 7-е сутки послеоперационного периода с рекомендациями амбулаторного выполнения ультразвуковой допплерографиии (компьютерной томографии) органов брюшной полости.
Лапароскопическая ПГЭ у прижизненных доноров по-прежнему остается довольно сложной операцией, требующей использования самых современных достижений гепатопанкреатобилиарной хирургии. Очень важно, чтобы хирург обладал достаточным опытом как в открытой эксплантации фрагментов печени у живого донора, так и в лапароскопической хирургии печени, прежде чем приступить к эксплантационной лапароскопической гемигепатэктомии. Однако, по данным авторов главы, полученным на основании более 40 наблюдений, лапароскопическая ПГЭ может быть выполнена относительно безопасно, с частотой серьезных послеоперационных осложнений у донора, не превышающей 10%. В настоящее время в Samsung Medical Center Sungkyunkwan University School of Medicine (Сеул, Корея) данная операция составляет 25% всех хирургических вмешательств по программе прижизненного донорства. Лапароскопическая ПГЭ способствует раннему восстановлению и сокращению сроков пребывания пациентов в стационаре, а также обеспечивает превосходный косметический эффект у живых доноров фрагмента печени.
Литература
-
Shin M. et al. Donor morbidity including biliary complications in living-donor liver transplantation: single-center analysis of 827 cases // Transplantation. 2012. Vol. 93, N 9. P. 942–948.
-
Verbesey J.E. et al. Living donor adult liver transplantation: a longitudinal study of the donor’s quality of life // Am. J. Transplant. 2005. Vol. 5, N 11. P. 2770–2777.
-
Dagher I. et al. Laparoscopic versus open right hepatectomy: a comparative study // Am. J. Surg. 2009. Vol. 198, N 2. P. 173–177.
-
Troisi R.I. Open or laparoscopic living donor liver hepatectomy: still a challenging operation! // Am. J. Transplant. 2014. Vol. 14, N 3. P. 736.
-
Yu Y.D. et al. Laparoscopic live donor left lateral sectionectomy is safe and feasible for pediatric living donor liver transplantation // Hepatogastroenterology. 2012. Vol. 59, N 120. P. 2445–2449.
-
Han H.S. et al. Total laparoscopic living donor right hepatectomy // Surg. Endosc. 2015. Vol. 29, N 1. P. 184.
-
Park J.B. et al. Effect of intermittent hepatic inflow occlusion with the Pringle maneuver during donor hepatectomy in adult living donor liver transplantation with right hemiliver grafts: a prospective, randomized controlled study // Liver Transpl. 2012. Vol. 18, N 1. P. 129–137.
Глава 22. Лапароскопическая и робот-ассистированная эксплантационная нефрэктомия. Алессандро Джакомони, Лукреция Фуриан, Джакомо Консоне, Паоло Риготти
A. Giacomoni Department of General Surgery and Transplantation, Niguarda Cà Granda Hospital, Milano, Italy; e-mail: alessandro.giacomoni@ospedaleniguarda.it L. Furian, P. Rigotti
Kidney and Pancreas Transplantation Unit, Padua University-Hospital, Via Giustiniani 2, Padova 35128, Italy; e-mail: lucrezia.furian@unipd.it G. Concone Department of General Surgery and Transplantation, Niguarda Cà Granda Hospital, Milano, Italy Department of Surgical Sciences, University of Pavia, Pavia, Italy
Советы, приемы и возможные ошибки
-
До начала операции подготовьте оптимальное положение донора, чтобы избежать дискомфорта как для пациента, так и для членов хирургической бригады.
-
Обсуждая основные этапы операции, общайтесь со всеми участниками операционного процесса, включая анестезиологов и средний медицинский персонал.
-
Будьте готовы к быстрому переходу к открытой хирургии, разметив на теле донора срединный разрез.
-
Помните, что мануальная ассистенция может быть полезна для преодоления интраоперационных сложностей.
-
При клипировании почечных сосудов избегайте попадания под клипсы окружающих тканей.
-
Выделяйте почечные сосуды на максимальном протяжении, используя эндоскопические сшивающие аппараты GIA или TA и избегая ранних бифуркаций.
-
При проведении диссекции помните о преимуществах применения системы электролигирования сосудов LigasureTM, чтобы сократить время операции и избежать попадания клипс в линию скобочного шва.
-
Выполняйте тщательный гемостаз в проекции разреза по Пфанненштилю, поскольку использование гепарина натрия (Гепарина♠) может способствовать образованию подкожных гематом.
К настоящему времени трансплантологическим сообществом убедительно продемонстрированы преимущества трансплантации почки от живого донора как альтернативы трансплантации почки от ПД для лечения пациентов с терминальной стадией хронической почечной недостаточности. При оценке отдаленной выживаемости реципиентов и трансплантатов, показателей качества жизни в посттрансплантационном периоде и характера начальной функции почечного трансплантата результаты после трансплантации почки от прижизненного донора значительно лучше в сравнении с трансплантацией почки от ПД [1, 2]. Кроме того, трансплантация почки от живого донора возможна либо до начала диализной заместительной почечной терапии, либо по прошествии незначительного времени ее применения.
По сообщениям Объединенной сети по распределению органов, в два последних десятилетия количество трансплантаций почки от живого донора резко увеличилось. Причинами подобного роста количества операций служат как преимущества трансплантации от прижизненного донора, так и распространение минимально инвазивных методик эксплантационной нефрэктомии. Они представляются более приемлемыми для доноров по причине раннего восстановления, сокращения сроков пребывания в стационаре и лучшего косметического эффекта. В связи с этим впервые выполненная Ratner в 1995 г. лапароскопическая нефрэктомия у живого донора (как мануально-ассистированная, так и полностью лапароскопическая) занимает ведущее место в прижизненном донорстве почки [3].
22.1. Предоперационная оценка и анестезиологическое ведение прижизненного донора почки
Принимая во внимание клинические и психоэмоциональные критерии при оценке анестезиологического и хирургического рисков у прижизненного донора в соответствии с системой классификации физического статуса пациентов перед операцией Американского общества анестезиологов, прижизненное донорство почки возможно только у лиц, относящихся к классам Американского общества анестезиологов I или II. Кроме того, как и в случае открытой нефрэктомии, предоперационная оценка анатомии и функции почек прижизненного донора имеет решающее значение для решения о возможности проведения нефрэктомии. Обязательно должны быть оценены следующие параметры: 1) не имеет ли одна из почек сниженную функцию — с помощью динамической нефросцинтиграфии; 2) патология паренхимы (кисты, ангиомиолипома, нефроптоз) или мочевыводящих путей (нефролитиаз, удвоение мочеточника, пиелоэктазия) — с помощью УЗИ и урографического исследования; 3) сосудистые аномалии (множественные почечные артерии, циркумаортальная или ретроаортальная левая почечная вена) — с помощью мультиспиральной компьютерной томографии с 3D-реконструкцией или магнитно-резонансной томографии. У живого донора выполняют эксплантацию органа со сниженной функцией или нестандартной анатомией. В остальных случаях предпочтительно использовать левую почку донора по причине более длинной левой почечной вены.
Противопоказания для лапароскопической нефрэктомии у живого донора аналогичны противопоказаниям для открытой нефрэктомии, хотя абдоминальная операция в анамнезе может способствовать увеличению сложности хирургического вмешательства за счет трансперитонеального доступа. Для пациентов с избыточной массой тела или легкой степенью ожирения лапароскопическая техника является предпочтительной ввиду низкого риска развития раневых осложнений и быстрого восстановления в послеоперационном периоде [4, 5].
У прижизненных доноров присутствует умеренный риск развития венозной тромбоэмболии, поэтому пациентам необходимо профилактическое назначение низкомолекулярного гепарина натрия (Гепарина♠) (начиная с момента операции не менее 5 сут или до выписки из стационара), дополненное компрессионными чулками или тугим бинтованием нижних конечностей. Так как пневмоперитонеум повышает внутрибрюшное давление, вызывая снижение почечного кровотока и скорости клубочковой фильтрации, что приводит к олигурии, инфузионная терапия за сутки до и во время операции является весьма полезной опцией. Голодание перед операцией и индукция анестезии могут вызывать относительную гиповолемию, поэтому ее компенсация до наложения пневмоперитонеума является одной из задач анестезиологического пособия. Для коррекции повышенного внутрибрюшного давления в настоящее время при лапароскопической нефрэктомии применяется интенсивная внутривенная инфузия с оптимизацией преднагрузки на сердце и стимуляцией диуреза [5]. Контроль объема циркулирующей жидкости оценивают по тургору почечной вены: «пустая» почечная вена свидетельствует о необходимости увеличения инфузионной поддержки. Интраоперационная стимуляция диуреза осуществляется за счет болюсного введения 80 мл маннитола. Непосредственно перед пересечением сосудов вводят 20 мг фуросемида и 5000 МЕ гепарина натрия (Гепарина♠), а после нефрэктомии — протамина сульфат для нейтрализации гипокоагуляционного состояния. Помимо медикаментозного сопровождения донора, одной из важнейших задач анестезиолога является адекватная миорелаксация для получения достаточной площади операционного поля при лапароскопическом вмешательстве.
В послеоперационном периоде стараются избегать назначения нестероидных противовоспалительных препаратов с целью обезболивания по причине их потенциальной нефротоксичности. Внутривенное введение анальгетика (парацетамол) возможно только в 1-е сутки послеоперационного периода, со 2-х суток пациентов переводят на пероральный прием обезболивающих препаратов. Особое внимание во время нефрэктомии следует уделять профилактике осложнений, связанных с положением прижизненного донора на операционном столе: тоннельные синдромы периферических нервов, синдром позиционного сдавления, нарушение проходимости дыхательных путей, неэффективный венозный доступ.
22.2. Лапароскопическая нефрэктомия у живого донора: хирургическая техника
Перед началом операции рекомендуется наметить на теле донора линии срединного разреза, надлобкового разреза по Пфанненштилю и стандартные точки введения троакаров. Предварительно нанесенные линии могут оказаться очень полезными при необходимости быстрой конверсии на открытый лапаротомный доступ или, что чаще, для достижения лучшего косметического результата (для разреза по Пфанненштилю), который производится после изменения положения операционного стола и пациента, что может привести к искажению разреза (рис. 22.1). Метки для введения троакара особенно удобны у пациентов с избыточной массой тела или легкой степенью ожирения.

Положение донора — модифицированное латеральное для трансперитонеального доступа, при котором бедра пациента ротированы кзади, а руки вытянуты над головой (рис. 22.2). Рекомендуется пользоваться подъемным почечным валиком операционного стола для лучшей экспозиции области тела донора между реберной дугой и тазом. Чтобы не препятствовать работе хирурга, руку донора располагают поверх контрлатеральной руки без использования каких-либо подпорок. Пневмоперитонеум накладывают по открытой методике Хассона с уровнем давления 12 мм рт.ст. Вместо традиционного параумбиликального разреза рекомендуется выполнять парамедианный разрез длиной 2 см немного выше пупка (между пупком и точкой Палмера), являющийся более безопасным ввиду низкого риска возникновения послеоперационных грыж. После рассечения апоневроза брюшина захватывается и осторожно вскрывается (не следует забывать о возможности спаечного процесса и предлежания к париетальной брюшине кишечной петли). На апоневроз накладывают два провизорных шва для укрепления троакара Хассона, чтобы избежать утечки из брюшной полости газовой смеси, используемой для инсуффляции. Авторы руководства считают более безопасной и рекомендуют открытую методику Хассона, поскольку в 2012 г. в Кокрейновской базе данных систематических обзоров были опубликованы выводы о том, что открытая техника связана со значительным снижением количества неудачных входов в брюшную полость в сравнении с закрытой техникой (с помощью иглы Вереша) без каких-либо различий в частоте таких осложнений, как повреждения кишечника или крупных сосудов [6]. Через парамедианный порт вводится видеолапароскоп, после чего устанавливаются еще три порта: 12 мм в подвздошной ямке по средней ключичной линии (между пупком и передней верхней подвздошной остью), 5 мм в подреберье (на два пальца ниже реберной дуги) по средней ключичной линии и 5 мм по фланку для ассистента (рис. 22.3).


При левосторонней нефрэктомии после осмотра брюшной полости восходящую и сигмовидную ободочную кишку отводят книзу путем рассечения белой линии Тольдта, начиная от селезеночного изгиба, с помощью захватывающих щипцов Дебейки и изогнутых ножниц. После отведения толстой кишки медиально достигается экспозиция фасции Герота. Разделение этой фасции может быть выполнено тупым путем по естественной плоскости между ней и брыжейкой ободочной кишки. Это снижает риск повреждения брыжейки и медиального смещения плоскости диссекции. После мобилизации толстой кишки выполняют идентификацию и выделение на протяжении левого мочеточника и гонадных сосудов. При мобилизации гонадной вены в краниальном направлении постепенно визуализируется вена левой почки. Ассистент ретрактором деликатно отводит кверху хвост поджелудочной железы от верхнего края левой почечной вены, которую выделяют из окружающих тканей на всем протяжении, а надпочечниковую, гонадную и поясничные ветви лигируют. Сначала пересекают надпочечниковую вену. Для этого вместо клипс и лигатур возможно использовать систему электролигирования сосудов (LigasureTM), введенную через порт 5 мм по фланку, что позволяет сократить время операции и исключает попадание клипс в линию скобочного шва. Следует помнить, что с помощью LigasureTM возможно лигирование сосудов диаметром менее 7 мм, что не позволяет использовать его для пересечения гипертрофированных венозных ветвей (рис. 22.4). Гонадная вена также может быть лигирована браншами LigasureTM, введенными через 5-мм порт в подреберье. Пересечение поясничных ветвей левой почечной вены требует аккуратности, так как они часто бывают короткими и могут иметь ранние бифуркации. Для визуализации и последующего лигирования поясничных ветвей необходимо приподнять и отвести нижний полюс почки с помощью захватывающих щипцов Дебейки (рис. 22.5).

Левую почечную артерию, лежащую кзади от вены, также идентифицируют при отведении нижнего полюса почки и выделяют от окружающих тканей нервных сплетений на уровне ее отхождения от аорты. Мобилизация почки завершается отделением левого надпочечника от верхнего полюса почки с помощью LigasureTM, чтобы избежать возможного кровотечения из мелких надпочечниковых артериальных ветвей и обеспечить безопасное пересечение лимфатических тканей. Это воспрепятствует возможному развитию лимфореи и хилоперитонеума (хилезного асцита) в послеоперационном периоде. После полной мобилизации почечных сосудов продолжают рассечение фасции Герота кверху от нижнего полюса почки вдоль ее латерального края. Таким образом почку полностью мобилизуют, за исключением почечной ножки, после чего гонадная вена, мочеточник и периуретральная клетчатка отделяются от сращений с поясничной мышцей. Пересекают мочеточник. Адекватная перфузия почки на этом этапе подтверждается активным мочеотделением из пересеченного дистального конца мочеточника. Если мочеотделения не отмечается, рекомендуется произвести в течение 10–15 мин прерывистую подачу газовой смеси для изменения внутрибрюшного давления.

Затем производят надлобковый разрез по Пфанненштилю длиной 7 см, через который имплантируют контейнер для экстракции Endo Catch™. Для сохранения пневмоперитонеума без утечки газовой смеси намечают шов переднего листка апоневроза прямой мышцы живота монофиламентной нитью 0 в проекции разреза по Пфанненштилю и обкладывают его несколькими влажными салфетками. Почку помещают в контейнер. До начала манипуляций в области ворот почки пациенту вводят 5000 МЕ гепарина натрия (Гепарина♠) и, слегка натягивая почечную ножку, пересекают с помощью эндоскопического сшивающего аппарата GIA левую почечную артерию на уровне ее отхождения от аорты, с последующим пересечением левой почечной вены (рис. 22.6). Следует помнить, что использование клипс Hem-o-lok® для лигирования почечных сосудов при лапароскопической нефрэктомии более неприемлемо в соответствии с отчетом FDA [Комитет по контролю за лекарственными веществами и пищевыми добавками США (Food and Drug Administration)] 2006 г. [7].
Полностью погруженная в контейнер для экстракции почка удаляется через разрез по Пфанненштилю, после чего вводится протамина сульфат для нейтрализации состояния гипокоагуляции.
При правосторонней нефрэктомии установка портов и другие этапы операции производятся по вышеописанной методике, но с противоположной стороны. Основные технические особенности направлены на сохранение максимальной длины правой почечной вены. После создания пневмоперитонеума слепая кишка мобилизуется и отводится медиально, печень отводится кверху для обнажения верхнего полюса почки с помощью ретрактора, введенного через порт 5 мм по фланку. Выделение мочеточника и гонадной вены не отличается от техники, описанной для левосторонней нефрэктомии. Пересечение гонадной вены может быть выполнено при помощи клипирования на достаточном расстоянии от стенки почечной вены. Это не создает дополнительных трудностей при последующем наложении на нее эндоскопического сшивающего аппарата GIA. Обычно боковые ветви у правой почечной вены отсутствуют, однако при мобилизации правой почечной артерии повышенное внимание следует обратить на поясничные венозные ветви, впадающие в НПВ. Отделение правого надпочечника производится с помощью LigasureTM аналогично левосторонней нефрэктомии, что позволяет визуализировать верхний край правой почечной вены. Для сохранения максимальной длины почечной вены возможно введение порта мануального доступа на уровне разреза по Пфанненштилю для отведения правой почки кверху и натяжения почечной ножки перед пересечением почечных сосудов. Кроме того, при ранней бифуркации почечной артерии порт мануального доступа позволяет выполнить медиальную мобилизацию почки, облегчая контроль почечной артерии ad oculus. Пересечение правой почечной вены введенным в 12-мм подвздошный порт эндоскопическим сшивающим аппаратом GIA или Endo TA должно быть выполнено в плоскости, параллельной ходу НПВ (рис. 22.7, a, б). Следует учитывать потерю примерно 1,0–1,5 см длины почечной вены при использовании аппарата GIA, обладающего, однако, более точной артикуляцией в сравнении с Endo TA. Именно поэтому во время операции нередко возникает необходимость выбора между экономией нескольких миллиметров длины вены и оптимизацией линии скобочного шва, исходя из анатомической ситуации.

Разрез по Пфанненштилю послойно ушивается, проводится контроль гемостаза и дренирование брюшной полости. Следует проконтролировать разрез для порта 12 мм на предмет повреждения надчревных сосудов. При использовании безлопастного троакара ушивания фасции не требуется. В противном случае накладывают восьмиобразный шов рассасывающейся нитью с помощью устройства для прецизионного ушивания фасции Картера–Томаса.

Описанная в данном разделе техника операции, по существу, является исключительно лапароскопической, однако присутствие в операционном наборе порта мануального доступа необходимо не только при правосторонней, но и при левосторонней нефрэктомии. Он может быть использован в случае низкого внутрибрюшного давления после разреза по Пфанненштилю для отведения толстой кишки у пациентов с умеренным ожирением или для интраоперационной коррекции некоторых осложнений, что иногда позволяет избежать конверсии. Несмотря на возможность использования и определенные преимущества мануально-ассистированной техники, полностью лапароскопическая нефрэктомия технически выполнима как в отношении левой, так и правой почки [8].
22.3. Робот-ассистированная техника нефрэктомии у живого донора
Советы, приемы и возможные ошибки
-
Не следует использовать металлические клипсы там, где возможно воспользоваться сшивающим аппаратом.
-
Расположите пациента на операционном столе таким образом, чтобы избежать «конфликта» (соударения) манипуляторов робота между собой или с телом пациента.
-
Для облегчения извлечения почки вместе с гепарином натрия (Гепарином♠ ) следует однократно болюсно ввести миорелаксанты.
Левосторонняя нефрэктомия
В 2002 г. S. Horgan et al. сообщили о первой серии робот-ассистированных нефрэктомий у живых доноров [9], после чего было опубликовано несколько исследований с различными особенностями техники выполнения операции [10–15]. Несмотря на определенные отличия в хирургической технике, во всех проведенных исследованиях подтверждались безопасность и целесообразность робот-ассистированной нефрэктомии [16–19].
Робот-ассистированная хирургия постепенно заменяет традиционные методики операций, в том числе лапароскопические, поскольку обладает такими преимуществами, как удобство работы хирурга (3D-визуализация операционного поля, простые в использовании инструменты Endowrist) и положения пациента на операционном столе, которые играют важную роль в успешном исходе подобных операций [20]. При робот-ассистированной операции формирование узлов и швов, представляющее наибольшую трудность во время лапароскопического хирургического вмешательства, легко выполнимо с помощью манипуляторов робота. Перечисленные факторы представляют собой несомненные преимущества по сравнению с длительными и сложными лапароскопическим операциями, вызывающими значительное напряжение хирургов и тем самым способствующими снижению концентрации и внимания, что может отразиться на безопасности прижизненных доноров. На основании анализа серий робот-ассистированных нефрэктомий и в зависимости от опыта каждого центра существуют различные хирургические техники: от мануально-ассистированной до полностью роботической нефрэктомии [9–19, 21]. С развитием технических возможностей появляется доступ к роботическим степлерам, позволяющим сделать последний «лапароскопический» этап робот-ассистированной нефрэктомии более безопасным и контролируемым. Кроме того, следующим шагом коммерциализации более компактной роботической системы LigasureTM станет включение ее в комплектацию роботического операционного стола, позволяющего не отстыковывать от него робота.
22.4. Хирургическая техника робот-ассистированной нефрэктомии
22.4.1. Критерии отбора доноров
Критерии отбора доноров не отличаются от таковых для лапароскопической нефрэктомии. Предшествующие неоднократные абдоминальные операции в каждом отдельном случае следует рассматривать как относительное противопоказание к применению минимально инвазивных методик нефрэктомии. Согласно литературным данным, левая почка должна рассматриваться в качестве первого выбора даже при нестандартной сосудистой анатомии, поскольку левосторонняя нефрэктомия обеспечивает бóльшую длину почечной вены и не предполагает манипуляций с печенью [13].
Правосторонняя нефрэктомия у живого донора выполняется в случае выявленного по данным предоперационного обследования функционального превосходства левой почки, сохранение которой целесообразно в целях безопасности прижизненного донора. Кроме того, все потенциальные прижизненные доноры должны быть проинформированы о возможном риске конверсии на открытую операцию.
22.4.2. Положение донора на операционном столе
После общей анестезии пациенту придают положение на правом боку под углом 90° к операционному столу. Для обеспечения адекватного доступа к почке выполняется излом стола. Чтобы избежать «конфликтов» с манипуляторами робота, правая нижняя конечность пациента должна быть согнута под углом 90° в коленном и тазобедренном суставах, а левая — полностью вытянута (рис. 22.8).

22.4.3. Расположение портов
Первым этапом выполняют поперечный разрез Кюстнера длиной 8–10 см (на 5 см выше лобкового симфиза). Под мануальным контролем через разрез Кюстнера устанавливают 12-мм оптический порт для бинокулярного видеолапароскопа в 5–6 см от пупочного кольца (по средней ключичной линии со стороны планируемой нефрэктомии). После этого производится ушивание брюшины и мышц в проекции поперечного разреза непрерывным швом и имплантация контейнера для экстракции (Endo Catch II 15 мм), прикрепление которого к тазовой области пациента осуществляют с помощью адгезивного пластыря. Концы нитей необходимо оставить достаточно длинными, чтобы их можно было легко и быстро натянуть при экстракции почки или интраоперационной коррекции некоторых осложнений, в частности кровотечения. После создания пневмоперитонеума под контролем видеолапароскопа устанавливают два рабочих 8-мм порта по передней подмышечной линии на 2 см ниже подреберья и на 2 см ниже уровня пупка соответственно (рис. 22.9). Еще один 12-мм (ассистентский) порт устанавливают в крайнюю левую часть разреза Кюстнера (рис. 22.10), после чего производят стыковку расположенного позади донора роботического комплекса с портами. Первыми используемыми роботическими инструментами являются: биполярный диссектор типа Maryland в правом манипуляторе, монополярный электрод с L-образным крючком в левом манипуляторе и видеолапароскоп 30°. Полный список роботических и лапароскопических инструментов, необходимых для выполнения робот-ассистированной нефрэктомии, приводится в табл. 22.1.


Три роботических порта (один 12 мм для видеолапароскопа под углом 30°, два 8 мм для манипуляторов робота) |
Один ассистентский 12-мм порт и один дополнительный 5-мм порт (при правосторонней нефрэктомии) |
Один контейнер для экстракции Endo Catch II (15 мм) |
Роботические инструменты: |
фенестрированный биполярный диссектор типа Maryland |
монополярный электрод с L-образным крючком |
биполярный зажим |
иглодержатель |
средне-большой клип-аппликатор |
ножницы с тупоконечными браншами |
Лапароскопические инструменты: |
захватывающие щипцы |
ножницы с остроконечными браншами |
средне-большой клип-аппликатор для наложения металлических клипс |
Сшивающие аппараты: |
вена: Endopath (Echelon 45) |
артерия: Endo TA с длиной шва 30 мм |
22.4.4. Левосторонняя нефрэктомия
Следующим этапом производится мобилизация левых отделов толстой кишки, а также области хвоста поджелудочной железы и селезенки до уровня левой диафрагмальной ножки для обеспечения доступа к левой почке. Этот прием способствует упрощению выделения почечных сосудов и большей безопасности в случае последующего кровотечения. Мочеточник идентифицируют и обходят держалкой. После гонадных сосудов выделяют левую почечную вену, которая должна быть отделена от надпочечниковой, гонадной и поясничных вен. Последние пересекают после клипирования. Левую почечную вену обходят держалкой. Затем от верхнего полюса почки отделяют левый надпочечник, производят отделение передней и задней поверхностей почки от паранефральной клетчатки. Выделение левой почечной артерии предпочтительно выполнять после отведения нижнего полюса почки кверху, удерживая почку в медиальном положении после ее полной мобилизации от паранефральной клетчатки и фасции Герота. После мобилизации почки и ее сосудов мочеточник пересекают примерно на уровне его пересечения с подвздошными сосудами после клипирования его дистальной культи, оставляя проксимальный конец открытым. Для облегчения экстракции почки вместе с гепарином натрия (Гепарином♠) в дозе 80 МЕ/кг массы тела однократно болюсно вводят миорелаксанты. Почку помещают в контейнер и, слегка натягивая почечные сосуды, клипируют и пересекают с помощью эндоскопического сшивающего аппарата Endo TA левую почечную артерию на уровне ее отхождения от аорты (рис. 22.11) с последующим пересечением левой почечной вены сшивающим аппаратом GIA или Endopath (рис. 22.12).


Контейнер Endo Catch с почечным трансплантатом закрывается, робота отстыковывают от операционного стола, непрерывный шов в проекции разреза Кюстнера распускают и полностью погруженную в контейнер для экстракции почку извлекают через этот разрез. Контроль гемостаза осуществляется видеолапароскопически, после ушивания мини-лапаротомии и индукции пневмоперитонеума. На этом этапе рекомендуется введение протамина сульфата для нейтрализации гипокоагуляционного состояния донора. Роботический комплекс до конца операции должен оставаться стерильным, поскольку с его помощью намного легче накладывать прецизионные швы на сосуды при возможном кровотечении. В область почечного ложа устанавливают дренажную трубку и рассасывающимся шовным материалом ушивают операционные раны внутрикожными швами (рис. 22.13).

22.4.5. Правосторонняя нефрэктомия
При правосторонней нефрэктомии установка портов и другие этапы операции производятся аналогично эксплантации почки слева, но нередко требуется установка еще одного 5-мм порта в эпигастральной области для ретракции печени. Анатомия правых почечных сосудов отличается от таковой у левых сосудов: правая почечная вена намного короче левой, а при выделении правой почечной артерии следует соблюдать особую осторожность. Вероятно, наиболее безопасным способом предотвращения повреждения почечной вены и ее ветвей является предварительное выделение почечной артерии. Этого удается добиться, придав почке медиальное положение после ее полной мобилизации от паранефральной клетчатки.
22.5. Роботическая мануально-ассистированная нефрэктомия
22.5.1. Положение донора, разрез, расположение портов
После общей анестезии пациенту придают модифицированное латеральное положение на правом боку под углом 60° к операционному столу. Первым этапом выполняют мини-лапаротомию путем срединного разреза ниже пупка или разреза Кюстнера длиной около 8 см. На 3 см выше и слева от пупка устанавливают 12-мм оптический порт для видеолапароскопа под углом 30°, в это время рука ассистента, введенная в брюшную полость через мини-лапаротомию, прикрывает предполагаемую проекцию ворот почки. Два 8-мм роботических порта устанавливают по передней подмышечной линии на 2 см ниже подреберья и на 2 см ниже уровня пупка соответственно. Затем выполняют стыковку роботического комплекса, расположенного позади донора, с подготовленными портами (рис. 22.14). Для уменьшения частоты инфицирования послеоперационной раны ассистент оборачивает стерильным полотенцем свою руку, выполняющую манипуляции в брюшной полости. Первыми используемыми инструментами роботического комплекса являются: биполярный диссектор типа Maryland в правом манипуляторе и монополярный электрод с L-образным крючком в левом манипуляторе.

22.5.2. Время консоли хирурга: левосторонняя или правосторонняя нефрэктомия
Мобилизация почек, подготовка сосудов и мочеточников, а также их пересечение выполняют аналогично мануально-ассистированной нефрэктомии или робот-ассистированной нефрэктомии. Основным различием между этими техниками служит возможность быстрого мануального контроля гемостаза в случае внезапного кровотечения при роботической нефрэктомии. Кроме того, при мануально-ассистированной нефрэктомии рука ассистента может обеспечивать лучшую экспозицию за счет отведения кишечника во время операции.
Литература
-
Hariharan S., Johnson C.P., Bresnahan B.A. et al. Improved graft survival after renal transplantation in the United States, 1988–1996 // N. Engl. J. Med. 2000. Vol. 342, N 9. P. 605–612.
-
Ibrahim H.N., Foley R., Tan L., Rogers T. et al. Long-term consequences of kidney donation // N. Engl. J. Med. 2009. Vol. 360, N 5. P. 459–469.
-
Ratner L.E., Ciseck L.J., Moore R.G. et al. Laparoscopic live donor nephrectomy // Transplantation. 1995. Vol. 60, N 9. P. 1047–1049.
-
Leventhal J.R., Kocak B., Salvalaggio P.R. et al. Laparoscopic donor nephrectomy 1997 to 2003: lessons learned with 500 cases at a single institution // Surgery. 2004. Vol. 136. P. 881–890.
-
Mertens zur Borg I.R., Di Biase M., Verbrugge S.J. et al. Comparison of three perioperative fluid regimes for laparoscopic donor nephrectomy. A prospective randomized dose-finding study // Surg. Endosc. 2008. Vol. 22, N 1. P. 146–150.
-
Ahmad G., O’Flynn H., Duffy J.M. et al. Laparoscopic entry techniques // Cochrane Database Syst. Rev. 2012. N 2. Article ID CD006583.
-
Friedman A.L., Peters T.G., Jones K.W. et al. Fatal and nonfatal hemorrhagic complications of living kidney donation // Ann. Surg. 2006. Vol. 243, N 1. P. 126–130.
-
Saad S., Paul A., Treckmann J. et al. Laparoscopic live donor nephrectomy for right kidneys: experience in a German community hospital // Surg. Endosc. 2008. Vol. 22. P. 674–678.
-
Horgan S., Vanuno D., Sileri P., Cicalese L., Benedetti E. Robotic-assisted laparoscopic donor nephrectomy for kidney transplantation // Transplantation. 2002. Vol. 73, N 9. P. 1474–1479.
-
Galvani C.A., Garza U., Leeds M. et al. Single-incision robotic-assisted living donor nephrectomy: case report and description of surgical technique // Transpl. Int. 2012. Vol. 25, N 8. P. e89–e92.
-
Oberholzer J., Tzvetanov I., Mele A., Benedetti E. Laparoscopic and robotic donor pancreatectomy for living donor pancreas and pancreas-kidney transplantation // J. Hepatobiliary Pancreat. Sci. 2010. Vol. 17, N 2. P. 97–100.
-
Pietrabissa A., Abelli M., Spinillo A. et al. Robotic-assisted laparoscopic donor nephrectomy with transvaginal extraction of the kidney // Am. J. Transplant. 2010. Vol. 10, N 12. P. 2708–2711.
-
Gorodner V., Horgan S., Galvani C. et al. Routine left robotic-assisted laparoscopic donor nephrectomy is safe and effective regardless of the presence of vascular anomalies // Transpl. Int. 2006. Vol. 19, N 8. P. 636–640.
-
Giacomoni A., Di Sandro S., Lauterio A. et al. Initial experience with robot assisted nephrectomy for living donor kidney transplantation: feasibility and technical notes // Transplant. Proc. 2013. Vol. 45, N 7. P. 2627–2631.
-
Horgan S., Benedetti E., Moser F. Robotically assisted donor nephrectomy for kidney transplantation // Am. J. Surg. 2004. Vol. 188, suppl. 4A. P. 45S–51S.
-
Horgan S., Galvani C., Gorodner M.V. et al. Effect of robotic assistance on the «learning curve» for laparoscopic hand-assisted donor nephrectomy // Surg. Endosc. 2007. Vol. 21, N 9. P. 1512–1517.
-
Giacomoni A., Di Sandro S., Lauterio A. et al. Evolution of robotic nephrectomy for living donation: from hand assisted to totally robotic // Int. J. Med. Robot. 2014. Vol. 10, N 3. P. 286–293.
-
Hubert J., Renoult E., Mourey E. et al. Complete robotic-assistance during laparoscopic living donor nephrectomies: an evaluation of 38 procedures at a single site // Int. J. Urol. 2007. Vol. 14, N 11. P. 986–989.
-
Liu X.S., Narins H.W., Maley W.R. et al. Robotic-assistance does not enhance standard laparoscopic technique for right-sided donor nephrectomy // JSLS. 2012. Vol. 16, N 2. P. 202–207.
-
Giacomoni A., Concone G., Di Sandro S., Lauterio A., De Carlis L. The meaning of surgeon’s comfort in robotic surgery // Am. J. Surg. 2014. Vol. 208, N 5. P. 871–872. DOI: https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2014.04.012
-
Giacomoni A., Di Sandro S., Lauterio A. et al. Robotic nephrectomy for living donation: surgical technique and literature systematic review // Am. J. Surg. 2015. pii: S0002-9610(15)00538-3. DOI: https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2015.08.019
Заключение
Нарратив: сложные ситуации при донорстве органов
Dis aliter visum Dis aliter visum (лат.) — боги решили иначе.
Вергилий, Энеида
23 июня 2008 г., около полудня,
госпиталь Нигуарда, Милан
Я, как обычно, торопливо иду по дороге на территории своего госпиталя. За мной следует медсестра в синем хирургическом костюме и внезапно обращается ко мне: «Доктор! Вы помните, что случилось десять лет назад?» Я слышу веселый голос и пытаюсь его узнать: «Доктор, я обращаюсь к вам. Вы помните, что произошло десять лет назад?» «Простите, вы разговариваете со мной?» — отвечаю я, присматриваясь к медсестре, с которой, право, не припомню, чтобы когда-либо встречался раньше. Продолжаю: «Я действительно не помню, что случилось десять лет назад!» В полном изумлении я смотрю на улыбающуюся мне медсестру и, все еще не понимая происходящего, говорю полный вздор: «Почему я должен знать, что произошло десять лет назад? Возможно, моя любимая футбольная команда «Интер» выиграла кубок УЕФА?» «Постарайтесь все же вспомнить, что произошло десять лет назад», — с улыбкой произносит медсестра, а я осторожно добавляю: «Полагаю в 1998-м случилось многое». «Десять лет назад, — снова начинает она, — моей маме пересадили замечательную печень, а вы рисковали своей жизнью, попав в страшную аварию».
В долю секунды я вспоминаю о той катастрофе 23 июня 1998 г. и тут же спрашиваю девушку: «Как сейчас чувствует себя твоя мама?» «Отлично, прекрасно выглядит. Вы хотели бы увидеть ее снова?» «Почему нет? Я был бы рад встретиться с ней, но почему за эти десять лет я ни разу ее не видел?» «Доктор, нам было стыдно за мою оплошность, поэтому мы были под наблюдением у других врачей, но мама всегда справляется о вас!» «Самое главное, чтобы у твоей мамы хорошо работала пересаженная печень», — добавляю я, улыбаясь. «Печень работает отлично», — с уверенностью произносит медсестра, тепло машет мне рукой и добавляет на прощание: «Спасибо, доктор, у вас действительно замечательные врачи!» А я размышляю над тем, что она сказала до этого, и пытаюсь понять, какую оплошность она имела в виду.
23 июня 1998 г., 5 часов утра,
автострада Брешиа–Милан [1]
Дремота может быть хороша, чтобы восстановить немного сил, которые потребуются для продолжения работы в операционной, а прибыть туда мы должны в 6:30 утра.
Мы выехали на автостраду Брешиа — Милан в 5:15 утра. В стандартных термоконтейнерах синего и белого цвета находились печень и поджелудочная железа, полученные от донора, умершего в результате геморрагического инсульта. Наш синий «Мерседес» мчался по встречной полосе, чтобы как можно скорее доставить нас и донорские органы в госпиталь Милана. Мой замечательный молодой коллега иранского происхождения по прозвищу Авиценна напомнил, что мы не ели уже почти сутки, поскольку должны были быстро подготовить все необходимое для предстоящего изъятия органов. Около 17 часов мы выехали в больницу Spedali Civili di Brescia. Как это часто бывает, начало эксплантации было отложено на несколько часов…
Возвращаясь в Милан, я задумался о том, как организовать подготовку органов на этапе back-table по прибытии, а также о возможности выпить кофе и съесть круассан перед началом трансплантации.
23 июня 1998-го был безоблачный солнечный день, и с первыми лучами солнца мы увидели холмы Брешии. Внезапно произошел сильный взрыв, затем — вспышка искр, за которой последовал пугающий скрежет металлических обломков, и я почувствовал жгучую боль в груди и шее, которая обрушилась на меня. Я помню свою последнюю мысль перед тем, как потерять сознание: «Господи, Ты создал это прекрасное голубое небо, помилуй меня».
Не помню, как долго я был без сознания. Я попытался выбраться из салона «Мерседеса», который превратился в месиво, но пульсирующая боль в груди не позволяла мне сдвинуться ни на сантиметр. Я видел, как на траве рядом с аварийной полосой лежал наш водитель. Слабым голосом он пытался позвать на помощь, набирая номер скорой помощи 118. Я полагал, что серьезно ранен, и начал бояться, что помощь прибудет слишком поздно. Затем появление моего молодого коллеги Авиценны, прихрамывающего, но идущего уверенно, придало мне сил, и я немного успокоился.
«Эй, док! Как твои дела? — произнес он твердым тоном. — Не волнуйся! Мне удалось дозвониться в операционную, чтобы отложить начало операции. Контейнеры с печенью и поджелудочной железой выпали из багажника и лежат на асфальте. К сожалению, мой телефон отключился, но я увидел, что один из водителей пытается вызвать нам помощь. Не двигайся!» «Хорошая шутка», — подумал я. — Этот восторженный простофиля хочет стать героем: сначала он звонит в операционную и только потом пытается вызвать помощь. Мы теряем время, ведь следующим донором могу стать я сам.
Инстинктивно я отбросил эту ужасную мысль апотропейным жестом вечно суеверного хирурга. Пронзительный рев клаксонов огромных грузовиков с прицепами, которые проезжали мимо нас без остановки и справа и слева, наводил ужас. Несколько грузовиков, как настоящие монстры, небрежно пронеслись мимо смятой машины, в которой я застрял посреди дороги, и пригрозили дать мне coup de graceCoup de grace (фр.) — последний, решающий удар, которым добивают умирающего из жалости; удар милосердия.
После некоторого колебания отважный Авиценна забрался в разбитую машину, повернул ключи, чтобы завести двигатель, и переместил ее метров на шесть, со средней полосы на аварийную.
Прошло около пятидесяти бесконечных минут, прежде чем с ревущими сиренами прибыли машины скорой помощи. Когда спасатели начали вытаскивать меня из кабины, я стал терять сознание, однако, когда я услышал, как медсестра приказала перевезти меня в ближайшую больницу, я попытался прошептать: «Пожалуйста, перевезите меня в хорошо оборудованную больницу; у меня могут быть серьезные травмы грудной клетки».
Я потратил немало времени на убеждение своего коллеги в Центре скорой медицинской помощи, что моя транспортировка в больницу без отделений торакальной хирургии и нейрохирургии может стать для меня фатальным решением. Тем временем я узнал об автокатастрофе. Бандиты на угнанной «Альфа-Ромео» врезались в наш «Мерседес», пытаясь остановить и угнать его. Удивленные масштабом аварии, преступники скрылись без следа. Такой тип кражи дорогих автомобилей был широко распространен в течение всего года на автостраде Милан — Венеция.
Через 20 минут пронзительной и мучительной боли в груди мы прибыли в сопровождении трех машин парамедиков в отделение скорой медицинской помощи той же самой больницы Spedali Civili di Brescia, откуда выехали час назад. Я помню, как сонный молодой доктор, осматривавший нас, госпитализировал всех троих в одну палату отделения. В тот момент мне сообщили о переломах шести ребер, гемотораксе, черепно-мозговой травме и травме шеи, а также о двух переломах позвонков со смещением дорсальных фрагментов тел в позвоночный канал. В этот момент я подумал, что, возможно, Кто-то решил, что мое время еще не пришло.
Те донорские органы, которые мы везли, были успешно трансплантированы. После случившейся аварии печень была быстро доставлена в миланский госпиталь Нигуарда, а поджелудочная железа — в рядом расположенную больницу, ожидавшую этот орган. В операционной при тщательном осмотре не было выявлено нарушения целостности ни одного из пакетов, в которые были упакованы печень и поджелудочная железа. Не было обнаружено и повреждений самих органов, которые впоследствии были успешно пересажены реципиентам.
В начале сентября 1998 г. я вернулся к работе в своем отделении, хотя все еще чувствовал себя слегка неуверенно — ведь прошло менее двух месяцев после того несчастного случая.
Я с определенным трудом преодолел два лестничных пролета, чтобы добраться до своего хирургического отделения, восстанавливая мышечный тонус, утраченный после травм. Дальше по коридору я увидел женщину, возмущавшуюся и жаловавшуюся моим коллегам, что она уже больше тридцати минут ждет дежурного врача. По ее мнению, это было недопустимо! Она хотела поговорить с руководителем отделения, чтобы выразить свое возмущение по поводу этой ситуации. Ее матери два месяца назад была выполнена трансплантация печени, и она ждала, когда этот бессовестный доктор произведет осмотр и перевязку, поскольку они спешили и не могли провести весь день в ожидании «какого-то доктора».
В связи с жалобами пациентки и ее родственницы мой начальник сделал мне выговор за то, что я на полчаса опоздал на эту встречу. Тут же, перед моими коллегами, которые в противном случае приветствовали бы меня улыбками по возвращении на работу. Молодая женщина гордо выпрямилась, довольная тем, что я был унижен, и добавила: «А теперь мы пойдем и не будем больше терять времени! Я работаю в этой больнице уже много лет и никогда не потерплю бездельников!»Я был ошеломлен и очень расстроен, услышав эти неожиданные слова. Женщина чуть старше пятидесяти лет ждала обычную перевязку раны, которая уже зажила. Просматривая медицинскую документацию, я заметил дату трансплантации печени. Это произошло в тот же день, что и моя автокатастрофа, и я понял, что нахожусь рядом с пациенткой, ради жизни которой чуть не расстался с собственной.
Поначалу мне пришлось подавить в себе легкий намек на гнев, но вскоре он сменился сильным чувством подавленности. Увидев, что у меня глаза на мокром месте, пациентка заметила, что я выгляжу очень взволнованным. Когда я закончил перевязку, она спросила меня: «Доктор, что-то не так?» «Не волнуйтесь, все в порядке. Я просто подумал, что запомнил дату вашей трансплантации на всю оставшуюся жизнь», — ответил я. Пациентка в свою очередь почувствовала, что, возможно, она находится в присутствии человека, который рисковал своей жизнью, чтобы она получила новую печень, и о котором она слышала историю, появившуюся в нескольких газетах. Пациентка и ее дочь, также испытавшая неловкость, рассыпались в извинениях за печальный эпизод, произошедший ранее. Я тоже извинился за опоздание и, улыбаясь, помахал рукой на прощание.
Всего через несколько месяцев я возобновил свою работу хирургом, с некоторым хрустом костей, но в целом с энтузиазмом, который помог мне вновь обрести себя. В то утро я видел Авиценну и рассказал ему о невероятном казусе с медсестрой. Растроганный, он обнял меня. «Право же, нам с вами очень повезло, док!» Это все, что он смог сказать. «Авиценна, ты прав! Все обернулось к лучшему», — ответил я.

Литература