
Ранняя диагностика профессиональных заболеваний : руководство / Н. А. Павловская. - Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2020. - 128 с. - DOI: 10.33029/9704-5726-9-EDO-2020-1-128. - ISBN 978-5-9704-5726-9. |
Аннотация
В руководстве представлена методология изучения диагноsстических характеристик биомаркеров, разработанная на основании закономерностей изменения их уровней. Предложена методика выбора наиболее информативных лабораторных биомаркеров и разработки их комплексов для ранней диагностики вредного профессионального воздействия. Установлены диагностические характеристики лабораторных маркеров при воздействии производственной пыли, физических и химических вредных факторов на организм рабочих, контактирующих с вредными производственными факторами.
Издание предназначено врачам-профпатологам, врачам-лаборантам, специалистам по лабораторной диагностике профессиональных заболеваний, врачам по гигиене труда, научным сотрудникам, аспирантам и студентам медицинских вузов.
Список сокращений
АЛК - δ-аминолевулиновая кислота
АЛК-Д - дегидратаза δ-аминолевулиновой кислоты
АЛК-Дэр - дегидратаза δ-аминолевулиновой кислоты в эритроцитах
АЛКм - δ-аминолевулиновая кислота
АСИ - антракосиликоз
БЗЭ - базофильнозернистый эритроцит
БМ - биомаркер
ВБ - вибрационная болезнь
ГП - гаптоглобин
ДС - диагностическая специфичность
ДЧ - диагностическая чувствительность
ДЭ - диагностическая эффективность
ИЛ - интерлейкин
ИО - истинно отрицательный результат теста
ИП - истинно положительный результат теста
ИФА - иммуноферментный анализ
КАТ - каталаза
КП - копропорфирин
КПм - копропорфирин в моче
КР - концентрация креатинина в моче
КФн - кислая фосфатаза нейтрофилов
МДА - малоновый диальдегид
НСТ - нитросиний тетразолий
ОП - оксипролин
ПЗ - прогностическая значимость
ПЗОД - пылевые заболевания органов дыхания
ПОЛ - перекисное окисление липидов
Рвкр - свинец в крови
Рвм - свинец в моче
СОД - супероксиддисмутаза
ТБК - тиобарбитуровая кислота
Тл - тимусзависимые лимфоциты
ФНО-α - фактор некроза опухоли α
ХЛ - хемилюминесценциия
ХПБ - хронический пылевой бронхит
ХСИ - хроническая свинцовая интоксикация
ЦК - цитокин
Ig - иммуноглобулин
pH - водородный показатель
ZPP - цинк-протопорфирин
Введение
Важнейшей особенностью медицины ХХI в . становится развитие предиктивного, профилактического направлений На основе традиционной медицины предполагается формирование персонального подхода к каждому человеку Основные задачи персонализированной медицины - изучение молекулярных механизмов заболеваний, поиск наиболее информативных тестов (биомаркеров) для раннего выявления заболеваний, разработка способов профилактики и эффективных лекарственных средств для лечения болезней [1].
Изучение молекулярных механизмов развития профессиональных заболеваний - одна из приоритетных задач развития профессиональной патологии. Главной задачей при изучении состояния здоровья является раннее выявление признаков действия на организм работающих неблагоприятного фактора производственной среды Не клиническая симтоматика, а прежде всего морфологические и биохимические изменения должны быть главным ориентиром выявления начальных стадий заболевания На этой основе возможна разработка и внедрение методов профилактики, ранней диагностики, лечения и медицинской реабилитации Развитие молекулярной медицины способствует созданию прогностического и профилактического направлений, позволяющих проводить доклиническую диагностику, выявлять лиц с ранними признаками заболевания и осуществлять своевременные профилактические мероприятия.
В профессиональной патологии раннее выявление признаков действия вредных производственных факторов имеет существенное значение, так как многие профзаболевания неизлечимы Для снижения профессиональной заболеваемости, повышения продолжительности жизни рабочих реабилитация должна начинаться еще до возникновения болезни [2, 3, 4].
Однако в настоящее время многие вопросы выявления ранних изменений в организме при воздействии вредных производственных факторов остаются нерешенными В большинстве случаев выбор информативных лабораторных тестов осуществляется лишь на основании изучения изменений их средних значений в организме больных профессиональными заболеваниями.
В руководстве проанализированы методы оценки информативности лабораторных тестов; способы выбора информативных лабораторных биомаркеров, предлагаемые в литературе; обоснована стратегия выбора наиболее эффективных биомаркеров для ранней (в том числе доклинической) диагностики профессиональных заболеваний Предложены критерии оценки информативности лабораторных биомаркеров и методы выбора диагностически значимых тестов и их комплекса для раннего выявления неблагоприятного воздействия на организм человека вредных производственных факторов. Установлены диагностические характеристики лабораторных биомаркеров при действии угольной пыли, вибрации, вибрации в сочетании с повышенными уровнями никеля, а также свинца на организм работающих Оценка диагностических характеристик лабораторных показателей положена в основу выбора наиболее диагностически значимых биомаркеров для раннего выявления изменений, происходящих в организме при действии вредных производственных факторов.
Глава 1. ЛАБОРАТОРНЫЕ БИОМАРКЕРЫ И ИХ РОЛЬ В МЕДИЦИНЕ
1.1. Лабораторные биомаркеры и их классификация
Термин «биомаркер» (БМ) был предложен в 1989 г. Vasan R. S . Биомаркер - это измеряемый количественный биологический параметр (например, концентрация гормонов, активность энзимов и других биологических объектов), присутствующий в биологических субстанциях, который является индексом здоровья или относительного риска, диагностики заболевания [5].
Биомаркер - это индикатор риска и предиктор развития заболевания (а не только патологии), индикатор эффективности лечения, диагностики и прогнозирования болезни.
Биомаркеры включают почти любые измерения, отражающие взаимодействие между биологической системой и химической, физической, биологической опасностью. Измеренный ответ может быть функциональным, биохимическим, на клеточном уровне, физиологическим или результатом молекулярного взаимодействия.
БМ могут быть рентгенологические, физиологические, гематологические, биохимические, цитохимические, иммунологические, гистохимические, генетические и другие тесты, характеризующие состояние организма человека.
БМ позволяют выявить ранние признаки действия вредных факторов окружающей и производственной среды, оценить эффективность и токсичность лекарственного препарата, прогнозировать общий исход заболевания, предсказать эффективность лечения Идентификация специфических БМ может быть использована для диагностики и прогнозирования риска развития заболеваний.
Кроме этого, БМ используют для ранней диагностики, прогнозирования течения болезни, оценки эффективности лечения, биологических механизмов развития заболевания, а также для прогнозирования вероятности заболевания, планирования и оценки программы общественного здоровья.
Согласно Международной программе химической безопасности (JPCS) БМ делятся на 3 класса: воздействия, эффекта и чувствительности [5].
БМ воздействия - химические вещества, или их метаболиты, или продукты взаимодействия между химическим веществом и молекулами организма или клетками, которые измеряются в органах или тканях организма.
БМ эффекта - измеряемые биохимические, физиологические, поведенческие или другие изменения в организме, которые могут быть связаны с ухудшением здоровья или заболеванием.
БМ чувствительности - это индикаторы, указывающие на способность организма реагировать на воздействие вредных факторов.
БМ первых двух типов используют для профилактики, лечения, диагностики, прогнозирования течения заболевания и оценки эффективности лекарственных средств.
В настоящее время генетический скрининг может быть использован как индикатор восприимчивости к производственной опасности или предиктор будущего здоровья.
1.2. Требования к идеальным биомаркерам
Идеальными БМ считаются тесты, значения которых существенно возрастают при заболевании, БМ легко определяются в биологических средах, уровни их коррелируют с прогрессированием заболевания, определение БМ проводится быстро и не требует больших экономических расходов.
Идеальные БМ должны соответствовать следующим условиям:
Изменения уровней идеальных БМ должны существенно возрастать при заболевании, коррелировать с прогрессированием заболевания, легко и быстро определяться в организме Коррелирующий при прогрессировании заболевания БМ должен быть предиктором болезни, индикатором эффективности лечения и прогнозировать ход и течение болезни [5].
Методы определения БМ должны быть экономически выгодными и специфичными Диагностическая чувствительность (ДЧ) идеальных БМ должна быть выше 0,9; диагностическая специфичность (ДС) ≥0,9. БМ должны точно отражать основные симптомы и стадии болезни.
При применении БМ имеются и ограничения, которые определяются стоимостью анализа, длительностью проведения обследования, лабораторными ошибками, отсутствием избирательности, трудностью установления нормы.
1.3. Диагностическая информативность биомаркеров
При выборе информативных тестов в настоящее время важны данные о количественной мере информационной и экономической ценности лабораторных данных. Информационная оценка важна для определения значимости лабораторных исследований в диагностике отдельных форм патологии.
Для измерения клинической ценности наиболее существенны следующие критерии: диагностическая информативность тестов, надежность выдаваемой информации, своевременность получения информации Диагностическая информативность тестов зависит от патогномоничности, то есть от соответствия обнаруживаемого отклонения сущности патологического процесса, что позволяет устанавливать диагноз [6].
Для выбора наиболее значимых БМ оценивают их информативность, которую определяют по ДЧ и диагностической специфичности (ДС), диагностической эффективности (ДЭ), прогностической значимости (ПЗ+) или ценности и другим критериям [6, 7].
Для оценки диагностической значимости БМ предлагают рассчитывать чувствительность или диагностическую чувствительность и специфичность или диагностическую специфичность тестов.
Термины - «чувствительность» [8] и «диагностическая чувствительность» [6, 7], используемые в литературе разными авторами, отражают одно и то же понятие: долю больных, у которых уровень БМ выходит за границы нормы. Однако термин «чувствительность» давно применяется в аналитической химии для оценки аналитических свойств методик Поэтому использование его для оценки диагностической информативности БМ приводит к путанице Более четко отражает диагностические свойства БМ термин «диагностическая чувствительность».
Для оценки информативности БМ в литературе также применяются термины «специфичность» [8] и «диагностическая специфичность» [6, 7], которые характеризуют долю истинно отрицательных результатов у лиц контрольной группы Поскольку термин «специфичность» в аналитической химии используют для оценки избирательности методик, то для оценки информативности БМ целесообразнее применять термин «диагностическая специфичность».
ДЧ - вероятность того, что у больного будет получен положительный результат О ДЧ судят по доле (%) положительных результатов у пациентов с соответствующим заболеванием [6, 7].
ДС - вероятность того, что у здорового будет получен отрицательный результат О ДС судят по доле (%) отрицательных результатов у лиц, не страдающих соответствующим заболеванием.
При проведении аналитической валидации должны быть определены воспроизводимость и точность анализа, чувствительность метода и его специфичность, а также нижняя граница определения.
При оценке квалификации БМ определяют корреляцию между тяжестью заболевания и уровнем БМ.
Для интерпретации диагностической значимости лабораторных тестов может быть использована теорема Байеса. Для ее применения необходимо выполнить шесть основных требований:
1 - четкое определение болезни с помощью клинических, патологоанатомических, лабораторных и других критериев;
2 - демаркацию болезни (установление стадии в патогенезе заболевания);
3 - установление клинической (диагностической) чувствительности: частоту истинно положительных результатов у лиц с заболеванием на определенном этапе его болезни;
4 - установление «клинической специфичности» теста (частоты истинно отрицательных результатов у лиц без заболевания);
5 - установление доли лиц с заболеванием на определенной стадии патогенеза, которые в настоящее время имеются в популяции;
6 - знание клинической стоимости положительных и отрицательных диагнозов [9].
Диагностическая точность (Diagnostic Accuracy, DA) - это способность с помощью БМ отличить пациентов без заболевания и с заболеванием При изучении DA результаты тестов сравнивают с эталонным стандартом, полученным в этом же исследовании Для установления DA авторы предлагают выбрать серию пациентов с определенным заболеванием и провести у них определение изучаемого теста.
Информативность БМ определяют также с помощью операционной характеристики ROС (Receiver Operating Characteristic curve), которая иллюстрирует баланс между чувствительностью и специфичностью. Каждая точка на кривой ROС указывает на вероятность положительного результата Применение и оценка результатов определения БМ основана на применении байесовского подхода С помощью чувствительности и специфичности рассчитывают вероятность заболевания БМ для скрининга, диагностики или прогноза оценивают также, учитывая их дискриминацию, то есть способность БМ отличать лиц, у которых будет развиваться заболевание, от тех, у кого развития заболевания не ожидается.
ROС-кривая показывает зависимость верно диагностированного количества от числа неверно диагностированных отрицательных случаев Идеальный диагностический тест должен иметь Г-образную форму Чем ближе кривая к диагонали, тем меньше информативность теста.
Об информативности БМ можно судить и по площади под кривой ROС - AUC (Area Under Curve). При значении AUC равном 0,9-1,0 отмечается отличное качество, при AUC 0,8-0,9 - высокое качество, при 0,7-0,8 - хорошее, при 0,6-0,7 - среднее, при 0,5-0,6 - плохое [10].
Характеристические кривые позволяют наглядно сопоставить ДЭ различных методов исследования при обнаружении одного и того же патологического процесса. При анализе ROC-кривых придерживаются следующего принципа: чем ближе к левому верхнему углу координатной сетки расположена кривая, тем выше информативность исследуемого метода диагностики или лучше качество системы отображения данных. Если кривая прилежит к диагонали (или совпадает с ней), то информативность метода ничтожна.
Для сравнения результатов, полученных у больных, используют референтные значения.
Для разработки референтных значений уровни БМ определяют у здорового населения в зависимости от возраста, пола, этнической принадлежности Обследуют не менее 200 здоровых лиц Очень важно оценить характер статистического распределения БМ у населения и пациентов. Устанавливают референтный размах (интервал между минимальным и максимальным значениями) и используют дискриминантный лимит 95 или 97,5 перцентиля при выборе нормальных значений Устанавливают порог риска, то есть такой уровень, при котором риск заболевания начинает повышаться.
Глава 2. ЛАБОРАТОРНЫЕ БИОМАРКЕРЫ В ПРОФПАТОЛОГИИ
При действии на организм человека вредных производственных факторов в нем происходят многочисленные изменения на молекулярном и клеточном уровнях.
2.1. Лабораторные биомаркеры, уровни которых изменяются при действии производственной пыли
При поступлении в органы дыхания фиброгенной пыли установлены многочисленные изменения уровней молекулярных и клеточных показателей (табл . 2-1).

Из табл 2-1 видно, что при действии производственной пыли существенно изменяются уровни показателей окислительного метаболизма: активизируются процессы свободнорадикального окисления, антиоксидантной защиты, перекисного окисления липидов (ПОЛ). Происходят изменения иммунного статуса организма, активности многих ферментов, концентрации ряда металлов, нарушается белковый обмен, возникают воспалительные и воспалительно-деструктивные процессы, активизируются процессы фиброзообразования.
Многие из приведенных в табл 2-1 показателей предложены для диагностики пылевых заболеваний органов дыхания: определение концентрации реактивных форм кислорода, активности антиоксидантных энзимов (СОД, КАТ, ГП, глутатонредуктаза), концентрации показателей ПОЛ (кетодиенов, диеновых конъюгатов, шиффовых оснований, МДА, изопростана), определение относительного и абсолютного числа СД3+, СД4+, СД8+, СД16+, СД95+. СД25+, лимфоцитов, сывороточных IgA, IgM, IgG, теста НСТ, неоптерина, фагоцитарной активности нейтрофилов крови, HLA-DR, IgG, IgE, CH50, фактора некроза опухоли α (ФНО-α), интерлейкинов (ИЛ) - ИЛ-1α, ИЛ-1β, ИЛ-4. ИЛ-10, интерферона; меди, селена, цинка; факторов роста фибробластов FGF (от англ. Fibroblast Growth Factor), TGF (от англ. Transforming growth factor), PDGF; гаптоглобина и ОП; нейронспецифической энолазы, ферритина и др.
Применить все предлагаемые БМ на практике затруднительно из-за их многочисленности Провести обоснованный выбор наиболее информативных маркеров на основе большинства опубликованных материалов не представляется возможным, так как сведения о диагностической информативности тестов авторами не изучены Не установлено, на какой стадии развития заболевания начинаются достоверные изменения уровней маркеров, каковы значения ДЧ и как они изменяются в зависимости от тяжести заболевания, имеется ли связь изучаемого теста с патогенезом заболевания и др.
2.2. Лабораторные биомаркеры, уровни которых изменяются при действии вибрации на организм рабочих
Многочисленные молекулярные и клеточные изменения в организме человека выявлены и при действии повышенных уровней производственной вибрации (табл. 2-2).
Из табл 2-2 видно, что в организме рабочих изменяются значения показателей оксидативного стресса, иммунной системы, периферической крови, кислотно-основного равновесия, гормонального статуса, липидного, углеводного обмена, свертывающей системы крови и др Многие тесты, приведенные в табл 2-2, рекомендованы для диагностики вибрационной болезни (ВБ). Однако в связи с отсутствием диагностических характеристик для большинства показателей применение их проблематично.

Известны многочисленные молекулярные и клеточные изменения в организме рабочих и при действии множества других вредных производственных факторов Однако в большинстве случаев применить их для раннего выявления вредного воздействия, приводящего к развитию профессионального заболевания, не представляется возможным, так как не установлены их диагностические характеристики В настоящее время для подавляющего большинства БМ отсутствуют данные о ДЧ, об изменениях уровней БМ у практически здоровых стажированных рабочих, не учитывается специфичность лабораторного теста, не выяснена патогномоничность и избирательность.
Для выбора наиболее информативных лабораторных тестов для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов на организм работающих необходима обоснованная методология оценки диагностических характеристик БМ. Разработка методологии выбора информативных лабораторных показателей может быть основана на данных об особенностях (закономерностях) изменения уровней маркеров в биосредах организма человека, подвергающегося их действию.
2.3. Закономерности изменения лабораторных показателей при действии вредных производственных факторов
Установлено, что при действии вредных производственных факторов на организм человека молекулярные и клеточные изменения подчиняются следующим закономерностям [3].
-
При действии вредных производственных факторов наиболее рано в организме человека происходят молекулярные и клеточные изменения.
-
Уровни (концентрация, активность) различных тестов, отражающих молекулярные и клеточные нарушения в организме, начинают изменяться на разных стадиях развития профессионального заболевания.
-
Изменения уровней различных лабораторных показателей при действии производственных факторов наблюдаются (в большинстве случаев) не у всех больных определенным заболеванием.
-
Частота встречаемости пациентов, у которых изменяются уровни разных молекулярных тестов (ДЧ), варьирует от единиц до 100%.
-
Частота встречаемости рабочих, у которых изменен уровень лабораторного БМ (ДЧ), зависит от выраженности воздействия вредного фактора.
-
Если изменение уровня БМ связано с патогенезом заболевания, ДЧ повышается при возрастании тяжести заболевания.
-
Количество БМ, уровни которых изменяются при действии вредных факторов, увеличивается по мере возрастания тяжести заболевания.
Закономерности изменений уровней БМ в организме человека при действии вредных факторов позволяют обосновать требования и разработать методические подходы к выбору информативных БМ и созданию диагностических комплексов для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов.
Глава 3. МЕТОДИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К ОЦЕНКЕ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ИНФОРМАТИВНОСТИ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОМАРКЕРОВ В ПРОФЕССИОНАЛЬНОЙ ПАТОЛОГИИ
3.1. Диагностические характеристики биомаркеров, необходимые для оценки их информативности
Особенности (закономерности) изменения уровней лабораторных показателей в организме человека при воздействии вредных производственных факторов определяют требования, которые необходимы при оценке их диагностической информативности [3].
Для установления диагностических характеристик лабораторных показателей необходимо провести следующее.
-
Четко определить болезни каждого пациента с помощью клинических, функциональных, лабораторных методов исследования и установить стадии заболевания.
-
Выявить стадию развития профзаболевания, при которой средние значения изучаемых лабораторных тестов начинают достоверно изменяться.
-
Рассчитать частоту встречаемости пациентов, у которых уровень БМ выходит за границы нормы (ДЧ), для всех стадий развития профзаболевания. Выявить БМ, частота встречаемости измененных значений которых выходит за границы референтных уровней у практически здоровых рабочих.
-
Рассчитать частоту истинно отрицательных результатов у лиц без заболевания (ДС).
-
Рассчитать коэффициенты корреляции между тяжестью заболевания и ДЧ.
Такая информация считается основанием для выбора наиболее информативных показателей раннего выявления нарушений в организме человека при том или ином вредном воздействии Получение материалов, которые необходимы при оценке диагностической информативности лабораторных тестов, возможно при изучении влияния вредных производственных факторов на организм работающих.
3.2. Методические подходы к оценке диагностической информативности лабораторных биомаркеров
Для установления диагностических характеристик БМ, которые позволяют выявить наиболее ранние показатели, оценить вероятность развития профзаболевания, патогномоничность БМ, прогностическую ценность маркера, проводят исследования на рабочих, подвергающихся воздействию вредных производственных факторов Проводится медицинское обследование пациентов в соответствии с утвержденными методическими рекомендациями и лабораторное исследование биоматериалов с применением методов, диагностическую информативность которых целесообразно изучить В основу выбора лабораторных показателей, которые предполагается изучить, могут быть положены данные литературы о патогенезе профзаболевания, новые тесты, результаты собственных наблюдений и др.
Аналитические характеристики лабораторных методик, которые предполагается изучить, должны соответствовать определенным требованиям.
3.2.1. АНАЛИТИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ЛАБОРАТОРНЫХ МЕТОДИК
Все аналитические и биохимические методы должны соответствовать определенным критериям, численные значения которых обусловлены задачами, стоящими перед исследователем. К критериям, характеризующим аналитическую пригодность метода, относятся специфичность, точность, воспроизводимость, правильность, чувствительность.
Одна из основных характеристик метода - его чувствительность. Она характеризует способность метода выявлять наименьшее количество анализируемого вещества, которое еще можно определить количественно Чувствительность метода характеризуется нижней границей определения (Сн). Сн - наименьшее содержание вещества, которое можно обнаружить с относительным стандартным отклонением ≤0,33. Сн определяется по формуле:
Сн = (Хн-Хв)/Н,
где Хн - предельное значение параметра, которое еще поддается регистрации; Хв - среднее значение измеряемого параметра в холостом опыте; Н - чувствительность.
При проведении биохимических, иммунологических, токсикологических исследований чувствительность метода должна быть не выше, чем нижняя граница естественного содержания вещества в организме.
Другая важная характеристика методики - ее точность.
Для характеристики точности методики рекомендуются по крайней мере два показателя: правильность результатов анализа и воспроизводимость.

Для оценки правильности методики используют методы стандартных добавок или сравнения с референтным способом.
Воспроизводимость анализа характеризует степень близости вариант, составляющих выборку. Воспроизводимость методики можно оценить, рассчитав среднеквадратическое стандартное (S) и относительное (Sr) отклонения:

где xi - значения отдельных показателей; xcp - среднее значение; n - число определений.
Если распределение результатов не является нормальным, то для получения точных данных число определений должно быть не менее 30.
Величина S служит основанием для установления предела точности измерений.
Относительное стандартное отклонение (Sr) рассчитывают по формуле:

Для оценки правильности результатов применяют контрольную сыворотку с известным содержанием исследуемого вещества.
Кроме этого, можно использовать «способ добавки», когда в пробу вносят известное количество исследуемого вещества, или способ смешивания проб.
Возможно также использовать сравнение результатов анализа, полученных изучаемым и референтным методами.
Специфичность методики также служит одним из важных критериев ее аналитической надежности Специфичность отражает влияние веществ, находящихся в исследуемой пробе, на качество определения того или иного показателя Специфичность методики характеризуется статистической оценкой мешающих определению органических и неорганических веществ в пробе Сопутствующие определяемому веществу примести считаются немешающими, если в их присутствии основные метрологические характеристики не изменяются по сравнению с результатами, полученными при проведении анализа на дистиллированной воде, в которую добавлено определенное количество искомого вещества.
Важный аналитический критерий методики - диапазон определяемых концентраций, характеризующий интервал концентраций аналита, который можно определить с помощью конкретной методики с достаточной точностью. Изучаемый способ должен быть испытан на пробах биологического и референтного материала с высоким, средним и низким содержанием определяемого вещества.
3.2.2. МЕТОДЫ РАСЧЕТА ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ХАРАКТЕРИСТИК ЛАБОРАТОРНЫХ БИОМАРКЕРОВ В ПРОФПАТОЛОГИИ
После выбора лабораторных методик и проверки их аналитической надежности подготавливают рабочих изучаемых предприятий и лиц контрольной группы В соответствии с утвержденными методическими рекомендациями проводят медицинское обследование рабочих В результате исследований должно быть получено определение болезни каждого пациента с установлением стадии заболевания.
Обследованных лиц подразделяют на группы: практически здоровых стажированных рабочих (стаж более 10-15 лет), рабочих с отдельными признаками профессионального заболевания, рабочих с легкой степенью выраженности профессионального заболевания, со средней степенью выраженности профессионального заболевания и с тяжелой степенью выраженности профессионального заболевания. Рабочих с сопутствующими заболеваниями выделяют в отдельные группы.
Параллельно подготавливают лиц контрольной группы, в которую входят практически здоровые лица того же возраста и пола, не контактирующие с вредными производственными факторами В биосредах лиц контрольной группы определяют избранные лабораторные показатели и сравнивают результаты с референтными значениями Если средние значения БМ у контрольной группы выходят за пределы референтных уровней или достоверно ниже, чем минимально определяемое значение, указанное в методике определения, то необходимо выяснить причину расхождения и устранить возможные ошибки.
У рабочих берут пробы биологических материалов в соответствии с требованиями к отбору и хранению проб, которые указаны в каждой инструкции по определению Затем подготавливают пробы биоматериалов к лабораторному анализу и проводят количественное определение показателей, используя выбранные методики Рассчитывают средние значения лабораторных показателей, среднеквадратическое отклонение (S) и величину средней ошибки (Sx).
Результаты сводят в таблицы, в которых необходимо отразить средние значения показателей и ошибки средних значений у всех групп обследованных рабочих и лиц контрольной группы.
Рассчитывают достоверность различий средних значений у рабочих всех групп по сравнению с контролем Если распределение вариант подчиняется нормальному закону, то используют критерий Стьюдента Если распределение вариант носит иной характер, применяются непараметрические критерии.
Затем рассчитывают частоту встречаемости рабочих и лиц контрольной группы, у которых значения показателей выходят за пределы референтных значений (диагностическая чувствительность, ДЧ и ДС). Если референтные величины не установлены, то для сравнения используют средние данные, полученные у лиц контрольной группы.
ДЧ - процентное выражение частоты истинно положительных результатов (ИП) ДЧ рассчитывают по формуле [7]:

где ИП - число пациентов с ИПР, выходящими за границы референтных уровней; ЛО - число больных с ложноотрицательными результатами.
Для лиц контрольной группы рассчитывают ДС ДС - процентное выражение частоты истинно отрицательных результатов теста (ИО), то есть не выходящих за пределы референтных значений, у здоровых лиц.

где ЛП - число лиц контрольной группы с ложноположительными результатами; ИО - число лиц контрольной группы с истинно отрицательными результатами; ДС - диагностическая специфичность.
Чем выше ДС, тем надежнее определение наличия заболевания Результаты сводят в таблицы или графики В таблицах обязательно приводят как контрольные показатели, так и референтные уровни (средние значения и среднеквадратичные отклонения).
Для характеристики диагностической ценности лабораторного показателя рекомендуется также расчет ДЭ и прогностической ценности Расчет проводят по формулам (ДЭ теста предлагается рассчитывать как процент истинных результатов теста к общему числу полученных результатов):

Предсказательная (прогностическая) значимость, ПЗ+, или ценность положительного результата теста, это вероятность того, что у обследуемого лица есть заболевание.
Предсказательная (прогностическая) значимость (ПЗ+ - результатов выражается процентным отношением ИП к общему числу положительных результатов: ИП и ЛП:

Прогностическая значимость метода отражает вероятность заболевания при условии известного результата диагностического исследования Прогностичность положительного результата отражает пропорцию истинно положительных ИП-результатов среди всех положительных значений теста ПЗ+ показывает, насколько велика вероятность наличия болезни, синдрома при положительном результате исследования.
Прогностическая значимость отрицательного теста (ПЗ-) - это процентное отношение ИО к общему числу отрицательных результатов (ИО+ЛО):

Предсказательная значимость отрицательного результата (ПЗ-) характеризует вероятность того, что у обследуемого нет заболевания.
Результаты сводят в таблицы или графики и проводят их сравнительный анализ, позволяющий выявить стадию развития профзаболевания, при которой начинает достоверно изменяться уровень теста (донозологическую значимость), диагностическую чувствительность, ДЭ и прогностическую значимость.
Если среднее значение показателя достоверно повышается или понижается у практически здоровых рабочих, то данный тест может рассматриваться как потенциальный БМ для ранней донозологической диагностики.
Значения ДЧ, полученные для последовательных стадий профзаболевания, используют для расчета коэффициента корреляции между выраженностью воздействия и частотой встречаемости пациентов, у которых уровни теста выходят за пределы референтных значений При этом оценивается вероятность связи показателя с патогенезом (патогномоничности).
Полученные значения ДС, ДЧ могут быть использованы и для построения РОС-кривой.
3.2.3. ВЫБОР ИНФОРМАТИВНЫХ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОМАРКЕРОВ ДЛЯ РАННЕГО ВЫЯВЛЕНИЯ ВРЕДНОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ ФАКТОРОВ
Диагностические характеристики БМ позволяют выбрать тесты для ранней диагностики Для ранней диагностики профессиональных заболеваний выбирают лабораторные показатели, отвечающие следующим условиям:
-
у практически здоровых рабочих средние уровни БМ и (или) ДЧ должны достоверно отличаться от референтных значений;
-
желательно, чтобы диагностическая чувствительность у практически здоровых стажированных рабочих была более 50%;
-
коэффициент корреляции между выраженностью воздействия и частотой встречаемости рабочих, у которых уровни теста отличаются от нормы, должен быть не менее r >0,8;
-
желательно, чтобы ДЭ и ПЗ БМ у практически здоровых рабочих были не менее 85%;
-
при выборе информативных БМ необходимо учитывать, при каких других заболеваниях возможно аналогичное изменение уровня БМ;
-
при создании комплексов лабораторных БМ для ранней диагностики профзаболеваний необходимо использовать показатели, уровни которых изменяются на разных стадиях развития профзаболевания и отражают разные молекулярные процессы, протекающие в организме.
В связи с этим выбирают показатели, уровни которых и ДЧ начинают достоверно изменяться при доклинической стадии заболевания, характеризуются наиболее высокими значениями ДЧ, ДЭ и ПЗ+ и коэффициентом корреляции между ДЧ и выраженностью воздействия.
Сопоставление диагностических характеристик БМ позволяет выбрать наиболее информативные тесты для раннего выявления в организме изменений, характерных для профессионального заболевания.
При выборе информативных лабораторных критериев важно учитывать, что молекулярные и клеточные изменения (в большинстве случаев) - это нарушение какого-либо процесса, протекающего на молекулярном уровне, характерного для данной болезни Поэтому изменение уровня лабораторного БМ свидетельствует о вероятности заболевания Чем выше прогностическая значимость теста, тем больше вероятность развития болезни При профессиональных заболеваниях в организме нарушается протекание многих процессов на молекулярном и клеточном уровне По мере возрастания тяжести заболевания количество нарушенных процессов увеличивается и выраженность изменений уровней БМ растет. Для того чтобы дифференцировать стадию развития профзаболевания и повысить вероятность его развития, необходимо использовать не один показатель, а их комплекс, который отражает основные процессы, характерные для конкретного заболевания.
Применение нескольких лабораторных БМ с высокой диагностической чувствительностью, донозологической значимостью и высоким коэффициентом корреляции между стадией профзаболевания и ДЧ позволяет повысить вероятность прогноза возникновения болезни, тяжести заболевания и эффективности применяемой терапии При этом важно в комплекс включать БМ, уровни которых начинают изменяться на разных стадиях развития заболевания.
В качестве примеров выбора информативных БМ ранней диагностики профзаболеваний в главе 4 приведены данные, полученные при оценке диагностической значимости тестов при действии пылевого, химического и физического факторов.
Глава 4. ВЫБОР ИНФОРМАТИВНЫХ ЛАБОРАТОРНЫХ БИОМАРКЕРОВ ДЛЯ РАННЕЙ ДИАГНОСТИКИ ПРОФЗАБОЛЕВАНИЙ РАБОЧИХ
4.1. Диагностические характеристики лабораторных биомаркеров при действии угольной пыли на организм работающих
Для того чтобы выявить диагностическую значимость лабораторных БМ при воздействии угольной пыли, использованы данные, полученные при обследовании шахтеров угольных шахт В результате медицинского обследования выделены следующие группы:
1 (контроль) - практически здоровые лица, не контактирующие с вредными производственными факторами;
2 - практически здоровые стажированные шахтеры;
3 - шахтеры с отдельными признаками пылевого заболевания;
4 - больные антракосиликозом (АСИ-1);
5 - больные АСИ-2-3.
Для изучения диагностической информативности лабораторных показателей выбраны маркеры оксидативного стресса, ПОЛ (МДА), антиоксидантной защиты (СОД, КАТ), показателей функциональной активности нейтрофилов [кислая фосфатаза нейтрофилов (КФн), тест-НСТ], субпопуляций лимфоцитов (Тл, Тх, Тс, Вл. Ол), Ig (А, G, M), воспалительно-деструктивных процессов (ГП), фиброзообразования (ОП), белкового обмена (общий белок).
Установлено, что наиболее рано в организме практически здоровых стажированных шахтеров изменяются уровни показателей оксидативного стресса: повышается активность СОД в эритроцитах, КАТ и МДА в сыворотке крови Существенно повышается уровень теста-НСТ и КФн При этом средние значения показателей клеточного и гуморального иммунитета и тестов, отражающих воспалительно-деструктивные процессы и фиброзообразование у практически здоровых шахтеров, достоверно не отличаются от контрольных уровней.
У рабочих с отдельными признаками АСИ изменения показателей свободнорадикального окисления становятся более выраженными Кроме этого, достоверно изменяются уровни некоторых показателей гуморального и клеточного иммунитета и ГП, отражающие развитие воспалительно-деструктивных процессов.
При заболевании АСИ-1 и АСИ-2-3 отмечается усугубление процессов оксидативного стресса и иммунитета Интенсивно повышаются воспалительно-деструктивные процессы и фиброзообразование [2].
Полученные результаты позволили рассчитать диагностические характеристики изучаемых показателей: ДЧ, ДЭ, ПЗ+ Данные, характеризующие ДЧ, приведены в табл. 4-1.
Из табл 4-1 видно, что у практически здоровых пациентов ДЧ ряда лабораторных БМ уже превышает 50% и достоверно отличается от контроля. У 51-72% рабочих повышены уровни СОДэр, КАТсыв, МДА, теста-НСТ, Тл, сыв свидетельствующие о влиянии вредного фактора на самой ранней стадии на оксидативный стресс и иммунитет. Уровни ГП, ФГ, IgG, IgM, КФн достоверно изменяются у 15-50% обследованных рабочих Значения ДЧ оксипролина в моче (ОПм), Тс, общего белка при этом достоверно не изменяются .

На рис. 4-1 показан характер изменения ДЧ БМ оксидативного стресса и теста-НСТ в биосредах в зависимости от выраженности заболевания АСИ.
Из рис 4-1 видно существенное повышение диагностической чувствительности показателей окислительного метаболизма (СОД, КАТ, МДА) и теста-НСТ по сравнению с контролем по мере возрастания выраженности воздействия пыли При этом СОД характеризуется наиболее высокими значениями ДЧ, несколько ниже ДЧ у теста-НСТ Даже у практически здоровых рабочих значения ДЧ показателей окислительного метаболизма превышают 50% Следовательно, примерно у половины практически здоровых стажированных шахтеров происходит активизация антиоксидантной защиты и нейтрофилов крови, повреждение клеточных мембран, дезоксирибонуклеиновой кислоты, рибонуклеиновой кислоты.
Изменения ДЧ показателей белкового обмена, воспалительно-деструктивных процессов, коллагено-образования и иммунологических тестов при воздействии угольной пыли представлены на рис. 4-2.

Из рис 4-2 видно, что уже у 60-70% практически здоровых рабочих активизируются показатели гуморального и клеточного иммунитета (в сыворотке крови повышаются значения ДЧ Тлимфоциты (Тл) и Ig А) и у небольшой части рабочих развиваются воспалительно-деструктивные процессы. ДЧ ГП и ОП в моче существенно повышается лишь у рабочих с подозрением на АСИ (группа 3), а у больных АСИ-1 и особенно АСИ-2-3 ДЧ повышена почти до 100% для всех тестов, кроме общего белка.
Анализ приведенных в табл 4-1 и на рис 4-1, 4-2 данных позволяет составить представление о последовательности молекулярных изменений в организме человека при действии угольной пыли На начальной стадии воздействия происходят существенные изменения процессов окислительного метаболизма (активизируются процессы свободнорадикального окисления, происходит дисбаланс в системе антиоксидантной защиты и возрастает ПОЛ). Отмечаются изменения в состоянии иммунной системы: развивается выраженный дисбаланс в соотношении иммунорегуляторных субпопуляций Тл. Возрастает бактерицидная активность нейтрофилов, увеличивается гемолиз эритроцитов. У небольшой части рабочих возникают воспалительные и воспалительно-деструктивные процессы У шахтеров с отдельными признаками АСИ выраженность и диагностическая чувствительность воспалительно-деструктивных процессов резко увеличиваются, а у 54% активизируются и процессы коллагенообразования Изменения, происходящие в организме практически здоровых стажированных шахтеров, отражают, как ранние негативные стороны воздействия угольной пыли (образование перекисных соединений липидов), приводят к нарушению проницаемости клеточных мембран, повреждению дезоксирибонуклеиновой кислоты, так и активизацию защитных реакций организма (антиоксидантной защиты).

В группе лиц с АСИ наряду с характерной рентгенологической картиной на молекулярном уровне отмечается интенсификация процессов фиброзо-образования оксипролина в моче (ОПм), воспалительных и воспалительно-деструктивных процессов (ГП, фибриноген), нарушений окислительного метаболизма (КАТ, СОД, МДА, коэффициент ХЛ) и иммунного статуса, повышение проницаемости клеточных мембран и бактерицидной активности нейтрофилов.
Развитие патологических явлений на молекулярном уровне при воздействии пыли каменного угля происходит стадийно При проведении морфологических исследований также установлено, что любой вид и форма пневмокониоза - это стадийно прогрессирующий процесс с комплексом воспалительных и регенераторных реакций в легких и бронхиальном дереве [21]. В развитии любой формы пневмокониоза выделяют два периода: воспалительно-дистрофических нарушений и продуктивно-склеротических изменений Первый период длится до тех пор, пока преобладают тканевые нарушения первых трех стадий морфогенеза Для этого периода развития пневмокониоза характерна патогистологическая симптоматика различных форм воспаления и дистрофических изменений легких Второй период совпадает со стадией кониотического пневмофиброза, ее выявляют рентгенологически.
При морфометрических исследованиях легочной ткани практически здоровых шахтеров угольных шахт установлено, что в респираторной части легких, бронхах и артериях малого круга отмечаются дисрегенераторные, гипертрофические, склерозирующие процессы, развивающиеся одновременно Выявлены очаговые отложения угольной пыли, гранулемы из пыли, кониофагов, фибробластов, зоны бесклеточного фиброза, утолщение плевры, содержащей значительные скопления угольной пыли Толщина плевры у шахтеров была в 4 раза выше, чем в контроле Диаметр бронхов был сужен, а наружный диаметр артерий почти в 2 раза увеличен.
Возможно, что период воспалительно-дистрофических изменений, дисрегенераторных, гипертрофических, склерозирующих процессов, выявляемый с помощью патоморфологических исследований, и дорентгенологическая стадия воспалительно-деструктивных и продуктивных процессов, устанавливаемая в результате лабораторных исследований, соответствуют друг другу В таком случае диагностика ранней, дорентгенологической, стадии развития пневмокониозов может быть существенно упрощена Возможно, что повышение уровней ГП и ОП отражает морфологические изменения в органах дыхания Вместо исследования биопсийного материала тогда можно использовать определение комплекса информативных лабораторных показателей, определяемых в крови и моче.
Для выбора наиболее информативных лабораторных показателей проведен расчет ДЭ и прогностической ценности при всех стадиях развития АСИ (табл. 4-2, 4-3).

Из табл 4-2 видно, что у практически здоровых шахтеров наиболее высокие значения ДЭ получены для показателей оксидативного стресса (СОД, КАТ, МДА), иммунитета (IgА, Тл), нейтрофильных лейкоцитов (НСТ и КФн) При подозрении на АСИ ДЭ показателей окислительного метаболизма возрастает.
В этой же группе существенно увеличивается ДЭ ГП в крови и ОП в моче.
При заболевании АСИ существенно возрастает ДЭ показателей оксидативного стресса, иммунитета, воспалительно-деструктивных процессов и активизация нейтрофилов крови Самые низкие значения ДЭ установлены для общего белка в сыворотке крови При этом с возрастанием выраженности воздействия пыли ДЭ общего белка почти не изменяется.
Значения прогностической значимости лабораторных тестов приведены в табл. 4-3.

Из табл 4-3 следует, что высокая прогностическая значимость (больше 85%) при ранней стадии воздействия угольной пыли характерна для показателей оксидативного стресса (СОДэр, КАТсыв), КФн, иммунологических тестов (Тл, IgА, IgG), а также ФГ и ГП. У рабочих с подозрением на АСИ значение ПЗ+ перечисленных показателей увеличивается и существенно возрастает для ОП У больных выраженными стадиями АСИ наиболее высокая ПЗ отмечается (более 95%) для ОПм, ГП, ФГ и КФн. Наименьшее значение ПЗ+ (23-67%) установлено для общего белка в сыворотке крови.
Для оценки диагностической информативности лабораторных маркеров и выбора наиболее диагностически значимых тестов проведено сравнение их диагностических характеристик (табл. 4-4).

Из табл 4-4 следует, что значения ДЧ, ДЭ, ПЗ+, коэффициенты корреляции свидетельствуют о высокой диагностической информативности многих изучаемых лабораторных маркеров Уже на ранней доклинической стадии воздействия угольной пыли для многих показателей ДЧ выходит за границы нормы У практически более 50% здоровых шахтеров изменяются уровни показателей окислительного метаболизма (СОД, КАТ, МДА) и иммунитета (Тл, Тх, Ол (нулевые лимфоциты), IgA). Достоверного изменения концентрации ОПм (оксипролин в моче), не наблюдается, а общий белок понижается всего у 8% обследованных лиц.
У больных с выраженной стадией АСИ частота встречаемости случаев, когда значения ДЧ БМ превышают 70%, отмечается для СОД, МДА, иммунологических тестов (IgA, Ол, Тл), а также для ОПм, ГП, теста-НСТ и КФн (кислая фосфатаза нейтрофилов) ДЧ общего белка составляет всего 16%.
Коэффициент корреляции между выраженностью воздействия пыли и значениями ДЧ для большинства изучаемых тестов очень высок: от 0,95 до 0,99. Исключением является общий белок: r = -0,37.
Наиболее высокая ПЗ (более 90%) установлена для СОД, ГП, ОП, Тл, IgA, наименее низкая - для общего белка в сыворотке крови.
Полученные диагностические характеристики использованы для выбора наиболее информативных методов раннего выявления воздействия вредных факторов на организм работающих.
4.2. Выбор информативных лабораторных биомаркеров для раннего выявления воздействия угольной пыли на организм человека
Для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов на организм человека выбирают БМ, уровни и ДЧ которых начинают изменяться у практически здоровых стажированных рабочих.
Для дифференциации стадии развития заболевания используют тесты, уровни которых начинают изменяться у рабочих с подозрением на профзаболевание и лиц с профзаболеванием Использование такого комплекса маркеров позволяет с большей вероятностью выявить изменения в организме рабочего, установить стадию развития профзаболевания и прогнозировать его течение.
Наиболее информативные БМ для раннего выявления воздействия угольной пыли на организм рабочих включены в табл. 4-5.

Из приведенных в табл 4-5 данных видно, что уровни большинства избранных БМ (СОДэр, Тл, МДАсыв, IgA, ГП) начинают изменяться у практически здоровых рабочих Значения диагностической чувствительности даже на ранней стадии воздействия угольной пыли достаточно высоки (кроме ГП). Показатели тесно связаны с патогенезом заболевания (коэффициент корреляции ≥0,94). Все БМ характеризуются высокой прогностической значимостью - от 85 до 98% Перечисленные тесты характеризуют раннюю активизацию процессов окислительного метаболизма, иммунного статуса У небольшой доли рабочих отмечаются воспалительные и воспалительно-деструктивные процессы, которые усугубляются при развитии АСИ При подозрении на АСИ заметно активизируются коллагенообразование и воспалительно-деструктивные процессы.
При выборе лабораторных БМ для ранней диагностики необходимо учитывать, что они, как правило, могут изменяться не только при воздействии какого-то одного фактора Поэтому прогноз, сделанный на основе данных об изменении уровней лабораторных БМ, носит вероятностный характер Так, множество факторов может привести к изменению уровней показателей оксидативного стресса, нарушению иммунитета При использовании одного показателя вероятность развития конкретного профзаболевания может быть недостаточно высокой Для повышения вероятности развития профессионального заболевания целесообразно использовать не один показатель, а комплекс наиболее информативных тестов, отражающих разные процессы, которые характерны для этой патологии Поэтому для раннего выявления изменений в организме шахтеров избраны БМ, отражающие основные процессы, подвергающиеся изменениям при воздействии вредных факторов При контакте с угольной пылью в настоящее время наиболее целесообразно выбрать показатели оксидативного стресса, иммунитета, тесты, участвующие в воспалительных, воспалительно-деструктивных процессах и коллагенообразовании.
В комплекс лабораторных методов для раннего выявления изменения процессов, характерных для развития пылевых заболеваний органов дыхания у шахтеров угольных шахт, включены следующие БМ: определение концентрации МДАсыв., IgА, Тл, активности СОДэр, концентрации ГП, фибриногена крови и ОП в моче.
Если изменений уровней этих БМ в биосредах шахтеров не наблюдается, следовательно, процессы окислительного метаболизма, иммунитета, воспалительно-деструктивные и коллагенообразования не нарушены Значит, с вероятностью 90% можно утверждать, что негативное воздействие угольной пыли отсутствует.
Если изменены уровни показателей только окислительного метаболизма и иммунитета, то возможно раннее воздействие угольной пыли При этом максимальная вероятность заболеть АСИ достигает 96%. Если наряду с перечисленными изменениями обнаружено повышение уровней ГП в крови и ОП в моче и их ДЧ, то в организме возникли воспалительно-деструктивные процессы и нарушено коллагенообразование При этом вероятность развития АСИ достигает 98% В таком случае даже при отсутствии рентгенологических изменений необходимо более тщательное обследование пациента и проведение реабилитационных мероприятий.
Аналогичные методические подходы были использованы и при выборе информативных лабораторных показателей при действии химического фактора В качестве примера выбора информативных методов для ранней диагностики химических веществ приведены материалы, полученные при действии свинца на организм человека.
4.3. Ранняя диагностика сатурнизма
Свинец относится к группе наиболее токсичных металлов. Производство и потребление этого металла и его соединений постоянно растет Свинец и его соединения широко применяются в машино- и приборостроении, радиоэлектронике, аккумуляторном, кабельном производствах, в черной металлургии, при производстве хрусталя, красок и эмалей и др. К опасным профессиям относятся плавильщики свинца, аккумуляторщики, составители шихты при производстве хрусталя, аппаратчики при производстве свинцовых пигментов, рабочие, занятые добычей и переработкой свинцовых руд, и др Встречаются случаи бытовых отравлений свинцом В настоящее время в Российской Федерации серьезную опасность представляет утилизация отработавших аккумуляторов На территории страны находится около 1 млн тонн отслуживших срок не утилизированных аккумуляторов, при разрушении которых свинец поступает в почву и подземные воды В связи с этим возникают новые производства по переработке отработавших аккумуляторов во многих областях Российской Федерации [24].
При профессиональном воздействии свинец в организм человека поступает преимущественно ингаляционным путем Возможно поступление его и через желудочно-кишечный тракт У населения свинец поступает в организм в основном c продуктами питания.
В настоящее время в среднем с воздухом у населения в организм свинца поступает около 15 мкг в сутки и задерживается в органах дыхания от 30 до 60% поступившего количества, с продуктами питания у населения - от 120 до 1300 мкг в день Из них в кровь всасывается 6-9%. Коэффициент резорбции свинца из желудочно-кишечного тракта в кровь у детей и беременных женщин значительно выше (25-50%) В развивающихся странах уровень свинца в крови у населения и в настоящее время много выше допустимых значений.
В России в связи с отсутствием единой системы биомониторинга свинца представить обобщенную картину динамики изменения уровней металла в крови населения не представилось возможным Однако, несмотря на некоторое снижение выбросов свинца в атмосферу в связи с падением производства, концентрация его в крови населения остается достаточно высокой В крови детей концентрация свинца варьирует от 5,2 мкг/дл (Липецк), до 19,5 мкг/дл (Санкт-Петербург). В крови сотрудников Государственной инспекции безопасности дорожного движения уровень свинца в крови достигает 68 мкг/дл, что значительно выше допустимых значений (50 мкг/дл в Российской Федерации и 30 мкг/дл в Соединенных Штатах Америки).
Находящийся в организме свинец может быть условно разделен на обмениваемую и стабильную (90%) фракции К обмениваемой фракции относят свинец крови и паренхиматозных органов (печень, почки и др.), содержание металла в которых находится в динамическом равновесии с уровнем свинца в крови В крови свинец ассоциируется преимущественно с эритроцитами В плазме крови содержится от 2,5 до 5% свинца, содержащегося в крови Из плазмы крови свинец очень быстро диффундирует в экстраваскулярные пространства и затем переходит в мягкие ткани Период полувыведения свинца из крови взрослого человека составляет 15-17 сут. Из крови определенные количества свинца постоянно переходят в скелет, волосы, ногти и зубы Концентрация металла в волосах населения варьирует от 2,9 до 17,6 мкг/г, в среднем 9,4 мкг/г К стабильной фракции относят свинец, содержащийся в костях скелета. Свинец - это остеотропный элемент, замещающий кальций в кристаллах гидроксиапатита Накопление металла в скелете идет в течение 50 лет, а в мягких тканях завершается к 10-18 годам жизни человека. Период полувыведения свинца из скелета человека варьирует от 2190 до 12 000 сут Концентрация свинца в скелете в 107 раз выше, чем в крови.
Выведение свинца, депонированного в организме, происходит преимущественно с мочой (около 75%) и через желудочно-кишечный тракт (около 15%). Скорость выведения свинца по отношению к количеству его в крови составляет от 2,4 до 3,1% У рабочих, контактирующих со свинцом в производственных условиях, скорость экскреции свинца по отношению к концентрации его в крови может достигать 7,8%.
Свинец относится к ядам политропного действия Ведущая роль принадлежит расстройствам биосинтеза порфиринов и гема в эритроците В крови при очень низких концентрациях свинца начинает снижаться активность дегидратазы δ-аминолевулиновой кислоты (АЛК-Д, ЕС 4 2 1 24) [2, 23] Снижение активности АЛК-Д способствует повышению ее содержания в моче, снижению активности декарбоксилазы копропорфирина (КП) и гемсинтетазы, которая регулирует присоединение двухвалентного железа к протопорфирину. Эти реакции обусловливают повышение экскреции КП с мочой, увеличение содержания свободного протопорфирина в эритроцитах и железа в сыворотке крови, эритробластах костного мозга.
Флуоресцирующий протопорфирин в эритроцитах крови пациентов, подвергающихся действию свинца, не свободен, а хелатирован цинком (цинк-протопорфирин, ZPP). Уровень протопорфирина в крови увеличивается при заболевании эритроцитарной профирией, а ZPP - при действии свинца и при железодефицитной анемии Предполагаемый химический механизм образования ZPP заключается в том, что в результате ингибирующего действия свинца на активность гемсинтетазы в молекулу свободного протопорфирина внедряется ион цинка вместо железа. В циркулирующих эритроцитах ZPP занимает места, связывающие гем. Значения ZPP у лиц, не контактирующих со свинцом, находятся в пределах 25-44 мкг/дл крови, а у рабочих могут повышаться до 400 мкг/дл. Другие металлы не влияют на концентрацию ZPP. Между концентрацией ZPP и содержанием свинца в крови установлена тесная связь (r = 0,91). Медленное повышение концентрации ZPP в крови начинается при содержании свинца в крови (Рвкр), равном 30 мкг/дл, а при концентрации Рвкр более 50 мкг/дл уровень ZPP резко возрастает (в 10 раз и более) [25, 26] В результате этих нарушений может развиться гипохромная сидеробластная анемия Свинец нарушает процесс утилизации железа и синтез глобина, действует непосредственно на эритроцит, что приводит к ускоренной гибели эритроцитов В ответ на это наблюдается компенсаторная активация эритропоэза и повышение содержания ретикулоцитов.
При действии свинца у человека наблюдается ослабление антиоксидантной защиты и развитие оксидативного стресса.
Свинец оказывает заметное ингибирующее действие и на эритроцитарную пиримидин 5-нуклеотидазу (ЭP5N), энзим катализирующий гидролитическую дефосфориляцию монофосфата пиримидин 5-рибозы (СМР). Дефицит эритроцитарной ЭP5N ассоциируется с гемолитической анемией, при которой характерно значительное повышение уровня эритроцитов с базофильной зернистостью.
При действии свинца увеличивается концентрация мочевины в моче и активность натрий-калиевой аденозинтрифосфатазы, наблюдаются дегенеративные изменения нервных клеток Наиболее резкие изменения отмечаются в нервных клетках молекулярного слоя коры головного мозга Дистрофические процессы происходят и в периферических нервах, а также в интрамуральных ганглиях кишечника и солнечном сплетении, которые лежат в основе свинцовой колики В патогенезе изменений сердечно-сосудистой системы ведущая роль принадлежит расстройствам вегетативной нервной системы.
Свинец оказывает выраженное действие и на репродуктивную функцию человека и животных При сравнительно невысоких концентрациях свинца в крови (от 10 до 40 мкг/дл) отмечали достоверные изменения сперматогенеза, повреждающее действие на зачаточный эпителий, увеличение частоты сестринских хроматидных изменений.
Свинец обладает заметным нефротоксическим действием При повышенных уровнях свинца отмечали некроз эпителиальных клеток, канальцевую дилатацию и обструкцию, а также интерстициальный фиброз.
Исследования, проведенные в последние годы, показали, что даже более низкие концентрации свинца в крови небезопасны [24, 25].
4.3.1. Диагностические характеристики лабораторных показателей при действии свинца на организм человека
Разработка диагностического комплекса для раннего выявления негативного воздействия свинца проводилась в соответствии с приведенными выше рекомендациями Для оценки диагностической информативности лабораторных показателей при воздействии свинца на организм рабочих выбраны предприятия с различными концентрациями металла в воздухе рабочей зоны: 0,01; 0,1; 0,2; 0,3 мг/м3. Состояние здоровья рабочих обследовали специалисты в соответствии с методическими рекомендациями. Обследованные рабочие были разделены на группы: 1 - контроль (лица, не контактирующие с вредными производственными факторами); 2 - практически здоровые рабочие; 3 - рабочие с измененными показателями порфиринового обмена; 4 - рабочие с начальной стадией хронической свинцовой интоксикации (ХСИ); 5 - рабочие с выраженной стадией ХСИ. Для изучения диагностических характеристик были выбраны следующие тесты: свинец в моче (Рвм) и Рвкр, δ-аминолевулиновая кислота (АЛКм), КП в моче (КПм), ZPP в крови, эритроцитарная пиримидин 5-нуклеотидазы, активность дегидратазы АЛКм в эритроцитах (АЛК-Дэр), показатели окислительного метаболизма (МДА и СОД в эритроцитах), ретикулоциты, гемоглобин, базофильнозернистые эритроциты в крови (БЗЭ) (табл 4-6).
Из полученных данных следует, что наиболее рано у практически здоровых стажированных рабочих (группа 2) в крови и моче достоверно повышен уровень свинца, почти в 2 раза снижается активность АЛК-Д в эритроцитах и изменяется активность ЭР5N. У рабочих с диагнозом «лабораторный сатурнизм» (группа 3) значения перечисленных тестов возрастают и достоверно повышается уровень АЛКм, КПм, ZPP и ретикулоцитов У больных с легкой стадией ХСИ (группа 4) выраженность перечисленных тестов существенно увеличивается У больных с выраженной стадией ХСИ (группа 5) сильно изменены уровни АЛКм, АЛК-Д, ЭР5N, ППЭ, ZPP, КПм, РТ, БЗЭ, гемоглобина крови.


Из табл 4-7 следует, что наиболее рано у практически здоровых рабочих достоверно повышаются значения диагностической чувствительности АЛК-Д, Рвкр, ЭР5N и ретикулоцитов. При повышении выраженности воздействия свинца ДЧ этих тестов увеличивается. У рабочих с диагнозом «лабораторный сатурнизм» существенно повышается ДЧ АЛКм и незначительно - БЗЭ и КПм У всех больных ХСИ понижен уровень АЛК-Д в эритроцитах, у 85% из них повышена концентрация Рвкр и у 50-60% - концентрация АЛКм, ZPP и КПм и активность ЭР5N. Низкая ДЧ получена для гемоглобина крови и БЗЭ.
Значения ДЭ лабораторных БМ приведены в табл. 4-8.

Из табл 4-8 следует, что наиболее высокие значения ДЭ получены для свинца в крови и активности АЛК-Д для всех стадий развития свинцовой интоксикации По мере возрастания выраженности воздействия ДЭ для этих маркеров существенно увеличивается Менее высокие уровни ДЭ получены для АЛКм, ZPP. Наиболее низкие значения ДЭ установлены для КПм, гемоглобина крови и БЗЭ.
Значения прогностической значимости (ПЗ+) лабораторных маркеров приведены в табл. 4-9.
Из табл 4-9 следует, что наиболее высокая прогностическая ценность характерна для Рвкр, АЛК-Дэр., ЭР5N и РТ на всех стадиях развития свинцовой интоксикации При этом наиболее высокие значения ПЗ+ установлены для Рвкр Значения ПЗ+ для КПм, БЗЭ для практически здоровых рабочих равны нулю, а для гемоглобина - всего 28% При возрастании выраженности воздействия свинца ПЗ+ для гемоглобина крови БЗЭ и КПм увеличиваются.
Для выбора информативных лабораторных БМ свинцовой интоксикации проведена сравнительная оценка их диагностических характеристик (табл . 4-10).


Из полученных данных следует, что для раннего выявления воздействия свинца большим преимуществом обладает определение активности АЛК-Д в эритроцитах крови Активность этого энзима понижается при очень низких уровнях Рвкр у практически здоровых рабочих, что свидетельствует о его высокой донозологической значимости Коэффициент корреляции между активностью АЛК-Д и концентрацией Рвкр (r = -0,90) свидетельствует о тесной связи данного энзима с патогенезом заболевания При ХСИ ДЧ АЛК-Д достигает 100% После прекращения контакта со свинцом активность энзима не восстанавливается полностью в течение 16 мес.
Активность ЭР5N так же, как и АЛК-Д, характеризуется очень высокой диагностической чувствительностью и патогномоничностью Однако значения ДЧ для этого показателя заметно ниже, чем для АЛК-Д. ЭР5N катализирует гидролиз пиримидин 5"-монофосфата до пиримидинуклеозида и неорганического фосфора Это высокочувствительный тест, активность которого начинает изменяться при концентрации Рвкр 10-20 мкг/дл. Активность фермента снижается линейно между 10 и 100 мкг/дл свинца в крови.
Значения ZPP у лиц, не контактирующих со свинцом, находятся в пределах 25-44 мкг/дл крови, а у рабочих могут повышаться до 400 мкг/дл. Другие металлы не влияют на концентрацию ZPP Медленное повышение концентрации ZPP в крови начинается примерно при содержании Рвкр, равном 30 мкг/дл, а при концентрации Рвкр более 50 мкг/дл уровень ZPP резко возрастает (в 10 раз и более) Полагают, что содержание в крови ZPP отражает действие свинца на организм и считается более надежным индикатором токсичности металла, чем определение Рвкр Повышенный уровень ZPP в крови сохраняется в течение 4 мес после поступления свинца Поэтому при повышении концентрации Рвкр и нормальном уровне ZPP можно говорить о недавнем поступлении металла. Если уровни Рвкр и ZPP повышены, то это свидетельствует о хроническом поступлении свинца в организм Между содержанием Рвкр и концентрацией ZPP установлена тесная корреляционная связь (r = 0,91). Частота встречаемости лиц, у которых уровни ZPP в крови повышены для рабочих с симптомами воздействия свинца, достигает 80%.
Метод определения ZPP прост в выполнении, очень быстрый и может быть выполнен из капли крови. Высокая диагностическая чувствительность определения ZPP, патогномоничность, донозологическая значимость, простота выполнения методики - несомненные преимущества БМ как одного из высокоинформативных диагностических критериев для диагностики негативного воздействия свинца.
Использование показателей оксидативного стресса, уровни которых также изменяют в организме при низких концентрациях Рвкр, менее целесообразно из-за их крайне низкой специфичности и ДЧ. Уровни их изменяются практически при любом воздействии. Кроме этого, для многих показателей оксидативного стресса не установлены значения ДЧ.
Содержание АЛК в моче начинает повышаться при концентрации Рвкр около 30 мкг/дл Одновременно с повышением концентрации АЛКм отмечают повышение ее количества и в сыворотке крови Однако определение АЛК в сыворотке крови, по мнению многих исследователей, не может рассматриваться как хороший индикатор свинцового отравления вследствие значительной вариабельности результатов ДЧ АЛКм достаточно высока, методика определения проста в выполнении и не требует дорогостоящих реактивов.
Увеличение концентрации Рвкр до 40 мкг/дл тесно связано с повышением уровня КПм Между концентрацией Рвм, АЛКм и КПм установлена линейная зависимость Однако, по данным разных авторов, коэффициенты корреляции между этими показателями варьируют в широких пределах После однократного острого воздействия свинца повышение концентрации АЛКм и КПм отмечали уже через 15 ч, спустя 20 сут выведение этих показателей с мочой нормализовалось ДЧ АЛКм достаточно высока, методика определения проста в выполнении и не требует дорогостоящих реактивов.
ДЧ КП в моче значительно ниже, чем АЛКм, даже при выраженных стадиях заболевания ХСИ Коэффициент корреляции между выраженностью воздействия свинца и уровнем КПм крайне низок, а прогностическая значимость на ранних стадиях заболевания всего 42% При более высоких концентрациях Рвкр (≥40 мкг/дл) повышается число эритроцитов с базофильной зернистостью (БЗЭ), однако ДЧ этого показателя невелика.
4.3.2. ЛАБОРАТОРНЫЕ БИОМАРКЕРЫ РАННЕГО ВЫЯВЛЕНИЯ ВОЗДЕЙСТВИЯ СВИНЦА НА ОРГАНИЗМ ЧЕЛОВЕКА
Данные о ДЧ, донозологической значимости, патогномоничности, специфичности и характере изменения ДЧ в зависимости от дозы Рвкр позволяют оценить информативность лабораторных тестов и выбрать наиболее информативные (табл. 4-11).
Из табл 4-11 видно, что АЛК-Дэр, Рвкр и ретикулоциты - наиболее ранние тесты, уровни которых изменяются у здоровых рабочих, ДЧ которых варьирует от 25 до 33%. Эти БМ характеризуются высокой связью с патогенезом ХСИ и прогностической значимостью (89-92%) На стадии «лабораторного сатурнизма», кроме перечисленных выше тестов, изменяются значения ДЧ АЛКм, ZPP, БЗЭ. Связь с патогенезом ХСИ высокая, ПЗ+ от 74 до 89%. При заболевании ХСИ наряду с приведенными выше тестами начинает изменяться уровень гемоглобина и другие диагностические характеристики.

Снижение активности АЛК-Дэр при поступлении свинца в организм человека считается высокоспецифичным тестом. ДЭ АЛК-Д достигает 95%, прогностическая значимость - 90%. Лишь небольшая группа веществ, кроме свинца, понижает активность энзима. К таким веществам относятся этанол, гексахлорбензол, фенобарбитал, триазол, трихлорэтилен После приема алкоголя активность энзима в организме интенсивно понижается, однако она полностью восстанавливается через 7-8 ч Поэтому за сутки до проведения анализа на АЛК-Д принятие алкогольных напитков должно быть исключено.
Специфичность определения активности АЛК-Д может быть увеличена, если использовать модифицированный метод, где инкубация пробы крови во время анализа проводится при разных pH среды.
Можно также проводить определение энзима до и после температурной обработки пробы крови. Установлено, что после тепловой обработки проб при 60 °С активность АЛК-Д у лиц, не экспонированных свинцом, практически не меняется, а у экспонированных - увеличивается в 2 раза и более.
Активность АЛК-Д в крови экспонированных рабочих сильно зависит и от pH среды инкубации. Отношение активностей АЛК-Д в крови, полученных при инкубации при pH 6,0 и pH 6,8 у здоровых и лиц, контактирующих со свинцом, существенно различается: у здоровых лиц это отношение близко к 1, а у экспонированных свинцом - достоверно выше Применение модифицированных вариантов определения АЛК-Д в крови позволяет с очень высокой вероятностью установить или исключить раннее воздействие свинца на организм человека.
Площадь под кривой ROC для АЛК-Д равна 0,94 при интервале концентраций, равном 10-40 мкг/дл.
Для раннего выявления воздействия свинца на организм человека в настоящее время целесообразно использовать следующие БМ: АЛК-Дэр, РТ, АЛКм, ZPP, БЗЭ, гемоглобин и Рвм и Рвкр.
Включенные в комплекс БМ характеризуются высокой ДЭ, прогностической значимостью и связью с патогенезом заболевания.
При интерпретации результатов целесообразно учитывать, что, поскольку при действии свинца наиболее рано начинают изменяться уровни АЛК-Дэр, РТ и Рвкр, если значения этих БМ находятся в пределах нормы, можно сделать заключение, что свинцовая интоксикация отсутствует. При понижении активности АЛК-Дэр и повышении концентрации Рвкр и нормальных значениях АЛКм, ZPP, БЗЭ наиболее вероятно развитие начальной стадии воздействия свинца
Таким образом, при использовании комплекса избранных БМ можно выявить самые ранние изменения в организме человека, обусловленные воздействием свинца, установить стадию развития профзаболевания и процессы, протекающие при этом в организме.
При выявлении вредного воздействия свинца встречаются сложные случаи, требующие проведения специальных исследований.
4.3.3. СЛОЖНЫЕ СЛУЧАИ ДИАГНОСТИКИ СВИНЦОВОЙ ИНТОКСИКАЦИИ
При диагностике свинцовой интоксикации могут встречаться случаи, когда концентрация свинца в моче и крови повышены, а биохимические биомаркеры находятся в пределах нормы Такая ситуация возможна, если имело место однократное недавнее поступление повышенных уровней свинца в организм человека.
Если уровень свинца повышен только в моче, то не исключается возможность умышленного добавления его в пробу Для выявления умышленного введения металла в пробу мочи делают повторное определение в моче, взятой катетером, определяют содержание свинца и активность АЛК-Д в крови и АЛК в моче. Если активность АЛК-Д, содержание АЛК в моче и Рвкр находятся в пределах нормы, то вероятность умышленного добавления металла в мочу не вызывает сомнений.
Если при обследовании рабочих, прекративших контакт со свинцом, в моче и крови пациентов концентрация металла невысока, а уровни биохимических и гематологических тестов выходят за границы нормальных значений, то отклонения в состоянии здоровья могут быть обусловлены хроническим переходом свинца в кровь из депо в организме Для выявления наличия депо свинца в организме применяют тест с введением комплексона, что способствует повышенному выведению свинца с мочой из депо в организме У рабочих, контактирующих со свинцом, между концентрацией Рвм до и после введения 20 мл 10% раствора тетацина установлена тесная корреляционная зависимость (r = 0,85). Установлено, что у лиц контрольной группы после введения 20 мл 10% раствора тетацина концентрация Рвм, собранной на следующие сутки, повышается примерно в 6 раз и составляет 0,3±0,07 мкмоль/л (63±14,7 мкг/л). При легкой форме ХСИ экскреция свинца с мочой возрастает примерно в 100 раз, что свидетельствует о наличии депо в организме.
При диагностике свинцовой интоксикации зачастую приходится проводить дифференциацию с острой перемежающейся порфирией Клиническая симптоматика острой перемежающейся порфирии и ХСИ имеет много общего, что обусловлено общностью патогенетических механизмов Для дифференциальной диагностики острой перемежающейся порфирии и ХСИ используют определение порфиринов и их предшественников в моче При острой перемежающейся порфирии всегда в моче повышаются уровни порфибилиногена и уропорофирина при очень умеренном увеличении концентрации АЛКм При сатурнизме характерно повышение экскреции АЛКм при нормальном уровне порфибилиногена.
При заболевании железодефицитной анемией, злокачественных образованиях желудка и кишечника характерно повышение содержания ретикулоцитов, БЗЭ, болевой синдром при нормальной концентрации АЛКм, Рвм и Рвкр.
Течение свинцовой колики сходно с клинической картиной острого живота Однако при свинцовой колике характерно изменение показателей крови, порфиринового обмена и повышенные концентрации свинца в Рвм и Рвкр.
4.4. Ранняя диагностика вибрационной патологии
Аналогичные методические подходы были использованы для выбора информативных лабораторных БМ при действии производственной вибрации и вибрации в сочетании с повышенными уровнями никеля на организм человека Исследования на рабочих, подвергающихся воздействию повышенных уровней вибрации, позволили установить диагностические характеристики лабораторных тестов на различных стадиях развития ВБ.
На рис 4-3 представлены значения диагностической чувствительности креатина в моче, холинэстеразы (ХЭ) в сыворотке крови и Ig A, M и G в зависимости от выраженности воздействия вибрации на организм человека.
Из представленных данных видно, что наиболее интенсивно изменяются ДЧ СОД и α-ТК. У практически здоровых рабочих значения ДЧ превышают уже 80% Несколько менее интенсивно повышаются уровни КАТ, миелопероксидазы и МДА при возрастании выраженности вибрационного воздействия.
На рис 4-4 представлены данные, характеризующие значения ДЧ для креатина в моче, ХЭ в сыворотке крови, Ig.

Из рис 4-4 видно, что на ранней стадии развития вибрационной патологии частота встречаемости практически здоровых рабочих, у которых изменены уровни креатина и IgА, наиболее высока. ДЧ IgM и IgG интенсивно повышается лишь у больных ВБ. Наиболее низкие значения ДЧ установлены для ХЭ сыворотки крови Даже при выраженной стадии заболевания ВБ значение ДЧ не превышает 20%.
Диагностическая чувствительность спонтанной агрегации тромбоцитов, активности КФн, перекисного гемолиза эритроцитов, объема эритроцитов, лютетропного гормона в сыворотке крови представлены на рис. 4-5.
Из рис 4-5 видно, что ДЧ практически здоровых рабочих, у которых изменяется объем эритроцитов, спонтанная агрегация тромбоцитов и уровень лютетропного гормона не превышают 20%, а при заболевании ВБ повышаются до 50-70%. Значительно более интенсивно повышается ДЧ перекисного гемолиза эритроцитов и КФн.

Значения диагностических характеристик лабораторных БМ (ДЧ, ДЭ, ПЗ+ и коэффициента корреляции) использованы для выбора наиболее информативных показателей, которые могут быть применены для раннего выявления вредного воздействия (табл. 4-12).

Изменение уровней СОДэр, МПн, МДАпл, α-ТК, креатина в моче и IgG, позволяет прийти к заключению, что в организме многих практически здоровых рабочих при контакте с повышенными уровнями вибрации нарушаются процессы окислительного метаболизма, иммунитета, происходит микротравматизация мышечной ткани Все эти БМ тесно связаны с патогенезом ВБ и характеризуются высокой прогностической ценностью (71-93%) и ДЧ.
Определение инсулина, уровень которого повышается лишь при ВБ-1 и ВБ-2, а у практически здоровых рабочих не изменяется, может стать вспомогательным критерием при диагностике стадии заболевания.
При воздействии вибрации в сочетании с повышенными уровнями никеля в зоне дыхания рабочих установлено более интенсивное изменение уровней СОД, МПн, МДА, КАТс, объема эритроцитов, IgG, IgM, а также выраженное снижение рО2 у 100% больных ВБ.
Применение для диагностики вибрационной патологии ХЭ в сыворотке крови нецелесообразно из-за очень низких значений диагностических характеристик.
В главе 5 приведены методики определения некоторых БМ, включенных в комплекс информативных показателей для ранней диагностики профессиональных заболеваний. Преимущественно включены методики, которые редко публикуются в известных руководствах.
Глава 5. МЕТОДЫ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ БИОМАРКЕРОВ В БИОСРЕДАХ ДЛЯ РАННЕЙ ДИАГНОСТИКИ ДЕЙСТВИЯ ВРЕДНЫХ ФАКТОРОВ НА ОРГАНИЗМ ЧЕЛОВЕКА
5.1. Определение показателей оксидативного стресса
Ведущий фактор, определяющий функциональную активность клеток, - цепная реакция ПОЛ, которая возникает при взаимодействии гидроксильного радикала с липидами клеточной мембраны Первичные продукты ПОЛ оказывают повреждающее действие на белки, ферменты гликолиза, аденозинтрифосфорную кислоту и др Чрезмерная интенсификация процессов ПОЛ грозит ускорением развития патологических изменений в организме Перекиси липидов вызывают набухание митохондрий и разобщение окислительного фосфорилирования, изменяют проницаемость клеточных мембран Интенсификация ПОЛ появляется после истощения всех защитных сил организма.
При воздействии многих вредных производственных факторов отмечают раннюю и стойкую интенсификацию ПОЛ и истощение антиоксидантного статуса организма.
5.1.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ ПО НАКОПЛЕНИЮ В ПЛАЗМЕ КРОВИ МАЛОНОВОГО ДИАЛЬДЕГИДА
МДА относится к вторичным продуктам ПОЛ, которые образуются при окислительной деструкции гидроперекисей липидов и фосфолипидов Для количественного определения МДА в сыворотке крови наиболее часто используют спектрофотометрический метод с тиобарбитуровой кислотой (ТБК) и спектрофлуорометрический способ Спектрофотометрический метод с ТБК прост в выполнении и достаточно чувствителен.
В настоящее время разработаны тест-системы для определения МДА этим методом: TBARS Assay Kit-Cayman Chemical Company, U. S. A. AnnArbor No 10009055 иNWLSSTM Malonicdialdehyde Assay; Nirthwest Life Science Specialites LLC, Vancuver
Определение концентрации малонового диальдегида в сыворотке крови спектрофотометрическим методом
Принцип. Метод основан на образовании окрашенного соединения в реакции с ТБК в присутствии фосфорно-вольфрамовой кислоты.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. К 0,5 мл свежей сыворотки крови приливают в пробирку 5 мл 20% раствора фосфорно-вольфрамовой кислоты, пробирку закрывают, смесь перемешивают и оставляют на холоде 15 мин до образования крупных хлопьев Центрифугируют 15 мин при 2000 об/мин при охлаждении. Надосадочную жидкость сливают, к осадку приливают 2 мл дистиллированной воды, 1 мл 0,8% раствора ТБК, перемешивают и инкубируют 1 ч на водяной бане при температуре 99-100 °С. Затем пробу охлаждают и центрифугируют 10 мин при 6000 об/мин. В центрифугате определяют оптическую плотность при длине волны 535 и 580 нм. Концентрацию ТБК рассчитывают по формуле:
С = 0,21 + 26,5(Д535 - Д580),
где С - концентрация ТБК-активных продуктов, нмоль МДА/мл; 26,5 - коэффициент для пересчета; Д535 и Д580 - оптическая плотность раствора при 530 и 580 нм; 0,21 - расчетный коэффициент.
Нормальное содержание МДА в сыворотке крови - 3,69±0,14 нмоль/мл.
Спектрофлуориметрический метод определения МДА в биосредах более чувствителен, чем сектрофотометрический.
Определение малонового диальдегида сыворотки или плазмы крови спектрофлуориметрическим методом
Принцип
Продукты ПОЛ при взаимодействии с ТБК образуют флюоресцирующие вещества.
Оборудование
Реактивы
Отбор проб и их хранение. 0,05 мл крови из пальца или из мочки уха помещают в центрифужную пробирку с 1 мл физиологического раствора и осторожно встряхивают Сразу же после взятия кровь центрифугируют при 4000 об/мин в течение 10 мин при 4 °С. Плазму или сыворотку анализируют или замораживают при -20 °С и хранят при этой же температуре. Перед анализом пробы размораживают при +4 °С и сразу же анализируют.
Ход определения. 0,5 мл надосадочной жидкости переносят в другую пробирку, добавляют 4 мл 0,08 М раствора серной кислоты, перемешивают и добавляют 0,5 мл 10% раствора фосфорно-вольфрамовой кислоты, перемешивают и через 5 мин центрифугируют при 4000 об/мин в течение 5 мин Супернатант сливают, осадок промывают, суспендируют в 2 мл 0,1 н растворе серной кислоты и 0,25 мл фосфорно-вольфрамовой кислоты и снова центрифугируют при тех же условиях. К осадку приливают 4 мл дистиллированной воды, добавляют 1 мл раствора ТБК (смесь равных объемов 0,67% раствора ТБК и ледяной уксусной кислоты), перемешивают и инкубируют в термостате в течение 1 ч при 95 °С. После охлаждения к пробе добавляют 3 мл бутанола и экстрагируют в течение 1 мин Для разделения слоев пробу центрифугируют в пробирке с пробкой при 4000 об/мин Определяют флюоресценцию бутанольного экстракта при максимуме возбуждения 515 нм и эмиссии 553 нм.
Одновременно строят калибровочный график Для его построения готовят шкалу пробирок с различными концентрациями тетраэтоксипропана В пробирки приливают раствор тетраэтоксипропана так, чтобы концентрации тетраэтоксипропана в них составляли 0; 2,5; 5; 10 и 15 мкмоль/л. В каждую пробирку добавляют по 1 мл раствора ТБК и пробы обрабатывают, как изложено выше По данным флюоресценции строят график Пропорциональная зависимость соблюдается в диапазоне 0,1-1,6 нмоль тетраэтоксипропана в пробе.
Концентрацию МДА рассчитывают по калибровочному графику.
Разработан метод определения МДА в биологических средах, основанный на использовании высокоэффективной газожидкоcтной хроматографии - HPLC (High performance liquid chromatography - высокоэффективная жидкостная хроматография) Сравнительная оценка методов определения МДА в биосредах с применением HPLC и ТБК показала, что первый метод более чувствителен и воспроизводим и более специфичен, чем метод с применением ТБК При использовании метода с ТБК получаются более высокие значения, чем при применении метода HPLC, так как ТБК реагирует не только с МДА, но и с другими веществами, содержащимися в биологическом объекте.
5.1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ АНТИОКСИДАНТНОГО СТАТУСА ОРГАНИЗМА
Для нейтрализации реакционной способности активных форм кислорода в организме существует сложная многокомпонентная система антирадикальной и антиперекисной защиты, составляющая в целом антиоксидантный статус организма К компонентам антиоксидантного статуса организма относят акцепторы электронов: витамины Е и К3, метионин, цистеин, алифатические спирты, СОД, глутатионпероксидазу, глутатонредуктазу и др На начальной стадии процессы пероксидации регулируют СОД и церулоплазмин, на стадии разветвления цепей - КАТ, пероксидаза, глутатионпероксидаза, глутатионтрансфераза, глутатионредуктаза Первая линия антиоксидантной защиты принадлежит ферментам СОД и КАТ, катализирующим последовательность одно- и двухэлектронного восстановления кислорода до воды СОД и КАТ - это преимущественно внутриклеточные ферменты При несбалансированном росте активных форм кислорода отмечается быстрая инактивация этих ферментов.
Вторую и третью линию внутриклеточной защиты составляют ферменты обмена глутатиона: ГП, глутатонредуктаза и глутатион-S-трансфераза.
В условиях окислительного стресса на передний план выступает система низкомолекулярных антиоксидантов, к числу которых относят восстановленный глутатион, аскорбиновую кислоту, α-токоферол, урат, мочевину, ряд витаминов, а также аминокислоты: метионин, аргинин, антиоксидантный фермент СОД катализирует дисмутацию супероксидного анион-радикала О2-*.
Изменение активности СОД становится одним из наиболее ранних проявлений при воздействии пыли на организм. У практически здоровых шахтеров угольных шахт и лиц с подозрением на АСИ активность СОД в эритроцитах крови повышается в 3-4 раза Диагностическая чувствительность определения активности СОДэр очень высока и достигает 100% у больных ПЗОД Изменяется активность СОДэр и при действии других вредных производственных факторов.
Для определения активности СОД в крови предлагаются спектрофотометрические и хемилюминесцентные методы.
Определение активности супероксиддисмутазы (КФ 1.15.1.1) в крови спектрофотометрическим методом
Принцип. Методика основана на оценке степени торможения восстановления нитросинего тетразолия СОД крови в присутствии восстановленной формы никотинамидадениндинуклеотида (НАДН).
Оборудование.
Отбор проб и их хранение. 0,1 мл крови, взятой из пальца, помещают в пробирку с 1-2 мл охлажденного раствора трис НС1 и интенсивно перемешивают Пробирку с кровью помещают в холодильник или в стакан со льдом. Пробы крови могут храниться не более 4 ч.
Реактивы и их приготовление.
-
Раствор трис. НС1 1 мМ/л, pH 7,4; 12,1 мг трис. НС1 растворяют в 100 мл воды
-
Раствор НСТ 0,41 мМ/л. 33,5 мг НСТ растворяют при перемешивании в 100 мл воды Оставляют на сутки, осадок отфильтровывают
-
Раствор этилендиаминтетрауксусной кислоты 1 мМ/л. 29,2 мг этилендиаминтетрауксусной кислоты растворяют в 100 мл воды
-
Раствор феназинметасульфата 0,01 мМ/л 4,9 мг феназинметасульфата растворяют в 100 мл воды Готовят в день анализа, хранят в темной посуде и темном месте
-
Фосфатный буфер pH 7,8. Готовят раствор двузамещенного фосфата натрия Na2HP04. 2Н2О 11,876 г/л и однозамещенного фосфата калия KH2PO4 9,078 г/л. 91 мл раствора фосфата натрия и 9 мл фосфата калия.
Ход определения. К 1 мл гемолизата крови в центрифужной пробирке добавляют 0,25 мл этанола и 0,2 мл хлороформа, перемешивают 1-2 мин стеклянной палочкой, вносят 0,3-0,4 г порошка двузамещенного фосфата натрия и тщательно перемешивают до получения однородной серой массы Центрифугируют при 5000 об/мин 15 мин Надосадочную жидкость осторожно сливают и используют для анализа Готовят пробирки с инкубационной смесью Для каждой пробы готовят 4 пробирки. В 1-ю пробирку приливают 1 мл раствора этилендиаминтетрауксусной кислоты; 1 мл фосфатного буфера; 0,5 мл раствора НСТ; 0,5 мл раствора феназинметасульфата; 0,1 мл супернатанта. В 2-ю пробирку приливают те же реактивы, кроме супернатанта, но добавляют раствор НАДН В 3-ю и 4-ю пробирки приливают все реактивы, что и в 1-ю, и вводят 0,1 мл раствора НАДН После внесения пробы (супернатант) содержимое тщательно перемешивают. После внесения раствора НАДН содержимое пробирок вновь перемешивают Отмечают точное время внесения раствора НАДН в пробирки и ставят пробы в темное место при комнатной температуре на 10 мин, затем проводят определение оптической плотности при длине волны 540 нм Измеряют против раствора в 1-й пробирке. Отмечают точно время измерения. Результаты рассчитывают по формуле:

Определение активности супероксиддисмутазы в крови хемилюминесцентным методом
Принцип. Метод основан на измерении ингибирования люцигенин-зависимой ХЛ в системе ксантин-ксантиноксидаза, продуцирующей супероксидный анион-радикал.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. Отбирают 0,1 мл капиллярной крови в пробирку с гепарином и вносят 0,9 мл холодной дистиллированной воды Через 10 мин после завершения гемолиза в пробирку приливают 2 мл холодной экстрагирующей смеси, содержащей по 1 мл хлороформа и этанола Смесь в пробирке интенсивно встряхивают 5 мин и центрифугируют 60 мин при 16 000 g и температуре 0-4 °С Верхняя водноспиртовая фаза содержит СОД Осторожно отбирают верхнюю часть супернатанта, переносят ее в отдельную пробирку, разбавляют в 50 раз 20 мМ/л раствором фосфатного буфера (pH 7,8) Готовят стандартные растворы СОД с концентрациями 800, 400, 200, 100, 50, 25, 12,5 мкг/мл. Прогревают люминометр при 25 °С В измерительную кювету вносят 940 мкл фосфатного буфера, 10 мкл раствора каталазы, 10 мкл раствора ксантиноксидазы, 20 мкл раствора люцигенина При постоянном перемешивании регистрируют уровень спонтанной люминесценции в течение 1 мин (Исп), затем добавляют 20 мкл раствора ксантина и при перемешивании регистрируют изменение интенсивности ХЛ, отмечая максимальное значение (Икс) Полученные значения ХЛ считают контрольными.
Для определения активности СОД в крови в кювету при подготовке пробы вносят 20 мкл супернатанта и измеряют интенсивность ХЛ, отмечая максимальное значение (Иоп).
Для построения калибровочной кривой в кювету люминометра при подготовке пробы вносят по 20 мкл стандартных растворов СОД Отмечают максимальные значения интенсивности ХЛ Строят калибровочную кривую, откладывая по оси абсцисс концентрации СОД и по оси ординат - интенсивность ХЛ. Количество СОД в крови пересчитывают на число эритроцитов и на содержание гемоглобина в данном образце крови.
Определение активности каталазы в крови и сыворотке крови
КАТ (оксидоредуктаза - КФ 1.11.1. 6) - антиоксидантный энзим, содержащийся в большинстве аэробных клеток В организме КАТ принимает участие в детоксикации пероксида водорода, препятствуя избыточному накоплению его в клетках: КАТ-Fe3+ + 2Н2О2 → 2Н2О + О2.
В физиологических условиях активность КАТ в 10 тыс раз выше, чем пероксидазная Наибольшие количества КАТ находятся в печени, почках, эритроцитах КАТ относится к мембраносвязанным ферментам и локализуется на внутренней поверхности эритроцитарной мембраны Поэтому увеличение активности КАТ в плазме крови считается индикатором нарушения проницаемости мембран.
Активность КАТ в сыворотке или плазме крови шахтеров угольных шахт повышается в 4-5 раз уже в доклинической стадии АСИ Частота встречаемости лиц с повышенными значениями активности КАТ в сыворотке крови превышает 50-60% Аналогичное повышение активности энзима наблюдается и в моче При этом в эритроцитах крови больных АСИ активность КАТ понижается. Установлены серьезные изменения в сопряженной системе СОД/КАТ в эритроцитах.
Поэтому наиболее информативным для ранней диагностики пылевых заболеваний органов дыхания считается одновременное определение активности каталаза сыворотки (КАТсыв) или плазмы и СОД в эритроцитах крови и расчет коэффициента СОД/КАТ.
Методики определения КАТ основаны либо на образовании кислорода и измерении его количества манометрическими или полярографическими методами, либо на определении остаточной или текущей концентрации пероксида водорода спектрофотометрическим методом.
Определение активности каталазы в плазме крови спектрофотометрическим методом
Принцип
Метод основан на образовании стойкого перекисного соединения желтого цвета при взаимодействии перекиси водорода с солями молибдата натрия или аммония.
Оборудование
Реактивы
Ход определения
-
Венозную кровь с гепарином 50 ед на 1 мл крови центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин
-
Готовят стандартный образец: к 1 мл плазмы добавляют 0,1 мл азида натрия и 2 мл 0,03% раствора пероксида водорода
-
К 1 мл анализируемой плазмы крови добавляют 2 мл 0,03% пероксида водорода Обе пробы инкубируют при 25 °С в течение 55-60 с. Затем добавляют 0,1 мл азида натрия В обе пробы вносят по 1 мл 4% раствора молибдата аммония Перемешивают и определяют оптическую плотность при 410 нм в кювете с длиной оптического слоя 1 см.
Активность каталазы А, мкмоль/л, рассчитывают по формуле:

где Δ_Е_ - разность экстинций контроль-опыт; V - объем пробы 3,2 мл; К - коэффициент пересчета на 1 л;ε - коэффициент молярной экстинции 22,2 мкмоль/л; t - время инкубации.
Простой фотометрический метод для определения активности каталазы в сыворотке крови предложен в работе Goth L.
Фотометрический метод определения активности каталазы в сыворотке крови
Принцип. Метод основан на измерении скорости разложения пероксида водорода каталазой, содержащейся в сыворотке крови.
Оборудование. Спектрофотометр, термостат, лабораторная центрифуга.
Реактивы.
Ход определения Кровь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин при 10-18 °С, супернатант хранят при -80 °С.
Готовят 4 пробирки:
Пробы инкубируют при 37 °С 60 с В пробирку 4 добавляют 1 мл молибдата аммония, перемешивают и измеряют оптическую плотность при длине волны 405 нм против Bl-3.
Расчет проводят по формуле:

где U - 1 единица каталазы, которая разлагает 1 мкмоль Н2 О2 за 1 мин; Aser _ - оптическая плотность пробы сыворотки; _ABl-1, ABl-2, ABl-3 - оптическая плотность растворов в пробирках 1, 2, 3 соответственно.
Линейность активности КАТ сохраняется до 100 kU/l при условиях определения. Если активность КАТ выше 100 kU/l, то пробу разбавляют фосфатным буфером.
Референтные значения КАТсыв 49,5±1,8 kU/l (ед/л).
Интервал нормальных значений (14,3-104,8 ед/л).
В настоящее время разработан ряд тест-систем для определения активности каталазы: одна из них основана на взаимодействии пероксида водорода с пероксидазой хрена и с последующим образованием окрашенного соединения с 3,5,31 ,51-тетраметилбензидином. (Catalase Activity Determination Kit, № 240 в каталоге) Интенсивность образующейся синей окраски измеряют при длине волны 653 нм на спектрофотометре.
Другая методика основана на реакции каталазы с метанолом в присутствии пероксида водорода. Образующийся формальдегид при взаимодействии с 4-амино-3-гидразино-5-меркапто-1,2,4-триазолом образует соединение пурпурного цвета, интенсивность которого измеряют на спектрофотометре (Cayman ChemicalItem Number 707002, Catalase Assay Kit).
Наборы для определения активности КАТ предлагаются также фирмами КОКТЕК и «ДИАКОН».
5.2. Методы определения иммунного статуса организма человека
Иммунная система - относительно самостоятельная система организма, контролирующая клеточный и гуморальный иммунитет его биологических жидкостей и тканей Иммунологический статус и состояние неспецифических факторов защиты организма во многом определяют его чувствительность к воздействию чужеродных веществ (антигенов) и прежде всего - аллергенов Повышение активности иммунной системы сопровождается появлением в крови лимфоцитов средних и больших размеров Выделяют две основные популяции лимфоцитов: Ти В-лимфоциты Тл - тимусзависимые лимфоциты, ответственные за «клеточный иммунитет» Вл - эффекторы гуморального иммунитета Стимуляция Вл антигеном приводит к их трансформации в плазматические клетки, продуцирующие антитела, - специфические Ig: A, M, G, Е, D. Антигенная стимуляция приводит к секреции ЦК первого поколения: ИЛ-1, ИЛ-6, ФНО-α, которые индуцируют синтез центральных регулирующих ЦК (ИЛ-2, ИЛ-3, ИЛ-4, ИЛ-5, интерферон-γ). Основные клетки, продуцирующие ЦК, - Т-хелперы и макрофаги, которые выполняют главные функции в поддержке приобретенного и врожденного иммунитета К регуляторам естественного иммунитета относятся и провоспалительные ЦК: ИЛ-1, ИЛ-6, интерферон-α, ФНО-α и др. Специфические иммунные реакции регулируют ЦК ИЛ-2, ИЛ-10, интерферон-γ. Исследование иммунного статуса проводится при частых инфекционных заболеваниях, хронической патологии желудочно-кишечного тракта, аллергических, аутоиммунных, онкологических заболеваниях и др. Иммунный статус нарушается и при воздействии на организм человека производственных факторов: пыли, вибрации, неорганических и органических веществ.
Определение иммунного статуса человека включает комплекс методов, дающих количественную характеристику клеточного и гуморального звена иммунитета.
Для оценки иммунного статуса организма используют определение лейкоцитов, лимфоцитов (Тл) и субпопуляций лимфоцитов (Тх, Тс, Ткилл., Вл и др.) крови. Тл (СД3+) отвечают за реакции клеточного иммунитета. Вл (СД20+) определяет гуморальный иммунитет крови. К показателям гуморального иммунитета относятся также Ig A, M, G и E. Кроме этого, к иммунологическим показателям относятся компоненты комплемента, фагоцитарная активность нейтрофилов крови, фагоцитарное число, циркулирующие иммунные комплексы в сыворотке крови и др.
Методы определения компонентов клеточного иммунитета широко освещены в литературе и поэтому они не приводятся в кратком руководстве.
Для определения Ig в настоящее время преимущественно используют три метода: радиальную иммунодиффузию по Манчини, турбодиметрию и иммуноферментный анализ (ИФА).
Классический метод Манчини самый наглядный и простой, однако очень продолжительный (1-4 сут). Недостатками этого метода считаются не очень высокая точность и визуальная оценка результатов.
Методы ИФА и турбидиметрический более точны и чувствительны.
Наборы реагентов, предлагаемые ЗАО «Вектор-Бест» для определения IgG, IgA, IgM, IgE, позволяют провести количественное определение с очень высокой чувствительностью и точностью. Чувствительность определения IgG, IgA, IgM, IgE методом ИФА составляет 0,2; 0,21; 0,032 и 2,5 мкг/мл. При температуре -20 °С пробы биологических жидкостей могут храниться в течение года. Метод ИФА прост, высокопроизводителен и чувствителен.
Определение может быть проведено как в ручном режиме, так и на автоматических анализаторах. Может быть использован отечественный анализатор «Архитект-8000» («Вектор-Бест», vector-best, ru).
Большое значение в реализации иммунного ответа имеют ЦК, продуцируемые клетками крови ЦК - это белково-пептидные факторы, осуществляющие короткодистанционную регулировку межклеточных и межсистемных взаимодействий Они вовлечены во все звенья клеточного и гуморального ответа ЦК участвуют в стимуляции роста и созревания незрелых кроветворных клеток (ИЛ-3, ИЛ-7), регуляции естественного иммунитета и неспецифической защите организма [интерферон-α, (ИЛ-1), ФНО-α, ИЛ-8], регулировании специфических иммунных реакций (ИЛ-2, ТФР), воспалительных реакций (ИЛ-5, ИЛ-10, интерферон-γ).
ЦК участвуют в ответных реакциях на патогенное воздействие Ряд исследований свидетельствует о существенном изменении уровней многих ЦК и при воздействии вредных производственных факторов (пыль, вибрация и др.) Однако имеющиеся литературные данные об особенностях изменения уровней многих ЦК крайне противоречивы Получение надежной информации о характере изменений ЦК при действии вибрации, производственной пыли и других вредных факторов имеет важнейшее значение как для ранней диагностики, так и для решения вопросов оптимального лечения и реабилитации больного.
Для количественного определения ЦК в настоящее время разработаны методы определения с помощью ИФА Метод ИФА характеризуется высокой чувствительностью, простотой, стабильностью, возможностью автоматизации всех этапов, сравнительно низкой стоимостью.
Для определения ФНО-α (TNF-α) предлагается тест-система ИФА ООО «Цитокин». Чувствительность определения 1 пг/мл, объем пробы 100 мкл, время анализа 4 ч, диапазон калибровочной кривой 5-250 пг/мл . Изготовители - ООО «Цитокин» (info@cytokine.ru), Санкт-Петербург, и фирма ЗАО «Вектор Бест» Российской Федерации.
В фирме ООО «Цитокин» также разработаны тест-системы для определения ИЛ-1α, ИЛ-1β, ИЛ-4, ИЛ-8, ИЛ-10, интерферон-α, интерферон-γ, СОД.
В настоящее время для количественного определения концентрации ИЛ в биологических материалах используют готовые наборы реактивов.
Большое значение имеет определение фактора некроза опухолей (ФНО).
5.2.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФАКТОРА НЕКРОЗА ОПУХОЛЕЙ α В БИОЛОГИЧЕСКИХ СРЕДАХ
В конце XIX в. было установлено, что развитие бактериальной инфекции у раковых больных иногда приводило к уменьшению размеров или исчезновению опухоли На основании этого были разработаны вакцины для лечения опухолей, однако результаты по их применению плохо воспроизводились В середине 1970-х группой американских ученых было открыто вещество, получившее название Tumor necrosis factor (TNF), или ФНО, в некоторых случаях приводящее к уменьшению или полному исчезновению опухоли. Было установлено, что ФНО продуцируют активированные мононуклеарные фагоциты и в небольших количествах - В-лимфоциты, Т-лимфоциты, тучные клетки, базофилы и др Интактные макрофаги почти не продуцируют ФНО Стимуляцию биосинтеза ФНО могут вызвать агенты самой разной природы Очень интенсивно стимулирует синтез ФНО липополисахариды (ЛПС) (биологически активный компонент оболочки граммотрицательных микроорганизмов, состоящий из остатков жирных кислот, соединений фосфора и сахаров) Продукцию ФНО стимулируют и некоторые ЦК: γ-интерферон, ИЛ-2, а также витамин D, вирус гриппа, соли меди и цинка, фиброгенная пыль кремния и асбеста, интенсивные физические упражнения [93].
ФНО - это главный эндогенный медиатор токсических и иммунобиологических проявлений действия эндотоксина При поступлении пыли кварца, асбеста, каменного угля в органы дыхания уровень ФНО-α повышается.
Для определения ФНО в биологических средах используют в основном методы ИФА Ниже приводится тест-система по количественному определению ФНО-α (TNF-alpha), предлагаемая ООО «Цитокин».
5.2.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФАКТОРА НЕКРОЗА ОПУХОЛИ ЧЕЛОВЕКА α
Инструкция по применению набора реактивов для ИФА ФНО человека «ИФА-TNF-alpha».
Набор реактивов «ИФА-TNF-alpha» предназначен для количественного определения ФНО человека в исследуемых образцах методом твердофазного ИФА.
Характеристика и принцип работы набора
Состав набора.
-
Комплект из 12 восьмилуночных стрипов с рамкой с иммобилизованными на внутренней поверхности лунок моноклональными антителами к TNF-alpha, маркирован «Стрипы с моноклональными антителами»
-
7 калибровочных проб, содержащих известные количества TNF-alpha - 0 5; 12,5; 25; 62,5; 125; 250 пг/мл.
-
Аналитический буферный раствор, маркирован «Буфер А», 1 флакон.
-
Концентрированный раствор антител-биотин, маркирован «Антитела», 1 флакон.
-
Концентрированный раствор конъюгата стрептавидин-пероксидаза, маркирован «Конъюгат Е», 1 флакон.
-
Концентрированный буферный раствор для промывок лунок, маркирован «Буфер Р», 1 флакон.
Набор «ИФА-TNF-ALPHA» рассчитан на проведение анализа в дубликатах 41 неизвестной и 7 калибровочных проб при использовании всех стрипов одновременно.
Принцип работы набора. В наборе «ИФА-TNF-alpha» использован «сэндвич» - вариант твердофазного ИФА. Для реализации этого варианта использованы два моноклональных антитела с различной эпитопной специфичностью к TNF-alpha Одно из них иммобилизовано на твердой фазе (внутренняя поверхность лунок), второе конъюгировано с биотином На первой стадии анализа TNF-alpha (Tumor necrosis factor-alpha), содержащийся в калибровочных и исследуемых пробах, связывается с антителами, иммобилизованными на внутренней поверхности лунок На второй стадии анализа иммобилизованный TNF-alpha взаимодействует со вторыми антителами, меченными биотином Количество связавшегося конъюгата прямо пропорционально количеству TNF-alpha в исследуемом образце На последней стадии в лунки вносится конъюгат стрептавидин-пероксидаза.
Во время инкубации с субстратной смесью происходит окрашивание раствора в лунках Степень окраски прямо пропорциональна количеству связавшихся меченых антител. После измерения оптической плотности раствора в лунках на основании калибровочной кривой рассчитывается концентрация TNF-alpha в определяемых образцах.
Оборудование и материалы
-
Полуавтоматические одноканальные пипетки с изменяемым объемом отбора жидкостей: от 0,005 до 0,02 мл; от 0,05 до 0,25 мл; от 0,2 до 1 мл; от 1 до 5 мл.
-
Восьмиканальная полуавтоматическая пипетка, позволяющая отбирать объемы жидкости до 0,3 мл.
-
Прибор для встряхивания рамки со стрипами (шейкер), позволяющий производить встряхивание с амплитудой колебания 3-4 мм и частотой 4-8 Гц при комнатной температуре (+18…25 °С), либо термостатируемый шейкер, позволяющий производить встряхивание в том же режиме при температуре +37 °С.
-
Спектрофотометр, позволяющий измерять оптическую плотность раствора в стрипах при длине волны 450 нм.
Подготовка реагентов для анализа
-
Калибровочные пробы. Во флаконы с калибровочными пробами добавить по 1,0 мл дистиллированной воды, выдержать в течение 20 мин и затем тщательно перемешать до полного растворения, избегая пенообразования. Хранить при температуре +48 °С в течение трех суток; при необходимости более длительного хранения разлить по 240 мкл (чтобы избежать повторного замораживания) и хранить при температуре -20 °С не более 1 месяца.
-
Стрипы Вскрыть и установить на рамку необходимое количество стрипов Оставшиеся стрипы не вскрывать, хранить в герметично закрытом пакете из фольгированного полиэтилена при температуре +28 °С.
-
Промывочный буфер. В стакан с 480 мл дистиллированной воды добавить содержимое флакона с маркировкой «Буфер Р» Тщательно перемешать, избегая пенообразования. Хранить закрытым при температуре +28 °С.
-
Буфер А готов к использованию. Хранить закрытым при температуре +28 °С.
-
Антитела анти-TNF-alpha-биотин. В зависимости от количества используемых стрипов подготовить необходимый объем однократного раствора антител путем смешивания 40 мкл концентрированного раствора антител с 1 мл промывочного буфера из расчета на один стрип Однократный раствор антител должен быть использован в течение часа, длительному хранению не подлежит.
-
Конъюгат Е стрептавидин-пероксидаза. В зависимости от количества используемых стрипов подготовить необходимый объем однократного раствора конъюгата путем смешивания 40 мкл концентрированного раствора конъюгата с 1 мл промывочного буфера из расчета на один стрип Однократный раствор конъюгата должен быть использован в течение часа, длительному хранению не подлежит.
-
Субстратная смесь приготовляется непосредственно перед употреблением.
Проведение анализа
-
В зависимости от количества определяемых образцов подготовить соответствующее количество реагентов, которые перед проведением анализа должны быть тщательно перемешаны и доведены до комнатной температуры В табл 1 приведен расход реагентов в зависимости от количества используемых стрипов.
-
Внести в соответствующие лунки по 0,10 мл калибровочных проб или исследуемой сыворотки в дубликатах, внесение образцов не должно занимать более 15 мин.
-
Инкубировать стрипы при температуре 37 °С в течение 2 ч со встряхиванием.
-
По окончании инкубации удалить содержимое лунок декантированием и промыть лунки три раза. При каждой промывке во все лунки добавить по 0,3 мл промывочного буфера, приготовленного по п. 5. 3, в течение 5-10 с встряхнуть рамку на шейкере с последующим декантированием При каждом декантировании тщательно удалять остатки жидкости из лунок постукиванием рамки со стрипами в перевернутом положении по фильтровальной бумаге.
-
Внести во все лунки по 0,1 мл раствора антител, приготовленного по п. 5.5.
-
Инкубировать стрипы при температуре 37 °С в течение 1 ч со встряхиванием
-
Внести во все лунки по 0,1 мл раствора конъю-гата Е, приготовленного по п. 5.6.
-
Инкубировать стрипы при температуре 37 °С в течение 30 мин со встряхиванием.
-
Перед окраской стрипы желательно сполоснуть дистиллированной водой для более полного удаления несвязавшего конъюгата.
-
За 5 мин до окончания инкубации приготовить необходимое количество субстратной смеси (см. табл. 1): в стакан, содержащий субстратный буфер из флакона с маркировкой «Буфер С», внести необходимый объем раствора тетраметилбензидина из флакона с маркировкой «ТМБ» Тщательно перемешать и поставить в темное место до использования. Внимание!!! Чисто вымытый стакан для приготовления субстратной смеси непосредственно перед использованием несколько раз ополоснуть дистиллированной водой. Для отбора необходимых объемов субстратного буфера и раствора тетраметилбензидина использовать только новые наконечники.
-
Внести во все лунки по 0,1 мл субстратной смеси и инкубировать стрипы в темноте в течение 15-20 мин в зависимости от степени развития окраски.
-
Добавить во все лунки с той же скоростью и в той же последовательности, как и субстратную смесь, по 0,05 мл «Стоп-реагента» для остановки ферментной реакции, встряхивать на шейкере 5-10 мин.
-
Измерить оптическую плотность в лунках при длине волны 450 нм Рассчитать для каждой калибровочной или исследуемой пробы величину В-В0, где В - среднее значение оптической плотности в лунках, содержащих калибровочные или исследуемые пробы, В0 - среднее значение оптической плотности в лунках, содержащих калибровочную пробу «0 пг/мл».
-
В линейных координатах на масштабной бумаге построить для калибровочных проб график зависимости оптической плотности в единицах оптической плотности (ОП) от концентрации TNF-alpha (пг/ мл). Определить содержание TNF-alpha в пробах по калибровочному графику Характерный вид графика представлен на рис. 5-1.
-
Если оптическая плотность исследуемого образца выше оптической плотности максимальной точки калибровочной кривой, то исследуемый образец при проведении повторного анализа следует титровать в «буфере А».
Аналитические характеристики набора

Условия хранения и применения набора
Набор «ИФА-TNF-ALPHA» должен хранится при температуре 28 °С.
Для определения ФНО-α предлагается также набор ProConTNF-L производства ООО «Протеиновй контур», Санкт-Петербург, и метод ИФА, выпускаемый фирмой «Бест» Российской Федерации.
5.3. Определение оксипролина в биологических средах
ОП - это аминокислота, которая входит в состав коллагена и эластина ОП не встречается больше ни в каких других белках, являясь специфической меткой коллагена 12-14% всех аминокислотных остатков коллагена составляет ОП Один из критериев оценки функционального состояния соединительной ткани (коллагеноза, опухоль костной ткани и др.) - оксипролиновый тест Экскреция ОП с мочой незначительно увеличивается у больных саркоидозом, при костных метастазах, у больных системным остеохондрозом, при болезни Пейрони, у лиц с ревматоидным артритом, у больных раком молочной железы. Любые факторы, изменяющие костный матрикс, различные эндокринные или метаболические нарушения проявляются повышением выведения ОП с мочой Сильно повышается экскреция ОП при коллагенозах Отмечается увеличение ОП и при пневмонии, особенно при II и III стадиях заболевания. Определение ОП в синовиальной жидкости рекомендуют при заболеваниях суставов Наиболее значительные изменения наблюдали при ревматоидном артрите Определение ОП в желудочном соке применяют для контроля за процессами рубцевания язвы желудка и двенадцатиперстной кишки Содержание ОП в моче увеличивается также при остеомаляции, миеломе, болезни Педжета и Пейрони.
При пылевых заболеваниях органов дыхания содержание ОП в биосредах организма достоверно повышается Во время обследования шахтеров Донбасса было определено, что у больных пневмокониозом содержание ОП в моче возрастает в 1,5-2 раза. У больных АСИ частота встречаемости лиц с повышенными значениями ОП в моче достигала 82%, у больных ХПБ - 64% и зависела от тяжести заболевания.
Воздействие вибрации на организм человека вызывает разнообразные сдвиги соединительнотканных, мышечных и сосудистых структур Полагают, что одной из причин повреждения нервно-мышечного аппарата при действии вибрации становятся нарушения в структуре и метаболизме соединительной ткани и особенно коллагеновых белков Содержание ОП в моче при действии вибрации и у больных ВБ в возрасте более 25 лет достоверно повышается Ермакова Г А и соавт., 1995, [94] предлагают использовать не только определение содержания ОП в моче, но и более информативный коэффициент: отношение концентрации ОП в моче (мкМ/ч) к показателю, характеризующему мышечную выносливость (с), значение которого у практически здоровых рабочих в возрасте более 25 лет составляет 0,31, у больных ВБ - 0,82 и в контроле - 0,22.
Нормальное значение содержания ОП в моче варьирует от 11,3 до 36,1 мг/сут и в среднем составляет от 19,4 до 21,9 мг/сут.
5.3.1. определение свободного и связанного оксипролина в моче
Принцип. Метод основан на разделении белково-связанного, пептидносвязанного и свободного ОП в моче с последующим фотоколориметрическим определением окрашенного соединения ОП с парадиметиламинобензальдегидом.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. В центрифужную пробирку помещают 2 мл мочи, 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты, 1 мл хлорной кислоты, содержимое перемешивают и центрифугируют 5-6 мин при 3000 об/мин Надосадочную жидкость количественно переносят в мерную центрифужную пробирку и делят пополам. В 1-ю пробирку добавляют 1 каплю раствора фенолфталеина, нейтрализуют до устойчивой слаборозовой окраски 6 М раствором едкого натрия В смесь добавляют каплю хлорной кислоты и вновь нейтрализуют. В этой пробе определяют свободный ОП. Содержимое 2-й пробирки (вторая половина супернатанта) гидролизуют на кипящей водяной бане 40 мин Пробирка должна быть закрыта специальным каплеуловителем. Затем охлаждают до комнатной температуры и раствор нейтрализуют так же, как и в 1-й пробирке Определяют свободный ОП и пептидносвязанного ОП. К осадку в 3-й пробирке добавляют 1 мл дистиллированной воды; 0,3 М раствор трихлоруксусной кислоты; 8,5 М хлорную кислоту, смесь закрывают каплеуловителем и гидролизуют на кипящей водяной бане 4 ч. Можно проводить гидролиз в запаянной ампуле. После охлаждения смесь нейтрализуют Определяют белковосвязанный ОП В контрольную пробирку приливают 4 мл дистиллированной воды Для определения ОП во все пробирки при помешивании приливают по 0,5 мл хлорамина, а через 5 мин - раствор парадиметиламинобензальдегида и хлорную кислоту. Помещают на кипящую водяную баню на 3 мин Растворы охлаждают, добавляют 4 мл бутанола, перемешивают и центрифугируют 5 мин при 3000 об/мин Супернатант фотометрируют против контрольной пробы при длине волны 560 нм в кювете с длиной оптического пути 1 см Окраска устойчива 3-4 ч 1-я пробирка - свободный ОП, 2-я - свободный и пептидносвязанный ОП, 3-я - белковосвязанный ОП.
Рассчитывают по калибровочной кривой Для анализа используют суточную мочу, собранную после специальной диеты Мочу хранят в холодильнике до 30 ч, в замороженном состоянии мочу можно хранить до 20 сут.
Содержание свободного ОП у здоровых людей - 18,4 мкмоль/сут, пептидносвязанного ОП - 155,7 и белковосвязанного ОП - 8,4 мкмоль/сут.
У больных пневмокониозом содержание свободного ОП - 55,3 мкмоль/сут, пептидносвязанного ОП - 469 и белковосвязанного ОП - 8,8 мкмоль/сут.
5.4. Количественное определение гаптоглобина в сыворотке и плазме крови
ГП относится к α2-глобулинам. Основная его функция - связывание свободного гемоглобина в плазме при внутрисосудистом гемолизе Образующийся комплекс ГП-гемоглобин удаляют клетки ретикуло-эндотелиальной системы. Это белок, характеризующий происходящие в организме воспалительно-деструктивные процессы.
В сыворотке крови взрослого здорового человека концентрация ГП составляет 0,28-1,90 г/л. ГП входят в состав фракции α-глобулинов сыворотки крови. У новорожденных ГП, как правило, отсутствуют Они начинают появляться в возрасте 1-2 мес и достигают уровня взрослых к первому полугодию ГП связывают внеэритроцитарный гемоглобин, образуя с ним комплекс. Тем самым ГП выполняет в организме защитную функцию, например, при разрушении эритроцитов (гемолизе) При гемолизе ГП препятствует экскреции гемоглобина почками, предотвращая нарушение функции канальцев.
При воздействии угольной пыли содержание ГП начинает уже незначительно изменяться у стажированных здоровых шахтеров, однако частота встречаемости лиц с повышенным содержанием ГП в сыворотке крови невысока При заболевании различными формами ПЗОД частота встречаемости больных с абсолютными и повышенными значениями ГП резко увеличивается и достигает 94% при заболевании АСИ и 92% при хроническом пылевом бронхите (ХПБ) Этот показатель характеризуется очень высокой диагностической информативностью при действии угольной и кремниевой пыли.
Определение содержания гемоглобина может быть проведено и с помощью гематологического автомата Принцип определения основан на унифицированном гемоглобинцианидном методе Ход исследования соответствует инструкции, приложенной к прибору.
5.4.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГАПТОГЛОБИНА В СЫВОРОТКЕ КРОВИ
Принцип. Определение ГП основано на установлении количества гемоглобина, который не связался с ГП сыворотки.
Специальное оборудование
Фотоэлектроколориметр или спектофотометр.
Реактивы и их приготовление.
-
Гемоглобин, 0,5% раствор Готовят из эритроцитов, отмытых от цитратной плазмы 7-8 раз изотоническим раствором натрия хлорида, центрифугируя каждый раз при 1500 об/мин по 20 мин К отмытым эритроцитам добавляют два объема дистиллированной воды и в течение 15-18 ч проводят гемолиз при температуре 3-4 °С Раствор гемоглобина отделяют от стромы эритроцитов центрифугированием при 10 000 об/мин в течение 10 мин Раствор гемоглобина 5 г/л (0,5%) получают разведением основного раствора дистиллированной водой Количество дистиллированной воды, которую надо добавить к 1 мл основного раствора гемолизата, рассчитывают путем деления концентрации основного раствора гемоглобина на 0,5 г%. Концентрацию гемоглобина определяют гемоглобинцианидным методом.
Принцип определения. Гемоглобин окисляют в метгемоглобин (гемиглобин) железосинеродистым калием Образующийся с ацетонциангидрином окрашенный цианметгемоглобин определяют колориметрически.
Реактивы.
-
Трансформирующий раствор: ацетонциангидрин 0,5 мг, калий железосинеродистый 0,2 г, натрия гидрокарбонат 1 г, дистиллированная вода до 1 л Раствор желтого цвета, прозрачный, при обесцвечивании или появлении осадка непригоден Стабилен в течение нескольких месяцев при хранении в посуде из темного стекла при комнатной температуре.
-
Калибровочный раствор гемиглобинцианида Можно использовать стандартный раствор фирмы «Реанал» с концентрацией вещества 59,75 мг/100 мл. Это соответствует концентрации гемоглобина в крови 15,0 г/100 мл при разведении ее в 251 раз Стандартный раствор хранят в холодильнике в защищенном от света месте.
Ход определения. В пробирку к 5 мл трансформирующего раствора добавляют 0,02 мл крови (разведение в 251 раз), содержимое пробирки тщательно перемешивают и оставляют стоять 10 мин Через 10 мин измеряют оптическую плотность на фотоколориметре при длине волны 500-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы В тех же условиях измеряют стандартный раствор.
Расчет содержания гемоглобина проводят либо по калибровочному графику, либо по формуле:

где Х - концентрация гемоглобина, г/%; Ео и Ес - экстинкция опытной пробы и стандартного раствора; С - концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе, мг/%; К - коэффициент разведения крови; 0,001 - коэффициент пересчета мг/100 мл в г/100 мл.
Определение содержания гемоглобина может быть проведено и с помощью гематологического автомата. Принцип определения основан на унифицированном гемоглобинцианидном методе Ход исследования соответствует инструкции, приложенной к прибору.
Ход определения ГП. К 0,3 мл дистиллированной воды в центрифужной пробирке приливают 0,5 мл негемолизированной сыворотки и 0,2 мл 0,5% раствора гемоглобина Содержимое пробирки перемешивают Через 10 мин прибавляют 2 мл 0,3% раствора риванола и вновь перемешивают Спустя 5 мин пробу центрифугируют при 3000 об/мин 6-7 мин Отбирают надосадочную жидкость в сухую пробирку и добавляют 0,2 мл 10% раствора аммония сульфата. Пробу оставляют на 1 ч при комнатной температуре Одновремено готовят контрольную пробу и стандартный раствор В контрольную пробу вносят последовательно 0,5 мл дистиллированной воды, 0,5 мл сыворотки и 2 мл риванола. В стандартный раствор вносят 2,8 мл дистиллированной воды, 0,2 мл раствора гемоглобина 0,5% Измеряют оптическую плотность опытной, контрольной и стандартной проб по отношению к дистиллированной воде на фотоэлектроколориметре при длине волны 560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 0,5 см. Рассчитывают по формуле:

где Х - концентрация ГП, г/л; Ес, Ео, Ек - оптическая плотность стандартной, опытной, и контрольной проб соответственно; 200 - коэффициент пересчета.
Если количество ГП превышает 1 г/л (100 мг%), то определение повторяют, добавляя к сыворотке удвоенное количество гемоглобина, а в формуле коэффициент 200 заменяют коэффициентом 400.
В норме содержание ГП в сыворотке крови 0,9- 1,4 г/л.
5.5. Определение активности дегидратазы δ-аминолевулиновой кислоты в крови
Принцип. Метод основан на инкубации цельной крови с избытком АЛК При этом под действием АЛК-Д, находящейся в крови, синтезируется порфобилиноген, который с парадиметиламинобензальдегидом образует окрашенное соединение Интенсивность окраски пропорциональна количеству порфибилиногена и измеряется при длине волны 555 нм По количеству порфибилиногена рассчитывают активность АЛК-Д.
Оборудование.
Реактивы и их приготовление.
-
Раствор А. 35,8 г натрия фосфата двузамещенного (Na2HPO4.12H2O) растворяют в дистиллированной воде в мерной колбе на 1000 мл
-
Раствор Б 15,6 г натрия фосфата однозамешенного (NaH2PO42H2O) растворяют в дистиллированной воде в мерной колбе на 1000 мл
-
Фосфатный буферный раствор 0,1 М/л, pH 6,4, готовят смешиванием растворов А и Б в отношении 3:7 и доводят pH до 6,4.
-
Раствор δ-аминолевулиновой кислоты, 0,01 М/л. 1,676 г АЛК гидрохлорида растворяют в мерной колбе на 100 мл в небольшом количестве раствора Б, добавляют раствор А до pH 6,4 и доводят до метки. Хранят в холодильнике не более 1 мес
-
Реактив Эрлиха 1 г парадиметиламинобензальдегида растворяют в мерной колбе на 50 мл в 35 мл ледяной уксусной кислоты, добавляют 8 мл 57% хлорной кислоты и доводят до метки ледяной уксусной кислотой Хранят в холодильнике в склянке темного стекла не более 1 нед
-
Ртути дихлорид. 1,35 г HgCl2 в 0,61 М/л трихлоруксусной кислоты в мерной колбе на 100 мл.
Отбор проб и их хранение. Отбирают около 2 мл крови в пробирку с гепарином и обрабатывают не позднее чем через 3 ч Перед добавлением реактива Эрлиха допускается хранение в холодильнике в течение 3 сут.
Ход определения. Готовят гемолизат крови: к 1 мл крови добавляют 6,5 мл дистиллированной воды и из него берут по 1,5 мл в 3 центрифужные пробирки Одна из пробирок является контрольной В отдельную пробирку отмеряют 3 мл раствора АЛК Все пробирки термостатируют при 37 °С в течение 10 мин Затем в контрольную пробирку добавляют 1 мл раствора хлорида ртути, а в опытные - по 1 мл нагретого до 37 °С раствора АЛК Содержимое пробирок тщательно перемешивают стеклянной палочкой и помещают в термостат при 37 °С на 60 мин Время инкубации рассчитывают с момента добавления АЛК Через 60 мин реакцию образования порфибилиногена останавливают добавлением во все пробирки по 1 мл раствора хлорида ртути Содержимое пробирок вновь тщательно перемешивают стеклянной палочкой Все пробы центрифугируют при 1500 об/ мин в течение 10 мин Затем жидкость отфильтровывают через фильтр «синяя лента» в соответственно промаркированные пробирки Из каждой пробирки отбирают по 1,5 мл фильтрата, к которому добавляют 1,5 мл реактива Эрлиха и перемешивают Через 5 мин определяют оптическую плотность растворов в опытных пробах против контроля при длине волны 555 нм и толщине оптического слоя 10 мм. Фотометрирование можно проводить в течение 1 ч после добавления реактива Эрлиха Для расчета активности АЛК-Д предварительно определяют гематокрит Рассчитывают по формуле:

где X - активность АЛК-Д, мкмоль/мин.л; 31,4 - коэффициент пересчета, учитывающий фактор разбавления, время инкубации, молярный коэффициент экстинкции; Г - гематокрит; Е - оптическая плотность пробы (среднее из двух значений).
Нормальные значения АЛК-Д находятся в пределах от 14 до 51 мкмоль/мин/л. Нижняя граница определения - 3,34 мкмоль/мин/л. Воспроизводимость методики ±6%. Другие ферменты крови определению не мешают В организме активность АЛК-Д снижается при поступлении не только свинца, но и ртути, бензола, окиси углерода, этилового спирта Этиловый спирт понижает активность АЛК-Д очень интенсивно, однако спустя 10 ч после приема алкоголя активность АЛК-Д в крови восстанавливается.
Tomokuni K и соавт. показано, что у рабочих, контактирующих со свинцом, и у лиц контрольной группы при инкубации проб крови при определении АЛК-Д при разных pH (6,0 и 6,8) соотношение активности энзима резко различается Отношение активности энзима у лиц контрольной группы составляет 1,72-3,02, а у рабочих - 0,39-1,38. Отношение активностей АЛК-Д, полученных при разных pH, тесно коррелирует с концентрацией Рвкр Автор считает, что специфичность диагностики негативного воздействия свинца при определении соотношений активности АЛК-Д, полученных при разных pH, сильно возрастает.
5.5.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СООТНОШЕНИЯ АКТИВНОСТЕЙ ДЕГИДРАТАЗЫ δ-АМИНОЛЕВУЛИНОВОЙ КИСЛОТЫ В КРОВИ ПРИ РАЗНЫХ PH ИНКУБАЦИОННОЙ СРЕДЫ
Принцип. Метод основан на определении активности АЛК-Д в крови при инкубации проб при pH 6,0 и 6,8 и последующем расчете соотношения активностей.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. 0,5 мл цельной крови вносят в пробирку, содержащую 3,25 мл дистиллированной воды, и немедленно встряхивают Для определения готовят 2 пробирки: в 1-ю вносят 0,5 мл буферного раствора с pH 6,8 и в 2-ю - с pH 6,0 В каждую пробирку вносят по 0,5 мл раствора АЛК и оставляют стоять на водяной бане или в термостате с температурой 37 °С в течение 5 мин Затем немедленно вносят в каждую пробирку по 0,5 мл гемолизата, подогретого до 37 °С Пробы перемешивают и оставляют в термостате при 37 °С в течение 1 ч Затем в каждую пробирку добавляют по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты Смесь в пробирках центрифугируют при 3000 об/мин в течение 5 мин, 1 мл супернатанта переносят в чистые пробирки и добавляют по 3 мл реактива Эрлиха Вновь перемешивают и через 5 мин определяют оптическую плотность при длине волны 555 нм в кювете с толщиной слоя 1 см против раствора, содержащего 1 мл дистиллированной воды и 3 мл реактива Эрлиха Образцы могут быть измерены в течение 10 ч после отбора крови Одновременно определяют гематокрит Рассчитывают по формулам:


где Х1 и Х2 - активность АЛК-Д в 1 мл клеток крови при инкубации при pH 6,8 и 6,0 в течение 1 ч, мкмоль порфибилиногена/мин/мл; Е - оптическая плотность растворов при pH 6,8 и 6,0; Г - гематокрит; А - отношение активности АЛК-Д при pH 6,8 и 6,0.
5.5.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СООТНОШЕНИЯ АКТИВНОСТЕЙ ДЕГИДРАТАЗЫ δ-АМИНОЛЕВУЛИНОВОЙ КИСЛОТЫ, ПОЛУЧЕННОГО ДО И ПОСЛЕ ТЕМПЕРАТУРНОЙ ОБРАБОТКИ ПРОБ КРОВИ
Пониженная активность АЛК-Д в крови лиц, подвергавшихся воздействию повышенных уровней свинца, восстанавливается после тепловой обработки пробы крови при 60 °С. У лиц контрольной группы тепловая обработка не влияет на активность АЛК-Д крови Эта особенность характерна только для воздействия свинца и может быть использована для дифференциальной диагностики В контрольной группе отношение активностей АЛК-Д в крови до и после тепловой обработки пробы крови равно 0,92±0,2, а у рабочих свинцовых производств - 0,27±0,11. Определение АЛК-Д может быть проведено в 0,2 мл крови при pH 7,4.
5.6. Определение концентрации δ-аминолевулиновой кислоты в моче
Принцип. Метод основан на фотометрическом определении пиррола, образующегося при взаимодействии АЛК с ацетилацетоном, после отделения АЛКм от примесей, которые сорбируются на активированном угле.
Оборудование.
Реактивы и их приготовление.
-
Основной стандартный раствор АЛК, 100 мкг/мл (0,75 ммоль/л). В мерной колбе на 50 мл растворяют 0,006 35 г АЛК гидрохлорида в ацетатном буферном растворе pH 3,6. Хранят в холодильнике не более 1 мес.
-
Рабочий стандартный раствор АЛК 0,0075 ммоль/л (1 мкг/мл). Готовят перед применением разведением основного стандартного раствора АЛК ацетатным буфером
-
Взвесь активированного угля Помещают 0,25 г активированного угля с дисперсностью 0,25-1 мм в мерную колбу на 100 мл и добавляют ацетатный буферный раствор Перед применением взвесь тщательно встряхивают.
-
Реактив Эрлиха 1 г парадиметиламинобензальдегида растворяют в мерной колбе на 50 мл в 35 мл ледяной уксусной кислоты, добавляют 8 мл 57% хлорной кислоты и доводят до метки ледяной уксусной кислотой Хранят в холодильнике в склянке темного стекла не более 1 нед.
Отбор проб и их хранение. Для анализа отбирают 2 мл мочи, которую обрабатывают в тот же день При подкислении мочи до pH 6 возможно ее хранение в холодильнике в течение нескольких месяцев. Для этого к 10 мл мочи добавляют 0,1 мл ледяной уксусной кислоты.
Ход определения К 1 мл мочи в пробирке с притертой пробкой добавляют 9 мл взвести активированного угля в ацетатном буферном растворе и встряхивают в течение 1 мин. Фильтруют через бумажный фильтр «синяя лента». В 2 пробирки отбирают по 2 мл фильтрата (контроль и опыт) В опытную пробирку вносят 0,05 мл ацетилацетона и перемешивают. Затем обе пробирки помещают на 20 мин на кипящую водяную баню После охлаждения проб и доведения объема растворов в пробирках до 2,0 мл ацетатным буферным раствором в пробирки добавляют по 2 мл реактива Эрлиха.
Одновременно строят калибровочный график с концентрациями АЛК 0,02; 0,06; 0,1; 0,14; 0,2; 0,4; 0,5; 0,8 мкг/мл в пробах Для этого берут рабочий стандартный раствор АЛК и добавляют 0,1; 0,3; 0,5; 0,7; 1; 2; 3; 4 мл в серию пробирок, доливают до 5 мл ацетатным буферным раствором Из каждой пробирки отбирают по 2 мл и проводят определение АЛК, как изложено выше Одновременно в моче определяют концентрацию креатинина. Рассчитывают по формуле:
Х = (С × 500 × 7,58)/КР, где Х - концентрация АЛК в моче, мкмоль/г КР; С - количество АЛК в пробе, найденное по калибровочному графику, мкг; 500 - коэффициент пересчета; 7,58 - коэффициент пересчета в систему СИ; КР - концентрация креатинина в моче, мг, %.
Нижняя граница определения АЛК - 0,15 мкмоль/г КР, воспроизводимость методики ±4,8%. В норме концентрация АЛКм варьирует от 3,9 до 18,95 мкмоль/г КР (0,5-2,5 мг/г КР). Порфобилиноген и мочевина определению не мешают.
5.7. Определение концентрации цинк-протопорфирина в крови
Для определения ZPP в настоящее время предлагается ряд методов: экстракционные, детергентное разбавление, гематофлуориметрические.
В 1995 г. Папковским Д. Б. и соавт. был получен патент «Способ определения нарушений порфиринового обмена, основанный на измерении концентрации ZPP в крови, на гематофлуориметрическом анализаторе». Сравнительная оценка трех методов определения ZPP: газожидкостной хроматографией (HPLC), спектрофлуориметрического и гематофлуориметрического - показала, что при использовании HPLC получаются более низкие результаты, чем при применении спектрофлуорметрического и гематофлуориметрического методов.
Protofluor Reagent System (Helena Lab) на основе гематофлуориметрического определения разработана тест-система, включающая набор реактивов и гематофлуориметр для определения ZPP в крови. Дается пошаговое описание методики.
5.7.1. ФЛУОРИМЕТРИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЦИНК-ПРОТОПОРФИРИНА В КРОВИ
Принцип. Метод основан на прямом измерении интенсивности флуоресценции разбавленной крови при длине волны 593 нм.
Оборудование. Спектрофлуориметр марки Hitachi Perkin Elmer MPF2.
Реактивы.
Ход определения. В гепаринизированную микропробирку для определения гематокрита отбирают 20 мкл крови из пальца или вены, вносят фосфатный буферный раствор, содержащий детергент Пробу крови разбавляют в 500 раз фосфатным буферным раствором, содержащим детергент Флуоресценция пробы остается постоянной в течение нескольких недель Измеряют флуоресценцию пробы и стандартного раствора при длине волны возбуждении 424 нм и поглощения 594 нм.
Рассчитывают по формуле:

где I - интенсивность флуоресценции крови при длине волны возбуждения - 24 нм и поглощения - 594 нм; 1,34 - калибровочный фактор; 5 - концентрация ZPP в стандартном растворе, мкг/100 мл; d - фактор разбавления крови (500 для 20 мкл в 10 мл буферного раствора); Is - интенсивность флуоресценции стандартного раствора ZPP.
Естественное содержание ZPP в крови взрослых людей составляет 32,4±0,7 (25-44 мкг/100 мл).
5.8. Определение свинца в биологических материалах
При диагностике воздействия свинца на организм человека часто используют методики, основанные на анодной пульсовой вольтамперометрии (ASV-stripping voltammetry), плазменной масс-спектрометрии (ICA-MS - Inductively coupled Plasma Mass Spectrometry), и атомно-абсорбционные (AAS и GFAAS - Grafite furnace Atomic Absorption Spectrometry). При выборе методики важно учитывать ее чувствительность, точность и длительность определения Обычно предпочтение отдается атомно-абсорбционным методам.
Однако метод определения свинца в крови, моче, волосах, основанный на атомной абсорбции в пламени, характеризуется сравнительно невысокой чувствительностью (нижняя граница определения - 10 мкг/дл) Поэтому для анализа фоновых значений необходимо брать большие количества исследуемого материала. Чувствительность определения свинца методом ААS с графитовой кюветой значительно выше - менее 1-2 мкг/дл, что позволяет проводить определение свинца в минимальных объемах крови, взятой из пальца. Хорошей чувствительностью обладает метод ASV, который также характеризуется быстротой определения, низкой стоимостью анализа и небольшим объемом пробы (100 мкл).
Методики, основанные на использовании плазменной масс-спектрометрии, отличаются очень высокой чувствительностью (0,1 мкг/дл), быстротой определения, небольшим объемом проб Однако масс-спектрометрические методики относятся к наиболее дорогостоящим.
В 2006 г в Российской Федерации были утверждены методические указания по определению марганца, свинца, магния в пробах крови методом атомной абсорбции.
5.8.1. МЕТОДИКА ОПРЕДЕЛЕНИЯ МАССОВЫХ КОНЦЕНТРАЦИЙ МАРГАНЦА, СВИНЦА, МАГНИЯ В ПРОБАХ КРОВИ МЕТОДОМ АТОМНОЙ АБСОРБЦИИ
Принцип. Методика основана на измерении величины поглощенного света соответствующей длины волной (для свинца - 283,3 нм) в высокотемпературном пламени после соответствующей подготовки пробы к анализу.
Оборудование.
Реактивы.
-
1% раствор азотной кислоты К 8 мл концентрированной HNO3 приливают 512 мл бидистиллированной воды
-
Стандартный раствор свинца 1 мг/мл Разбавляют в 1% растворе HNO3 Устойчив в течение 1 мес Рабочие стандартные растворы свинца 100 и 5 мкг/мл. Готовят путем разбавления основного стандартного раствора в 1% HNО3. Растворы устойчивы в течение 3 сут. Перед определением строят калибровочный график В колбочки приливают 0,2; 0,5; 1,0; 2,0 мл рабочего раствора с концентрацией свинца 5 мкг/мл и доливают до 20 мл 1% HNO3 Концентрации свинца в колбочках составляют 0,01; 0,025; 0,05 и 0,1 мкг/мл.
Отбор проб и определение свинца. Отбирают 1 мл крови и добавляют 1 мл 1% азотной кислоты, пробу перемешивают, помещают в тигель и высушивают при 110 °С, затем 2,5 ч - при 250 °С К пробе добавляют на кончике шпателя сульфат аммония и озоляют в муфельной печи при температуре 430-450 °С в течение 1,5 ч После остывания к пробе добавляют 0,3-0,5 мл концентрированной HNO3 и выпаривают до влажных солей К охлажденному зольному остатку приливают 5 мл 1% раствора HNO3, оставляют на 30-50 мин, отфильтровывают и раствор переносят в пробирку с притертой пробкой Свинец и марганец определяют на ААС. Свинец определяют при длине волны 283,3 нм. Рассчитывают по формуле:

где C - концентрация свинца в пробе, установленная по градуировочному графику, мкг/мл; C' - концентрация свинца в холостой пробе, мкг/мл; V - общий объем пробы, мл; V' - объем крови, взятой для анализа, мл.
Точность определения 31,3%.
Предлагаемый вариант атомно-абсорбционного определения Рвкр довольно длителен и громоздок, что затрудняет его использование при проведении серийных исследований. Значительно более быстрое определение свинца атомно-абсорбционным методом, использующим поглощение в пламени, дано в работе Чеплиевой Т. Н. (1990).
5.8.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СВИНЦА АТОМНО-АБСОРБЦИОННЫМ МЕТОДОМ С ПОГЛОЩЕНИЕМ В ПЛАМЕНИ
Принцип. Методика основана на измерении интенсивности светопропускания веществом, распылением в пламени горелки при резонансной линии свинца, равной 283,3 нм.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. При определении Рвкр отбирают 7-10 мл венозной крови в пробирку с 0,1 мл гепарина, перемешивают, 2 мл крови помещают в тефлоновый стаканчик, добавляют 2 мл концентрированной азотной кислоты и через 10 с медленно приливают 1 мл перекиси водорода Тефлоновый стаканчик вставляют в металлический контейнер, герметично закрывают и помещают в сушильный шкаф при температуре 165 °С на 1 ч После охлаждения пробы минерализат переносят в градуированную пробирку и доливают до 6 мл дистиллированной водой Полученный раствор распыляют в пламени прибора и измеряют оптическую плотность при резонансной линии свинца 283,3 нм и ширине входной и выходной щели монохроматора 16 мкм.
Для расчета строят калибровочный график В мерные колбы на 100 мл вносят последовательно следующие реактивы: 0; 0,1; 0,2; 0,5; 1,0; 2,0; 5,0 мл рабочего стандартного раствора, 100; 99,9; 99,8; 99,5; 99,0; 98,0; 95 мл 5% раствора азотной кислоты. Стандартные растворы распыляют и измеряют оптическую плотность на аналитической линии свинца.
Концентрацию Рвкр, мкг/дл, рассчитывают по формуле:

где C - концентрация свинца в пробе крови, полученная по калибровочному графику; Vпр - объем крови, взятый для анализа, мл; 100 - коэффициент для расчета концентрации свинца в 100 мл крови.
Чувствительность методики - 0,1 мкг/мл, коэффициент вариации ±4,5%, Co, Mn, Mo, V, Sn, Fe, Cu, Li, Mg, F, Ag, Br, Cd, Zn, кислоты, перекись водорода определению не мешают Натрий завышает результаты, начиная с концентрации 10 мг/мл.
Приведенный вариант атомно-абсорбционного определения Рвкр в связи с недостаточно высокой чувствительностью требует взятия крови из вены Наиболее перспективны методы, где определение свинца может быть проведено в крови, взятой из пальца В настоящее время разработан ряд методик, позволяющих проводить быстрое и точное определение свинца в 100 мкл крови Ниже приводится один из вариантов определения Рвкр методом ААS с графитовым атомизатором.
5.8.3. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СВИНЦА В КРОВИ АТОМНО-АБСОРБЦИОННЫМ МЕТОДОМ С ГРАФИТОВОЙ КЮВЕТОЙ GFAAS
Принцип. Метод основан на разбавлении пробы крови Тритоном Х-100 и последующим определением свинца в графитовом атомизаторе.
Реактивы.
Ход определения. 100-500 мкл крови разбавляют двумя объемами раствора Тритона-Х-100, перемешивают и 1 мкл вносят в графитовый атомизатор Для расчета предварительно строят калибровочный график.
Нижняя граница определения свинца - 5 мкг/дл крови, правильность - 96%, точность ±3,9%.
5.9. Определение скорости агрегации тромбоцитов
Оборудование.
Ход определения. Из локтевой вены берут кровь в силиконированные пробирки по 0,5 мл. Перед взятием проб крови за сутки должен быть исключен прием аспирина В первую пробирку наливают 2 мл раствора № 1, в другую - 2 мл раствора № 2. Центрифугируют 10 мин при 1000 об/мин. Отбирают плазму, обогащенную тромбоцитами Под микроскопом подсчитывают количество тромбоцитов в обеих пробах Процент спонтанной агрегации тромбоцитов рассчитывают по формуле:

где K1 - число тромбоцитов в пробе № 1; К2 - число тромбоцитов в пробе № 2.
Определение спонтанной агрегации можно провести и колориметрическим способом Для этого определяют оптическую плотность растворов №№ 1 и 2 при зеленом светофильтре и рассчитывают по формуле (Д1 /Д2) × 100%.
У здоровых людей спонтанная агрегация тромбоцитов - 6,8%, у больных ишемической болезнью сердца - 35,6, при гипертонической болезни - 20,1, при сахарном диабете - 29%.
5.9.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ИНДУЦИРОВАННОЙ СКОРОСТИ АГРЕГАЦИИ ТРОМБОЦИТОВ
Принцип. Метод основан на определении скорости агрегации тромбоцитов с индуцирующими веществами: тромбином, серотонином, адреналином, аденозиндифосфорной кислотой.
Оборудование.
Реактивы.
Ход определения. Тромбоциты из венозной крови выделяют методом дифференциального центрифугирования: 15 мл крови смешивают с 5% раствором этилендиаминтетрауксусной кислоты в соотношении 15:1 Для осаждения эритроцитов и лейкоцитов кровь центрифугируют 10 мин при 1000 об/мин, сливают надосадочный слой и центрифугируют 6 мин при 2000 об/мин для полного удаления эритроцитов и лейкоцитов Плазму центрифугируют при 3000 об/мин 40 мин для осаждения тромбоцитов Клетки дважды отмывают в буфере Тироде (pH 6,2) Отмытые тромбоциты ресуспендируют в 1 мл буфера (pH 7,35) без альбумина Тромбоцитарные мембраны разрушают добавлением 0,1 мл 1% раствора Тритона Х-100 при комнатной температуре.
Тромбоцитарную плазму получают так же, как и в предыдущем методе Подсчитывают количество тромбоцитов и разбавляют до концентрации 2×10-5 кл/мл, 0,01 мл плазмы наносят на предметное стекло и на расстоянии 0,5 см наносят 0,01 мл индуктора (аденозиндифосфорная кислота, тромбин и др.). Под малым увеличением микроскопа капли соединяют стеклянной палочкой и засекают время коагуляции на секундомере, осторожно покачивая стекло Время коагуляции оценивают по времени образования видимых агрегатов: малых - из 2-5 тромбоцитов, средних - более 5 тромбоцитов.
У здоровых людей спонтанная агрегация тромбоцитов - 6,8%, у больных ишемической болезнью сердца - 35,6, при гипертонической болезни - 20,1, при сахарном диабете - 29%.
5.10. Определение креатина в моче
При патологических состояниях мышечной ткани обычно наблюдается креатинурия Повышенное выделение креатина с мочой отмечают при прогрессировании мышечной дистрофии, при миопатии, миастении, миозите, у больных паренхиматозными гепатитами, гипертиреозе, акромегалии, диабете и некоторыми другими заболеваниями Повышенные уровни содержания креатина в моче взрослых людей выявляют и при некоторых заболеваниях, связанных с обменом креатина (при авитаминозе Е, диабете), при значительных оперативных вмешательствах, после родов.
Креатин в моче здорового взрослого человека, как правило, отсутствует Однако у маленьких детей и подростков моча всегда содержит креатин.
При воздействии вибрации креатинурия наблюдается очень рано У практически здоровых рабочих креатинурию отмечали уже при стаже 1-5 лет в 80% случаев, а у больных ВБ частота встречаемости лиц с повышенными концентрациями креатина в моче достигала 89,4%. Повышение концентрации креатина в моче при действии вибрации по праву может быть отнесено к группе наиболее ранних показателей, характеризующихся высокой диагностической чувствительностью и информативностью.
Креатинурия и снижение гемолитической резистентности эритроцитов к пероксиду водорода тесно связаны с показателями Е-витаминной активности.
5.10.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ КРЕАТИНА В МОЧЕ
Принцип. Метод основан на превращении креатина гидролитическим путем в креатинин, который определяют по реакции окрашенного соединения с пикриновой кислотой Количество креатина рассчитывают по разности между пробой, в которой определяли суммарное содержание креатина и креатинина, и пробой, в которой определяли только креатинин.
Оборудование.
Реактивы.
-
Насыщенный раствор пикриновой кислоты. 2 г пикриновой кислоты растворяют в 100 мл горячей (+70…+80 °С) дистиллированной воды, смесь нагревают на водяной бане Раствор оставляют на 1 сут при комнатной температуре для осаждения избытка пикриновой кислоты, затем фильтруют.
-
Стандартный раствор креатинина 8,80 ммоль/л (100 мг креатинина растворяют в 100 мл 0,1 н раствора соляной кислоты). Хранят в холодильнике в посуде с притертой пробкой
Ход определения. К 0,5 мл мочи (из суточного количества) в пробирке добавляют 0,5 мл 0,5 н раствора соляной кислоты Пробирку закрывают пробкой и помещают в сушильный шкаф на 60 мин при температуре 60 °С для перевода креатина в креатинин После извлечения пробирки из шкафа ее содержимое нейтрализуют добавлением нескольких капель 25% раствора едкого натра, используя в качестве индикатора лакмусовую бумажку Содержимое пробирки переливают в мерную колбу, в которой производят определение концентрации креатинина методом, основанным на реакции Яффе.
Переведение креатина в его ангидрид возможно и при подкислении мочи концентрированной соляной кислотой и прогревании пробы на кипящей водяной бане. К 0,5 мл мочи из суточного количества добавляют 0,5 мл концентрированной соляной кислоты и пробу помещают на кипящую водяную баню на 3 мин. После охлаждения пробу нейтрализуют и обрабатывают так же, как мочу для определения креатинина.
Параллельно берут 0,5 мл той же мочи, помещают в колбу на 100 мл и добавляют 3 мл раствора пикриновой кислоты Смесь тщательно встряхивают и добавляют к ней 0,2 мл 2,5 моль/л раствора NaOH, выдерживают при комнатной температуре 10 мин и объем смеси доводят до 100 мл Аналогичным способом обрабатывают пробу мочи, в которой проведено гидролитическое переведение креатина в креатинин.
Для получения стандартной пробы к 0,5 мл стандартного раствора, содержащего 0,5 мг креатинина, приливают 3 мл пикриновой кислоты и 0,2 мл раствора едкого натра Далее пробы обрабатывают так же, как опытные Измеряют оптическую плотность пробы с креатином и креатинином (E1), пробы с креатинином (E2), пробу со стандартным раствором (Ест) в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 530 нм против контрольной пробы, которую готовят следующим образом: к 3 мл раствора пикриновой кислоты добавляют 0,2 мл раствора едкого натрия, объем смеси доводят до 100 мл Рассчитывают концентрацию креатинина (Скр1):

где Скр1 - концентрация креатинина в негидролизо-ванной моче; E2 - оптическая плотность негидролизованной мочи; Ест - оптическая плотность стандартного раствора; 8,8 - расчетный коэффициент.
Затем рассчитывают суммарную концентрацию креатинина в пробе после перевода креатина в креатинин (кр) (Скр2):

где Скр2 - концентрация креатинина в моче после гидролиза; E1 - оптическая плотность мочи после гидролиза.

где Скреатина - концентрация креатина в моче; 1,16 - расчетный коэффициент перевода содержания креатинина в креатин, представляющий соотношение молекулярных масс креатина (131 дальтон) и креатинина (113 дальтон).
Рассчитывают коэффициент Ккр, который представляет собой отношение содержания суммы креатина и креатинина к концентрации креатинина в суточной моче:

где Ккр - креатиновый коэффициент.
В норме креатин в моче взрослых здоровых людей практически отсутствует.
Для количественного определения креатина в моче предлагается энзиматический метод, основанный на переводе креатина в формальдегид креатинкиназой и сарколизиндегидрогеназой с последующим колориметрическим определением Отмечают хорошую точность при определении.
Заключение
На основании закономерностей изменения уровней БМ в результате действия вредных производственных факторов сформулированы основные требования к диагностическим и аналитическим характеристикам методик, которые могут быть использованы для оптимального выбора наиболее информативных лабораторных тестов для ранней диагностики.
Предложена методология проведения исследований, установления диагностических характеристик изучаемых тестов, анализ которых позволяет выбрать информативные БМ и создать их комплексы для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов.
Освещены методы выбора информативных лабораторных БМ для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов.
Предлагаемые способы оценки диагностической информативности БМ, МСР выбора наиболее значимых тестов и создания их комплексов использованы для разработки методов ранней диагностики профзаболеваний при действии угольной пыли, вибрации и свинца на организм рабочих.
Установлены диагностические характеристики лабораторных БМ при действии угольной пыли, вибрации, вибрации в сочетании с повышенными уровнями никеля, свинца на организм работающих.
Выбраны комплексы информативных лабораторных БМ для раннего выявления воздействия вредных производственных факторов на организм рабочих Рассчитана вероятность развития профессионального заболевания, если установлены доклинические изменения в организме.
Показано, что избранные комплексы лабораторных БМ позволяют выявить ранние изменения в организме практически здоровых рабочих, оценить диагностическую чувствительность, ДЭ, прогностическую значимость.
Приведено описание методик количественного определения изучаемых БМ.
Литература
-
Щербо С.Н. Лабораторная медицина как основа медицины XXI века. (Congress fedlab.ru/upload/congress). Медицина XXI века: Мед. 4 «П» 2015. Бостон.
-
Кирьяков В.А., Павловская Н.А., Антошина Л.И. и др. Клиническая лабораторная диагностика профессиональных заболеваний. М.; Ярославль: СОЮЗ-ПРЕСС, 2013. 371 с.
-
Павловская Н.А. Закономерности изменений уровней лабораторных маркеров в организме человека при действии вредных факторов // Сан. врач. 2019. № 4. С. 11-18.
-
De Bord D.G., Burgoon L., Edwards S.W. Systems Biology and Biomarkers of Early Effects for Occupational Exposure Limit Setting // J. of Occupat. and Environ. Hygiene. 2015. N 12. P. 41-54.
-
Vasan R.S. Biomarker of Cardiovascular Disease. Molecular Basis and Practical Consideration. 2006. May 16. P. 1-29; DOY:10.116 http: //dx.doi.org/101161/ circulationa.
-
Меньшиков В.В. Стратегия совершенствования рационального применения лабораторных тестов // Клин. лаб. диагностика. 1996. № 5. С. 49-52.
-
Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагностике. М.: МЕДпрессинформ, 2004. 920 с.
-
Altman D.G., Bland G.M. Statistics Notes: Diagnostic Tests 1: Sensitivity and Specificity // BMG. 1994. N 308. P. 1552-1553.
-
Altman D.G., Bland G.M. Statistic Notes: Diagnostic Tests 2: Predictive values. BMG. 1994. N 308. Р. 15521553.
-
Королюк И.П. Медицинская информатика: Учебник. Самара: ООО «Офорт»: СамГМУ, 2012. 244 с.
-
Величковский Б.Т. Экологичекая пульмонология (Роль свободно-радикальных процессов). Екатеринбург, 2003. 105 с.
-
Gulumain M., Borm P.G.A., Gastranova V. et al. Mechanisticially identified Biomarkers of Exposure, Effect and Suscebility for Silicosis and Coal-workers Pneumoconiosis: a comprehensive Reviev. // J. of Toxicol. and Environ. Health. 2006. N 9. P. 357-395. Part B.
-
Tin Q., Lin A., Xie Sh et al. Pulmonary Functions and Blood biochemical Markers for Workers with and without Coal Worker Pneumoconiosis. 2009. P. 6(2). P. 33-39.
-
Косов А. В., Косов А. И., Игнатова И. Н. и др. Иммуногенетические факторы при профессиональных заболеваниях легких // Уральский мед. журн. 2007. № 8. С. 34-37.
-
Крючкова Е. Н., Сааркоппель Л. М., Яцына И. В. Особенности иммунного ответа при хроническом воздействии промышленных аэрозолей // Гигиена и санитария. 2016. 95№ (11) С 1058-1060.
-
Бодиенкова Г. М., Курчевенко С. И. Способ донозологической диагностики нарушения здоровья от воздействия локальной вибрации (изобретение) ВосточноСибирский ин-т медико-экологических исследований, 2015.04.27.
-
Курчевенко С. И., Бодиенкова Г.М. Донозологическая диагностика вибрационной болезни // Клиническая лабораторная диагностика. 2017. № 8. С. 482-485.
-
Антошина Л. И., Павловская Н.А. Биохимические маркеры вибрации и их критериальное значение // Медицина труда и пром экология 2009 № 12 С 22-27.
-
Коробчанский В. А., Новикова И. В., Герасименко О. И. Биохимические критерии донозологической и ранней диагностики вибрационной болезни под воздействием локальной вибрации // Мед. съгодня i завтра. 2011. № 4(53). С. 139-144.
-
Павловская Н.А. Ранняя диагностика профессиональных заболеваний // Сан врач 2019 № 5 С 40-47. 21. Лощилов Ю.А. Клиническая морфология гиперчувствительного пневмонита // Медицина труда и пром экология. 2014. № 2. С. 15-19.
-
Шушкевич Н. И. Влияние свинца на изменение показателей крови у рабочих свинцового производства // Вестн. РУДН. Сер. : Экология и безопасность жизнедеятельности 2007 № 1 С 49-53.
-
Borosova D., Kloslova Z., Drimal M. Estimating uncertainty and quality of Lead Determination in Human Blood // Craphth J. of Earth and Environment sci. 2008. N 3 (1). P 23-30.
-
Смаил Н. Н., Окшина Л. Н. Оценка состояния здоровья рабочих свинцовых заводов по результатам углубленных клинико-диагностических лабораторных исследований: Материалы 2-й Международной научной конференции М., 2013. С. 45-48.
-
Павловская Н. А., Кирьяков В. А., Савельев С. И. Свинец, ртуть, никель: ранняя диагностика токсического действия на организм Липецк, 2002 239 с.
-
Grunder F., Moffit M., Moffit A. Evaluation of Zink protoporphyrin in an occupational Environment // Am Industr. Hyg. Assoc. J. 1979. Vol. 40. N 8. P. 686-694.